JPH0576961B2 - - Google Patents
Info
- Publication number
- JPH0576961B2 JPH0576961B2 JP61177512A JP17751286A JPH0576961B2 JP H0576961 B2 JPH0576961 B2 JP H0576961B2 JP 61177512 A JP61177512 A JP 61177512A JP 17751286 A JP17751286 A JP 17751286A JP H0576961 B2 JPH0576961 B2 JP H0576961B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- glucoamylase
- powder
- gel
- filtered
- amylase
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、ポリグルカンに係り、特にグルコア
ミラーゼを高選択的に吸着精製できる架橋化ポリ
グルカンの製造方法に関する。
ミラーゼを高選択的に吸着精製できる架橋化ポリ
グルカンの製造方法に関する。
現在、ぶどう糖及び異性化糖は、殿粉をα−ア
ミラーゼとグルコアミラーゼを用いて加水分解し
て工業生産されている。このように、アミラーゼ
類(殿粉加水分解酵素群)は殿粉から有用な低分
子物質を工業生産するのに極めて有用である。
ミラーゼとグルコアミラーゼを用いて加水分解し
て工業生産されている。このように、アミラーゼ
類(殿粉加水分解酵素群)は殿粉から有用な低分
子物質を工業生産するのに極めて有用である。
一般に、酵素は酵素生産菌を液体培養して製造
される。工業用酵素製剤としては、培養濾液をそ
のまま濃縮した濃縮液か、乾燥した粉末、あるい
は分離精製して得られる濃縮液もしくはその乾燥
粉末として得られる。しかし、培養濾液の濃縮液
や粗乾燥品には、培養液中に含まれる不快臭成分
及び着色成分が多量に含まれるため、目的とする
反応生成物を分離精製する際、最終的に除去する
ことが必要となつてくる。また、培養濾液中に
は、目的酵素を破壊するプロテアーゼをも含むこ
とが多い。このため、酵素反応を利用して有用物
質を生産する際には、これら不利益となる不純物
を除去することが必要となつてくる。このため、
後続の反応生成物の分離精製工程に著しく負担を
かける。一方、一般的な精製方法として知られる
塩析法や液体クロマト単独では部分的な濃縮が限
界であり、分離精度を高めるためにはこれらの操
作条件、例えば沈殿剤の種類、濃度、PH、充填剤
の種類、吸脱着液の種類等、を変えこれらを組み
合せた複雑なプロセスを経ることが必要となる。
それだけではなく、例えば、特開昭61−12284号
公報に記載されるように操作には沈殿剤、溶出剤
として多量の塩を添加することになり、次工程へ
移る際の着塩操作も行わねばならない。以上のこ
とから、これら公知の精製方法は専ら研究用試薬
等に限定されている。なかでも、精製が困難とさ
れているグルコアミラーゼを選択的に効率よく吸
着できる吸着剤が開発されれば、培養濾液から酵
素を一段で高純度に濃縮精製できる。
される。工業用酵素製剤としては、培養濾液をそ
のまま濃縮した濃縮液か、乾燥した粉末、あるい
は分離精製して得られる濃縮液もしくはその乾燥
粉末として得られる。しかし、培養濾液の濃縮液
や粗乾燥品には、培養液中に含まれる不快臭成分
及び着色成分が多量に含まれるため、目的とする
反応生成物を分離精製する際、最終的に除去する
ことが必要となつてくる。また、培養濾液中に
は、目的酵素を破壊するプロテアーゼをも含むこ
とが多い。このため、酵素反応を利用して有用物
質を生産する際には、これら不利益となる不純物
を除去することが必要となつてくる。このため、
後続の反応生成物の分離精製工程に著しく負担を
かける。一方、一般的な精製方法として知られる
塩析法や液体クロマト単独では部分的な濃縮が限
界であり、分離精度を高めるためにはこれらの操
作条件、例えば沈殿剤の種類、濃度、PH、充填剤
の種類、吸脱着液の種類等、を変えこれらを組み
合せた複雑なプロセスを経ることが必要となる。
それだけではなく、例えば、特開昭61−12284号
公報に記載されるように操作には沈殿剤、溶出剤
として多量の塩を添加することになり、次工程へ
移る際の着塩操作も行わねばならない。以上のこ
とから、これら公知の精製方法は専ら研究用試薬
等に限定されている。なかでも、精製が困難とさ
れているグルコアミラーゼを選択的に効率よく吸
着できる吸着剤が開発されれば、培養濾液から酵
素を一段で高純度に濃縮精製できる。
発明者らは、最近、α−アミラーゼの精製方法
として研究されはじめたアミロース(グルコース
の直鎖状ポリマー)を吸着剤とする吸着法に着目
し、これをグルコアミラーゼに適用してみた。し
かし、吸着容量が極めて低く、グルコアミラーゼ
に対しては実用的でないことが判明した。
として研究されはじめたアミロース(グルコース
の直鎖状ポリマー)を吸着剤とする吸着法に着目
し、これをグルコアミラーゼに適用してみた。し
かし、吸着容量が極めて低く、グルコアミラーゼ
に対しては実用的でないことが判明した。
本発明の目的は、培養液などのグルコアミラー
ゼ以外に多種多様の不純物を含むグルコアミラー
ゼ含有液から、該酵素のみを選択的に効率よく吸
着できる吸着剤としてりポリグルカンの製造方法
を提供することにある。
ゼ以外に多種多様の不純物を含むグルコアミラー
ゼ含有液から、該酵素のみを選択的に効率よく吸
着できる吸着剤としてりポリグルカンの製造方法
を提供することにある。
本発明者らは、α−アミラーゼの精製方法とし
て、従来から公知であるアミロース(グルコース
の直鎖状ポリマー)を吸着剤とする吸着法に着目
し、これをグルコアミラーゼに適用してみた。し
かし、吸着容量は極めて低く、実用的でないこと
が判明した。グルコアミラーゼの吸着剤を探索し
た結果、分岐度の高いグリコーゲンに効果的に吸
着されることならびにアミロペクチンにも比較的
吸着されやすい現象を見い出した。
て、従来から公知であるアミロース(グルコース
の直鎖状ポリマー)を吸着剤とする吸着法に着目
し、これをグルコアミラーゼに適用してみた。し
かし、吸着容量は極めて低く、実用的でないこと
が判明した。グルコアミラーゼの吸着剤を探索し
た結果、分岐度の高いグリコーゲンに効果的に吸
着されることならびにアミロペクチンにも比較的
吸着されやすい現象を見い出した。
しかし、これらの高分岐多糖類は水溶性であ
り、吸着剤としては極めて操作しにくいことを知
