JPH0649719B2 - ヒルディン誘導体 - Google Patents

ヒルディン誘導体

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JPH0649719B2
JPH0649719B2 JP1044980A JP4498089A JPH0649719B2 JP H0649719 B2 JPH0649719 B2 JP H0649719B2 JP 1044980 A JP1044980 A JP 1044980A JP 4498089 A JP4498089 A JP 4498089A JP H0649719 B2 JPH0649719 B2 JP H0649719B2
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    • AHUMAN NECESSITIES
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    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
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Description

【発明の詳細な説明】 ヒルディンの誘導体およびその遺伝子工学的製造方法に
関しては、欧州特許出願(EP−A)第0,171,024号明
細書に開示されている。
現在、下記のようなアミノ酸配列のヒルディン誘導体が
多くの利点を有することが明らかになっている。
EP−A第0,171,024号明細書において用いられた番号
をこの配列でも用いた。ヒルディンとその誘導体は、生
物活性が異なっている。これはトロンビンに対する親和
性の相違および/または安定性の相違によると考えられ
る。本発明によるヒルディン誘導体は、驚いたことに、
特異的な活性によって特徴づけられる。
また、本発明によるヒルディン誘導体は、酵母中でとく
に有利に発現されることも明らかにされた。比較実験に
よって、N−末端Thr-Tyrまたはlle-Tyrで始まる類似ヒ
ルディン誘導体は、低収量でしか発現されないことが示
された。
酵母細胞による発現は、ヒルディン誘導体が分泌される
からだけでなく、とくに、それが実質的に量的に正しく
折り畳まれたかたちで高活性を有するので、有利であ
る。
第1図は、酵母MFα前駆体タンパク質および本発明に
よるヒルディン誘導体をコードする遺伝子構造物を構築
するために有用なクローニングベクターを示す。第2図
は、この遺伝子構造物を含む酵母発現ベクターを示す。
本発明によるヒルディン誘導体は、もちろん、他の方
法、例えば、細菌または昆虫細胞あるいは動物細胞など
の高等真核細胞における発現などによっても製造され
る。しかしながら、酵母系(system)による発現、例え
ばEP−A第0,248,227号明細書に列記された酵母種、
例えばピチア・パストリス(Pichia pastoris)、ハン
セヌラ・ポリモルフィス(Hansenula polymorphis)、
スキゾサッカロミセス・ボンベ(Schizosaccharomyces
pombe)または好ましくはサッカロミセス・セレビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)などを用いる発現は、好
ましい。
酵母における発現のためのベクターは、例えばEP−A
明細書第0,060,057号、第0,008,632号、第0,116,201
号、第0,121,884号、第0,123,544号および第0,195,691
号に記載のものなど、多数が知られている。本発明によ
るヒルディン誘導体の製造法は、以下に酵母α因子系を
用いて記述されるが、これが単なる例示であることは、
既知の方法によって他の発現系を用いることも可能であ
ることから自明である。
酵母フェロモン(pheromone)遺伝子MFαは、Kurjan
およびHerskovitz(Cell 30、933-943、1982)の記述で公
知であるが、ここでは他の遺伝子の発現と遺伝子産生物
の分泌の可能性についても検討されている。この点に関
しては、Brakeら(Proc.Natl.Acad.Sci.81、4642-4646、1
984)の記述も参照されたい。
有利に用いられる酵母ベクターは、細菌プラスミドおよ
び酵母プラスミドの複製開始点と両宿主系における選択
のための遺伝子とを有する、いわゆるシャトルベクター
である。さらに、このタイプのベクターは、外来性遺伝
子の発現に必要なプロモーター配列と、必要であれば収
量を上げるためのターミネーター配列を含み、ここには
(適宜分泌シグナルに融合した)異種構造(heterologo
us)の遺伝子がプロモーターとターミネータの間に位置
している。
本発明は、以下の諸例によって詳細に説明される通りで
ある。パーセント表示は、重量パーセントである。
例1:発現ベクターの構築 まず、DNA配列I(表1)をホスファイト法にて合成
する。このDNA配列は、MFα前駆体タンパク質のア
ミノ酸49〜80をコードし、実質的には天然の(natu
ral)DNA配列に相当する。
DNA配列Iは、最初はα因子をコードする遺伝子の単
離のためのプローブとして用いられ、この目的のため
に、32Pで標識する。このプローブを用いて遺伝子をゲ
ノムλgt11酵母遺伝子バンク[例えば、Clontech L
aboratories Inc.(4055 Fabian Way、Palo Alto、CA9430
