JPH0361434B2 - - Google Patents

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JPH0361434B2
JPH0361434B2 JP22068583A JP22068583A JPH0361434B2 JP H0361434 B2 JPH0361434 B2 JP H0361434B2 JP 22068583 A JP22068583 A JP 22068583A JP 22068583 A JP22068583 A JP 22068583A JP H0361434 B2 JPH0361434 B2 JP H0361434B2
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JP
Japan
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chloride
acid
halocarboxylic
medium
acids
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JP22068583A
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Japanese (ja)
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Shigeo Inoe
Yoshiharu Kimura
Shigehito Adachi
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National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
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Agency of Industrial Science and Technology
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は酵母によりアルキル(又はアルケニ
ル)ハライドからω−ハロカルボン酸を製造する
方法に関する。 従来、脂肪酸のω−末端のみを選択的に酸化す
ることは工業的には困難とされてきた。例えば、
ラクトン系ムスク(じや香合成香料)の主成分で
あるヘキサデカノライドの製造にはω−ヒドロキ
シパルミチン酸が使用されるが、ムスクが高価で
あるのは、この前駆体たるω−ヒドロキシパリミ
チン酸の製造が困難なことに起因する。即ち、パ
ルミチン酸のω−末端を選択的に酸化してω−ヒ
ドロキシパルミチン酸とすることは、合成化学上
困難である。 一方、微生物にノマルパラフインを資化させて
ジカルボン酸を製造する際に副産物としてω−ヒ
ドロキシ高級脂肪酸も得られることが報告されて
いる(例えば特公昭48−26238号)このようにω
−ヒドロキシ高級脂肪酸はノルマルパラフインの
アルカン資化性菌によるジカルボン酸への代謝中
間体であるが、その著量生産は困難とされてい
る。その理由としてはω−ヒドロキシ高級脂肪酸
の生成速度に比べて、そのジカルボン酸への転化
速度の方がずつと大きいためと推測される。 また、ω−ヒドロキシ脂肪酸と同様にラクトン
系ムスクの主成分である大環状ラクトンの有用な
中間体としてはω−ハロカルボン酸がある。ω−
ハロカルボン酸はハロゲンに官能基を導入するこ
とにより種々の誘導体にも導びくこともできる。
このω−ハロカルボン酸に関しては、アルスロバ
クター属、コリネバクテリウム属、ノカルデイア
属に属し、アルキルハライドからω−ハロカルボ
ン酸を生産する能力を有する菌を培養し、ω−ハ
ロカルボン酸を生産する方法が報告されている
(特開昭57−50893号)。 しかしながら、酵母ではそのような能力を有す
るものは未だ知られていない。 そこで、本発明者から、斯かる現状に鑑みアル
キル(又はアルケニル)ハライドを対応するω−
ハロカルボン酸に変換する能力を有する酵母を広
く検索した結果、キヤンデイダ属に属する微生物
中に斯かる能力を有するものがあることを見出
し、本発明を完成した。 すなわち、本発明は炭素数6〜22のアルキル
(又はアルケニル)ハライドを添加した培地にキ
ヤンデイダ属に属するω−ハロカルボン酸生産菌
を培養して、培地中に炭素数6〜22のω−ハロカ
ルボン酸を生成蓄積せしめ、これを採取すること
を特徴とする微生物によるω−ハロカルボン酸の
製造法にある。 本発明で使用される酵母はキヤンデイダ属に属
し、アルキル(又はアルケニル)ハライドのω−
末端を選択的に酸化してω−ハロカルボン酸を生
成しうるものであつて例として、キヤンデイダ・
ギリモンデイ・KSM−B−24(Candida・
guilliermondii・KSM−B−24)が挙げられる。
この菌株は本発明者らが土壌より分離したもので
あつて、微工研菌寄第7309号として工業技術院微
生物工業技術研究所に寄託されており、以下に示
す菌学的性質を有している。 なお、各種炭素源の同化性についてキヤンデイ
ダ・ギリモンデイ・KSM−B−24と標準菌株を
比較した結果を第1表に示す。 (a) 細胞の大きさ:直径 2.2〜2.5μ (b) 各培地における生育状態 (1) MY寒天培地: 円形の光沢のない集落を生じる。色は白色
を有する。 (2) MY液体培地: 皮膚は形成せず、中程度に混濁し沈澱を生
じる。 (3) コーンミール寒天培地による スライド培養: 仮性菌糸を形成する。分生子は出芽型を有
する。 (4) 子のう胞子の形成 ゴドロコワ培地:形成しない 麦芽抽出液寒天培地:形成しない (5) 射出胞子の形成 MY寒天平面培地:形成しない (c) 生理学的性質 (1) 生育条件: 温度 14〜47℃(最適20〜40℃) PH 2.2〜9.6(最適4.3〜9.0) (2) 硝酸塩の同化:同化しない (3) 脂質の分解(油脂):分解しない(リパー
ゼ活性がない) (4) 尿素の分解:分解する (5) ゼラチンの液化:液化しない (6) 耐浸透圧(NaCl耐性):12〜13% (7) カロチノイドの生成:生成しない (8) 顕著な有機酸の生成:有機酸は生成しない (9) ビタミンの要求性:要求しない (10) 各炭素源の同化性:
The present invention relates to a method for producing ω-halocarboxylic acids from alkyl (or alkenyl) halides using yeast. Conventionally, it has been considered industrially difficult to selectively oxidize only the ω-terminus of fatty acids. for example,
