JPH06122624A - 3−置換−1−アルキルアミノ−2−プロパノールの不安定なケトン誘導体のβ−アドレナリン作動効果遮断薬としての応用 - Google Patents
3−置換−1−アルキルアミノ−2−プロパノールの不安定なケトン誘導体のβ−アドレナリン作動効果遮断薬としての応用Info
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 3−置換−1−アルキルアミノ−2−プロパ
ノールの不安定なケトン誘導体のβ−アドレナリン作動
効果遮断薬としての応用。 【構成】 【化1】 (−X−は、−O−、−CH2 −であるか、または存在
せず、=Yは=O、=N−NH2 、=N−NR1 R
2 (ただし、R1 とR2 はHまたは1〜8個の炭素原子
を有するアルキル基であり、同一でも異なっていてもよ
い)等であり、Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキ
ル基または7〜20個の炭素原子を有するアラルキル基で
あり、このアラルキル基はそのアリール基上にメトキシ
基を有していてもよく、ArはArは3位に芳香族置換
基または複素環置換基を有するβーアドレナリン作動性
効果遮断特性を有する1−アルキルアミノ−2−プロパ
ノールの3−芳香族残基または複素環残基である〕また
は薬理学的に許容されるその酸添加塩を、治療を必要と
するヒトを除く温体動物の目に、眼圧を低下させるのに
有効な量投与する、ヒトを除く温体動物の特に緑内障治
療における眼圧を低下させる方法。
ノールの不安定なケトン誘導体のβ−アドレナリン作動
効果遮断薬としての応用。 【構成】 【化1】 (−X−は、−O−、−CH2 −であるか、または存在
せず、=Yは=O、=N−NH2 、=N−NR1 R
2 (ただし、R1 とR2 はHまたは1〜8個の炭素原子
を有するアルキル基であり、同一でも異なっていてもよ
い)等であり、Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキ
ル基または7〜20個の炭素原子を有するアラルキル基で
あり、このアラルキル基はそのアリール基上にメトキシ
基を有していてもよく、ArはArは3位に芳香族置換
基または複素環置換基を有するβーアドレナリン作動性
効果遮断特性を有する1−アルキルアミノ−2−プロパ
ノールの3−芳香族残基または複素環残基である〕また
は薬理学的に許容されるその酸添加塩を、治療を必要と
するヒトを除く温体動物の目に、眼圧を低下させるのに
有効な量投与する、ヒトを除く温体動物の特に緑内障治
療における眼圧を低下させる方法。
Description
【0001】
【発明の分野】本発明は、β−アドレナリン作動効果遮
断特性を有する3−置換−1−アルキルアミノ−2−プ
ロパノール誘導体を用いた眼圧を低下させる方法と、そ
れを含む眼圧を低下させるための薬理組成物とに関する
ものである。
断特性を有する3−置換−1−アルキルアミノ−2−プ
ロパノール誘導体を用いた眼圧を低下させる方法と、そ
れを含む眼圧を低下させるための薬理組成物とに関する
ものである。
【0002】
【従来の技術】β−アドレナリン作動効果遮断薬 (β-a
drene-rgic blocker) が緑内障の治療に有効であること
は、1967年に最初に報告されている〔フィリップス(Phi
llips)達、Brit. J. Ophthal. 1967年、第51巻、 222
頁〕。1978年にはチモロールの市販が承認され、それ以
来この薬が効果的な緑内障の治療薬として眼科医の間で
極めて広く使用されている。しかし最近になって、眼に
局所的にチモールを投与した結果として、心臓、血管、
呼吸、CNS、眼に対して多くの重大な副作用が発生し
ていることが報告されている〔アーマッド(Ahmad) 「ザ
ランセット (TheLancet) 」、1979年、第2巻、1028
頁、バスカーク(Buskirk) 「眼科学(Ophthalmology)
」、1980年、第87巻、447 頁、リンケヴィッチ(Linkew
ich) 達、Am. J.Hosp. Pharm. 1981年、第38巻、 699
頁〕。現在では、チモールは緑内障の治療に使われる唯
一のβ−アドレナリン作動効果遮断薬ではなくなってお
り、最近では、ベファノロール、カルテオロール、メチ
プラノロールが市販され、さらに、別の多くの新しいβ
−アドレナリン作動効果遮断薬(例えば、L−ブノロー
ル、ベタクソロール、セリプロロール、セタモロールな
ど)が緑内障の治療薬として研究されている。現在で
は、全身性の吸収が最小で且つ/または全身性の副作用
がなく、しかも持続的且つ制御可能な状態で目の各部分
に供給できる緑内障の治療薬の開発が望まれるようにな
っている。
drene-rgic blocker) が緑内障の治療に有効であること
は、1967年に最初に報告されている〔フィリップス(Phi
llips)達、Brit. J. Ophthal. 1967年、第51巻、 222
頁〕。1978年にはチモロールの市販が承認され、それ以
来この薬が効果的な緑内障の治療薬として眼科医の間で
極めて広く使用されている。しかし最近になって、眼に
局所的にチモールを投与した結果として、心臓、血管、
呼吸、CNS、眼に対して多くの重大な副作用が発生し
ていることが報告されている〔アーマッド(Ahmad) 「ザ
ランセット (TheLancet) 」、1979年、第2巻、1028
頁、バスカーク(Buskirk) 「眼科学(Ophthalmology)
」、1980年、第87巻、447 頁、リンケヴィッチ(Linkew
ich) 達、Am. J.Hosp. Pharm. 1981年、第38巻、 699
頁〕。現在では、チモールは緑内障の治療に使われる唯
一のβ−アドレナリン作動効果遮断薬ではなくなってお
り、最近では、ベファノロール、カルテオロール、メチ
プラノロールが市販され、さらに、別の多くの新しいβ
−アドレナリン作動効果遮断薬(例えば、L−ブノロー
ル、ベタクソロール、セリプロロール、セタモロールな
ど)が緑内障の治療薬として研究されている。現在で
は、全身性の吸収が最小で且つ/または全身性の副作用
がなく、しかも持続的且つ制御可能な状態で目の各部分
に供給できる緑内障の治療薬の開発が望まれるようにな
っている。
【0003】目への局所投与の後に、アドレナロンその
ものではなくアドレナロンのエステルが還元と加水分解
によってアドレナリン(エピネフリン)に変換され、作
用させたい部位である虹彩−毛様体の所に供給されると
いうことは既に分っている。〔ボードア(Bodor) 達、Ex
p. Eye. Res.、1984年、第38巻、621 頁〕。親油性ケト
ンが虹彩−毛様体において同様に還元されるかどうかを
調べる研究も行われている。
ものではなくアドレナロンのエステルが還元と加水分解
によってアドレナリン(エピネフリン)に変換され、作
用させたい部位である虹彩−毛様体の所に供給されると
いうことは既に分っている。〔ボードア(Bodor) 達、Ex
p. Eye. Res.、1984年、第38巻、621 頁〕。親油性ケト
ンが虹彩−毛様体において同様に還元されるかどうかを
調べる研究も行われている。
【0004】アドレナリンなどのβ−ヒドロキシルアミ
ンでもあるケトン前駆体が、還元過程を経て虹彩−毛様
体内で活性なβ−アドレナリン作動効果遮断薬に変換さ
れるであろうという仮説の基に、多くのβ−アドレナリ
ン作動効果遮断薬に対応するケトン(すなわちプロプラ
ノロール、チモロール、カルテオロールなど)の合成が
試みられたが、これらのβ−アミノケトンエステルは化
学的に不安定であるため、その合成には成功していな
い。
ンでもあるケトン前駆体が、還元過程を経て虹彩−毛様
体内で活性なβ−アドレナリン作動効果遮断薬に変換さ
れるであろうという仮説の基に、多くのβ−アドレナリ
ン作動効果遮断薬に対応するケトン(すなわちプロプラ
ノロール、チモロール、カルテオロールなど)の合成が
試みられたが、これらのβ−アミノケトンエステルは化
学的に不安定であるため、その合成には成功していな
い。
【0005】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、加水
分解と還元との複合過程によって虹彩−毛様体内で活性
なβ−アドレナリン作動効果遮断薬に容易に変換可能な
β−アドレナリン作動効果遮断特性を有するβ−ヒドロ
キシルアミンのケトン前駆体の加水分解に敏感な前駆体
を用いて眼圧を低下させる方法を提供することにある。
分解と還元との複合過程によって虹彩−毛様体内で活性
なβ−アドレナリン作動効果遮断薬に容易に変換可能な
β−アドレナリン作動効果遮断特性を有するβ−ヒドロ
キシルアミンのケトン前駆体の加水分解に敏感な前駆体
を用いて眼圧を低下させる方法を提供することにある。
【0006】
【課題を解決するための手段】本発明の対象は、下記
〔化22〕で表される化合物:
〔化22〕で表される化合物:
【0007】
【化22】 〔ここで、−X−は、−O−、−CH2 −であるか、ま
たは存在せず、=Yは、=O、=N−NH2 、=N−N
R1 R2 (ただし、R1 とR2 はHまたは1〜8個の炭
素原子を有するアルキル基であり、同一でも異なってい
てもよい)、下記〔化12〕、〔化13〕または〔化1
4〕であり、
たは存在せず、=Yは、=O、=N−NH2 、=N−N
R1 R2 (ただし、R1 とR2 はHまたは1〜8個の炭
素原子を有するアルキル基であり、同一でも異なってい
てもよい)、下記〔化12〕、〔化13〕または〔化1
4〕であり、
【0008】
【化23】
【0009】
【化24】
【0010】
【化25】 (ただし、R3 は上記定義のR1 、−COOR1 または
−CON (R1)2である) 、Rは1〜12個の炭素原子を
有するアルキル基または7〜20個の炭素原子を有するア
ラルキル基であり、このアラルキル基はそのアリール基
上にメトキシ基を有していてもよく、ArはArは3位
に芳香族置換基または複素環置換基を有するβーアドレ
ナリン作動性効果遮断特性を有する1−アルキルアミノ
−2−プロパノールの3−芳香族残基または複素環残基
である〕または薬理学的に許容されるその酸添加塩を、
治療を必要とするヒトを除く温体動物の目に、眼圧を低
下させるのに有効な量投与することを特徴とするヒトを
除く温体動物の特に緑内障治療における眼圧を低下させ
る方法にある。
−CON (R1)2である) 、Rは1〜12個の炭素原子を
有するアルキル基または7〜20個の炭素原子を有するア
ラルキル基であり、このアラルキル基はそのアリール基
上にメトキシ基を有していてもよく、ArはArは3位
に芳香族置換基または複素環置換基を有するβーアドレ
ナリン作動性効果遮断特性を有する1−アルキルアミノ
−2−プロパノールの3−芳香族残基または複素環残基
である〕または薬理学的に許容されるその酸添加塩を、
治療を必要とするヒトを除く温体動物の目に、眼圧を低
下させるのに有効な量投与することを特徴とするヒトを
除く温体動物の特に緑内障治療における眼圧を低下させ
る方法にある。
【0011】本発明の他の対象は、β−アドレナリン作
動効果遮断に有効な量の上記の化合物またはその酸付加
塩の1つと、この化合物またはその酸付加塩に対して薬
理学的に許容可能な基剤とによって構成される単位用量
の形の薬理組成物にある。
動効果遮断に有効な量の上記の化合物またはその酸付加
塩の1つと、この化合物またはその酸付加塩に対して薬
理学的に許容可能な基剤とによって構成される単位用量
の形の薬理組成物にある。
【0012】本発明の対象は、眼圧を低下させるのに有
効な量の下記〔化26〕:
効な量の下記〔化26〕:
【0013】
【化26】 (ここで、−X−は−O−、−CH2 −であるか、また
は存在せず、Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキル
基または7〜20個の炭素原子を有するアラルキル基であ
り、このアラルキル基はそのアリール基上にメトキシ基
を有していてもよく、Arは3−位に芳香族置換基また
は複素環置換基を有していてもよいβーアドレナリン作
動性効果遮断特性を有する1−アルキルアミノ−2−プ
ロパノールの3−芳香族残基または複素環残基である)
を有するβーアドレナリン作動性効果遮断剤をヒトを除
く温体動物の視覚組織中に生じさせる方法であって、視
覚組織中で、下記〔化27〕:
は存在せず、Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキル
基または7〜20個の炭素原子を有するアラルキル基であ