つた。すなわち、高分岐多糖類や粉末やゲルを添
加しても、これらには吸着されず、溶解している
高分岐多糖類の分子とグルコアミラーゼ分子とが
複合体を形成し溶解したままとなる。本発明者ら
は鋭意研究を続けた結果、グリコーゲンを化学的
に架橋して不溶化することにより上記問題を解決
し、本発明に到達した。
り、吸着剤としては極めて操作しにくいことを知
つた。すなわち、高分岐多糖類や粉末やゲルを添
加しても、これらには吸着されず、溶解している
高分岐多糖類の分子とグルコアミラーゼ分子とが
複合体を形成し溶解したままとなる。本発明者ら
は鋭意研究を続けた結果、グリコーゲンを化学的
に架橋して不溶化することにより上記問題を解決
し、本発明に到達した。
本発明は、グルコースがα−1,4結合により
重合した主鎖に、グルコースがα−1,4結合に
より重合し、α−1,6結合により主鎖から分岐
した、非還元性グルコース残基を開放末端とする
分岐鎖が結合してなるポリグルカンをアミラーゼ
で処理して分岐鎖を短縮化した短縮化ポリグルカ
ン、或はグリコーゲンを分子間、分子内で架橋し
てなる架橋化ポリグルカンにあり、好ましくは、
分岐鎖の分岐点に相当するグルコース残基が、分
子中全グルコース残基数の少なくとも5%以上を
占め、また分岐鎖のグルコース重合数が2以上6
以下である架橋型ポリグルカンにある。また、本
発明は、グルコースがα−1,4結合により重合
した主鎖に、グルコースがα−1,4結合により
重合し、α−1,6結合により主鎖から分岐し
た、非還元性グルコース残基を開放末端とする分
岐鎖が結合してなるポリグルカンを、水に対する
溶解度が60℃において0.01以下となるまで架橋処
理する架橋化ポリグルカンの製造方法にあり、好
ましくは、架橋化前のポリグルカンにアミラーゼ
を添加して、グルコース重合数を短縮化する点に
あり、アミラーゼとしては、β−アミラーゼ、グ
ルコアミラーゼのいずれか一方もしくは両方が通
常、用いられる。
重合した主鎖に、グルコースがα−1,4結合に
より重合し、α−1,6結合により主鎖から分岐
した、非還元性グルコース残基を開放末端とする
分岐鎖が結合してなるポリグルカンをアミラーゼ
で処理して分岐鎖を短縮化した短縮化ポリグルカ
ン、或はグリコーゲンを分子間、分子内で架橋し
てなる架橋化ポリグルカンにあり、好ましくは、
分岐鎖の分岐点に相当するグルコース残基が、分
子中全グルコース残基数の少なくとも5%以上を
占め、また分岐鎖のグルコース重合数が2以上6
以下である架橋型ポリグルカンにある。また、本
発明は、グルコースがα−1,4結合により重合
した主鎖に、グルコースがα−1,4結合により
重合し、α−1,6結合により主鎖から分岐し
た、非還元性グルコース残基を開放末端とする分
岐鎖が結合してなるポリグルカンを、水に対する
溶解度が60℃において0.01以下となるまで架橋処
理する架橋化ポリグルカンの製造方法にあり、好
ましくは、架橋化前のポリグルカンにアミラーゼ
を添加して、グルコース重合数を短縮化する点に
あり、アミラーゼとしては、β−アミラーゼ、グ
ルコアミラーゼのいずれか一方もしくは両方が通
常、用いられる。
本発明になるポリグルカンに適用しうる酵素
は、α−1,4グリコシド結合の非還元性末端側
を加水分解するアミラーゼ、いわゆるグルコアミ
ラーゼ(γ−アミラーゼ)全般に適用できる。本
酵素としてはグルコアミラーゼであれば、その起
源生物に特に限定されるものではない。例えば、
アスペルギルス属、リゾープス属等の糸状菌を起
源とするグルコアミラーゼ、バシルス属、クロス
トリジウ属などの細菌起源のグルコアミラーゼで
あつても適用できる。
は、α−1,4グリコシド結合の非還元性末端側
を加水分解するアミラーゼ、いわゆるグルコアミ
ラーゼ(γ−アミラーゼ)全般に適用できる。本
酵素としてはグルコアミラーゼであれば、その起
源生物に特に限定されるものではない。例えば、
アスペルギルス属、リゾープス属等の糸状菌を起
源とするグルコアミラーゼ、バシルス属、クロス
トリジウ属などの細菌起源のグルコアミラーゼで
あつても適用できる。
本発明の吸着剤にするための原料のグルカンと
しては、高度に分岐したグルカンが用いられる。
分岐の程度は、分岐点に相当するグルコース残基
が、分子中のグルコース残基総数の5%以上あれ
ば用いることができる。15%以上の分岐点を含む
グルカンならなお好適である。したがつて、グル
カンの例としてはグリコーゲンや高度分岐型のア
ミロペクチンがあげられる。これらグリコーゲン
や高度分岐型アミロペクチンも起源生物には特に
限定されない。例えばグリコーゲンは動物起源の
ものであつても微生物起源のものでも使用でき
る。
しては、高度に分岐したグルカンが用いられる。
分岐の程度は、分岐点に相当するグルコース残基
が、分子中のグルコース残基総数の5%以上あれ
ば用いることができる。15%以上の分岐点を含む
グルカンならなお好適である。したがつて、グル
カンの例としてはグリコーゲンや高度分岐型のア
ミロペクチンがあげられる。これらグリコーゲン
や高度分岐型アミロペクチンも起源生物には特に
限定されない。例えばグリコーゲンは動物起源の
ものであつても微生物起源のものでも使用でき
る。
また、これらのグルカンとしては、上述した天
然原料から分離したグルカンだけでなく、これら
の分岐を酵素処理で短鎖化した加工グルカンを用
いてもよい。グルカンの短鎖化処理には、前述し
たようにグルコアミラーゼもしくはβ−アミラー
ゼが用いられる。これらの酵素の種類は特に限定
されない。処理時の反応条件は基質のグルカンの
種類、濃度等により適宜選択されるが、分岐鎖の
グルコース重合数2以上、6以下にとどめる様、
適宜調節される。
然原料から分離したグルカンだけでなく、これら
の分岐を酵素処理で短鎖化した加工グルカンを用
いてもよい。グルカンの短鎖化処理には、前述し
たようにグルコアミラーゼもしくはβ−アミラー
ゼが用いられる。これらの酵素の種類は特に限定
されない。処理時の反応条件は基質のグルカンの
種類、濃度等により適宜選択されるが、分岐鎖の
グルコース重合数2以上、6以下にとどめる様、
適宜調節される。
グルカンの分岐度が5%未満になると、グルコ
アミラーゼの吸着容量が低下し、実用的でない。
アミラーゼの吸着容量が低下し、実用的でない。
上述したグルカンの架橋方法は特に限定されな
いが、その架橋の程度は、グルコアミラーゼを吸
着する際に使用される温度である60℃以下におい
て、100gの水に対し、本発明なる吸着剤の溶解
度が0.01g以下になる様に、分子間の架橋を行え
ばよい。したがつて、架橋処理により調製された
本発明なる吸着剤は水和性のゲル又は固体であ
