JPH04356426A - 抗癌剤 - Google Patents
抗癌剤Info
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- JPH04356426A JPH04356426A JP3156237A JP15623791A JPH04356426A JP H04356426 A JPH04356426 A JP H04356426A JP 3156237 A JP3156237 A JP 3156237A JP 15623791 A JP15623791 A JP 15623791A JP H04356426 A JPH04356426 A JP H04356426A
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Landscapes
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、上皮増殖因子受容体(
EGFR)を産生する腫瘍細胞に特に有効な抗癌剤に関
する。
EGFR)を産生する腫瘍細胞に特に有効な抗癌剤に関
する。
【0002】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】従来、
扁平上皮癌に対してはペプロマイシンあるいはその誘導
体を投与することによって治療を行っていた。しかしな
がら、この治療はペプロマイシンあるいはその誘導体に
よる副作用を高率に認めるため有効な治療方法とはなっ
ていない。
扁平上皮癌に対してはペプロマイシンあるいはその誘導
体を投与することによって治療を行っていた。しかしな
がら、この治療はペプロマイシンあるいはその誘導体に
よる副作用を高率に認めるため有効な治療方法とはなっ
ていない。
【0003】本発明は前記した事情に鑑みてなされたも
のであり、その目的は従来のペプロマイシンおよびその
誘導体投与対象となる腫瘍細胞に対して有効で、かつ副
作用の少ない抗癌剤を提供するにある。
のであり、その目的は従来のペプロマイシンおよびその
誘導体投与対象となる腫瘍細胞に対して有効で、かつ副
作用の少ない抗癌剤を提供するにある。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明は、前記目的を達
成するためペプロマイシンあるいはその誘導体と腫瘍細
胞を識別する抗体との接合体からなることを特徴として
いる。
成するためペプロマイシンあるいはその誘導体と腫瘍細
胞を識別する抗体との接合体からなることを特徴として
いる。
【0005】腫瘍細胞が食道癌や肺癌などの扁平上皮癌
細胞の場合、この細胞には上皮増殖因子受容体(EGF
R)が過剰に産生していること、及びこの扁平上皮癌細
胞のEGFRは正常細胞のそれと異なり低親和型である
ところから、その細胞を識別する抗体は低親和型のEG
FRに対するモノクローナル抗体が選択される。
細胞の場合、この細胞には上皮増殖因子受容体(EGF
R)が過剰に産生していること、及びこの扁平上皮癌細
胞のEGFRは正常細胞のそれと異なり低親和型である
ところから、その細胞を識別する抗体は低親和型のEG
FRに対するモノクローナル抗体が選択される。
【0006】
【作用】本発明は、前記した構成になっているので、腫
瘍細胞を識別する抗体が腫瘍細胞上に存在する抗原と複
合体を形成し、この複合体が細胞内に陥入することによ
りペプロマイシンを細胞内に導入し、腫瘍細胞の蛋白質
合成を阻害する。
瘍細胞を識別する抗体が腫瘍細胞上に存在する抗原と複
合体を形成し、この複合体が細胞内に陥入することによ
りペプロマイシンを細胞内に導入し、腫瘍細胞の蛋白質
合成を阻害する。
【0007】
【実施例】ペプロマイシンの調製:市販の含銅ペプロマ
イシン(日本化薬社製)にグリオキシル酸とシアノ水素
化ホウ素ナトリウムを添加し、40℃で20時間反応後
、反応液を0.05Mリン酸緩衝液(pH6.8)で平
衡化したCMセファデックスC−25(ファルマシア社
製)を充填したカラムに吸着させた。その後、前記緩衝
液に0.1モル塩化ナトリウムを添加した溶液を用いて
