JPH04500312A - 自己アセンブルド欠損非自己増殖性ウイルス粒子 - Google Patents
自己アセンブルド欠損非自己増殖性ウイルス粒子Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
ワクチ:ノ接種は過去30年の間につ・fルスの病気の抑制において重大な役割
を演じて”きた。7々チ゛/凄種は免疫性の簡単な原理に基づく・感染性因子に
いったん暴罪されると、動物は同一因子による感染に対して保護する免疫防mを
準備する。ワクチン接種の[J的は、感染の前に防御を準備する、−とを動物に
誘発する。−とである。便利には、これは免疫原としてウィルスの弱毒化または
殺した形態の使用により達成された。過去においてこれらのアプローチの成功は
、一部分、自然の抗原の提示および自然の感染において得らオjた免疫応答の完
全な領域を引き出す弱毒化ウィルスの能力のためであ)た。しか[1,なから、
従来のワクチンの方法は、常に、ある数の潜在的制限を受けて来、忙。弱毒化し
た菌株は突然変異し5てよりビルレトトまたは非免疫原性となることがある。不
適切にイ1活性化17ケ手:/はそ才]らか防止しようと設汁される病気を引き
起こす、〜とがある。
組み換ん1)さIA+5&術は、免疫原とじて、完全な感染因子よりむしろ、現
定された抗原のイ(!用に基′−べ「7′)手ンの開発イ:(」f能とオるす1
=によ、Xで、従来のワクチンの制限のいくつかをtJr−除J−6可能性を提
供する。これI遁ま、化′7的(、:: ;!、、 [1,”;、さオ〕。た免
疫反応性のエピトープから成る、ペプチドのτノツチ91組i・換丸W種細胞中
のパクイルスのタンパク質の発現により産It、!(オty−サブ」−づトのi
)′ノエ、・9および1つまたはある数の規定された111心の↑V示のための
エヤきているウィルスのベクターの使用を包含する。
ペプチドおよびサブユニットの両者はある数の潜在的制限を受ける。
主要な問題は、操作したタンパク質のコンフォメーションがそれらの自然のエン
ヴエロープにおいて抗原のそれをまねることを保証することが困難であることで
ある。適当なアジュバントおよび、ペプチドの場合において、担体のタ:/バク
質を、免疫反応性を促進するために使用しなくてはならない。さらに、これらの
ワクチンは主として体液の応答を誘発し、こうして有効な免疫性を引き出すこと
ができない。
ペプチドおよびサブユニットのワクチンの使用に関連する問題のあるものは、生
きているウィルスのベクターを使用して異種抗原を提示することによって克服す
ることができる。レトロウィルス、アデノウィルス、ヘルペスウィルスおよびポ
ックスウィルスを包含する、ある数のウィルス[セブコ(Cepko)ら、19
84、細胞(Ce11)旦ユニ1053−1062 ;モリン(Morin)ら
、1987、プロシーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイ
エンシズ(P r o c。
Natl、Aca、d、Sci、)USA、84:4626−4630:ロウウ
ニ(Lowe)ら、1987、プロノーディンゲス・オブ・ナショ+ル・アカデ
ミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、Nat 1.Aead、Sci、)US
A、84 : 3896=3900 :バニカリ(Panicali)およびパ
オレソティ(Paoletti)、1982、プロシーディンゲス・オブ・ナシ
ョナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proe、 Nat 1. Aca
d、 Sc i、 ) USA、 79:4927−4931 ; マツケラト
(Maekctt)ら、1982、プロシーディンゲス・オブ・ナショナル・ア
カデミ−・オブ・サイエンシズ(P419]が開発された。最にの努力は、この
目的に感染性真核生物0)り[、′I−ニングベクターとしで、τ7クシニアウ
イルス、オル゛ノボソクスウーrルスの開発にt中されてきた(バ第1ノツヂイ
(Paoletti)およびバニカリ(Pan ic+′ll i) 、!v:
国特許第4. 6o3: 1.12号]。
種々の病原体からの抗原を丁゛ノ:ゴードするものを包含する、異種遺伝子(ま
、−“アク・、、:−アカ・イル”び;′;に3い1J」されてきた。すべての
場合におい(゛、pHみ換えワクシ―丁−:r−+’ルスに、1−り発明された
外来遺伝子産生物は、自然多件1ζにへ成された遺伝子に類似するか、あるいは
それ5I:同一であった。、J)る場合においで、1.′■み換えワクニー、7
ウイルスを使用する=i、11(処動物(ハ「ノクナン接種は、関西する病原体
を使用する対抗に対してこ才ηらの16物を保護[、、?、m l>べ・11)
・子イ< ’P a Oし:tti)ら、1984、ブ「7シーゲイングー、・
オブ・:l” ’) ’i怜し・1゛カデン−・オブ・サイプ:/シズ(Pro
e、Na t !、Acad、Sc i、 )USA、、8i:1.93−19
7:ギエニ’ (K i e rlN・)ら、1,984、ネ・1′チヤ= (
Nat+、+re)、312:163−166:7リゾ:7(Alizon)ら
、15i 8 =1、ネ介′:″4. <1’lat+lre、)、、312ニ
ア57−760;ボイ 1./ (Bay I e) ’二・、 1985、
j9伝子 (Gene) 、35 :169−.17 ’7 ; 4 JLマ(
Yilma)ら、1988、!す”イエンス(Science) 、:〕42
:1058−1.061)。
LM;%換えのアブ[J−子は、そのためのワ77ヂー゛7・が現在存在l−1
なLlか、あるいは従平の管ツクチー・のアプローチが望まし6さに劣る、病気
に対するワクチンを開発する試みにおいて使用されてきている。例え(f、ヒト
の免疫欠損つ・イルス()(巳、i)は、最初に、後天性免疫欠損病気症候群(
AIDS)の病因因子として同定された[)<レーシノウシ(Barre−3i
noussi)ら、1983、サイエンス(Sc 1ence) 、2ワクチン
の開発にかなりの努力が向けられて来た。これらの努力は、免疫原とし、て小さ
い合成ペプチドの使用から全体の不活性化ウィルスの範囲の、方法の広いスペク
トルに頼ってきた。
AIDSの流行の出現は20世紀の最も重大な公衆の健康の脅威を表す。198
1−年におけるAIDSの認識以来、広範な研究はこの病気の理解において実質
的な進歩をもたらした。病原性ウィルス(HIV)は同定され、そして伝染の主
要な道筋は性的接触および血液産生物の交換であることが示された[カラン(C
urran)ら、1985、サイエ:ノス(Sc 1ence)、229 :
1352] 、HIVの多数の分離物のゲノムのヌクレオチド配列は決定され、
そしてウィルスの分子生物学は集中的に研究されている。しかしながら、多くの
研究は感染した個体のウィルスの複製およびこの病気の病原性におけるその役割
を明らかにすることにおいてなされなくてはならない。
ヒトの免疫欠損ウィルス、HIV−1およびHIV−2は、レトロウィルスのレ
ンチウィルスのサブクラスの構成員である[ボンダ(Gon9]。また、このサ
ブクラスにおいて、関連するサルの免疫欠損ウィルスが存在する[]V:ダニエ
ル(1)aniel)ら、1985、サイ疫欠損ウィルスは同様な形態を共有す
る。ウィルス粒子は、ウィルスRNAゲノム[ラブマン(Rabson)および
マーチン(Martin)、1985、細胞(Ce I I) 、40 : 4
77コを包むカプシドのタンパク質(ウィルスのgag遺伝子によりエンコード
される)から構成された内部のコア本含右する。由来のコアは一ウィルス的にエ
ンコードされるエンヴエロープの糖タンパク質を含有する脂質エンヴエローブに
より取り囲まれている。効率よい複製に要求されるウィルスでエンコードされる
酵素、例えば、逆l・ランスクリプターゼおよびインテグラーゼ(pol遺伝子
によりエンコードされる)は、また、ウィルス粒子中に組み込まれる。
HIVおよびSIVのゲノムのヌクレオチド配列の分析において、これらのウィ
ルスは、また、明確なゲノムの有機化(第1図)、ならびにかなりのDNA配列
の相同性[チャクラバルチ(Chakrabartl)ら、1987、ネイチ+
−(Nature)、3λ8:543;フランチ=(Franchini)ら、
1987、ネイチ?−(Nature) 、328 : 539]を共をするこ
とが示された。はぼ10kbのゲノムは、ウィルスの複製のための調節セグメン
トならびに、それぞれ、コアタンパク質、逆トランスクリブターゼーブロテアー
ゼーエンドヌクレアーゼ、およびエンヴエローブ糖タンパク質の遺伝情報を指定
するgag、I)01およびenv遺伝子を含有する、フランキングの長い末端
の反復(LTP)配列からなる。これらのウィルスは、また、少なくとも6つの
追加の遺伝子を含有し、それらのあるものは既知の調節機能を有する。
最後に、ヒトおよびサルの免疫欠損ウィルスは、共通の生物学的性質、例えば、
細胞変性作用、CD4を有する細胞のための属性、および、最も重要なことには
、ヒト(HIV−1およびHIV−2)またはヒト以外の霊長類(SIV)にお
ける長期間の持続性の感染および慢性の免疫欠損の病気を誘発する能力を共有す
る。HIVとSIVとの間の類似性は、免疫欠損の病気の病原性および防止の研
究のためのモデルの系として、アカゲザルのSIVの感染の開発に導いた。
HIVワクチンのために全ウィルスの使用では明らかな困難が存在する。弱毒化
ウィルスがビルレンスに復帰しうろことの懸念、および殺したウィルスの調製物
の不完全な不活性化の危険、ならびに血清陰性の個体の中にHIVゲノムを導入
することに気が進まないことは、感染の防止について生きている弱毒化または殺
したHIVワクチンの使用に対して議論された。
現在考慮されているAIDSは可能な組み換えアプローチの範囲にまたがる;す
べでではないが、多数は免疫原としてエンヴエローブ糖タンパク質のすべてまた
は一部分の使用に頼る。しかしながら、今日まで試験した組み換えワクチンの多
くは失望した結果を生じた。例えば、エンヴエローブ糖タンパク質から成るサブ
ユニットのワクチンを使用してチンパンジーを免疫化したとき、生体外でウィル
スを中和することができるH I Vに対する特異的体液免疫応答カリ1きださ
れた:しかしながら、この免疫化はHIV感染から動物を保護することができな
かった「バーマン(Berman)ら、1988、ブロシーデインダス・オブ・
ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proc、Na t 1.Ac
ad、Sc +、)USA、85 : 5200−52041 、チンパンジー