り、このアラルキル基はそのアリール基上にメトキシ基
を有していてもよく、Arは3−位に芳香族置換基また
は複素環置換基を有していてもよいβーアドレナリン作
動性効果遮断特性を有する1−アルキルアミノ−2−プ
ロパノールの3−芳香族残基または複素環残基である)
を有するβーアドレナリン作動性効果遮断剤をヒトを除
く温体動物の視覚組織中に生じさせる方法であって、視
覚組織中で、下記〔化27〕:
【0014】
【化27】 (ここで、Ar、XおよびRは上記と同じ定義を有する)
の対応ケトン中間体を介して上記βーアドレナリン作動
性効果遮断剤〔化27〕へ生物学的に再変換可能な〔化
27〕のβーアドレナリン作動性効果遮断剤の前駆体
を、ヒトを除く温体動物の視覚組織中に上記ケトン中間
体を介して最終的に眼圧を低下させるのに有効な量の
〔化27〕のβーアドレナリン作動性効果遮断剤を生じ
させるのに十分な量だけ、ヒトを除く温体動物の目に投
与することを特徴とする方法にある。
の対応ケトン中間体を介して上記βーアドレナリン作動
性効果遮断剤〔化27〕へ生物学的に再変換可能な〔化
27〕のβーアドレナリン作動性効果遮断剤の前駆体
を、ヒトを除く温体動物の視覚組織中に上記ケトン中間
体を介して最終的に眼圧を低下させるのに有効な量の
〔化27〕のβーアドレナリン作動性効果遮断剤を生じ
させるのに十分な量だけ、ヒトを除く温体動物の目に投
与することを特徴とする方法にある。
【0015】
【作用】本発明は、本発明の上記化合物の加水分解に敏
感なオキシム型またはその他の型の不安定なケトン基は
虹彩−毛様体の所まで供給でき、この部位において加水
分解および還元されて活性なβ−アドレナリン作動効果
遮断特性を有するアミノアルコールになるという発見に
基づいている。Rは立体障害基である、例えばイソプロ
ピル、t−ブチルなどの第2または第3アルキルとなっ
ている化合物を用いるのが好ましい。好ましいアラルキ
ル基としては、ベンジル、3,4−ジメトキシフェネチ
ル、1−フェネチルエチルなどを挙げることができる。
「アラルキル」という語は、任意の炭化水素基を表すの
に用いられていることは理解できよう。
感なオキシム型またはその他の型の不安定なケトン基は
虹彩−毛様体の所まで供給でき、この部位において加水
分解および還元されて活性なβ−アドレナリン作動効果
遮断特性を有するアミノアルコールになるという発見に
基づいている。Rは立体障害基である、例えばイソプロ
ピル、t−ブチルなどの第2または第3アルキルとなっ
ている化合物を用いるのが好ましい。好ましいアラルキ
ル基としては、ベンジル、3,4−ジメトキシフェネチ
ル、1−フェネチルエチルなどを挙げることができる。
「アラルキル」という語は、任意の炭化水素基を表すの
に用いられていることは理解できよう。
【0016】Arは、3-芳香族置換または3-複素環式化
合物置換された公知の1−アルキルアミノ−2−プロパ
ノール−β−アドレナリン作動効果遮断薬の芳香族残基
または複素環式化合物残基であり、例えば下記の〔化2
8〕〜〔化30〕に示す残基にすることができる。
合物置換された公知の1−アルキルアミノ−2−プロパ
ノール−β−アドレナリン作動効果遮断薬の芳香族残基
または複素環式化合物残基であり、例えば下記の〔化2
8〕〜〔化30〕に示す残基にすることができる。
【0017】
【化28】
【0018】
【化29】
【0019】
【化30】
【0020】本発明の酸付加塩を形成するには、薬理学
的に許容な任意の酸を用いることができ、例えばHCl、
H2 SO4 、H3 PO4 、マレイン酸、コハク酸、メタ
ンスルホン酸、クエン酸などがある。
的に許容な任意の酸を用いることができ、例えばHCl、
H2 SO4 、H3 PO4 、マレイン酸、コハク酸、メタ
ンスルホン酸、クエン酸などがある。
【0021】本発明の好ましい化合物は、以下の〔表
1〕〜〔表8〕に記載の化学式を有する化合物である。
1〕〜〔表8〕に記載の化学式を有する化合物である。
【0022】
【表1】
【0023】
【表2】
【0024】
【表3】
【0025】
【表4】
【0026】
【表5】
【0027】
【表6】
【0028】
【表7】
【0029】
【表8】 特に好ましいものは、化合物番号1e、1h、1l、1
cc、1k、1p、1t、1v、1bb、1i、1sの
化合物である。本発明の生成物を製造するのには〔化3
1〕に示す全体的反応系を利用することができる。
cc、1k、1p、1t、1v、1bb、1i、1sの
化合物である。本発明の生成物を製造するのには〔化3
1〕に示す全体的反応系を利用することができる。
【0030】
【化31】
【0031】少量のモルホリンを触媒として用いたAr
−OHとエピクロロヒドリンとの従来の反応では、クロ
ロヒドリン(1)とエポキシド(2)との混合物が得られる。
後者は濃HCl処理でクロロヒドリン(1) に変換される。
クロロヒドリン(1) をプフィッツナー−モファット(Pfi
tzner-Moffat) 法〔プフィッツナー (Pfitzner) 達、J.
Am. Chem. Soc. 第87巻、1965年、5661〜5670頁〕で酸
化させるとケトン(3)ができる。次に、ケトン(3) をヒ
ドロキシルアミンHClと反応させるとオキシム(4) がで
きる。このオキシムはZ−異性体とE−異性体の混合物
である。通常の場合はこの比は約2:1であり、この比
はNMRによって決定される〔シルヴァーシュタイン(S
ilverstein) 、「有機化合物の分光分析による同定 (Sp
ectrometric identification oforganic compounds)」
1974年、第3版、クレイトンバスラー (G. Clayton Bas
sler) およびモリル(Terence C. Morril) 編、ニューヨ
ーク、ワイリー(Wiley) 社〕。
−OHとエピクロロヒドリンとの従来の反応では、クロ
ロヒドリン(1)とエポキシド(2)との混合物が得られる。
後者は濃HCl処理でクロロヒドリン(1) に変換される。
クロロヒドリン(1) をプフィッツナー−モファット(Pfi
tzner-Moffat) 法〔プフィッツナー (Pfitzner) 達、J.
Am. Chem. Soc. 第87巻、1965年、5661〜5670頁〕で酸
化させるとケトン(3)ができる。次に、ケトン(3) をヒ
ドロキシルアミンHClと反応させるとオキシム(4) がで
きる。このオキシムはZ−異性体とE−異性体の混合物
である。通常の場合はこの比は約2:1であり、この比
はNMRによって決定される〔シルヴァーシュタイン(S
ilverstein) 、「有機化合物の分光分析による同定 (Sp
ectrometric identification oforganic compounds)」
1974年、第3版、クレイトンバスラー (G. Clayton Bas
sler) およびモリル(Terence C. Morril) 編、ニューヨ
ーク、ワイリー(Wiley) 社〕。
【0032】主生成物であるオキシム(4) (E−)は再
結晶によりベンゼンから分離することができる。オキシ
ム(4) をTHF中でイソプロピルアミンで処理すると、
ほぼ純粋なZ−異性体からなるオキシム(5) が得られ
る。このオキシム(5) はHCl塩(6) に変換することがで
きる。〔化32〕のラセミβ−アドレナリン作動効果遮
断薬:
結晶によりベンゼンから分離することができる。オキシ
ム(4) をTHF中でイソプロピルアミンで処理すると、
ほぼ純粋なZ−異性体からなるオキシム(5) が得られ
る。このオキシム(5) はHCl塩(6) に変換することがで
きる。〔化32〕のラセミβ−アドレナリン作動効果遮
断薬:
【0033】
【化32】 をDCC/(COCl)2 で−20℃〜−78℃で酸化させる
と、〔化33〕のケトンが得られる。
と、〔化33〕のケトンが得られる。
【0034】
【化33】 このケトンは、H2 NOH・HClを添加することによ
り、分離することなしにHCl塩(6) に変換することがで
きる。以下、本発明を実施例により説明するが、本発明
が以下の実施例に限定されることはない。実施例では、
融点はフィッシャー−ジョーンズ(Fisher-Johns)融点装
置を用いて決定され、較正はされていない。バリアン(V
arian)社のEM390 NMRスペクトロメータを用いて90
MHzのNMRスペクトルを測定した。薄膜クロマトグラ
フィー(TLC)は、0.25/mmメルク(Merk)シリカゲル
60F− 254ガラス板上で実施された。
り、分離することなしにHCl塩(6) に変換することがで
きる。以下、本発明を実施例により説明するが、本発明
が以下の実施例に限定されることはない。実施例では、
融点はフィッシャー−ジョーンズ(Fisher-Johns)融点装
置を用いて決定され、較正はされていない。バリアン(V
arian)社のEM390 NMRスペクトロメータを用いて90
MHzのNMRスペクトルを測定した。薄膜クロマトグラ
フィー(TLC)は、0.25/mmメルク(Merk)シリカゲル
60F− 254ガラス板上で実施された。
【0035】
【実施例】実施例1 プロパノロンオキシム(6a)の典型合成例である。1−(イソプロピルアミノ)-3-(1−ナフチルオシ)-2−
プロパノンオキシム・HCl、プロパノローンオキシム塩
酸(6a) 3−クロロ−1−(1−ナフチルオキシ)−2−プロパ
ノール(1a) 1−ナフトール(20g、0.14モル)とエピクロロヒドリ
ン(51.3g、0.55モル)と、モルホリン(0.7ml) との混
合物を、 7.5時間、 100〜120 ℃に加熱した。過剰なエ
ピクロロヒドリンとモルホリンは減圧下で除去した。残
留物をクロロホルム中に溶解させ、10mlの濃HClと一緒
にシェイキングすることによりクロロヒドリン(1a)に変
換させた。有機層を分離して水洗し、次に希NaHCO3
を用いて洗浄し、最後に水洗した。生成物を無水MgSO
4 上で乾燥させて濃縮すると、29.8g(98%) の粗生成
物が得られた。この粗生成物は精製せずに次のステップ
(酸化)で使用した。粗生成物(1a)のサンプルの精製を
カラムクロマトグラフィーによって行った。〔シリカゲ
ル、アルドリッヒ(Aldrich) 100〜 200メッシュ、60Å
×4W、溶離液CHCl3 〕。NMR (CDCl3 ) の結果
は以下の通り: δ 8.15(m,1H)、δ 7.75 (m、1H)、δ 7.5〜
7.2(m,4H)、δ 6.7(d,d,J=7Hz, J=1H
z, 1H)、δ 4.35〜3.50(m, 5H)、δ 2.9(d,
J=6Hz, 1H)。
プロパノンオキシム・HCl、プロパノローンオキシム塩
酸(6a) 3−クロロ−1−(1−ナフチルオキシ)−2−プロパ
ノール(1a) 1−ナフトール(20g、0.14モル)とエピクロロヒドリ
ン(51.3g、0.55モル)と、モルホリン(0.7ml) との混
合物を、 7.5時間、 100〜120 ℃に加熱した。過剰なエ
ピクロロヒドリンとモルホリンは減圧下で除去した。残
留物をクロロホルム中に溶解させ、10mlの濃HClと一緒
にシェイキングすることによりクロロヒドリン(1a)に変
換させた。有機層を分離して水洗し、次に希NaHCO3
を用いて洗浄し、最後に水洗した。生成物を無水MgSO
4 上で乾燥させて濃縮すると、29.8g(98%) の粗生成
物が得られた。この粗生成物は精製せずに次のステップ
(酸化)で使用した。粗生成物(1a)のサンプルの精製を
カラムクロマトグラフィーによって行った。〔シリカゲ
ル、アルドリッヒ(Aldrich) 100〜 200メッシュ、60Å
×4W、溶離液CHCl3 〕。NMR (CDCl3 ) の結果
は以下の通り: δ 8.15(m,1H)、δ 7.75 (m、1H)、δ 7.5〜
7.2(m,4H)、δ 6.7(d,d,J=7Hz, J=1H
z, 1H)、δ 4.35〜3.50(m, 5H)、δ 2.9(d,
J=6Hz, 1H)。
【0036】3−クロロ−1−(1−ナフチルオキシ)
−2−プロパノン(3a) 1,3-ジシロヘキシルカルボジイミド(DCC)(47.1
g、 0.228モル、DMSO(36ml)の溶液と、ジエチル
エーテル(300ml) に溶解させたピリジン(3.6ml)に、ジ
エチルエーテル(36 ml) に溶解させた(1a)の溶液(18.0
g、76ミリモル)を添加した。次に、この溶液に氷水で
冷却しながらジエチルエーテルに溶解させたトリフルオ
ロ酢酸溶液(1.8ml) を滴下し、この混合物を室温で1時
間撹拌し、一晩放置した。MeOHに溶解させたシュウ酸
(18.0g)溶液を少量この反応混合物に添加し、 0.5時
