JPH031960B2 - - Google Patents
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- JPH031960B2 JPH031960B2 JP57090036A JP9003682A JPH031960B2 JP H031960 B2 JPH031960 B2 JP H031960B2 JP 57090036 A JP57090036 A JP 57090036A JP 9003682 A JP9003682 A JP 9003682A JP H031960 B2 JPH031960 B2 JP H031960B2
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/48—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
- C12Q1/52—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase involving transaminase
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- Engineering & Computer Science (AREA)
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Description
この発明は、臨床診断の分野において使用する
トランスアミナーゼの測定方法に関する。GOT,
AST又はAATと呼ばれるグルタミン酸オキザロ
酢酸トランスアミナーゼ(L−aspartate
ketoglutarete Amino Transferase、EC2.6.1.1.)
は、細胞内の存在位置を異にし、電気泳動的に区
別される二種類の形で存在する。すなわち (1) ミトコンドリアに結合している陽イオン性ア
イソエンザイム(m−GOT)と、 (2) 細胞質に存在する陰イオン性アイソエンザイ
ム(s−GOT)とである。 血漿中のGOTの全活性の測定は、心筋梗塞の
診断に広く利用されており、又、生理液中の
GOT活性レベルは、他の病理形態、特に肝臓と
骨格筋レベルの診断にも利用されている。 臨床診断に実用されている測定方法において
は、生物試料中の2種のアイソエンザイムを合わ
せた全酵素活性が測定されてしまう。 組識の壊死状態に関するより精巧な検査手段を
得るためには、グルタミン酸オキザロ酢酸トラン
スアミナーゼの2種のアイソエンザイムの相対的
な活性を識別することが重要である。 他の酵素、例えば乳酸脱水素酵素(LDH)及
びクレアチンキナーゼについては、臨床的適用に
おいて、種々のアイソエンザイム型に関する適切
な活性測定により、より高い識別力が得られるこ
とが注目される。 グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼ
の、細胞質性及びミトコンドリア性の2種の酵素
の、実際に存在する測定法は、電気泳動法、クロ
マトグラフ法又は免疫学的方法に基礎を置いてお
り、これらの場合には、前もつて1つのアイソエ
ンザイムを他のアイソエンザイムから分離してお
く必要がある。 この発明は、2種のアイソエンザイムを分離す
ることを必要としないで、血清又は血漿試料中の
2種のアイソエンザイムの活性を分離測定するこ
とができる、新規な測定法に関するものである。 この方法は、本質上、L−セリンO−サルフエ
ート(L−serine O−sulfate)とブタ細胞質性
グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼと
の既知反応に基礎を置いており、この酵素は、
種々の時間のインキユベーシヨンの後、前記の基
質の誘導体と酵素の活性部位の反応基との間の共
有結合の形成により失格する(R.A.John,P.
Fasella:“The reaction of L−serine−O−
sulphate with AsPartate Aminotransterase”
Biochemistry,Vol.8,No.11,Nov.1969)。 我々は、実験の過程で、予期に反して、ヒト.