においrHIVの感染のHIVの予防のためのワクチンとして、HIV工ンヴ二
ローブ糖タンパク質を発現する生きている組み換えワクシニアウィルスの使用は
、また、不成功であった。これらの組み換え体により感受性細胞の感染は、エン
ヴエローブのポリペプチドの通常の合成、グリコジル化、処理、および膜の移送
を生ずる[チャクラバルチ(Chakrabarti)ら、1986、ネイチャ
ー(Nature)、320:535:フ(Hu)ら、1986、ネイチ+−(
Na ture) 、320:537]。遺伝子産生物はAIDSの患者からの
血清抗体により認識することができ、そしてCD4細胞表面エピトープを発現す
る細胞とのシンシチウムの形成を仲介することが示されたしリフマン(Lifs
on)ら、1986、ネイチ+−(Nature)、323ニア25]。
これらの組み換え体を使用するいくつかの種のワクチン接種は、菌株特異的ヒト
の免疫応答ならびに細胞仲介応答を誘発したフ[(Hu)ら、1986、ネイチ
ャー(Nature)、320:537;チャクラバルチ(Chakrabar
t i)ら、1986、ネイチ+−1Nature) 、320 : 535
:キエニイ(Kieny)ら、1986、バイオテクノロジー(Biotech
nology)、4ニア90:ザーリング(Zarling)ら、1986、ネ
イチャー (i’JB t u r e)、987、ネイチ+−(Nature
)、322ニア28]。それにもかかわらず、これらの免疫応答にかかわらず、
これらのワクチンはHIVによる感染からチンパンジーを保護することができな
かった[(Hu)ら、1986、ネイチャー(Nature)、32旦ニア21
]、これらの初期のワクシニアの失敗は種々の因子に帰することができる。ワク
シニアの組み換え体の免疫原性は最適ではなかったであろう:事実、組み換え体
はチンパンジーにおいて低い抗体力任を誘発した。確かに、これらのワクチンが
単一のHIV−1のポリペプチドのみの発現を誘発するという事実は、それらが
保護の免疫応答を刺激する最大の可能性をもたないことがあることを示唆する。
さらに、A、 I D Sのワクチンを評価するためのチンパンジーの使用はそ
れ自体、チンパンジーとして、問題であり、それらはHIVで感染することがで
きるが、A、IDSを発生しない[アルタ−(A 1. t e r)ら、19
84、サイエンス(SCienAIDSのワクチンの開発に対する組み換えのア
プローチのいずれかに対する潜在的欠点は、それらは免疫原として単一のHIV
抗原、最も通常にはエンヴエローブ糖タンパク質の使用に頼ってきた。生きてい
る弱毒化したまたは殺した全ウィルスの使用に基づく他の病気(例えば、ポリオ
、はしか、おたふくかぜおよび狂犬病)のための伝統的ワクチンのアプローチの
過去における成功は、抗原の提示が保護的免疫応答の誘発において極めて重要で
あること示唆する。
組み換えDNA技術における進歩は、個々の抗原ばかりでなく、かつまた欠損非
自己増殖性ウィルス様粒子の合成のために異種の発現系の使用を可能とすること
がある。ある種のウィルスのカプシドのタンパク質は対応するウィルスに形態学
的および免疫学的に類似する粒子にアセンブルすることができる。例えば、生体
外で合成したいくつかのピコルナウィルスのP1前駆体は個々のカプシドのタン
パク質に処理することができ、次いでこれらのタンパク質を免疫反応性ピリオン
様タンパク質にアセンブル(assemble)することができる[二ツタリン
(Nicklin)ら、]986、バイオテクノロジー(Biotechn。
1ogy)4 : 33 :バルメンバーグ(Pa 1menbe rg)ら、
1979、ウィルス字詰(J、Viro!ogv)、32ニア70;シー(Sh
i h)ら、1978、プロシーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−
・オブ・サイT−7シズ(Proc、Nat 1.Aead、Sei、)US、
A、7−5 : 5807 :ハネカフ(Haneeak)ら、11)82、プ
ロシーディンゲス・オブ・ナン、]ナル・アカデミ−・すブ・体の発現系中の生
体内で発現されたカプシドのタンパク質の自己アセンブリー(self−ass
embly)は、また、報告された。例えば、ヒi・の■(型肝炎は酵母閑細胞
中で発現されるとも、ポリペプチドはヒトチ・)皿苧から分離1.たものに外観
が類似する粒子にアセンブルする[・(レンズエラ(Valenzusla>
ら、1982、ネイチャー(Natu r e) 、、 2.、−町8. :
347’l : 、これらのI(1子はい←つかの種における抗lB型肝炎抗体
の産4(ミを刺激し、そしてウィルスの対抗からチ′2・バンシーを保raする
二1シができる[マクアレーア(Mc A i e e r)ら、1984、卒
rチ*−−(!′XJa t u r e) 、、 3見−7−:178]o池
の例においC、ウン!71頭腫ウィルス/(:p\7組み換えプラスミドで形質
転tI!&t、たネズミの制]111泡中のイヌのパル515ウイルス(CP〜
r)カプシドのタ゛/バク質VP1」5よびvP2の同時発現(coexpre
ss 1on)は、自己アセンブリーするウィルス様粒子の形成を生ずることが
示された[マザラ(Mazzara)ら、1986、ワクチンに対する現代のア
プローチ(Modern Approch to Vaccines)、:+−
ルド・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−、コールド・ハーバ−(ColdS
pring Harbor Laboratorv)、=ニーヨーク+R,M、
チャノック(Chanock)およびR,A、 ラーナー(Lerner)(1
り、pI)、419−424;7ザラ(Mazzara)ら、米国特許出願第9
05.299号、1986年9月8日提出] ;感受性のイヌのワクチン接種に
使用するとき、これらの空のカプシドはCPVの対抗に対して保護することがで
きる免疫応答を誘発した。最後に、バキュロの発現ベクターを使用してスボドブ
テラ・フルギベルダ(Spodoptera frugiperda)細胞中で
発現されたHIV−1p55gag前駆体のポリペプチドは、細胞の培地中に分
泌されるウィルス様粒子にアセンブルすることが示されたしゲイセン(Ghey
sen)ら、1988、新しいワクチンに対する現代のアプローチ(Δ(ode
rn Approaches to New Vaccines)、、コールド
・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−、コールド・ハーバ−(Cold Sp
ring Harbor Labor’at。
ry)、ニューヨーク、9月14〜18日、アブストラクトNo、12〕。
発明の要約
本発明は、生体内または生体外で欠損非自己増殖性ウィルス粒子に自己アセンブ
リーすることができる異種ウィルスの少なくとも2つの興なるポリペプチドを発
現することができる、組み換えウィルスのベクター、および組み換えウィルスを
産生ずる方法に関する。本発明は、また、親つ(/l、スで生体内また1は生体
外において組み換えて組み換え「5rル人のベクター・S: ta 4する中間
体のDNAべ・“tター、および組み換えウィルスのべ91−で宿主をワクチン
接種して、相関関係のある異種病原性ウィルに1こ文月−て儂護的免疫性を誘発
する方法に関する。さらに、本発明は、Il[1/P+換えつ2イルスのベクタ
ーにより産°セされた、欠損非自己増殖性ウィルス粒子、例えば、!(+■、、
S■■、またはピコルナIリイルスに関する:これらのつ1ルス粒]月灯)離し
、そしCそれら自体、角取性つ・fルスに対1.y ”(、”7クヂン接種する
ための、あるいは治療の目的、例えば、感染した個体において免疫に・答を増φ
するための、あるいは治療剤、例えば、細胞障害性薬物を特異的細胞の型への送
岸を夕・−ゲラ戸イングするための、免疫原とし7て使用することができる。
図面の簡単な説明
第1−図は、サルの免疫欠損ウィルス(SN’7)およびヒトの免疫欠損パアイ
ルス(111I″V)の間挿なゲ/l、の有機イ1″、を示す。
;第:2図は、C7クシ、7−、、f 、+7 、、ヒレスφのSYVmac2
51のgagおよびブ′l−7パ−アー→二望);中入および発現のためのプラ
スミドベクター・である、p A h T 45 ’:) 2 t’)構成を示
す、 o A ’o T 45921;!、r7クシ=7’Hi1’l (目1
1 kiW、ti域中の奪且ス換えを指令するためのワクシニアDNAに−(:
、リノ、;゛2キ゛、1′−゛され7゛11、r’j+ 7シ=740にブoモ
ーター+lIi卸下’iニーg4−しく−j’l I・ot遺伝子を含有する1
、ベクターDNAは、ワクシニアの組み換え体の選択のための29 Kの宿主−
領域遺伝子、およびE、eoli中1’l’l増殖および選択のためのバクテリ
アのレプリコンおよびアンピシリン抵抗性遺伝子を包含する。
第3図は、ワクシニアウィルス中の5IVrnae251のenvの挿入および
発現のためのプラスミドベクターである、pAbT4593の構成を示す。pA
bT4593は、ワクシニアHindlll M領域中の組み換えを指令するた
めのワクシニアDNAによりフランキングされた、ワクシニア40にプロモータ
ーの制御下にenv遺伝子を含有する。ベクターDNAは、ワクシニアの組み換
え体の選択のための29にの宿主−領域遺伝子、およびE、coli中の増殖お
よび選択のためのバクテリアのレプリコンおよびアンピシリン抵抗性遺伝子を包
含する。
第4図は、ワクシニアウィルス中のSIVmac251のenvおよびgag−
protの挿入および発現のためのプラスミドベクターである、p、AbT45
97の構成を示す。pAbT4597は、ワクシニア30にプロモーターの制御
下にgag−prot遺伝子、およびワクシニア40にプロモーターの制御下に
env遺伝子を含有する。これらの遺伝子は、ワクシニアHindIIT M領
域中の組み換えを指令するためのワクシニアDNAによりフランキングされてい
る。ベクターDNAは、ワクシニアの組み換え体の選択のための29にの宿主−
領域遺伝子、およびE、coli中の増殖および選択のためのバクテリアのレプ
リコンおよびアンピシリン抵抗性遺伝子を包含する。
第5図は、ワクシニア中・イルス中のHIV−1gagの挿入および発現のため
のプラスミドベクターである、pAb71.64の構成を示す。
pAbT164は、ワクシニア7.5にプロモーターの制御下に)flVgag
遺伝子、DNA領域はワクシニア中の組み換えを指令するためのワクシニアTK
遺伝子をフランキングする、ワクシニアの組み換え体を選択するためのワクシニ