間撹拌を続けた。ジシクロヘキシルウレアを濾過し、エ
ーテルで洗浄した。濾過液を5%NaHCO3 溶液で洗浄
し、次に、水で洗浄し、無水MgSO4 上で乾燥させた。
この濾過液から、所望の化合物が 6.3g回収された。母
液を減圧下で濃縮し、残留物を2−プロパノールから再
結晶化してさらに 3.3gを得た。全収量は 9.6gであっ
た(Y=56%)。この生成物は、精製せずに次のステッ
プで使用した。純粋なサンプルはカラムクロマトグラフ
ィーにより得られた(シリカゲル、アルドリッヒ 100〜
200メッシュ、60Å×7W、溶離液CHCl3:ヘキサン=
3:1)。NMR(CDCl3)の結果は以下の通り。 δ 8.25 (m、1H) 、δ 7.80 (m,1H)、δ 7.65
〜7.20(m,4H)、δ 6.75(d,J=7Hz, 1H)、
δ 4.83 (s,2H)、δ 4.43 (s,2H)
−2−プロパノン(3a) 1,3-ジシロヘキシルカルボジイミド(DCC)(47.1
g、 0.228モル、DMSO(36ml)の溶液と、ジエチル
エーテル(300ml) に溶解させたピリジン(3.6ml)に、ジ
エチルエーテル(36 ml) に溶解させた(1a)の溶液(18.0
g、76ミリモル)を添加した。次に、この溶液に氷水で
冷却しながらジエチルエーテルに溶解させたトリフルオ
ロ酢酸溶液(1.8ml) を滴下し、この混合物を室温で1時
間撹拌し、一晩放置した。MeOHに溶解させたシュウ酸
(18.0g)溶液を少量この反応混合物に添加し、 0.5時
間撹拌を続けた。ジシクロヘキシルウレアを濾過し、エ
ーテルで洗浄した。濾過液を5%NaHCO3 溶液で洗浄
し、次に、水で洗浄し、無水MgSO4 上で乾燥させた。
この濾過液から、所望の化合物が 6.3g回収された。母
液を減圧下で濃縮し、残留物を2−プロパノールから再
結晶化してさらに 3.3gを得た。全収量は 9.6gであっ
た(Y=56%)。この生成物は、精製せずに次のステッ
プで使用した。純粋なサンプルはカラムクロマトグラフ
ィーにより得られた(シリカゲル、アルドリッヒ 100〜
200メッシュ、60Å×7W、溶離液CHCl3:ヘキサン=
3:1)。NMR(CDCl3)の結果は以下の通り。 δ 8.25 (m、1H) 、δ 7.80 (m,1H)、δ 7.65
〜7.20(m,4H)、δ 6.75(d,J=7Hz, 1H)、
δ 4.83 (s,2H)、δ 4.43 (s,2H)
【0037】3−クロロ−1−(1−ナフチルオキシ)
−2−プロパノンオキシム(4a) (3a)(1.0g、4.26ミリモル)と、塩酸ヒドロキシルアミ
ン(0.36g、 5.1ミリモル)と、DMSO(10ml)との
混合物を30分間、40〜60℃に加熱した。水(40ml)を導
入して溶液をCHCl3 で抽出した。有機層を水で数回洗
浄し、無水硫酸マグネシウム上で乾燥させ、減圧下で濃
縮した。粗生成物は 1.1g(収率= 100%)であった。
カラムクロマトグラフィーによりさらに精製を行った
(シリカゲル、アルドリッヒ 100〜 200メッシュ、60Å
×30W、溶離液ベンゼン:AcOEt=4:1)。生成物は
Z−異性体とE−異性体との混合物であった(E:Z=
2:1)。この異性体混合物は次のステップで使用する
ことができた。NMR(CHCl3 +DMSO−d6(1
滴))の結果は以下の通り。 δ 10.85(s, 0.33H,Z−異性体の−NOH)、δ 1
0.75(s.0.67H, E−異性体の−NOH)、δ 8.4〜
8.1 (m,1H)、δ 7.9〜7.65(m,1H)、δ 7.6
〜 7.2(m,4H)、δ 6.95 〜 6.7(m,1H)、δ
5.2(s、1.33H,E−異性体のOCH2)、δ 4.9(s,
0.67H,Z−異性体のOCH2)、δ 4.45(s、0.67H,Z
-異性体の−CH2Cl)、δ 4.3(s、1.33H, E-異性体の−C
H2Cl)。 E−異性体は、ベンゼンからの再結晶によって粗生成物
から分離された。融点は 162〜 163℃。
−2−プロパノンオキシム(4a) (3a)(1.0g、4.26ミリモル)と、塩酸ヒドロキシルアミ
ン(0.36g、 5.1ミリモル)と、DMSO(10ml)との
混合物を30分間、40〜60℃に加熱した。水(40ml)を導
入して溶液をCHCl3 で抽出した。有機層を水で数回洗
浄し、無水硫酸マグネシウム上で乾燥させ、減圧下で濃
縮した。粗生成物は 1.1g(収率= 100%)であった。
カラムクロマトグラフィーによりさらに精製を行った
(シリカゲル、アルドリッヒ 100〜 200メッシュ、60Å
×30W、溶離液ベンゼン:AcOEt=4:1)。生成物は
Z−異性体とE−異性体との混合物であった(E:Z=
2:1)。この異性体混合物は次のステップで使用する
ことができた。NMR(CHCl3 +DMSO−d6(1
滴))の結果は以下の通り。 δ 10.85(s, 0.33H,Z−異性体の−NOH)、δ 1
0.75(s.0.67H, E−異性体の−NOH)、δ 8.4〜
8.1 (m,1H)、δ 7.9〜7.65(m,1H)、δ 7.6
〜 7.2(m,4H)、δ 6.95 〜 6.7(m,1H)、δ
5.2(s、1.33H,E−異性体のOCH2)、δ 4.9(s,
0.67H,Z−異性体のOCH2)、δ 4.45(s、0.67H,Z
-異性体の−CH2Cl)、δ 4.3(s、1.33H, E-異性体の−C
H2Cl)。 E−異性体は、ベンゼンからの再結晶によって粗生成物
から分離された。融点は 162〜 163℃。
【0038】1−(イソプロピルアミノ)−3−(1−
ナフチルオキシ)−2−プロパノンオキシム、プロプラ
ノローンオキシム(5a) (4a)(2.5 g、10ミリモル)と、イソプロピルアミン
(6.0g、 8.7ml、 100ミリモル)と、THF(50ml)と
の混合物を 1.5時間、50℃に加熱した。この反応混合物
を減圧下で濃縮した。残留物に希NaHCO3 を添加し、
この溶液を酢酸エチルで抽出した。有機抽出物を希HCl
溶液とともにシェイクした後、分離した水層を希HCl溶
液で塩基性にし、AcOEtを用いて抽出し、無水MgSO4
の上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。粗生成物の収量は
2.6g(Y=95%)であった。この粗生成物をイソプロ
ピルエーテルとヘキサンの混合溶液から精製した。純粋
な生成物の収量は0.98g(収率=36%)であり、融点は
131.5〜132.5 ℃である。この生成物はZ−異性体のみ
からなる。NMR(CDCl3 )の結果は以下の通り。δ
8.30 〜8.20(m,1H, ナフタレンの一部)、δ 6.9
0 〜6.80(m,1H, ナフタレンのHの1つ)、δ 5.1
6 (s, 2H, −OCH2−)、δ 3.70 (s,2H,−C
H2 N−)、δ 3.05 〜2.70(m,1H,N−CH
<)、δ 1.10 。
ナフチルオキシ)−2−プロパノンオキシム、プロプラ
ノローンオキシム(5a) (4a)(2.5 g、10ミリモル)と、イソプロピルアミン
(6.0g、 8.7ml、 100ミリモル)と、THF(50ml)と
の混合物を 1.5時間、50℃に加熱した。この反応混合物
を減圧下で濃縮した。残留物に希NaHCO3 を添加し、
この溶液を酢酸エチルで抽出した。有機抽出物を希HCl
溶液とともにシェイクした後、分離した水層を希HCl溶
液で塩基性にし、AcOEtを用いて抽出し、無水MgSO4
の上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。粗生成物の収量は
2.6g(Y=95%)であった。この粗生成物をイソプロ
ピルエーテルとヘキサンの混合溶液から精製した。純粋
な生成物の収量は0.98g(収率=36%)であり、融点は
131.5〜132.5 ℃である。この生成物はZ−異性体のみ
からなる。NMR(CDCl3 )の結果は以下の通り。δ
8.30 〜8.20(m,1H, ナフタレンの一部)、δ 6.9
0 〜6.80(m,1H, ナフタレンのHの1つ)、δ 5.1
6 (s, 2H, −OCH2−)、δ 3.70 (s,2H,−C
H2 N−)、δ 3.05 〜2.70(m,1H,N−CH
<)、δ 1.10 。
【0039】1−(イソプロピルアミノ)−3−(1−
ナフチルオキシ)−2−プロパノンオキシム・塩酸、プ
ロプラノロンオキシム・塩酸 (6a) HClガスで飽和させたジエチルエーテルに、ジエチルエ
ーテルに溶解させたプロプラノローンオキシム(5a) (0.
30g)溶液を添加した。混合物を室温で0.5 時間撹拌し
た。沈澱した白い結晶を濾過し、真空中で一晩乾燥させ
た。収量は0.32g(Y=94%)であった。この生成物は
ほぼ純粋なZ−異性体であった。NMR(DMSO−d
6) の結果は以下の通り。 δ 12.00(s,1H, −NOH)、δ 8.30 〜8.15
(m,1H, ナフタレンのHの一部)、δ 7.95〜7.80
(m,1H,ナフタレンのHの一部)、δ 7.65 〜7.30
(m,4H,ナフタレンの一部)、δ 7.05〜6.95
(m,1H,ナフタレンのHの一部)、δ 5.15(s, 2
H,−OCH2)、δ 3.96 (s,2H,−CH2N)、
δ 3.55〜3.20(m,2H,NCH,−NH)、δ 1.2
7 (d,J=6Hz,6H,-(CH3)2)。 分析結果は(C16H20O2N2・HCl)C,H,N。
ナフチルオキシ)−2−プロパノンオキシム・塩酸、プ
ロプラノロンオキシム・塩酸 (6a) HClガスで飽和させたジエチルエーテルに、ジエチルエ
ーテルに溶解させたプロプラノローンオキシム(5a) (0.
30g)溶液を添加した。混合物を室温で0.5 時間撹拌し
た。沈澱した白い結晶を濾過し、真空中で一晩乾燥させ
た。収量は0.32g(Y=94%)であった。この生成物は
ほぼ純粋なZ−異性体であった。NMR(DMSO−d
6) の結果は以下の通り。 δ 12.00(s,1H, −NOH)、δ 8.30 〜8.15
(m,1H, ナフタレンのHの一部)、δ 7.95〜7.80
(m,1H,ナフタレンのHの一部)、δ 7.65 〜7.30
(m,4H,ナフタレンの一部)、δ 7.05〜6.95
(m,1H,ナフタレンのHの一部)、δ 5.15(s, 2
H,−OCH2)、δ 3.96 (s,2H,−CH2N)、
δ 3.55〜3.20(m,2H,NCH,−NH)、δ 1.2
7 (d,J=6Hz,6H,-(CH3)2)。 分析結果は(C16H20O2N2・HCl)C,H,N。
【0040】実施例2 1−(tert−ブチルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアジアゾール−3−イル)オキシ〕−
2−プロパノンオキシムオキサレート、チモローンオキ
シムオキサレート)(6b) 3−クロロ−1−〔(4−モルホリノ−1,2,5−チ
アゾール−3−イル)オキシ〕−2−プロパノール(1b) (1a)に対する方法に従って合成した。収率は83%であっ
た。粗化合物を次のステップで使用した。NMR(CD
Cl3 )の結果は以下の通り。 δ 4.5(d,J=5Hz, 2H)、δ 4.2(5重項、J=
5Hz, 1H)、δ 3.80〜3.65(m,6H)、δ 3.55
〜3.40(m,4H)。C−OHのピークは同定できな
い。3−クロロ−1−〔(4−モルホリノ−1,2,5−チ
アゾール−3−イル)オキシ)−2−プロパノン(3b) (3a)に対する方法に従って合成した。収率は65%であっ
た。粗化合物を次のステップで使用した。粗生成物の精
製(2−プロパノールからの再結晶) の結果、純粋なサ
ンプルが得られた。NMR(CDCl3)の結果は以下の
通り。 δ 5.22(s,2H)、δ 4.13 (s,2H)、δ 3.75
(m,4H)、δ 3.50(m,4H)。3−クロロ−1−〔(4−モルホリノ−1,2,5−チ
アゾール−3−イル)オキシ)−2−プロパノンオキシ
ム(4b) 容量 500mlの丸底フラスコ内のエタノール−DMF混合
溶媒(266ml)中に、上記の (3b)(13.6g、49ミリモル)
と、ヒドロキシルアミン・塩酸(5.1g、73.4ミリモル)
を導入した。この混合物を室温で18時間撹拌した。この
反応混合物を水(2l) 中に注ぎ、エーテルを用いて抽
出した。有機抽出物をよく水洗して、無水MgSO4 上で
乾燥させ、真空中で30℃にて濃縮した。粗生成物の収量
は11.8g(Y=83%)であった。この生成物はZ−異性
体とE−異性体との混合物であった(E:Z= 1.1:1.
