JPH0636739B2 - アルカリセルラーゼ、これを産生する微生物及びアルカリセルラーゼの製造法 - Google Patents
アルカリセルラーゼ、これを産生する微生物及びアルカリセルラーゼの製造法Info
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微生物に関する。
資源(特にセルロース資源)の有効利用を一大目標とし
て、進められてきており、多くの場合、カビ類にその供
給源を求めてきている。セルラーゼ生産菌として分離さ
れて来た菌株は、多種類にわたり、アルペルギルス属、
ペニシリウム属、トリコデルマ属、フザリウム属、フミ
コーラ属、アクレモニウム属等の糸状菌(カビ)を中心
に、シュウドモナス属、セルロモナス属、ルミノコッカ
ス属、バチルス属等の細菌、更にストレプトマイセス
属、サーモアクチノマイセス属等の放線菌でも報告され
ている。
浄剤の配合成分としての利用が検討され注目を集めてい
る(特公昭59-49279号公報、特公昭60-23158号公報、特
公昭60-36240号公報)。しかし、自然界に於いて、微生
物の産生するセルラーゼのほとんどが、中性乃至酸性領
域に於いて最大且つ安定な酵素活性を示す、所謂中性若
しくは酸性セルラーゼに分類されるものであって、衣料
用洗浄剤組成物中に配合するための条件を有するセルラ
ーゼ、すなわち、アルカリ領域で最大活性を示すか、あ
るいはアルカリ耐性を有する、所謂アルカリセルラーゼ
及びアルカリ耐性セルラーゼの存在は極めて少ないのが
実情である。ここでアルカリセルラーゼとは、至適pHが
アルカリ領域にあるものを言う。
るアルカリセルラーゼ及びアルカリ耐性セルラーゼの生
産方法としては、好アルカリ性バチルス属細菌の培養に
よりセルラーゼAを採取する方法(特公昭50-28515号公
報)、セルロモナス属に属する好アルカリ性細菌を培養
してアルカリセルラーゼ301−Aを生産する方法(特開
昭58-224686号公報)、好アルカリ性バチルスNo.1139を
培養してカルボキシメチルセルラーゼを生産する方法(F
ukumori,F.,Kudo,T.and Horikoshi,K.,J.Gen.Microbio
l.,131,3339,(1958))及びストレプトマイセス属の一種
を用いてアルカリセルラーゼを生産する方法(特開昭61
-19483号公報)が報告されているに過ぎず、しかもいず
れも工業的発酵生産に適うものでは無かった。
あるバチルス・エスピーKSM−635(Bacillus sp.KSM-63
5,FERM BP-1485,特開昭63-109771号公報)が衣料用洗浄
剤配合成分として適したアルカリセルラーゼK(特開昭
63-109776号公報)を収率良く生産すること及び更に培
養条件を選択することにより、より生産性が高まり、ア
ルカリセルラーゼの工業的発酵生産が可能となることを
見出した。更に好アルカリ性菌によらずとも、培養が容
易な中性細菌によってもアルカリセルラーゼ(特開昭63
-137677、240785、240777、240786号公報、特開昭64-37
285号公報,S.Kawai et al.,Agric.Biol.Chem.,5
2,1425(1988))及びアルカリ耐性セルラーゼ(特開昭
63-141586、146786、273474、273475、279790号公報、
特開昭64-37286号公報)を生産し得ることも見出されて
いる。
ゼの例は現在までのところ上記の例のみであり、更に様
々な特色を有するアルカリセルラーゼ及びその生産菌の
開発が望まれていた。
界に求め、鋭意探索を続けて来たが、今般、栃木県那須
群の土壌より採取したバチルス属に属する微生物が、衣
料用洗浄剤組成物の添加成分として有効な新規なアルカ
リセルラーゼを生産することを見出し、本発明を完成し
た。
0、これを生産する微生物(バチルス・エスピーKSM
−520)及び該アルカリセルラーゼの製造法を提供す
るものである。
うな菌学的性質を示す。なお、以下において菌株の分類
に用いた培地は次の培地1〜21の21種類であり、こ
れらは何れも別途滅菌した炭酸ナトリウム(Na2CO3)を1.
0重量%(以下単に%で示す)を含有する。使用した培
地の組成(表示は、%): 培地1.ニュートリエントブロス,0.8;バクト寒天,
1.5 培地2.ニュートリエントブロス,ニトロフェニル0.8 培地3.ニュートリエントブロス,0.8;バクトゼラチ
ン,20.0;バクト寒天,1.5 培地4.バクトリトマスミルク,10.5 培地5.ニュートリエントブロス,0.8;KNO30.1 培地6.バクトペプトン,0.7;NaC,0.5;ブトウ
糖,0.5 培地7.SIM寒天培地,指示量 培地8.TSI寒天(栄研化学製),指示量 培地9.バクトペプトン,1.5;酵母エキス,0.5;可溶
性澱粉,2.0;K2HPO4,0.1;MgSO4・7H2O ,0.02;バクト
寒天,1.5 培地10.Koser培地,指示量 培地11.Christensen培地(栄研化学製),指示量 培地12.酵母エキス,0.05;NaSO4,0.1;KH2PO4,0.