ミトコンドリア性アイソエンザイムの存在下にヒ
ト.細胞質性アイソエンザイムを失活せしめるイ
ンキユベーシヨン条件により、ヒト.ミトコンド
リア性アイソエンザイムの活性喪失は生じないこ
とを見出した。 従つて、L−セリンO−サルフエート(L−
serine O−sulfate)とのインキユベーシヨンの
前及び後に、血漿又は血清中に存在するGOT活
性を測定することにより、第一の場合には2種の
アイソエンザイムの両者の総活性を評価すること
ができ、第二の場合(L−セリンO−サルフエー
ト(L−serine O−sulfate)とインキユベート
した後)にはミトコンドリア性アイソエンザイム
のみの活性を評価することができる。そして、こ
れらの単純差を求めることにより、細胞質性アイ
ソエンザイムの活性値が得られる。 次に、ミトコンドリア性及び細胞質性の二種の
アイソエンザイムのGOT活性測定の分析条件に
ついて説明する。 血清又は血漿中の活性測定には、同一試料から
採取した2個の同量の小分け試料を使用するのが
好ましく、この内の一つの小分け試料は総活性
(2種のアイソエンザイムの両者)の測定に使用
し、一方、前もつてL−セリンO−サルフエート
(L−serine O−sulfate)とインキユベーシヨン
した後の他方の小分け試料から、ミトコンドリア
性アイソエンザイムのみの活性値を求める。 血清又は血漿の同一試料から0.5mlを取り出し、
2本の別々の試験管に入れる。第一の試験管(A)に
L−セリンO−サルフエート(L−serine O−
sulfate)の2M水溶液25マイクロリツターを加え
て、L−セリンO−サルフエート(L−serine
O−sulfate)の最終濃度が約50mMとなるよう
にし、過度の希釈をしない。第二の試験管(B)に
は、25マイクロリツターの水を加えて、試験管(A)
にL−セリンO−サルフエート(L−serine O
−sulfate)を加えた場合と同じ希釈にする。室
温で30分間又は30℃で20分間放置する。この時間
の終点で反応が完結する。すなわち、試験管(A)に
おいて、L−セリンO−サルフエート(L−
serine O−sulfate)から誘導された化合物(ア
ミノアクリル酸)が細胞質性アイソエンザイムの
活性部位中に存在する基と完全に共有結合を形成
し、該酵素を不可逆的に失格せしめ、一方このイ
ンキユベーシヨン期間中、ミトコンドリア性アイ
ソエンザイムの同様の阻害は生じない。 そして、二つの試験管中の酵素活性を、カルメ
ン法(Karmen′s method)、すなわち、グルタミ
ン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼとリンゴ酸
脱水素酵素との共役反応における還元型ニコチン
アミドアデニンジニユークレオチド(NADH)
の消費による方法、によつて測定する。 340nmにおける1分間当たりの光学濃度の変化
から、次のようにして、血清又は血漿1当たり
の酵素単位値(U/)を求める。 試験管(B)=TotalU/(細胞質性アイソエンザイム+
ミトコンドリア性アイソエンザイム) 試験管(A)=U/(ミトコンドリア性アイソエンザイ
ムのみ) U/(B)−U/(A)の差から試験管(A)において
完全に失活した細胞質性アイソエンザイムの値、
U/を求める。 例 この発明の方法の有効性を実証し、これの適用
方法を例示するために、2種のアイソエンザイム
を種々の量含む5群のヒト血清を調製した。この
5群の母体は最低の固有の活性(<5U/)を
有するヒト血清からなる。この血清に、イー.ゼ
イ.サンプソン(E.J.Sampson)等の方法により
精製した2種のアイソエンザイムを種々の量加え
た。 最終的に、5群は次の構成となつた。 第1群:120U/(細胞質性アイソエンザイム
のみ) 第2群:112.5U/(90U/の細胞質性アイソ
エンザイムと22.5U/のミトコンドリア
性アイソエンザイム) 第3群:105U/(60U/の細胞質性アイソ
エンザイムと45U/のミトコンドリア性
アイソエンザイム) 第4群:97.5U/(30U/の細胞質性アイソ
エンザイムと67.5U/のミトコンドリア
性アイソエンザイム) 第5群:90U/(ミトコンドリア性アイソエン
ザイムのみ) この方法に従つてアイソエンザイム活性の測定
を行い、6個の異なつた測定の平均として得た結
果を表に示した(表中、細胞質性アイソエンザイ
ムをS−GOTとしミトコンドリア性アイソエン
ザイムをm−GOTとして示した)。
トランスアミナーゼの測定方法に関する。GOT,
AST又はAATと呼ばれるグルタミン酸オキザロ
酢酸トランスアミナーゼ(L−aspartate
ketoglutarete Amino Transferase、EC2.6.1.1.)
