JPH0636735B2 - ワサビから分離された新規ラブドウイルス（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｕｓ） - Google Patents
ワサビから分離された新規ラブドウイルス（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｕｓ）Info
- Publication number
- JPH0636735B2 JPH0636735B2 JP1720190A JP1720190A JPH0636735B2 JP H0636735 B2 JPH0636735 B2 JP H0636735B2 JP 1720190 A JP1720190 A JP 1720190A JP 1720190 A JP1720190 A JP 1720190A JP H0636735 B2 JPH0636735 B2 JP H0636735B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- virus
- rhabdovirus
- wasabi
- horseradish
- shaped
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、退化現象の現れたワサビから分離されたラブ
ドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に属する新規ウ
イルス及びその変異株に関する。
ドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に属する新規ウ
イルス及びその変異株に関する。
本発明のウイルスは、退化現象の原因となるこれらのウ
イルスにワサビが感染しているか否かを検定するための
抗体作製用の抗原として利用することができる。さら
に、これらのワサビウイルス病を予防乃至治療するため
の検体として利用することもできる。
イルスにワサビが感染しているか否かを検定するための
抗体作製用の抗原として利用することができる。さら
に、これらのワサビウイルス病を予防乃至治療するため
の検体として利用することもできる。
ワサビ(Wasabia japonica)の多くの品種は実生で増殖さ
れているが、「真妻」等の優良品種は株分けで増殖され
ている。しかし株分けを繰り返すことによって根茎の肥
大が悪くなり、子株もほとんど採れなくなるという、い
わゆる退化現象が現われるので、優良株分け品種は絶滅
の危機に瀕している。この退化現象の主な原因となって
いるのがウイルス感染によるウイルス病と考えられてい
る。〔鈴木春夫ら、静岡農試研法21,55〜66(1976)〕。
ワサビから分離されているウイルスはTMV-W（タバコモ
ザイクウイルスワサビ系）CMV（キュウリモザイクウイ
ルス）及びTuMV（カブモザイクウイルス）の３種が報告
されている〔上掲誌、小室康雄ら、植物防疫20,486〜48
8(1966)、栃原比呂志ら、関東東山病虫研報11,46(196
4)〕。現在のところ、植物に感染しているウイルスを殺
滅し、ウイルス病を治療する農薬はまだ見出されていな
い。ウイルスに感染した植物からウイルスを除去するい
わゆるウイルスフリー化のためのほとんど唯一の方法と
して組織培養技術を利用した茎頂生長点培養法がラン、
ユリ、カーネーション等の花卉、ブドウ、リンゴ、ミカ
ン等の果樹、イチゴ、ヤマノイモ等の野菜、センキョ
ウ、ジオウ等の薬用植物において実用化されている。ワ
サビにおいても茎頂生長点培養法が適用され、メリクロ
ン法や苗条原基法により実用化が進められている。
れているが、「真妻」等の優良品種は株分けで増殖され
ている。しかし株分けを繰り返すことによって根茎の肥
大が悪くなり、子株もほとんど採れなくなるという、い
わゆる退化現象が現われるので、優良株分け品種は絶滅
の危機に瀕している。この退化現象の主な原因となって
いるのがウイルス感染によるウイルス病と考えられてい
る。〔鈴木春夫ら、静岡農試研法21,55〜66(1976)〕。
ワサビから分離されているウイルスはTMV-W（タバコモ
ザイクウイルスワサビ系）CMV（キュウリモザイクウイ
ルス）及びTuMV（カブモザイクウイルス）の３種が報告
されている〔上掲誌、小室康雄ら、植物防疫20,486〜48
8(1966)、栃原比呂志ら、関東東山病虫研報11,46(196
4)〕。現在のところ、植物に感染しているウイルスを殺
滅し、ウイルス病を治療する農薬はまだ見出されていな
い。ウイルスに感染した植物からウイルスを除去するい
わゆるウイルスフリー化のためのほとんど唯一の方法と
して組織培養技術を利用した茎頂生長点培養法がラン、
ユリ、カーネーション等の花卉、ブドウ、リンゴ、ミカ
ン等の果樹、イチゴ、ヤマノイモ等の野菜、センキョ
ウ、ジオウ等の薬用植物において実用化されている。ワ
サビにおいても茎頂生長点培養法が適用され、メリクロ
ン法や苗条原基法により実用化が進められている。
しかし茎頂生長点培養法により作出した苗が全てウイル
スフリーになるわけではなく、茎頂生長点培養法により
作出した苗のウイルス検定は必須である。ウイルス検定
法には、生物検定法、電子顕微鏡法及び抗血清試験法が
あり、対照とする植物とウイルスの種類により、これら
の方法を組合せて検定することが必要である。ワサビに
おいては前述のごとく３種類のウイルスすなわちTMV-W
CMV及びTuMVにのみ感染していることが知られていたた
め、茎頂培養法により作出した培養苗がウイルスフリー
か否かの検定は当然これら３種類のウイルスのみを対照