0 )。この粗混合物は次のステップで使用することがで
きる。NMR(CDCl3)の結果は以下の通り。 δ 9.30 (ブロードなs、0.5 H,Z−異性体の−NO
H)、δ 9.10 (ブロードなs, 0.5H、E−異性体の
−NOH)、δ 5.35 (s,1H,E−異性体のO−C
H2 )、δ 5.10 (s,1H,Z−異性体) 、δ 4.30
( s,1H,Z−異性体の−CH2 −N)、δ 4.17
(s,1H、E−異性体の−CH2 −N)、δ 4.8〜
4.7(m, 4H)、δ 3.6〜 3.4(m,4H)。
−1,2,5−チアジアゾール−3−イル)オキシ〕−
2−プロパノンオキシムオキサレート、チモローンオキ
シムオキサレート)(6b) 3−クロロ−1−〔(4−モルホリノ−1,2,5−チ
アゾール−3−イル)オキシ〕−2−プロパノール(1b) (1a)に対する方法に従って合成した。収率は83%であっ
た。粗化合物を次のステップで使用した。NMR(CD
Cl3 )の結果は以下の通り。 δ 4.5(d,J=5Hz, 2H)、δ 4.2(5重項、J=
5Hz, 1H)、δ 3.80〜3.65(m,6H)、δ 3.55
〜3.40(m,4H)。C−OHのピークは同定できな
い。3−クロロ−1−〔(4−モルホリノ−1,2,5−チ
アゾール−3−イル)オキシ)−2−プロパノン(3b) (3a)に対する方法に従って合成した。収率は65%であっ
た。粗化合物を次のステップで使用した。粗生成物の精
製(2−プロパノールからの再結晶) の結果、純粋なサ
ンプルが得られた。NMR(CDCl3)の結果は以下の
通り。 δ 5.22(s,2H)、δ 4.13 (s,2H)、δ 3.75
(m,4H)、δ 3.50(m,4H)。3−クロロ−1−〔(4−モルホリノ−1,2,5−チ
アゾール−3−イル)オキシ)−2−プロパノンオキシ
ム(4b) 容量 500mlの丸底フラスコ内のエタノール−DMF混合
溶媒(266ml)中に、上記の (3b)(13.6g、49ミリモル)
と、ヒドロキシルアミン・塩酸(5.1g、73.4ミリモル)
を導入した。この混合物を室温で18時間撹拌した。この
反応混合物を水(2l) 中に注ぎ、エーテルを用いて抽
出した。有機抽出物をよく水洗して、無水MgSO4 上で
乾燥させ、真空中で30℃にて濃縮した。粗生成物の収量
は11.8g(Y=83%)であった。この生成物はZ−異性
体とE−異性体との混合物であった(E:Z= 1.1:1.
0 )。この粗混合物は次のステップで使用することがで
きる。NMR(CDCl3)の結果は以下の通り。 δ 9.30 (ブロードなs、0.5 H,Z−異性体の−NO
H)、δ 9.10 (ブロードなs, 0.5H、E−異性体の
−NOH)、δ 5.35 (s,1H,E−異性体のO−C
H2 )、δ 5.10 (s,1H,Z−異性体) 、δ 4.30
( s,1H,Z−異性体の−CH2 −N)、δ 4.17
(s,1H、E−異性体の−CH2 −N)、δ 4.8〜
4.7(m, 4H)、δ 3.6〜 3.4(m,4H)。
【0041】1−(tert−ブチルアミノ)−3−〔(4
−モルホリノ−1,2,5−チアゾール−3−イル) オ
キシ〕−2−プロパノンオキシム、チモロンオキシム(5
b) 滴下用漏斗を備えた容量 250mlの丸底フラスコ中でTH
F(147ml) に(4b)(9.8g、33.5ミリモル)を溶解した。
この溶液を氷浴中で冷却し、THF(20ml)に溶解させ
たt−ブチルアミン(12.2g、 168ミリモル)溶液を、
反応温度を−5〜0℃(pH6〜7)に維持して10分間、
滴下用漏斗を通して添加した。同じ温度で1時間撹拌を
続けた。溶媒を減圧下にて25℃で蒸発させた。残留物
に、希HCl(濃HCl 2.8ml)を添加し、酢酸エチルで抽
出した。分離した水層に、希NaHCO3 溶液(NaHCO
3 3.1g)を−5℃〜0℃(pH6〜7)で添加した。不
純物を除去するためにこの水層をエーテルを用いて抽出
した。少量のNaHCO3(0.1〜 0.3g)を上記の水層に
添加してわずかに塩基性にし、この混合物をエーテルで
抽出した。このプロセスを4回繰り返し(pHは約8であ
った)、希NaOH溶液を用いてpHを約9に上げてからさ
らに3回このプロセスを繰り返した。有機抽出物を合わ
せ、水洗し、無水MgSO4 で乾燥させ、真空中で濃縮し
た。収量は 3.1g(Y=28%)であった。粗生成物をイ
ソプロピルエーテルを加えて粉砕して収量 2.8gを得
た。これをイソプロピルエーテルから再結晶させると純
粋な化合物の収量が 1.8g(Y=16%)になった。1−(tert−ブチルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアゾール−3−イル) オキシ) 〕−2
−プロパノンオキシム・オキサレート、チモロンオキシ
ム・オキサレート (6b) 容量50mlの丸底フラスコ中にエーテル(10ml)に溶解さ
せたシュウ酸溶液(0.20g、2.22ミリモル)を入れた。
この溶液にエーテルに溶解させた(5b)溶液(0.43g、
1.3ミリモル)を添加した。この混合物を室温で1時間
撹拌した。白色の非吸湿性の結晶を濾過し、真空中で乾
燥させた。収量は0.53g(Y=97%)であった。融点は
165〜 166℃(分解) 。NMR(CDCl3)の結果は以下
の通り。 δ 5.3(s,2H)、δ 3.9〜 3.7(m,4H) δ 3.6
〜 3.4(m,6H)、δ1.1(s,9H)。 分析結果は、(C18H25O7N5)、C、H、N。
−モルホリノ−1,2,5−チアゾール−3−イル) オ
キシ〕−2−プロパノンオキシム、チモロンオキシム(5
b) 滴下用漏斗を備えた容量 250mlの丸底フラスコ中でTH
F(147ml) に(4b)(9.8g、33.5ミリモル)を溶解した。
この溶液を氷浴中で冷却し、THF(20ml)に溶解させ
たt−ブチルアミン(12.2g、 168ミリモル)溶液を、
反応温度を−5〜0℃(pH6〜7)に維持して10分間、
滴下用漏斗を通して添加した。同じ温度で1時間撹拌を
続けた。溶媒を減圧下にて25℃で蒸発させた。残留物
に、希HCl(濃HCl 2.8ml)を添加し、酢酸エチルで抽
出した。分離した水層に、希NaHCO3 溶液(NaHCO
3 3.1g)を−5℃〜0℃(pH6〜7)で添加した。不
純物を除去するためにこの水層をエーテルを用いて抽出
した。少量のNaHCO3(0.1〜 0.3g)を上記の水層に
添加してわずかに塩基性にし、この混合物をエーテルで
抽出した。このプロセスを4回繰り返し(pHは約8であ
った)、希NaOH溶液を用いてpHを約9に上げてからさ
らに3回このプロセスを繰り返した。有機抽出物を合わ
せ、水洗し、無水MgSO4 で乾燥させ、真空中で濃縮し
た。収量は 3.1g(Y=28%)であった。粗生成物をイ
ソプロピルエーテルを加えて粉砕して収量 2.8gを得
た。これをイソプロピルエーテルから再結晶させると純
粋な化合物の収量が 1.8g(Y=16%)になった。1−(tert−ブチルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアゾール−3−イル) オキシ) 〕−2
−プロパノンオキシム・オキサレート、チモロンオキシ
ム・オキサレート (6b) 容量50mlの丸底フラスコ中にエーテル(10ml)に溶解さ
せたシュウ酸溶液(0.20g、2.22ミリモル)を入れた。
この溶液にエーテルに溶解させた(5b)溶液(0.43g、
1.3ミリモル)を添加した。この混合物を室温で1時間
撹拌した。白色の非吸湿性の結晶を濾過し、真空中で乾
燥させた。収量は0.53g(Y=97%)であった。融点は
165〜 166℃(分解) 。NMR(CDCl3)の結果は以下
の通り。 δ 5.3(s,2H)、δ 3.9〜 3.7(m,4H) δ 3.6
〜 3.4(m,6H)、δ1.1(s,9H)。 分析結果は、(C18H25O7N5)、C、H、N。
【0042】実施例3 5−〔3−(tert−ブチル)−2−(ヒドロキシルイミ
ノ) プロポキシ−3,4−ジヒドロカルボスチリル・塩
酸、カルテオロンオキシム・HCl (6c) 5−〔3−(クロロ−2−ヒドロキシプロポキシ)−
3,4−ジヒドロカルボスチリル (1c) 還流冷却器を備えた容量 250mlの丸底フラスコに5−ヒ
ドロキシカルボスチリル(15.0g、92ミリモル)と、エ
ピクロロヒドリン(34.2g、 0.37 モル)と、モルホリ
ン( 1.5ml)と、ジオキサン(90ml)とを入れた。この
混合物を16時間還流し、次に真空中(20mm/Hg)で80〜
90℃にて濃縮した。残留物に2NのHClを 300ml添加
し、15分間撹拌し、次に、酢酸エチルを0.8 〜 1.0l添
加し、この混合物を 0.5時間激しく撹拌した。有機層を
分離し、よく水洗し、次に希NaHCO3 で洗浄し、真空
中で濃縮した。収量は19.9g(85%)であった。NMR
(DMSO−d6)の結果は以下の通り。 δ 10.3 (s, 1H,−NH−)、δ 7.25 〜6.50(m,
3H,pH)、δ4.20〜3.60(m,5H,OCH2 CHC
H2 Cl)、δ 3.00 〜2.30(m,4H,−CH2CH2C
O−)。5−(3−クロロ−2−オキソプロポキシ)−3,4−
ジヒドロカルボスチリル(3c) (3a)で述べた方法に従って合成された。NMR(DMS
O−d6)の結果は以下の通り。 δ10.10 (s,1H,−NH−)、δ 7.20 〜7.00
(m,1H,pH)、δ 6.65〜6.50(m,2H,pH)、
δ 4.95 (s,2H,OCH2)、δ 4.70 (s,2H,
CH2Cl)、δ 3.0〜2.8 (m,2H,−C−CH2CO
−)、δ 2.5〜 2.3(m,2H, −CH2−C−CO
−)。5−(3−クロロ−2−(ヒドロキシイミノ)プロポキ
シ−3,4−ジヒドロカルボスチリル(4c) (4b)で述べた方法と同様な方法で合成した。NMR(D
MSO−d6)の結果は以下の通り。 δ 11.88(s, 0.3H,NOHのZ−)、δ11.80(s,
0.7H,NOHのE−)、δ10.08(s,1H,−NH
−) 、δ 7.30 〜6.50(m,3H,pH)、δ 4.93(s,
1.4 H,OCH2 のE−)、δ 4.73 (s,0.6 H,O
CH2 のZ−)、δ4.38 (s,2H,CH2Cl のZ−
とE−)、δ3.00〜2.80(m,2H、C−CH2 −CO
−)、δ2.65〜2.40(m,2H、CH2−C−CO)。
ノ) プロポキシ−3,4−ジヒドロカルボスチリル・塩
酸、カルテオロンオキシム・HCl (6c) 5−〔3−(クロロ−2−ヒドロキシプロポキシ)−
3,4−ジヒドロカルボスチリル (1c) 還流冷却器を備えた容量 250mlの丸底フラスコに5−ヒ
ドロキシカルボスチリル(15.0g、92ミリモル)と、エ
ピクロロヒドリン(34.2g、 0.37 モル)と、モルホリ
ン( 1.5ml)と、ジオキサン(90ml)とを入れた。この
混合物を16時間還流し、次に真空中(20mm/Hg)で80〜
90℃にて濃縮した。残留物に2NのHClを 300ml添加
し、15分間撹拌し、次に、酢酸エチルを0.8 〜 1.0l添
加し、この混合物を 0.5時間激しく撹拌した。有機層を
分離し、よく水洗し、次に希NaHCO3 で洗浄し、真空
中で濃縮した。収量は19.9g(85%)であった。NMR
(DMSO−d6)の結果は以下の通り。 δ 10.3 (s, 1H,−NH−)、δ 7.25 〜6.50(m,
3H,pH)、δ4.20〜3.60(m,5H,OCH2 CHC
H2 Cl)、δ 3.00 〜2.30(m,4H,−CH2CH2C
O−)。5−(3−クロロ−2−オキソプロポキシ)−3,4−
ジヒドロカルボスチリル(3c) (3a)で述べた方法に従って合成された。NMR(DMS
O−d6)の結果は以下の通り。 δ10.10 (s,1H,−NH−)、δ 7.20 〜7.00
(m,1H,pH)、δ 6.65〜6.50(m,2H,pH)、
δ 4.95 (s,2H,OCH2)、δ 4.70 (s,2H,
CH2Cl)、δ 3.0〜2.8 (m,2H,−C−CH2CO
−)、δ 2.5〜 2.3(m,2H, −CH2−C−CO
−)。5−(3−クロロ−2−(ヒドロキシイミノ)プロポキ
シ−3,4−ジヒドロカルボスチリル(4c) (4b)で述べた方法と同様な方法で合成した。NMR(D
MSO−d6)の結果は以下の通り。 δ 11.88(s, 0.3H,NOHのZ−)、δ11.80(s,
0.7H,NOHのE−)、δ10.08(s,1H,−NH
−) 、δ 7.30 〜6.50(m,3H,pH)、δ 4.93(s,
1.4 H,OCH2 のE−)、δ 4.73 (s,0.6 H,O
CH2 のZ−)、δ4.38 (s,2H,CH2Cl のZ−
とE−)、δ3.00〜2.80(m,2H、C−CH2 −CO
−)、δ2.65〜2.40(m,2H、CH2−C−CO)。
【0043】5−〔3−(tert−ブチルアミノ)−2−
(ヒドロキシルアミノ) プロポキシ〕−3,4−ジヒド
ロカルボスチリル、カルテオロンオキシム (5c) 滴下用漏斗を備えた容量 100mlの丸底フラスコに、 (4
c)(2.0 g、7.45ミリモル)とTHF(70ml)とを入れ
た。この溶液を0℃に冷却し、THFに溶解させたt−
ブチルアミン(0.82g、1.17ml、11.2ミリモル)溶液を
滴下用漏斗を通して添加した。この混合物を冷却下で2
時間撹拌した。反応混合物にTHF中のシュウ酸溶液