3)から現在市販されているもの]から単離する。この
目的のために、α因子遺伝子を有するλgt11ファー
ジをプラークハイブリダイゼーション実験において同定
する。陽性と同定されたプラークからのファージを単離
して増殖させて、DNAを得る。後者をEcoRIにて
切断して0.8%アガロースゲル上で分析する。サザン
トランスファー実験の後、膜を32P−標識DNA配列I
とハイブリダイズさせる。DNA配列Iとハイブリダイ
ズする約1.75kbのフラグメントを有するファージD
NAを、再び酵素で切断して、対応するフラグメントを
単離する。ベクターpUC19をEcoRIで開裂し
て、T4リガーゼを用いて1.75kbフラグメントと反
応させる。クローニングベクター1が得られる。
表2に列記したクローニングベクターは、全てpCUプ
ラスミドを基礎に構築されたものである。この表はこれ
らベクターのポリリンカー領域のみを通常の5′−3′
の方向で示したものである。ここで、MFα配列を点線
で、ヒルディン配列を破線で示した。実線は、pCUお
よびリンカー配列を表す。第1図は、これらクローニン
グベクターを模式的に図示したものである(比例尺で示
したものではない)。
大腸菌(E.coli)79/02株をライゲーション反応混
合液にて形質転換させる。白色のコロニーを単離して、
プラスミドDNAをこれらから得て、1.75kbのEc
oRIフラグメントを含むプラスミドを同定する。MF
αの前駆体タンパク質の天然のDNA配列は、アミノ酸
8〜10をコードする領域にPstI切断部位を、アミ
ノ酸48/49をコードする領域にTaqI切断部位
を、各々含む。MFα前駆体配列のアミノ酸9〜48を
コードするフラグメントは、単離されたプラスミドDN
AからPstIおよびTaqIの反応によってここで単
離される。ベクターpCU18をPstIおよびKpn
Iによって開裂させ、T4リガーゼを用いてPstI−
TaqIフラグメントおよび合成DNA配列Iと反応さ
せる。大腸菌79/02をライゲーション反応混合液で
形質転換させる。形質転換反応混合物をIPTG−Xg
al−Apプレートにプレーティングする。白色コロニ
ーを単離して、これらクローンのプラスミドDNAを制
限酵素分析によって特徴づけする。このようにして、M
Fα前駆体配列のアミノ酸8〜80をコードするクロー
ニングベクター2を得る。
PstIおよびKpnIを用いる反応によってクローニ
ングベクター2から該コード配列を切り出して、下記の
ライゲーション反応に導入する。この目的のために、ク
ローニングベクター1をEcoRIおよび部分的にPs
tIと反応させて、MFα前駆体配列の最初の8個のア
ミノ酸をコードする配列からなるフラグメントを単離す
る。さらに、ベクターpUC19をEcoRIおよびK
pnIにて開裂させて、前述した二つのフラグメントと
連結させて、クローニングベクター3を得る。後者は、
アミノ酸80までの完全なMFα前駆体配列物をコード
する。
ほとんどのヒルディン配列の出発材料は合成遺伝子であ
り、これはEP−A第0,171,024号明細書に「DNA配
列I」として開示され、本発明においてはDNA配列IV
として表1に示されている。この配列の制限酵素切断部
位はアンダーラインで強調して示されている。AccI
はアミノ酸1〜3の領域を切断し、BamHIはアミノ
酸30/31の領域を切断し、SacIは最後の終止コ
ードンの最初を切断する。XbaIの突出配列は遺伝子
の5′末端に位置し、SalIの突出配列は3′末端に
位置している。この合成遺伝子を二つの部分にサブクロ
ーニングさせた(EP−A第0,171,024号明細書の第1
および第2図。)これらサブクローニングベクターは2
表のNo.4(EP−A第0,171,024号明細書第2図に対
応)およびNo.6(EP−A第0,171,024号明細書第1図
に対応)に示されている。
クローニングベクター4をHincIIおよびHindII
Iで開裂させて、線状になったDNAをDNA配列II
(表1)に連結させる。このようにして得たクローニン
グベクター5において平滑末端連結(blunt-ended liga
tion)をした部位にNcoI切断部位が形成される。
ヒルディンの部分配列をコードするフラグメントを、B
amHIおよびAccIを用いる全消化によってクロー
ニングベクター6から切り出す。次いで、このフラグメ
ントを、BamHIおよびKpnIで開裂しておいたク
ローニングベクター3とDNA配列III(表1)とに連
結させる。
DNA配列III中の最後の三つのコードンをDNA配列I
V(表1)と同様に番号を付す。この結果、MFα前駆
体配列の最初の80個のアミノ酸および本発明によるヒ
ルディン誘導体の最初の30個のアミノ酸をコードする
クローニングベクター7が形成される。これをDNA配
列分析によって確認する。
ヒルディンのアミノ酸31〜64をコードするフラグメ
ントをBamHIおよびHindIIIによってクローニ
ングベクター5から切り出す。このフラグメントを同じ
酵素で開裂させておいたクローニングベクター7に連結
させる。その結果、MFα前駆体配列の最初の80個の
アミノ酸および本発明によるヒルディン誘導体の完全な
配列をコードするクローニングベクター8が得られる。
このプラスミドの構造を制限酵素分析にて確認する。
プラスミドYep13(Broachら:Gene 、121、197
9)をBamHIで開裂して、突出末端をクレノウポリ
メラーゼで埋填する。DNAをエタノールで沈澱させ