ω-Hydroxypalmitic acid is used in the production of hexadecanolide, which is the main component of lactone musk (synthetic fragrance), but the reason why musk is so expensive is because of its precursor, ω-hydroxypalmitic acid. This is due to the difficulty in producing mitic acid. That is, it is difficult in terms of synthetic chemistry to selectively oxidize the ω-terminus of palmitic acid to form ω-hydroxypalmitic acid. On the other hand, it has been reported that ω-hydroxy higher fatty acids are also obtained as a by-product when normal paraffin is assimilated by microorganisms to produce dicarboxylic acids (e.g., Japanese Patent Publication No. 26238-1973).
-Hydroxy higher fatty acids are metabolic intermediates of normal paraffin into dicarboxylic acids by alkane-assimilating bacteria, but it is difficult to produce them in significant quantities. The reason for this is presumed to be that the rate of conversion to dicarboxylic acids is much higher than the rate of production of ω-hydroxy higher fatty acids. Further, similar to ω-hydroxy fatty acids, ω-halocarboxylic acids are useful intermediates for macrocyclic lactones, which are the main components of lactone musks. ω-
Halocarboxylic acids can also be derived into various derivatives by introducing a functional group into the halogen.
Regarding this ω-halocarboxylic acid, there is a method of producing ω-halocarboxylic acid by culturing bacteria that belong to the genus Arthrobacter, Corynebacterium, and Nocardia and have the ability to produce ω-halocarboxylic acid from alkyl halides. It has been reported (Japanese Patent Application Laid-Open No. 57-50893). However, no yeast that has such an ability is known yet. Therefore, in view of the current situation, the present inventor proposed that the alkyl (or alkenyl) halide correspond to ω-
As a result of a wide search for yeast that has the ability to convert into halocarboxylic acids, it was discovered that some microorganisms belonging to the genus Candeida have such an ability, and the present invention was completed. That is, the present invention involves culturing ω-halocarboxylic acid-producing bacteria belonging to the genus Candeida in a medium supplemented with an alkyl (or alkenyl) halide having 6 to 22 carbon atoms, and producing ω-halocarboxylic acid having 6 to 22 carbon atoms in the medium. A method for producing ω-halocarboxylic acid using a microorganism, which is characterized by producing and accumulating ω-halocarboxylic acid and collecting the same. The yeast used in the present invention belongs to the genus Candeida and has an alkyl (or alkenyl) halide ω-
It is capable of selectively oxidizing the terminal to produce ω-halocarboxylic acids, such as Candeida.
Guilli Monday KSM-B-24 (Candida)
guilliermondii・KSM-B-24).