(1.48g、16.4ミリモル)を添加した。沈澱物を濾過
し、15分間よく撹拌することによって水(600〜 700ml)
で分散させ、再び濾過した。濾過液を酢酸エチルを用い
て数回抽出した。水層を0℃に冷却し、希NaHCO3 溶
液(NaHCO3 0.81g)を用いて塩基性にし、酢酸エチ
ルを用いて直ちに抽出を行った。抽出物は真空中(20mm
/Hg)で30℃にて蒸発させた。収量は0.63g(28%)で
あった。イソプロパノールから再結晶させた生成物はZ
−異性体であった。融点は177 〜 180℃(分解) 。NM
R(DMSO−d6)の結果は以下の通り。 δ 11ppm(s,1H)、δ 10.1 (s,1H)、δ 7.3
〜 7.1(m,1H)、δ6.7 〜 6.5(m,2H)、δ
4.9(s,2H) 、δ 3.3(s,3H、NHを含む)、δ
3.0〜 2.8(m,2H)、δ 2.6〜2.3 (m,2
H)、δ 1.05 (s,9H)。5−〔3−(tert−ブチルアミノ)-2−(ヒドロキシル
アミノ) プロポキシ〕−3,4−ジヒドロカルボスチリ
ル・塩酸、カルテオロンオキシム・塩酸 (6c) 遊離塩基(5c)をエーテル中でHClガスを用いて塩酸塩(6
c)に変換した。融点は167〜 169℃(分解) 。分析結果
は、(C16H24O3N3Cl)C、H、N。
(ヒドロキシルアミノ) プロポキシ〕−3,4−ジヒド
ロカルボスチリル、カルテオロンオキシム (5c) 滴下用漏斗を備えた容量 100mlの丸底フラスコに、 (4
c)(2.0 g、7.45ミリモル)とTHF(70ml)とを入れ
た。この溶液を0℃に冷却し、THFに溶解させたt−
ブチルアミン(0.82g、1.17ml、11.2ミリモル)溶液を
滴下用漏斗を通して添加した。この混合物を冷却下で2
時間撹拌した。反応混合物にTHF中のシュウ酸溶液
(1.48g、16.4ミリモル)を添加した。沈澱物を濾過
し、15分間よく撹拌することによって水(600〜 700ml)
で分散させ、再び濾過した。濾過液を酢酸エチルを用い
て数回抽出した。水層を0℃に冷却し、希NaHCO3 溶
液(NaHCO3 0.81g)を用いて塩基性にし、酢酸エチ
ルを用いて直ちに抽出を行った。抽出物は真空中(20mm
/Hg)で30℃にて蒸発させた。収量は0.63g(28%)で
あった。イソプロパノールから再結晶させた生成物はZ
−異性体であった。融点は177 〜 180℃(分解) 。NM
R(DMSO−d6)の結果は以下の通り。 δ 11ppm(s,1H)、δ 10.1 (s,1H)、δ 7.3
〜 7.1(m,1H)、δ6.7 〜 6.5(m,2H)、δ
4.9(s,2H) 、δ 3.3(s,3H、NHを含む)、δ
3.0〜 2.8(m,2H)、δ 2.6〜2.3 (m,2
H)、δ 1.05 (s,9H)。5−〔3−(tert−ブチルアミノ)-2−(ヒドロキシル
アミノ) プロポキシ〕−3,4−ジヒドロカルボスチリ
ル・塩酸、カルテオロンオキシム・塩酸 (6c) 遊離塩基(5c)をエーテル中でHClガスを用いて塩酸塩(6
c)に変換した。融点は167〜 169℃(分解) 。分析結果
は、(C16H24O3N3Cl)C、H、N。
【0044】実施例4 1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアジアゾール3−イル) オキシ〕−2
−プロパノンオキシム塩酸 (6d) 1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアジアゾール3−イル) オキシ〕−2
−プロパノンオキシム (5d) 容量 200mlの丸底フラスコに、3-クロロ−1−〔3-(4-
モルホリノ-1, 2, 5-チアジアゾールオキシ)〕−2-プ
ロパノンオキシム (4b) (3.53 g、12.1ミリモル)と、
イソプロピルアミン(3.56g、60.3ミリモル)と、TF
T(71ml) とを入れた。この混合物を室温で 2.5時間撹
拌した。この反応混合物を真空中で室温にて濃縮した。
残留物をイソプロピルエーテルで分散し、沈澱した結晶
を吸引濾過した。結晶を希HCl溶液中に溶解させた溶液
に、エーテルと、少量のNaHCO3とを激しく撹拌しながら
添加した。有機層を水洗し、無水MgSO4 上で乾燥さ
せ、真空中で濃縮した。イソプロピルエーテルからの収
量は0.42g(Y=11.6%) であった。1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアジアゾール−3−イル) オキシ〕−
2−プロパノンオキシム塩酸 (6d) オキシム (4b)(0.25g)をエーテル中に溶解させ、HCl
で飽和させたエーテルをこの溶液中に滴下した。この混
合物を10分間撹拌し、濾過し、真空中で一晩乾燥させ
た。収率は89%であった。分析結果は(C12H22N5O3
SCl)C、H、N。
−1,2,5−チアジアゾール3−イル) オキシ〕−2
−プロパノンオキシム塩酸 (6d) 1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアジアゾール3−イル) オキシ〕−2
−プロパノンオキシム (5d) 容量 200mlの丸底フラスコに、3-クロロ−1−〔3-(4-
モルホリノ-1, 2, 5-チアジアゾールオキシ)〕−2-プ
ロパノンオキシム (4b) (3.53 g、12.1ミリモル)と、
イソプロピルアミン(3.56g、60.3ミリモル)と、TF
T(71ml) とを入れた。この混合物を室温で 2.5時間撹
拌した。この反応混合物を真空中で室温にて濃縮した。
残留物をイソプロピルエーテルで分散し、沈澱した結晶
を吸引濾過した。結晶を希HCl溶液中に溶解させた溶液
に、エーテルと、少量のNaHCO3とを激しく撹拌しながら
添加した。有機層を水洗し、無水MgSO4 上で乾燥さ
せ、真空中で濃縮した。イソプロピルエーテルからの収
量は0.42g(Y=11.6%) であった。1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホリノ
−1,2,5−チアジアゾール−3−イル) オキシ〕−
2−プロパノンオキシム塩酸 (6d) オキシム (4b)(0.25g)をエーテル中に溶解させ、HCl
で飽和させたエーテルをこの溶液中に滴下した。この混
合物を10分間撹拌し、濾過し、真空中で一晩乾燥させ
た。収率は89%であった。分析結果は(C12H22N5O3
SCl)C、H、N。
【0045】元素分析 (1) 1−(イソプロピルアミノ)−3−(1−ナフチル
オキシ)−2−プロパノンオキシム、プロパノロンオキ
シム・塩酸 (6a) C16H21O2N2Cl 計算値: C 62.23、 H 6.85 、 N 9.07 実験値: C 62.32、 H 6.89 、 N 9.05 (2) 1−(tert−ブチルアミノ)−3−〔(4−モルホ
リノ−1,2,5−チアジアゾール-3- イル) オキシ〕
−2-プロパノンオキシムオキサレート、チモロンオキシ
ム・オキサレート (6b) C15H25O7N5SC13H23O3N5S(COOH)2 計算値: C 42.95、 H 6.01 、 N 16.70 実験値: C 43.00、 H 6.04 、 N 16.67 (3) 5−〔3−(tert−ブチルアミノ)−2−ヒドロキ
シルイミノプロポキシ〕−3,4−ジヒドロカルボスチ
リル・塩酸、カルテオロンオキシム・HCl (6c) C16H24O3N3Cl。 計算値: C 56.22、 H 7.08 、 N 12.30 実験値: C 56.10、 H 7.13 、 N 12.21 (4) 1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホ
リノ−1,2,5−チアジアゾール−3−イル)オキ
シ〕−2−−プロパノンオキシム・塩酸 (6d) C12H22N5O3SCl・1/3 H2O。 計算値: C 40.27、 H 6.38 、 N 19.57 実験値: C 40.54、 H 6.42 、 N 19.46 以下の実施例は、本発明の化合物の薬理学的性質を示
す。しかし、実施例が以下のものに限定されることはな
い。
オキシ)−2−プロパノンオキシム、プロパノロンオキ
シム・塩酸 (6a) C16H21O2N2Cl 計算値: C 62.23、 H 6.85 、 N 9.07 実験値: C 62.32、 H 6.89 、 N 9.05 (2) 1−(tert−ブチルアミノ)−3−〔(4−モルホ
リノ−1,2,5−チアジアゾール-3- イル) オキシ〕
−2-プロパノンオキシムオキサレート、チモロンオキシ
ム・オキサレート (6b) C15H25O7N5SC13H23O3N5S(COOH)2 計算値: C 42.95、 H 6.01 、 N 16.70 実験値: C 43.00、 H 6.04 、 N 16.67 (3) 5−〔3−(tert−ブチルアミノ)−2−ヒドロキ
シルイミノプロポキシ〕−3,4−ジヒドロカルボスチ
リル・塩酸、カルテオロンオキシム・HCl (6c) C16H24O3N3Cl。 計算値: C 56.22、 H 7.08 、 N 12.30 実験値: C 56.10、 H 7.13 、 N 12.21 (4) 1−(イソプロピルアミノ)−3−〔(4−モルホ
リノ−1,2,5−チアジアゾール−3−イル)オキ
シ〕−2−−プロパノンオキシム・塩酸 (6d) C12H22N5O3SCl・1/3 H2O。 計算値: C 40.27、 H 6.38 、 N 19.57 実験値: C 40.54、 H 6.42 、 N 19.46 以下の実施例は、本発明の化合物の薬理学的性質を示
す。しかし、実施例が以下のものに限定されることはな
い。
【0046】実施例5 ウサギの眼内圧(IOP)に対する効果 体重が 2.5〜3.5 kgの成体のオスのニュージーランドア
ルビノウサギを使用した。ウサギは、自由に食物と水が
摂取できるようにして個別にオリに入れた。ディジラブ
(Digilab) モデル30Rの呼吸圧計を用いて眼内圧を測定
した。この呼吸圧計の目盛りは、ディジラブ較正確認装
置を用いて1日に少なくとも2回チェックした。測定
は、すべて、拘束状態でなく麻酔状態でもないウサギに
対して行った。生理的食塩水2に対して1の割合で希釈
した 0.5%プロパカイン(オフセチック−アラーガン
ファーマスティカルズ (Ophthetic-Allergan Pharmaceu
ticals Inc.)社)の1滴をIOP測定の直前にそれぞれ
の目に浸透させた。薬はpH7.4 の緩衝溶液または生理的
食塩水中の1%または 2.5%溶液として、少なくとも4
匹のウサギからなるグループの両目に投与した。少なく
とも3匹のウサギからなる別のグループは対照であり、
基剤のみを投与した。IOPは、薬または基剤を投与し
てから30分後、60分後、さらに2、3、4、6、8時間
後に記録した。測定値は、平均値±平均値の標準偏差
(S.E.)として与えられている。変化の有意性はス
チューデントのt−検定を利用して決定した。ウサギの
目に対する薬の局所的作用、例えば興奮、充血、鬱血、
流涙なども観察した。結果は〔表9〕〜〔表14〕に記
載されている。
ルビノウサギを使用した。ウサギは、自由に食物と水が
摂取できるようにして個別にオリに入れた。ディジラブ
(Digilab) モデル30Rの呼吸圧計を用いて眼内圧を測定
した。この呼吸圧計の目盛りは、ディジラブ較正確認装
置を用いて1日に少なくとも2回チェックした。測定
は、すべて、拘束状態でなく麻酔状態でもないウサギに
対して行った。生理的食塩水2に対して1の割合で希釈
した 0.5%プロパカイン(オフセチック−アラーガン
ファーマスティカルズ (Ophthetic-Allergan Pharmaceu
ticals Inc.)社)の1滴をIOP測定の直前にそれぞれ
の目に浸透させた。薬はpH7.4 の緩衝溶液または生理的
食塩水中の1%または 2.5%溶液として、少なくとも4
匹のウサギからなるグループの両目に投与した。少なく
とも3匹のウサギからなる別のグループは対照であり、
基剤のみを投与した。IOPは、薬または基剤を投与し
てから30分後、60分後、さらに2、3、4、6、8時間
後に記録した。測定値は、平均値±平均値の標準偏差
(S.E.)として与えられている。変化の有意性はス
チューデントのt−検定を利用して決定した。ウサギの
目に対する薬の局所的作用、例えば興奮、充血、鬱血、
流涙なども観察した。結果は〔表9〕〜〔表14〕に記
載されている。
【0047】
【表9】
【0048】
【表10】
【0049】
【表11】
【0050】
【表12】
【0051】
【表13】
【0052】
【表14】 これらの結果から、プロプラノロールとチモロールの両
方のケトシム類似体が目の血圧低下作用をある程度示す
ことがわかる。プロプラノロンケトシム(6a)はテス
トした2つの濃度レベルである1%と 2.5%で最高の活
性を示した。この活性は、プロプラノロールのみを同じ
用量レベルで投与した場合よりもはるかに顕著で長期間
継続した(表9〜12)。さらに、このケトシム(6a)
を用いると、上記の2通りの投与レベルでプロプラノロ
ールを投与した場合に必ず起こる目の興奮がまったくな
かった。この興奮活性が、プロプラノロールのIOPに
対する作用を1%の投与レベルにおいて低下させるのに
寄与し、 2.5%の投与レベルにおいては目の血圧を低下
させる活性を完全に隠していたと考えられる。チモロン
