JPH06113879A - ヒト第viii因子及びヒト第viii因子のアナログの製造方法 - Google Patents

ヒト第viii因子及びヒト第viii因子のアナログの製造方法

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JPH06113879A
JPH06113879A JP3102185A JP10218591A JPH06113879A JP H06113879 A JPH06113879 A JP H06113879A JP 3102185 A JP3102185 A JP 3102185A JP 10218591 A JP10218591 A JP 10218591A JP H06113879 A JPH06113879 A JP H06113879A
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Gerard Mignot
ミニョット ジェラール
Nicholas Bihoreau
ビオロ ニコラ
Philippe Adamowicz
アダモヴィクツ フィリップ
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    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/745Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • C07K14/755Factors VIII, e.g. factor VIII C (AHF), factor VIII Ag (VWF)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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Abstract

(57)【要約】 【構成】少なくとも1つのポリカチオン性及び/又はポ
リアニオン性のポリマーの誘導体を含有する培養培地
中、第VIII因子又は第VIII因子のアナログを産
生する細胞を培養することにより前記第VIII因子又
は第VIII因子のアナログを調製するとともに、第V
III因子又はそのアナログを分離する方法、及び該方
法によって得た、第VIII因子又は第VIII因子の
アナログとポリカチオン性及び/又はポリアニオン性の
ポリマーの少なくとも一つの誘導体との間の複合体或い
は第VIII因子又は第VIII因子のアナログ。 【効果】培養培地中にフォン・ヴィレブランド因子の存
在を必要とせず、第VIII因子又は第VIII因子の
アナログの工業的な生産のために十分な時間的・コスト
的利益が得られる。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、ヒト第VIII因子及
びヒト第VIII因子のアナログの製造方法に関する。
【0002】
【従来の技術】第VIII因子は、血友病Aに苦しむ患
者の治療に使用される血液凝固因子である。
【0003】該治療に使用される第VIII因子は、現
在分別によりヒト血漿から得られる第VIII因子の濃
縮物から本質的に構成されている。その時以来、第VI
II因子の該原料を、より容易に入手できウイルス又は
他の汚染(contamination)の影響がより
少ない原料により置き換えようとする試みがなされ、遺
伝子工学により第VIII因子を得るために多大な努力
が払われてきた。現在得られた結果は、組換え第VII
I因子が、天然の第VIII因子のあらゆる性質を示
し、該組換え第VIII因子が満足のいく工業的条件下
で得ることができることを示している。
【0004】遺伝子工学の技術を使用した方法による第
VIII因子の調製は、広く知られており、特に以下の
特許に記載されている。−EP−A−162,067,
−EP−A−182、448、−EP−A−150、7
35、−EP−A−157、556及び−EP−A−1
60、457。
【0005】特に、特許EP−A−162,067は、
種々のタイプの真核細胞、特にCHO細胞中における第
VIII因子の発現について述べている。
【0006】特許EP−A−160、457もまた真核
細胞、特にBHK細胞中における第VIII因子の発現
について記載している。
【0007】特許FR−A−86/08,258及びF
R−A−87/04,699は、真核細胞及びワクシニ
アウイルスを発現系として使用した第VIII因子の調
製について記載している。第VIII因子の最大の生産
量を得るために、培養培地はフォン・ヴィレブランド
(von Willebrand)因子を含有する。
【0008】真核細胞経由のものとして、特許EP−A
−253,455もまた、第VIII因子の調製にイー
ストを使用することを示唆している。
【0009】いくつかの第VIII因子のアナログもま