て、牛アルカリホスファターゼで処理する。
ヒルディン誘導体およびMFα前駆体配列をコードする
フラグメントをNcoIおよびEcoRIでクローニン
グベクター8(表2)から切り出して、突出末端を上記
のようにして埋填する。
二つの平滑末端DNAをともに連結させて、プラスミド
pαfHir17およびpαfHir18を構築する
(第2図)。これら二つのプラスミドは、挿入フラグメ
ントの位置方向が異なるのみである。
EP−A第0,171,024号明細書に記載されているよう
に、挿入配列の下流にターミネーターを挿入することが
可能である(EP−A第0,171,024号明細書第4〜6
図)。この目的には、NcoIおよび/またはBamH
I切断部位が適している。
プラスミドDNAを大腸菌MM294中で増殖させた後
に、プラスミドpαfHir17にてロイシン要求性
(leucine-dependent)酵母Y79株(α、trp1−
1、leu2−1)(Cantrellら:Proc.Acad.Nat.Sci.
USA 82、6250,1985)およびDM−6−6株(α/αle
u2−3、112::ura3/leu2::lys
、trp1/trp1、his3−11、15
/his3−11、15、ura3/ura3、l
ys2/lys2、arg4−17/arg4
ade1/ade1)(Maya Hanna,Dept.Mol.Bio
l.Massachusetts General Hospital、Boston、USA)をIto
らのリチウム法(Ito,H.ら:J.Bacteriol.153、163、198
3)によって形質転換させる。ロイシン無添加の選択培
地上で増殖することができる単一コロニーを単離する。
酵母ミニマル培地に各々のコロニーを接種して、28℃
で24時間培養する。細胞を遠心分離して、上清液をト
ロンビン阻害分析してヒルディン活性を調べる。上清液
がヒルディン活性を示した酵母クローンからのプラスミ
ドDNAを再び単離して、制限酵素分析にて特徴づけを
する。形質転換させた酵母株を次の発現試験に用いる。
例2:発現 10mlの酵母完全培地に例1で得られた株の選択培地か
らの新鮮な一晩培養液から採取した細胞を接種して、吸
光度OD600=0・1になるようにする。培養液を振と
うしながら28℃で8時間培養し、その後、90mlの新
鮮培地を加える。さらに振とうしながら20時間培養を
続ける。細胞を遠心分離して、上清液中のヒルディン活
性を測定する。
例3:精製 例2のようにして得られた上清液を、pH3〜5の酸性に
して、0.1M酢酸で平衡にしておいたスチレンおよび
ジビニルベンゼンのコポリマーからなる有孔性吸着樹脂
(R)DIAION HP20)を含む吸着カラムに
て処理する。トリス−HCl(pH8.5)および50mM
酢酸にて洗浄した後に、30%強度のイソプロパノール
にて溶出を行う。ヒルディン誘導体を含む画分を集め
て、20mMピペラジン−HCl(pH6)で平衡にしてお
いたQ−SEPH−AROSE(R)カラムにて精製す
る。この場合の溶出は、0〜0.25M NaCl濃度
勾配にて行う。ヒルディン誘導体を含む画分を再び集め
て、C18逆相クロマトグラフィーカラム上のHPLC
によって精製する。このようにして得られる精製産物
を、次いで自動タンパク質配列分析機にかける。
例4:比較例 例1の同様の操作を行う。ただし、DNA配列III(表
1)の代わりに次式の配列を用いる。その結果、酵母培
養液の上清液には微少のヒルディン活性しか検出されな
い。
DNA配列IIIbを用いる場合には、クローニングベク
ター7および8(表2)に対応するベクターはAccI
切断部位を含まない。
【図面の簡単な説明】 第1図は、酵母MFα前駆体タンパク質および本発明に
よるヒルディン誘導体をコードする遺伝子構造物を構築
するために有用なクローニングベクターを示す、説明図
である。 第2図はこの遺伝子構造物を含む酵母発現ベクターを示
す、説明図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 (C12P 21/02 C12R 1:865) C07K 99:00 (56)参考文献 特開 昭61−47198(JP,A) 特開 昭62−22799(JP,A)

Claims (4)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】下記のアミノ酸配列を有するヒルディン誘
    導体。
  2. 【請求項2】請求項1に記載のアミノ酸配列を有するポ
    リペプチドをコードするDNA。
  3. 【請求項3】請求項2に記載のDNA配列を含むベクタ
    ー。
  4. 【請求項4】請求項2に記載のDNAを酵母細胞におい
    て発現させることからなる、請求項1に記載のポリペプ
    チドの製造法。
JP1044980A 1988-02-23 1989-02-23 ヒルディン誘導体 Expired - Lifetime JPH0649719B2 (ja)

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CA (1) CA1339104C (ja)
HU (2) HU210439B (ja)
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NO (2) NO176915C (ja)
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