、前記カラムに吸着した含銅ペプロマイシン誘導体を溶
出させた。次で溶出液をアンバーライトXAD−2(ロ
ーム・アンド・ハース社製)で脱塩を行い、ダウエック
ス44(OH型:ザ・ダウ・ケミカル社製)で中和した
後、凍結乾燥を行い、本ペプロマイシンとなる含銅ペプ
ロマイシン誘導体を得た。
イシン(日本化薬社製)にグリオキシル酸とシアノ水素
化ホウ素ナトリウムを添加し、40℃で20時間反応後
、反応液を0.05Mリン酸緩衝液(pH6.8)で平
衡化したCMセファデックスC−25(ファルマシア社
製)を充填したカラムに吸着させた。その後、前記緩衝
液に0.1モル塩化ナトリウムを添加した溶液を用いて
、前記カラムに吸着した含銅ペプロマイシン誘導体を溶
出させた。次で溶出液をアンバーライトXAD−2(ロ
ーム・アンド・ハース社製)で脱塩を行い、ダウエック
ス44(OH型:ザ・ダウ・ケミカル社製)で中和した
後、凍結乾燥を行い、本ペプロマイシンとなる含銅ペプ
ロマイシン誘導体を得た。
【0008】腫瘍細胞を識別する抗体の調製:本抗体は
次のように調製した扁平上皮癌細胞を識別するマウスモ
ノクローナル抗体を用いた。上皮増殖因子受容体(EG
FR)を過剰に産生する扁平上皮癌細胞(A431)を
抗原とし、Balb/cマウスに免疫し、その脾細胞と
マウス骨髄細胞を細胞融合させた。このときの融合はポ
リエチレングリコール(分子量4000,シグマ社製)
中で行い、スクリーニングはELISA法によって行っ
た。この融合で得られたハイブリドーマを15%牛血清
を含んだRPMI1640培地で増殖した後、プリスタ
ンを投与したBalb/cヌードマウスの腹腔内に細胞
(108 /匹)を投与し、約3週間後、腹水を取出し
た。この腹水はその後遠心分離を行い、その上澄をプロ
テインAカラム(ファルマシア社製)にかけて精製し、
本抗体となるマウスモノクローナル抗体を得た。
次のように調製した扁平上皮癌細胞を識別するマウスモ
ノクローナル抗体を用いた。上皮増殖因子受容体(EG
FR)を過剰に産生する扁平上皮癌細胞(A431)を
抗原とし、Balb/cマウスに免疫し、その脾細胞と
マウス骨髄細胞を細胞融合させた。このときの融合はポ
リエチレングリコール(分子量4000,シグマ社製)
中で行い、スクリーニングはELISA法によって行っ
た。この融合で得られたハイブリドーマを15%牛血清
を含んだRPMI1640培地で増殖した後、プリスタ
ンを投与したBalb/cヌードマウスの腹腔内に細胞
(108 /匹)を投与し、約3週間後、腹水を取出し
た。この腹水はその後遠心分離を行い、その上澄をプロ
テインAカラム(ファルマシア社製)にかけて精製し、
本抗体となるマウスモノクローナル抗体を得た。
【0009】ペプロマイシンと腫瘍細胞を識別する抗体
との接合体の調製:本ペプロマイシンをジメチルホルム
アミドで溶解後、N−ヒドロキシコハク酸イミド,及び
ジシクロヘキシルカルボジイミドを添加し、室温で20
時間反応させた。反応液はアセトン沈殿法により未反応
液を除去し、0.05Mリン酸緩衝液(pH7.5)に
溶解した本抗体を添加して室温で6時間反応後セファデ
ックスG−50(ファルマシア社製)を充填したカラム
にかけて精製した。この精製により本接合体は素通り分
画に溶出されて得られた。
との接合体の調製:本ペプロマイシンをジメチルホルム
アミドで溶解後、N−ヒドロキシコハク酸イミド,及び
ジシクロヘキシルカルボジイミドを添加し、室温で20
時間反応させた。反応液はアセトン沈殿法により未反応
液を除去し、0.05Mリン酸緩衝液(pH7.5)に
溶解した本抗体を添加して室温で6時間反応後セファデ
ックスG−50(ファルマシア社製)を充填したカラム
にかけて精製した。この精製により本接合体は素通り分
画に溶出されて得られた。
【0010】実験例:本接合体の殺細胞効果,および抗
腫瘍効果を次の方法で判定した。 供試腫瘍細胞 供試腫瘍細胞の種類と、各細胞のEGFR数は表1に示
す通りである。
腫瘍効果を次の方法で判定した。 供試腫瘍細胞 供試腫瘍細胞の種類と、各細胞のEGFR数は表1に示
す通りである。
【表1】
【0011】方 法