1;ブドウ糖,1.0 酵母エキス,0.05;Na2SO4,0.1;KH2PO4,0.1;ブド
ウ糖,1.0;CaC2・2H2O,0.05;MnSO4・4〜6H2O,0.
01,FeSO4・7H2O,0.001 MgSO4・7H2O,0.02 窒素源としては、硝酸ナトリウム、亜硝酸ナトリウム、
塩化アンモニウム及びリン酸アンモニウムを総窒素含量
として0.0412N%となる様に上記及びの培地に加え
て用いた。
製薬製) 培地17.3%過酸化水素水 培地18.バクトペプトン,0.5;酵母エキス,0.5;ブド
ウ糖,1.0;K2HPO4,0.1;MgSO4・7H2O,0.02 培地19.バクトペプトン,2.7;NaC, 5.5;ブドウ糖,0.5;K2HPO4, 0.3;ブロムチモール ブルー, 0.06;バクト寒天,1.5 培地20.(NH4)2HPO4,0.1;KC,0.02;MgSO4・7H2O,
0.02;酵母エキス,0.05;糖,1.0 培地21.カゼイン,0.5;バクト寒天,1.5;酵母エキ
ス,0.5;ブドウ糖,1.0;K2HPO4,0.1;MgSO4・7H2O,
0.02 (菌学的性質) (a)顕微鏡的観察結果 菌体の大きさは0.5〜1.2μm×1.2〜5.0μmの桿菌であ
り、菌体の準端に楕円形の内生胞子(0.7〜1.2μm×1.
2〜1.6μm)を作る。周鞭毛を有し運動性がある。グラ
ム染色は陽性。
円滑、周縁は波状である。又集落の色調は乳白色で光沢
がある。
色は培地がアルカリのため、判定できない。
性か判定きない。
0〜37℃。生育のpH範囲はpH7〜11、生育最適pHは
pH10.5であった。
%である。
マニュアル・オブ・システィマティック・バクテリオロ
ジー(Bergey’s Mannual of Systematic Bacteriolog
y)第2巻およびザ・ジーナス・バチルス(“The Genus
Bacillus”Ruth,E.Gorodon,Agriculture Handbook
No.427,Agricultural Research Service,U.S.Depar
tment of Agriculture WashingtonD.C.,(1973))
を参照し、比較検索した結果、本菌株は有胞子桿菌であ
るバチルス((Bacillus)属の一種であると認められ
る。しかし、本菌株は中性領域では生育できず、専らア
ルカリ領域で良好な生育を示すことから、最近、Horiko
siとAkiba(“Alkalophilic Microorganism”,Japan S
cientific Society Press (Tokyo),1982年刊)の主張し
ている、所謂好アルカリ性(Alkalophilic)細菌に属
し、従来の中性で生育するバチルス属細菌と区別され
る。
性バチルスのいずれとも一致しないので、これを新規菌
株と判断して、バチルス・エスピーKSM−520と命名
し、工業技術院微生物工業技術研究所に、微工研菌寄第
10483号(FERM P-10483)として寄託した。
カリ性バチルス・エスピーKSM−520(FERM P-1048
3)及びこれより誘導された高力価の当該酵素生産性を
有する各種突然変異株を用いる発酵法により製造するこ
とができる。
には、適当な培地に該菌株を接種し、常法に従って培養
すれば良い。培養培地としては、資化し得る窒素源と炭
素源を適宜組み合わせて含有せしめたものが使用され
る。この炭素源及び窒素源については、特に制限はな
い。例えば、窒素源としては、硝安、硫安、塩安、リン
酸アンモニウム、硝酸ソーダ、コーングルテンミール、
大豆粉、コーンスチープリカー、カザミノ酸、酵母エキ
ス、フォーマメディア、イワシミール、肉エキス、ペプ
トン、ハイプロ、アジパワー、コーンソイビーンミー
ル、コーヒー粕、綿実油粕、カルチベーター、アジプロ
ン、ゼストなどが;また、炭素源としては、籾殻、麸、
濾紙、一般紙類、おが屑等の植物繊維質、廃糖蜜、転化
糖、CMC、アビセル、セルロース綿、キシラン、ペクチ
ン、リボース、アラビノース、キシロース、グルコー
ス、マンノース、フラクトース、ガラクトース、麦芽
糖、庶糖、乳糖、トレハロース、マンニット、ソルビッ
ト、グリセリン、澱粉、酢酸、クエン酸などが挙げられ
る。その他に、リン酸、Mg2+、Ca2+,Mn2+、Zn2+,C
o2+,Na+,K+などの無機塩や、必要であれば、無機、有