アBamFプロモーター、およびE、coli中の増殖および選択のためのバク
テリアのレプリコンおよびアンビシリン抵抗性遺伝子を含有する。
第6図は、ワクシニアHindllT M領域中の組み換えを指令するためのワ
クシニアDNAによりフランキングされた、ワクシニア40にプロモーターの制
御下にHIV−1のenv遺伝子の挿入および発現のためのプラスミドベクター
である、pAbT4603の構成を示す。
ベクターDNAは、ワクシニア組み換え体の選択のための29に宿主−領域遺伝
子、およびE、C0Ii中の増殖および選択のためのバクテリアのレプリコンお
よびアンピシリン抵抗性遺伝子を含有する。
第7図は、ワクシニア中のHIV−1のenvおよびgag−pr。
tの挿入および発現のためのプラスミドベクターである、pAbT621の構成
を示す。pAbT621は、ワクシニア40にプラスミド制御下にHIVのen
v遺伝子、およびワクシニア30にプラスミドの制御下にHIVのgag−pr
ot遺伝子を含有する。これらの遺伝子は、ワクシニアH4ndllr M領域
中の組み換えを指令するためのワクシニアDNAによりフランキングされている
。ベクターDNAは、ワクシニアの組み換え体の選択のための29に宿主−領域
遺伝子、およびE。
coli中の増殖および選択のためのバクテリアのレプリコンおよびアンピシリ
ン抵抗性遺伝子を包含する。
欠損非自己増殖性ウィルス粒子に自己アセンブリーすることができるウィルスの
ポリペプチドをエンコードする遺伝子は、DNAウィルスのゲノムのDNAまた
はRNAウィルスのゲノムのcDNAからか、あるいは遺伝子を含有する入手可
能なサブゲノムのクローンから得ることができる。これらの遺伝子は、ウィルス
のカプシドのタンパク質(すなわち、ウィルスのタンパク質の外殻を構成するタ
ンパク質)をエンコードするものおよび、エンヴエローブドウイルス、例えば、
レトロウィルスの場合において、ウィルスのエンヴエローブ糖タンパク質をエン
コードする遺伝子を包含する。追加のウィルスの遺伝子は、また、カプシドのタ
ンパク質の成熟および粒子の自己アセンブリーのために要求される。
これらは、カプシドのタンパク質またはエンヴエローブ糖タンパク質のプロセシ
ングの原因となるウィルスのプロテアーゼをエンコードすることができる。
一例として、ピコルナウィルスのゲノムの構造はよく特性決定されてきており、
そしてヴイリオンのアセンブリーに導くタンパク質の合成のパターンは明瞭であ
る[ルエツカート(R,uecke r t) 、R,、ウィルス学(Viro
logy)(1985L B、N、フィールズ(Fields)ら綱、レイブン
・プレス(Raven Press)、=ニーヨーク、1)I)、705−73
8]。ピコルナウィルスにおいて、ウィルスのカプシドのタンパク質は、単一の
長いリーディングフレームを含有するRNAゲノムによりエンコードされ、そし
て細胞のプロテアーゼおよびウィルスのプロテアーゼの組み合わせにより成熟カ
プシドタンパク質を生ずるようにプロセシングされるポリタンパク質の一部分と
して合成される。こうして、カプシドの自己アセンブリーに要求されるピコルナ
ウィルスの遺伝子は、カプシドの構造遺伝子およびそれらの成熟に要求されるウ
ィルスのプロテアーゼの両者を包含する。
自己アセンブリー性カプシドのタンパク質をエンコードする遺伝子を分離するこ
とができるウィルスの他の例は、レトロウィルスのHIVおよびSIVである。
これらのウィルスのゲノムの構造は、よ(特性決定され、そして第1図に線図的
に表されている。2つのウィルスの遺伝子の有機化は顕著に類似し、モしてHI
Vの構造遺伝子の各々の相同体はSIV中に存在する。
HIVおよびSIVのgag遺伝子はカプシドのタンパク質をエンコードする。
ピコルナウィルスのカプシドのタンパク質のように、HIVおよびSIvのga
gタンパク質は前駆体のポリペプチドとして合成され、このポリペプチドは引き
続いて、ウィルスのプロテアーゼにより、成熟カプシドのタンパク質にプロセシ
ングされる。しかしながら、gag前駆体のポリペプチドはタンパク質のプロセ
シングの不存在下にウィルス様粒子に自己アセンプリルすることができる[ゲイ
セン(Gheysen)ら、1988、新しいワクチンに対する現代のアプロー
チ(Modern Approaches to New Vaccines)
、コールド・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−、コールド・ハーバ−(Co
ld Spring Harbor Laborat。
ry)、−1,ニーヨーク、9月14〜18日、アブストラクトNo、72]。
ピコルナウィルスのカプシドと異なり、HIVおよびSIVのカプシドは、ウィ
ルスの糖タンパク質を含有する、ゆるい膜のエンヴエローブにより取り囲まれて
いる。これらはウィルスのenv遺伝子によりエンコードされる。
実施例は、本発明の組み換えウィルス中の発現のために選択されたSIVおよび
HIVの遺伝子の使用を例示する。これらの遺伝子およびそれらのタンパク質は
、表1に概略的に示されている。env、gagおよびpotの遺伝子からの誘
導された3つの主要なヴイリオンは前駆体のポリペプチドとして合成され、これ
らのポリペプチドは引き続いて切ポックスウィルス中の組み換えのためのSIV
およびHIV遺伝子 遺伝子産生物5 プロセシングされたペプチドenv g
p160 gp120 細胞外膜タンパク質gp41 トランスメンブレンのタ
ンパク質
gag p55 p24
p17 カプシドのタンパク質
pol p160” plOプロテアーゼp66/p51 逆!・ランスクリブ
ターゼ
a、記載する大きさはHIVタンパク質についてのものである。]Vのポリペプ
チドの大きさはわずかに異なる。
b、gag−pol産生物の一部分。
2、親ウィルス
レトロウィルス、アデノウィルス、ヘルペスウィルス、およびポックスウィルス
を包含する、ある数のウィルスは、異種抗原の発現のための生きているウィルス
のベクターとして開発された[セブコ(Ce p k o)ら、1984、細胞
(Cell)、旦ユニ1053−1062 :モリン(Morin)ら、198
7、プロン−ディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ
(Proe、Na t 1.Acad、Sc i、)USA、5−j+ 462
6 4’630 : Iフウウx、(Lowe)ら、1987、プロソーディ〉
・ゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・ティ(Paolefti)、1
982、プロー・−ディンゲス・オブ・す2・3ナル・・アカデミ−・オブ・サ
イエ〉・シズ(Proc、 Na t 1. Acad、Sci、)tJsA、
79 : 4927−4931 :マクケソト(M3cke t t)ら、19
82、ブロン−ディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オ゛ブ・ザイ′エ
ンンズ(Proc、Nat 1.Acad、SCi、)USA、η9.ニア41
5−”i”419L、実施例はポックスウィルスの族の使用を例示する1、好ま
しいポックスウィルスはワクノニアウイルス、−4なわち、r]′1さいHプラ
スに対するワク千゛とじで数年間使用されてきて1、\る比較的Q悸のウィルス
Cある。ワクノニアウイルスは感染性へね生物のクローニ:7グベクターとして
開発され〔バ第1ノヅティ(P301ett:i)およびバニカリ(1″an
i ea l i)、米国特許第4゜603.112号]および組み換え!−7
/7./二rつ・イルスはいく一つかの実(6系におけるワクチンとして首尾よ
く使用されてきた。肖イ;L−スは単腫瘍遺伝亡に考えられ、よく特性決定され
たゲノムを何し、そし゛C喀染性・許損失しないこ(量の外来1) N Aを宵
rる二とができる「7クケノト(Macke t t) 、〜1 およびGI、
スゞス(Smi thl)、1986、ジ賢−ナル・オブ・ゼネラ?;・・ビ
l−+tylU−(J、 Gen、 V i r○!、)3、親ウィルスとの生
体内組み換えのためのDNAベクタ一本発明の方法に従い、ウィルス粒子にアセ
ンブルすることができるポリペプチドの遺伝情報を指定するウィルスの遺伝子を
、親ウィルスのゲノムの中に、親ウィルスのタンパク質の正常の補体の発現と一
緒に、そのウィルスによりそれらが発増されうるような方法で、挿入される7こ
れは、まず、親ウィルスとの生体内の組み換えのためのDNA供与体ベクターを
構成することによって達成することができる。
一般に、DNA供与体ベクターは、次の要素を含有する:i)ベクター・を原核
生物の宿主中で増幅することができるように、複製の原核生物の由来、
il)ベクターを含有する原核生物の宿主細胞の選択を可能とするマーカーをエ
ンコードする遺伝子(例えば、抗生物質の抵抗性をエンフードする遺伝子)、
1ii)少なくとも2つの異種ウィルス遺伝子(例えば、SIV、HI V、ま
たはピコルナウィルスの遺伝子)DNA配列、各遺伝子は遺伝子の発現を指令す
ることができる転写プロモーターに隣接して位置する、および
iv)異種遺伝子が挿入され、要素ii1の構成体をフランキングする、親ウィ
ルスのベクターのゲノムの領域に対して相同性であるDNA配列。
ボ・γゲスウイルスの中に多数の外来遺伝子を導入するための供与体プラスニド
を構成する方法は、米国特許出願第91.0.501、発明の名称「仮性狂犬病
のワクチン」、その教示を引用によってここに加える、に記載されている。一般
に、供与体ベクターの構成のためのすべてのつ1′ル、1、のl)N△断片は、
転写プロ丁〜−ターを含有す5断片およびその中工、7外宋遺伝子を挿入寸ベブ
!組・′71′ルスのノ、”、ツムの@n域(−9対し−C相同性の01、列売
含イTす?〕断片を包合t1、ゲノムのD N 1\またはり1コー二、りした
1’、) N A断片か(、得S :?、ができ・5つ供伴体61Nブースミド
(t、1価、3価1:;′−1柔2′価ζ二5;167″、とがで)る(rなわ
ら、7.または′シ以j−・の師部された外米」餐伝」ト配列を含(’4する二
、1テがてき6)1゜イi、l j了、休べう・夕 (、二、好、i:′+べ1
.11.♀入されj−外来D N Aを含イfする組ン・1.゛、ぶえ丙イルス
の同定セb1能とするマ〜プアーを工〕/:]−ドtも、追加の遺伝づ−を六I
T する。いくつゴハの型のマーカー・遺伝子4・使用して、Ill w’、4
換;:、、 +A)・イ/l・スの同定および′、′)部さ・行う、”−とがで
寺る。、燈1.l〕は次のものを包二′炉1−)抗生物質Aゴ’、−i、、i+
;二学的爪抗什をL゛、二1−ドする遺伝f−[例え:、1.′、参昭、2.