る。
いが、その架橋の程度は、グルコアミラーゼを吸
着する際に使用される温度である60℃以下におい
て、100gの水に対し、本発明なる吸着剤の溶解
度が0.01g以下になる様に、分子間の架橋を行え
ばよい。したがつて、架橋処理により調製された
本発明なる吸着剤は水和性のゲル又は固体であ
る。
架橋反応及び条件は、グルカンの種類、濃度、
吸着時の使用条件により適宜選択される。反応と
しては例えば、エピハロゲンヒドリンによるグル
コース残基のOH基間の架橋等があげられる。エ
ピハロゲンとしてはエピクロラルヒドリンが最も
実用的である。エピハロゲンの場合その添加量は
原料ポリグルカンの溶液の0.5〜3倍が好適であ
る。原料液中のポリグルカン濃度は少なくとも1
%以上が好ましい。アルカリは苛性ソーダ、苛性
カリ等の強アルカリが用いられるが、その濃度は
1N以上でエピハロゲンのハロゲンに対し等量以
上のアルカリを含むことが必要である。温度は30
℃以上で行われる。時間は温度、アルカリ濃度に
より適宜選定されるが60℃の際30分間以上必要で
ある。
吸着時の使用条件により適宜選択される。反応と
しては例えば、エピハロゲンヒドリンによるグル
コース残基のOH基間の架橋等があげられる。エ
ピハロゲンとしてはエピクロラルヒドリンが最も
実用的である。エピハロゲンの場合その添加量は
原料ポリグルカンの溶液の0.5〜3倍が好適であ
る。原料液中のポリグルカン濃度は少なくとも1
%以上が好ましい。アルカリは苛性ソーダ、苛性
カリ等の強アルカリが用いられるが、その濃度は
1N以上でエピハロゲンのハロゲンに対し等量以
上のアルカリを含むことが必要である。温度は30
℃以上で行われる。時間は温度、アルカリ濃度に
より適宜選定されるが60℃の際30分間以上必要で
ある。
本発明のポリグルカンは、分岐鎖の長さがグル
コース数2〜6とグルコアミラーゼ分子鎖と同程
度の長さであることから、酵素生産菌の培養濾液
など多糖多様の有機性、機性不純物及び他種の酵
素を含む液中から、本発明実施例に示すように、
グルコアミラーゼを選択的に吸着できる。特に蛋
白質分解酵素など酵素精製に不都合な酵素を除去
できる。さらに高密度にグルコアミラーゼを吸着
できる。
コース数2〜6とグルコアミラーゼ分子鎖と同程
度の長さであることから、酵素生産菌の培養濾液
など多糖多様の有機性、機性不純物及び他種の酵
素を含む液中から、本発明実施例に示すように、
グルコアミラーゼを選択的に吸着できる。特に蛋
白質分解酵素など酵素精製に不都合な酵素を除去
できる。さらに高密度にグルコアミラーゼを吸着
できる。
また、本発明のポリグルカンは、いわゆる分子
間および/または分子内三次元架橋されており、
このため水に不溶となつており、単に吸着したグ
ルコアミラーゼを脱着させることにより、容易に
培養濾液から一拠に精製でき、精製プロセスを大
幅に簡略化可能である。
間および/または分子内三次元架橋されており、
このため水に不溶となつており、単に吸着したグ
ルコアミラーゼを脱着させることにより、容易に
培養濾液から一拠に精製でき、精製プロセスを大
幅に簡略化可能である。
実施例 1
大腸菌のグリコーゲン(推定分子量4×105、
推定分岐度25%)の乾燥粉末5gに0.05M酢酸ソ
ーダ緩衝液(PH5.0)を95ml添加し、撹拌しなが
ら70℃に加熱して溶解した。これを50℃まで冷却
し、そのうち30mlを取りアスペルギルス属
(Aspergillus orizea IFO−4M6)起源のグルコ
アミラーゼ10単位を溶解したグルコアミラーゼ溶
液2mlを添加し、40℃に保持した。
推定分岐度25%)の乾燥粉末5gに0.05M酢酸ソ
ーダ緩衝液(PH5.0)を95ml添加し、撹拌しなが
ら70℃に加熱して溶解した。これを50℃まで冷却
し、そのうち30mlを取りアスペルギルス属
(Aspergillus orizea IFO−4M6)起源のグルコ
アミラーゼ10単位を溶解したグルコアミラーゼ溶
液2mlを添加し、40℃に保持した。
2時間後のグルコース生成量を測定した結果、
供試グリコーゲン分子のグルコース残基数に対し
約30%に達した。その時点の分子量は6×104で
あつた。
供試グリコーゲン分子のグルコース残基数に対し
約30%に達した。その時点の分子量は6×104で
あつた。
本液を透析用セロフアンチユーブに充填し、10
℃の水5に対し10時間透析した。内容液を凍結
乾燥し、白色粉末0.9gを得た。
℃の水5に対し10時間透析した。内容液を凍結
乾燥し、白色粉末0.9gを得た。
これに水10mlを添加し、撹拌しながら70℃に加
熱して溶解して粘性の液体とした。次に6Nの苛
性ソーダ33mlを添加し、これを撹拌機と還流冷却
器を付した200mlの反応フラスコに入れた。次い
で、100mlのエピクロヒドリンを加え、20rpmで
撹拌しつつ、70℃で5時間加熱した。
熱して溶解して粘性の液体とした。次に6Nの苛
性ソーダ33mlを添加し、これを撹拌機と還流冷却
器を付した200mlの反応フラスコに入れた。次い
で、100mlのエピクロヒドリンを加え、20rpmで
撹拌しつつ、70℃で5時間加熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層巾のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後再度、
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末0.7gを得た。
層巾のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後再度、
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末0.7gを得た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.001gであつた。さらに、本粉末を60
℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末に対
する重量比は13.2であつた。本粉末の非還元末端
基を測定により分岐鎖の平均重合度は4.2であつ
た。次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性
を見るため、以下の実験を行つた。
に対し、0.001gであつた。さらに、本粉末を60
℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末に対
する重量比は13.2であつた。本粉末の非還元末端