機微量栄養源を添加することもできる。
セルラーゼの採取及び精製は、一般の酵素の採取及び精
製の手段に準じて行うことができる。即ち、遠心分離又
は濾過等の通常の固液分離手段により菌体を培養物から
除去して粗酵素液を得ることができる。この粗酵素液
は、そのまま使用することもできるが、必要に応じて塩
析法、沈殿法、限外濾過法等の分離手段により粗酵素を
得、さらに公知の方法により精製結晶化して、精製酵素
として使用することも可能である。
ルカリセルラーゼK−520の酵素学的性質について説
明する。
、500mMグリシン緩衝液(pH9)0.2m、及び脱イ
オン水0.3mからなる基質溶液に酵素液0.1mを加え、
30℃で20分間反応させた。反応後、3,5−ジニト
ロ−サリチル酸(3,5−dinitro-salicylic acid(DN
S))法にて、還元糖の定量を行った。即ち、反応液1.0m
にDNS試薬1.0mを加え、5分間、100℃で加熱発
色させ、冷却後4.0mの脱イオン水を加えて希釈し、波
長535nmで比色定量した。酵素の力価は、1分間に1
μmoのグルコースに相当する還元糖を生成する酵素量
を1単位とした。
ニルセロビオシド分解活性 0.8μmop−ニトロフェニルセロビオシド(シグマ社
製)又はp−ニトロフェニルグルコシド(シグマ社製)
と50μmoリン酸緩衝液(pH7.0)又は、100μmo
グリシン緩衝液(pH9)とを含有する反応液1.0m中
に適当量の酵素液を30℃で作用させた後、1MNa2CO3
を0.4m加え、遊離するp−ニトロフェノールを410
nmで比色定量した。酵素力価は、1分間に1μmoのp
−ニトロフェノールを遊離させる酵素量を1単位とし
た。
ス、アルカリ膨潤セルロース及び濾紙分解活性 10mgアビセル(メルク社製)及び、100μmoグリ
シン緩衝液(pH9)を含有する反応液1.0m中に適当量
の酵素を加え、30℃で280rpmで振盪しながら反応
させた。反応後、DNS法にて還元糖の定量を行った。酵
素力価は、1分間に1μmoのグルコースに相当する還
元糖を生成する酵素量を1単位とした。
ては、東洋濾紙社製のセルロース粉末、セルラーゼ活性
検定用濾紙(東洋No.51−特)及び、富田等の方法Tom
ita,Y.et al.,:J.Ferment.Technol.,52,235,1974)
に従って処理したアルカリ膨潤セルロース、リン酸膨潤
セルロースを使用した。
−グルカナーゼ活性 β−1,3−;1,4−グルカナーゼ、β−1,3−グ
ルカナーゼ活性は、基質としてリケナン(from Usnera
barubata,シグマ社製)及びラミナリン(from Laminar
ia digitata,シグマ社製)を用いて、(3)に準じて活性
を測定した。
し、これらを溶解せしめ、還元糖を生成する。
は、CMCの他にも、ラミナリン、リケナン、濾紙、p−
ニトロフェニルグルコシド及びp−ニトロフェニルセロ
ビオシドに対して若干の活性を有していた。
至適作用pHは、8.5〜9.5である。また、7.0〜11.0の範
囲に於いても至適pHに於ける活性の50%以上の相対活
性を有する(第1図)。
測定し、pH安定性を調べた。その結果、pH6.0〜11.0の
範囲で極めて安定であり、pH5.0〜11.5に於いても約5
0%以上の活性を維持する(第2図)。
度は、50℃である。又、35〜60℃の範囲に於いて
も至適温度での活性の50%以上を有する(第3図)。
加熱処理後の残存活性を測定した結果、本酵素は、40
℃でもほとんど失活せず、50℃に於いても約50%の
残存活性を有していた(第4図)。
いたゲル濾過法によれば、約17±1万及び8.0±0.2万
にピークを有する。
n2+,Mg2+,Ba2+,Ni2+,Hg2+,Fe2+,Pb2+,Zn2+,Al
3+,Fe3+,)を活性測定時に共存させてその影響を検討
した結果、Hg2+、Cd2+、Pb2+(各1mM)の添加は、阻害
効果を与え、Co2+、Mn2+(1mM)の添加は、活性化効果
を与えた。
S、ES、AOS、SAS、石鹸、ポリオキシエチレンカンダリ
ーアルキルエーテル)の酵素活性の阻害は認められなか
った。
工)、マクサターゼ(IBIS)、サビナーゼ、アルカラー
ゼ、エスペラーゼ(ノボ)を活性測定時に共存(0.2AU/
)させ、その影響を調べたところ、何れのプロテアー
ゼに対しても強い耐性を有することが判った。
