JPH04235197A - 骨誘導活性物質の精製方法 - Google Patents
骨誘導活性物質の精製方法Info
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- JPH04235197A JPH04235197A JP3000426A JP42691A JPH04235197A JP H04235197 A JPH04235197 A JP H04235197A JP 3000426 A JP3000426 A JP 3000426A JP 42691 A JP42691 A JP 42691A JP H04235197 A JPH04235197 A JP H04235197A
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Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【0001】
【産業上の利用分野】この発明は、骨誘導活性物質(以
下、BMPとも称する)の精製方法に関し、より具体的
にはBMPが存在する試料から特定のアフィニティーク
ロマトグラフィーを用いることにより効率よくそのBM
Pを精製する方法に関する。BMPは骨折の治癒促進や
歯科領域への臨床応用が期待される生理活性タンパク質
である。
下、BMPとも称する)の精製方法に関し、より具体的
にはBMPが存在する試料から特定のアフィニティーク
ロマトグラフィーを用いることにより効率よくそのBM
Pを精製する方法に関する。BMPは骨折の治癒促進や
歯科領域への臨床応用が期待される生理活性タンパク質
である。
【0002】
【従来の技術】骨誘導活性物質は、主として骨基質中に
存在し、皮下または筋肉内に移植すると異所性に軟骨と
骨を誘導する物質と定義される「骨誘導因子」として研
究されてきた。この物質は、古くはウリスト(Uris
t)の Science, 150, 893〜899
ページ(1965)に記載されるようにウシの正常骨
を塩酸で脱灰した骨基質を動物の筋肉内に移植すると、
そこに軟骨内骨化が起こるとの知見より注目を集めてき
た物質である。近年では、かかる活性を有するリコンビ
ナント体も細胞培養によって得られ(例えば、Wang
ら、Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 87,2220〜2224ページ, 199
0) 、また天然に見い出される活性物質も数種の類縁
体の存在が確認されている。
存在し、皮下または筋肉内に移植すると異所性に軟骨と
骨を誘導する物質と定義される「骨誘導因子」として研
究されてきた。この物質は、古くはウリスト(Uris
t)の Science, 150, 893〜899
ページ(1965)に記載されるようにウシの正常骨
を塩酸で脱灰した骨基質を動物の筋肉内に移植すると、
そこに軟骨内骨化が起こるとの知見より注目を集めてき
た物質である。近年では、かかる活性を有するリコンビ
ナント体も細胞培養によって得られ(例えば、Wang
ら、Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, 87,2220〜2224ページ, 199
0) 、また天然に見い出される活性物質も数種の類縁
体の存在が確認されている。
【0003】これらは、対応する組織中に極めて少量存
在するにすぎず、さらにその活性の検定に非常に時間を
要することにも起因し精製が困難であった。米国特許第
4,294,753 号および同4,455,256
号明細書は、脱灰した骨組織からBMPを可溶化する効
率のよい方法を提案し、さらに精製する手段としてセフ
ァロース6Bクロマトグラフィー、DEAEイオン交換
クロマトグラフィーおよび等電点電気泳動の使用を公表
するが必ずしも満足できるものでない。また、前記のよ
うに可溶化抽出した試料から活性成分を精製する手段と
しては、その他、分別沈澱、ゲル濾過、ハイドロキシア
パタイトを用いるクロマトグラフィー、高性能液体クロ
マトグラフィーなどが使用されている(例えば、特開昭
62−111933号公報参照)。しかしながら、使用
に耐える純度の標品まで精製するには、少なくとも5な
いし6段階のクロマト処理工程を要し、さらに、比較的
時間のかかるゲル濾過工程を含むので精製の迅速化が図
れない。
在するにすぎず、さらにその活性の検定に非常に時間を
要することにも起因し精製が困難であった。米国特許第
