JPH0649719B2 - ヒルディン誘導体 - Google Patents
ヒルディン誘導体Info
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- JPH0649719B2 JPH0649719B2 JP1044980A JP4498089A JPH0649719B2 JP H0649719 B2 JPH0649719 B2 JP H0649719B2 JP 1044980 A JP1044980 A JP 1044980A JP 4498089 A JP4498089 A JP 4498089A JP H0649719 B2 JPH0649719 B2 JP H0649719B2
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- C07K—PEPTIDES
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- C07K14/815—Protease inhibitors from leeches, e.g. hirudin, eglin
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- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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Description
関しては、欧州特許出願(EP−A)第0,171,024号明
細書に開示されている。
多くの利点を有することが明らかになっている。
をこの配列でも用いた。ヒルディンとその誘導体は、生
物活性が異なっている。これはトロンビンに対する親和
性の相違および/または安定性の相違によると考えられ
る。本発明によるヒルディン誘導体は、驚いたことに、
特異的な活性によって特徴づけられる。
に有利に発現されることも明らかにされた。比較実験に
よって、N−末端Thr-Tyrまたはlle-Tyrで始まる類似ヒ
ルディン誘導体は、低収量でしか発現されないことが示
された。
からだけでなく、とくに、それが実質的に量的に正しく
折り畳まれたかたちで高活性を有するので、有利であ
る。
よるヒルディン誘導体をコードする遺伝子構造物を構築
するために有用なクローニングベクターを示す。第2図
は、この遺伝子構造物を含む酵母発現ベクターを示す。
法、例えば、細菌または昆虫細胞あるいは動物細胞など
の高等真核細胞における発現などによっても製造され
る。しかしながら、酵母系(system)による発現、例え
ばEP−A第0,248,227号明細書に列記された酵母種、
例えばピチア・パストリス(Pichia pastoris)、ハン
セヌラ・ポリモルフィス(Hansenula polymorphis)、
スキゾサッカロミセス・ボンベ(Schizosaccharomyces
pombe)または好ましくはサッカロミセス・セレビシエ
(Saccharomyces cerevisiae)などを用いる発現は、好
ましい。
明細書第0,060,057号、第0,008,632号、第0,116,201
号、第0,121,884号、第0,123,544号および第0,195,691
号に記載のものなど、多数が知られている。本発明によ
るヒルディン誘導体の製造法は、以下に酵母α因子系を
用いて記述されるが、これが単なる例示であることは、
既知の方法によって他の発現系を用いることも可能であ
ることから自明である。
およびHerskovitz(Cell 30、933-943、1982)の記述で公
知であるが、ここでは他の遺伝子の発現と遺伝子産生物
の分泌の可能性についても検討されている。この点に関
しては、Brakeら(Proc.Natl.Acad.Sci.81、4642-4646、1
984)の記述も参照されたい。
び酵母プラスミドの複製開始点と両宿主系における選択
のための遺伝子とを有する、いわゆるシャトルベクター
である。さらに、このタイプのベクターは、外来性遺伝
子の発現に必要なプロモーター配列と、必要であれば収
量を上げるためのターミネーター配列を含み、ここには
(適宜分泌シグナルに融合した)異種構造(heterologo
us)の遺伝子がプロモーターとターミネータの間に位置
している。
ある。パーセント表示は、重量パーセントである。
する。このDNA配列は、MFα前駆体タンパク質のア
ミノ酸49〜80をコードし、実質的には天然の(natu
ral)DNA配列に相当する。
離のためのプローブとして用いられ、この目的のため
に、32Pで標識する。このプローブを用いて遺伝子をゲ
ノムλgt11酵母遺伝子バンク[例えば、Clontech L
aboratories Inc.(4055 Fabian Way、Palo Alto、CA9430
3)から現在市販されているもの]から単離する。この
目的のために、α因子遺伝子を有するλgt11ファー
ジをプラークハイブリダイゼーション実験において同定
する。陽性と同定されたプラークからのファージを単離
して増殖させて、DNAを得る。後者をEcoRIにて
切断して0.8%アガロースゲル上で分析する。サザン
トランスファー実験の後、膜を32P−標識DNA配列I
