JPH04265859A - 酵素免疫測定法 - Google Patents
酵素免疫測定法Info
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- JPH04265859A JPH04265859A JP3027588A JP2758891A JPH04265859A JP H04265859 A JPH04265859 A JP H04265859A JP 3027588 A JP3027588 A JP 3027588A JP 2758891 A JP2758891 A JP 2758891A JP H04265859 A JPH04265859 A JP H04265859A
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- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、アデノシン三リン酸(
以下「ATP」という)生成酵素を標識酵素として用い
る酵素免疫測定法に関する。
以下「ATP」という)生成酵素を標識酵素として用い
る酵素免疫測定法に関する。
【0002】
【従来の技術】生体成分の微量分析法として化学発光や
生物発光を用いる分析法が行われており、特に生物の酵
素系を利用する発光反応の量子収率は高く極めて高感度
な分析法として種々応用されている。一方、発光反応の
酵素免疫測定法(以下「EIA」という)への応用は化
学発光に偏っているが、生物発光に関してもEIAにつ
いていくつかの試みがなされて来ている。例えば、還元
型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドなどの発光反
応に関与する補酵素の生成酵素を標識し、生物発光の系
と接続することにより間接的にEIAに導入する方法な
どである。この方法は標識酵素の増幅作用が加わり、極
めて高感度なEIAとして有用である。例えば、グルコ
ース脱水素酵素を標識体とする17−α−ヒドロキシプ
ロゲステロンのEIAでは2.5 ×10−12gの検
出が可能という報告がある(分析化学vol.34(1
985) 177〜181)。
生物発光を用いる分析法が行われており、特に生物の酵
素系を利用する発光反応の量子収率は高く極めて高感度
な分析法として種々応用されている。一方、発光反応の
酵素免疫測定法(以下「EIA」という)への応用は化
学発光に偏っているが、生物発光に関してもEIAにつ
いていくつかの試みがなされて来ている。例えば、還元
型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドなどの発光反
応に関与する補酵素の生成酵素を標識し、生物発光の系
と接続することにより間接的にEIAに導入する方法な
どである。この方法は標識酵素の増幅作用が加わり、極
めて高感度なEIAとして有用である。例えば、グルコ
ース脱水素酵素を標識体とする17−α−ヒドロキシプ
ロゲステロンのEIAでは2.5 ×10−12gの検
出が可能という報告がある(分析化学vol.34(1
985) 177〜181)。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明者等は、ATP
を高感度に測定する手段としてホタルルシフェラーゼを
用いる生物発光に着目し、これをEIAに応用すべく種
々検討した結果、本発明を完成した。
を高感度に測定する手段としてホタルルシフェラーゼを
用いる生物発光に着目し、これをEIAに応用すべく種
々検討した結果、本発明を完成した。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明のEIAは、標識
酵素としてATP生成酵素を用い、生成するATPをホ
タルルシフェラーゼを用いて生物発光させ、発光量を測
定することを特徴とするものである。以下、本発明を具
体的に説明する。本発明は、標識酵素としてATP生成
酵素を用いるところに特徴があり、酵素免疫反応の手法
自体は、既知の方法を適用できる。例えば、測定対象物
質(抗原)を酵素で標識し、対応する抗体との反応を検
体中の抗原と競合させ、次に予め固相化された先の抗体
に対する第2抗体と反応させて固相上の酵素を定量する
