JPH0662870A

JPH0662870A - 大豆ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子のプロモーター領域及び５’非翻訳領域

Info

Publication number: JPH0662870A
Application number: JP4219481A
Authority: JP
Inventors: Daisuke Shibata; 大輔柴田; Tomohiko Kato; 友彦加藤; Emiko Ito; 恵美子伊藤
Original assignee: MITSUI GIYOUSAI SHOKUBUTSU BIO KENKYUSHO KK
Current assignee: MITSUI GIYOUSAI SHOKUBUTSU BIO KENKYUSHO KK
Priority date: 1992-08-18
Filing date: 1992-08-18
Publication date: 1994-03-08

Abstract

(57)【要約】【目的】植物遺伝子の発現を増強することが可能なＤ
ＮＡ配列を提供する。【構成】大豆ホスホエノールピルビン酸カルボキシラ
ーゼ遺伝子のプロモーター領域に、タンパクをコードす
る配列を連結する。あるいは、植物で発現可能なプロモ
ーターと、前記遺伝子の５’非翻訳領域の全部又は一部
と、タンパクをコードする構造遺伝子を連結する。これ
らの配列を植物細胞に導入することにより、前記タンパ
クをコードする配列の発現を増強させる。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】

【産業上の利用分野】本発明は、大豆ホスホエノールピ
ルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子のプロモーター領域及
び５’非翻訳領域に関し、詳しくは、植物遺伝子の発現
を増強することが可能なＤＮＡ配列を提供するものであ
る。

【０００２】

【従来の技術】植物で遺伝子を発現させる際に、プロモ
ーターに目的の遺伝子を接続させるだけでなく、さら
に、第一イントロンをこれらの間に挿入すると、発現が
強化される例が報告されている。

【０００３】例えば、トウモロコシのアルコールデヒド
ロゲナーゼ遺伝子（D. Mascarenhasら、Plant Mol. Bio
l. 15, 913-920, 1990）や、ヒマのカタラーゼ遺伝子
（A. Tanakaら、Nucleic Acids Res. 18, 6767-6770, 1
990）の場合には、第一イントロンは、タンパク質をコ
ードする領域に存在する。このイントロンの下流に他の
遺伝子を連結すると、これらの遺伝子の発現量が増加す
る。

【０００４】また、トウモロコシのSh1遺伝子の場合
（C. Maasら、Plant Mol. Biol. 16, 199-207, 1991）
には、５’非翻訳領域にある第一イントロンが用いられ
ている。このように、５’非翻訳領域に第一イントロン
が存在する場合には、その下流に容易に目的の遺伝子を
接続することができる。

【０００５】しかし、単子葉植物遺伝子の５’非翻訳領
域の第一イントロンを用いた例は報告されているが、双
子葉植物遺伝子の５’非翻訳領域にある第一イントロン
での遺伝子発現の強化に関しては報告されていない。

【０００６】ところで、植物のホスホエノールピルビン
酸カルボキシラーゼ（以下、ＰＥＰＣと略す）遺伝子に
ついて、現在までに種々の研究がなされている。ＰＥＰ
Ｃ遺伝子のｃＤＮＡとしては、トウモロコシ（Izuiら、
Nucleic Acids Res. 14, 1615-1628, 1986）、ソルガム
（Thomasら、Plant Sci. Lett. 69, 65-78, 1990）、タ
バコ（Koizumiら、Plant Mol. Biol. 17, 535-539, 199
1）、アイスプラント（Rickersら、Mol. Gen. Genet. 2
15, 447-454, 1989）から単離が報告されている。一
方、ゲノム遺伝子は、トウモロコシ（ Yanagisawaら、
J.Biochem. 106,982-987, 1989、Matsuokaら、Eur. J.
Biochem. 181, 593-598, 1989、Hudspethら、Plant Mo
l. Biol. 12, 579-589, 1989）、ソルガム（Cretinら、
Gene 99,87-94, 1991）から単離されているが、大豆で
はゲノム遺伝子の単離は報告されていない。尚、トウモ
ロコシ、ソルガムのゲノム遺伝子の場合には５’非翻訳
領域にイントロンが存在するという報告はなされていな
い。

【０００７】

【発明が解決しようとする課題】本発明は、上記観点か
らなされたものであり、植物の登熟種子で発現している
遺伝子のプロモーター領域、特に、ＰＥＰＣ遺伝子の発
現を制御する領域の単離、および、植物のプロモーター
活性を増強させる因子の単離を課題とする。