4,294,753 号および同4,455,256
号明細書は、脱灰した骨組織からBMPを可溶化する効
率のよい方法を提案し、さらに精製する手段としてセフ
ァロース6Bクロマトグラフィー、DEAEイオン交換
クロマトグラフィーおよび等電点電気泳動の使用を公表
するが必ずしも満足できるものでない。また、前記のよ
うに可溶化抽出した試料から活性成分を精製する手段と
しては、その他、分別沈澱、ゲル濾過、ハイドロキシア
パタイトを用いるクロマトグラフィー、高性能液体クロ
マトグラフィーなどが使用されている(例えば、特開昭
62−111933号公報参照)。しかしながら、使用
に耐える純度の標品まで精製するには、少なくとも5な
いし6段階のクロマト処理工程を要し、さらに、比較的
時間のかかるゲル濾過工程を含むので精製の迅速化が図
れない。
【0004】他方、ウシの骨基質中の活性成分を単一成
分まで精製した比較的効率のよい方法としては、久保木
らにより第63回日本生化学大会(平成2年9月13日
)で報告された、グアニジン塩のような可溶化画分の抽
出試料を、順次(i)ハイドロキシアパタイトカラムク
ロマトグラフィー、(ii)ヘパリン−セファロースC
L−6Bカラムクロマトグラフィー、(iii)セファ
クリル S−300HR カラムクロマトグラフィー(
ゲル濾過)、(iv) CM−52カラムクロマトグラ
フィー(カチオン交換)、(v)ハイドロキシアパタイ
トカラムクロマトグラフィー、(vi) YMCジオー
ル−300HPLC および(vii) 逆相HPLC
で処理する方法が知られている。また、同氏らは平成2
年11月29日、仙台市で開催された第38回国際歯科
研究学会日本部会において、コンカナバリンA(Con
A) セファロースアフィニティークロマトグラフィ
ーを用いて上記精製方法の工程を短縮できる改良法を公
表したが、その方法についてそれほど詳細には発表され
なかったものの長い処理時間を要するゲル濾過処理を必
要とすることは疑いない。
分まで精製した比較的効率のよい方法としては、久保木
らにより第63回日本生化学大会(平成2年9月13日
)で報告された、グアニジン塩のような可溶化画分の抽
出試料を、順次(i)ハイドロキシアパタイトカラムク
ロマトグラフィー、(ii)ヘパリン−セファロースC
L−6Bカラムクロマトグラフィー、(iii)セファ
クリル S−300HR カラムクロマトグラフィー(
ゲル濾過)、(iv) CM−52カラムクロマトグラ
フィー(カチオン交換)、(v)ハイドロキシアパタイ
トカラムクロマトグラフィー、(vi) YMCジオー
ル−300HPLC および(vii) 逆相HPLC
で処理する方法が知られている。また、同氏らは平成2
年11月29日、仙台市で開催された第38回国際歯科
研究学会日本部会において、コンカナバリンA(Con
A) セファロースアフィニティークロマトグラフィ
ーを用いて上記精製方法の工程を短縮できる改良法を公
表したが、その方法についてそれほど詳細には発表され
なかったものの長い処理時間を要するゲル濾過処理を必
要とすることは疑いない。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】上述してきた従来法は
、少量の標品調製には適するものもあるが、迅速に、か
つ多量にBMP含有試料を処理するにはさらに改良され
た方法の提供が望まれるであろう。従って、本発明の目
的は、カラム操作性に優れ、迅速なBMPの精製を行う
ことができる改良された方法を提供することにある。
、少量の標品調製には適するものもあるが、迅速に、か
つ多量にBMP含有試料を処理するにはさらに改良され
た方法の提供が望まれるであろう。従って、本発明の目
的は、カラム操作性に優れ、迅速なBMPの精製を行う
ことができる改良された方法を提供することにある。
【0006】
【課題を解決するための手段】本発明者らも、上記久保
木らとは独立に、Con A−セファロースを用いるB
MPの精製方法を検討してきたが、市販のCon A−
セファロースカラムをそのまま用いるとその操作中にセ
ファロースに固定化されたCon Aが溶離してくる傾
向があることを見い出した。そこで、Con A−担体
へのBMPの吸着特性に悪影響を及ぼすことなく、その
操作安定性を向上すべく研究したところ、K.P.Ca
mpbellらがJ.Biol. Chem., 25
6, 4626〜4632ページに特定の糖タンパク質
