JPH064034B2 - 微生物の培養方法 - Google Patents

微生物の培養方法

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JPH064034B2
JPH064034B2 JP18156285A JP18156285A JPH064034B2 JP H064034 B2 JPH064034 B2 JP H064034B2 JP 18156285 A JP18156285 A JP 18156285A JP 18156285 A JP18156285 A JP 18156285A JP H064034 B2 JPH064034 B2 JP H064034B2
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、微生物の培養方法に関し、さらに詳細にはビ
タミンB12を効率よく生産するためのユウバクテリウム
属またはブチリバクテリウム属に属し、炭素源として少
くともメタノールを資化し、ビタミンB12生産能を有す
る微生物の培養方法に係わる。
ビタミンB12は、DNAやメチオニンなどの生合成に関
与し、生命現象の維持発現に重要な役割を演じており、
飼料添加剤としての用途の他に、悪性貧血およ慢性の神
経疾患などに優れた薬効があり、近年需要が増加する傾
向にある。本発明はこのビタミンB12を効率よく生産す
るための微生物の培養方法に関する。
〔従来技術、発明が解決しようとする問題点〕
ビタミンB12は、最初は抗貧血性ビタミンとして分類さ
れ、次いで1955年にホツジキン(Hodgkin)らによ
つて結晶構造が明らかにされた。1973年には、約7
0段階に及ぶ複雑な化学合成過程を経て合成されたが、
工程が複雑であつて実用的ではなく、現在では工業的に
はもつぱら微生物を使用する方法によつて生産されてい
る。
微生物によるビタミンB12の生産については、プロピオ
ニバクテリウム属(Propionibacterium)および、シユ
ードモナス属(Pseudomonas)に属する微生物を、炭化
化物を基質として培養する方法、ノカルデイア属(Noca
rdia)およびアースロバクター属(Arthrobac
ter)に属する微生物を、炭化水素を基質として培養
する方法ならびにメタン発酵菌、シユードモナス属、プ
ロタミノバクター属に属する細菌をメタノールを基質に
して培養する方法などが知られている(たとえば特公昭
56−11438および特開昭50−111287な
ど)。
一方、メタノールは近年大量に安価に製造されることか
ら醗酵工業における安価でかつ安定して入手できる基質
として注目されている。しかしながら、これまでに報告
されている好気性メタノール資化性細菌を用いてのビタ
ミンB12生産量は工業的には満足しうる量に達していな
い。これに対してメタノールを基質として微生物を培養
し、効率よくタアミンB12を生産する方法が知られてい
る。たとえば、メタノール資化性を有する嫌気性微生物
であるメタノサルシナなどのメタン発酵菌、ユウバクテ
リウムリモスム(Eubacterium limosum)およびブチリ
バクテリウム メチロトロフイカム(Butyribacterium
methylotrophicum)などを使用する方法が知られてお
り、なかでもブチリバクテリウム メチロトロフイカム
はそのビタミンB12含有量が高いことが報告されてい
る。
そこで本発明者らは、ブチリバクテリウム メチロトロ
フイカムについてメタノールを主炭素源として培養を試
みたところ、菌体中のビタミン含有量は高くはなるが、
十分に増殖しないうちに増殖が停止し、従つてビタミン
12の生産量が不十分となる。この増殖の停止は、消費
されたメタノールの約50%以上が、酪酸および酢酸な
どの有機酸に転換され、これらの有機酸の蓄積による生
育阻害によるものであることを発見した。また、ブチリ
バクテリウム属に属する他のビタミンB12生産菌および
ユウバクテリウム リモスムなどのユウバクテリウム属
に属するビタミンB12生産菌についても同様であること
を発見した。
〔問題を解決するための手段、作用〕
本発明者らは、ユウバクテリウム属またはブチリバクテ
リウム属に属しメタノール資化性を有するビタミンB12
生産菌の、これらの有機酸に起因する増殖の停止を解消
することにより菌体濃度を上昇せしめ、以つてビタミン
12の生産量を顕著に増大せしめることを目的に鋭意研
究を行なつてきた。その結果、前記のビタミンB12生産
菌と、酢酸および/または酪酸などの有機酸分解能を有