殺細胞効果の判定:抗癌剤として本接合体,およびペプ
ロマイシン単独(比較例)を用いた。本接合体およびペ
プロマイシン単独を0.22μmフィルターで除菌し、
供試腫瘍細胞培養液中に投与し、投与後72時間後の生
存細胞数を計測した。
ロマイシン単独(比較例)を用いた。本接合体およびペ
プロマイシン単独を0.22μmフィルターで除菌し、
供試腫瘍細胞培養液中に投与し、投与後72時間後の生
存細胞数を計測した。
【0012】細胞増殖抑制率は前記計測生存細胞数から
次式に従って算出した。 細胞増殖抑制率=(C0 −C1 )/C0 ×100
ここで、C0 は供試腫瘍細胞に生理食塩水を投与した
(コントロール)ときの生存細胞数を、C1 は前記計
測生存細胞数をそれぞれ示す。
次式に従って算出した。 細胞増殖抑制率=(C0 −C1 )/C0 ×100
ここで、C0 は供試腫瘍細胞に生理食塩水を投与した
(コントロール)ときの生存細胞数を、C1 は前記計
測生存細胞数をそれぞれ示す。
【0013】抗腫瘍効果の判定:除菌した本接合体(ペ
プロマイシン量として5.2μg,200μ1)をA4
31細胞(107 個)を皮下に移植して腫瘍形成した
Ba1b/cヌードマウスの腹腔内に5日間にわたり、
5回投与し、推定腫瘍重量変化を観察した。投与は推定
腫瘍重量が約400mgになったとき、開始した。推定
腫瘍重量(W(mg))は、W=0.5×L×S2 か
ら算出した。このとき、Lは腫瘍の長径(mm),Sは
短径(mm)である。
プロマイシン量として5.2μg,200μ1)をA4
31細胞(107 個)を皮下に移植して腫瘍形成した
Ba1b/cヌードマウスの腹腔内に5日間にわたり、
5回投与し、推定腫瘍重量変化を観察した。投与は推定
腫瘍重量が約400mgになったとき、開始した。推定
腫瘍重量(W(mg))は、W=0.5×L×S2 か
ら算出した。このとき、Lは腫瘍の長径(mm),Sは
短径(mm)である。
【0014】また、同時に、比較例として、除菌された
生理食塩水(PBS)(200μl),あるいはペプロ
マイシン単独(5.2μg,200μl)を、上記と同
じ条件にあるヌードマウスに、5日間、5回投与し、そ
の推定腫瘍重量変化を観察した。
生理食塩水(PBS)(200μl),あるいはペプロ
マイシン単独(5.2μg,200μl)を、上記と同
じ条件にあるヌードマウスに、5日間、5回投与し、そ
の推定腫瘍重量変化を観察した。
【0015】本接合体,ペプロマイシン単独,PBS投
与開始後35日して、ヌードマウスから腫瘍を切除し、
腫瘍重量測定および体重測定を行った。
与開始後35日して、ヌードマウスから腫瘍を切除し、
腫瘍重量測定および体重測定を行った。
【0016】結 果
殺細胞効果:扁平上皮癌細胞A431,肺小細胞癌細胞
H69に対する抗癌剤濃度と細胞増殖抑制率との関係を
示すと図1および図2の通りとなる。各図においてaは
本接合体,bは比較例としてペプロマイシン単独投与を
示している。
H69に対する抗癌剤濃度と細胞増殖抑制率との関係を
示すと図1および図2の通りとなる。各図においてaは
本接合体,bは比較例としてペプロマイシン単独投与を
示している。
【0017】供試腫瘍細胞において、抗癌剤の50%細
胞増殖抑制率を示す抗癌剤濃度IC50を求めると表2
の通りとなる。
胞増殖抑制率を示す抗癌剤濃度IC50を求めると表2
の通りとなる。
【表2】
a:本接合体(本発明) b:ペプロマイシン単
独(比較例)b/a:aに対するbのIC50値の割合
を示す。 表1および表2から明らかなように、本接合体(a),
及びペプロマイシン単独(b)からなる抗癌剤はEGF
Rをより多く産生する腫瘍細胞ほど少量で殺細胞効果を
示し、EGFRを全く産出しない腫瘍細胞(H69)に
対しては全く殺細胞効果を示さないことが理解できる。 すなわち、本接合体(a)のIC50値はEGFRを最
も多く産生するA431に対しては0.1で最も少量で
殺細胞効果を示すのに対して、これよりEGFR数が少
なくなるTE1及びTE8に対しては0.7及び1.5
となる。同様にペプロマイシン単独(b)のIC50値
はA431,TE1,及びTE8に対してそれぞれ0.