は、細胞内の存在位置を異にし、電気泳動的に区
別される二種類の形で存在する。すなわち (1) ミトコンドリアに結合している陽イオン性ア
イソエンザイム(m−GOT)と、 (2) 細胞質に存在する陰イオン性アイソエンザイ
ム(s−GOT)とである。 血漿中のGOTの全活性の測定は、心筋梗塞の
診断に広く利用されており、又、生理液中の
GOT活性レベルは、他の病理形態、特に肝臓と
骨格筋レベルの診断にも利用されている。 臨床診断に実用されている測定方法において
は、生物試料中の2種のアイソエンザイムを合わ
せた全酵素活性が測定されてしまう。 組識の壊死状態に関するより精巧な検査手段を
得るためには、グルタミン酸オキザロ酢酸トラン
スアミナーゼの2種のアイソエンザイムの相対的
な活性を識別することが重要である。 他の酵素、例えば乳酸脱水素酵素(LDH)及
びクレアチンキナーゼについては、臨床的適用に
おいて、種々のアイソエンザイム型に関する適切
な活性測定により、より高い識別力が得られるこ
とが注目される。 グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼ
の、細胞質性及びミトコンドリア性の2種の酵素
の、実際に存在する測定法は、電気泳動法、クロ
マトグラフ法又は免疫学的方法に基礎を置いてお
り、これらの場合には、前もつて1つのアイソエ
ンザイムを他のアイソエンザイムから分離してお
く必要がある。 この発明は、2種のアイソエンザイムを分離す
ることを必要としないで、血清又は血漿試料中の
2種のアイソエンザイムの活性を分離測定するこ
とができる、新規な測定法に関するものである。 この方法は、本質上、L−セリンO−サルフエ
ート(L−serine O−sulfate)とブタ細胞質性
グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼと
の既知反応に基礎を置いており、この酵素は、
種々の時間のインキユベーシヨンの後、前記の基
質の誘導体と酵素の活性部位の反応基との間の共
有結合の形成により失格する(R.A.John,P.
Fasella:“The reaction of L−serine−O−
sulphate with AsPartate Aminotransterase”
Biochemistry,Vol.8,No.11,Nov.1969)。 我々は、実験の過程で、予期に反して、ヒト.
ミトコンドリア性アイソエンザイムの存在下にヒ
ト.細胞質性アイソエンザイムを失活せしめるイ
ンキユベーシヨン条件により、ヒト.ミトコンド
リア性アイソエンザイムの活性喪失は生じないこ
とを見出した。 従つて、L−セリンO−サルフエート(L−
serine O−sulfate)とのインキユベーシヨンの
前及び後に、血漿又は血清中に存在するGOT活
性を測定することにより、第一の場合には2種の
アイソエンザイムの両者の総活性を評価すること
ができ、第二の場合(L−セリンO−サルフエー
ト(L−serine O−sulfate)とインキユベート
した後)にはミトコンドリア性アイソエンザイム
のみの活性を評価することができる。そして、こ
れらの単純差を求めることにより、細胞質性アイ
ソエンザイムの活性値が得られる。 次に、ミトコンドリア性及び細胞質性の二種の
アイソエンザイムのGOT活性測定の分析条件に
ついて説明する。 血清又は血漿中の活性測定には、同一試料から
採取した2個の同量の小分け試料を使用するのが
好ましく、この内の一つの小分け試料は総活性
(2種のアイソエンザイムの両者)の測定に使用
し、一方、前もつてL−セリンO−サルフエート
(L−serine O−sulfate)とインキユベーシヨン
した後の他方の小分け試料から、ミトコンドリア
性アイソエンザイムのみの活性値を求める。 血清又は血漿の同一試料から0.5mlを取り出し、
2本の別々の試験管に入れる。第一の試験管(A)に
L−セリンO−サルフエート(L−serine O−
sulfate)の2M水溶液25マイクロリツターを加え
て、L−セリンO−サルフエート(L−serine
O−sulfate)の最終濃度が約50mMとなるよう
にし、過度の希釈をしない。第二の試験管(B)に
は、25マイクロリツターの水を加えて、試験管(A)
にL−セリンO−サルフエート(L−serine O
−sulfate)を加えた場合と同じ希釈にする。室
温で30分間又は30℃で20分間放置する。この時間
の終点で反応が完結する。すなわち、試験管(A)に
おいて、L−セリンO−サルフエート(L−
serine O−sulfate)から誘導された化合物(ア
ミノアクリル酸)が細胞質性アイソエンザイムの
活性部位中に存在する基と完全に共有結合を形成
し、該酵素を不可逆的に失格せしめ、一方このイ
ンキユベーシヨン期間中、ミトコンドリア性アイ