方法(競合法)、測定対象とする抗原を、予め固相化さ
れた対応する抗体と反応させ、次いで酵素で標識された
抗原に対応する抗体と反応させて固相上の酵素を定量す
る方法(サンドイッチ法)などが挙げられるが、これら
以外の従来使用されている方法にも適用することができ
る。
酵素としてATP生成酵素を用い、生成するATPをホ
タルルシフェラーゼを用いて生物発光させ、発光量を測
定することを特徴とするものである。以下、本発明を具
体的に説明する。本発明は、標識酵素としてATP生成
酵素を用いるところに特徴があり、酵素免疫反応の手法
自体は、既知の方法を適用できる。例えば、測定対象物
質(抗原)を酵素で標識し、対応する抗体との反応を検
体中の抗原と競合させ、次に予め固相化された先の抗体
に対する第2抗体と反応させて固相上の酵素を定量する
方法(競合法)、測定対象とする抗原を、予め固相化さ
れた対応する抗体と反応させ、次いで酵素で標識された
抗原に対応する抗体と反応させて固相上の酵素を定量す
る方法(サンドイッチ法)などが挙げられるが、これら
以外の従来使用されている方法にも適用することができ
る。
【0005】本発明で標識酵素として用いられるATP
生成酵素は、基質アデノシン二リン酸(以下「ADP」
という)をリン酸化してATPを生成する酵素であれば
如何なるものでもよく、その起源は問わない。そして、
その具体例としては酢酸キナーゼ、クレアチンキナーゼ
等を挙げることができ、また酵素による標識は常法によ
って行われる〔酵素免疫測定法(昭和57年医学書院発
行)等参照〕。次いで、基質としてADPを加え、固相
上のATP生成酵素と反応させてATPを生成させ、こ
れをホタルルシフェラーゼを用いて発光させ、発光量を
測定する。
生成酵素は、基質アデノシン二リン酸(以下「ADP」
という)をリン酸化してATPを生成する酵素であれば
如何なるものでもよく、その起源は問わない。そして、
その具体例としては酢酸キナーゼ、クレアチンキナーゼ
等を挙げることができ、また酵素による標識は常法によ
って行われる〔酵素免疫測定法(昭和57年医学書院発
行)等参照〕。次いで、基質としてADPを加え、固相
上のATP生成酵素と反応させてATPを生成させ、こ
れをホタルルシフェラーゼを用いて発光させ、発光量を
測定する。
【0006】ここで用いられるホタルルシフェラーゼと
しては、ルシフェリン−ルシフェラーゼ系によるATP
測定に用いられるルシフェラーゼであれば如何なるもの
でもよく、例えばゲンジボタル、ヘイケボタル、アメリ
カボタル等由来のルシフェラーゼ、あるいはこれらのル
シフェラーゼを遺伝子組み換え法により製造したもの等
が挙げられる。
しては、ルシフェリン−ルシフェラーゼ系によるATP
測定に用いられるルシフェラーゼであれば如何なるもの
でもよく、例えばゲンジボタル、ヘイケボタル、アメリ
カボタル等由来のルシフェラーゼ、あるいはこれらのル
シフェラーゼを遺伝子組み換え法により製造したもの等
が挙げられる。
【0007】
【発明の効果】本発明は、ホタルルシフェラーゼを用い
る生物発光を利用するEIAを提供するものであり、種
々の測定対象物質を高感度に測定することができる。
る生物発光を利用するEIAを提供するものであり、種
々の測定対象物質を高感度に測定することができる。
【0008】
【実施例】以下に実施例を示し、本発明をより具体的に
説明する。
説明する。
【0009】
【実施例1】酢酸キナーゼ(以下「AK」という)を標
識酵素とした17−α−ヒドロキシプロゲステロン(以
下「17−OHP」という)の競合免疫測定法1.17
−OHP−AK複合体の調製 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ニ)を調製した。 試薬(イ):17−OHP−3CMO溶液17α−ヒド
ロキシプロゲステロン−3−(O−カルボキシメチル)
オキシム(シグマ社製)をジオキサンに0.1 Mとな
るように溶解し、17−OHP−3CMO溶液を調製し
た。 試薬(ロ):N−ヒドロキシサクシニミド溶液N−ヒド
ロキシサクシニミドをジオキサンに0.14Mとなるよ
うに溶解し、N−ヒドロキシサクシニミド溶液を調製し
た。 試薬(ハ):DCC溶液 ジシクロヘキシルカルボジイミドをジオキサンに、0.