する脱窒菌とを混合培養することによつて、培養液中に
一旦生成蓄積された酪酸および酢酸などの有機酸は脱窒
菌によつて分解され、培養液中の有機酸濃度をビタミン
12生産菌の生育阻害濃度未満に減少させることによ
り、前記のビタミンB12生産菌のビタミンB12の高含有
量を保持したまゝで菌体濃度を一段と向上せしめ、以つ
てビタミンB12の生産性を向上せしめる本発明を完成す
るに至つた。
すなわち、本発明は、ユウバクテリウム属またはブチリ
バクテリラム属に属し、炭素源として少なくともメタノ
ールを資化しビタミンB12生産能を有する細菌と、有機
酸分解能を有する脱窒菌とを混合培養することを特徴と
する微生物の培養方法である。
本発明で使用されるビタミンB12生産菌はユウバクテリ
ウム属またはブチリバクテリウム属に属し、炭素源とし
て少なくともメタノールを資化し、ビタミンB12生産能
を有する細菌であればよく、特に制限はない。
本発明で使用されるビタミンB12生産菌の代表例として
は、それ自体公知のブチリバクテリウム メチロトロフ
イカム、ユウバクテリウム リモスムがある。また代表
菌株としてユウバクテリウム リモスム(Bergey's man
ual第8版)ATCC 8486、同ATCC 108
25、同DSM 2593、および同DSM 2594
ならびにブチリバクテリウム メチロトロフイカム(Cu
rrent Microbiology、p381−386(198
0))ATCC33266を挙げることができる。これ
らのうち、ユウバクテリウム リモスムATCC 84
86が好ましい。
本発明で、培養液中に一旦生成、蓄積された有機酸を減
少させるために使用される微生物は、有機酸分解能を有
し、かつ、嫌気性であるばかりではなく、ビタミンB12
生産菌の有機酸生成速度を上まわる有機酸分解能を有
し、メタノール耐性をも有していることが必要であり、
さらにはメタノールを資化しないことが好ましい。有機
酸分解能を有する微生物としてメタン生成菌および光合
成細菌などが知られている。しかしながら、メタン生成
菌は嫌気的ではあるが増殖がおそく、従つて生成された
有機酸を速やかに分解できないので実用的ではない。ま
た光合成細菌は好気的条件下では暗所で有機酸を分解す
るが嫌気的条件下で有機酸を分解させるには光が必要で
あることから、これまた実用的ではない。
前記のような要件を充足しうる微生物として脱窒菌が選
択された。なお、脱窒菌は「硝酸もしくは亜硝酸または
これらの塩を還元して窒素を発生させうる微生物」と定
義される。本発明に使用される脱窒菌は、前記の要件を
充足していればよく、特に制限はない。なお、ビタミン
12生産菌は、メタノールを炭素源として培養したとき
には、有機酸として酢酸、プロピオン酸、酪酸および吉
草酸などの各種の脂肪酸を副生するが、菌株によつて副
生する脂肪酸が異なるので、使用するビタミンB12生産
菌の菌株によつて使用する脱窒菌を選択しなければなら
ない。たとえば、ユウバクテリウム リモスムおよびブ
チリバクテリウム メチロトロフイカムはいずれも有機
酸として酢酸および酪酸を副生するので脱窒菌としては
酢酸および酪酸に対して大きな分解能を有する脱窒菌を
使用しなければならない。このような脱窒菌の代表例と
してアルカリゲネス フエカリス Alcaligenes faecal
is(IAM−1446)、シユードモナス スタツツエ
リー Pseudomonas stuzeri(IFO−3773)、シ
ユードモナス デニトリフイカンス Pseudomonas deni
trificans(DSM−1650)およびシユードモナス
プチダ Pseudomonas putida(ATCC−795)など
を挙げることができる。
本発明の混合培養で使用される倍地は、炭素源として少
なくともメタノールおよび脱窒菌が資化しうる炭素源、
窒素源として脱窒菌の窒素源である硝酸もしくは亜硝酸
またはこれらの塩−たとえば硝酸カリウム、硫酸アンモ
ニウム、亜硝酸カリウムおよび亜硝酸ナトリウムなど−
と、ビタミンB12生産菌の窒素源である、たとえばアン
モニウム塩、ペプトン、酵母エキス、コーンステイープ
リカーおよび尿素などの窒素含有物質を少くとも含有し
ていなければならない。また、この培養液中にはCO2
および/またはCO3 --が存在していることが好まし
い。このCO2および/またはCO3 --としてメタノール
が分解されて生成したCO2が充当されるが、さらにC
2および/またはNaHCO3のようなCO2発生剤を添加し
てもよい。