ソエンザイムの同様の阻害は生じない。 そして、二つの試験管中の酵素活性を、カルメ
ン法(Karmen′s method)、すなわち、グルタミ
ン酸オキザロ酢酸トランスアミナーゼとリンゴ酸
脱水素酵素との共役反応における還元型ニコチン
アミドアデニンジニユークレオチド(NADH)
の消費による方法、によつて測定する。 340nmにおける1分間当たりの光学濃度の変化
から、次のようにして、血清又は血漿1当たり
の酵素単位値(U/)を求める。 試験管(B)=TotalU/(細胞質性アイソエンザイム+
ミトコンドリア性アイソエンザイム) 試験管(A)=U/(ミトコンドリア性アイソエンザイ
ムのみ) U/(B)−U/(A)の差から試験管(A)において
完全に失活した細胞質性アイソエンザイムの値、
U/を求める。 例 この発明の方法の有効性を実証し、これの適用
方法を例示するために、2種のアイソエンザイム
を種々の量含む5群のヒト血清を調製した。この
5群の母体は最低の固有の活性(<5U/)を
有するヒト血清からなる。この血清に、イー.ゼ
イ.サンプソン(E.J.Sampson)等の方法により
精製した2種のアイソエンザイムを種々の量加え
た。 最終的に、5群は次の構成となつた。 第1群:120U/(細胞質性アイソエンザイム
のみ) 第2群:112.5U/(90U/の細胞質性アイソ
エンザイムと22.5U/のミトコンドリア
性アイソエンザイム) 第3群:105U/(60U/の細胞質性アイソ
エンザイムと45U/のミトコンドリア性
アイソエンザイム) 第4群:97.5U/(30U/の細胞質性アイソ
エンザイムと67.5U/のミトコンドリア
性アイソエンザイム) 第5群:90U/(ミトコンドリア性アイソエン
ザイムのみ) この方法に従つてアイソエンザイム活性の測定
を行い、6個の異なつた測定の平均として得た結
果を表に示した(表中、細胞質性アイソエンザイ
ムをS−GOTとしミトコンドリア性アイソエン
ザイムをm−GOTとして示した)。
【表】
アイソエンザイム組成に関する理論値と実験値
の比較から、この発明の方法の有効性がその正確
さと共に明白である。
の比較から、この発明の方法の有効性がその正確
さと共に明白である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 血清又は血漿試料中のグルタミン酸オキザロ
酢酸トランスアミナーゼ(GOT)の細胞質性及
びミトコンドリア性のアイソエンザイムの単独の
酵素活性を測定する方法において、L−セリンO
−サルフエート(L−serine O−sulfate)との
インキユベーシヨンの前と後に血清又は血漿中の
GOT活性を測定し、第一の場合に2種のアイソ
エンザイムの総酵素活性に係る酵素活性値を求
め、第二の場合に、ミトコンドリア性酵素のみの
活性に係る酵素活性値を求め、上記の二種の活性
値の差から細胞質性アイソエンザイムの活性を求
めることを特徴とする方法。 2 血清又は血漿の同一試料の2個の等量の小分
け試料で測定を行うことを特徴とする特許請求の
範囲第1項記載の方法。 3 GOTとリンゴ酸脱水素酵素の共役反応にお
ける還元型ニコチンアミドアデニンジニユークレ
オチド(NADH)の消費によつて酵素活性を測
定することを特徴とする特許請求の範囲第1項又
は第2項記載の方法。 4 L−セリンO−サルフエートによる細胞質性
アイソエンザイムの失活を室温における30分間の
インキユベーシヨンによつて行うことを特徴とす
る特許請求の範囲第1項記載の方法。 5 L−セリンO−サルフエートによる細胞質性
アイソエンザイムの失活を30℃における20分間の
インキユベーシヨンによつて行うことを特徴とす
る特許請求の範囲第1項記載の方法。 6 常用のグルタミン酸オキザロ酢酸トランスア
ミナーゼ(GOT)分析試薬とL−セリンO−サ
ルフエートとを含むことを特徴とする、GOTの
細胞質及びミトコンドリア性のアイソエンザイム
の単独の酵素活性を測定するための診断用キツ
ト。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| IT48565/81A IT1171257B (it) | 1981-05-28 | 1981-05-28 | Metodo per la determinazione della attivita' degli isoenzimi citoplasmatico e mitocondriale della glutammico ossalacetico transaminasi nel siero o plasma umano |
| IT48565A/81 | 1981-05-28 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5832000A JPS5832000A (ja) | 1983-02-24 |