として行なわれてきた。しかし、検定の結果、ウイルス
フリーと判断されても実際にはウイルスに感染されてい
ることが見出されている。
スフリーになるわけではなく、茎頂生長点培養法により
作出した苗のウイルス検定は必須である。ウイルス検定
法には、生物検定法、電子顕微鏡法及び抗血清試験法が
あり、対照とする植物とウイルスの種類により、これら
の方法を組合せて検定することが必要である。ワサビに
おいては前述のごとく３種類のウイルスすなわちTMV-W
CMV及びTuMVにのみ感染していることが知られていたた
め、茎頂培養法により作出した培養苗がウイルスフリー
か否かの検定は当然これら３種類のウイルスのみを対照
として行なわれてきた。しかし、検定の結果、ウイルス
フリーと判断されても実際にはウイルスに感染されてい
ることが見出されている。
本発明は、ワサビのウイルス検定を確実なものとし、完
全にウイルスフリーなワサビを得ることを目的としてワ
サビに感染する新規なウイルスを検索し、これを獲得し
ようとするものである。そして得られたウイルスは、ワ
サビウイルス検定を行うための抗体作製用の抗原とし
て、またこれらのウイルス病の予防ないし治療のための
検体として利用しようとするものである。
全にウイルスフリーなワサビを得ることを目的としてワ
サビに感染する新規なウイルスを検索し、これを獲得し
ようとするものである。そして得られたウイルスは、ワ
サビウイルス検定を行うための抗体作製用の抗原とし
て、またこれらのウイルス病の予防ないし治療のための
検体として利用しようとするものである。
本発明者らは、ワサビの新規ウイルスを取得することを
目的として静岡県湯ケ島町のワサビ田から得られたワサ
ビ（品種：真妻）について新規ウイルスの検索を行っ
た。その結果、棒状ウイルス、ひも状ウイルス及び桿菌
状〜弾丸状ウイルスの３種のウイルスが検出された。こ
のうち棒状ウイルスは、300nm×18nmの大きさでTMV-Wの
抗血清とよく反応したので、公知のtabaco mosaic viru
sのワサビ系と同定した。そして、ひも状ウイルス及び
桿菌状〜弾丸状ウイルスについては後述するような検定
の結果、丈献未載の新規のウイルスであることが確認さ
れ、本発明をなすに至った。
目的として静岡県湯ケ島町のワサビ田から得られたワサ
ビ（品種：真妻）について新規ウイルスの検索を行っ
た。その結果、棒状ウイルス、ひも状ウイルス及び桿菌
状〜弾丸状ウイルスの３種のウイルスが検出された。こ
のうち棒状ウイルスは、300nm×18nmの大きさでTMV-Wの
抗血清とよく反応したので、公知のtabaco mosaic viru
sのワサビ系と同定した。そして、ひも状ウイルス及び
桿菌状〜弾丸状ウイルスについては後述するような検定
の結果、丈献未載の新規のウイルスであることが確認さ
れ、本発明をなすに至った。
本発明は、上記２種のウイルスのうち桿菌状〜弾丸状ウ
イルスであるラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdoviru
s)に属する新規ウイルスに関する。
イルスであるラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdoviru
s)に属する新規ウイルスに関する。
また、本発明のラブドウイルスは35〜37℃で５〜15日程
度さらす高温処理、亜硝酸、ヒドロキシアミンで処理す
る化学処理及びIn vitro mutagen-esis-reverse geneti
cs法等による遺伝子操作等で変異させることができるが
このような変異株も本発明は包含する。
度さらす高温処理、亜硝酸、ヒドロキシアミンで処理す
る化学処理及びIn vitro mutagen-esis-reverse geneti
cs法等による遺伝子操作等で変異させることができるが
このような変異株も本発明は包含する。
本発明のウイルスについて採取法及び形態等を示すと次
のとおりである。
のとおりである。
a) ウイルスの採取及び検出 静岡県湯ケ島町のワサビ田から得られたワサビ（品種：
「真妻」）を10mm×１mm程度に細切し、さらにそれを切
りきざんだ。スライドグラス上に0.1ｍｏ／リン酸
緩衝液を一滴たらし、その中に上記切りきざんだわさび
を入れ、汁液をしみ出させた。
「真妻」）を10mm×１mm程度に細切し、さらにそれを切
りきざんだ。スライドグラス上に0.1ｍｏ／リン酸
緩衝液を一滴たらし、その中に上記切りきざんだわさび
を入れ、汁液をしみ出させた。
次いで、コロジオン支持膜を張り、カーボン補強した銅
製グリッドの膜面をこのワサビ汁液に接触させ、速やか
に余分の液を濾紙で吸いとり膜面を上にして風乾させ
た。スライドグラス上に0.1ｍｏ／リン酸緩衝液に
１％グルタルアルデヒドを溶かした固定液を数滴たら
し、その液面に風乾させたグリッドの試料面を下にして
３〜５分間浮かべ、固定させた。固定させた試料の乗っ
たグリッドを脱イオン蒸留水で３回洗浄した後、染色液
（２％リンタングステン酸水溶液、ドライウェル0.5％
添加pH7.0）で30秒間染色し、濾紙で余分の染色液を吸
いとり、膜面を上にして風乾させて検出のための試料と
した。
製グリッドの膜面をこのワサビ汁液に接触させ、速やか
に余分の液を濾紙で吸いとり膜面を上にして風乾させ
た。スライドグラス上に0.1ｍｏ／リン酸緩衝液に
１％グルタルアルデヒドを溶かした固定液を数滴たら
し、その液面に風乾させたグリッドの試料面を下にして
３〜５分間浮かべ、固定させた。固定させた試料の乗っ
たグリッドを脱イオン蒸留水で３回洗浄した後、染色液
（２％リンタングステン酸水溶液、ドライウェル0.5％