メタノールおよび窒素源のそれぞれの量は、使用される
ビタミンB12生産菌の種類および脱窒菌の種類ならびに
窒素化合物の種類などによつて異なり、一概に特定しえ
ないが、実用上はそれぞれほぼつぎのような培養液濃度
になるような使用量とされる。
すなわち、メタノール濃度は通常5容量%以下であり、
特に1.5容量%以下が好ましい。脱窒菌が資化しうる
炭素源としては、酢酸および酪酸などの有機酸の他に、
グルコースおよびフラクトースなどの糖類などがあり、
これらの炭素源濃度を通常3重量%以下、好ましくは1
重量%以下を維持することが好ましい。
硝酸もしくは亜硝酸またはこれらの塩は、その使用に際
しては培養初期にたとえば、2g/程度の生育を阻害
しない程度の低濃度とし、微生物の増殖に伴つて逐時添
加して濃度を高めることが好ましいこともある。また、
グリコースおよびフラクトースのようなビタミンB12
産菌が資化しうるメタノール以外の炭素源をさらに含有
させてもよく、また好ましい。
また、必要に応じてミネラル類、ビタミン類およびビタ
ミンB12の前駆体などを含有させてもよく、また好まし
い。ミネラル類としては、たとえばりん酸塩類、マグネ
シウム塩類、カリウム塩類、カルシウム塩、マンガン塩
類、コバルト塩類、鉄塩類および亜鉛塩類などがある。
ビタミンB12の前駆体としては、5,6−ジメチルベン
ズイミダゾール、コリン、およびベタインなどがある。
本発明の混合培養で使用される倍地として、ビタミンB
12生産菌培養用のそれ自体公知の倍地または脱窒菌培養
用のそれ自体公知の倍地に若干の変更を加えて使用する
ことができる。すなわち、たとえば、ビタミンB12生産
菌培養用の公知の倍地にビタミンB12生産菌が資化でき
る量のメタノールおよび脱窒菌が必要とする量の硝酸も
しくは亜硝酸またはこれらの塩を新たに添加するかまた
は補充して使用することができる。また、脱窒菌培養用
の公知の倍地に、ビタミンB12生産菌が資化できる量の
メタノールおよびビタミンB12生産菌が必要とする窒素
含有物質を添加して使用することもできる。前記のビタ
ミンB12生産菌培養用の倍地は、たとえば、ユウバクテ
リウム リモスムについては、たとえば、Eur.J.Bioche
m.vol109,115〜118(1980)に、また、
ブチリバクテリウム メチロトロフイカムについては、
たとえば、Curre.Microbiol vol3,381−386(1
980)にそれぞれ記載されている。
一方、脱窒菌培養用の倍地は、たとえば、J.Ferment.Te
chnol58,No.3,243〜249(1980)に記載
されている。
培養温度および培養pHなどの培養条件については、ビタ
ミンB12生産菌と脱窒菌では互に重複している範囲があ
るので、この重複している範囲から適宜選択すればよ
い。この重複する範囲の大きさは使用されるビタミンB
12生産菌および脱窒菌のそれぞれの種類によつて異り、
一概には特定し得ないが、培養温度は実用上、通常は2
0〜45℃程度、好ましくは25〜37℃程度とされ、
また、培養pHはpH5〜8程度、好ましくはpH6〜7.5
程度とされる。培養pHを一定に保つためには、用いる窒
素源の種類などによつても異なるが、必要に応じ培養液
に苛性ソーダ、炭酸ソーダ、アンモニア水などのアルカ
リ類や、硝酸、硫酸等の酸類を添加することができる。
また、培養液中に、培養液の還元状態を知るための検知
剤−たとえばレサズリンなど−を存在させることが好ま
しい。
培養方式としては、たとえば静置培養方式、窒素ガスや
炭酸ガスによる通気撹拌培養方式などを挙げることがで
きる。
ビタミンB12生産菌と脱窒菌との混合は、ビタミンB12
生産菌の培養開始時、培養初期乃至培養終期のいずれで
もよいが、ビタミンB12生産菌の濃体濃度がOD660nm
が約2以上、好ましくは約2〜5のときに両者を混合す
ることが好ましい。
本発明における混合培養の開始時および培養期間中にお
ける脱窒菌とビタミンB12生産菌との菌数比は使用され
る微生物の種類、培地組成および培養条件などによつて
異なり、一概には特定しえないが、実用上はビタミンB
12生産菌に対する脱窒菌の菌数比は培養開始時乃至培養
初期においては通常は0.01〜0.2程度、好ましく
は0.02〜0.1程度とされ、培養期間中では通常は
0.05〜0.5程度、好ましくは0.1〜0.3程度
であつて、しかも通常は混合培養開始時乃至培養初期に
おけるよりも大とされる。
混合培養によつて得られた混合培養液からのビタミンB
12の回収は常法によつて行なうことが可能である。すな