This strain was isolated from soil by the present inventors and has been deposited with the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology as Microbiology Research Institute No. 7309, and has the following mycological properties. ing. Table 1 shows the results of a comparison between Candeida Guillimondei KSM-B-24 and the standard strain regarding the assimilation of various carbon sources. (a) Cell size: 2.2-2.5μ in diameter (b) Growth status in each medium (1) MY agar medium: produces circular, dull colonies. The color has white. (2) MY liquid medium: No skin is formed, it is moderately cloudy and a precipitate is formed. (3) Slide culture on cornmeal agar medium: Forms pseudohyphae. Conidia have a budding form. (4) Formation of ascospores Godorochova medium: No formation Malt extract agar medium: No formation (5) Formation of extruded spores MY agar flat medium: No formation (c) Physiological properties (1) Growth conditions: Temperature 14~ 47℃ (optimum 20-40℃) PH 2.2-9.6 (optimum 4.3-9.0) (2) Nitrate assimilation: Not assimilated (3) Lipid decomposition (fats and oils): Not decomposed (no lipase activity) (4) Urea Decomposition: Decomposes (5) Liquefaction of gelatin: No liquefaction (6) Osmotic pressure resistance (NaCl resistance): 12-13% (7) Production of carotenoids: No production (8) Production of significant organic acids: Organic acids (9) Requirements for vitamins: Not required (10) Assimilation of each carbon source:

【表】 (11) アルブミンの分解:分解しない。 (12) 窒素源の利用 バクトペプトン:利用する 硫酸アンモニウム:利用する DL−アスパラギン:利用する 尿素:利用する (13) デンプン類似物質の生産性:なし (14) 採集地:土壌から分離【table】 (11) Degradation of albumin: Does not degrade. (12) Utilization of nitrogen sources Bactopeptone: Use Ammonium sulfate: use DL-Asparagine: Use Urea: Use (13) Productivity of starch-like substances: None (14) Collection site: Separated from soil

【表】 (注) ±:弱い
以上の菌学的性質を有する菌について、ロツダ
ーのザ・イースト(Lodder′s The Yeasts)第
2版(1971年)にもとづいて検索した結果、上記
酵母はキヤンデイダ・ギリモンデイに属する新菌
株と認め、キヤンデイダ・ギリモンデイ・KSM
−B−24(Candida・guilliermondii・KSM−B
−24)と命名した。 本発明において原料として用いるアルキル(又
はアルケニル)ハライドは、炭素数6〜22のアル
キル(又はアルケニル)クロライド又はアルキル
(又はアルケニル)ブロマイドが適当である。こ
のうち炭素数12〜18のものが特に好ましい。アル
キル(又はアルケニル)ハライドとしては、例え
ばn−ヘキシルクロライド、n−ヘプチルクロラ
イド、n−オクチルクロライド、n−デシルクロ
ライド、n−ウンデシルクロライド、n−ドデシ
ルクロライド(ラウリルクロライド)、n−テト
ラデシルクロライド(ミリスチルクロライド)、
n−ペンタデシルクロライド、n−ヘキサデシル
クロライド(セチルクロライド)、n−オクタデ
シルクロライド、n−エイコシルクロライド、n
−ドコシルクロライド、ウンデセニルクロライ
ド、オクタデセニルクロライド(オレイルクロラ
イド)、及びこれらの混合物等、更にこれらに対
応するブロマイドを挙げることができる。 本発明で使用する培地の組成は、使用する菌株
が良好に生育し、アルキル(又はアルケニル)ハ
ライドからのω−ハロカルボン酸の生産を順調に
行なわしめるために適当な炭素源、窒素源あるい
は有機栄養源、無機塩などからなる。炭素源とし
ては、炭水化物(例えば、グルコース、フラクト
ース、シユクロース、ソルビトール等)、有機酸
(例えば、クエン酸、コハク酸等)、炭化水素(例
えば、n−ドデカン、n−ヘキサデカン等)など
資化されるものならばいずれも使用できる。ま
た、窒素源あるいは有機栄養源としては、例え
ば、硝酸ナトリウム、硝酸カリウム、硝酸アンモ
ニウム等の硝酸塩類、酵母エキス、肉エキス、ペ
プトンが挙げられる。また、無機塩としては各種
リン酸塩、硫酸マグネシウムなどが使用できる。
さらに微量の重金属塩類が使用されるが、天然物
を含む培地では必ずしも添加を必要としない。ま
た栄養要求を必要とする変異株を用いる場合に
は、その栄養要求を満たす物質を培地に添加しな
ければならない。 培地は培地を加熱等により殺菌後、菌を接種
し、28〜35℃で3〜5日振盪又は通気撹拌すれば
良い。PHは6.5〜8程度に調整すると良い結果が
得られる。水に難溶性の炭素源等を使用する場合
には、ポリオキシエチレンソルビタン等の各種界
面活性剤を培地に添加することも可能である。 これらの培養液から目的物質であるω−ハロカ
ルボン酸の採取および精製は、一般の有機化合物
の採取および精製の手段に準じて行うことができ
る。たとえば培養液から菌体等を除去したろ液も
しくは培養液そのものを酸性とし、エチルエーテ
ル、酢酸エチル又はクロロホルムーメタノール混
液等の有機溶媒で抽出する。この抽出物をカラム
クロマトグラフイーあるいは再結晶などの方法を
用いてω−ハロカルボン酸を単離することができ
る。 以下、実施例により本発明を更に詳しく説明す
るが、本発明はこれらによつて限定されるもので
はない。 実施例 1 セチルクロライド50g、リン酸二アンモニウム
10g、リン酸一カリウム2g、硫酸マグネシウム
(7水塩)0.2g、硫酸第一鉄(7水塩)0.02g、
硫酸亜鉛(7水塩)0.016g、硫酸マンガン(4
〜6水塩)0.016g、酵母エキス2gを水道水に
溶かして1にし、PHを6.5に調製した。この液
体培地5mlを50ml容振盪試験管に仕込み、120℃
で15分間蒸気滅菌した後、キヤンデイダ・ギリモ
ンデイ・KSM−B−24(Candida・
guilliermondii・KSM−B−24)を一白金耳接種
し、30℃で168時間振盪培養した。 培養終了後、この培養液に9N硫酸1mlを加え
PHを強酸性として、クロロホルムーメタノール
(2:1)混液20mlで抽出した。この抽出液を減
圧下濃縮した後メタノール−BF3触媒でメチル化
し、ガスクロマトグラフイーにて生成物のω−ク
ロロパルミチン酸の定量を行なつた。その結果を