とハイブリダイズさせる。DNA配列Iとハイブリダイ
ズする約1.75kbのフラグメントを有するファージD
NAを、再び酵素で切断して、対応するフラグメントを
単離する。ベクターpUC19をEcoRIで開裂し
て、T4リガーゼを用いて1.75kbフラグメントと反
応させる。クローニングベクター1が得られる。
ラスミドを基礎に構築されたものである。この表はこれ
らベクターのポリリンカー領域のみを通常の5′−3′
の方向で示したものである。ここで、MFα配列を点線
で、ヒルディン配列を破線で示した。実線は、pCUお
よびリンカー配列を表す。第1図は、これらクローニン
グベクターを模式的に図示したものである(比例尺で示
したものではない)。
合液にて形質転換させる。白色のコロニーを単離して、
プラスミドDNAをこれらから得て、1.75kbのEc
oRIフラグメントを含むプラスミドを同定する。MF
αの前駆体タンパク質の天然のDNA配列は、アミノ酸
8〜10をコードする領域にPstI切断部位を、アミ
ノ酸48/49をコードする領域にTaqI切断部位
を、各々含む。MFα前駆体配列のアミノ酸9〜48を
コードするフラグメントは、単離されたプラスミドDN
AからPstIおよびTaqIの反応によってここで単
離される。ベクターpCU18をPstIおよびKpn
Iによって開裂させ、T4リガーゼを用いてPstI−
TaqIフラグメントおよび合成DNA配列Iと反応さ
せる。大腸菌79/02をライゲーション反応混合液で
形質転換させる。形質転換反応混合物をIPTG−Xg
al−Apプレートにプレーティングする。白色コロニ
ーを単離して、これらクローンのプラスミドDNAを制
限酵素分析によって特徴づけする。このようにして、M
Fα前駆体配列のアミノ酸8〜80をコードするクロー
ニングベクター2を得る。
ングベクター2から該コード配列を切り出して、下記の
ライゲーション反応に導入する。この目的のために、ク
ローニングベクター1をEcoRIおよび部分的にPs
tIと反応させて、MFα前駆体配列の最初の8個のア
ミノ酸をコードする配列からなるフラグメントを単離す
る。さらに、ベクターpUC19をEcoRIおよびK
pnIにて開裂させて、前述した二つのフラグメントと
連結させて、クローニングベクター3を得る。後者は、
アミノ酸80までの完全なMFα前駆体配列物をコード
する。
り、これはEP−A第0,171,024号明細書に「DNA配
列I」として開示され、本発明においてはDNA配列IV
として表1に示されている。この配列の制限酵素切断部
位はアンダーラインで強調して示されている。AccI
はアミノ酸1〜3の領域を切断し、BamHIはアミノ
酸30/31の領域を切断し、SacIは最後の終止コ
ードンの最初を切断する。XbaIの突出配列は遺伝子
の5′末端に位置し、SalIの突出配列は3′末端に
位置している。この合成遺伝子を二つの部分にサブクロ
ーニングさせた(EP−A第0,171,024号明細書の第1
および第2図。)これらサブクローニングベクターは2
表のNo.4(EP−A第0,171,024号明細書第2図に対
応)およびNo.6(EP−A第0,171,024号明細書第1図
に対応)に示されている。
Iで開裂させて、線状になったDNAをDNA配列II
(表1)に連結させる。このようにして得たクローニン
グベクター5において平滑末端連結(blunt-ended liga
tion)をした部位にNcoI切断部位が形成される。
amHIおよびAccIを用いる全消化によってクロー
ニングベクター6から切り出す。次いで、このフラグメ
ントを、BamHIおよびKpnIで開裂しておいたク
ローニングベクター3とDNA配列III(表1)とに連
結させる。
V(表1)と同様に番号を付す。この結果、MFα前駆
体配列の最初の80個のアミノ酸および本発明によるヒ
ルディン誘導体の最初の30個のアミノ酸をコードする
クローニングベクター7が形成される。これをDNA配
列分析によって確認する。
ントをBamHIおよびHindIIIによってクローニ
ングベクター5から切り出す。このフラグメントを同じ
酵素で開裂させておいたクローニングベクター7に連結
させる。その結果、MFα前駆体配列の最初の80個の
アミノ酸および本発明によるヒルディン誘導体の完全な
配列をコードするクローニングベクター8が得られる。
このプラスミドの構造を制限酵素分析にて確認する。
9)をBamHIで開裂して、突出末端をクレノウポリ
メラーゼで埋填する。DNAをエタノールで沈澱させ
て、牛アルカリホスファターゼで処理する。
フラグメントをNcoIおよびEcoRIでクローニン
グベクター8(表2)から切り出して、突出末端を上記
のようにして埋填する。
pαfHir17およびpαfHir18を構築する
(第2図)。これら二つのプラスミドは、挿入フラグメ
ントの位置方向が異なるのみである。
に、挿入配列の下流にターミネーターを挿入することが
可能である(EP−A第0,171,024号明細書第4〜6
図)。この目的には、NcoIおよび/またはBamH
I切断部位が適している。
に、プラスミドpαfHir17にてロイシン要求性
(leucine-dependent)酵母Y79株(α、trp1−
1、leu2−1)(Cantrellら:Proc.Acad.Nat.Sci.