【０００８】

【課題を解決するための手段】本発明者は、上記課題を
解決するために鋭意研究を行った結果、大豆登熟種子で
発現しているプロモーター領域、特にＰＥＰＣ遺伝子の
発現を制御している領域、及び植物プロモーター活性を
増加させる因子の単離に成功し、さらに、この遺伝子の
５’非翻訳領域にはイントロン配列が存在していること
を見出し、本発明に至った。

【０００９】すなわち本発明は、配列番号１に示す塩基
配列を有するホスホエノールピルビン酸カルボキシラー
ゼ遺伝子のプロモーター領域及び／又は５’非翻訳領域
の全部又は一部である。また、本発明は、植物で発現可
能なプロモーターと、前記５’非翻訳領域の全部又は一
部と、タンパクをコードする構造遺伝子を連結して得ら
れる配列を植物細胞に導入することにより、前記構造遺
伝子の発現を増強させる方法、さらに、植物で発現可能
なプロモーターと、前記５’非翻訳領域の全部又は一部
と、タンパクをコードする構造遺伝子とを連結して得ら
れる配列を導入した植物細胞を提供する。

【００１０】以下本発明を、詳細に説明する。＜１＞ＰＥＰＣ遺伝子の単離精製したＰＥＰＣから決定したアミノ酸配列をもとに作
製したプローブあるいは、ｃＤＮＡをプローブに用い、
プラークハイブリダイゼーション等を行うことにより、
染色体ＤＮＡライブラリーからＰＥＰＣ遺伝子を得るこ
とができる。

【００１１】ＰＥＰＣｃＤＮＡは、同様にＰＥＰＣのア
ミノ酸配列をもとに作製したプローブを用いて、ｃＤＮ
Ａライブラリーから取得することができる。また、発現
ベクターを用いてｃＤＮＡライブラリーを作製し、ＰＥ
ＰＣに対する抗体を用いてスクリーニングすることがで
きる。

【００１２】クローン化されたＰＥＰＣ遺伝子の塩基配
列の決定は、Maxam-Gilbert法あるいは、ダイデオキシ
法により行う。ダイデオキシ法による塩基配列の決定
は、市販されているキットを用いて行うことができ、配
列決定を自動的に行うオートシークエンサーを使用して
もよい。

【００１３】このようにして得られた大豆ＰＥＰＣ遺伝
子クローンを解析した結果、１つのクローン（λＰＥＰ
Ｇ１６と命名）には、ＰＥＰＣ遺伝子の上流領域が含ま
れていることが明かとなった。この塩基配列を決定した
結果、ＰＥＰＣ遺伝子の５’非翻訳領域とその上流のプ
ロモーター領域を見出すことができた。また、５’非翻
訳領域にはイントロン配列が存在していることが明かと
なった。

【００１４】＜２＞遺伝子の発現を増強する方法ＰＥＰＣ遺伝子は、大豆の各種の組織で発現してるた
め、ＰＥＰＣ遺伝子の発現制御領域に他の有用な遺伝子
を接続させれば、その遺伝子を大豆や他の植物で効率よ
く発現させることができる。また、この発現制御領域の
非翻訳領域にはイントロン配列が存在し、この配列を利
用すれば、既知の植物プロモーターの活性を増強させる
ことができる。実施例に示したように、このイントロン
を植物で発現するカリフラワーモザイクウイルスの３５
Ｓプロモーターと接続させて、タバコ及びイネの培養細
胞で発現させたところ、このイントロンの挿入によって
プロモーター活性を増強させることに成功した。

【００１５】ＰＥＰＣ遺伝子の発現制御領域は、本来、
大豆のＰＥＰＣ遺伝子を制御するものであり、この遺伝
子は、大豆種子でのタンパクの生産増大に関わってい
る。そこで、この領域を用い、ＰＥＰＣ遺伝子発現の組
織特異性、時期特異性等を利用すれば、タンパク質含量
の高い大豆その他の植物を生産することができ、一方遺
伝子の発現を抑制すれば大豆その他の植物での脂肪の生
産増大が図られ、本発明を利用すれば、所望する性質を
有する大豆その他の各種の植物の育種が極めて効率的に
行なわれる。