の精製に用いるようにアガロース上に固定したタンパク
質(酵素)の脱離を防止する方法(R. Kowalら
、Analt. Biochem., 102, 72
〜76ページ、1980) に準じ一定の架橋剤でCo
n A−担体を予備処理すると、BMPの吸着特性に殆
ど悪影響を及ぼすことなく、そして操作中に固定化Co
n Aの溶離を伴うことなくBMPの精製が可能である
ことを見い出し本発明を完成した。
木らとは独立に、Con A−セファロースを用いるB
MPの精製方法を検討してきたが、市販のCon A−
セファロースカラムをそのまま用いるとその操作中にセ
ファロースに固定化されたCon Aが溶離してくる傾
向があることを見い出した。そこで、Con A−担体
へのBMPの吸着特性に悪影響を及ぼすことなく、その
操作安定性を向上すべく研究したところ、K.P.Ca
mpbellらがJ.Biol. Chem., 25
6, 4626〜4632ページに特定の糖タンパク質
の精製に用いるようにアガロース上に固定したタンパク
質(酵素)の脱離を防止する方法(R. Kowalら
、Analt. Biochem., 102, 72
〜76ページ、1980) に準じ一定の架橋剤でCo
n A−担体を予備処理すると、BMPの吸着特性に殆
ど悪影響を及ぼすことなく、そして操作中に固定化Co
n Aの溶離を伴うことなくBMPの精製が可能である
ことを見い出し本発明を完成した。
【0007】従って、本発明によれば、骨誘導活性物質
(BMP)が存在する試料を架橋剤で予備調製した固定
化コンカナバリンA水不溶性吸着体で処理することを特
徴とする骨誘導活性物質の精製方法が提供される。
(BMP)が存在する試料を架橋剤で予備調製した固定
化コンカナバリンA水不溶性吸着体で処理することを特
徴とする骨誘導活性物質の精製方法が提供される。
【0008】以下、本発明を具体的に説明する。本明細
書にいう「骨誘導活性物質」は、先に定義したごとく、
動物の骨基質中に存在し、皮下または筋肉内に移植する
と異所性に軟骨と骨を誘導する活性を示す物質であって
、骨誘導因子骨形成タンパク質または骨形成活性を有す
るタンパク質とも称されている。かかる物質が存在する
試料としては、それらが本発明の固定化コンカナバリン
A(Con A)水不溶性吸着体(もしくは担体)で直
接処理できるものであればその活性濃度を問わないが、
好ましくは前述の米国特許第4,455,256号明細
書に記載されるような、脱灰処理が施され、さらにBM
Pが可溶化処理された水性調製物が挙げられる。より具
体的には、供与体の骨を微粉砕し、その骨粉を塩酸等に
より脱灰処理した試料から調製される。本発明のCon
A水不溶性吸着体による処理をより効果的にするには
、それ自体公知のタンパク質の精製方法により前記試料
の目的とする活性をさらに高めることが望ましい。特に
、この精製工程には、ゲル濾過工程を含めることなくヘ
パリン−セファロースクロマトグラフィーおよびハイド
ロキシアパタイトクロマトグラフィーで処理した溶出液
を用いるのが好ましい。
書にいう「骨誘導活性物質」は、先に定義したごとく、
動物の骨基質中に存在し、皮下または筋肉内に移植する
と異所性に軟骨と骨を誘導する活性を示す物質であって
、骨誘導因子骨形成タンパク質または骨形成活性を有す
るタンパク質とも称されている。かかる物質が存在する
試料としては、それらが本発明の固定化コンカナバリン
A(Con A)水不溶性吸着体(もしくは担体)で直
接処理できるものであればその活性濃度を問わないが、
好ましくは前述の米国特許第4,455,256号明細
書に記載されるような、脱灰処理が施され、さらにBM
Pが可溶化処理された水性調製物が挙げられる。より具
体的には、供与体の骨を微粉砕し、その骨粉を塩酸等に
より脱灰処理した試料から調製される。本発明のCon
A水不溶性吸着体による処理をより効果的にするには
、それ自体公知のタンパク質の精製方法により前記試料
の目的とする活性をさらに高めることが望ましい。特に
、この精製工程には、ゲル濾過工程を含めることなくヘ
パリン−セファロースクロマトグラフィーおよびハイド
ロキシアパタイトクロマトグラフィーで処理した溶出液
を用いるのが好ましい。
【0009】固定化コンカナバリンA水不溶性吸着体と
は、通常のカラムクロマトグラフィーの担体として用い
られる担体、特に親水性の水不溶性多糖類に、当該技術
分野で既知の、例えばCNBr法等によりコンカナバリ
ンAを固定化したものである。代表的なものとしては、