’c” )= +14 v:C17’、(Spyropou ] s)ら5.1
988、ウィル・′りτ1志 (J、V’i ro l (、++zy)、62
: 1046 ; フ、= 、、!lツク十“−(I−a ] !<ne r
) t;よび=:z (MoSS)、 1,988、つ・イルス字詰(J 〜’
1rolc g y) 、 j53HIFLi9:’ノ ラ ニ”7’ (F
l−2t n k e)lぞ2、′!(185、〜ト;ノキエ、→−・7〕/ド
・セルラー・バイオo i5− (M 。
1、C(!l l 113ioI )、S::1.918m 、ならびに比色ア
ッセーイ)、け、i)祖・アl換ぐツイノト”りC4Y”°:7−パの同′ボ今
[119社とする遺伝了、イ31えば、ビ (: Oi l OLi i a
Cl+に市沃子し々ニカリ (F’an l Ca l り ’:11、■!1
86.11伝子(G e n c > 、1−、、’71 : 19 :3−1
!:) 9 ] (、;(1〕・換えI−ノーFシー了パフィルス、の選択の
ブチ法は、弔−C)T:l 7 ;、ニア−エン−7−ドデ・・ノド櫨峠、すな
わち、29 K宿主−・−領域遺伝子産生物に頼る〔ギラー ド)Gillar
d)ら、1986、プロシーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ
・サイエンシズ(Proc、Na tl、Acad、Sc i、)USA、83
: 5573] 、この方法は米国特許出願第205.189号、1988年
6月20日提出、発明の名称[“組み換えポックスウィルスを選択する方法」、
その教示を引用によっrこ”二に加える、に記載されている。簡単に述べると、
ウィルスのゲノムのHindIII K/M領域に位置する。29に遺伝子の中
に突然変異ヲ含有するワクシニアウィルスを、生体内の組み換えのための宿主と
して使閤する。29にの突然変異は、ある種の宿主細胞、例えば、RKl、:3
(ラットの腎1il)細胞上のこのウィルスの増殖を防止する。外来遺伝子の押
入のためのプラスミドは、突然変異の遺伝子を収容することがテキるワク2.・
ニアのDNAlE列を含有する;これらの配列は、また、1(incllII
M領域中の突然変異遺伝子の部位への組み換えを指令する。、′:うして、組み
換えワクシニアウィルは、RK13細胞中で増殖する能力を取り戻し1、そして
この基準でこれらの細胞上で増殖できない非組み換え親ウィルスから分離するこ
とができる。
好ましいr7クシニアウイルスとの組み換えのための好ましいベクターは、次の
ものからなる:
3、ワクシニアウィルス中で隣接する遺伝子の発現を指令することができる、1
まf、二は21以上の転写プロモーター(例えば、ワクシニア7゜5に、30K
、40に、]、IKまたはBamFプロモーターまたはこれらのプロモーターの
修飾された変異型、各は次のものに連鎖している。
b1問題のウィルスの抗原をエンコードする1才たけ2以上の構造遺伝子、各々
は転写プロモーターの制御下にある:C1組み換え親ウィルスの選択のためのマ
ーカー、これは次のものからなることができる:
(1)選択可能なマーカーをエンコードする遺伝子(例えば、E、Co11の1
acZ遺伝子)に連鎖した転写プロモーター(例えば、ワクシニアウィルスのB
amFプロモーター):または(2)ウィルスの宿主−領域または他のウィルス
の増殖促進機能を回復する親ウィルスの構造遺伝子(例えば、ワクシニアの29
にポリペプチド) :
d1要素a −Cの構成体をフランキングする親ウィルスのある領域と相同性の
DNA配列(例えば、ワクシニアTKまたはHindlIIM配列);
e、プラスミドと形質転換したバクテリア細胞の選択のためのマーカーを包含す
る原核生物の宿主中の複製のためのベクターのバックボーン(例えば、抗生物質
抵抗性をエンコードする遺伝子)。
感染した細胞中の供与体プラスミドDNAとウィルスのDNAとの間の相同性組
み換えは、所望の要素を組み込んだ組み換えウィルスを形成する。生体内の組み
換えのために適当な宿主細胞は、一般に、ウィルスにより感染しそしてプラスミ
ドベクターによりトランスフェクションすることができる、真核生物の細胞であ
る。ポックスウィルスとともに使用するために適当な細胞の例は、ニワトリの胚
の線維芽細胞、Hu T K143(ヒト)細胞、およびCV−1およびB5C
−40(両者はサルの腎臓)細胞である。ポックスウィルスによる細胞の感染お
よびプラスミドベクターによるこれらの細胞のトランスフェクションは、この分
野において標準の技術により[バニカリ(Panicali)およびパオレッテ
ィ(Paoletti)、米国特許第4.603.112号]。
生体内の組み換え後、組み換え組み換えウィルスの子孫をいくつかの技術の1つ
により同定することができる。例えば、DNA供与体ベクターが外来遺伝子を親
ウィルスのチミジンキナーゼ(TK)遺伝子の中に挿入するために設計された場
合、組み込才れたDNAを含有するウィルスはTK−であり、そしてこの基準に
基づいて選択することかで垂る[マケット(Mackett)ら、1982、ブ
ロシーデインダス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Pr
oc、Natl。
Acad、Sc i、)USA、ヱ9ニア415]、あるいは、マーカーまたは
インジケーター遺伝子をエンコードする遺伝子と問題の外来遺伝子との同時組み
込みを、前述したように、使用して組み換えの子孫を同定することができる。1
つの好ましいインジケーター遺伝子はE、c。
+iの1acZ遺伝子である:ベーターガラクトシダーゼを発現する組み換えウ
ィルスは、その酵素のための発色性基質を使用して選択することができる[パニ
カリ(Pan ica I i)ら、1986、遺伝子(Gene)47 :1
93]。組み換えワクシニアウィルスとともに使用す 。
るための第2の好ましくはインジケーター遺伝子はワクシニア29に遺伝子であ
る:野生型29に遺伝子−エンコーデッド機能を発現する組み換えウィルスはR
K13細胞上の増殖により選択することができる。
実施例においてより詳細に記載するように、HIVまたはSr■遺伝子を含有す
る1価または2価の供与体プラスミドを、ワクシニアのTK遺伝子またはHin
dIII M領域中に組み換え、そして組み換えウィルスを前述したように選択
した。
いったん組み換えウィルスが同定されると、種々の方法を使用して挿入された遺
伝子によりエンコードされるポリペプチドの発現をアッセイすることができる。
これらの方法は、次のものを包含する:黒色プラークアッセイ(ウィルスのプラ
ーク上で実施するその場の酵素のイムノアッセイ)、ウェスタン・プロット分析
、放射線免疫沈澱(RIPA)、および酵素イムノアッセイ(EIA)。ウィル
スの病原体により発現された抗原に対する抗体は、容易に入手可能であるか、あ
るいはこの分野において知られている方法に従いつくることができる。例えば、
ヒトまたはサルの免疫欠損ウィルスについて、抗体は(a)親つィルス/STV
組み換え体について、SIvで感染したアカゲザルからの血清であるすることが
でき;そして(b)親ウィルス/HI V組み換え体について、HIVで感染C
たヒトの患者からの血清、または特異的H1Vポリペプチドに対して向けられた
商業的に入手可能モノクローナル抗体であるこ前の節に記載した発現の分析を使
用して、挿入された異種ウィルスの遺伝子によりエンコードされたポリペプチド
の合成を確証することができるが、これらのポリペプチドが、生体内または生体
外で、欠損ウィルス粒子に自己アセンプリルするかどうかという問題を処理しな
い。2つの実験のアプローチを使用してこの問題を検査することができる。
第1のアプローチは、1または2以上のウィルスのポリペプチドを発現する組み
換えウィルスで感染した細胞のリゼイトの電子顕微鏡検査により視的に検査する
ことである。下に報告する実験において、例えば、SIVおよび/またはHIV
のga’g、enV十gag、またはenv+gag+polの遺伝子を発現す
るワクシニアの組み換え体は、欠損のレトロウィルスの粒子を形成した:gag
およびenvのポリペプチドを同時発現する組み換え体で感染した細胞において
、粒子のエンヴエロープは、粒子の表面上の糖タンパク質の「スパイク」の存在
により示されるように、エンヴエロープの糖タンパク質を含有した。粒子の表面
上のレトロウィルスのエンヴエローブ糖タンパク質の存在は、免疫金の電子顕微
鏡検査により、エンヴエローブ糖タンパク質の1つに対して向けられたモノクロ
ーナル抗体を使用して実証することができる。
ウィルスのポリペプチドを発現する組み換えウィルスにより産生された欠損ウィ
ルス粒子をさらに特性決定するために、これらの粒子は、高い速度遠心により、
[3sS]−メチオニンの存在下に組み換えウィルスで感染した細胞の培地から
分離することができる。培地の遠心から生ずる沈澱を再懸濁し、そして沈澱およ
び上澄み液の両者を適当な抗血清で免疫沈澱させて、各分画の中に存在するウィ
ルスのポリペプチドを分析することができる。例えば、HIVまたはSNVのポ
リペプチドを発現する組み換え体の場合において、ヒト抗hjc抗血清(ワクシ
ニア/HIV組み換え体について)またはアカゲザル抗SIV抗血清(ワクシニ
ア/SIV組み換え体について)をこれらの分析に使用することができる。
HIVまたはSIVのenvおよびgagポリペプチドを同時発現する組み換え
ウィルスの場合において、沈澱はレトロウィルスの粒子が形成する場合エンヴエ
ローブおよびコアの両者のポリペプチドを含有するであろう。実施例に記載する
ように、この実験をHIVまたはSIVのenvおよびgagのポリペプチドを
同時発現するワクシニアの組み換え体を使用して実施したとさ、沈澱は、これら
のポリペプチドが欠損しドロウ丁′ルス粒子にγ−::゛・ブlIングした場合
、envおよびgagの雨音のポリペプチドを含りし忙。対照的に、」二澄み液
はエンヴエローブ糖タンパク質gpi20のみを含有した。
培地の欅心から生ずる沈澱中の物質をさらに特性決定するために、(2澱を再懸
濁し、そしてスフ[]−スの勾配で分析した。次いで、勾配を分画(7、そシ、
1て分画を適当な抗血清で免疫沈澱させた。これらの実験は、沈澱が欠損ウィル
ス粒子1′″・ついて期待する密変においてバンドを含有すSかど・5かをを示
す。
、=れらの方法を1.tだ、使用して、同一の感染した細胞の中4こ存在す62
一つの異なるウィルスにより指令されたウィルスのポリペプチドの発現が、欠損
ウィルス粉Fを産生するがどうかイー決定′よろ、二とができる。
例ズば、これらの実験は、ga+24を発現する1−ンの組み換え体およびel
l V−を発現する第2の組み換え体で生体外で同時感染した細#j2・と使用
り、2−で、実施することブバできる。enX″l□〕よびgagの両名のポリ
ペプチド1)tII−の細胞中の同時の発現は、単一・の2価の組み換えウィル
ス1こよるか、あるいはf)−)の異なるl (Illiのつ1ルス1、より指
令さ寸するかにかかわら4″、・す1ルスで1′、・−ン・−ドされた工:・ヴ
工t:j−−−−7’糖)7:、・バク質4々杓するエンヴ、。[l−9に、:
!、) Iti!’)囲まれた、gagボ11ベブ千トメ′11・”1.;
、5ツバ−・バーン質のコア侘含%−′4−るへ:拝jしi−[:l r:t
4ルス粒子をJF4+戊づ5ことが期待されるである・)。
7、ワクf−:/
大損ル自己増殖性つイルス粒4に自己アセンブリli・することができる異種ウ
ィルスの抗原を発聯する生きているtIIみ換えウィルスのベニ7ターは、異種
の欠損ウィルス粒子を発現するために使用するウィルスのベクターがワクチンし
た宿主をg染するが、その宿主中で有意の病気を引き起こない場合、感染に感受
性のヒトまたは動物をワクチン接種するために使用することができる。このよう
な温和なベクターの例は、ある種のボックスウィル71、アデノウィルスまたは
ヘルペスウィルスを包含する。
例えば、生きている組み換え体ワクS/ニアウィルスでワクチン接種した後、宿
主内でウィルスの複製が起こる。複製の間、ウィルスの遺伝子は組み換えウィル
スの遺伝子の補体と一緒に発現される。こうして、免疫化後の2週の間、生きて
いる組み換えウィルスが復製されているとき[フエンナー(Fenner) 、
F、 ウィルス学(Virolog3’)、フイールズ(Fields)曙、レ
イブン・プレス、ニューヨーク、1985、pp、661−684] 、ウィル
スの抗原は宿主の免疫系に、真性カウイルスの感染における抗原の提示を密接に
まねる方法で、すなわち、自然フィルスl:極め”C類似する欠損非自己増殖性
ウィルス粒子として、提示することができる。遊離の粒子としておよび組み換え
ウィルスで感染し7た細胞に関連して反復して提示されたウィルスの抗原は、免
疫系をプライミングし、てウィルスの感染の初期の事象の間、ウィルスを認識し
ぞしてそれを排除する潜在的能力を有することができる。
あるいは、これらの組西換えベクターのウィルスにより産生された欠損ウィルス
粒子は、組み換えベクターのウィルスで生体外で感染した細胞から、およびこれ
らの感染した細胞の培地から分離し、そしてウィルスの感染に対して感受性の個
体のワクチン接種のためにそれら自体使用することができる。これらの粒子は、
自然のウィルスに類似するが、感染性つ・rルスの遺伝子物質を含有しないであ
ろう。結局、それらは普通の殺したつ1ルスのワクチ〉調製物の利ぐ久を扉供す
る リタ千、・・接種宿主の免疫系(こ免疫歴性抗壓を確実シ:提示4−6能力