た提案されてきた。これらの誘導体をカバーする特許
中、特に以下のものを示すことができる。−WO−A−
86/06,101,−EP−A−232,112,−
WO−A−87/07,144,−WO−A−88/0
0,381,−EP−A−265,778,−EP−A
−294,910及び−EP−A−303,540。
【0010】第VIII因子のこれらのアナログは、天
然の第VIII因子を越える種々の長所を示し、好適に
は、遺伝子工学の技術を用いて得ることができる。
【0011】現在使用されている方法は、第VIII因
子を発現する真核細胞に好適に作用し、これらは、染色
体中に1又は2以上の第VIII因子をコードした配列
を組込んだ細胞であるか、又は第VIII因子を発現す
るウイルスベクターを組込んだ細胞である。
【0012】この種の技術は、既述の特許に広範に記載
されており、ここで詳細に述べることはしない。記載す
るのは、単に第VIII因子を発現する細胞又は第VI
II因子のアナログについてである。
【0013】第VIII因子のアナログとは、第VII
I因子の活性を有し、幾つかのアミノ酸の削除により第
VIII因子から得られた分子、又は、ある種の可能性
のある変異を受けたにもかかわらず第VIII因子の主
要な活性を保持している分子であると理解されるもので
ある。
【0014】特許WO−87/04,187,FR−A
−8,608,258及びFR−A−87/04,69
9中に記載されているように、第VIII因子又は第V
III因子のアナログの産生を最適化するために、フォ
ン・ヴィレブランド因子又はリン脂質の細胞培養培地中
への添加を考えるのが有益かもしれない。培養培地中に
おけるこのフォン・ヴィレブランド因子の存在が、第V
III因子を安定化し、かなり収率を向上させるのに効
果のあることが示されている。
【0015】直前の記載と同様の理由により、使用され
るフォン・ヴィレブランド因子は、あらゆる汚染の危険
を避けるため明らかに組換え体のフォン・ヴィレブラン
ド因子である。このことは、第VIII因子の産生にお
ける追加のステップを使用すること及び第VIII因子
の産生方法におけるコストの増加、特に2倍の価格を必
要とする。
【0016】
【発明が解決しようとする課題】それゆえ、フォン・ヴ
ィレブランド因子の使用を必要とすることなく、第VI
II因子を高い収率で得る第VIII因子の製造方法を
持つことが有用である。
【0017】従って、本発明の目的は、正確にこの問題
の解決策を提供することである。
【0018】
【課題を解決するための手段】より具体的には、本発明
は、培養培地中第VIII因子又は第VIII因子のア
ナログを産生する細胞を培養し、第VIII因子又は第
VIII因子のアナログを分離する第VIII因子又は
そのアナログの製造方法であって、前記培養培地中には
少なくとも1つのポリカチオン性の及び/又はポリアニ
オン性のポリマーを含有していることを特徴とする方法
を提供するものである。
【0019】第VIII因子のアナログのうちでも、特
に第VIII因子のアミノ酸第771〜1666を欠失
したものに対応する、第VIII因子デルタ2を挙げる
ことができ、より詳細には特許EP303,540にそ
の製法が記載されている。
【0020】本発明のポリマーは、好適にはポリオシジ
ックポリマー(polyosidic polyme
r)、特にポリサッカライドの誘導体である。これらの
ポリマーは、好適には硫酸化(sulfated)され
ている。
【0021】このタイプのポリマーは知られており、そ
れらは特にバクテリアの発酵により得た生産物、例えば
デキストランであるか、或いはそれらは抽出生産物、例
えばヘパリン型のムコポリサッカライド、低分子量のヘ
パリン又はヘパリノイド、又はデルマタン硫酸又はヘパ
ラン硫酸である。ヒドロキシエチルスターチ硫酸も、ポ
リマーとして使用できる。これらの化合物は、低いコス
ト及び利用可能性の観点から特に有用である。本発明に
使用されるポリマーは、1000から1,000,00
0の間の分子量を有している。
【0022】本発明の実施態様によると、使用されるポ
リマーは硫酸化デキストラン(sulfated de
xtran)である。この硫酸化デキストランの硫酸化
の程度は、硫黄の重量で0.5%〜約18%、好適には
10〜約18%のオーダーである。
【0023】非常に多様な分子量の硫酸化デキストラン
が、本発明において使用できる。それらの分子量は、
5,000〜700,000ダルトン(Da)まで変え
ることができる。
【0024】本発明の有利な実施態様によれば、使用で
きるポリマー誘導体は、2価の金属イオンと結合してい
る。限定的な意味ではないが、該金属イオンとしてはC
2+、Mg2+、Mn2+、Cu2+が例示され、C
2+イオンが好ましい。
【0025】培養培地中における本発明のポリカチオン