ファルマシア社からCon A−Sepharose
として市販されているものが挙げられる。
は、通常のカラムクロマトグラフィーの担体として用い
られる担体、特に親水性の水不溶性多糖類に、当該技術
分野で既知の、例えばCNBr法等によりコンカナバリ
ンAを固定化したものである。代表的なものとしては、
ファルマシア社からCon A−Sepharose
として市販されているものが挙げられる。
【0010】これらを予備調製するのに用いる架橋剤と
しては、通常タンパク質の架橋に用いられている架橋剤
であって、タンパク質のペンダントアミノ基、水酸基ま
たはカルボキシル基と容易に反応する官能基を2個以上
担持する多官能性化合物が挙げられ、特にアミノ基と容
易に、反応する官能基を有するグルタールアルデヒドお
よびグリシジルエーテルなどが好ましい。これらの予備
調製、すなわち架橋化は当該技術分野で既知の方法に準
じて行うことができるが、かかる吸着体のカラム操作安
定性を確保し、かつBMPの吸着特性に悪影響を及ぼさ
ない条件で行わねばならない。例えば、架橋剤としてグ
ルタールアルデヒドを用いてCon A−Sephar
ose を架橋化する条件は、ほぼ前述のK.P.Ca
mpbellらの条件に従うことができる。
しては、通常タンパク質の架橋に用いられている架橋剤
であって、タンパク質のペンダントアミノ基、水酸基ま
たはカルボキシル基と容易に反応する官能基を2個以上
担持する多官能性化合物が挙げられ、特にアミノ基と容
易に、反応する官能基を有するグルタールアルデヒドお
よびグリシジルエーテルなどが好ましい。これらの予備
調製、すなわち架橋化は当該技術分野で既知の方法に準
じて行うことができるが、かかる吸着体のカラム操作安
定性を確保し、かつBMPの吸着特性に悪影響を及ぼさ
ない条件で行わねばならない。例えば、架橋剤としてグ
ルタールアルデヒドを用いてCon A−Sephar
ose を架橋化する条件は、ほぼ前述のK.P.Ca
mpbellらの条件に従うことができる。
【0011】このような吸着体でBMPを含有する試料
を処理する工程は、例えば吸着体を弱アルカリ性、好ま
しくは約pH8の適当な緩衝液で平衡化し、次いでデオ
キシコール酸塩水溶液で平衡化した後、同様な緩衝液で
置換した前記試料を前記吸着充填カラムにかけ、これを
前記水溶液で洗浄し、次いで通常、Con A−Sep
harose への吸着物を溶離するのに用いる溶離液
、例えば、メチル−α−D−マンノピラノシド液等で溶
出すればよい。場合により、このようなクロマトグラフ
ィー処理を繰り返してもよく、また、透析、限外濾過な
どの濃縮工程を介して別のアフィニティークロマトグラ
フィー処理を行ってもよい。なお、本発明のCon A
−Sepharose 処理以外の操作はそれ自体公知
の方法によって実施することができる。
を処理する工程は、例えば吸着体を弱アルカリ性、好ま
しくは約pH8の適当な緩衝液で平衡化し、次いでデオ
キシコール酸塩水溶液で平衡化した後、同様な緩衝液で
置換した前記試料を前記吸着充填カラムにかけ、これを
前記水溶液で洗浄し、次いで通常、Con A−Sep
harose への吸着物を溶離するのに用いる溶離液
、例えば、メチル−α−D−マンノピラノシド液等で溶
出すればよい。場合により、このようなクロマトグラフ
ィー処理を繰り返してもよく、また、透析、限外濾過な
どの濃縮工程を介して別のアフィニティークロマトグラ
フィー処理を行ってもよい。なお、本発明のCon A
−Sepharose 処理以外の操作はそれ自体公知
の方法によって実施することができる。
【0012】こうして得られる精製BMP液は、最終の
処理工程に応じて、例えば透析、濃縮工程を行い、凍結
乾燥標品または適当な安定剤、防腐剤を加えた濃厚液状
態で保存することができる。かかる標品は、具体的には
後述するインビボ(in vivo)試験によりその活
性を評価することができ、そしてその標品は 100μ
gのオーダーの投与により骨形成が認められる程精製さ
れていた。
処理工程に応じて、例えば透析、濃縮工程を行い、凍結
乾燥標品または適当な安定剤、防腐剤を加えた濃厚液状
態で保存することができる。かかる標品は、具体的には
後述するインビボ(in vivo)試験によりその活
性を評価することができ、そしてその標品は 100μ
gのオーダーの投与により骨形成が認められる程精製さ
れていた。
【0013】なお、各精製工程の最適の組み合わせは、