【００１６】本発明により、目的の遺伝子の発現を増強
するには、植物で発現可能なプロモーター、ＰＥＰＣ遺
伝子の５’非翻訳領域の全部又は一部、及び目的の遺伝
子、すなわちタンパクをコードする構造遺伝子を連結す
る。これらのうち、プロモーターとしては、ＰＥＰＣ遺
伝子のプロモーターも含まれる。したがって、ＰＥＰＣ
遺伝子の５’非翻訳領域の全部又は一部を利用する態様
としては、以下のものがある。

【００１７】(1)ＰＥＰＣ遺伝子のプロモーター領域及
び５’非翻訳領域の下流に目的の遺伝子を連結する。 (2)植物で発現可能な他のプロモーターと、ＰＥＰＣ遺
伝子の５’非翻訳領域の全部又は一部と、目的の遺伝子
とを連結する。 (3)プロモーターを含む他の遺伝子の、プロモーターと
コード領域との間に、ＰＥＰＣ遺伝子の５’非翻訳領域
の全部又は一部を挿入する。

【００１８】ここで、５’非翻訳領域の全部又は一部と
は、第一イントロン（配列番号１中、塩基番号９５３〜
１２３５）と、その両側の近接部位とを少なくとも含む
ことを意味する。

【００１９】本発明のプロモーター領域及び／又は５’
非翻訳領域に他の遺伝子を連結したものを含むＤＮＡ
を、植物細胞に導入するには、プロトプラストへのエレ
クトロポレーション（電気的穿孔法）、あるいはアグロ
バクテリウムのＴｉプラスミドを利用する方法が挙げら
れる。

【００２０】以下に、イネにおける、プロトプラストの
調製、エレクトロポレーションによるプロトプラストへ
のＤＮＡの導入、及び形質転換細胞の植物体への再生法
の一例を説明する。

【００２１】イネのプロトプラストの調製は、例えば以
下のようにして行う。イネの種子未成熟胚から形成させ
たカルスを、Ｒ２無機塩（Ohira, K. et al.Plant Cell
Physiol. 14, 1113 (1973)）、Ｂ５ビタミン（Gambor
g, O. et al.Expt. Cell Res. 50, 151 (1968)）、０．
３％カゼイン水解物、１ｐｐｍの２，４−Ｄ、及び３％
スクロースを含む液体培地に移し、２５℃、５００ルク
スの蛍光灯光の照射下で、６０rpmに設定したロータリ
ーシェーカーで培養する。

【００２２】一週毎に、新鮮な上記培地でサブカルチャ
ーを行い、サブカルチャー５日目の細胞１ｇを、１％マ
セロザイム（Macerozyme）Ｒ１０、４％セルラーゼＲＳ
（以上、（株）近畿ヤクルト製）、０．５％ CaCl₂・2H₂
O、０．５％デキストラン硫酸カリウム、０．４Ｍマ
ンニトールを含む１０ｍｌの酵素溶液と混合する。

【００２３】この溶液のｐＨを５．５に調整し、２７℃
で３時間振盪（４０rpm）し、続いて３時間静置する。
酵素処理により生じたプロトプラスト懸濁液を、４０μ
ｍのナイロンスクリーンを通して破砕物を除く。

【００２４】このようにして得られるプロトプラスト
へ、エレクトロポレーションによりＤＮＡを導入する方
法（Tada, Y. et al. Theor. Appl. Genet. 80, 475 (1
990)）を説明する。

【００２５】プロトプラストを、エレクトロポレーショ
ン緩衝液（70mM KCl、5mM CaCl₂、5mM 2-[モルフォリノ]エタンスル
ホン酸(MES)、0.4M マンニトール）に、２×１０⁶個／ｍ
ｌとなるように懸濁し、０〜２０μｇのＤＮＡを加え
る。ＤＮＡとしては、導入するＤＮＡ（澱粉合成酵素遺
伝子を含むＤＮＡ）の他にハイグロマイシン耐性遺伝子
を発現するプラスミドを加える。ハイグロマイシン耐性
遺伝子を発現するプラスミドが導入されたプロトプラス
トには、導入しようとするＤＮＡも同時にco-transform
ationされる確率が高いので、ハイグロマイシンを用い
た選択により、効率よく形質転換細胞を選択することが
できる。