性及び/又はポリアニオン性のポリマーの存在は、第V
III因子又は第VIII因子のアナログの産生に好適
であり、フォン・ヴィレブランド因子の使用を必要とす
ること無く、フォン・ヴィレブランド因子も本発明のポ
リマーも含有しない培地中で得られるよりも相当高い収
率で第VIII因子又は第VIII因子のアナログを得
ることができる。
【0026】このように、本発明の方法に従って行われ
た、以下の実施態様に記載された実験から、次のことが
示される。即ち、分子量500,000の硫酸化デキス
トランを含有する培養培地を使用して、2つの異なる方
法により、つまり、1つは免疫酵素的方法に基づき抗第
VIII因子モノクローナル抗体を用いたことにより、
他の一つは還元又は非還元条件下でのPAGE−SDS
分析のような物理化学的方法により測定された大量の第
VIII因子デルタ2を得ることが可能になり、前記分
析では、ウシ血清の非存在下で発現される第VIII因
子デルタ2の主要型を表わす165キロダルトンの主要
なバンドを示す。
【0027】分子量(5000,8000,15,00
0,50,000,500,000ダルトン)は、第V
III因子の発現に関して本質的に等価な結果を与え
る。
【0028】ポリカチオン性の及び/又はポリアニオン
性のポリマーが添加された培養培地は、当然に第VII
I因子の産生に好適であるかもしれない他の因子を含ん
でいるかもしれない。それらは、抗プロテアーゼ因子及
び/又はその安定化剤として知られるカルシウムクロリ
ドであるかもしれない。
【0029】これらの条件下で、硫酸化デキストラン1
000mg/l及びカルシウムクロリド2mmol(最
小培地中1mM+1mM添加)を添加した培養培地にお
いて、24時間中に、外因性のフォン・ヴィレブランド
因子の非存在下で蓄積される量よりも、免疫酵素的方法
による測定で6〜7倍多い量の第VIII因子デルタ2
を蓄積することができることが示された。
【0030】第VIII因子の分子は、B領域が完全で
あっても欠失されていても、非常に局在化した高い密度
の電荷を保有する特性を有し、クーロン力(イオン型の
相互作用)で各々ポリアニオン及びポリカチオンと結合
できる、陽性及び陰性に荷電した極を生み出している。
第VIII因子の産生に関する硫酸化デキストランの有
利な効果は、デキストランの硫酸残基と第VIII因子
の塩基性アミノ酸との間の相互作用の存在により説明す
ることができる。この完全な若しくは欠失された第VI
II因子の分子の安定化は、さらに第VIII因子又は
第VIII因子誘導体の発現比率の増加にも関係してい
る。
【0031】おそらく、培養培地中で使用されている完
全な若しくは欠失された第VIII因子の分子とポリカ
チオン性及び/又はポリアニオン性のポリマーの少なく
とも一つの分子との間で複合体が形成されている。
【0032】本発明はまた、この複合体の形態の第VI
II因子又は第VIII因子誘導体に関するものであ
る。
【0033】この第VIII因子又はその誘導体の安定
された形態は、生産過程又はそれに続く過程中での前記
第VIII因子又は第VIII因子の誘導体の保存に関
して特に大きな有用性を示す。その上、第VIII因子
又はその誘導体の一つが凍結乾燥剤の一つである硫酸化
デキストランと複合体を形成する際、このようにして形
成された複合体は、良好な凍結乾燥能を示すことが期待
できる。
【0034】それゆえ、硫酸化デキストランの存在は、
第VIII因子に対する安定化効果及び細胞膜のレベル
での相互作用を介して第VIII因子の発現の刺激効果
をも有することになる。
【0035】本発明で使用される培養培地は、組換えヒ
トインスリンに由来し、外因性の蛋白質を含有していて
もよい無血清培養培地であることが好ましい。
【0036】これらの蛋白質は、好適には約4mg/l
のオーダーの濃度で使用される。
【0037】第VIII因子又は第VIII因子のアナ
ログの産生に使用される細胞は、好適には哺乳類の細胞
であり、より具体的には継続的に第VIII因子又は第
VIII因子のアナログを発現する組換えCHO細胞で
ある。
【0038】これらの細胞は、第VIII因子又は第V
III因子のアナログのcDNAを含有する組込みベク
ターを用いて、真核細胞中での発現のために必要とされ
る要素及び細胞性DNAへの該ベクターの組み込みに適
したDNAのセグメントの存在下で、トランスフェクシ
ョンされる。発現ベクターとしては、特許EP 0,3
03,540に記載されている第VIII因子のための
発現ベクター・pTG1020及び第VIII因子デル
タ2のための発現ベクター・pTG1509並びに類似
構造の発現ベクターを使用することができる。プラスミ
ド・pTG1509及びpTG1020の系は、ナショ
ナル・コレクション・オブ・ミクロバイアル・カルチャ
ーズ(National Collection of
Microbial Cultures)に、No.