6,2.0,及び5.0となる。
独(比較例)b/a:aに対するbのIC50値の割合
を示す。 表1および表2から明らかなように、本接合体(a),
及びペプロマイシン単独(b)からなる抗癌剤はEGF
Rをより多く産生する腫瘍細胞ほど少量で殺細胞効果を
示し、EGFRを全く産出しない腫瘍細胞(H69)に
対しては全く殺細胞効果を示さないことが理解できる。 すなわち、本接合体(a)のIC50値はEGFRを最
も多く産生するA431に対しては0.1で最も少量で
殺細胞効果を示すのに対して、これよりEGFR数が少
なくなるTE1及びTE8に対しては0.7及び1.5
となる。同様にペプロマイシン単独(b)のIC50値
はA431,TE1,及びTE8に対してそれぞれ0.
6,2.0,及び5.0となる。
【0018】表1および表2から、本実施例で用いた抗
癌剤a,bは腫瘍細胞のEGFR数に依存しており、そ
の作用機序はEGFRを介したものであることを示唆し
ている。
癌剤a,bは腫瘍細胞のEGFR数に依存しており、そ
の作用機序はEGFRを介したものであることを示唆し
ている。
【0019】また、b/a項から本接合体(本発明)は
ペプロマイシン単独(比較例)に比べて3〜6分の1の
少量で同等のIC50値が得られることが理解できる。 このことは本接合体はペプロマイシン単独に比べて数倍
の殺細胞効果を示している。
ペプロマイシン単独(比較例)に比べて3〜6分の1の
少量で同等のIC50値が得られることが理解できる。 このことは本接合体はペプロマイシン単独に比べて数倍
の殺細胞効果を示している。
【0020】抗腫瘍効果:A431細胞を移植し、腫瘍
を形成したヌードマウスの腹腔内に、本接合体,ペプロ
マイシン単独,PBSを投与したとき、推定腫瘍重量の
時間的変化を示すと図3の通りになる。図3において、
aは本接合体投与,bはペプロマイシン単独投与,cは
PBS投与をそれぞれ示す。図3から次のことが理解で
きる。即ち、PBS投与では、腫瘍重量は対数的に増加
している。ペプロマイシン単独投与では、投与後10日
間は腫瘍重量の増加は抑制されるがそれ以降になると、
PBS投与の場合と同様、対数的に増加していく。本接
合体投与では、腫瘍重量の増加が著しく抑制される。
を形成したヌードマウスの腹腔内に、本接合体,ペプロ
マイシン単独,PBSを投与したとき、推定腫瘍重量の
時間的変化を示すと図3の通りになる。図3において、
aは本接合体投与,bはペプロマイシン単独投与,cは
PBS投与をそれぞれ示す。図3から次のことが理解で
きる。即ち、PBS投与では、腫瘍重量は対数的に増加
している。ペプロマイシン単独投与では、投与後10日
間は腫瘍重量の増加は抑制されるがそれ以降になると、
PBS投与の場合と同様、対数的に増加していく。本接
合体投与では、腫瘍重量の増加が著しく抑制される。
【0021】上記実験に用いたヌードマウスの体重変化
,実測腫瘍重量を示すと表3の通りになる。
,実測腫瘍重量を示すと表3の通りになる。
【表3】
*( )内の数字は使用抗癌剤のコントロールに
対する実測腫瘍重量の割合を示す。
対する実測腫瘍重量の割合を示す。
【0022】表3から次のことが理解できる。即ち、本
接合体,およびペプロマイシン単独のそれぞれの投与は
、その投与で得られた各実測腫瘍重量が、PBS投与に
より得られた実測腫瘍重量の26%,および55%とな
り、腫瘍重量の増加を抑制することが理解できる。中で
も本接合体は前記抑制効果が顕著である。体重は本接合
体,ペプロマイシン単独,およびPBSの各投与におい
て、それぞれ2.5g,2.6g,および7.2g減少
した。
接合体,およびペプロマイシン単独のそれぞれの投与は
、その投与で得られた各実測腫瘍重量が、PBS投与に
より得られた実測腫瘍重量の26%,および55%とな
り、腫瘍重量の増加を抑制することが理解できる。中で
も本接合体は前記抑制効果が顕著である。体重は本接合
体,ペプロマイシン単独,およびPBSの各投与におい
て、それぞれ2.5g,2.6g,および7.2g減少
した。
【0023】また、本接合体,あるいはPBSを、A4
31細胞に移植し、腫瘍を形成した20匹のヌードマウ
スに5日間投与し、投与開始後25日して、体重変化,
腫瘍重量を実測すると表4に示した通りになる。
31細胞に移植し、腫瘍を形成した20匹のヌードマウ