ケトシム(6b)も目の血圧を大きく低下させる活性を
示したが、その開始がチモロール(1b)のみの場合よ
りも早く、持続期間が短かった〔表13および14) 。一
方、他のケトシム前駆体、例えばカルテオロールに対す
る(6b)と(6c)のN−イソプロピル類似体(6
d)に対応するケトシム前駆体は、使用した投与レベル
では活性が低かったが、β−拮抗活性を幾分か示した。
方のケトシム類似体が目の血圧低下作用をある程度示す
ことがわかる。プロプラノロンケトシム(6a)はテス
トした2つの濃度レベルである1%と 2.5%で最高の活
性を示した。この活性は、プロプラノロールのみを同じ
用量レベルで投与した場合よりもはるかに顕著で長期間
継続した(表9〜12)。さらに、このケトシム(6a)
を用いると、上記の2通りの投与レベルでプロプラノロ
ールを投与した場合に必ず起こる目の興奮がまったくな
かった。この興奮活性が、プロプラノロールのIOPに
対する作用を1%の投与レベルにおいて低下させるのに
寄与し、 2.5%の投与レベルにおいては目の血圧を低下
させる活性を完全に隠していたと考えられる。チモロン
ケトシム(6b)も目の血圧を大きく低下させる活性を
示したが、その開始がチモロール(1b)のみの場合よ
りも早く、持続期間が短かった〔表13および14) 。一
方、他のケトシム前駆体、例えばカルテオロールに対す
る(6b)と(6c)のN−イソプロピル類似体(6
d)に対応するケトシム前駆体は、使用した投与レベル
では活性が低かったが、β−拮抗活性を幾分か示した。
【0053】実施例6 ラットにおける安静状態の心拍数とイソプレナリンによ
って誘起される心拍急速症に対する効果 体重が 150〜 250gのオスのスプラーグ−ドーレー(Spr
ague- Dawley) ラットを使用した。各ラットはペントバ
ルビタールナトリウム(50mg/kg)で麻酔し、頸静脈に
PE50チューブを挿入した。このカニューレは、首のま
わりの皮下に通し、背側で露出させた。このカニューレ
にはヘパリン溶液(1000/μl)を満たし、堅固な22−
ゲージ・スタイレットで密封した。ラットはステンレス
製のオリに個別に入れ、手術からの回復の時間を少なく
とも24時間与えた。食物と水は自由に与えた。実験の当
日には、各ラットの心拍数をプレチスモグラムを用いて
モニタし、データをフィジオスクライブ(Physioscribe)
IIレコーダに記録した。薬を投与する前に平衡期間とし
て1時間取った。薬は、通常の生理的食塩水に溶解させ
て 0.3%溶液にし、6mg/kgの用量で静脈内に投与し
た。次に、安静状態の心拍数を静脈内投与を行ってから
1分、3分、5分、10分、15分後に記録した。次に、イ
ソプレナリン(イソプロテレノールビタルタレート)を
50μg/kgの用量で皮下投与し、心拍数を投与を行って
から3分、5分、10分、15分、20分、30分、45分、60分
後に記録した。7匹のラットからなる対照グループには
生理的食塩水を静脈内投与し、薬を投与されたグループ
とまったく同じに扱った。
って誘起される心拍急速症に対する効果 体重が 150〜 250gのオスのスプラーグ−ドーレー(Spr
ague- Dawley) ラットを使用した。各ラットはペントバ
ルビタールナトリウム(50mg/kg)で麻酔し、頸静脈に
PE50チューブを挿入した。このカニューレは、首のま
わりの皮下に通し、背側で露出させた。このカニューレ
にはヘパリン溶液(1000/μl)を満たし、堅固な22−
ゲージ・スタイレットで密封した。ラットはステンレス
製のオリに個別に入れ、手術からの回復の時間を少なく
とも24時間与えた。食物と水は自由に与えた。実験の当
日には、各ラットの心拍数をプレチスモグラムを用いて
モニタし、データをフィジオスクライブ(Physioscribe)
IIレコーダに記録した。薬を投与する前に平衡期間とし
て1時間取った。薬は、通常の生理的食塩水に溶解させ
て 0.3%溶液にし、6mg/kgの用量で静脈内に投与し
た。次に、安静状態の心拍数を静脈内投与を行ってから
1分、3分、5分、10分、15分後に記録した。次に、イ
ソプレナリン(イソプロテレノールビタルタレート)を
50μg/kgの用量で皮下投与し、心拍数を投与を行って
から3分、5分、10分、15分、20分、30分、45分、60分
後に記録した。7匹のラットからなる対照グループには
生理的食塩水を静脈内投与し、薬を投与されたグループ
とまったく同じに扱った。
【0054】心拍数とイソプレナリンによる心拍急速症
とに対する生理的食塩水と実験中の薬の効果の間の差の
有意性をスチューデントのt−検定を用いて解析した。
値は平均値±平均値のS. E. で与える。結果が〔図
1〕に示されている。この図1にはプロプラノロール・
HCl (1a) (□)、チモロール・マレイン酸 (1b)(黒く
塗りつぶした三角) 、カルテオロール・HCl (1c)
(●)、プロプラノロンケトシム・HCl(6a)(○)、チ
モロンケトシムオキサレート(6b)(▽)、N−イソプロ
ピルチモロンケトシム・HCl (6d) (△)、カルテオロ
ンオキシム・HCl(6c)(■)、生理的食塩水(---) の心
拍数の変化の平均が示されている。
とに対する生理的食塩水と実験中の薬の効果の間の差の
有意性をスチューデントのt−検定を用いて解析した。
値は平均値±平均値のS. E. で与える。結果が〔図
1〕に示されている。この図1にはプロプラノロール・
HCl (1a) (□)、チモロール・マレイン酸 (1b)(黒く
塗りつぶした三角) 、カルテオロール・HCl (1c)
(●)、プロプラノロンケトシム・HCl(6a)(○)、チ
モロンケトシムオキサレート(6b)(▽)、N−イソプロ
ピルチモロンケトシム・HCl (6d) (△)、カルテオロ
ンオキシム・HCl(6c)(■)、生理的食塩水(---) の心
拍数の変化の平均が示されている。
【0055】別の一連の実験において、プロプラノロー
ル・HCl(1a)とプロプラノロンオキシム・HCl(6
a)を経口投与で25、50、100mg /kgの用量にした場合
のラットにおける心拍数とイソプレナリンによる心拍急
速症とに対する効果を評価した。薬を胃ポンプ用ゴム管
を用いて5匹のラットからなるグループに投与し、心拍
数を1時間にわたって記録した。次に、イソプレナリン
(50μg/kgを皮下投与)を投与し、投与してから3
分、5分、10分、15分、20分、30分、45分、60分後に心
拍数を記録した。5匹のラットからなる対照グループ
は、適当な量の生理的食塩水を経口投与した後にまった
く同様に扱った。
ル・HCl(1a)とプロプラノロンオキシム・HCl(6
a)を経口投与で25、50、100mg /kgの用量にした場合
のラットにおける心拍数とイソプレナリンによる心拍急
速症とに対する効果を評価した。薬を胃ポンプ用ゴム管
を用いて5匹のラットからなるグループに投与し、心拍
数を1時間にわたって記録した。次に、イソプレナリン
(50μg/kgを皮下投与)を投与し、投与してから3
分、5分、10分、15分、20分、30分、45分、60分後に心
拍数を記録した。5匹のラットからなる対照グループ
は、適当な量の生理的食塩水を経口投与した後にまった
く同様に扱った。
【0056】これらの実験の結果から、テストしたケト
シムの大部分がラットにおいては負の変周期作用を示す
ことがわかった。さらに、プロプラノロールのケトシム
(6a)とチモロールのケトシム(6b)はこのテストで最
高の活性を示したのに対し、カルテオロンケトシム(6
c)とオキシム(6d)は活性がより小さかった。ま
た、このテストにおいては、カルテオロール(1c) そ
のものはラットの心拍数に対して最低の活性を示したこ
とに注目する必要がある。
シムの大部分がラットにおいては負の変周期作用を示す
ことがわかった。さらに、プロプラノロールのケトシム
(6a)とチモロールのケトシム(6b)はこのテストで最
高の活性を示したのに対し、カルテオロンケトシム(6
c)とオキシム(6d)は活性がより小さかった。ま
た、このテストにおいては、カルテオロール(1c) そ
のものはラットの心拍数に対して最低の活性を示したこ
とに注目する必要がある。
【0057】イソプレナリンによる心拍急速症に対する
プロプラノロール、チモロール、カルテオロールのケト
シム前駆体の潜在的なβ−アドレナリン作動性効果拮抗
活性を、親化合物を基準薬として用いることによって確
認した。
プロプラノロール、チモロール、カルテオロールのケト
シム前駆体の潜在的なβ−アドレナリン作動性効果拮抗
活性を、親化合物を基準薬として用いることによって確
認した。
【0058】この一連の実験の結果は上記の実験、すな
わちIOPと安静状態の心拍数とに対する効果での知見
と一致していた。すなわち、プロプラノロールのケトシ
ム前駆体(6a)とチモロールのケトシム前駆体(6
b)は最も効果的であるのに対して(6c)(6d)は
最も活性が低い(図1を参照) 。
わちIOPと安静状態の心拍数とに対する効果での知見
と一致していた。すなわち、プロプラノロールのケトシ
ム前駆体(6a)とチモロールのケトシム前駆体(6
b)は最も効果的であるのに対して(6c)(6d)は
最も活性が低い(図1を参照) 。
【0059】これらの結果から、実験している少なくと
も2つのケトシム前駆体(6aと6b)は抗緑内障活性
を有しており、この活性は恐らくこれら前駆体のβ−ア
ドレナリン作動性効果に対する拮抗特性と結びついてい
るものと思われる。しかし、このような特性がケトシム
そのものに固有な活性に起因するものであるか、あるい
は、生物学的活性変換により親薬に変換された結果であ
るかを確認する必要がある。そのため、各種ケトシムと
その親β−アドレナリン作動性効果遮断薬をウサギの目
の様々な組織内に入れてインビボで実験した。
も2つのケトシム前駆体(6aと6b)は抗緑内障活性
を有しており、この活性は恐らくこれら前駆体のβ−ア
ドレナリン作動性効果に対する拮抗特性と結びついてい
るものと思われる。しかし、このような特性がケトシム
そのものに固有な活性に起因するものであるか、あるい
は、生物学的活性変換により親薬に変換された結果であ
るかを確認する必要がある。そのため、各種ケトシムと
その親β−アドレナリン作動性効果遮断薬をウサギの目
の様々な組織内に入れてインビボで実験した。
【0060】実施例7 インビボでの分配−新陳代謝の実験 A.ウサギの目の組織内での実験 体重が 2.5〜 3.5kgの成体のオスのニュージーランドア
ルビノウサギを使用した。生理的食塩水中に薬が1%含
まれる溶液の 100μlからなる標準用量を局所的に各ウ
サギの両目に投与した。適当な時間経過した後(30分、
60分および 120分)、ウサギを屠殺した。1c.c.のスポ
イトが取り付けられた25g×5/8”の針を用いて角膜
縁を1回穿刺することにより房水を得た。次に、角膜と
虹彩−毛様体を分離した。これら組織は保管し、酸化防
止剤としてメタ硫酸ナトリウムを0.05%含む氷冷した過
塩素酸(0.05モル)中でテクマー(Tekmar)SDT組織均
一化剤を用いて均質化した。次に、サンプルをCH3 O
H中で再び均一化して10%ホモジネートを調製し、マイ
クロフィルタに移して20分間にわたって 10000回転/分
で遠心分離して蛋白質を沈澱させた。房水は、さらに希
釈することなくそのままの状態で分析した。10%組織ホ
モジネートのサンプルの5〜20μl分のアリコートをH
PLCで分析した。生理的食塩水を局所的に投与した対
照のウサギから得られた房水、虹彩−毛様体、または角
膜に所定量の化合物を添加することにより得られた較正
曲線を用いて定量を行った。
ルビノウサギを使用した。生理的食塩水中に薬が1%含
まれる溶液の 100μlからなる標準用量を局所的に各ウ
サギの両目に投与した。適当な時間経過した後(30分、
60分および 120分)、ウサギを屠殺した。1c.c.のスポ
イトが取り付けられた25g×5/8”の針を用いて角膜
縁を1回穿刺することにより房水を得た。次に、角膜と
虹彩−毛様体を分離した。これら組織は保管し、酸化防
止剤としてメタ硫酸ナトリウムを0.05%含む氷冷した過
塩素酸(0.05モル)中でテクマー(Tekmar)SDT組織均
一化剤を用いて均質化した。次に、サンプルをCH3 O
H中で再び均一化して10%ホモジネートを調製し、マイ
クロフィルタに移して20分間にわたって 10000回転/分
で遠心分離して蛋白質を沈澱させた。房水は、さらに希
釈することなくそのままの状態で分析した。10%組織ホ
モジネートのサンプルの5〜20μl分のアリコートをH
PLCで分析した。生理的食塩水を局所的に投与した対
照のウサギから得られた房水、虹彩−毛様体、または角
膜に所定量の化合物を添加することにより得られた較正
曲線を用いて定量を行った。
【0061】B.ラットの血液中 体重が 150〜 250gの成体のオスのスプラーグ−ドーレ
ーラット7匹からなるグループを使用した。ラットには
6mg/kgの用量のプロプラノロンオキシム(6a)を頸
静脈内に注入した。1分、3分、5分、20分、40分、60
分後に血液1mlを頸静脈から採取し、氷冷したアセトニ
トリル1mlを含む風袋チューブに直ちに入れた。このチ
ューブを激しく振り、遠心分離し、デカントし、HPL
Cでプロプラノロール(1a)とプロプラノローンオキ
シム(5a)を分析した。生理的食塩水で前処理した対
照のラットから得られた血液に所定量のプロプラノロー
ルオキシム・HCl(6a)を添加することにより得られ
た較正曲線を用いて定量を行った。眼の組織試験の結果