I−679及びNo.I−681として寄託されてい
る。
【0039】これらの組込みベクターによるCHO細胞
のトランスフェクションは、特許EP 0,303,5
40に記載された技術に従い実行されるので、ここでは
繰り返さない。
【0040】本発明の方法は、幾つかの利点を有する。
【0041】本発明の方法によれば、遺伝子工学により
最高の収率で第VIII因子又は第VIII因子のアナ
ログを得ることができる。
【0042】本発明による方法は、培養培地中のフォン
・ヴィレブランド因子の存在を必要とせず、第VIII
因子又は第VIII因子のアナログの工業的な生産のた
めに十分な時間的・コスト的利益が得られる。
【0043】最後に、本発明で使用されるポリマーのタ
イプは、ウイルス又は他の汚染の危険が全くなく、あま
り費用はかからず、かつ専門家にとっては得るのが容易
である。
【0044】又、本発明は、本発明の方法によって得ら
れる第VIII因子又は第VIII因子のアナログに関
する。
【0045】本発明の他の利点及び特徴は、以下に示さ
れるその非制限的な実施態様により表される。
【0046】
【実施例】第VIII因子デルタ2の発現についての硫
酸化ポリオシジックポリマーの効果の研究は、クローン
CHO TG2307−11を使用して行われた。
【0047】
【実施例1】第VIII因子デルタ2の発現についての
デキストランT2000の効果の研究第一段階におい
て、参考としてデキストランT2000(ファルマシア
(PHARMACIA)分子量:2,000,000ダ
ルトン)の効果が評価された。以下の表1に、組換えフ
ォン・ヴィレブランド因子2U/mlを含有する培地と
比較して得た結果が要約されている。
【0048】デキストランT2000(非硫酸化)は、
血清及び組換えフォン・ヴィレブランド因子の非存在下
で第VIII因子デルタ2の発現にほとんど影響しな
い。従って、非置換グルコピラノシルユニットから成る
デキストラン・マトリクスは、第VIII因子デルタ2
の分子に干渉しない。
【0049】
【表1】 表1の注 解凍後の継代P15(第15回の継代)およびヒポキサ
ンチン・チミジン含有培養培地(MEM HT)中でP
12 6−ウェルプレート(6−WELL PLATE)にお
ける37℃での成長及び35℃での産生試験 培地は、24時間ごとに交換した。 ヒト インスリン(HUMAH INS) イーライリ
リー(ELI LILLY)319KK9Bデキストラ
ンT2000(ファルマシア):分子量2000000
ダルトン APTT:活性化部分トロンビン時間(activat
ed partialthrombine time)
【0050】
【実施例2】 第VIII因子デルタ2の発現についての硫酸化ポリマ
ーの効果の研究 1)硫酸化デキストラン 硫酸化デキストラン(ファルマシア 分子量;500,
000)の用量−効果(dose−effect)が行
われた。以下の表2も、組換えフォン・ヴィレブランド
因子2単位を含む同一の培地を用いて得られたデータを
示す。これらの条件下、毎日新しい培地を用いて第3日
〜第6日に亘る生産サイクルにおいて、その1つのイン
キュベーション期間(第5日〜第6日)に、ELISA
での測定により、組換えフォン・ヴィレブランド因子2
単位/mlの存在下で蓄積された活性の最大限2/3に
等しい量の第VIII因子デルタ2が得られる。
【0051】その上、これらの活性は、リン脂質の非存
在下であり、かつ、組換えフォン・ヴィレブランド因子
も硫酸化デキストランも含有しない培地中で得られる活
性のレベルの2〜3倍である。 2)ウシ・ヘパリン(カビビトラム、KABI VIT
RUM) ウシ・ヘパリンの用量−効果の研究の結果は表3に要約
される。生産の第1サイクル中、ヘパリンは第VIII
因子デルタ2の発現について非常に制限的又は全く効果
がないことが示される。インキュベーションの最後の日
