JPH0417627B2 - - Google Patents
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- Publication number
- JPH0417627B2 JPH0417627B2 JP57028893A JP2889382A JPH0417627B2 JP H0417627 B2 JPH0417627 B2 JP H0417627B2 JP 57028893 A JP57028893 A JP 57028893A JP 2889382 A JP2889382 A JP 2889382A JP H0417627 B2 JPH0417627 B2 JP H0417627B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- sam
- cells
- extract
- cerevisiae
- bacterial cells
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
本発明はＳ−アデノシルメチオニオンを高濃度
で含有する微生物菌体に関し、さらに詳しくは、
アデニン関連物質やニンヒドリン反応陽性物質の
含有量が少なく、簡単な操作で効率よく高純度の
Ｓ−アデノシルメチオニンを取得可能なサツカロ
マイセス・セレビシエ属に属する微生物菌体に関
する。 Ｓ−アデノシルメチオニン（以下、SAMと略
称する）は、従来から肝血症、過度脂血症、動脈
硬化症などに対する治療効果のある物質として知
られており、近時その大量生産が期待されてい
る。而して、かかるSAMの製造に際しては、も
つぱら微生物による発酵法が用いられているが
（例えばジヤーナル・オブ・バイオロジカル・ケ
ミストリー229、1037頁、1957年発行、特公昭52
−17118号など）、これらの方法では微生物菌体中
に蓄積されるSAM含有が少なく、しかもSAMと
の分離が困難なアデニン関連物質やニンヒドリン
反応陽性物質を多量含んでいるため、高純度の
SAMを簡単な操作で単離することが困難であつ
た。またSAMはきわめて不安定な物質であるた
め、菌体内にSAMを含有したまま遠隔地に移送
することもしばしば行われるが、このような場合
にSAMの含有量が小さいことは経済性の点で大
きな問題となつていた。 そこで本発明者らは従来技術のかかる点を改良
すべく鋭意検討を進めた結果、サツカロマイセ
ス・セレビシエ属に属する微生物菌体中のSAM
含量を乾燥菌体基準で10重量％以上にすると、菌
体中に存在するSAMと分離困難なメチルチオア
デノシン、アデニン、及びＳ−アデノシルホモシ
ステインがSAM蓄積量に対してそれぞれ0.1％以
下、１×10-2％以下、及び0.5％以下に低下し、
その結果として高純度のSAMの高収率かつ経済
的に回収可能になることを見い出し本発明を完成
するに到つた。 かくして本発明によれば、菌体内に乾燥菌体基
準で10重量％以上、好ましくは12重量％以上
SAMを含有する微生物菌体が提供される。 本発明において用いられる微生物はSAM生産
能を有し、かつメチオニン含有液体培地中で菌体
内に乾燥菌体基準でSAMを10重量％以上蓄積し
うるサツカロマイセス・セレビシエ属に属する酵
母である。 その具体例な的として、例えばサツカロマイセ
ス・セレビヂエ IFO 2342、サツカロマイセ
ス・セレビジエ IFO 2343、サツカロマイセ
ス・セレビジエ IFO 2345、サツカロマイセ
ス・セレジビエ IFO 2346、サツカロマイセ
ス・セレビジエ IFO 2347、協会９号酵母など
が例示され、またこれらの菌株の天然及び人工変
異菌であつても前記の性質を具備するものであれ
ば同様に使用することができる。 本発明の微生物菌体は、かかる微生物の菌体中
にSAMを乾燥菌体基準で10重量％以上、好まし
くは12重量％以上含有するものである。 かかる微生物菌体の製造法は格別制限されるも
のではないが、通常メチオニン、炭素源、窒素
源、無機塩及び有機微量栄養源を含有する液体培
地中で好気的条件下で培養することによつて行わ
れる。 メチオニンは通常0.2ｇ／dl以上の割合で添加
される。メチオニンの添加方法は一度に全量を添
加する方法、分割して順次添加する方法のいずれ
でもよいが、メチオニンの添加量が多い場合に前