| JPH031960B2 true JPH031960B2 (ja) | 1991-01-11 |
Family
ID=11267352
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP57090036A Granted JPS5832000A (ja) | 1981-05-28 | 1982-05-28 | グルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナ−ゼアイソエンザイムの分別測定法及びこれに使用するキツト |
Country Status (16)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4477566A (ja) |
| JP (1) | JPS5832000A (ja) |
| AT (1) | AT381326B (ja) |
| AU (1) | AU593762B2 (ja) |
| BE (1) | BE893362A (ja) |
| CA (1) | CA1186604A (ja) |
| CH (1) | CH653135A5 (ja) |
| DE (1) | DE3220331A1 (ja) |
| ES (1) | ES512600A0 (ja) |
| FR (1) | FR2512833B1 (ja) |
| GB (1) | GB2099580B (ja) |
| IL (1) | IL65804A (ja) |
| IT (1) | IT1171257B (ja) |
| NL (1) | NL186915C (ja) |
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| JPS60149382A (ja) * | 1984-01-12 | 1985-08-06 | Sawao Murao | アスパラギン酸アミノトランスフエラ−ゼアイソザイム阻害活性を有するプロテア−ゼの製造法 |
| JPH0644879B2 (ja) * | 1986-09-04 | 1994-06-15 | 栄研化学株式会社 | ヒト血清中のグルタミン酸オキザロ酢酸トランスアミナ−ゼアイソザイムの測定法 |
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| JP2768117B2 (ja) * | 1992-03-17 | 1998-06-25 | 日本鋼管株式会社 | 汚泥改質方法 |
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|---|---|---|---|---|
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| JPS5631957B2 (ja) * | 1973-10-09 | 1981-07-24 | ||
| JPS5299212A (en) * | 1976-02-16 | 1977-08-19 | Eiken Chemical | Fractionally quantitative measurement for glutamic acid * oxaloacetic acid and transferaminaseisozyme |
| IT1162349B (it) * | 1979-07-17 | 1987-03-25 | Biodata Spa | Metodo per la determinazione delle transaminasi e relativo kit diagnostico |
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1981
- 1981-05-28 IT IT48565/81A patent/IT1171257B/it active
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1982
- 1982-05-17 ZA ZA823398A patent/ZA823398B/xx unknown
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- 1982-05-25 US US06/381,777 patent/US4477566A/en not_active Expired - Fee Related
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- 1982-05-28 AU AU84255/82A patent/AU593762B2/en not_active Ceased
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