14Mとなるように溶解し、DCC溶液を調製した。 試薬(ニ):AK溶液 酢酸キナーゼ(ユニチカ(株)製)を50mMトリス塩
酸緩衝液(pH7.4 )に1ml当たり1.16 m
g となるように溶解し、AK溶液を調製した。 (2)標識反応 試薬(イ)、(ロ)および(ハ)をそれぞれ1ml、0
.5 mlおよび0.5 ml混合し、室温にて3時間
反応させた。不溶物を遠心除去し、試薬(ニ)0.25
ml に添加し、4℃にて一晩反応させた。50mM
トリス塩酸緩衝液(pH7.4 )に対して透析した後
、遠心(2500rpm,10分)上澄をトヨパールH
W−55(東ソー製)を用いたゲル濾過により精製し、
17−OHP−AK複合体を調製した。 2.17−OHPの測定 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ヘ)を調製した。 試薬(イ):抗17−OHP抗血清 17α−ヒドロキシプロゲステロン−3−(O−カルボ
キシメチル)オキシム−BSA(シグマ社製)を抗原と
して常法によりウサギに免疫し調製した。(用時適宜希
釈して使用する。) 試薬(ロ):17−OHP−AK複合体溶液前項1.に
より調製した17−OHP−AK複合体を50mMトリ
ス塩酸緩衝液(pH7.4 )50μlで200 倍に
希釈し、17−OHP−AK複合体溶液を調製した。 試薬(ハ):17−OHP溶液 17α−ヒドロキシプロゲステロン(シグマ社製)0.
1 〜200pg を50mMトリス塩酸緩衝液(pH
7.4 )50μlに溶解し、17−OHP溶液を調製
した。 試薬(ニ):基質溶液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )にADP、
アセチルリン酸及び酢酸マグネシウムをそれぞれ10μ
M、1mM、30mMとなるように溶解し、基質溶液を
調製した。 試薬(ホ):測定用緩衝液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )に酢酸マグ
ネシウム、ブロックエース(大日本製薬社製)をそれぞ
れ30mM、10%となるように溶解し、測定用緩衝液
を調製した。 試薬(ヘ):発光試薬溶液 ATP測定用キット(キッコーマン(株)製ルシフェー
ル−LU)の発光試薬1ビンを発光試薬溶解用液1ビン
に溶解し、発光試薬溶液を調製した。 (2)測定 常法により作製したヤギ抗ウサギIgG抗体固相化試験
管に試薬(イ)を50μl、試薬(ロ)を50μl、更
に試薬(ハ)を50μl添加し、4℃にて一晩反応させ
た。50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )を用い
て3回洗滌し、洗滌液を除去した後、試薬(ニ)を50
μl、試薬(ホ)を100 μl添加し、37℃にて1
時間反応させた。これに試薬(ヘ)100 μlを添加
し、生じる発光を発光検出器(アロカ社製ルミネッセン
スリーダーBLR−201 )により15秒間積算した
。その結果を図1に示す。図1から0.5 ×10−1
2gの17−OHPまで検出できることがわかる。
識酵素とした17−α−ヒドロキシプロゲステロン(以
下「17−OHP」という)の競合免疫測定法1.17
−OHP−AK複合体の調製 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ニ)を調製した。 試薬(イ):17−OHP−3CMO溶液17α−ヒド
ロキシプロゲステロン−3−(O−カルボキシメチル)
オキシム(シグマ社製)をジオキサンに0.1 Mとな
るように溶解し、17−OHP−3CMO溶液を調製し
た。 試薬(ロ):N−ヒドロキシサクシニミド溶液N−ヒド
ロキシサクシニミドをジオキサンに0.14Mとなるよ
うに溶解し、N−ヒドロキシサクシニミド溶液を調製し
た。 試薬(ハ):DCC溶液 ジシクロヘキシルカルボジイミドをジオキサンに、0.