【００２６】プロトプラストとＤＮＡの混合液を０℃で
２０分間放置した後、氷冷したエレクトロポレーション
・チャンバに移し、電気パルスを与える。電気パルス
は、例えば、初期電界４７５Ｖ／ｃｍ、時間減衰係数Ｔ
_1/2が３０．０ミリ秒となるように与える。エレクトロ
ポレーションには、装置が市販されているのでこれを使
用すればよい。電気パルスは、例えば、初期電界４７５
Ｖ／ｃｍ、時間減衰係数Ｔ_1/2が３０．０ミリ秒となる
ように与える。

【００２７】次に、上記のようにして得られた形質転換
細胞の植物体への再生法（Fujimura, T. et al. Plant
Tissue Culture Lett. 2, 74(1985)）を説明する。エレ
クトロポレーションを行ったプロトプラストを、遠心分
離（５０×ｇ、５分）により、Ｒ２無機塩、０．４Ｍグ
ルコースを含む洗滌培地で４回洗滌した後、２ｐｐｍの
２，４−Ｄ、０．５ｐｐｍベンジルアデニン、３％スク
ロースを添加したＮ６培地（Chu, C.-C. Proceedings o
f Symposium on Plant Tissue Culture (Scientific Pr
ess, Peking) p.43 (1978)）に懸濁し、細胞数を１０⁶
個／ｍｌに調整して２５℃、暗下で培養する。

【００２８】培養１４日目に、培地にハイグロマイシン
を５０μｇ／ｍｌ添加し、さらに２週間培養し、コロニ
ーを同濃度のハイグロマシンを含む新鮮な培地に移す。
コロニーが直径２ｍｍまで生育したら、ハイグロマイシ
ンを含まないＮ６ホルモンフリー培地に移し、蛍光灯照
射下（３０００ルクス）で培養して分化させる。試験管
内で高さが約１０ｃｍに生長した苗を、順化させた後に
温室内のポットに移し、植物体まで再生させる。

【００２９】ＰＥＰＣ遺伝子が含まれているクローンの
選択は、カルスあるいは植物体の細胞を採り、サザンハ
イブリダイゼーション等の方法で確認することにより行
えばよい。また、再生後に、植物体の葉の抽出液等のタ
ンパク中の目的のタンパク量をウエスタン解析等により
調べる一方、ＰＥＰＣの発現制御領域あるいは目的の遺
伝子が導入されていることをサザン解析等により確認す
ることが好ましい。

【００３０】

【実施例】以下に、本発明の実施例を説明する。＜１＞ＰＥＰＣｃＤＮＡの取得（１）大豆ＰＥＰＣの精製大豆種子（５００ｇ）を粉砕して、２ｌの0.1Mリン酸緩
衝液（pH6.8、25mM塩化マグネシウムを含む）を加えて
よく混合し、その上清を遠心分離によって回収した。こ
の上清から３０〜５０％の硫安沈澱画分を得た。この硫
安沈澱を0.1Mトリス緩衝液（pH7.5、３０％硫安を含
む）に溶解したのち、同じ緩衝液を用いてブチルトヨパ
ールカラム（５×５０ｃｍ）に供して、ＰＥＰＣ活性を
溶出した。

【００３１】この溶出画分を透析した後、ＤＥＡＥトヨ
パールカラム（５×５０ｃｍ）に供した。このカラムよ
りＰＥＰＣ活性を塩化ナトリウムの濃度勾配により溶出
した。この溶出画分を硫安沈澱させた後、セファロース
ＣＬ６Ｂカラム（２×９０ｃｍ）を用いてゲル濾過を行
った。この画分をハイドロキシアパタイトカラム（１×
２０ｃｍ）に供し、5〜100mMのリン酸緩衝液（pH6.8）
にて溶出して均一に精製されたＰＥＰＣを得た。

【００３２】こうして得られたＰＥＰＣに対する抗血清
を、ウサギを用いて作製した。

【００３３】（２）大豆登熟期種子からのポリ（Ａ）Ｒ
ＮＡの調製登熟期の大豆種子（５０ｇ）を液体窒素の存在下で乳鉢
を用いて、粉末状になるまで破砕し、２００ｍｌの抽出
緩衝液（２０ｍＭのバナジルコンプレックス、２％ＳＤ
Ｓ、トリス塩酸、pH8.0）を加え、５００×ｇで遠心し
てその上清を回収した。