は〔表15〕から〔表17〕に記載されている。
ーラット7匹からなるグループを使用した。ラットには
6mg/kgの用量のプロプラノロンオキシム(6a)を頸
静脈内に注入した。1分、3分、5分、20分、40分、60
分後に血液1mlを頸静脈から採取し、氷冷したアセトニ
トリル1mlを含む風袋チューブに直ちに入れた。このチ
ューブを激しく振り、遠心分離し、デカントし、HPL
Cでプロプラノロール(1a)とプロプラノローンオキ
シム(5a)を分析した。生理的食塩水で前処理した対
照のラットから得られた血液に所定量のプロプラノロー
ルオキシム・HCl(6a)を添加することにより得られ
た較正曲線を用いて定量を行った。眼の組織試験の結果
は〔表15〕から〔表17〕に記載されている。
【0062】
【表15】
【0063】
【表16】
【0064】
【表17】
【0065】この眼の組織試験の結果から、ケトシム前
駆体(6a)を目の血圧を低下させるのに有効な投与レ
ベル(1%)で局所的に投与した後の最初の2時間の間
に目の各部分でプロプラノロール(1a)が測定できる
程度の量検出できたことがわかる(表15)。一方、目へ
の投与後2時間経過すると目のテストをしているどの組
織においてもプロプラノロールは検出できなかった(表
16)。従って、プロプラノロールは、投与の1時間後に
は、目の血圧低下作用のサイトであると考えられている
虹彩−毛様体から完全に消失してしまっていた。これら
の結果により、IOPに対するプロプラノロールの作用
の持続時間がそのケトシム前駆体の作用持続時間と比べ
て短いことの説明がつくであろう。さらに、これらの結
果は、目の血圧低下に対するオキシムの活性がウサギの
目の組織内のその場でプロプラノロールに変換する活性
をオキシムが有することに主として起因することを示唆
している。このことは、チモロールやカルテオロールの
ケトシム前駆体(6bと6c)を小さな投与レベルで目
に投与した後には目のどの部分にも親β−アドレナリン
作用拮抗物質を発見できなかったという事実によっても
支持される。このことは、本発明のβ−アドレナリン作
動性効果遮断薬の活性型であるケトン型またはその還元
型は非常に早く消失するため検出できないか、または、
このケトンは、レダクターゼ酵素に対してはプロプラノ
ローンケトシムほどよい基質ではないことを示唆してい
る。
駆体(6a)を目の血圧を低下させるのに有効な投与レ
ベル(1%)で局所的に投与した後の最初の2時間の間
に目の各部分でプロプラノロール(1a)が測定できる
程度の量検出できたことがわかる(表15)。一方、目へ
の投与後2時間経過すると目のテストをしているどの組
織においてもプロプラノロールは検出できなかった(表
16)。従って、プロプラノロールは、投与の1時間後に
は、目の血圧低下作用のサイトであると考えられている
虹彩−毛様体から完全に消失してしまっていた。これら
の結果により、IOPに対するプロプラノロールの作用
の持続時間がそのケトシム前駆体の作用持続時間と比べ
て短いことの説明がつくであろう。さらに、これらの結
果は、目の血圧低下に対するオキシムの活性がウサギの
目の組織内のその場でプロプラノロールに変換する活性
をオキシムが有することに主として起因することを示唆
している。このことは、チモロールやカルテオロールの
ケトシム前駆体(6bと6c)を小さな投与レベルで目
に投与した後には目のどの部分にも親β−アドレナリン
作用拮抗物質を発見できなかったという事実によっても
支持される。このことは、本発明のβ−アドレナリン作
動性効果遮断薬の活性型であるケトン型またはその還元
型は非常に早く消失するため検出できないか、または、
このケトンは、レダクターゼ酵素に対してはプロプラノ
ローンケトシムほどよい基質ではないことを示唆してい
る。
【0066】上記の実験から、血液中のオキシムの新陳
代謝の経路が目の組織内とは非常に異なっていることが
わかる。従って、オキシムを静脈内に投与した後のラッ
トの血液中にはプロプラノロールは検出されず、別の極
性化合物が代わりに見出された。しかし、注入の5分後
にはこの化合物も完全に消失してしまっていた。オキシ
ム自体は血液中で非常に早い新陳代謝をするように見え
る〔図2〕。血液中のt1/2 は7.64±0.55分であり、オ
キシムの静脈内投与の1時間後にはオキシムは完全に血
液中から消失してしまっていた。
代謝の経路が目の組織内とは非常に異なっていることが
わかる。従って、オキシムを静脈内に投与した後のラッ
トの血液中にはプロプラノロールは検出されず、別の極
性化合物が代わりに見出された。しかし、注入の5分後
にはこの化合物も完全に消失してしまっていた。オキシ
ム自体は血液中で非常に早い新陳代謝をするように見え
る〔図2〕。血液中のt1/2 は7.64±0.55分であり、オ
キシムの静脈内投与の1時間後にはオキシムは完全に血
液中から消失してしまっていた。
【0067】これらの結果は、虹彩−毛様体の部位で形
成されたプロプラノロールが観察されるIOPの低下の
原因であることを示唆しており、一方、ケトシム自体は
固有の活性を有すると思われる。
成されたプロプラノロールが観察されるIOPの低下の
原因であることを示唆しており、一方、ケトシム自体は
固有の活性を有すると思われる。
【0068】アドレナロンを還元すべき親油性エステル
に変換する必要があるというこれまでの観察結果に基づ
くと、親油性プロプラノロンは容易に還元できるが、チ
モロールまたはカルテオロールから誘導されたケトンは
親油性がより小さい(ナフタレンのヘテロ環式置換)た
め大量には還元されないものと思われる。N−アルキル
基の重要性を評価するために、チモロールのN−イソプ
ロピル類似体(6d)を合成してテストした。プロプラ
ノロールは6dと同様にイソプロピル基を含んでいる
が、6dは相変わらず不活性であることがわかった。従
って、6aと6b〜dの挙動の差は、レダクターゼ酵素
に結合するのに必要な基質特性を決定すると思われるAr
基内での差に起因すると思われる。この仮定は、遊離塩
基5a〜5dの相対HPLC保持時間がそれぞれ5a、
5b、5c、5dに対して 12.86、7.22、3.10、6.10で
あり、5aが他よりもはるかに親油性であるという事実
によって支持される。以下、これらの結果を得るのに用
いたHPLC分析法を示す。
に変換する必要があるというこれまでの観察結果に基づ
くと、親油性プロプラノロンは容易に還元できるが、チ
モロールまたはカルテオロールから誘導されたケトンは
親油性がより小さい(ナフタレンのヘテロ環式置換)た
め大量には還元されないものと思われる。N−アルキル
基の重要性を評価するために、チモロールのN−イソプ
ロピル類似体(6d)を合成してテストした。プロプラ
ノロールは6dと同様にイソプロピル基を含んでいる
が、6dは相変わらず不活性であることがわかった。従
って、6aと6b〜dの挙動の差は、レダクターゼ酵素
に結合するのに必要な基質特性を決定すると思われるAr
基内での差に起因すると思われる。この仮定は、遊離塩
基5a〜5dの相対HPLC保持時間がそれぞれ5a、
5b、5c、5dに対して 12.86、7.22、3.10、6.10で
あり、5aが他よりもはるかに親油性であるという事実
によって支持される。以下、これらの結果を得るのに用
いたHPLC分析法を示す。
【0069】実施例8 分析方法 高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を用いて、生
物流体中のβ−アドレナリン作動性効果遮断薬とそのケ
トシム類似体のアッセイを行った。このクロマトグラフ
ィー分析はベックマン(Beckman) モデル 112の溶媒供給
システムと、モデル 340の注入装置と、ウォーターズ(W
aters)モデル 481の波長可変LCスペクトロフォトメー
タとからなるシステムを用いて行った。分離操作には全
て室温で動作するASI逆相クロムパックC18カラムを
用いた。プロプラノロール(1a)とプロプラノロンオキシ
ム(5a)の分離に使用される可動相は水と、1−ヘプ
タン硫酸と、 0.1モルの酢酸と、 0.1モルのトリエタノ
ールアミンと、メタノールとで構成した(90,1g、10
0 、 799)。流速を 1.5ml/分にすると、2つの化合物
の保持時間は、それぞれ、プロプラノロンオキシムの場
合は2.44分であり、プロプラノロールの場合は3.21分で
あった。カルテオロール(1c)、カルテオロンオキシム(5
c)、チモロール(1b)、チモローンオキシム(5b)、チモロ
ンイソプロピルオキシム(5d)の分離に使用される可動層
は、水と、1−ヘプタン硫酸と、 0.1モルの酢酸と、テ
トラヒドロフランと、0.1 モルのトリエタノールアミン
と、メタノールとで構成した(430,2,40,30, 100,
398) 。流速 1.5ml/分にすると、これら化合物の保持
時間は、それぞれ、カルテオロンオキシム(5c)の場合は
3.10分であり、カルテオロール(1c)の場合は3.54分であ
り、チモロンイソプロピルオキシム (5d) の場合は6.10
分であり、チモロンオキシム(5b)の場合は7.22分であ
り、チモロール (1b) の場合は9.15分であった。結果が
図2に示されている。この図は、ラットに6mg/kgの投
与レベルで6aを投与した後の血液レベル(μg/ml)
を5aの時間に対してプロットしたグラフである。
物流体中のβ−アドレナリン作動性効果遮断薬とそのケ
トシム類似体のアッセイを行った。このクロマトグラフ
ィー分析はベックマン(Beckman) モデル 112の溶媒供給
システムと、モデル 340の注入装置と、ウォーターズ(W
aters)モデル 481の波長可変LCスペクトロフォトメー
タとからなるシステムを用いて行った。分離操作には全
て室温で動作するASI逆相クロムパックC18カラムを
用いた。プロプラノロール(1a)とプロプラノロンオキシ
ム(5a)の分離に使用される可動相は水と、1−ヘプ
タン硫酸と、 0.1モルの酢酸と、 0.1モルのトリエタノ
ールアミンと、メタノールとで構成した(90,1g、10
0 、 799)。流速を 1.5ml/分にすると、2つの化合物
の保持時間は、それぞれ、プロプラノロンオキシムの場
合は2.44分であり、プロプラノロールの場合は3.21分で
あった。カルテオロール(1c)、カルテオロンオキシム(5
c)、チモロール(1b)、チモローンオキシム(5b)、チモロ
ンイソプロピルオキシム(5d)の分離に使用される可動層
は、水と、1−ヘプタン硫酸と、 0.1モルの酢酸と、テ
トラヒドロフランと、0.1 モルのトリエタノールアミン
と、メタノールとで構成した(430,2,40,30, 100,
398) 。流速 1.5ml/分にすると、これら化合物の保持
時間は、それぞれ、カルテオロンオキシム(5c)の場合は
3.10分であり、カルテオロール(1c)の場合は3.54分であ
り、チモロンイソプロピルオキシム (5d) の場合は6.10
分であり、チモロンオキシム(5b)の場合は7.22分であ
り、チモロール (1b) の場合は9.15分であった。結果が
図2に示されている。この図は、ラットに6mg/kgの投
与レベルで6aを投与した後の血液レベル(μg/ml)
を5aの時間に対してプロットしたグラフである。
【0070】本発明の化合物は、5aから1aへの変換
を示す下記の〔化34〕の反応Aに従って、対応する親
β−アドレナリン作動性効果遮断薬に変換されると考え
られる。類似の変換は反応系Bに従って起こるものと考
えられる。
を示す下記の〔化34〕の反応Aに従って、対応する親
β−アドレナリン作動性効果遮断薬に変換されると考え
られる。類似の変換は反応系Bに従って起こるものと考
えられる。
【0071】
【化34】
【0072】本発明の加水分解に敏感な前駆体は、β−
アドレナリン作動性効果遮断薬に有効な化学的供給系
(CDS)と眼内圧低下剤とで構成される。
アドレナリン作動性効果遮断薬に有効な化学的供給系
(CDS)と眼内圧低下剤とで構成される。
【0073】本発明の化合物は、この化合物を必要とす
る動物に対して、約 0.001〜約20mg/kgの用量を、注射
液の形態で目に浸透させること、錠剤、カプセルなどの
形態で経口投与すること、あるいは他の任意の適当な経
路で投与することができる。
る動物に対して、約 0.001〜約20mg/kgの用量を、注射
液の形態で目に浸透させること、錠剤、カプセルなどの
形態で経口投与すること、あるいは他の任意の適当な経
路で投与することができる。
【0074】本発明の化合物は薬理学的に許容な任意の
基剤、例えば親アミノアルコールβ−アドレナリン作動
性効果遮断薬として使用される基剤と組み合わせること
ができる。
基剤、例えば親アミノアルコールβ−アドレナリン作動
性効果遮断薬として使用される基剤と組み合わせること
ができる。
【図1】 ラットにおける安静状態の心拍数とイソプレ
ナリンによって誘起される心拍急速症に対する効果とを
示すグラフ。
ナリンによって誘起される心拍急速症に対する効果とを
示すグラフ。
【図2】 オキシム自体が血液中で非常に早い新陳代謝
をすることを示すグラフ。
をすることを示すグラフ。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 A61K 31/425 31/47 31/535 C07C 225/06 7457−4H 225/16 7457−4H 251/38 9160−4H 251/76 9160−4H 255/54 9357−4H 275/34 7188−4H C07D 209/08 9284−4C 215/22 277/04 285/10 307/80 417/06 9051−4C