者の方法を採用するとSAMの菌体内蓄積量が低
下する傾向を示すので、このようなときには後者
の方法を採用するのが適切である。 炭素源としては、グルコース．シユクロース．
フラクトースなどの糖類；エタノール．グリセリ
ンなどのアルコール類；更にはこれを含有する澱
粉加水分解液．糖蜜．大豆ホエー．果汁廃液．魚
加工廃液．発酵廃液．パルプ廃液なども使用でき
る。また窒素源としては、尿素．コハク酸アンモ
ニウム．クエン酸アンモニウム．乳酸アンモニウ
ムなどが好ましい。 無機塩としては燐酸カリウム．燐酸ナトリウ
ム．燐酸カルシウム．燐酸リチウムなどの燐酸
塩．塩化カリウムなどのカリウム塩．塩化ナトリ
ウム．炭酸ナトリウムなどのナトリウム塩．硫酸
マグネシウム．塩化マグネシウムなどのマグネシ
ウム塩．硫酸マンガン．塩化マンガンなどのマン
ガン塩．硫酸鉄、塩化鉄などの鉄塩、亜鉛塩、銅
塩、コバルト塩などの通常の無機塩が必要に応じ
て適宜使用することができる。有機微量栄養源と
してはビタミン．アミノ酸．これらを含有する酵
母エキス．肉エキス．麦芽エキス．コーンステイ
ープリカー．カザミノ酸．大豆粉．大豆加水分
解．ペプトン．トリプトン．カゼイン分解液など
が必要に応じて使用できる。 培養は好気的条件下で行うのが好ましく、通常
培地のPHを３〜８、好ましくは3.5〜７に制御し
つつ、15℃〜45℃、好ましくは20℃〜35℃の範囲
で２日から10日間、培養することにより微生物菌
体中にSAMが生成蓄積される。 かくして得られる微生物菌体からSAMを取得
する方法は格別制限されるものではなく、常法に
従つて行われる。すなわち、菌体を培地から分離
したのち、菌体中のSAMを抽出し、次いで抽出
液中のSAMを単離することによつて目的物が得
られるが、この際、硫酸塩、パラトルエンスルホ
ン酸塩、スルホサリチル酸塩などのごとき塩また
は複塩の形で安定化して回収するのが一般的であ
る。 かかる本発明によれば、菌体内に高濃度で
SAMを含有するため不安定なSAMの移送に便宜
であり、またSAMとの分離が面倒な不純物の含
有率が小さいためSAMの精製が容易であり、そ
の結果として高純度のSAMを効率よく回収する
ことを可能にする。 以下に実施例を挙げて本発明をさらに具体的に
説明する。 実施例 １ グルコース５ｇ／dl、ポリペプトン0.5ｇ／dl、
KH2PO40.4ｇ／dl、K2HPO40.4ｇ／dl、
MgSO4・7H2O0.02ｇ／dl、酵母エキス0.2ｇ／
dl、寒天２ｇ／dlからなる寒天斜面培地（PH6.0）
に２日間生育させたサツカロマイセス・セレビジ
エIFO2346の１白金耳を、シユクロース10ｇ／
dl、酵母エキス１ｇ／dl、KH2PO40.4ｇ／dl、
MgSO4・7H2O0.01ｇ／dl、Ｌ−メチオニン1.0
ｇ／dl、ZnSO4・7H2O0.25mg／dl、MnSO44〜
6H2O1.25mg／dl、からなりPH6.0に調整、加熱滅
菌した培地10mlに植菌し、28℃で４日間振盪し
た。 遠心分離にて集菌し、生理食塩水で洗浄した
後、菌体を1.5N過塩素酸に懸濁し、室温で１時
間、振盪しSAMを抽出した。抽出液をペーパー
クロマトグラフイー、高速液体クロマトグラフイ
ーで分析し、SAM、アデニン（以下、Adと略）、
Ｓ−アデノシルホモシステイン（以下SAHと
略）、メチルチオアデノシン（以下、MTAと略）
の分析を行ない、結果を第１表に示した。
で含有する微生物菌体に関し、さらに詳しくは、
アデニン関連物質やニンヒドリン反応陽性物質の
含有量が少なく、簡単な操作で効率よく高純度の
Ｓ−アデノシルメチオニンを取得可能なサツカロ
マイセス・セレビシエ属に属する微生物菌体に関
する。 Ｓ−アデノシルメチオニン（以下、SAMと略
称する）は、従来から肝血症、過度脂血症、動脈
硬化症などに対する治療効果のある物質として知
られており、近時その大量生産が期待されてい
る。而して、かかるSAMの製造に際しては、も
つぱら微生物による発酵法が用いられているが
（例えばジヤーナル・オブ・バイオロジカル・ケ
ミストリー229、1037頁、1957年発行、特公昭52
−17118号など）、これらの方法では微生物菌体中
に蓄積されるSAM含有が少なく、しかもSAMと
の分離が困難なアデニン関連物質やニンヒドリン
反応陽性物質を多量含んでいるため、高純度の
SAMを簡単な操作で単離することが困難であつ