【００３４】この上清をフェノール抽出することにより
タンパクを変性させ、エタノール沈澱により核酸を回収
した後、さらにフェノール抽出をさらに５回繰り返し
た。得られた上清からＲＮＡをエタノール沈澱、塩化リ
チウム沈澱により回収し、蒸留水に溶解した。このＲＮ
Ａ画分から、オリゴｄＴスピンカラム（ファルマシア社
製）を用い、このカラムの使用説明書に従ってポリ
（Ａ）ＲＮＡ 100μｇを得た。

【００３５】（３）ｃＤＮＡライブラリーの作製上記で得られたポリ（Ａ）ＲＮＡ 5μｇ用い、ｃＤＮＡ
合成キット（ファルマシア社製）を用い、このキットの
説明書に従って、末端にEcoRIアダプターを有するｃＤ
ＮＡを得た。

【００３６】これを、lacプロモーターを有する発現ベ
クターλgt11のEcoRI部位に挿入し、パッケージングキ
ット（ストラタジーン社製）を用いて、インビトロ・パ
ッケージングを行い、大腸菌Y1088株に感染させ、約１
００万クローンのｃＤＮＡライブラリーを得た。

【００３７】（４）ｃＤＮＡのスクリーニング以上のようにして得られたｃＤＮＡライブラリーに含ま
れるファージのプラークを軟寒天培地に懸濁し、シャー
レ中の寒天培地上に重層した。３時間、３７℃で培養
後、１０ｍＭのIPTG溶液をしみこませてから乾燥してお
いたニトロセルロースフィルターをこの寒天培地上にか
ぶせ、さらに３時間、３７℃で培養を行った。その後、
これらのフィルターを注意深く寒天培地から剥し、１％
のＢＳＡ溶液に１６時間浸した。ＰＥＰＣに対するウサ
ギ抗血清（0.1ｍｌ）を１００ｍｌのＢＳＡ溶液に加え
て混合したのち、この溶液に先のフィルターを浸して、
緩く揺すりながら室温で１時間抗体と反応させた。

【００３８】上記フィルターを、アルカリフォスファタ
ーゼ結合２次抗体を用いたエンザイムイムノブロッティ
ング法キット（プロメガ社、ピコブルー）を用いて、Ｐ
ＥＰＣを発現しているクローンのスクリーニングを行っ
た。フィルター上のポジティブスポットの位置に対応す
るプラーク中のファージを回収した。さらに２次スクリ
ーニング、３次スクリーニングを行うことによりクロー
ンを純化し、最終的に６種のファージクローンを得た。

【００３９】（５）塩基配列の決定このようにして得られた６種のファージからGrossberge
rの方法（Nuc. AcidsRes. 15, 6737, 1987）に従って、
λＤＮＡをそれぞれ調製した。このλＤＮＡのEcoRIイ
ンサートを、プラスミドベクターpKS+（ストラタジーン
社）のEcoRI部位に挿入し、これを用いて大腸菌（XL1-B
lue株）を形質転換した。

【００４０】得られたコロニーからプラスミドを調製し
て、各種の制限酵素で消化して、それぞれの制限酵素地
図を作製した。これらを比較して、ＰＥＰＣｃＤＮＡ
全長を含むと考えられる２種のｃＤＮＡを見いだし、そ
れぞれ、ＳＰＣ１、ＳＰＣ１６と名付けた。これらは類
似した制限酵素地図を示すが、いくつかの点で異なって
おり、異なるＰＥＰＣ遺伝子から由来していることが判
明した。これらのクローンの塩基配列は、プロメガ社の
イレース・ア・ベース・キットを用いてデリーションク
ローンを作製した後、ダイデオキシ法により決定した。
ＳＰＣ１６の配列を配列番号２に示す。

【００４１】＜２＞ＤＮＡプローブの作成大豆ゲノムライブラリーから、ＰＥＰＣ遺伝子を検索す
るためのプローブとして、上記ｃＤＮＡＳＰＣ１６の
５’領域を使用した。５’領域を得るために、ＳＰＣ１
６のインサートの３’末端側の配列を欠失させたデリー
ションクローンを作製し、ＳＰＣ１６の１〜２３４番目
の塩基配列を含むクローンＳＰＣ１６Δ７をＰＣＲ法で
増幅させた。

【００４２】ＰＣＲ法は、Liangらの方法（Liangら、 Nu
cleic Acids Res. 16, 3579, 1988）で行い、配列番号
３（Ｍ４プライマー）、４（ＲＶプライマー）に示す配
列を有する合成オリゴヌクレオチドをプライマーとして
使用した。