Claims (7)
- 【請求項1】 下記〔化1〕で表される化合物: 【化1】 〔ここで、 −X−は、−O−、−CH2 −であるか、または存在せ
ず、 =Yは、=O、=N−NH2 、=N−NR1 R2 (ただ
し、R1 とR2 はHまたは1〜8個の炭素原子を有する
アルキル基であり、同一でも異なっていてもよい)、下
記〔化2〕、〔化3〕または〔化4〕であり、 【化2】 【化3】 【化4】 (ただし、R3 は上記定義のR1 、−COOR1 または
−CON (R1)2である) 、 Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキル基または7〜
20個の炭素原子を有するアラルキル基であり、このアラ
ルキル基はそのアリール基上にメトキシ基を有していて
もよく、 ArはArは3位に芳香族置換基または複素環置換基を
有するβーアドレナリン作動性効果遮断特性を有する1
−アルキルアミノ−2−プロパノールの3−芳香族残基
または複素環残基である〕または薬理学的に許容される
その酸添加塩を、治療を必要とするヒトを除く温体動物
の目に、眼圧を低下させるのに有効な量投与することを
特徴とするヒトを除く温体動物の特に緑内障治療におけ
る眼圧を低下させる方法。 - 【請求項2】 Arが、プロプラノロール、チモロー
ル、カテオロール、アルプレノロール、アテノロール、
ベフノロール、ベータクソロール、ベバントロール、ブ
フラロール、ブニトロロール、ブプラノロール、セリプ
ロロール、セタモロール、ラベトロール、レボブノロー
ル、メピンドロール、メチプラノロール、メタプロロー
ル、モプロロール、ナドロール、オクスプレノロール、
ペンブトロール、ピンドロールまたはトリプロロールの
3−芳香族残基または複素環残基である請求項1に記載
の方法。 - 【請求項3】 一投与量中に眼圧を低下させるのに有効
な量の下記〔化5〕: 【化5】 〔ここで、 −X−は、−O−、−CH2 −であるか、または存在せ
ず、 =Yは、=O、=N−NH2 、=N−NR1 R2 (ただ
し、R1 とR2 はHまたは1〜8個の炭素原子を有する
アルキル基であり、同一でも異なっていてもよい)、下
記の〔化6〕〔化7〕または〔化8〕であり、 【化6】 【化7】 【化8】 R3 は、上記定義のR1 、−COOR1 または−CON
(R1)2 であり、 Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキル基または7〜
20個の炭素原子を有するアラルキル基であり、このアラ
ルキル基はそのアリール基上にメトキシ基を有していて
もよく、 ArはArは3位に芳香族置換基または複素環置換基を
有するβーアドレナリン作動性効果遮断特性を有する1
−アルキルアミノ−2−プロパノールの3-芳香族残基ま
たは複素環残基である〕で表される化合物または薬理学
的に許容されるその酸添加塩と、無毒な薬理学的に許容
される担体とを含むヒトおよび温体動物の特に緑内障治
療における眼圧を低下させるための医薬組成物。 - 【請求項4】 Arが、プロプラノロール、チモロー
ル、カテオロール、アルプレノロール、アテノロール、
ベフノロール、ベータクソロール、ベバントロール、ブ
フラロール、ブニトロロール、ブプラノロール、セリプ
ロロール、セタモロール、ラベトロール、レボブノロー
ル、メピンドロール、メチプラノロール、メタプロロー
ル、モプロロール、ナドロール、オクスプレノロール、
ペンブトロール、ピンドロールまたはトリプロロールの
3−芳香族残基または複素環残基である請求項3に記載
の組成物。 - 【請求項5】 眼圧を低下させるのに有効な量の下記
〔化9〕: 【化9】 (ここで、 −X−は−O−、−CH2 −であるか、または存在せ
ず、 Rは1〜12個の炭素原子を有するアルキル基または7〜
20個の炭素原子を有するアラルキル基であり、このアラ
ルキル基はそのアリール基上にメトキシ基を有していて
もよく、 Arは3−位に芳香族置換基または複素環置換基を有し
ていてもよいβーアドレナリン作動性効果遮断特性を有
する1−アルキルアミノ−2−プロパノールの3−芳香
族残基または複素環残基である)を有するβーアドレナ
リン作動性効果遮断剤をヒトを除く温体動物の視覚組織
中に生じさせる方法であって、 視覚組織中で、下記〔化10〕: 【化10】 (ここで、Ar、XおよびRは上記と同じ定義を有する)
の対応ケトン中間体を介して上記βーアドレナリン作動
性効果遮断剤〔化9〕へ生物学的に再変換可能な〔化
9〕のβーアドレナリン作動性効果遮断剤の前駆体を、
ヒトを除く温体動物の視覚組織中に上記ケトン中間体を
介して最終的に眼圧を低下させるのに有効な量の〔化
9〕のβーアドレナリン作動性効果遮断剤を生じさせる
のに十分な量だけ、ヒトを除く温体動物の目に投与する
ことを特徴とする方法。 - 【請求項6】 〔化9〕のβーアドレナリン作動性効果
遮断剤がプロプラノロール、チモロール、カテオロー
ル、アルプレノロール、アテノロール、ベフノロール、
ベータクソロール、ベバントロール、ブフラロール、ブ
ニトロロール、ブプラノロール、セリプロロール、セタ
モロール、ラベトロール、レボブノロール、メピンドロ
ール、メチプラノロール、メタプロロール、モプロロー
ル、ナドロール、オクスプレノロール、ペンブトロー
ル、ピンドロールまたはトリプロロールによって構成さ
れる群の中から選択される請求項5に記載の方法。 - 【請求項7】 上記前駆体が下記〔化11〕から〔化2
1〕のいずれか一つの化合物である請求項5または6に
記載の方法。 【化11】 【化12】 【化13】 【化14】 【化15】 【化16】 【化17】 【化18】 【化19】 【化20】 【化21】
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US2600287A | 1987-03-16 | 1987-03-16 | |
| US026,002 | 1987-03-16 |
Related Parent Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63501931A Division JPH01501797A (ja) | 1987-03-16 | 1988-02-16 | 3―置換―1―アルキルアミノ―2―プロパノールの不安定なケトン誘導体と、そのβ―アドレナリン作動効果遮断薬としての応用 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH06122624A true JPH06122624A (ja) | 1994-05-06 |
Family
ID=21829283
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63501931A Granted JPH01501797A (ja) | 1987-03-16 | 1988-02-16 | 3―置換―1―アルキルアミノ―2―プロパノールの不安定なケトン誘導体と、そのβ―アドレナリン作動効果遮断薬としての応用 |
| JP4306006A Pending JPH06122624A (ja) | 1987-03-16 | 1992-10-19 | 3−置換−1−アルキルアミノ−2−プロパノールの不安定なケトン誘導体のβ−アドレナリン作動効果遮断薬としての応用 |
Family Applications Before (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP63501931A Granted JPH01501797A (ja) | 1987-03-16 | 1988-02-16 | 3―置換―1―アルキルアミノ―2―プロパノールの不安定なケトン誘導体と、そのβ―アドレナリン作動効果遮断薬としての応用 |
Country Status (14)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0283147B1 (ja) |
| JP (2) | JPH01501797A (ja) |
| KR (1) | KR960008766B1 (ja) |
| AT (1) | ATE105547T1 (ja) |
| AU (1) | AU609788B2 (ja) |
| CA (1) | CA1335286C (ja) |
| DE (2) | DE3889486T4 (ja) |
| DK (1) | DK626588A (ja) |
| ES (1) | ES2051831T3 (ja) |
| FI (1) | FI94337C (ja) |
| IE (1) | IE62828B1 (ja) |
| NO (1) | NO171312C (ja) |
| WO (1) | WO1988007036A1 (ja) |
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| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU609788B2 (en) * | 1987-03-16 | 1991-05-09 | University Of Florida | Labile ketone derivatives of 3-substituted-1-alkylamino- 2-propanols and their use as beta-adrenergic blockers |
| US5177064A (en) * | 1990-07-13 | 1993-01-05 | University Of Florida | Targeted drug delivery via phosphonate derivatives |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH01501797A (ja) * | 1987-03-16 | 1989-06-22 | ユニヴァーシティ オブ フロリダ | 3―置換―1―アルキルアミノ―2―プロパノールの不安定なケトン誘導体と、そのβ―アドレナリン作動効果遮断薬としての応用 |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
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| DE2645710C2 (de) * | 1976-10-09 | 1985-06-27 | Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt | Phenoxy-amino-propanole, Verfahren zu ihrer Herstellung und pharmazeutische Zubereitung |
| JPS563862A (en) * | 1979-06-26 | 1981-01-16 | Nippon Denso Co | Refrigeration device |
| IL65541A0 (en) * | 1981-05-06 | 1982-07-30 | Haessle Ab | Alkylamino-2-propanols,process for their preparation and pharmaceutical preparations containing same |
| US4521414A (en) * | 1981-06-18 | 1985-06-04 | The Texas A&M University System | Ophthalmic compositions and their use for treating elevated intraocular pressure and glaucoma |
| DE3270905D1 (en) * | 1981-12-17 | 1986-06-05 | Haessle Ab | Para-substituted 3-phenoxy-1-carbonylaminoalkylamino-propan-2-ols having beta receptor blocking properties |
| US4616022A (en) * | 1984-08-17 | 1986-10-07 | Warner-Lambert Company | Procaterol stabilization |
-
1988
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- 1988-02-16 WO PCT/US1988/000386 patent/WO1988007036A1/en not_active Ceased
- 1988-02-16 JP JP63501931A patent/JPH01501797A/ja active Granted
- 1988-02-22 ZA ZA881226A patent/ZA881226B/xx unknown
- 1988-02-22 IE IE47588A patent/IE62828B1/en not_active IP Right Cessation
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