添加pH7.0）で30秒間染色し、濾紙で余分の染色液を吸
いとり、膜面を上にして風乾させて検出のための試料と
した。
b) ウイルスの形態の観察 この様にして作成した試料を透過型電子顕微鏡で検鏡
し、ウイルスの形態を観察した。
し、ウイルスの形態を観察した。
その結果、棒状ウイルス、ひも状ウイルス及び桿菌状〜
弾丸状ウイルスの３種のウイルスが検出された。棒状ウ
イルスは300nm×18nmの大きさで、TMV-Wの抗血清とよく
反応したことから既知のTMV-Wと同定した。ワサビに感
染していることが報告されているひも状ウイルスとして
はTuMVがあるが、TuMVの大きさが750nm×11nmであるの
に対し検出されたひも状ウイルスの大きさは650〜700nm
×13nmと大きく異なり、また、TuMVに感染した植物に特
異的に見出される風車状封入体は見出されなかった。さ
らに、TuMVの抗血清と全く反応しなかった。以上のこと
からひも状ウイルスはTuMVとは異なるカルラウイルス(C
arlavirus)に属するウイルスであると判断した。一方、
本発明の桿菌状〜弾丸状のウイルスは約230〜250nm×85
〜90nmで内部に約4.5nmのら旋構造のヌクレオキャプシ
ドと外部に被膜を有することから、このウイルスはラブ
ドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に属するウイル
スであると判断した。
弾丸状ウイルスの３種のウイルスが検出された。棒状ウ
イルスは300nm×18nmの大きさで、TMV-Wの抗血清とよく
反応したことから既知のTMV-Wと同定した。ワサビに感
染していることが報告されているひも状ウイルスとして
はTuMVがあるが、TuMVの大きさが750nm×11nmであるの
に対し検出されたひも状ウイルスの大きさは650〜700nm
×13nmと大きく異なり、また、TuMVに感染した植物に特
異的に見出される風車状封入体は見出されなかった。さ
らに、TuMVの抗血清と全く反応しなかった。以上のこと
からひも状ウイルスはTuMVとは異なるカルラウイルス(C
arlavirus)に属するウイルスであると判断した。一方、
本発明の桿菌状〜弾丸状のウイルスは約230〜250nm×85
〜90nmで内部に約4.5nmのら旋構造のヌクレオキャプシ
ドと外部に被膜を有することから、このウイルスはラブ
ドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に属するウイル
スであると判断した。
c) 超薄切片法によるウイルスの細胞内所見 グルタルアルデヒドとオスミウム酸による二重固定法に
より固定したワサビ試料をエポキシ樹脂に包理・固化
後、超薄切片を作成した。この超薄切片を銅製グリッド
にのせ酢酸ウランとクエン酸鉛による二重染色法で染色
した。この様に作成した試料を透過型電子顕微鏡で検鏡
し、ウイルスの細胞内存在様式及びウイルス感染細胞の
変化について観察した。
より固定したワサビ試料をエポキシ樹脂に包理・固化
後、超薄切片を作成した。この超薄切片を銅製グリッド
にのせ酢酸ウランとクエン酸鉛による二重染色法で染色
した。この様に作成した試料を透過型電子顕微鏡で検鏡
し、ウイルスの細胞内存在様式及びウイルス感染細胞の
変化について観察した。
本発明のラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に
属する桿菌状〜弾丸状ウイルスは、核、核膜間隙及び細
胞質に見出された。核内にはウイルス粒子と共に被膜を
かぶっていないヌクレオキャプシドが認められた。以上
の所見から、このウイルスは核内増殖型のウイルスであ
ることがわかった。
属する桿菌状〜弾丸状ウイルスは、核、核膜間隙及び細
胞質に見出された。核内にはウイルス粒子と共に被膜を
かぶっていないヌクレオキャプシドが認められた。以上
の所見から、このウイルスは核内増殖型のウイルスであ
ることがわかった。
d) 寄主範囲 本発明のラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)が
他の植物に感染するかどうかについてアブラナ科植物を
中心に６科２９種の植物について接種試験を行った。
他の植物に感染するかどうかについてアブラナ科植物を
中心に６科２９種の植物について接種試験を行った。
すなわち、ラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)
カルラウイルス(Carlavirus)及びTMV-Wに混合感染して
いる親ワサビ「真妻」（品種名）を接種源としてアブラ
ナ科植物を中心に６科２９種の植物に汁液接種した。そ
の結果を第１表および第２表に示す。いずれの植物に対
してもラブドウイルス（Ｐ−ａｎｔ rhabdovirus)も
カルラウイルス(Carlavirus)も感染を認められなかっ
た。ラブドウイルス（Ｐ−ａｎｔ rhabdovirus)がア
ブラナ科植物に感染することはヨーロッパで、ブロッコ
リーネクロティックイエロウス ウイルスとブラジル
で、ラファナスSP.からの２種が報告されているだけで
あり、本発明のラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovi
rus)は、第１表に示した通り、ブロッコリーにもラファ
ナス（ダイコン）にも感染せず、このことから本ウイル
スは新種のウイルスであることが明らかとなった。
カルラウイルス(Carlavirus)及びTMV-Wに混合感染して
いる親ワサビ「真妻」（品種名）を接種源としてアブラ
ナ科植物を中心に６科２９種の植物に汁液接種した。そ