スに5日間投与し、投与開始後25日して、体重変化,
腫瘍重量を実測すると表4に示した通りになる。
【表4】
*ペプロマイシン換算量
このとき、1日の本接合体の投与量は、ペプロマイシン
に換算すると約5μgと約10μgとなる。
に換算すると約5μgと約10μgとなる。
【0024】表4から次のことが理解できる。即ち、本
接合体投与量を増加すると、より高い抗腫瘍効果が確認
された。体重は、ペプロマイシン10μg相当,ペプロ
マイシン5μg相当の本接合体,そしてPBS投与にお
いて、それぞれ1.2g,1.2g,2.7g減少した
。
接合体投与量を増加すると、より高い抗腫瘍効果が確認
された。体重は、ペプロマイシン10μg相当,ペプロ
マイシン5μg相当の本接合体,そしてPBS投与にお
いて、それぞれ1.2g,1.2g,2.7g減少した
。
【0025】以上のことから本接合体は、ペプロマイシ
ン単独よりも、抗腫瘍効果,およびその効果の持続性に
おいてすぐれており、副作用軽減の点からも、より有効
であると考えられる。
ン単独よりも、抗腫瘍効果,およびその効果の持続性に
おいてすぐれており、副作用軽減の点からも、より有効
であると考えられる。
【0026】
【発明の効果】本発明は以上述べたように、EGFRを
産生する腫瘍組織に対して、ペプロマイシンよりも有効
な抗腫瘍効果を示し、副作用を軽減する抗癌剤を提供す
ることができる。
産生する腫瘍組織に対して、ペプロマイシンよりも有効
な抗腫瘍効果を示し、副作用を軽減する抗癌剤を提供す
ることができる。
【図1】扁平上皮癌細胞A431に対する細胞増殖抑制
率と抗癌剤濃度との関係を示すグラフである。
率と抗癌剤濃度との関係を示すグラフである。
【図2】肺小細胞癌細胞H−69に対する細胞増殖抑制
率と抗癌剤濃度との関係を示すグラフである。
率と抗癌剤濃度との関係を示すグラフである。
【図3】ヌードマウスに形成されたA431扁平上皮癌
細胞の腫瘍の推定重量と日数との関係を示すグラフであ
る。
細胞の腫瘍の推定重量と日数との関係を示すグラフであ
る。
Claims (1)
- 【請求項1】 ペプロマイシンあるいはその誘導体と
腫瘍細胞を識別する抗体との接合体からなることを特徴
とする抗癌剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3156237A JPH04356426A (ja) | 1991-05-31 | 1991-05-31 | 抗癌剤 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP3156237A JPH04356426A (ja) | 1991-05-31 | 1991-05-31 | 抗癌剤 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04356426A true JPH04356426A (ja) | 1992-12-10 |
Family
ID=15623373
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3156237A Pending JPH04356426A (ja) | 1991-05-31 | 1991-05-31 | 抗癌剤 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH04356426A (ja) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0193538A (ja) * | 1987-10-06 | 1989-04-12 | Tetsuro Kubota | 抗腫瘍剤 |
-
1991
- 1991-05-31 JP JP3156237A patent/JPH04356426A/ja active Pending
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH0193538A (ja) * | 1987-10-06 | 1989-04-12 | Tetsuro Kubota | 抗腫瘍剤 |
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