前記インビボ試験によるか、セイェヂン(Seyedi
n)らの、 J. Cell Biol., 97,
1950〜1953ページ、1983、に記載されるよ
うなインビトロ(in vitro) 試験によりBM
P活性を測定しながら検討を加えることによって容易に
決定することができる。また簡便な方法としては、処理
液中のアルカリホスファターゼ活性をポーゼン(Pos
en)らのMetabolic Bone Disea
se, Vol.1.(Avioli L.V. ら編
、NY, Academic Press, 141
ページ、1977)に記載のベッシー−ローリー(Be
ssy−Lowry)法により追跡してもよい。
前記インビボ試験によるか、セイェヂン(Seyedi
n)らの、 J. Cell Biol., 97,
1950〜1953ページ、1983、に記載されるよ
うなインビトロ(in vitro) 試験によりBM
P活性を測定しながら検討を加えることによって容易に
決定することができる。また簡便な方法としては、処理
液中のアルカリホスファターゼ活性をポーゼン(Pos
en)らのMetabolic Bone Disea
se, Vol.1.(Avioli L.V. ら編
、NY, Academic Press, 141
ページ、1977)に記載のベッシー−ローリー(Be
ssy−Lowry)法により追跡してもよい。
【0014】
【実施例】以下、実施例により本発明をさらに具体的に
説明するが、本発明はこれらの説明に限定されるもので
ない。 例1(参考):試料の調整 (1)1才−2才令の子牛の大腿骨より骨端部を切断し
骨幹部のみとし、次いで骨膜と骨髄を可及的速やかに除
去したのち、冷凍下で1mm〜2mmの大きさに粉砕し
骨粉を調整した。この骨粉を、0.9% NaCl 溶
液にて16時間洗浄し、蒸留水にて洗浄後 100%エ
タノールにて2時間脱水、次いでクロロホルム/メタノ
ール(1/1)で6時間脱脂を行い、再度脱脂のみ、1
2時間行った。この骨粉を数回蒸留水にて洗浄後、0.
5N HCL で72時間徹底的に脱灰を行ったものを
室温で乾燥を行い試料を調整した。
説明するが、本発明はこれらの説明に限定されるもので
ない。 例1(参考):試料の調整 (1)1才−2才令の子牛の大腿骨より骨端部を切断し
骨幹部のみとし、次いで骨膜と骨髄を可及的速やかに除
去したのち、冷凍下で1mm〜2mmの大きさに粉砕し
骨粉を調整した。この骨粉を、0.9% NaCl 溶
液にて16時間洗浄し、蒸留水にて洗浄後 100%エ
タノールにて2時間脱水、次いでクロロホルム/メタノ
ール(1/1)で6時間脱脂を行い、再度脱脂のみ、1
2時間行った。この骨粉を数回蒸留水にて洗浄後、0.
5N HCL で72時間徹底的に脱灰を行ったものを
室温で乾燥を行い試料を調整した。
【0015】(2)脱灰骨基質より4種のプロテアーゼ
阻害剤(100mM 6−アミノ−カプロン酸、5mM
塩酸ベンザミジン、0.5mM フェニルメチル
スルホニルフルオライド、5mM N−エチルマレイ
ミド)を含む10倍容(vol/wt) の4M 塩
酸グアニジン/50mM Tris −HCL(pH7
.4)にて24時間2回抽出を行い、ガーゼにて濾過後
、濾液を12,000rpm(17,000×g)で2
0分間遠心し抽出残査を除去した。上清を0.45μm
ミリポアフィルターにて濾過し、これをG−Ext と
した。このG−Ext をセルロースチューブを用い蒸
留水に対して透析を行った。透析後、30,000rp
m(70,000×g)で30分間超遠心を行い、水不
溶性画分を分離し凍結乾燥した。
阻害剤(100mM 6−アミノ−カプロン酸、5mM
塩酸ベンザミジン、0.5mM フェニルメチル
スルホニルフルオライド、5mM N−エチルマレイ
ミド)を含む10倍容(vol/wt) の4M 塩
酸グアニジン/50mM Tris −HCL(pH7
.4)にて24時間2回抽出を行い、ガーゼにて濾過後
、濾液を12,000rpm(17,000×g)で2
0分間遠心し抽出残査を除去した。上清を0.45μm
ミリポアフィルターにて濾過し、これをG−Ext と
した。このG−Ext をセルロースチューブを用い蒸
留水に対して透析を行った。透析後、30,000rp
m(70,000×g)で30分間超遠心を行い、水不
溶性画分を分離し凍結乾燥した。
【0016】例2:アフィニティークロマトグラフィー
(1)ヘパリン−セファロースクロマトグラフィー2.