の結果を第１表および第２表に示す。いずれの植物に対
してもラブドウイルス（Ｐ−ａｎｔ rhabdovirus)も
カルラウイルス(Carlavirus)も感染を認められなかっ
た。ラブドウイルス（Ｐ−ａｎｔ rhabdovirus)がア
ブラナ科植物に感染することはヨーロッパで、ブロッコ
リーネクロティックイエロウス ウイルスとブラジル
で、ラファナスSP.からの２種が報告されているだけで
あり、本発明のラブドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovi
rus)は、第１表に示した通り、ブロッコリーにもラファ
ナス（ダイコン）にも感染せず、このことから本ウイル
スは新種のウイルスであることが明らかとなった。
e) 新種ウイルスの現地発生調査 ワサビ栽培現地のウイルス発生調査を行なった。すなわ
ち、ワサビ５品種３１検体についてDN法で検定を行なっ
たところ、ラブドウイルス（Ｐａｎｔ rh-abdoviru
s)は「真妻」のみから検出され、退化現象による収量低
下が問題となっているこのワサビ品種にとって、このウ
イルスは重要な影響を与えるウイルスであることが明ら
かとなった。
ち、ワサビ５品種３１検体についてDN法で検定を行なっ
たところ、ラブドウイルス（Ｐａｎｔ rh-abdoviru
s)は「真妻」のみから検出され、退化現象による収量低
下が問題となっているこのワサビ品種にとって、このウ
イルスは重要な影響を与えるウイルスであることが明ら
かとなった。
本発明は、退化現象の現れたワサビから分離されたラブ
ドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に属する新種の
ウイルスを提供するものである。本発明の新種ウイルス
は、栽培中のワサビがこのウイルスに感染しているか否
かの検定あるいは、組織培養により作出した培養体がウ
イルスフリーになっているか否かの検定のための抗体作
製用抗原として利用することができる。また、このウイ
ルスに感染したワサビの治療乃至感染予防のための研究
の検体として利用することもできる。
ドウイルス（Ｐａｎｔ rhabdovirus)に属する新種の
ウイルスを提供するものである。本発明の新種ウイルス
は、栽培中のワサビがこのウイルスに感染しているか否
かの検定あるいは、組織培養により作出した培養体がウ
イルスフリーになっているか否かの検定のための抗体作
製用抗原として利用することができる。また、このウイ
ルスに感染したワサビの治療乃至感染予防のための研究
の検体として利用することもできる。
その結果、ワサビの退化現象を予防し、ワサビの品質を
向上することができる。
向上することができる。
第１図は、本発明の微生物ラブドウイルス（Ｐａｎｔ
rhabdovirus)の形態を示す電子顕微鏡写真である。
（倍率220,000倍）
rhabdovirus)の形態を示す電子顕微鏡写真である。
（倍率220,000倍）
フロントページの続き (72)発明者 山下 修一 東京都江東区越中島１―３―16―104 (72)発明者 土崎 常男 茨城県稲敷郡茎崎町城山43―14
Claims (1)
- 【請求項１】ワサビから分離され、ダイレクトネガティ
ヴ法（DN法）で約230〜250×85〜90nmの桿菌状〜弾丸状
形態を示し、内部にら旋構造のヌクレオキャプシドと外
部に被膜とを有するラブドウイルス(Rhabdovirus)に属
するウイルスまたはその変異株
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1720190A JPH0636735B2 (ja) | 1990-01-26 | 1990-01-26 | ワサビから分離された新規ラブドウイルス（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｕｓ） |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP1720190A JPH0636735B2 (ja) | 1990-01-26 | 1990-01-26 | ワサビから分離された新規ラブドウイルス（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｕｓ） |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH03224481A JPH03224481A (ja) | 1991-10-03 |
| JPH0636735B2 true JPH0636735B2 (ja) | 1994-05-18 |
Family
ID=11937327
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP1720190A Expired - Lifetime JPH0636735B2 (ja) | 1990-01-26 | 1990-01-26 | ワサビから分離された新規ラブドウイルス（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｕｓ） |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0636735B2 (ja) |
Families Citing this family (17)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP2329803B1 (en) | 2009-12-02 | 2019-06-19 | The Procter & Gamble Company | Apparatus and method for transferring particulate material |