14Mとなるように溶解し、DCC溶液を調製した。 試薬(ニ):AK溶液 酢酸キナーゼ(ユニチカ(株)製)を50mMトリス塩
酸緩衝液(pH7.4 )に1ml当たり1.16 m
g となるように溶解し、AK溶液を調製した。 (2)標識反応 試薬(イ)、(ロ)および(ハ)をそれぞれ1ml、0
.5 mlおよび0.5 ml混合し、室温にて3時間
反応させた。不溶物を遠心除去し、試薬(ニ)0.25
ml に添加し、4℃にて一晩反応させた。50mM
トリス塩酸緩衝液(pH7.4 )に対して透析した後
、遠心(2500rpm,10分)上澄をトヨパールH
W−55(東ソー製)を用いたゲル濾過により精製し、
17−OHP−AK複合体を調製した。 2.17−OHPの測定 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ヘ)を調製した。 試薬(イ):抗17−OHP抗血清 17α−ヒドロキシプロゲステロン−3−(O−カルボ
キシメチル)オキシム−BSA(シグマ社製)を抗原と
して常法によりウサギに免疫し調製した。(用時適宜希
釈して使用する。) 試薬(ロ):17−OHP−AK複合体溶液前項1.に
より調製した17−OHP−AK複合体を50mMトリ
ス塩酸緩衝液(pH7.4 )50μlで200 倍に
希釈し、17−OHP−AK複合体溶液を調製した。 試薬(ハ):17−OHP溶液 17α−ヒドロキシプロゲステロン(シグマ社製)0.
1 〜200pg を50mMトリス塩酸緩衝液(pH
7.4 )50μlに溶解し、17−OHP溶液を調製
した。 試薬(ニ):基質溶液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )にADP、
アセチルリン酸及び酢酸マグネシウムをそれぞれ10μ
M、1mM、30mMとなるように溶解し、基質溶液を
調製した。 試薬(ホ):測定用緩衝液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )に酢酸マグ
ネシウム、ブロックエース(大日本製薬社製)をそれぞ
れ30mM、10%となるように溶解し、測定用緩衝液
を調製した。 試薬(ヘ):発光試薬溶液 ATP測定用キット(キッコーマン(株)製ルシフェー
ル−LU)の発光試薬1ビンを発光試薬溶解用液1ビン
に溶解し、発光試薬溶液を調製した。 (2)測定 常法により作製したヤギ抗ウサギIgG抗体固相化試験
管に試薬(イ)を50μl、試薬(ロ)を50μl、更
に試薬(ハ)を50μl添加し、4℃にて一晩反応させ
た。50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )を用い
て3回洗滌し、洗滌液を除去した後、試薬(ニ)を50
μl、試薬(ホ)を100 μl添加し、37℃にて1
時間反応させた。これに試薬(ヘ)100 μlを添加
し、生じる発光を発光検出器(アロカ社製ルミネッセン
スリーダーBLR−201 )により15秒間積算した
。その結果を図1に示す。図1から0.5 ×10−1
2gの17−OHPまで検出できることがわかる。
【0010】
【実施例2】AKを標識酵素とした免疫グロブリンG(
IgG)のサンドイッチ免疫測定法 1.ヤギ抗ウサギIgG−AK複合体(AK標識Fab
’ )の調製 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ホ)を調製した。 試薬(イ):ABS 0.1 M酢酸緩衝液(pH4.5 )に塩化ナトリウ
ムを0.9 %となるように溶解し、ABSを調製した
。 試薬(ロ):PBS−BSA 100 mMリン酸緩衝液(pH7.0 )に塩化ナト
リウムおよび子牛血清アルブミンをそれぞれ0.9 %
、0.1 %となるように溶解し、PBS−BSAを調
製した。 試薬(ハ):還元反応用試薬溶液 試薬(ロ)に2−メルカプトエタノールおよびEDTA
をそれぞれ0.1M、5mMとなるように溶解し、還元
反応用試薬溶液を調製した。 試薬(ニ):AK溶液 AK(ユニチカ(株)製)0.66mgを試薬(ロ)1
mlに溶解し、AK溶液を調製した。 試薬(ホ):マレイミド化試薬溶液 N−(ε−マレイミドカプロイルオキシル)サクシニミ
ド(同人化学社製)5mgをジメチルホルムアミド1m
lに溶解し、マレイミド化試薬溶液を調製した。 (2)標識反応 ヤギ抗ウサギIgG(生化学工業社製)(7mg/ml
)2mlを試薬(イ)に対し一晩透析した後、膜濃縮し
た。これに0.28mgのペプシンを添加し、37℃に