基を測定により分岐鎖の平均重合度は4.2であつ
た。次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性
を見るため、以下の実験を行つた。
アスペルギルス・オリゼIFO−4176の培養液40
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾液中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾液中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.50単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(1.29単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(1.29単位)が吸着された。
次に、本発明吸着剤の代りにα−アミラーゼ吸
着剤として公知のアミロース(馬鈴薯起源)を用
いてα−アミラーゼ及びグルコアミラーゼの吸着
実施を比較例として実施した。
着剤として公知のアミロース(馬鈴薯起源)を用
いてα−アミラーゼ及びグルコアミラーゼの吸着
実施を比較例として実施した。
比較例 1
実施例と同一ロツトのアスペルスギルス・オリ
ゼIFO−4176の培養液40ml(α−アミラーゼ0.50
単位/ml、グルコアミラーゼ1.30単位/mlを含
む)を6℃に冷却し、アミロース粉末0.2gを添
加し、5rpmで2分間混合して接触させた。これ
を濾過し、濾液中のα−アミラーゼ活性及びグル
コアミラーゼ活性を測定した。
ゼIFO−4176の培養液40ml(α−アミラーゼ0.50
単位/ml、グルコアミラーゼ1.30単位/mlを含
む)を6℃に冷却し、アミロース粉末0.2gを添
加し、5rpmで2分間混合して接触させた。これ
を濾過し、濾液中のα−アミラーゼ活性及びグル
コアミラーゼ活性を測定した。
上澄液中のα−アミラーゼは0.02単位/ml、グ
ルコアミラーゼは1.29単位であつた。上記アミロ
ース粉末に吸着した酵素量を、アミロースとの接
触前の酵素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値
として計算した。その結果、培養濾過中に存在し
たα−アミラーゼはその96%(0.48単位/ml)が
吸着され、グルコアミラーゼは1%(0.01単位/
ml)と事質上吸着されなかつた。
ルコアミラーゼは1.29単位であつた。上記アミロ
ース粉末に吸着した酵素量を、アミロースとの接
触前の酵素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値
として計算した。その結果、培養濾過中に存在し
たα−アミラーゼはその96%(0.48単位/ml)が
吸着され、グルコアミラーゼは1%(0.01単位/
ml)と事質上吸着されなかつた。
以下、本発明の実施例を用いて、さらに詳しく
紹介する。
紹介する。
実施例 2
大腸菌のグリコーゲン(推定分子量4×105、
推定分岐度25%)の乾燥粉末10gに水90mlを添加
し、撹拌しながら、70℃に加熱して溶解して粘性
の液体とした。これに6Nの苛性ソーダ33mlを添
加し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500ml
の反応フラスコに入れた。次いで、140mlのエピ
クロルヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、50
℃で5時間加熱した。
推定分岐度25%)の乾燥粉末10gに水90mlを添加
し、撹拌しながら、70℃に加熱して溶解して粘性
の液体とした。これに6Nの苛性ソーダ33mlを添
加し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500ml
の反応フラスコに入れた。次いで、140mlのエピ
クロルヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、50
℃で5時間加熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後再度、
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末9.2gを得た。
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後再度、
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末9.2gを得た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.002g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は11.5であつた。
に対し、0.002g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は11.5であつた。
次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を
見るため、以下の実験を行つた。
見るため、以下の実験を行つた。
アスペルスギルス・オリゼIFO−4176の培養液
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.50単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(51.6単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(51.6単位)が吸着された。
実施例 3
大腸菌のグリコーゲン(推定分子量4×105、
推定分岐度25%)の乾燥粉末20gに水80mlを添加
し、撹拌しながら10Nの苛性ソーダ40mlを添加
し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの
反応フラスコに入れた。次いで、200mlのエピク
ロルヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、70℃
で48時間加熱した。
推定分岐度25%)の乾燥粉末20gに水80mlを添加
し、撹拌しながら10Nの苛性ソーダ40mlを添加
し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの
反応フラスコに入れた。次いで、200mlのエピク
ロルヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、70℃
で48時間加熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層巾のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再度
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末18.3gを得た。
層巾のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再度
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末18.3gを得た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は9.6であつた。
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は9.6であつた。
次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を
見るため、以下の実験を行つた。
見るため、以下の実験を行つた。
アスペルスギルス・オリゼIFO−4176の培養液
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.51単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(51.6単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(51.6単位)が吸着された。
実施例 4
大腸菌のグリコーゲン(推定分子量4×105、
推定分岐度25%)の乾燥粉末30gに水70mlを添加
し、撹拌しながら10Nの苛性ソーダ40mlを添加
し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの
反応フラスコに入れた。次いで、40mlのエピクロ
ルヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、80℃で
48時間加熱した。
推定分岐度25%)の乾燥粉末30gに水70mlを添加
し、撹拌しながら10Nの苛性ソーダ40mlを添加
し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの
反応フラスコに入れた。次いで、40mlのエピクロ
ルヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、80℃で
48時間加熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール150mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物
を回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再
懸濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作を
さらに3回繰り返した。次に、蒸溜水150mlに懸
濁し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再
度エタノール150mlに分散した。これを濾過し、
ゲル状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末25gを得
た。
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール150mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物
を回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再
懸濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作を
さらに3回繰り返した。次に、蒸溜水150mlに懸
濁し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再
度エタノール150mlに分散した。これを濾過し、
ゲル状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末25gを得
た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は7.9であつた。
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は7.9であつた。
次に本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を見
るため、以下の実験を行つた。
るため、以下の実験を行つた。
アスペルスギルス・オリゼIFO−4176の培養液
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.51単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
実施例 5
大腸のグリコーゲン(推定分子量4×105、推
定分岐度25%)の乾燥粉末15gに水85mlを添加
し、撹拌しながら、6Nの苛性ソーダ33mlを添加
し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの
反応フラスコに入れた。次いで、150mlのエピク
ロルヒドリンを加え、15rpmで撹拌しつつ、75℃
で36時間加熱した。
定分岐度25%)の乾燥粉末15gに水85mlを添加
し、撹拌しながら、6Nの苛性ソーダ33mlを添加
し、これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの
反応フラスコに入れた。次いで、150mlのエピク
ロルヒドリンを加え、15rpmで撹拌しつつ、75℃
で36時間加熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール100mlを添加し、撹拌後、濾過してゲル状
物を回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに
再懸濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作
をさらに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸
濁し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再
度エタノール150mlに分散した。これを濾過し、
ゲル状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末14gを得
た。
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール100mlを添加し、撹拌後、濾過してゲル状
物を回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに
再懸濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作
をさらに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸
濁し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再
度エタノール150mlに分散した。これを濾過し、
ゲル状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末14gを得
た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は8.1であつた。
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末
に対する重量比は8.1であつた。
次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を
見るため、以下の実験を行つた。
見るため、以下の実験を行つた。
アスペルスギルス・オリゼIFO−4176の培養液
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
40ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミ
ラーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上
記の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混
合して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−
アミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.50単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(1.29単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.01単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の99%(1.29単位)が吸着された。
実施例 6
牛肝臓のグリコーゲン(推定分子量3.5×105、
推定分岐度27%)の乾燥粉末10gに水90mlを添加
し、撹拌しながら70℃に加熱して溶解して粘性の
液体を得た。これに4Nの苛性カリ33mlを添加し、
これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの反応
フラスコに入れた。次いで、140mlのエピクロル
ヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、50℃で5
時間加熱した。
推定分岐度27%)の乾燥粉末10gに水90mlを添加
し、撹拌しながら70℃に加熱して溶解して粘性の
液体を得た。これに4Nの苛性カリ33mlを添加し、
これを撹拌機と還流冷却器を付した500mlの反応
フラスコに入れた。次いで、140mlのエピクロル
ヒドリンを加え、20rpmで撹拌しつつ、50℃で5
時間加熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再度
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末9.3gを得た。
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさ
らに3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁
し、濾別した。本操作を3回繰り返した後、再度
エタノール50mlに分散した。これを濾過し、ゲル
状物を乾燥後、粉砕し、白色粉末9.3gを得た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.003gであつた。さらに、本粉末を60
℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末に対
する重量比は12.3であつた。
に対し、0.003gであつた。さらに、本粉末を60
℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末に対
する重量比は12.3であつた。
次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を
見るため、以下の実験を行つた。
見るため、以下の実験を行つた。
アスペルギルス・オリゼIFO−4176の培養液40
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾過中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.50単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
実施例 7
牛肝臓のグリコーゲン(推定分子量3.5×105、
推定分岐度27%)の乾燥粉末20gに水80mlを添加
し、撹拌しながら80℃に加熱して糊状物とした。
これに6Nの苛性ソーダ66mlを添加し、これを撹
拌機と還流冷却器を付した500mlの反応フラスコ
に入れた。次いで、180mlのエピクロルヒドリン
を加え、10rpmで撹拌しつつ、70℃で9時間加熱
した。
推定分岐度27%)の乾燥粉末20gに水80mlを添加