5gの凍結乾燥したG−Ext を、0.1M NaC
lを含む6M尿素/50mM Tris −HCL(p
H7.0) (緩衝液A)に再溶解し、ヘパリン−セフ
ァロース(Heparin−Sepharose)(P
harmacia) が装填されたカラム(2.6×4
0cm)にアプライした。カラムは、5倍容の0.1M
NaCl を含む緩衝液Aで洗浄し、次いで0.15
M NaClと0.5M NaCl をそれぞれ含む緩
衝液Aで溶出した。0.5M NaCl 画分に活性が
みられ、これらを次の段階の精製に用いた。
(1)ヘパリン−セファロースクロマトグラフィー2.
5gの凍結乾燥したG−Ext を、0.1M NaC
lを含む6M尿素/50mM Tris −HCL(p
H7.0) (緩衝液A)に再溶解し、ヘパリン−セフ
ァロース(Heparin−Sepharose)(P
harmacia) が装填されたカラム(2.6×4
0cm)にアプライした。カラムは、5倍容の0.1M
NaCl を含む緩衝液Aで洗浄し、次いで0.15
M NaClと0.5M NaCl をそれぞれ含む緩
衝液Aで溶出した。0.5M NaCl 画分に活性が
みられ、これらを次の段階の精製に用いた。
【0017】(2)ハイドロキシアパタイトクロマトグ
ラフィー 上述したように溶出した 150mlのタンパクを0.
5M NaCl と10mM Na2HP04を含む緩
衝液Aで平衡下したハイドロキシアパタイト・ウルトロ
ゲル(hydroxyapatite−Ultroge
l)(LKB, Instrumets) カラム(2
.2×25cm) に直接アプライした。このカラムを
、5倍容の0.5M NaCl と10mM Na2H
PO4を含む緩衝液Aで洗浄し、次いで100mM,
200mM, 500mM Na2HPO4 を含む緩
衝液Aで段階的に溶出した。この内、100mM Na
2HPO4 を含む緩衝液Aで溶出したタンパク質画分
に活性がみられた。
ラフィー 上述したように溶出した 150mlのタンパクを0.
5M NaCl と10mM Na2HP04を含む緩
衝液Aで平衡下したハイドロキシアパタイト・ウルトロ
ゲル(hydroxyapatite−Ultroge
l)(LKB, Instrumets) カラム(2
.2×25cm) に直接アプライした。このカラムを
、5倍容の0.5M NaCl と10mM Na2H
PO4を含む緩衝液Aで洗浄し、次いで100mM,
200mM, 500mM Na2HPO4 を含む緩
衝液Aで段階的に溶出した。この内、100mM Na
2HPO4 を含む緩衝液Aで溶出したタンパク質画分
に活性がみられた。
【0018】(3)予備調製コンカナバリンA−セファ
ロース4Bクロマトグラフィー 上述のK. P. Cambell らの、 J. B
iol. Chem., 256, 4626ページ、
(1981)に記載するように、Con A−Seph
arose 4B (Pharmacia)を、0.2
5M α−メチル−D−マンノースの存在下、0.0
3%グルタールアルデヒドで処理した。この予備調製C
on A−Sepharose 4Bを、樹脂の5倍容
の50mM Tris 緩衝液(pH8.0)で平衡化
し、次いで5倍容の1%デオキシコール酸ナトリウム液
で平衡化した。
ロース4Bクロマトグラフィー 上述のK. P. Cambell らの、 J. B
iol. Chem., 256, 4626ページ、
(1981)に記載するように、Con A−Seph
arose 4B (Pharmacia)を、0.2
5M α−メチル−D−マンノースの存在下、0.0
3%グルタールアルデヒドで処理した。この予備調製C
on A−Sepharose 4Bを、樹脂の5倍容
の50mM Tris 緩衝液(pH8.0)で平衡化
し、次いで5倍容の1%デオキシコール酸ナトリウム液
で平衡化した。
【0019】上述の画分を、1%デオキシコール酸ナト
リウムに対して透析し、緩衝液で置換した後に前記予備
調製Con A−Sepharose カラムにかけた
。カラムを5倍容の5%デオキシコール酸ナトリウム液
で洗浄し、次いで0.5Mメチル−α−D−マンノピラ
ノシド液で溶出した。
リウムに対して透析し、緩衝液で置換した後に前記予備
調製Con A−Sepharose カラムにかけた