であるD5−D6において、非常に弱い用量−効果関係
が認められる。
【0052】
【表2】 表2の注 解凍後の継代P24およびMEM HT FCS ND
701121中でP21 6−ウェル・プレート(NUNC製)における37℃で
の成長及び35℃での産生試験 培地は、24時間ごとに交換した。 ヒト インスリン(HUMAN INS) イーライリ
リー(ELI LILLY)319KK9B6−ウェル
・プレート(NUNC製) DS:硫酸化デキストラン 分子量:500,000
ファルマシア 17%S ND:硫酸化デキストランの抗凝固活性のために投与
(dose)できない CNTS:CNTS(CENTRE NATIONAL
DE TRANSFUSION SANGUINEり
定められた単位 FCS;ウシ胎児血清
【0053】
【表3】 表3の注 解凍後の継代P24およびMEM HT RCS ND
701121中でP21 6−ウェル・プレート(NUNC製)における37℃で
の成長及び35℃での産生試験 培地は、24時間ごとに交換した。 ヒトインスリン(HUMAN INS) イーライリリ
ー(ELI LILLY)319KK9Bウシ・ヘパリ
ン カビ・ビトラム(KAVI VITRUM) ND;ヘパリンの抗凝固活性のために投与(dose)
できない。
【0054】
【実施例3】第VIII因子デルタ2の発現率に対す
る、硫酸化デキストランと塩化カルシウムとの結合によ
り得られる効果についても、10%ウシ胎児血清、又は
2U/mlフォン・ヴィレブランド因子、又は実験にお
いて使用された血清を有しない全ての培地の組成物にお
いて使用されたヒトインシュリンのみを含有する対照培
地と比較して評価した。得られた結果を下記表4及び表
5に示す。
【0055】最適値、即ち1000mg/lの硫酸化デ
キストラン及び2mMの塩化カルシウム(最小培地中1
mM+1mM添加)に近い値については、24時間で2
0〜21単位の第VIII因子デルタ2抗原が蓄積可能
である事が判明した。即ち、2単位の組換えフォン・ヴ
ィレブランド因子の存在下で蓄積する量の約2/3の量
が蓄積し、ウシ胎児血清又はフォン・ヴィレブランド因
子の不存在下で蓄積する量の6〜7倍の量が蓄積した。
【0056】また、ウシ胎児血清又は組換えフォン・ヴ
ィレブランド因子の不存在下では、24時間で蓄積した
活性は3単位/mlを越えることは決してなく、平均
2.27単位/mlであり、換言すれば、最適量の硫酸
化デキストランの存在下で蓄積された活性よりも非常に
有意に低いものであった。
【0057】
【表4】
【0058】
【表5】 表4及び表5の注 解凍後の継代P24及びMEM HT FCS ND
701121中でP21 6−ウェル・プレート(NUNC製)における37℃で
の成長及び35℃での産生試験 培地は、24時間ごとに交換した。 ヒトインスリン(HUMAN INS) イーライリリ
ー(ELI LILLY)319KK9B6−ウェル・
プレート(NUNC製) DS:デキストラン硫酸 分子量:500,000 フ
ァルマシア 17% S*:6ウェルの平均、他の値は
2ウェルの平均 ELISA D3−D4は、サンプリング24時間後に
行われた。 ND;硫酸化デキストランの抗凝固活性のために投与
(dose)できない。
【0059】
【表6】
【0060】
【表7】 表6及び表7の注 解凍後の継代P19およびMEM HT FCS ND
701121中でP18 6−ウェル・プレート(NUNC製)における37℃で
の成長及び35℃での産生試験 培地は、24時間ごとに交換した。 ヒトインスリン(HUMAN INS) イーライリリ
ー(ELI LILLY)319KK9B6−ウェル・
プレート(NUNC製) ヒドロキシエチルスターチ硫酸(HESS) 分子量:
200,000 フェイファー(PFEIFER)及び
ランゲン(LANGEN) 3.76及び13.1%