し、撹拌しながら80℃に加熱して糊状物とした。
これに6Nの苛性ソーダ66mlを添加し、これを撹
拌機と還流冷却器を付した500mlの反応フラスコ
に入れた。次いで、180mlのエピクロルヒドリン
を加え、10rpmで撹拌しつつ、70℃で9時間加熱
した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール80mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール80mlに懸濁
し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさら
に3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁し、
濾別した。本操作を3回繰り返した後、再度エタ
ノール80mlに分散した。これを濾過し、ゲル状物
を乾燥後、粉砕し、白色粉末9.3gを得た。
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール80mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール80mlに懸濁
し、濾過してゲル状物を回収した。本操作をさら
に3回繰り返した。次に、蒸溜水50mlに懸濁し、
濾別した。本操作を3回繰り返した後、再度エタ
ノール80mlに分散した。これを濾過し、ゲル状物
を乾燥後、粉砕し、白色粉末9.3gを得た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.001gであつた。さらに、本粉末を60
℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末に対
する重量比は7.2であつた。
に対し、0.001gであつた。さらに、本粉末を60
℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの本粉末に対
する重量比は7.2であつた。
次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を
見るため、以下の実験を行つた。
見るため、以下の実験を行つた。
アスペルギルス・オリゼIFO−4176の培養液40
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾液中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾液中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.50単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記録
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記録
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
実施例 8
かき貝のグリコーゲン(推定分子量4×105、
推定分岐度25%)の乾燥粉末10gに水90mlを添加
し、撹拌しながら70℃に加熱して溶解して粘性の
液体とした。
推定分岐度25%)の乾燥粉末10gに水90mlを添加
し、撹拌しながら70℃に加熱して溶解して粘性の
液体とした。
これに6Nの苛性ソーダ33mlを添加し、これを
撹拌機と還流冷却器を付した500mlの反応フラス
コに入れた。次いで、140mlのエピクロルヒドリ
ンを加え、15rpmで撹拌しつつ、50℃で5時間加
熱した。
撹拌機と還流冷却器を付した500mlの反応フラス
コに入れた。次いで、140mlのエピクロルヒドリ
ンを加え、15rpmで撹拌しつつ、50℃で5時間加
熱した。
反応終了後、内容物を室温に冷却し、下部の水
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。
層中のゲル状物を濾別した。このゲル状物にエタ
ノール50mlを添加し、撹拌後濾過してゲル状物を
回収した。回収ゲルを再度エタノール50mlに再懸
濁し、濾過してゲル状物を回収した。
本操作をさらに3回繰り返した。次に、蒸溜水
50mlに懸濁し、濾別した。本操作をさらに3回繰
り返した。次に蒸溜水50mlに懸濁し、濾別した。
本操作を3回繰り返した後、再度エタノール50ml
に分散した。
50mlに懸濁し、濾別した。本操作をさらに3回繰
り返した。次に蒸溜水50mlに懸濁し、濾別した。
本操作を3回繰り返した後、再度エタノール50ml
に分散した。
これを濾過し、ゲル状物を乾燥後、粉砕し、白
色粉末9.1gを得た。
色粉末9.1gを得た。
本粉末の60℃における水への溶解度は水100g
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの紛粉末
に対する重量比は10.8であつた。
に対し、0.001g以下であつた。さらに、本粉末
を60℃水に1日間浸漬した後の水和ゲルの紛粉末
に対する重量比は10.8であつた。
次に、本粉末へのグルコアミラーゼの吸着性を
見るため、以下の実験を行つた。
見るため、以下の実験を行つた。
アスペルギルス・オリゼIFO−4176の培養液40
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾液中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
ml(α−アミラーゼ0.50単位/ml、グルコアミラ
ーゼ1.30単位/mlを含む)を6℃に冷却し、上記
の吸着剤粉末0.2gを添加し、5rpmで2分間混合
して接触させた。これを濾過し、濾液中のα−ア
ミラーゼ活性、グルコアミラーゼ活性を測定し
た。
上澄液中のα−アミラーゼは0.50単位/ml、グ
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
ルコアミラーゼは0.02単位/mlであつた。上記吸
着剤に吸着した酵素量を、吸着剤との接触前の酵
素濃度から接触後の酵素濃度を減じた値として計
算した。その結果、培養濾液中に存在したα−ア
ミラーゼは実質上吸着されず、グルコアミラーゼ
の98%(1.28単位)が吸着された。
本発明によれば、酵素性産菌の培養濾液など多
種多様の有機性、無機性不純物及び他種の酵素を
含む液中から、グルコアミラーゼを選択的に吸着
できる。また、かかる機能を有する吸着剤を容易
に製造できる。