た。またSAMはきわめて不安定な物質であるた
め、菌体内にSAMを含有したまま遠隔地に移送
することもしばしば行われるが、このような場合
にSAMの含有量が小さいことは経済性の点で大
きな問題となつていた。 そこで本発明者らは従来技術のかかる点を改良
すべく鋭意検討を進めた結果、サツカロマイセ
ス・セレビシエ属に属する微生物菌体中のSAM
含量を乾燥菌体基準で10重量％以上にすると、菌
体中に存在するSAMと分離困難なメチルチオア
デノシン、アデニン、及びＳ−アデノシルホモシ
ステインがSAM蓄積量に対してそれぞれ0.1％以
下、１×10-2％以下、及び0.5％以下に低下し、
その結果として高純度のSAMの高収率かつ経済
的に回収可能になることを見い出し本発明を完成
するに到つた。 かくして本発明によれば、菌体内に乾燥菌体基
準で10重量％以上、好ましくは12重量％以上
SAMを含有する微生物菌体が提供される。 本発明において用いられる微生物はSAM生産
能を有し、かつメチオニン含有液体培地中で菌体
内に乾燥菌体基準でSAMを10重量％以上蓄積し
うるサツカロマイセス・セレビシエ属に属する酵
母である。 その具体例な的として、例えばサツカロマイセ
ス・セレビヂエ IFO 2342、サツカロマイセ
ス・セレビジエ IFO 2343、サツカロマイセ
ス・セレビジエ IFO 2345、サツカロマイセ
ス・セレジビエ IFO 2346、サツカロマイセ
ス・セレビジエ IFO 2347、協会９号酵母など
が例示され、またこれらの菌株の天然及び人工変
異菌であつても前記の性質を具備するものであれ
ば同様に使用することができる。 本発明の微生物菌体は、かかる微生物の菌体中
にSAMを乾燥菌体基準で10重量％以上、好まし
くは12重量％以上含有するものである。 かかる微生物菌体の製造法は格別制限されるも
のではないが、通常メチオニン、炭素源、窒素
源、無機塩及び有機微量栄養源を含有する液体培
地中で好気的条件下で培養することによつて行わ
れる。 メチオニンは通常0.2ｇ／dl以上の割合で添加
される。メチオニンの添加方法は一度に全量を添
加する方法、分割して順次添加する方法のいずれ
でもよいが、メチオニンの添加量が多い場合に前
者の方法を採用するとSAMの菌体内蓄積量が低
下する傾向を示すので、このようなときには後者
の方法を採用するのが適切である。 炭素源としては、グルコース．シユクロース．
フラクトースなどの糖類；エタノール．グリセリ
ンなどのアルコール類；更にはこれを含有する澱
粉加水分解液．糖蜜．大豆ホエー．果汁廃液．魚
加工廃液．発酵廃液．パルプ廃液なども使用でき
る。また窒素源としては、尿素．コハク酸アンモ
ニウム．クエン酸アンモニウム．乳酸アンモニウ
ムなどが好ましい。 無機塩としては燐酸カリウム．燐酸ナトリウ
ム．燐酸カルシウム．燐酸リチウムなどの燐酸
塩．塩化カリウムなどのカリウム塩．塩化ナトリ
ウム．炭酸ナトリウムなどのナトリウム塩．硫酸
マグネシウム．塩化マグネシウムなどのマグネシ
ウム塩．硫酸マンガン．塩化マンガンなどのマン
ガン塩．硫酸鉄、塩化鉄などの鉄塩、亜鉛塩、銅
塩、コバルト塩などの通常の無機塩が必要に応じ
て適宜使用することができる。有機微量栄養源と
してはビタミン．アミノ酸．これらを含有する酵
母エキス．肉エキス．麦芽エキス．コーンステイ
ープリカー．カザミノ酸．大豆粉．大豆加水分
解．ペプトン．トリプトン．カゼイン分解液など
が必要に応じて使用できる。 培養は好気的条件下で行うのが好ましく、通常
培地のPHを３〜８、好ましくは3.5〜７に制御し
つつ、15℃〜45℃、好ましくは20℃〜35℃の範囲
で２日から10日間、培養することにより微生物菌
体中にSAMが生成蓄積される。 かくして得られる微生物菌体からSAMを取得
する方法は格別制限されるものではなく、常法に
従つて行われる。すなわち、菌体を培地から分離
したのち、菌体中のSAMを抽出し、次いで抽出
液中のSAMを単離することによつて目的物が得
られるが、この際、硫酸塩、パラトルエンスルホ
ン酸塩、スルホサリチル酸塩などのごとき塩また
は複塩の形で安定化して回収するのが一般的であ
る。 かかる本発明によれば、菌体内に高濃度で
SAMを含有するため不安定なSAMの移送に便宜
であり、またSAMとの分離が面倒な不純物の含
有率が小さいためSAMの精製が容易であり、そ
の結果として高純度のSAMを効率よく回収する