っ同時lご、このような粒j′・は感染の防止のためのワクチンとして殺し、た
ウィルスの使lI]に討Vる一L慄な“′入点を回避し、こ、11らのへ点fl
、子哩−たウィルよの調製物の不完鬼な不活性化の危険性および、4もを種のウ
ィルス、例えば、1ノドロウ、イル人の場合IJついてのよフ(ご、血清陰性の
個体の中への完全へrリイル、−のゲノム(例えば、HI V ゲノム)を導入
j゛る−とに気が進j、ない、−とを包含する。
、’″′、:11.)5の!(損つイr1ス粒子)−利用4゛乙ワクチン組成物
は、一般4こ、製剤学的に許容されつるベヒクル中の免疫化1のウィルス粒子か
らなり「1サ−1,:、 、)3う。j’7 パ’j〉・は揚与記ρう物と適へ
性の方法゛、Th 、かつ治療学的に1効でありか′、)免疫原性である。よう
な懺’?:”13.、 ’i ;リ−1、S′eあてど)。
最り帽、−1精製!2.た粒子は、生きている組み換えウィルスとの組ろ合わ1
シ゛にむいて、e?ンシト゛ワクチン接種のプロト」ルの へ仏分、として、土
中な免役化/11jとし2−使用し、次いでrtきている組み換え+7.1ル2
Z、でワク−f−。
接種−(1” <′、か、あるいは生きていS組みV!え「゛)・1゛ルスて゛
1ニ安なワ゛ン千ン接*、n i、uに合訂の免吟尾・答を促ユi1;ずSたと
)lこ使用場−る。−とカニできイ・。、5B、’、に、 ti ’)イルス粒
tにrセンプリンク′オニ・ことが、−きるつ1′ルスの抗11;(を発仰セ・
ユ)祖み換え白、イル人の市療学的f・8二用;lら区)組み換えウィルスに9
jり産生された欠損ウィルス粒子の治療学的使用免疫イ1、が感染に対1丁イ゛
イ護する、−とができない場合、前に感染した個体の免疫化は個体内のそり)ウ
ィルスの潜伏期間を延長することかでさろう長い潜伏期間により特性決定さf+
だ・ノイルスの感染、例えば、F目Vの感染の場合においてとくに重要でありこ
とがある。HIVウィルスの感染と臨床的AIDSの発生の間の長いインキュベ
ーション時間は、健康お、ノ゛び病気Jこよる衰退期とともに持続する初期の感
染に対する応答のためであることであろう。そうである場合、レトロウィルス様
粒子を産生するH I V抗原/親つイルス組み換え体で免疫化するか、あるい
は精製された粒子それら自体で免疫化することによって免疫応答を促進すること
は、病気の発生を防止し、そして感染性を減少することができる[ソーク(Sa
Ik) 、1987、ネイチャー(Nature)、327:A73]。
9、ター9チーノド(t a rge t t eci)薬物の送達のための欠
損ウィルス粒子の治療学的使用
欠損非自己増殖性ウィルス粒子は、また、ある種の薬物(例えば、細胞障害性薬
物1、抗ウィルス剤)をウィルス受容体を有する細胞に送達す5ノ・めに使用す
ることができる。このような薬物は、この分野において知らオ(t、′いる技術
により、ウィルス粒子の外側にカップリングするか、あるいは標的細胞内に組み
込み、そして標的細胞に高い特異性で送達する二とかで人る。例えば、細胞障害
性薬物を欠損HI V粒子にカッブリジグ!51、ぞして高度の特異性をもって
CD 4°T細胞に送達することができる。なぜなら、これらの粒子上に存在す
るHTVエンヴエローブ糖夕゛、バク負′は特異的にかつ高い親和性でCn4分
子に結合4゛るからである3、同様に、ポリオウィルスは、例えば、咽頭および
腸の細胞に優先的に結合し12.二うしてこれらの細胞に対する特異的因子の送
達を指令するために使用することができる。
]0、ウィルス様粒子の診断的使用
免疫原性のウィルス様粒子を使用してウィルスの感染を診断することができる。
粒子を使用して、ヴイリオン上の種々のエピトープを認識するモノクローナル抗
体およびポリクローナル抗血清のパネルをレイズ(raise)することができ
る。これらのモノクローナル抗体および/またはポリクローナル抗体は、イムノ
アッセイのために、個々にまたは一緒に捕捉抗体として使用して、尿、血液また
は糞便中のウィルスの存在を検出することができる。
あるいは、粒子それら自体はイムノアッセイのための抗原として使用して、尿、
血液または糞便中の抗体の存在を検出することができる。と(に好ましいイムノ
アッセイは固相の免疫測定アッセイ(酵素の放射能の測定)である。このような
アッセイにおいて、ウィルス様粒子を固相上に固定化して免疫吸着性を提供する
。固相の免疫吸着の使用のための技術はこの分野において知られている。
次の実施例によって、本発明をさらに説明する。
E、coli菌株MC1061[カサダバン(Casadaban)およびコラ
ヘン(Cohen) 、1980、ジャーナル・オブ・モレキ。
シー・バイオロジー(J、Mo1゜Biol、)、工38:1793を、すべて
のプラスミドの増殖のための宿主として使用した。サルの腎臓の細胞系B5C−
40[ブロックマン(Brockman)およびナサンス(Na thans)
、1974、プロ/−デインゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サ
イエンシズ(Proc、Natl、Aca−)ヒト細胞系Hu143TK−”[
バチJ−/ティ(Bacche t t i)およびグラハム(Graham)
、1977、プロシーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ町オブ・サイ
エンシズ(Proc、 Na t I。
Acad、Sc i、)USA、ヱ4:1590]およびウサギ腎臓の細胞系R
K13 [ATC(ltccL37 :ベーラ(Beale)ら、1963、ラ
ンセット(Lance t) 、2 : 640]をワクシニアノ感染およびト
ランスフェクションに使用した。
ワクシニアウィ/lzス菌株NYCBH(ATCC#VR−325) および2
9に一1acZ+菌株vABT33 (参照、米国特許出願第205゜189号
、1988年6月10日提出、その教示を引用によってここに加える)を、生体
内の組み換えのための親ウィルスとして使用した。
懸
制限酵素は、ニュー・イングランド・バイオラプス(New England
Biolabs)またはベーリンガーー?ンヘイム(Boehringer M
annheim)から入手した。DNAポリメラーゼの大きい断片(クレノー)
はユナイテッド・スティッ・バイオケミカル・コーポレーション(United
5tates Biochemical Corp、)から入手し、T4ポリ
メラーゼはニュー・イングランド・バイオラプス(New England B
iolabs)から入手し、モしてT4 DNAリガーゼはベーリンガー・マン
ヘイム(Boehringer Mannheim)から人手した。
分子クローニングの手順
制限酵素の消化、DNA断片およびプラスミドの精製、クレノーによるDNAの
処理、T4 DNAポリメラーゼ、リガーゼ、またはリンカ−およびE、col
iの形質転換は、本質的に記載したように実施した[マニアチス(Man i
a t i s)ら、分子クローニング:実験室のマニュアル(Molecul
ar Cloning:A Laboratory Manual)、コールド
・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−、コールド−ハーバ−(Cold Sp
ring HarborLaboratory)、)−ルド・スプリングTハー
バ−(Co I dSpring Harbor)、ニューヨーク、1982、
ここに引用によって加えるコ。
ポリヌクレオチドの突然変異誘発は、ブランディス大学(Brand6is U
niversity)の生物学部からから入手した合成オリゴヌクレオチドを使
用して、アマ−ジャム(Ame r s h am)により供給した試薬して実
施し、そしてそれらの試薬を製造業者の指示に従い使用した。
ワクシニアウィルスの組み換え体の調製ウィルスの感染、トランスフェクション
、プラークの精製およびウィルスの増幅は本質的に記載したように実施した[ス
ピロポウロス(Spyropou 1os)ら、1988、ウィルス字詰(J、
Virol。
gy)、旦2:1046]。29に十組み換え体を選択し、モしてRK13細胞
上で精製した(参照、米国特許出願第205.189号、1988年6月10日
提出、その教示を引用によってここに加える)。TK−組み換え体を選択し、そ
して50ミリモルのブロモデオキシウリジンの存在下に精製した。
ワクシニアのウィルスのゲノムの分析
DNAを記載したようにワクシニアウィルスで感染した細胞から抽出し[ニスポ
ンド(Espos i to)ら、1981、ジャーナル・オブ・ビoロジカル
・メソッズ(J、Virol、Methods)2:175〕そして記載されて
いるように制限酵素の消化およびサザン・ハイブリダイゼーションにより分析し
た[マニアチス(Maniatis)ら、分子クローニング:実験室のマニュア
ル(Molecular Cl。
ning:A Laboratory Manual)、コールド・スブリン′
グ・ハーバ−・ラボラトリ−、コールド・ハーバ−(ColdSpring H
arbor Laboratory)、=7−ルド嶺スプリング+ハーバー(C
old Spring Harbor)、−ニーヨーク、1982]。
冬とゲ2!盆折
黒色プラークのアッセイおよび免疫沈澱の分析は、本質的に記載されているよう
にしで実施した[スミス(Smith)ら、1983、プロシーディンゲス・オ
ブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシズ(Proe、Nat 1.A
cad、Sci、)USA、80: 7155およびウィッテク(Wittek
)ら、1984、ウィルス字詰(J。
Lo、501号、1986年9月23日提出、その教示を引用によってここに加
える。黒色プラークおよび免疫沈澱のアッセイのために、全SIVに対するアカ
ゲザルのモノクローナル抗体、または全HrVに対するヒトの抗血清を使用した
。免疫沈澱の分析のために、ワクシニアで感染した細胞を[3H]−グルコサミ
ンまたは[3sS]−メチオニンで標識した。
組み換え体のワクシニアに対して向けられたレトロウィルスの粒子の形成の生物
学的分析
野生型または組み換えワクシニアウィルスで感染したB5C−40細胞を、免疫
沈澱分析に使用したのと同一の標識手順を使用して、[35Sl=メチオニンで
標識した。16〜18時間後、感染した細胞からの培地を集め、そして1100
0rpにおいて5分間清浄化した。生ずる上澄み液を24Kにおいて90分間5
W280−ターで遠心した。上澄み液を除去し、そして生ずる沈澱を3mlのP
BS (136ミリモルのNaCl2.7ミリモルのKCI、8.1ミリモルの
Na、HPO,,1゜5ミリモルのKH2PO,)中に再懸濁じた。上澄み液お
よび沈澱からの試料を、前の節に記載するようにアカゲザル抗SIV抗血清また
はヒト抗HIV抗血清を使用して、免疫沈澱分析にかけた。
B5C−40細胞を、前述したように、野生型または組み換えワクシニアウィル
スで10の多重度で16〜1.8時間感染した。次いで、培地を除去し、そして
感染した細胞をPBSBamF中の0.2%のゼラチン中で2回洗浄した。
免疫金の着色のために、試料をPBS、7’ゼラチン中の10%のヤギ血清中の
4℃において30分間インキュベージジンし、次いでPBS/ゼラチン中で希釈
した適当なモノクローナル抗体中で60分間インキュベージジンした。次いで、
試料をPBS/ゼラチン中で2回洗浄し、そして1%の胎児仔つ7血清、0.1
%のアジ化ナトリウムおよび5%のヒト抗体血清とともにPBS中で金(5部m
)と接合したヤギ抗マウス■gGの1:20の希釈物と60分間インキュベーシ
ョンした。細胞を再びPBS/ゼラチン中で洗浄し、た。
未処理または免疫全着色した細胞を0. 1モルのソジウム力コジレート(so
dium cacodylate)緩衝液(pH7,2)中の2.5%のグルタ
ルアルデヒド中で一夜固定し、次いで0. 1モルのソジウム力コジレート緩衝
液(pH7,2)中で2回洗浄した。次いで、試料を1%の0s0410.1モ
ルのカコジレート緩衝液(pH7,2)中で1.5時間固定し、次いでQ、1モ
ルのカコジレート緩衝液(pH7,2)中で2回洗浄した。次いで、試料を次の
等級のアルコール中で各々10分間脱水した:50゜70.80.95.100
(3X)。次いで、試料をポリプロブレンオキシドで各5分間処理し、次いで
キャップをしないバイアル内のポリプロブレンオキシド(4部)/epox81
2(6部)中で一夜処理した。次いで、試料をepox812の中に埋め込み、
そして36時間硬化した。
ソーパル・ポーター・プラム(Sorval porter Blum)MT−
2超ミクロトームで100OAで切片を切断し、アルコール性酢酸ウラニルおよ
びサトウ(S a t o)船着色[サトウ(S a t o)、J、Elec
t、Mic、(日本)1ヱ:158−1591で着色し、そしてJEOL電子顕
微鏡で見た。
実施例1 : S IV遺伝子を含有する組み換えプラスミドの構成この実施例
は、ワクシニアウィルスと生体内組み換えのためのSIV遺伝子を含有する組み
換えプラスミドの構成を例示する(生体内組み換え(IVR)ベクター)。プラ
スミドpAbT4532B%pAbT4533、pAbT4536、pAbT4
537、pAbT4574、pAbT4578、pAbT4582BSpAbT
4583およびpAbT4589の構成および構造は、米国特許出願第205.