て一晩反応させた後、ゲル濾過によりF(ab’)2を
分離した。これを濃縮し、試薬(ハ)50μlと混合し
て37℃にて90分間反応させた後、ゲル濾過によりF
ab’ を分離した。 一方、試薬(ニ)1mlに試
薬(ホ)1mlを8.4 μl加え、37℃にて90分
間反応させた後、ゲル濾過法により、反応生成物(マレ
イミド化AK)を分取した。これと、上記にて得られた
Fab’とを混合し、30℃にて2時間反応させた後、
ゲル濾過法により、ヤギ抗ウサギIgG−AK複合体(
AK標識Fab’ )を得た。 2.ウサギIgGの定量 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ヘ)を調製した。 試薬(イ):PBS−BSA 100 mMリン酸緩衝液(pH7.0 )に塩化ナト
リウムおよび子牛血清アルブミンをそれぞれ0.9 %
、0.1 %となるように溶解し、PBS−BSAを調
製した。 試薬(ロ):ウサギIgG溶液 ウサギIgG(生化学工業社製)を試薬(イ)を用いて
希釈し、0.25〜250ng/mlの濃度のウサギI
gG溶液を調製した。 試薬(ハ):測定用緩衝液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )に酢酸マグ
ネシウムおよびブロックエース(大日本製薬社製)をそ
れぞれ30mM、10%となるように溶解し、測定用緩
衝液を調製した。 試薬(ニ):AK標識Fab’ 溶液 前項1.で調製したヤギ抗ウサギIgG−AK複合体(
AK標識Fab’ )をで1000倍に希釈し、AK標
識Fab’ 溶液を調製した。 試薬(ホ):基質溶液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )にADP、
アセチルリン酸をそれぞれ10μM 、1mMとなるよ
うに溶解し、基質溶液を調製した。 試薬(ヘ):発光試薬溶液 ATP測定用キット(キッコーマン(株)製ルシフェー
ル−LU)の発光試薬1ビンを発光試薬溶解用液1ビン
に溶解し、発光試薬溶液を調製した。 (2)測定 常法により作製したヤギ抗ウサギIgG抗体固相化試験
管に試薬(ロ)を100 μl添加し、37℃にて1時
間反応させた。試薬(ハ)を用いて3回洗滌し、液を除
去した後、試薬(ニ)を100 μl添加し、37℃に
て1時間反応させた。試薬(ハ)を用いて3回洗滌し、
液を除去した後、試薬(ハ)および試薬(ホ)をそれぞ
れ50μlずつ添加し、37℃にて1時間反応させた。 これに試薬(ヘ)100 μlを添加し、生じる発光を
発光検出器(アロカ社製ルミネッセンスリーダーBLR
−201 )により15秒間積算した。その結果を図2
に示す。
IgG)のサンドイッチ免疫測定法 1.ヤギ抗ウサギIgG−AK複合体(AK標識Fab
’ )の調製 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ホ)を調製した。 試薬(イ):ABS 0.1 M酢酸緩衝液(pH4.5 )に塩化ナトリウ
ムを0.9 %となるように溶解し、ABSを調製した
。 試薬(ロ):PBS−BSA 100 mMリン酸緩衝液(pH7.0 )に塩化ナト
リウムおよび子牛血清アルブミンをそれぞれ0.9 %
、0.1 %となるように溶解し、PBS−BSAを調
製した。 試薬(ハ):還元反応用試薬溶液 試薬(ロ)に2−メルカプトエタノールおよびEDTA
をそれぞれ0.1M、5mMとなるように溶解し、還元
反応用試薬溶液を調製した。 試薬(ニ):AK溶液 AK(ユニチカ(株)製)0.66mgを試薬(ロ)1
mlに溶解し、AK溶液を調製した。 試薬(ホ):マレイミド化試薬溶液 N−(ε−マレイミドカプロイルオキシル)サクシニミ
ド(同人化学社製)5mgをジメチルホルムアミド1m
lに溶解し、マレイミド化試薬溶液を調製した。 (2)標識反応 ヤギ抗ウサギIgG(生化学工業社製)(7mg/ml
)2mlを試薬(イ)に対し一晩透析した後、膜濃縮し
た。これに0.28mgのペプシンを添加し、37℃に
て一晩反応させた後、ゲル濾過によりF(ab’)2を
分離した。これを濃縮し、試薬(ハ)50μlと混合し
て37℃にて90分間反応させた後、ゲル濾過によりF
ab’ を分離した。 一方、試薬(ニ)1mlに試
薬(ホ)1mlを8.4 μl加え、37℃にて90分
間反応させた後、ゲル濾過法により、反応生成物(マレ
イミド化AK)を分取した。これと、上記にて得られた
Fab’とを混合し、30℃にて2時間反応させた後、