。カラムを5倍容の5%デオキシコール酸ナトリウム液
で洗浄し、次いで0.5Mメチル−α−D−マンノピラ
ノシド液で溶出した。
【0020】(4)ヘパリン−セファロースクロマトグ
ラフィー 上述の画分をYM−10メンブランを用いる限外濾過装
置を用いて濃縮した。濃縮した溶液は、再び緩衝液Aで
希釈し、ヘパリン−セファロース(Heparin−S
epharoseカラム)(1.6 ×15cm) に
アプライし、5倍容の0.1M NaCl を含む緩衝
液Aで洗浄し、次いで0.5M NaCl を含む緩衝
液Aで溶出した。0.5M NaCl 画分を蒸留水で
数回透析した。析出した沈澱物がBMPであった。
ラフィー 上述の画分をYM−10メンブランを用いる限外濾過装
置を用いて濃縮した。濃縮した溶液は、再び緩衝液Aで
希釈し、ヘパリン−セファロース(Heparin−S
epharoseカラム)(1.6 ×15cm) に
アプライし、5倍容の0.1M NaCl を含む緩衝
液Aで洗浄し、次いで0.5M NaCl を含む緩衝
液Aで溶出した。0.5M NaCl 画分を蒸留水で
数回透析した。析出した沈澱物がBMPであった。
【0021】例3:骨形成活性の評価試験(1)本発明
により得られたBMP1mgを、タイプ1コラーゲン溶
液1ml(3mg/ml,pH3.0 :新田ゼラチン
(株))と混合し、エタノール沈澱させ、10,000
rpm で5分間遠心後37℃の恒温槽で乾燥し、次い
で凍結乾燥してこれをさらにNo. 5 のゲラチンカ
プセルに入れて移植ペレットを調製した。このペレット
をエーテル麻酔下にて、4週令の雄S. D.系ラット
の大腿部筋嚢に移植した。4週間後、軟X−ray お
よび組織学的検査で骨形成が認められた。
により得られたBMP1mgを、タイプ1コラーゲン溶
液1ml(3mg/ml,pH3.0 :新田ゼラチン
(株))と混合し、エタノール沈澱させ、10,000
rpm で5分間遠心後37℃の恒温槽で乾燥し、次い
で凍結乾燥してこれをさらにNo. 5 のゲラチンカ
プセルに入れて移植ペレットを調製した。このペレット
をエーテル麻酔下にて、4週令の雄S. D.系ラット
の大腿部筋嚢に移植した。4週間後、軟X−ray お
よび組織学的検査で骨形成が認められた。
【0022】(2)本発明により得られたBMPを1m
g/mlとなるように6M尿素/0.01M燐酸緩衝液
(pH7.2)に再溶解し、 BMP:HAP(Bon
e Ceram−P:住友セメント(株))=1:20
(重量比)の割合にて透析チューブ中で24時間浸析し
、さらにこのチューブを蒸留水にて透析した後、HAP
−BMP溶液にBMP:コラーゲン=1:1(溶液比)
となるようコラーゲンを加えた。この3種混合物をエタ
ノール沈澱させ、10,000rpm で5分間遠心後
37℃の恒温槽で乾燥し、次いで凍結乾燥してNo.
5 のゲラチンカプセルに入れて移植ペレットを調製し
た。ただし、ここで用いられたHAPは、多孔質で顆粒
状のものであり、顆粒サイズの違いによる骨誘導能に与
える影響を検索する目的で0.1−0.3mm、0.6
−0.9mm、0.9−1.5mmの3種類を利用した
。このペレットをエーテル麻酔下にて4週令の雄S.
D. 系ラットの大腿部筋嚢に移植した。4週間後、軟
X−ray および組織学的検査で骨形成が認められた
が、0.6−0.9mmのHAP複合体の骨形成量が他
に比べて大きかった。
g/mlとなるように6M尿素/0.01M燐酸緩衝液
(pH7.2)に再溶解し、 BMP:HAP(Bon
e Ceram−P:住友セメント(株))=1:20
(重量比)の割合にて透析チューブ中で24時間浸析し
、さらにこのチューブを蒸留水にて透析した後、HAP
−BMP溶液にBMP:コラーゲン=1:1(溶液比)
となるようコラーゲンを加えた。この3種混合物をエタ
ノール沈澱させ、10,000rpm で5分間遠心後
37℃の恒温槽で乾燥し、次いで凍結乾燥してNo.
5 のゲラチンカプセルに入れて移植ペレットを調製し
た。ただし、ここで用いられたHAPは、多孔質で顆粒
状のものであり、顆粒サイズの違いによる骨誘導能に与
える影響を検索する目的で0.1−0.3mm、0.6
−0.9mm、0.9−1.5mmの3種類を利用した
。このペレットをエーテル麻酔下にて4週令の雄S.