【００４３】ＰＣＲ法で増幅させたＤＮＡ断片は、ＲＩ
標識キット（ベーリンガー・マンハイム社）と³²Ｐ−ｄ
ＣＴＰを用いて、キット添付のプロトコールに従って
５’末端を³²Ｐ標識した。このようにして³²Ｐ標識した
ものをＰＥＰＣ検索用のプローブとした。

【００４４】＜３＞ＰＥＰＣゲノム遺伝子の検索 λファージ・ベクターλＥＭＢＬ３を用いて作製された
大豆ゲノムＤＮＡライブラリー（クロンテック社製、製
品コード番号FL1060d）を、上記プローブを用いて、プ
ラークハイブリダイゼーションにより検索した。検索方
法は文献（Maniatisら、Molecular Clonig : A Laborat
ory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Sp
ring Harbor, NY, 1982）に示される方法で行った。

【００４５】ファージのプラークを、ニトロセルロース
膜（Schleicher & Schuell社製）に移し取り、アルカリ
変性後、加熱することによりファージＤＮＡを膜に固定
した。

【００４６】ハイブリダイゼーションは、４２℃で行っ
た。膜の洗滌は、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳを用
い、６５℃で行った。膜を洗滌、乾燥後、Ｘ線フィルム
に露出させ、オートラジオグラムを撮り、フィルム上の
ポジティブシグナルの位置から、プローブがハイブリダ
イズしたプラークを同定した。

【００４７】約５０万個の組換体から複数のλファージ
・クローンを得たが、その一つをλＰＥＰＧ１６と命名
し、解析を行った。

【００４８】＜４＞塩基配列の決定 λＰＥＰＧ１６からλＤＮＡを、Grossbergerらの方法
（Grossbergerら、Nucleic Acids Res. 15, 6737, 198
7）に従って調製した。すなわち、λＰＥＰＧ１６をE.
coli Y1090株に感染させ、菌体が溶菌するまで培養し、
培養上清にＰＥＧを加えてファージ粒子を沈澱させた。
遠心によりファージを回収し、フェノール抽出によりフ
ァージＤＮＡを得た。

【００４９】このファージＤＮＡのサザン分析を行っ
た。ファージＤＮＡを、クローニング部位の両外側にあ
るSalIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行った後、
ナイロン膜に移し、上記プローブを、プラークハイブリ
ダイゼーションと同様の条件でハイブリダイズさせ、膜
を洗滌、乾燥後オートラジオグラフィーを撮った。

【００５０】その結果、4kbpのＤＮＡ断片が、プローブ
にハイブリダイズした。このＤＮＡ断片をアガロースゲ
ル電気泳動により、分離、回収を行った。回収したＤＮ
Ａ断片を、プラスミドベクターpKS-のSalI部位にサブク
ローニングした。このプラスミドをpPEPG16sと命名し
た。

【００５１】このプラスミドに含まれるＰＥＰＣ遺伝子
部分の塩基配列の決定は、エキソヌクレアーゼを用いた
デリーションキット（プロメガ社製）を使用し、長さの
異なる欠失部分を有する複数のクローン（デリーション
クローン）を作製してから行った。得られたデリーショ
ンクローンの塩基配列は塩基配列決定キット（宝酒造
（株））を用いて行った。その結果、ＰＥＰＣ遺伝子の
プロモーター領域（配列番号１中、塩基番号１〜８６
２）及び５’非翻訳領域（配列番号１中、８６３〜１２
６１）を含む塩基配列が明かとなった（配列番号１）。

【００５２】＜５＞第一イントロンを用いた植物プロモ
ーター活性の増強塩基配列解析の結果、単離した遺伝子の５’非翻訳領域
には第一イントロンが存在していることが明かになった
（塩基番号９５３〜１２３５）。そこで、以下に示すよ
うに、この部分を利用して植物プロモーター活性の増強
を行った。

【００５３】第一イントロン部分を利用するために、ゲ
ノムＤＮＡから第一イントロン部分を、ＰＣＲ法を用い
て増幅させた。プライマーには、この領域を挟む、配列
番号５（プライマー１）、６（プライマー２）に示す配
列を有する合成オリゴヌクレオチドを使用した。尚、プ
ライマー１の８〜２８番目の配列は、配列番号１の８６
２〜８８２番目に相当し、プライマー２の９〜２８番目
の配列は、１２３９〜１２５８番目の配列に相当し、各
々イントロンの外側に相当する部分に制限酵素XbaI認識
配列（TCTAGA）を有している。