| EP2717822B1 (en) | 2011-06-10 | 2019-06-05 | The Procter and Gamble Company | Absorbent core for disposable absorbent articles |
| PL3287110T3 (pl) | 2011-06-10 | 2019-08-30 | The Procter And Gamble Company | Sposób wytwarzania struktur chłonnych do wyrobów chłonnych |
| EP2532328B1 (en) | 2011-06-10 | 2014-02-26 | The Procter and Gamble Company | Method and apparatus for making absorbent structures with absorbent material |
| EP2532329B1 (en) | 2011-06-10 | 2018-09-19 | The Procter and Gamble Company | Method and apparatus for making absorbent structures with absorbent material |
| EP2740450B1 (en) | 2012-12-10 | 2025-12-31 | The Procter & Gamble Company | Absorbent core with a high content of superabsorbent material |
| EP2740449B1 (en) | 2012-12-10 | 2019-01-23 | The Procter & Gamble Company | Absorbent article with high absorbent material content |
| US10639215B2 (en) | 2012-12-10 | 2020-05-05 | The Procter & Gamble Company | Absorbent articles with channels and/or pockets |
| EP2740452B1 (en) | 2012-12-10 | 2021-11-10 | The Procter & Gamble Company | Absorbent article with high absorbent material content |
| US9987176B2 (en) | 2013-08-27 | 2018-06-05 | The Procter & Gamble Company | Absorbent articles with channels |
| CN110013386B (zh) | 2013-08-27 | 2021-10-01 | 宝洁公司 | 具有通道的吸收制品 |
| US11207220B2 (en) | 2013-09-16 | 2021-12-28 | The Procter & Gamble Company | Absorbent articles with channels and signals |
| MX2016003391A (es) | 2013-09-16 | 2016-06-24 | Procter & Gamble | Articulos absorbentes con canales y señales. |
| EP2851048B1 (en) | 2013-09-19 | 2018-09-05 | The Procter and Gamble Company | Absorbent cores having material free areas |
| US9789009B2 (en) | 2013-12-19 | 2017-10-17 | The Procter & Gamble Company | Absorbent articles having channel-forming areas and wetness indicator |
| JP2018508292A (ja) | 2015-03-16 | 2018-03-29 | ザ プロクター アンド ギャンブル カンパニー | 改善されたコアを有する吸収性物品 |
| MX2017014428A (es) | 2015-05-12 | 2018-04-10 | Procter & Gamble | Articulo absorbente con adhesivo mejorado del nucleo al lienzo inferior. |
-
1990
- 1990-01-26 JP JP1720190A patent/JPH0636735B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH03224481A (ja) | 1991-10-03 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Seemüller | Investigations to demonstrate mycoplasmalike organisms in diseased plants by fluorescence microscopy | |