わち、ビタミンB12は本質的には菌体内に生成蓄積され
るため混合培養から遠心分離または過などの固液分離
手段により菌体を集める。ビタミンB12をシアノ型ビタ
ミンB12として回収分離する場合には菌体または菌体水
性懸濁液のpHを硫酸などの酸により酸性、好ましくはpH
4〜5に調整し、シアン化カリなどのシアン化合物を約
50〜200ppmとなるように添加した後、85〜12
0℃に加熱することにより抽出可能である。また、ビタ
ミンB12をメチル型または補酵素型として回収する場合
には、菌体または菌体水性懸濁液から暗所でメタノー
ル、エタノールまたはアセトレなどの溶媒を用いて抽出
する。前記のビタミンB12の分離回収に先立つて菌体ま
たは菌体水性懸濁液を超音波などで処理して菌体を破砕
してもよい。菌体から抽出されたこれらのビタミンB12
は、所望によりフエノール抽出、イオン交換樹脂、セル
ロースなどを用いたカラムクロマトグラフイーによる方
法など、またはこれらを組み合わせて精製される。
〔実施例〕
以下の実施例により本発明をさらに具体的に説明する。
以下の比較例および実施例において、ビタミンB12の定
量は佐藤らの方法(ビタミン第57巻第11号第609
〜616頁1983)に準拠してラクトバチルス ライ
ヒマニ IFO−3376を用いた微生物法により行な
つた。
また、培養液には検知剤であるレサズリンを添加し、レ
サズリンが無色を保つように培養液を還元状態に保つ
た。
比較例1 第1表に示した組成の培地を使用し、培養経過と共に必
要に応じメタノール等を逐次添加した。
第1表 KH2PO4 3 g Na2HPO4 2 g MgSO4・7H2O 0.4g Na2CO3 1.0g (NH42SO4 0.5g CH3COONa・3H2O 1.0g Cysteine・Hcl 0.5g CaCl2・2H2O 0.1g 酵母エキス 10.0g メタノール 10.0ml レサズリン(2%溶液) 0.1ml クエン酸鉄・xH2O 60 mg ZnSO4・7H2O 10 mg MnCl2・4H2O 10 mg CuSO4・5H2O 0.5mg KI 1 mg (NH46Mo724・4H2O 1 mg CoCl2・6H2O 10 mg H3BO3 1 mg NiSO4・6H2O 1 mg ビチオン 50 μg 葉酸 10 μg チアミン塩酸塩 10 mg リボフラビン 100 μg ナイアシン 100 μg パントテン酸カルシウム 5 mg p−アミノ安息香酸 100 μg チオクト酸 100 μg 水 1 第1表に示した液体培地(NaHCO3を除く)750mlを1
容培養槽に入れ、120℃で20分間滅菌した。窒素
気流下で冷却後、別に過滅菌したNaHCO3を1g/に
なるように添加した後、炭酸ガスを通気して培地pHを
7.5に調整した。
この培地に、第1表に示した液体培地を用いて100ml
容三角フラスコに静置培養して得られたユーバクテリウ
ム リモスム ATCC8486の種母液(OD660nm
=約2)を約30ml植菌し、培養温度35℃で150rp
mでゆつくり撹拌し、窒素気流下で嫌気培養を行なつ
た。植菌後、ガスクロマトグラフイーにより培養液中の
メタノールを分析し、培養液中のメタノールがなくなら
ないように逐次メタノールを添加し、培養液中のメタノ
ール濃度を0.1〜0.9容量%程度に維持した。培養
開始後、約60時間で菌体濃度は6.0g/に達した
が、さらに培養を継続しても菌体濃度は増加しなかつた
ので、培養開始後、約70時間で培養を中止した。この
ときの培養液中のビタミンB12生産量は約24mg/で
あつた。
比較例2 ユーバクテリウム リモスム ATCC 8486にか
えてブチリバクテリウム メチロトロフイカム ATC
C 33266を比較例1と同様にして培養した。
窒素気流下、培養開始後約50時間で菌体濃度は6.9
g/に達した。さらに培養を継続してもこれ以上菌体
濃度は増加しなかつたので培養開始後、約70時間で培
養を中止した。このときの培養液中のビタミンB12の生
産量は約28mg/であつた。なお、培養液中のメタノ
ール濃度が0.1〜0.6%になるようにメタノールを
適時添加した。
実施例1 比較例1の第1表に示された培地にさらに、KNO3
3.0g/になるように添加した培地 750mlを1
容培養槽に張り込み、滅菌した。比較例1と同様にし
て調製したユーバクテリウム リモスム ATCC 8
486の種母液を約30ml植菌し、培養を行なつた。一
方、混合培養に用いる脱窒菌の種母調製は以下のように
行なつた。