【００５４】ＰＣＲ反応により増幅されたＤＮＡ断片
を、XbaIで消化したのち、レポーター遺伝子（カリフラ
ワーモザイクウイルスの３５Ｓプロモーターで制御され
るβ−グルクロニダーゼ遺伝子）を含むプラスミドpSLG
2（Katoら、Plant Mol. Biol.Rep. 9, 333-339, 1991）
のXbaI部位にサブクローニングした。このプラスミドを
pSLG/PEPI（図１）と命名した。

【００５５】このプラスミドを導入した植物細胞のレポ
ーター遺伝子の発現を、イントロンを含まないプラスミ
ドpSLG2と比較した。植物細胞としてはタバコ培養細胞
ＢＹ２（ブライトイエロー品種）およびイネ培養細胞
（ニホンバレ）を用い、上述した方法により、エレクト
ロポレーション法で遺伝子導入を行った。尚、ハイグロ
マイシン耐性遺伝子を有するプラスミドとして、１０μ
ｇのpＵＣ１９−ＨＰＴを用い、２０μｇのpSLG/PEPIpB
IRS3とともに、イネのプロトプラストに導入した。エレ
クトロポレーションは、タバコでは初期電圧７５０Ｖ／
ｃｍ、Ｔ_1/2が３０ミリ秒、イネでは初期電圧４７５Ｖ
／ｃｍ、Ｔ_1/2が３０ミリ秒である電気パルスを与える
ことにより行った。

【００５６】形質転換細胞の遺伝子発現は、β−グルク
ロニダーゼ活性の測定により行った。発現の測定は文献
（Katoら、Plant Mol. Biol. Rep. 9, 333-339）に従っ
て行った。その結果、第一イントロンを含まないプラス
ミドＤＮＡ（ｐＳＬＧ２）で形質転換した場合に比べ
て、第一イントロンを含むものでは、タバコ、イネ両細
胞共に約３倍の活性を示すことが判明した。

【００５７】

【表１】

【００５８】

【発明の効果】大豆の登熟種子で発現しているＰＥＰＣ
遺伝子は、タンパク質含量と脂肪含量の分配に関与して
おり、その発現量も多い。したがって、本発明によりＰ
ＥＰＣ遺伝子のプロモーター領域を含むＤＮＡが単離さ
れたことにより、大豆ばかりでなく各種の種子で強く発
現する植物ベクター用プロモーターとして利用すること
が期待できる。

【００５９】さらに、この遺伝子の５’非翻訳領域には
第一イントロンが存在していることが判明したので、こ
の第一イントロンを植物プロモーターと接続させること
により、双子葉植物および単子葉植物で目的の遺伝子を
強く発現させることができる。