| Sylvia et al. | Phenolic compounds and resistance to fungal pathogens induced in primary roots of Douglas-fir seedlings by the ectomycorrhizal fungus Laccaria laccata. | |
| Roberts et al. | Detection of potato leafroll and potato mop‐top viruses by immunosorbent electron microscopy | |
| JPH0636735B2 (ja) | ワサビから分離された新規ラブドウイルス（Ｒｈａｂｄｏｖｉｒｕｓ） | |
| Mircetich et al. | Etiology of almond leaf scorch disease and transmission of the causal agent | |
| Wakman et al. | Presence of a clostero-like virus and a bacilliform virus in pineapple plants in Australia | |
| CN104745672A (zh) | 一种快速鉴定烟草黑胫病抗性的方法 | |
| Adams et al. | The effect of cultivar used as host for Polymyxa gmminis on the multiplication and transmission of barley yellow mosaic virus (BaYMV) | |
| Conci et al. | Program for intensive production of virus-free garlic plants | |
| Burpee et al. | The influence of Pratylenchus penetrans on the incidence and severity of Verticillium wilt of potato | |
| Kumarasinghe et al. | Rhizobium-stimulated callose formation in clover root hairs and its relation to infection | |
| Paulitz et al. | Is Spizellomyces punctatum a parasite or saprophyte of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi? | |
| Hiruki et al. | Light and electron microscopy of Vinca plants infected with mycoplasma-like bodies of the sandal spike disease | |
| Khan et al. | Detection, diagnosis and pathogenic potential of Meloidogyne incognita on passion fruit from Mizoram, India | |
| Barbara et al. | Assessment of UK hops for the occurrence of hop latent and hop stunt viroids | |
| Munro | Viruses infecting hop, Humulus lupulus, in Australia | |
| Lawson | Controlling Virus Diseases in Major International Flower and Bulb Crops. | |
| CN114058508B (zh) | 快速分离纯化尾孢菌以及抗药性检测的方法 | |
| Allen et al. | Recent advances in research on lily symptomless virus | |
| Michail et al. | Use of culture filtrates as a rapid technique for screening lucerne for resistance to Verticillium alboatrum | |
| JPH0636736B2 (ja) | ワサビから分離された新規カルラウイルス（Ｃａｒｌａｖｉｒｕｓ） | |
| CN110029083B (zh) | 一种基于亚甲基蓝琼脂糖法分离芸薹根肿菌单孢的方法 | |
| Silva et al. | Detection of tomato mosaic virus in tomato seed and treatment by thermotherapy | |
| Takeuchi et al. | Direct immunostaining assay, a new simplified technique for detection of tobamoviruses from seeds of green pepper (Capsicum annuum L.) | |
| Salamon et al. | Investigation on the transmission of some Tobamoviruses by pollen and seed in pepper (Capsicum annuum L.) |