S 濃縮化vWFrec CNTS 63.7U/ML
(11/12/89) ND:硫酸化ポリマーの抗凝固活性のために投与(do
se)できない D4−D5のELISA:抗原(Ag)のインキュベー
ション14時間、20℃
【0061】
【実施例4】他のポリマー及び、特にカルボキシメチル
セルロース、硫黄が3.76及び13.1%のヒドロキ
シエチルスターチ硫酸(分子量:200,000)が、
血清及びフォン・ヴィレブランド因子の無い培地中で第
VIII因子デルタ2の発現比率に影響を与える能力で
評価され、これは、ウシ血清10%又は組換えフォン・
ヴィレブランド因子 2ユニット/mlを含有するコン
トロール及び血清もフォン・ヴィレブランド因子も含有
しないコントロールに対してなされた。
【0062】試験された濃度におけるカルボキシメチル
セルロースは、第VIII因子デルタ2の発現に関し顕
著な効果を持たなかったが、一方、硫黄が13%で、濃
度が0.5及び1.0g/lのスターチヒドロキシエチ
ル硫酸は,24時間で第VIII因子デルタ2 約20
ユニットのC:Ag/mlまで蓄積でき、それは、組換
えフォン・ヴィレブランド因子 2ユニット/mlの存
在下に同一の期間でえられたものの約2/3であると言
うことができる。硫黄をただ3.76%だけ含む同一の
ポリマーは、第VIII因子デルタ2の発現について相
当少ない効果を有するのみである。この実験は、硫酸化
ポリサッカライドの有用性を確認し、ポリマーと第VI
II因子デルタ2との相互作用における硫酸化の程度の
重要性を示すものである。
【0063】
【実施例5】 第VIII因子に発現についての硫酸化デキストランの
効果の研究 該研究は、完全な第VIII因子の分子を発現するクロ
ーンCHO TG 1566−3013を使用して行わ
れる。
【0064】図1は、6ウェルプレートにおける第VI
II因子の発現についての硫酸化デキストラン(ファル
マシア 分子量;500,000)の用量−効果の存在
を示す。
【0065】2日にわたる生産、D4−D5及びD5−
D6について、第VIII因子の生産は、硫酸化デキス
トランのないコントロールと比較して十分に増加してい
る。域値は、硫酸化デキストラン500mg/lに達し
た。
【0066】
【実施例6】 化学的に限定された培地での第VIII因子の発現につ
いてのvWF及び硫酸化デキストランの効果の比較 この研究は、1リットルのバイオリアクター(SGI)
中で行われた。完全な第VIII因子を発現するクロー
ンCHO TG 1566−3013は、4g/lの濃
度の支持体クルチスフェアー(cultispher)
−G(架橋したウシゼラチンの微小孔ビーズ)上で培養
された。
【0067】5%FCSを含有するイスコブ(Isco
vu)培地中での4日間の成長段階の後に、3つの異な
る生産培地の影響が調べられた: *5%FCSは含有するが、vWF及び硫酸化デキスト
ランは含有しない培地(培地A) *FCSを含有せず、1 UI vWF/mlを含有す
る培地(培地B) *vWF又はFCSは含有しないが、硫酸化デキストラ
ン(分子量;50,000)200mg/lを含有する
培地(培地C) 結果は図2に示される。
【0068】第VIII因子の活性は、硫酸化デキスト
ランを含有しない培地中では、培地1リットル当たりの
APTTユニット(ATPP/l)により表され、硫酸
化デキストランを含有する培地中ではCagユニットに
より表された(ELISAアッセイ)。APTT及びE
LISAのアッセイの間の比率は、1.2〜1.4のオ
ーダーである。
【0069】培地B中で達成された産生は、培地A中で
達成されたものよりも高い(680±67U APTT
/l対502±96U APTT/l)。培地C中で達
成された産生は、培地B中で得られたものと匹敵する。
【0070】結論として、硫酸化デキストランは、化学