ことを可能にする。 以下に実施例を挙げて本発明をさらに具体的に
説明する。 実施例 １ グルコース５ｇ／dl、ポリペプトン0.5ｇ／dl、
KH2PO40.4ｇ／dl、K2HPO40.4ｇ／dl、
MgSO4・7H2O0.02ｇ／dl、酵母エキス0.2ｇ／
dl、寒天２ｇ／dlからなる寒天斜面培地（PH6.0）
に２日間生育させたサツカロマイセス・セレビジ
エIFO2346の１白金耳を、シユクロース10ｇ／
dl、酵母エキス１ｇ／dl、KH2PO40.4ｇ／dl、
MgSO4・7H2O0.01ｇ／dl、Ｌ−メチオニン1.0
ｇ／dl、ZnSO4・7H2O0.25mg／dl、MnSO44〜
6H2O1.25mg／dl、からなりPH6.0に調整、加熱滅
菌した培地10mlに植菌し、28℃で４日間振盪し
た。 遠心分離にて集菌し、生理食塩水で洗浄した
後、菌体を1.5N過塩素酸に懸濁し、室温で１時
間、振盪しSAMを抽出した。抽出液をペーパー
クロマトグラフイー、高速液体クロマトグラフイ
ーで分析し、SAM、アデニン（以下、Adと略）、
Ｓ−アデノシルホモシステイン（以下SAHと
略）、メチルチオアデノシン（以下、MTAと略）
の分析を行ない、結果を第１表に示した。
【表】
この結果から、明らかなように乾燥菌体当りの
SAM含量が12％以上の場合にはSAMと分離し難
い不純物が少ないことがわかる。 実施例 ２ 実施例１と同じで培地で、培養時間、培地PH、
培養温度を変えて、サツカロマイセス・セレビジ
エIFO2346を培養し、乾燥菌体当りのSAM含量
が異なる菌体を調整した。この菌体を実施例１と
同じ方法で抽出・分析を行い、結果を第２表に示
した。
SAM含量が12％以上の場合にはSAMと分離し難
い不純物が少ないことがわかる。 実施例 ２ 実施例１と同じで培地で、培養時間、培地PH、
培養温度を変えて、サツカロマイセス・セレビジ
エIFO2346を培養し、乾燥菌体当りのSAM含量
が異なる菌体を調整した。この菌体を実施例１と
同じ方法で抽出・分析を行い、結果を第２表に示
した。
【表】
【表】
実施例 ３
グルコース５ｇ／dl、ポリペプトン0.5ｇ／dl、
KH2PO40.4ｇ／dl、K2HPO40.4ｇ／dl、
MgSO4・7H2O0.02ｇ／dl、酵母エキス0.2ｇ／
dl、からなり、PH6.0に調整、加熱滅菌した培地
10mlに第３表に示す各種菌株を１白金耳接種し、
28℃にて24時間振盪培養した。 一方、シユクロース10ｇ／dl、酵母エキス１
ｇ／dl、KH2PO40.4ｇ／dl、MgSO4・7H2O0.01
ｇ／dl、尿素（別滅菌）1.5ｇ／dl、Ｌ−メチオ
ニン0.75ｇ／dl、CaCl2 2H2O0.02ｇ／dl、
ZnSO4 7H2O0.25mg／dl、FeSO4 7H2O0.25mg／
dl、MnSO44〜6H2O125mg／dl、CuSO4・
5H2O2μｇ／dl、H3BO32μｇ／dl、CoCl2・
6H2O0.2μｇ／dl、KI1μｇ／dlからなりPH6.0に調
整した培地１を２容発酵槽に入れ、殺菌後、
上記種培養液５mlを接種し、28℃で72時間通気撹
拌培養を行なつた。培養後、遠心分離にて集菌
し、生理食塩水で１回洗浄した菌体を100mlの
1.5N過塩素酸に懸濁し、室温で１時間振盪し
SAMを抽出した。次いで遠心分離にて菌体残渣
を除去した後、炭酸水素カリウムを加えてPH4.5
に調整し、生じた過塩素酸カリウムの沈澱を遠心
分離にて除去し、SAMを含む抽出液を得た。抽
出液中のSAMを定量しその結果を乾燥菌体当り
のSAM量として第３表に示した。 この抽出液をSAM量として0.2ｇになるように
弱酸性陽イオン交換樹脂アンバーライトIRC−50
（H+型）50mlを詰めたカラムに通しSAMを吸着
させた。カラムに0.005N酢酸を通じて溶出液の
260nｍに於ける吸光度が0.1以下になるまで洗浄
し、不純物を除去した。この時に要した0.2N酢
酸量を第３表に示した。次いでカラムに0.1N硫
酸を通じて溶出液の260nｍに於ける吸光度が0.05
以下になるまで、SAMを溶出した。この溶出液
をアンバーライトIRA900樹脂（OH-型）で処理
し、PH3.0とした後、凍結乾燥して、SAM・硫酸
塩を得た。この時のSAMの回収率を第３表に示
した。セルロース薄層クロマトグラフイー、ペー
パークロマトグラフイー、高速液体クロマトグラ