USA 82、6250,1985)およびDM−6−6株(α/αle
u2−3、112::ura3+/leu2::lys
2+、trp1−/trp1−、his3−11、15
/his3−11、15、ura3−/ura3−、l
ys2−/lys2−、arg4−17/arg4+、
ade1−/ade1+)(Maya Hanna,Dept.Mol.Bio
l.Massachusetts General Hospital、Boston、USA)をIto
らのリチウム法(Ito,H.ら:J.Bacteriol.153、163、198
3)によって形質転換させる。ロイシン無添加の選択培
地上で増殖することができる単一コロニーを単離する。
酵母ミニマル培地に各々のコロニーを接種して、28℃
で24時間培養する。細胞を遠心分離して、上清液をト
ロンビン阻害分析してヒルディン活性を調べる。上清液
がヒルディン活性を示した酵母クローンからのプラスミ
ドDNAを再び単離して、制限酵素分析にて特徴づけを
する。形質転換させた酵母株を次の発現試験に用いる。
らの新鮮な一晩培養液から採取した細胞を接種して、吸
光度OD600=0・1になるようにする。培養液を振と
うしながら28℃で8時間培養し、その後、90mlの新
鮮培地を加える。さらに振とうしながら20時間培養を
続ける。細胞を遠心分離して、上清液中のヒルディン活
性を測定する。
して、0.1M酢酸で平衡にしておいたスチレンおよび
ジビニルベンゼンのコポリマーからなる有孔性吸着樹脂
((R)DIAION HP20)を含む吸着カラムに
て処理する。トリス−HCl(pH8.5)および50mM
酢酸にて洗浄した後に、30%強度のイソプロパノール
にて溶出を行う。ヒルディン誘導体を含む画分を集め
て、20mMピペラジン−HCl(pH6)で平衡にしてお
いたQ−SEPH−AROSE(R)カラムにて精製す
る。この場合の溶出は、0〜0.25M NaCl濃度
勾配にて行う。ヒルディン誘導体を含む画分を再び集め
て、C18逆相クロマトグラフィーカラム上のHPLC
によって精製する。このようにして得られる精製産物
を、次いで自動タンパク質配列分析機にかける。
1)の代わりに次式の配列を用いる。その結果、酵母培
養液の上清液には微少のヒルディン活性しか検出されな
い。
ター7および8(表2)に対応するベクターはAccI
切断部位を含まない。
よるヒルディン誘導体をコードする遺伝子構造物を構築
するために有用なクローニングベクターを示す、説明図
である。 第2図はこの遺伝子構造物を含む酵母発現ベクターを示
す、説明図である。
Claims (4)
- 【請求項1】下記のアミノ酸配列を有するヒルディン誘
導体。 - 【請求項2】請求項1に記載のアミノ酸配列を有するポ
リペプチドをコードするDNA。 - 【請求項3】請求項2に記載のDNA配列を含むベクタ
ー。 - 【請求項4】請求項2に記載のDNAを酵母細胞におい
て発現させることからなる、請求項1に記載のポリペプ
チドの製造法。
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