’454号、1988年6月10日提出、に記載されている。プラスミドpAb
T4027の構成および構造は、米国特許出願第910.501号、1986年
9月23日提出、に記載されている。プラスミド4587の構成および構造は、
米国特許出願第229.343号、1988年8月5日提出、に記載されている
。前述の特許出願の教示を引用によってここに加える。
pAbT4592 (第2図):pAbT4578 (参照、米国特許出願第2
05.454号、1988年6月10日提出)をKpn IおよびEcoRIで
消化し、そして2221塩基対(bp)の断片を分離した。
この断片をKpnlおよびEcoRIで消化したpAbT4587に結合して、
pAb74592を得た。pAbT4592はワクシニアウィルス中のSIVm
、ac251gagおよびproteaseの挿入および発現のためのベクター
である。p、6.bT4592は、ワクシニアHindIII M領域によりフ
ランキングされた、gag−prot遺伝子をワクシニア40にプロモーターの
制御下に含有する。ベクターDNAは、ワクシニア組み換え体の選択のための2
9に宿主−領域遺伝子、およびE、coli中の増殖および選択のためのバクテ
リアの複製およびアンピシリン抵抗性遺伝子を包含する。
λΔ旦工A擾、93.(第3図): pAbT4574 (参照、米国特許出願
第205.454号、1988年6月10日提出)をi<pnlおよびBamH
Iで消化し、そして2589bpの断片を分離した。この断片をBamHIで処
理しそして仔ウシアルカリ性ホスファターゼ(CI P)で処理したpAbT4
587に結合して、1)AbT4593を得た。pAbT4593はワクシニア
ウィルス中のSIVma、c251envの挿入および発現のためのベクターで
ある。pAbT4593は、ワクシニアHindIII M領域中の組み換えを
指令するワクシニアDNAによりフランキングされた、env遺伝子をワクシニ
ア40にプロモーターの制御下に含有する。ベクターDNAは、ワクシニア組み
換え体の選択のための29に宿主−領域遺伝子、およびE、coli中の増殖お
よび選択のためのバクテリアの複製およびアンピシリン抵抗性遺伝子を包含する
。
pAbT4597 (第4図): pAbT4574 C参照、米国特許出願第
205.454号、1988年6月10日提出)を5aclで消化し、そして消
化したDNAをまずT4 DNAポリメラーゼで、次いでCIPで処理した。p
AbT4589をsph Iで消化し、次いでT4DNAポリメラーゼで処理し
、そして最後にSmaIで消化した。2750bpの断片を消化したpAbT4
589から分離した:この断片をSac Iで消化したpAbT4589に結合
してpAbT4597を産生した。pAbT4597をワクシニアウィルス中の
SIVmac251envおよびgag−protの挿入および発現のためのベ
クターである。pAbT4573は、ワクシニア30にプロモーターの制御下に
gag−prot遺伝子、およびワクシニア40にプロモーターの制御下にen
v遺伝子を含有する。これらの遺伝子は、ワクシニアHjndIII M領域中
の組み換えを指令するためのワクシニアDNAによりフランキングされている。
ベクターDNAは、ワクシニア組み換え体の選択のための29 K宿主−領域遺
伝子、およびE、coli中の増殖および選択のためのバクテリアの複製および
アンピシリン抵抗性遺伝子を包含する。
実施例2 : HI V遺伝子を含有する組み換えプラスミドの構成pSVHe
nvおよびpBF128は、HIV−1菌株BIOゲノムの一部分を含有するプ
ラスミドである:これらはイー・アイ・デュポン社から得た。pHXBc2はH
IV−1菌株H3B2ゲノムの一部分を含有するプラスミドであり、バーバード
・メディカル・スクールのジョセフ・ソドロスキー(Joseph 5odro
ski)博士から入手した。プラスミドpAb74532BおよびpAbT45
54の構成および構造は、米国特許出願第205,454号、1988年6月1
0日提出、に記載されている。プラスミドpAbT4007の構成および構造は
、米国特許出願第910,501号、1986年9月23日提出、に記載されて
いる。前述の特許出願の教示を引用によってここに加える。
pAbT164 (第5図)ニブラスミドpBF128をNcoIおよびBam
HIで消化し、そしてDNAポリメラーゼのクレノー断片で処理した;HIV−
1gag遺伝子を含有する1700bpの断片をこの消化から分離した。この断
片を、Samlで消化しモしてCIPで処理したプラスミドpAbT4532B
に結合して、pAbT164を産生した。
pAbT164はワクシニア中のH[V−1gagの挿入および発 現のための
ベクターである。pAbT164は、ワクシニア7.5にプロモーターの制御下
にHIV gag遺伝子、DNA領域はワクシニア中の組み換えを指令するワタ
シニアTK遺伝子をフランキングする、ワクシニア組み換え体の選択のためのワ
クシニアBamFプロモーターの制御下にI acZ遺伝子、およびE、col
i中の増殖および選択のためのバクテリアの複製およびアンピシリン抵抗性遺伝
子を包含する。
pAbT4603 (第り殴と
プラスミドpSVHenvをXbalおよびXholで消化し、そしてDNAポ
リメラーゼのクレノー断片で処理した・HIV−1env遺伝子を含有する27
00bpの断片をこの消化物から分離した。この断片をS a m Tで消化し
そしてCIPで処理したプラスミドpAbT4007に結合して、プラスミドp
AbT167を産生した。
ブラスミI″p A h 7 l 57をKpnlおよびXbarで消化し、そ
し。
てHIV−1env遺伝子の5°末端を含有する225bpの断片をこの消化物
から分離した。この断片を、XbarおよびKpnlで消化しモしてCIPで処
理したm13mp18バタテリオファージDNA [二ニー・イングランド・バ
イオラプス(New England Bi。
1abs)]に結合して、pAbT220を産生した。env遺伝子の5゛末端
を、材料および方法に記載するように、オリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発
により5′非解読配列の大部分を修飾して除去した。
このオリゴヌクレオチド5’ −GAAAGAGCAGTAGACAGTGG−
3° (パンディス大学生物学部)を使用して、Acc!部位をenv解読配列
のATG開始コドンからほぼ10bp上流に挿入して、pAbT221をつくっ
た。pAbT221をEcoRIおよびHindIIIで消化し、そしてほぼ2
30bpの断片を分離した。これをEcoRIおよびHindIIIで消化しそ
してCIPで処理したプラスミドpEMBL18+ [デンテ(Dente)ら
、1983、核酸の研究(Nucleic Ac1ds Re5earch)、
11:1645)に結合して、プラスミドpAbT8536をつくった。
pAbT8536をAcc Tで消化し、DNAポリメラーゼのクレノー断片で
処理し、次いでKpnIで消化した。env遺伝子の突然変異誘発した5゛非解
読領域を含有する138bl)の断片をこの消化物から分離した。プラスミドp
AbT167をKpnlおよび5aclで消化し、モしてenv遺伝子の大部分
を含有する2461bpの断片を分離した。pΔbT8536からの138bp
の断片およびpAbT167からの2461bpの断片を、Sma Tおよび5
aclで消化しそしてCIPで処理したpAbT4554に結合して、プラスミ
ドpAbT8539をつくった。
pAbT8539をEcoRIで消化し、モしてenv遺伝子を含有する268
2bpの断片を分離した。これをEcoRIで処理しそしてCIPで処理したp
Ab74587に結合して、pAbT4603をつくった。
pAbT4603はワクシニアウィルス中のHIV−1envの挿入および発現
のためのベクターである。pAbT4603は、ワクシニアHindIII M
領域中の組み換えを指令するワクシニアDNAによりフランキングされた、en
v遺伝子をワクシニア40にプロモーターの制御下に含有する。ベクターDNA
は、ワクシニア組み換え体の選択のための29.に宿主−領域遺伝子、およびE
、coli中の増殖および選択のためのバクテリアの複製およびアンピシリン抵
抗性遺伝子を包含する。
pAbT621 (第7図)
7Δ、プラスミドpAbT598 (第7a図)の構成。pHXBc2Jソドロ
スキー(Sod rosk D ら、ネイチャー(Na t u r e)、よ
び5acIで消化して、ヌクレオチド位置715−6002に相当する断片を解
放した。次いで、このDNAを74 DNAポリメラーゼで処理した。HIV−
1gagおよびpotを含有する5287bpの断片をこの消化物から分離し、
そしてSma Tで消化しそしてCIPで処理したpAbT536に結合して、
プラスミドpAbT599をつくった。
pAbT599をNdelで消化し、T4 DNAポリメラーゼで処理し、次い
でさらにBglIIで処理し、そして3027bpの断片をこの消化物から分離
した。この断片をKpn IでpAbT164を消化した後分離した8864b
pの断片に結合し、T4 DNAポリメラーゼで処理し、そしてさらにBglI
Iで消化して、プラスミドpAbT598をつくった。
B、、pAbT621 (第7b図)の構成。
pAbT4603をpstrで消化し、T4 DNAポリメラーゼで処理し、そ
してさらに5alIで消化し、そしてこの消化から生ずる6326bpの断片を
分離した。pAbT598をBamHIおよびBaIIで消化し、そして183
8bpの断片を分離した。pAbT4554を5alIおよびBamHIで消化
し、そして420bpの断片を分離した。これらの3つの断片を一緒に結合して
pAbT621をつくった。
pAbT621はワクシニア中のHIV−1envおよびgag−protの挿
入および発現のためのベクターである。pAbT621は、ワクシニア40にプ
ロモーターの制御下にHIV env遺伝子、ワクシニア30にブOモーターの
制御下にSIV gag−prot遺伝子を含有する。これらの遺伝子は、ワク
シニアHindII’l M領域中の組み換えを指令するワクシニアDNAによ
りフランキングされている。
ベクターDNAは、ワク/ニア組み換え体の選択のための29に宿主−領域遺伝
子、およびE、coli中の増殖および選択のためのバクテリアの複製およびア
ンピシリン抵抗性遺伝子を包含する。
生体内の組み換えは、組み換えワクシニアウィルスをつくる方法である[ナンカ
ノ(Nank、ano)ら、1982、プロシーディンゲス・オブ・ナショナル
・アカデミ−・オブ・サイエンシス(Proc、Nat 1.Acad、Sc
i、)USA、79 : 1593 :パオレッティ(Paoletti)およ
びパニカリ(Pan i ca I i) 、米国特許第4゜603.112号
〕。これらの組み換えウィルスは、ワクシニアウィルスで感染した細胞の中に問