ゼオライト、クエン酸等を活性測定時に共存させ、その
影響を検討したが、阻害は認められなかった。
いpH範囲に於いて安定な新規のアルカリセルラーゼであ
る。更に、本酵素は、界面活性剤、プロテアーゼ、キレ
ート剤等の洗浄剤配合成分によっても殆ど阻害を受け
ず、洗浄剤組成物の配合成分として有利に使用すること
ができるものである。
塩水に懸濁し、80℃で10分間熱処理した。この熱処
理液の上清を適当に希釈して、分離用寒天培地(培地
A)に塗布した。次いで、これを30℃にて3日間培養
し、集落を形成させた。集落の周囲にCMCの溶解に基づ
く透明帯を形成するものを選出し、CMCアーゼ生産菌を
取得した。更に、取得菌を培地Bの液体培地に接種し、
30℃で3日間振盪培養した。培養後、遠心分離した上
清液について、CMCアーゼ活性をpH3〜13にて測定
し、アルカリセルラーゼ生産菌を選択した。
483)を取得することができた。
施例1の液体培地Bに接種し、30℃で3日間振盪培養
した。培養後、菌体を遠心分離して除き、粗酵素液とし
た。更に、通常の方法に従って、エタノール乾燥粉末と
し、セルラーゼ酵素標品(第2表)を得ることが出来
た。
ースを1%、ポリペプトンに代えてCSLを5%添加した
培地に、KSM−520菌を接種し、30℃で2乃至3日
間振盪培養した。遠心分離上清についてCMCアーゼ活性
を測定した結果、3542U/のCMCアーゼ活性が得られ
た。
反応pHと相対活性との関係を示す図面、第2図は、CMC
に対する処理pHと残存活性との関係を示す図面、第3図
は、本発明のアルカリセルラーゼの反応温度と相対活性
との関係を示す図面、第4図は、処理温度と残存活性と
の関係を示す図面である。
Claims (3)
- 【請求項1】次の物理化学的性質を有するアルカリセル
ラーゼK-520。 (1)作用 カルボキシメチルセルロース(CMC)、セルロース、濾
紙、アビセル等の繊維素によく作用し、これらを溶解せ
しめ、還元糖を生成する。 (2)基質特異性 CMCの他にも、セルロース粉末、リン酸膨潤セルロー
ス、アルカリ膨潤セルロース、アビセル、濾紙、p−ニ
トロフェニルグルコシド及びp−ニトロフェニルセロビ
オシドに対する活性を有する。 (3)作用pH及び至適pH CMCに対する作用pH範囲は3〜13.0である。至適pHは8.5
〜9.5であり、7.0〜11.0の範囲においても至適pHに於け
る活性の50%以上の相対活性を有する。 (4)pH安定性 CMCを基質とした場合、pH6.0〜11.0で極めて安定で失活
せず、pH5〜11.5においても、約50%以上の活性を維持
する。 (5)最適温度 CMCに対する作用温度は、10〜70℃の広範囲にわたり、
その至適温度は、50℃である。又、35〜60℃の範囲に於
いても、至適温度での活性の50%以上を有する。 (6)分子量 約17±1万及び8.0±0.2万(バイオゲルA0.5mを用い
たゲル濾過法による)。 (7)金属イオンの影響 CMCを基質とした場合、Hg2+、Cd2+、Pb2+、により阻害
され、Co2+、Mn2+により活性化される。 (8)界面活性剤の影響 CMCを基質とした場合、直鎖アルキルベンゼンスルホン
酸塩、アルキル硫酸塩、ポリオキシエチレンアルキルス
ルホン酸塩、α−オレフィンスルホン酸塩、二級アルカ
ンスルホン酸塩、石鹸、ポリオキシエチレンセカンダリ
ーアルキルエーテルは活性を殆ど阻害しない。 (9)プロテアーゼの影響 CMCを基質とした場合、プロテアーゼに対して耐性を有
する。 (10)キレート剤の影響 CMCを基質とした場合、EDTA、EGTA、クエン酸、トリポ
リリン酸ソーダ、ゼオライトは活性を阻害しない。 - 【請求項2】アルカリ培地で生育し、請求項1記載のア
ルカリセルラーゼK−520を生産する能力を有し、微
工研菌寄第10483号として寄託されたバチルス・エスピ
ー KSM−520。 - 【請求項3】バチルス属に属するアルカリセルラーゼK
−520生産菌を培養し、その培養物から請求項1記載
のアルカリセルラーゼK−520を取得することを特徴
とするアルカリセルラーゼK−520の製造法。
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1990
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