フイーでSAMの純度を測定し、第３表に示した。
KH2PO40.4ｇ／dl、K2HPO40.4ｇ／dl、
MgSO4・7H2O0.02ｇ／dl、酵母エキス0.2ｇ／
dl、からなり、PH6.0に調整、加熱滅菌した培地
10mlに第３表に示す各種菌株を１白金耳接種し、
28℃にて24時間振盪培養した。 一方、シユクロース10ｇ／dl、酵母エキス１
ｇ／dl、KH2PO40.4ｇ／dl、MgSO4・7H2O0.01
ｇ／dl、尿素（別滅菌）1.5ｇ／dl、Ｌ−メチオ
ニン0.75ｇ／dl、CaCl2 2H2O0.02ｇ／dl、
ZnSO4 7H2O0.25mg／dl、FeSO4 7H2O0.25mg／
dl、MnSO44〜6H2O125mg／dl、CuSO4・
5H2O2μｇ／dl、H3BO32μｇ／dl、CoCl2・
6H2O0.2μｇ／dl、KI1μｇ／dlからなりPH6.0に調
整した培地１を２容発酵槽に入れ、殺菌後、
上記種培養液５mlを接種し、28℃で72時間通気撹
拌培養を行なつた。培養後、遠心分離にて集菌
し、生理食塩水で１回洗浄した菌体を100mlの
1.5N過塩素酸に懸濁し、室温で１時間振盪し
SAMを抽出した。次いで遠心分離にて菌体残渣
を除去した後、炭酸水素カリウムを加えてPH4.5
に調整し、生じた過塩素酸カリウムの沈澱を遠心
分離にて除去し、SAMを含む抽出液を得た。抽
出液中のSAMを定量しその結果を乾燥菌体当り
のSAM量として第３表に示した。 この抽出液をSAM量として0.2ｇになるように
弱酸性陽イオン交換樹脂アンバーライトIRC−50
（H+型）50mlを詰めたカラムに通しSAMを吸着
させた。カラムに0.005N酢酸を通じて溶出液の
260nｍに於ける吸光度が0.1以下になるまで洗浄
し、不純物を除去した。この時に要した0.2N酢
酸量を第３表に示した。次いでカラムに0.1N硫
酸を通じて溶出液の260nｍに於ける吸光度が0.05
以下になるまで、SAMを溶出した。この溶出液
をアンバーライトIRA900樹脂（OH-型）で処理
し、PH3.0とした後、凍結乾燥して、SAM・硫酸
塩を得た。この時のSAMの回収率を第３表に示
した。セルロース薄層クロマトグラフイー、ペー
パークロマトグラフイー、高速液体クロマトグラ
フイーでSAMの純度を測定し、第３表に示した。
【表】
【表】
第３表から明らかなように、本発明例において
は不純物の除去に要する溶出液の量が少なくてす
み、SAM回収率、SAMの純度とも極めて良好で
あることが明らかである。
は不純物の除去に要する溶出液の量が少なくてす
み、SAM回収率、SAMの純度とも極めて良好で
あることが明らかである。
Claims (1)
- １ 菌体中に乾燥菌体基準で10重量％以上のＳ−
アデノシルメチオニンを含有し、メチルチオアデ
ノシン、アデニン、及びＳ−アデノシルホモシス
テインをＳ−アデノシルメチオニン蓄積量に対し
てそれぞれ0.1％以下、１×10-2％以下、及び0.5
％以下含有するサツカロマイセス・セレビシエに
属する微生物菌体。
Priority Applications (9)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2889382A JPS58146274A (ja) | 1982-02-26 | 1982-02-26 | Ｓ−アデノシルメチオニン高含有菌体 |
| GB08303031A GB2116172B (en) | 1982-02-25 | 1983-02-03 | Microbial cells containing s-adenosyl methionine in high concentrations and process for production of s adenosyl methionine |
| US06/463,990 US4562149A (en) | 1982-02-25 | 1983-02-04 | Yeast culture containing S-adenosyl methionine in high concentrations, and process for production of S-adenosyl methionine |
| AR292061A AR230457A1 (es) | 1982-02-25 | 1983-02-08 | Procedimiento para producir s-adenosilmetionina |