的に限定された培地中で第VIII因子の発現を増加さ
せるためのフォン・ヴィレブランド因子に代替できるこ
とが明確に示された。
【図面の簡単な説明】
【図1】硫酸化デキストランの用量−効果の存在を示す
グラフである。
【図2】化学的に限定された培地での第VIII因子の
発現についてのvWF及び硫酸化デキストランの効果の
比較を示すグラフである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12N 15/12 (72)発明者 フィリップ アダモヴィクツ フランス国 92420 ヴォクレッソン ア レ デザラ 16

Claims (16)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】少なくとも1つのポリカチオン性及び/又
    はポリアニオン性のポリマーの誘導体を含有する培養培
    地中、第VIII因子又は第VIII因子のアナログを
    産生する細胞を培養し、前記第VIII因子又は第VI
    II因子のアナログを分離することを特徴とする第VI
    II因子又はそのアナログを製造する方法。
  2. 【請求項2】前記ポリマーが、ポリオシジック(pol
    yosidic)ポリマーである請求項1に記載の方
    法。
  3. 【請求項3】前記ポリマーが、ポリサッカライド誘導体
    である請求項1に記載の方法。
  4. 【請求項4】前記ポリマーの誘導体が、ポリ硫酸化され
    た誘導体である請求項1〜3のいずれかに記載の方法。
  5. 【請求項5】前記ポリマーが、硫酸化ポリサッカライド
    である請求項1に記載の方法。
  6. 【請求項6】前記ポリ硫酸化された誘導体が、ヘパリ
    ン、硫酸化デキストラン、ヒドロキシエチルスターチ硫
    酸の中から好適に選択されたものである請求項4に記載
    の方法。
  7. 【請求項7】前記ポリマーが、1000から1,00
    0,000の間の分子量を有している請求項1〜6のい
    ずれか一つに記載の方法。
  8. 【請求項8】5,000〜700,000の間の分子量
    を有し、硫酸化の程度が硫黄の重量比で0.5〜18重
    量%である硫酸化デキストランに関する請求項7に記載
    の方法。
  9. 【請求項9】前記硫酸化デキストランが、好適には硫酸
    化の程度が10〜18重量%である請求項8に記載の方
    法。
  10. 【請求項10】前記ポリマーの誘導体が、2価の金属イ
    オン、好適にはCa2+と結合している請求項1〜9の
    いずれかに記載の方法。
  11. 【請求項11】調製される第VIII因子のアナログ
    が、第VIII因子デルタ2である請求項1〜9のいず
    れかに記載の方法。
  12. 【請求項12】培養中の前記細胞が、哺乳類の細胞であ
    る請求項1〜10のいずれかに記載の方法。
  13. 【請求項13】培養中の前記細胞が、第VIII因子又
    は第VIII因子のアナログの分子を継続的に発現する
    組換えCHO細胞である請求項11に記載の方法。
  14. 【請求項14】前記培養培地が、血清を全く含まない培
    地である請求項1〜9のいずれかに記載の方法。
  15. 【請求項15】請求項1〜13に記載の方法を使用する
    ことによって得た、第VIII因子又は第VIII因子
    のアナログとポリカチオン性及び/又はポリアニオン性
    のポリマーの少なくとも一つの誘導体との複合体。
  16. 【請求項16】請求項1〜13のいずれか一つに記載の
    方法を使用することによって得た第VIII因子又は第
    VIII因子のアナログ。
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