ゲル濾過法により、ヤギ抗ウサギIgG−AK複合体(
AK標識Fab’ )を得た。 2.ウサギIgGの定量 (1)試薬の調製 以下の試薬(イ)〜(ヘ)を調製した。 試薬(イ):PBS−BSA 100 mMリン酸緩衝液(pH7.0 )に塩化ナト
リウムおよび子牛血清アルブミンをそれぞれ0.9 %
、0.1 %となるように溶解し、PBS−BSAを調
製した。 試薬(ロ):ウサギIgG溶液 ウサギIgG(生化学工業社製)を試薬(イ)を用いて
希釈し、0.25〜250ng/mlの濃度のウサギI
gG溶液を調製した。 試薬(ハ):測定用緩衝液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )に酢酸マグ
ネシウムおよびブロックエース(大日本製薬社製)をそ
れぞれ30mM、10%となるように溶解し、測定用緩
衝液を調製した。 試薬(ニ):AK標識Fab’ 溶液 前項1.で調製したヤギ抗ウサギIgG−AK複合体(
AK標識Fab’ )をで1000倍に希釈し、AK標
識Fab’ 溶液を調製した。 試薬(ホ):基質溶液 50mMトリス塩酸緩衝液(pH7.4 )にADP、
アセチルリン酸をそれぞれ10μM 、1mMとなるよ
うに溶解し、基質溶液を調製した。 試薬(ヘ):発光試薬溶液 ATP測定用キット(キッコーマン(株)製ルシフェー
ル−LU)の発光試薬1ビンを発光試薬溶解用液1ビン
に溶解し、発光試薬溶液を調製した。 (2)測定 常法により作製したヤギ抗ウサギIgG抗体固相化試験
管に試薬(ロ)を100 μl添加し、37℃にて1時
間反応させた。試薬(ハ)を用いて3回洗滌し、液を除
去した後、試薬(ニ)を100 μl添加し、37℃に
て1時間反応させた。試薬(ハ)を用いて3回洗滌し、
液を除去した後、試薬(ハ)および試薬(ホ)をそれぞ
れ50μlずつ添加し、37℃にて1時間反応させた。 これに試薬(ヘ)100 μlを添加し、生じる発光を
発光検出器(アロカ社製ルミネッセンスリーダーBLR
−201 )により15秒間積算した。その結果を図2
に示す。
【図1】17−OHPの検量線を示す図である。
【図2】ウサギIgGの検量線を示す図である。
Claims (1)
- 【請求項1】 標識酵素としてアデノシン三リン酸生
成酵素を用い、生成するアデノシン三リン酸をホタルル
シフェラーゼを用いて生物発光させ、発光量を測定する
ことを特徴とする酵素免疫測定法。
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|---|---|---|---|
| JP3027588A JP2856339B2 (ja) | 1991-02-21 | 1991-02-21 | 酵素免疫測定法 |
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| US6247995B1 (en) | 1996-02-06 | 2001-06-19 | Bruce Bryan | Bioluminescent novelty items |
| GB9626932D0 (en) * | 1996-12-24 | 1997-02-12 | Lumitech Limited | Assay methods and kits therefor |
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- 1991-02-21 JP JP3027588A patent/JP2856339B2/ja not_active Expired - Fee Related
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1992
- 1992-02-19 US US07/836,859 patent/US5246834A/en not_active Expired - Fee Related
- 1992-02-20 EP EP92102840A patent/EP0500099A1/en not_active Withdrawn
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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Also Published As
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