題の遺伝子を含有するDNAをトランスフェクションすることによって形成する
。小さい百分率の子孫のウィルスは、ワクシニアのゲノム上の特定の部位に組み
込まれた問題の遺伝子を含有するであろう。これらの組み換えウィルスは外来遺
伝子を発現することができる[バニカリ(Pan i ca I i)およびパ
オレッテイ(Pa。
Ietti)、1982、プロノーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−
・オブ・サイエンシス(Proc、Nat 1.Acad、Sci、 )USA
、79 : 4927 ;パニカリ(Panica I i)ら、1984、プ
ロシーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・Hindlll M
領域におけるワクシニアウィルスのゲノムの中に域に位置する29に宿主−領域
遺伝子に基づく選択の方法[ギシード(Gillard)ら、1986、プロシ
ーディンゲス・オブ・ナショナル・アカデミ−・オブ・サイエンシス(Proc
、Natl、Acad、Sc i、)USA、83 : 5573]を使用した
。組み換えワクシニアウィルスVA))T33は、29に遺伝子の一部分の代わ
りに!aI?Z遺午子を含有する。このIacZの挿入は29に遺伝子の機能を
破壊する;したがって、vAbT33は29に遺伝子産生物を必要とするRK1
3細胞上で増殖することができない。さらに、vAbT33は、1acZ遺伝子
の存在のために、ベーターガラクトシダーゼ、ブロウガル(Bluoga 1)
、のための発色性基質の存在下に許容性細胞上で青色のプラークを形成する。
参照、米国特許出願第205.189号、1988年6月10日提出。
IVRベクターpAbT4592、pAbT4593、pAbT4597、pA
bT4603、およびpAbT621を、ワクシニアウィルスvAbT33で感
染したしたB2O−40細胞の中にトランスフェクションした(参照、材料およ
び方法)。組み換えウィルスをRK13細胞上でブロウガルの存在下に白色プラ
ークとして選択した。プラークを取り上げそして精製し、そして、サザン分析に
より、適当なSIVmac251またはHIV−1遺伝子を含有することが示さ
れた・vAbT252はSIV gag−proLを含有する;vAbT271
はH[V−1envを含有する: vAbTは253SIV envを含有する
; vAbT264はSIV envおよびSIV gag−protの両者を
含有する:そしてvAbT344はHIV−1envおよびgag−protを
含有する。
Hjndlll J領域に位置する、TK位置においてワクシニアウィルスのゲ
ノムの中にSIVmac251またはHrV−1遺伝子を挿入するために、ブロ
モデオキシウリジン(BUdR)に対するTK’ウィルスの感受性に基づく選択
方法を使用した。ブロモデオキシウリジンはTK″″に対する致死的であるが、
組み換え体、TK−を増殖させる。したがって、生体内組み換えのためのプラス
ミドは、TK’ワクシニアウィルスで感染したHu14TK−の中にトランスフ
ェクションされる(参照、材料および方法)。
さらに、TKにおける挿入のためのプラスミドベクターは、ワクシニアB a
m Fプロモーターの制御下にE、coli 1acZ遺伝子を含有する:所望
の外来遺伝子を含有する組み換えウィルスは、また、1aeZ遺伝子を含有し、
したがワてベーターガラクトシダーゼ、ブロウガル、の存在下に増殖させるとき
、青色のプラークを産生ずる。こうして、右下に青色のプラークとして同定する
ことができる。
TK位置に挿入されたH I ■−,1遺伝子を含有する組み換えワク/ニア組
・イルスを構成するために、野生型NYCBHウィルスをベクターp、A、 b
T 164との生体内組み換えのための親ウィルスとして使用して、組み換え
ウィルスvAbr1.41を産生し、た。
SrVmae25]、er+v、、gag−protおよびpo+を含有する組
み換えワクシニアウィルスを構成するために、v A b T 264をpAb
T4583との生体内組み換えのための親ウィルスとして使用し、pAbT45
83は、ワクシニアTK遺伝子に対して相同性のDNAによりフランキングされ
た、ワクシニア40にプロモーターの制御下にSIVmac251 pol遺伝
子を含有するIVRベクターである。
このベクターは、米国特許出願第205.454号、1988年6月10日提出
、に記載されている。これは組み換えウィルスvAbT277を生じ、このvA
bT277は、ワクシニア40にプロモーターの制御下にTK位置に挿入された
SIVmac251 pal遺伝子、および、HindIII M位置に挿入さ
れた、それぞれ、40におよび30 Kのワクシニアプロモーターの制御下に、
SIVmac251 envおよびgag−prot遺伝子を含有する。
実施例4:組み換えワクシニアウィルス中のSIVまたはHIV−1抗原につい
ての黒色プラークのアッセイ
材料および方法に記載されている黒色プラークのアッセイは、ワクシニア感染細
胞により発現されたタンパク質を検出することができる、その場の酵素に基づく
イムノアッセイである。このアッセイはワクシニア組み換え体vAbT252、
vAbT253、vAbT264およびVAbT277について、ロナルドC,
デスロシアース(Rona、IdC,Desrosiers) [ニュー・イン
グランド・リージョナル・プライメイト・リサーチ・センター(New Eng
land Regional Primate Re5earch Cente
r)、マサチュセッツ州すウスボロウ]から入手したSI■感染アカゲザルを使
用して実施し、そしてvAbT141およびvAbT344について、ジョン・
スリパン(John 5ullivan)[ユニ)(−シティ・オブ・マサチュ
セッツ・メディカル・スクール(Universttyof Massachu
setts Medical 5chool)、マサチュセッツ州つォルセスタ
ー]から入手した、HIV−1感染したヒトの患者からの血清を使用して実施し
た。
陰性の対照ウィルスNYCBHまたはvAbT33により形成したプラークは、
細胞の単層それ自体上のバックグラウンドと一致するバックグラウンドの色のみ
を示した。ワクシニア組み換え体vAbT252、・、・、へbT253、 %
= 、A、b T 26 4、 v A b T 2 7 7 、 v、Ab”
、141 、vAbT271およびvAbT344により形成したプラークは明
確な暗い紫色に着色し、これは細胞の単層上のバックグラウンドより非常に暗く
、これらの組み換え体がSIVmac251またはHIV−1抗原を強く発現す
ることを示す。
実施例5:組み換えワクシニアウィルスからのSIVmac251またはHIV
−1抗原の免疫沈澱
免疫沈澱の分析は、組み換えワクシニアウィルスvAbT252、VAbT25
3、vAbT223、vAbT264、vAbT277、VAbT141、vA
bT271およびvAbT344で感染した細胞について、材料および方法に記
載するように、実施した。表1に要約する結果が示すように、これらのワクシニ
ア組み換え体の各々はエンコードされたポリペプチドを発現する。
表1
組み換えワクシニアウィルスからのSIVmac251またはHIV−1ポリペ
プチドの免疫沈澱
p55. p40. p24. p15p64. p53. plO
p55. p40. p24. p17実施例5に記載する発現の分析は、挿入
されたH I VまたはSIV遺伝子によりエンコードされるポリペプチドの合
成を確証するために使用できるが、これらのポリペプチドが欠損ウィルス粒子に
生体内で自己アセンプリルするかどうかという問題を取り扱わない。env、g
ag−protまたはenvおよびgag−protの両者を発現するワクシニ
ア組み換え体が感染した細胞の培地の中に解放されるレトロウィルス様粒子を産
生ずるかどうかを決定する1つの手段として、遠心により沈澱させることができ
るenvおよび/またはgagポリペプチドを含有、する構造体の存在について
培地を検査した。B2O−40細胞をSIV/ワクシニア組み換え体vAbT2
53 (env) 、vAbT252(gag−prot)またはvAbT26
4 (envおよびgag−prot)で感染するか、あるいはHI V/ワク
シニア組み換え体vAbT141 (gag) 、vAbT271 (env)
またはvAbT344(en’vおよびgag−prot)で感染した。感染し
た細胞を材料および方法に記載するように[358]−メチオニンで標識した。
感染の16〜18時間後、培地を集め、そして11000rpにおいて5分間遠
心することによって清浄化した。生ずる上澄み液を取り出し、そして8W280
−ター内で24Kにおいて90分間遠心した。次いで、上澄み液を取り出し、そ
して生ずる沈澱を1mlのPBS緩衝液(13ミリモルのNaC1,2,7ミリ
モルのKCL8.1ミリモルのNazHPO6,1,5ミリモルのKH2PO4
)の中に再懸濁した。上澄み液およ 。
び沈澱からの試料を、材料および方法に記載するように、SIV/ワクシニア組
み換え体についてアカゲザル抗SIV抗血清を使用するか、あるいはHIV/ワ
クシニア組み換え体についてヒト抗HIV抗血清を使用して、免疫沈澱分析した
。結果が示すように、envおよびgag−prot組み換え体vAbT264
およびvAbT344について、上澄み液はSIV/ワタシニア組み換え体の増
殖の間に多分培地の中に落ちたgp120にのみを含有する゛[キエ−(Kie
ny)ら、1980]が、沈澱はgp120ばかりでなく、かつまたenv遺伝
子エンコードされたgp32 (vAbT264について)またはgp41 (
vAbT344について)ならびにgagLン’:J−ドされたp55、p40
、p24およびp15を含有した。これらの結果が強く示唆するように、組み換
え体ワクシニアが産生したenvおよびgagタンパク質は粒子または複合体に
自己アセンプリルする。
それぞれ、HI V g a gまたはSIV gag−protタンパク質に
のみを発現するvAbTl 41またはvAbT252について、沈澱した物質
はgagタンパク質を含有し、これはgagポリペプチドの自己アセンブリーに
よる未成熟のウィルス粒子の形成と一致した。対照的に、それぞれ、SIVまた
はHIV env糖タンパク質にのみを発現するvAbT253およびvAbT
271について、免疫沈澱可能なポリペプチドは沈澱の中に存在しなかったが、
実質的な量のI)g120は上澄み液の中に存在した。これらの結果は次の予測
と一致した。すなわち、gagポリペプチドが、単独であるいは他のウィルスの
構造タンパク質、例えば、env糖タンパク質と組み合わせて発現されるときに
のみ、欠損ウィルス粒子の形成は起こる。
実施例7:電子顕微鏡検査を使用する、SIVまたはHIV−1ポリペプチドを
発現する組み換えワクシニアウィルスによるレトロウィルス粒子の形成の実証
gag、gag+env、またはgag+env+po Iポリペプチドを発現