D. 系ラットの大腿部筋嚢に移植した。4週間後、軟
X−ray および組織学的検査で骨形成が認められた
が、0.6−0.9mmのHAP複合体の骨形成量が他
に比べて大きかった。
【0023】
【発明の効果】本発明によれば、架橋剤で予備調製した
固定化コンカナバリンA水不溶性吸着体を用いる骨誘導
活性物質の精製方法が提供される。例えば、市販のCo
n A−Sepharose 4Bをアフィニティーカ
ラムとして用いる従来法に比べ、カラム操作の安定性が
向上し、さらにゲル濾過法を使用することなく所期の目
的が達成されるので、骨誘導活性物質を有する多量の試
料の処理が可能になった。
固定化コンカナバリンA水不溶性吸着体を用いる骨誘導
活性物質の精製方法が提供される。例えば、市販のCo
n A−Sepharose 4Bをアフィニティーカ
ラムとして用いる従来法に比べ、カラム操作の安定性が
向上し、さらにゲル濾過法を使用することなく所期の目
的が達成されるので、骨誘導活性物質を有する多量の試
料の処理が可能になった。
Claims (3)
- 【請求項1】 骨誘導活性物質が存在する試料を架橋
剤で予備調製した固定化コンカナバリンA水不溶性吸着
体で処理することを特徴とする骨誘導活性物質の精製方
法。 - 【請求項2】 前記架橋剤がグルタルアルデヒドであ
る請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 前記試料が、動物の硬組織を(1)脱
灰処理する工程、(2)ヘパリン−セファロースクロマ
トグラフィーで処理する工程、および(3)ハイドロキ
シアパタイトクロマトグラフィーで処理する工程を含ん
でなる方法によって調製した水性調製物である請求項1
または2記載の方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3000426A JPH04235197A (ja) | 1991-01-08 | 1991-01-08 | 骨誘導活性物質の精製方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3000426A JPH04235197A (ja) | 1991-01-08 | 1991-01-08 | 骨誘導活性物質の精製方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04235197A true JPH04235197A (ja) | 1992-08-24 |
Family
ID=11473485
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3000426A Withdrawn JPH04235197A (ja) | 1991-01-08 | 1991-01-08 | 骨誘導活性物質の精製方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH04235197A (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2008540328A (ja) * | 2004-11-29 | 2008-11-20 | ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア | 脱灰骨基質(demineralizedbonematrix)の活性化抽出 |
| US8415302B2 (en) | 2004-01-28 | 2013-04-09 | The Regents Of The University Of California | Surgical applications for BMP binding protein |
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-
1991
- 1991-01-08 JP JP3000426A patent/JPH04235197A/ja not_active Withdrawn
Cited By (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US8415302B2 (en) | 2004-01-28 | 2013-04-09 | The Regents Of The University Of California | Surgical applications for BMP binding protein |
| US8759296B2 (en) | 2004-01-28 | 2014-06-24 | The Regents Of The University Of California | Bone morphogenic protein binding peptide |
| US8975231B2 (en) | 2004-01-28 | 2015-03-10 | The Regents Of The University Of California | Bone morphogenic protein binding peptide |
| US9050300B2 (en) | 2004-01-28 | 2015-06-09 | The Regents Of The University Of California | Surgical applications for BMP binding protein |
| US9333237B2 (en) | 2004-01-28 | 2016-05-10 | The United States of America National Institutes of Health (NIH), U.S. Dept of Health and Human Services (DHHS) | Bone morphogenic protein binding peptide |
| US9610320B2 (en) | 2004-01-28 | 2017-04-04 | Regents Of The University Of California | Surgical applications for BMP binding protein |
| US9855368B2 (en) | 2004-01-28 | 2018-01-02 | The Regents Of The University Of California | Bone morphogenic protein binding peptide |
| JP2008540328A (ja) * | 2004-11-29 | 2008-11-20 | ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア | 脱灰骨基質(demineralizedbonematrix)の活性化抽出 |
| US8753660B2 (en) | 2004-11-29 | 2014-06-17 | The Regents Of The University Of California | Activating extraction of demineralized bone matrix |
| US9072709B2 (en) | 2009-06-23 | 2015-07-07 | The Regents Of The University Of California | Enhancement of bone morphogenic protein (BMP) retention with BMP binding peptide (BBP) |
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