| IT19490/83A IT1193668B (it) | 1982-02-25 | 1983-02-09 | Cellule microbiche contenenti s-adenosil metionina in concentrazione elevata e procedimento per la produzione di s-adenosil metionina |
| BR8300654A BR8300654A (pt) | 1982-02-25 | 1983-02-09 | Celulas microbianas que contem s-adenosil-metionina em altas concentracoes e processo para producao de s-adenosil-metionina |
| DE19833304468 DE3304468A1 (de) | 1982-02-25 | 1983-02-09 | Mikroorganismenzellen die s-adenosylmethionin enthalten verfahren zu deren herstellung |
| ES519652A ES519652A0 (es) | 1982-02-25 | 1983-02-09 | Un procedimiento para obtener s-adenosil-metionina. |
| CH762/83A CH658868A5 (de) | 1982-02-25 | 1983-02-10 | Verfahren zur herstellung von s-adenosyl-methionin. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2889382A JPS58146274A (ja) | 1982-02-26 | 1982-02-26 | Ｓ−アデノシルメチオニン高含有菌体 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS58146274A JPS58146274A (ja) | 1983-08-31 |
| JPH0417627B2 true JPH0417627B2 (ja) | 1992-03-26 |
Family
ID=12261069
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2889382A Granted JPS58146274A (ja) | 1982-02-25 | 1982-02-26 | Ｓ−アデノシルメチオニン高含有菌体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS58146274A (ja) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH01174386A (ja) * | 1987-12-28 | 1989-07-10 | Kanegafuchi Chem Ind Co Ltd | Ｓ−アデノシル−ｌ−メチオニンの蓄積を高める遺伝子およびその用途 |
Family Cites Families (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5217118A (en) * | 1975-07-30 | 1977-02-08 | Hitachi Ltd | Fuel supply device of internal combustion engine |
| JPS548794A (en) * | 1977-06-17 | 1979-01-23 | Yamasa Shoyu Co Ltd | Preparation of s-adenosyl-l-methionine |
-
1982
- 1982-02-26 JP JP2889382A patent/JPS58146274A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS58146274A (ja) | 1983-08-31 |
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