第2表に示す。 なお生成物のガスーマス(GC−MS)データ
は標品のそれと一致し、ω−クロロパルミチン酸
であることが確認された。
[Table] (Note) ±: Weak As a result of searching for bacteria with the above mycological properties based on Lodder's The Yeasts, 2nd edition (1971), the above yeast was found to be Candeida.・Recognized as a new strain belonging to Guillimondei, Kyandida Guillimondei, KSM
-B-24 (Candida・guilliermondii・KSM-B
−24). The alkyl (or alkenyl) halide used as a raw material in the present invention is suitably an alkyl (or alkenyl) chloride or an alkyl (or alkenyl) bromide having 6 to 22 carbon atoms. Among these, those having 12 to 18 carbon atoms are particularly preferred. Examples of alkyl (or alkenyl) halides include n-hexyl chloride, n-heptyl chloride, n-octyl chloride, n-decyl chloride, n-undecyl chloride, n-dodecyl chloride (lauryl chloride), and n-tetradecyl chloride. (myristyl chloride),
n-pentadecyl chloride, n-hexadecyl chloride (cetyl chloride), n-octadecyl chloride, n-eicosyl chloride, n
-docosyl chloride, undecenyl chloride, octadecenyl chloride (oleyl chloride), mixtures thereof, and their corresponding bromides. The composition of the medium used in the present invention is such that it contains appropriate carbon sources, nitrogen sources, or organic nutrients in order to allow the strain used to grow well and to smoothly produce ω-halocarboxylic acids from alkyl (or alkenyl) halides. It consists of sources, inorganic salts, etc. Carbon sources include carbohydrates (e.g., glucose, fructose, sucrose, sorbitol, etc.), organic acids (e.g., citric acid, succinic acid, etc.), and hydrocarbons (e.g., n-dodecane, n-hexadecane, etc.). You can use any of the following. Examples of the nitrogen source or organic nutrient source include nitrates such as sodium nitrate, potassium nitrate, and ammonium nitrate, yeast extract, meat extract, and peptone. Moreover, various phosphates, magnesium sulfate, etc. can be used as inorganic salts.
In addition, trace amounts of heavy metal salts are used, but their addition is not necessarily required in media containing natural products. Furthermore, when using a mutant strain that requires nutritional requirements, a substance that satisfies the nutritional requirements must be added to the medium. The culture medium may be sterilized by heating or the like, inoculated with bacteria, and shaken or aerated for 3 to 5 days at 28 to 35°C. Good results can be obtained by adjusting the pH to around 6.5 to 8. When using a carbon source that is poorly soluble in water, it is also possible to add various surfactants such as polyoxyethylene sorbitan to the medium. Collection and purification of the target substance, ω-halocarboxylic acid, from these culture solutions can be carried out in accordance with the methods used to collect and purify general organic compounds. For example, the filtrate from which bacterial cells have been removed from the culture solution or the culture solution itself is acidified and extracted with an organic solvent such as ethyl ether, ethyl acetate, or a chloroform-methanol mixture. The ω-halocarboxylic acid can be isolated from this extract using a method such as column chromatography or recrystallization. EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples, but the present invention is not limited thereto. Example 1 Cetyl chloride 50g, diammonium phosphate
10 g, monopotassium phosphate 2 g, magnesium sulfate (7 hydrate) 0.2 g, ferrous sulfate (7 hydrate) 0.02 g,
Zinc sulfate (7 hydrate) 0.016g, manganese sulfate (4
- 0.016 g of hexahydrate) and 2 g of yeast extract were dissolved in tap water to make the pH 1 and adjust the pH to 6.5. Pour 5 ml of this liquid medium into a 50 ml shaking test tube and heat it to 200°C.