すなわち、KH2PO42.0g/、Na2HPO45.0g/、Mg
SO4・7H2O0.2g/、KNO34.0g/、酪酸ナト
リウム2.5g/、酵母エキス 0.5g/、クエ
ン酸鉄・xH2O 10mg/、ZnSO4・7H2O 10mg/
、MnCl2・4H2O 10mg/、CaCl2・2H2O 20mg/
および水1から成る培地 60mlを100ml容三角
フラスコに入れ、シユードモナス スタツツエリー I
FO 3773を植菌し、嫌気ジヤーで34℃で培養し
た。
OD660nmが、約3に達した前記のユーバクテリウム
リモスム ATCC 8486の培養液全量にこのシユ
ードモナス スタツツエリー IFO 3773の培養
液(OD660nm=約2)を約40mlを植菌し、(ユーバ
クテリウム リモスムの菌数に対するシユードモナスス
タツツエリーの菌数比は約0.04)培養温度 35
℃、培養pH7.5で培養を継続した。その後、培養液の
OD660nmが約7になつた時点でNH4NO37gを培養槽に
添加した。培養開始後、約60時間で菌体濃度は7.2
g/に達した。さらに培養を継続し培養開始後約75
時間経過した時点で培養を止めた。このときの混合培養
液の菌体濃度は12g/、ビタミン生産量は約39mg
/であり、比較例1に比してビタミンB12生産量は顕
著に増加した。なお、ユーバクテリウム リモスムの菌
数に対するシユードモナス スタツツエリーの菌数の比
は培養期間中において逐次大きくなり培養終了時には約
1/6であつた。
なお、培養液中のメタノール濃度は比較例1と同様に
0.1〜0.9容量%程度になるように適時添加して培
養を行なつた。
実施例2 1培養槽に、比較例1の第1表に示された培地にさら
にKNO3を3.0g/添加した培地750mlを1容培
養槽に張り込み、120℃で20分間滅菌した後、窒素
気流下で冷却した。この培地に比較例2と同様にして調
製したブチリバクテリウム メチロトロフイカムATC
C 33266の種母液約30mlを植菌し、窒素気流下
で嫌気培養を行なつた。
一方、混合培養に使用する脱窒菌のシユードモナス プ
チダ ATCC 795の種母液は、菌をかえた以外は
実施例1と同様にして調製された。OD660nmが約3に
達した前記のブチリバクテリウム メチロトロフイカム
ATCC 33266の培養液全量にOD約2に、生
育したこのシユードモナス プチダ ATCC 795
の種母液を約40ml植菌し、培養温度 34℃、pH7.
4で混合培養を開始した。なお培養開始時のブチリバク
テリウム メチロトロフイカムの菌数に対するシユード
モナス プチダの菌数比は約0.03であつた。
培養pHは、pH7.5を保つように炭酸ガスを培養液中に
通気してpHをコントロールしながら培養した。培養液中
のメタノール濃度は0.1〜0.8容量%になるように
メタノールを逐時添加した。
培養液のOD660nmが約7になつた時点で、NH4NO310
gを培養液に添加した。NH4NO3水溶液を添加する際は充
分脱気し、溶存酸素を除去した後に添加した。培養開始
後約55時間経過後の菌体濃度は8.1g/であり、
更に培養を継続し、培養開始後約70時間経過した時点
で培養を止めた。この時点の菌体濃度は13g/と比
較例2より菌体濃度が顕著に向上していた。なお、ビタ
ミンB12生産菌のブチリバクテリウム メチロトロフイ
カムの菌数に対する脱窒菌のシユードモナス プチダの
菌数比は培養期間において逐次大きくなり、培養終了時
には約0.2であつた。
ビタミンB12の生産量は約48mg/であり比較例2に
比して顕著に向上していた。
〔発明の効果〕
本発明によれば、飼料添加剤、医薬品として価値の高い
ビタミンB12を安価なメタノールを炭素源として使用
し、容易に効率良く得ることが出来る。しかも撹拌動力
や酸素供給動などは本質的に不要であるので省エネルギ
ー的にも有利である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:40)

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】ユウバクテリウム属またはブチリバクテリ
    ウム属に属し、炭素源として少くともメタノールを資化
    しビタミンB12生産能を有する細菌と、有機酸分解能を
    有する脱窒菌とをメタノールの存在下で混合培養するこ
    とを特徴とする微生物の培養方法。
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