種多様の有機性、無機性不純物及び他種の酵素を
含む液中から、グルコアミラーゼを選択的に吸着
できる。また、かかる機能を有する吸着剤を容易
に製造できる。
第1図は、架橋剤としてエピハロゲンヒドリン
を用いた本発明請求範囲第1項に相当する物質の
代表的構造単位を示す。第2図は、架橋剤として
エピハロゲンヒドリンを用いた本発明請求範囲第
1項に相当する物質の代表的単位を示す。 1…非還元性端、2…分岐鎖、3…架橋鎖、4
…主鎖、5…分岐点。
を用いた本発明請求範囲第1項に相当する物質の
代表的構造単位を示す。第2図は、架橋剤として
エピハロゲンヒドリンを用いた本発明請求範囲第
1項に相当する物質の代表的単位を示す。 1…非還元性端、2…分岐鎖、3…架橋鎖、4
…主鎖、5…分岐点。
Claims (1)
- 1 グルコースがα−1,4結合により重合した
主鎖にグルコースがα−1,4結合により重合し
α−1,6結合により主鎖から分岐した非還元性
グルコース残基を開放末端とする分岐鎖が結合し
てなるポリグルカンをアミラーゼで処理して分岐
鎖を短縮化したポリグルカン、或はグリコーゲン
を水に対する溶解度が60℃において0.01以下とな
るまで架橋処理することを特徴とする架橋化ポリ
グルカンの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP17751286A JPS6335605A (ja) | 1986-07-30 | 1986-07-30 | 架橋化ポリグルカンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP17751286A JPS6335605A (ja) | 1986-07-30 | 1986-07-30 | 架橋化ポリグルカンの製造方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6335605A JPS6335605A (ja) | 1988-02-16 |
| JPH0576961B2 true JPH0576961B2 (ja) | 1993-10-25 |
Family
ID=16032201
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP17751286A Granted JPS6335605A (ja) | 1986-07-30 | 1986-07-30 | 架橋化ポリグルカンの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6335605A (ja) |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5763303A (en) * | 1980-10-03 | 1982-04-16 | Yoshiaki Motozato | Spherical particles of crosslinked porous amylopectin and its production |
-
1986
- 1986-07-30 JP JP17751286A patent/JPS6335605A/ja active Granted
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6335605A (ja) | 1988-02-16 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JPS5840474B2 (ja) | 酵素反応により有機物質を少くとも1種類の他の有機物質に変換する酵素利用法 | |
| JPH01285188A (ja) | リパーゼ固定ポリアクリル酸系材料およびその利用 | |
| Lilly | [4] Enzymes immobilized to cellulose | |
| JPH0576961B2 (ja) | ||
| JPS6170996A (ja) | マルトシル−α−サイクロデキストリンの製造方法 | |
| US5202250A (en) | Method for isolation and purification of amylases, and adsorbents used for the same as well as devices for the isolation and purification | |
| CN113981025B (zh) | 一种氨基酸酰胺化果胶的制备方法 | |
| Kennedy et al. | Immobilization of glucoamylase on gelatin by transition-metal chelation | |
| JP2659086B2 (ja) | 高純度糖質関連酵素および固定化糖質関連酵素の製造方法 | |
| JPS5974984A (ja) | 固定化酵素もしくは固定化微生物の製造方法 | |
| JPH0372083B2 (ja) | ||
| JPS632595B2 (ja) | ||
| KR830002846B1 (ko) | 덱스트로오스를 함유하는 시럽 제조방법 | |
| KR950014967B1 (ko) | 모라노린 유도체의 제법 | |
| IL43573A (en) | Enzymes fixed on a solid cellulose support | |
| Su et al. | A novel method for continuous production of cyclodextrins using an immobilized enzyme system | |
| JPH0466094A (ja) | 澱粉含有材料の酵素分解方法によるオリゴ糖の製造方法 | |
| JP2824902B2 (ja) | 酵素固定化用担体の製造方法 | |
| JPS63132898A (ja) | 蛋白質の分離精製方法 | |
| JPH089988A (ja) | マルトペンタオースの製造方法 | |
| SU510479A1 (ru) | Способ иммобилизации протеолитических ферментов | |
| JPH0328194B2 (ja) | ||
| JPS6248381A (ja) | アリルスルフオトランスフエラ−ゼの不溶性誘導体の製造法 | |
| JPS6222590A (ja) | 高分子加水分解酵素含有乾燥組成物及びその製造方法 | |
| WO2022151828A1 (zh) | 膜状固定化细胞、多肽、寡肽或蛋白质及其制备方法 |