する組み換えワクシニアウィルスはレトロウィルス様粒子にアセンブリングする
ことができるという追加の確証として、これらの組み換えワクシニアウィルスで
感染し7た細胞のリゼイトを上の材料および方法の節11.詳細に袋間した方法
により電子顕微鏡で視的に検査した。
これらの実験において次のことが示された・gag(\FAbT1.41または
vAbT252) 、cnv+gag (vAbT223、]、r A ))
T264またはv A b T 344 )またはenv+gag+pol (
vAb丁”277)を発現する;ノクンニr組み換入体は1.′1−ンヴエロー
ブト(enveloped)レトロウィルス粒子の形成を生ずる;gagおよび
e 11 Vポリペプチドを同時発現する組み換え体(vAbT223、vAb
T264、v 、A b T 344およびvAbT277)において、粒子の
エンヴエローブは、粒子の表面上の糖タンパク質の「スパイク」の存在により示
されるように、エンヴエローブ糖タンパク質を含有する。SIV組み換え体v
A b T 223について、粒子の表面上のSTvエンヴ工ローブ糖タンパク
質の存在は、また、エンヴエローブ糖タンパク質の1つに対して向けられたモノ
クローナル抗体usb、免疫金の電子顕微鏡検査で実証された。
プラスミドの受託
プラスミドE、coli \4C1061p、AbT4597およびE。
col i MCI()61 pAb丁621は、グダベスト条杓の規定に従い
、アメリカン・ダイブ・カルチャー・コし/クション(the Amcriea
n Type Cu1ture Co11ec日on)米国マリ・rランド州ロ
ア・クビレ、に1.989年5月31日に受託された。
これらのプラスミドは、モわぞれ、受は入れ番号57998および67990を
割り当てられた。
同等の実施態様
当業者は、ここに記載オろ本発明の特定の実施態様に対して多数の同等の実施で
様を認識するか、あるいはEl常の実験を越えない実験庄使用して確証すること
ができるであろう。このような同等の実施態様は次の請求の範囲に包含される。
、
FIG、 5
FIG、 6Co、゛。
FIG、 7B
国際調査報告
、−1−l−Il−−1−−−=、、1.−、−、?CT/υS 90103I
34国際調査報告
US 9003134
SA 38107
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、真核生物の細胞において、欠損非自己増殖性ウイルス粒子に自己アセンブリ ーすることができる異種ウイルスのポリペプチドをエンコードする少なくとも2 つの遺伝子を同時発現する組み換えウイルスのベクター。 2、組み換えウイルスはボックスウイルスである、上記第1項記載の組み換えウ イルスのベクター。 3、組み換えポックスウイルスはワクシニアウイルスである、上記第2項記載の 阻み換えウイルスのベクター。 4、異種ポリペプチドをエンコードする遺伝子はレトロウイルスの遺伝子である 、上記第1項記載の組み換えウイルスのベクター。 5、レトロウイルスの遺伝子はレンチウイルスの遺伝子である、上記第4項記載 の組み換えウイルスのベクター。 6、レンチウイルスはヒトの免疫欠損ウイルスである、上記第5項記載の組み換 えウイルスのベクター。 7、遺伝子はHIVgagおよびenvの遺伝子またはその修飾変異型である、 上記第6項記載の組み換えウイルスのベクター。 3、レンチウイルスはサルの免疫欠損ウイルスである、上記第5項記載の阻み換 えウイルスのベクター。 9、遺伝子はSIVgagおよびenvの遺伝子またはその修飾変異型である、 上記第6項記載の組み換えウイルスのベクター。 10、真核生物の細胞において、ヒトの免疫欠損ウイルスのgagおよびenv の遺伝子を同時発現する組み換えウイルスのベクター。 11、HIVpol遺伝子またはその修飾変異型をさらに発現する、上記第10 項記載の組み換えウイルスのベクター。 12、欠損非自己増殖性ウイルス粒子に自己アセンブリーすることができる異種 ウイルスのポリペプチドをエンコードする少なくとも2つの異なる遺伝子を同時 発現する組み換えウイルスのベクターにより感染された真核生物の細胞により発 現された、自己アセンブルド欠損非自己増殖性ウイルス粒子。 13、組み換えウイルスのベクターはポックスウイルスである、上記第12項記 載のウイルス粒子。 14、ポックスウイルスはワクシニアウイルスである、上記第13項記載のウイ ルス粒子。 15、異種ウイルスのポリペプチドをエンコードする遺伝子はレトロウイルスの 遺伝子である、上記第12項記載のウイルス粒子。 16、レトロウイルスの遺伝子はレンチウイルスの遺伝子である、上記第15項 記載のウイルス粒子。 17、レンチウイルスの遺伝子はHIV増殖培地またはその修飾変異型である、 上記第16項記載のウイルス粒子。 18、レンチウイルスの遺伝子はSIV遺伝子またはその修飾変異型である、上 記第16項記載のウイルス粒子。 19、異種ウイルスのポリペプチドをエンコードする遺伝子はピコルナウイルス である、上記第12項記載のウイルス粒子。 20、ピコルナウイルスはポリオウイルスである、上記第19項記載のウイルス 粒子。 21、レトロウイルスのエンヴェロープのポリペプチドおよびレトロウイルスの コアのポリペプチドからなる、自己アセンブルド欠損非自己増殖性レトロウイル ス粒子。 22、レトロウイルスはヒトの免疫欠損ウイルスである、上記第21項記載のレ トロウイルスの粒子。 23、レトロウイルスはサルの免疫欠損ウイルスである、、上記第21項記載の レトロウイルスの粒子。 24、HIVのgag遺伝子およびenv遺伝子を含有する組み換えワクシニア ウイルスで感染した真核生物の細胞中で発現された、自己アセンブルド欠損非自 己増磁性レトロウイルスの粒子。 25、また、HIVpol遺伝子でエンコードされたポリペプチドまたはその修 飾変異型を含有する、上記第21項記載のレトロウイルスの粒子。 26、製剤学的に許容されうるベヒクル中の免疫化量の上記第1項記載の組み換 えウイルスのベクターからなる、ワクチン接種組成物。 27、ウイルスのベクターはヒトの免疫欠損ウイルスのgagおよびenvの遺 伝子を同時発現する組み換えワクシニアウイルスからなる、上記第26項記載の ワクチン組成物。 28、製剤学的に許容されうるベヒクル中の上記第12項記載の自己アセンブル ド欠損非自己増植性ウイルス粒子からなる、ワクチン組成物。 29、ウイルス粒子はレトロウイルスのエンヴェロープおよびコアのポリペプチ ドからなるレトロウイルスの粒子である、上記第28頂記載のワクチン組成物。 30、製剤学的に許容されうるベヒクル中のヒトの免疫欠損ウイルスの自己アセ ンブリー性レトロウイルス粒子を産生する組み換えワクシニアウイルスからなり 、前記ワクシニアウイルスはHIVのgagおよびenvの遺伝子を含有する、 ワクチン組成物。 31、免疫化すべき宿主を製剤学的に許容されうるベヒクル中の組み換えウイル スのベクターを接種することからなり、前記組み換えウイルスのベクターは欠損 非自己増殖性ウイルス粒子に自己アセンブリーすることができる、少なくとも2 つの異なる異種ウイルスのポリペプチドを同時発現する、ウイルスに対して免疫 化する方法。 32、宿主はヒトである、上記第31項記載の方法。 63、ウイルスはヒトのレトロウイルスであり、そして組み換えウイルスのベク ターはレトロウイルスのエンヴェロープの糖タンパク質およびコアのポリペプチ ドを同時発現するワタシニアウイルスである、上記第32項記載の方法。 34、レトロウイルスはHIVである、上記第33項記載の方法。 35、製剤学的に許容さ机うるベヒクル中の免疫化量の上記代12項記載の自己 アせンブルド欠損非自己増殖性ウイルス粒子を宿主に投与することからなる、ウ イルスに対して免疫化する方法。 36、ウイルスはヒトの免疫欠損ウイルスであり、そしてウイルス粒子はHIV のコアおよびエンヴエローブのポリペプチドからなる、上記第35項記載の方法 。 37、ヒトの免疫欠損ウイルスのエンヴェロープおよびコアのポリペプチドから なる自己アセンブルド欠損非自己増殖性ウイルス粒子を発現する組み換えワクシ ニアウイルスを固体に接種することからなる、ヒトの免疫欠損ウイルスに対して 免疫化する方法。 38、生体内の組み換えによりウイルスのベクター中に異種ウイルスのDNAを 挿入するためのDNAベクターであって、a、ベクターを原核生物の宿主中で増 幅することができるように、複製の原核生物の由来、 b、ベクターを含有する原核生物の宿主細胞の選択を可能とするマーカーをエン コードする遺伝子、 c、ウイルス粒子に自己アセンブリーすることができる異なる異種ウイルスのポ リペプチドをエンコードする、少なくとも2つのDNA配列、各DNA配列はD NA配列の発現を指令することができる転写プロモーターに隣接して位置する、 および d、異種DNA配列が挿入され、要素cの構成体をフランキングする、ウイルス のベクターのゲノムの領域に対して相同性であるDNA配列、からなるDNAベ クター。 39、異種DNA配列はレトロウイルス遺伝子である、上記第38項記載のDN Aベクター。 40、レトロウイルスはヒトの免疫欠損ウイルスである、上記第39項記載のD NAウイルス。 41、レトロウイルスはサルの免疫欠損ウイルスである、上記第39項記載のD NAウイルス。 42、ウイルスのベクターはポックスウイルスであり、そしてフランキングDN A配列はポックスウイルスの配列に対して相同性である、上記第38項記載のD NA配列ベクター。 43、ポックスウイルスはワクシニアウイルスである、上記第42項記載のDN Aベクター。 44、上記第12項記載のウイルス粒子に連鎖されているか、あるいはその中に 組み込まれている治療剤からなる、ターゲテッド(targeted)治療剤。 45、治療剤は抗ウイルス剤または細胞障害性剤である、上記第44項記載のタ ーゲテッド治療剤。 46、ウイルス粒子はHIVのコアおよびエンヴェロープのポリペプチドからな る、上記第44項記載の治療剤。 47、製剤学的に許容されうるベヒクル中の、上記第12項記載のウイルス粒子 に連鎖されているか、あるいはその中に組み込まれている治療剤からなるターゲ チッド治療剤を投与することからなる、ウィルスが感染した細胞への治療剤の送 達をターゲッティングする方法。 48、ウイルスが感染した細胞はHIV感染CD4レセプターを有する細胞であ り、そしてウイルス粒子はHIVのコアおよびエンヴェロープのポリペプチドか らなる、上記第47項記載の方法。 49、pAbT4592、pAbT4593、pAbT4597、pAbT46 03およびpAbT621から成る群より選択されるプラスミドDNAベクター 。 50、vAbT141、vAbT252、vAbT223、vAbT264、v AbT344およびvAbT277から成る群より選択される組み換えワクシニ アウイルス。
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