After steam sterilizing for 15 minutes in
guilliermondii KSM-B-24) was inoculated in one platinum loop and cultured with shaking at 30°C for 168 hours. After culturing, add 1 ml of 9N sulfuric acid to this culture solution.
The pH was made strongly acidic and extraction was performed with 20 ml of a chloroform-methanol (2:1) mixture. This extract was concentrated under reduced pressure, then methylated using a methanol- BF3 catalyst, and the amount of ω-chloropalmitic acid in the product was determined by gas chromatography. The results are shown in Table 2. The gas mass (GC-MS) data of the product matched that of the standard product, and it was confirmed that it was ω-chloropalmitic acid.

【表】 実施例 2 セチルクロライド50g、リン酸二アンモニウム
10g、リン酸一カリウム2g、硫酸マグネシウム
(7水塩)0.2g、ポリペプトン1g、酵母エキス
0.5gを水道水1に溶かし、PHを6.5に調製し
た。この液体培地50mlを500ml容振盪フラスコに
仕込み、120℃で15分間蒸気滅菌した後、キヤン
デイダ・ギリモンデイ・KSM−B−24
(Candida・guilliermondii・KSM−B−24)を
一白金耳接種し、30℃で168時間振盪培養した。 培養終了後、この培養液に9N硫酸10mlを加え
PHを強酸性として、クロロホルムーメタノール
(2:1)混液200mlで抽出した。この抽出液を減
圧下濃縮した後メタノール−BF3触媒でメチル化
し、ガスクロマトグラフイーにて生成物のω−ク
ロロパルミチン酸の定量を行なつた。その結果、
培養液1当り16mgのω−クロロパルミチン酸が
得られることがわかつた。なお生成物のガスーマ
ス(GC−MS)データは標品のそれと一致し、
ω−クロロパルミチン酸であることが確認され
た。 実施例 3 反応基質としてセチルクロライドの代わりに第
3表に示す各種炭素源を用い、菌株としてキヤン
デイダ・ギリモンデイ・KSM−B−24
(Candida・guilliermondii・KSM−B−24)を
実施例1と同様の条件で培養を行なつた。その結
果を第3表に示す。
[Table] Example 2 Cetyl chloride 50g, diammonium phosphate
10g, monopotassium phosphate 2g, magnesium sulfate (heptahydrate) 0.2g, polypeptone 1g, yeast extract
0.5g was dissolved in 1 part of tap water and the pH was adjusted to 6.5. Pour 50 ml of this liquid medium into a 500 ml shaking flask, steam sterilize it at 120°C for 15 minutes, and then
(Candida guilliermondii KSM-B-24) was inoculated with one loopful and cultured with shaking at 30°C for 168 hours. After culturing, add 10ml of 9N sulfuric acid to this culture solution.
The pH was made strongly acidic and extraction was performed with 200 ml of a chloroform-methanol (2:1) mixture. This extract was concentrated under reduced pressure, then methylated using a methanol- BF3 catalyst, and the amount of ω-chloropalmitic acid in the product was determined by gas chromatography. the result,
It was found that 16 mg of ω-chloropalmitic acid was obtained per 1 culture solution. The gas mass (GC-MS) data of the product is consistent with that of the standard product.
It was confirmed that it was ω-chloropalmitic acid. Example 3 Various carbon sources shown in Table 3 were used instead of cetyl chloride as the reaction substrate, and Candeida Guillimondei KSM-B-24 was used as the bacterial strain.
(Candida guilliermondii KSM-B-24) was cultured under the same conditions as in Example 1. The results are shown in Table 3.

【表】【table】

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1 炭素数6〜22のアルキル(又はアルケニル)
ハライドを添加した培地にキヤンデイダ属に属す
るω−ハロカルボン酸生産菌を培養して、培地中
に炭素数6〜22のω−ハロカルボン酸を生成蓄積
せしめ、これを採取することを特徴とする微生物
によるω−ハロカルボン酸の製造法。
1 Alkyl (or alkenyl) having 6 to 22 carbon atoms
A microorganism characterized by culturing ω-halocarboxylic acid-producing bacteria belonging to the genus Candeida in a medium to which a halide has been added, producing and accumulating ω-halocarboxylic acids having 6 to 22 carbon atoms in the medium, and collecting the ω-halocarboxylic acids. Method for producing ω-halocarboxylic acid.
JP22068583A 1983-11-25 1983-11-25 Preparation of omega-halocarboxylic acid by candida Granted JPS60114195A (en)

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