【００６０】

【配列表】

【００６１】配列番号：1 配列の長さ：1261 配列の型：核酸鎖の数：二本鎖トポロジー：直鎖状配列の種類：Genomic DNA 起源生物名：グリシンマックス（Glycine max ）直接の起源ライブラリー名：大豆ゲノムＤＮＡライブラリークローン名：pPEPG16s 配列の特徴特徴を示す記号：promoter 存在位置： 1..862 特徴を決定した方法： P 特徴を示す記号：TATA signal 存在位置：817..824 特徴を決定した方法： S 特徴を示す記号：repeat region 存在位置： 10..40 特徴を決定した方法： P 特徴を示す記号：repeat region 存在位置： 393..720 特徴を決定した方法： P 特徴を示す記号：5'UTR 存在位置： 863..1261 特徴を決定した方法： P 特徴を示す記号：exon 存在位置： 863..952, 954..1261 特徴を決定した方法： S 特徴を示す記号：intron 存在位置： 953..1235 特徴を決定した方法： S 配列 GTCGACAGTC TCCACCATGG CTTGCCTCCA CCATGGCTTG CCGGGCCTCT GCTTCGAGGG 60 CCAACTGCTC CGTCTCGTAG GCTGCTGCAT TGAAGGCCTT GCTGTTGTTA TTCTTCTGGT 120 TGCCGGTGGC GGCTTCCACC TTGAACCAAC TGTTGTGGGG ATTCTTTGAG AGGGAACGAA 180 GGGTGCAAAG AGAGGAGGGG TTGGAGAAGT TGGTATTGAG CATAAATGAA TGTAATAAAT 240 GGAATGCATC CATTTTACTT GAAAGAATGT TGAGTTTGGT TTCAAAATAT TTGATTTTTA 300 ATTGTATGGC TGTACTTTGT TTGGAGATGG GAGAAGAAGT AGAGGGGAAG AGAGAAACAA 360 AGGATAAAAG GATAAAATCG GAAAATAACA CAAAAATATA AAAAAAGAAA TGAAAAAAAC 420 AAAAAATGAT AGTCATTAAT TTTAAAATAA GTTAATCTAA CTATTTAAAT GTTTATTTTG 480 TACCATTTCA GATTTTTTCA CTTTTGTACT GTAAAATCAG TCTAAAGTGA CGAGGATTCG 540 AAATGAAACA AGTTGGAGAA AATATAAAAA GCGAAATGCA GGAAAACAAA AAATGATAGC 600 CATTAATTTT AAAATAAGTT AATCTCACGA TTTAAATGTT TACTTTTGTA CCATTTCAAA 660 TTTTGTCACT TTAGTATCTT AAAATGGGTC TAAAGTGACG ATGGTCGGAA ATGAAAGAAG 720 GTTTTGTAGT AGGACTTTAC TTCTACTCTT TTTTCACAAC TTTCTCTCTC TTTATTTTTT 780 TCTTTAATTT ATTGGATACG TGTCTCCTTT TTTTCCTATA TAATGACACT CTCTGCAGTG 840 CTTTGGATCT GTGACTCTAG TACTTCTCTC TCTCTCTGTC ATTGGTTTTT CTCTGGTTGA 900 CATCATCGTC ATCTACTACT TCTTCCTCTT ATCCAATTGG CCCCCAACAC TGGTACTACA 960 TTAGATCCTT ATGATTGATC CATCATGGTT TTGTCATAAA AAAGTTACAA TTGTTTTCCC 1020 TTTAATTCTA TACATGCTGT GTTTATAGGC ACTTTGTTGT TTTGCCTTCT CTACTTTGTG 1080 TCTTCCAACC ATACAGTTTT CATTGTCAAT GTCTCCATTG TAGATGATGT TGTTTTGATT 1140 TTCCTATGTT CAAGTTTTGT TTTTCTTTTT TTGTTTTTTT ATGTGGGTTT TGGTTGTTTT 1200 CGGATCTTTT GGTGTGACCC TTTCGATGTT GGCAGGTTTT GGGGTACTTT GAAAAGTTGC 1260 A 1261

【００６２】配列番号：2 配列の長さ：3211 配列の型：核酸鎖の数：二本鎖トポロジー：直鎖状配列の種類：cDNA 起源生物名：グリシンマックス（Glycine max ）直接の起源ライブラリー名：大豆ゲノムｃＤＮＡライブラリークローン名：SPC16 配列の特徴特徴を示す記号: 3' UTR 存在位置: 3018..3211 特徴を決定した方法: P 配列 CTTCTCTCTC TCTCTGTCAT TGGTTTTTCT CTGGTTGACA TCATCGTCAT CTACTACTTC 60 TTCCTCTTAT CCAATTGGCC CCCAACACTG GTTTTGGGGT ACTTTGAAAA GTTGCA ATG 119 Met 1 GCG AAC AGG AAC TTG GAA AAG ATG GCA TCG ATT GAT GCT CAG CTT CGG 167 Ala Asn Arg Asn Leu Glu Lys Met Ala Ser Ile Asp Ala Gln Leu Arg 5 10 15 CTG TTG GTT CCG GCC AAA GTG AGT GAG GAT GAC AAA CTG GTT GAG TAT 215 Leu Leu Val Pro Ala Lys Val Ser Glu Asp Asp Lys Leu Val Glu Tyr 20 25 30 GAT GCT TTG CTT TTG GAT CGG TTC CTT GAT ATT CTT CAG GAT TTA CAT 263 Asp Ala Leu Leu Leu Asp Arg Phe Leu Asp Ile Leu Gln Asp Leu His 35 40 45 GGG GAG GAT CTG AAA GAA ACG GTT CAA GAG GTG TAT GAG CTT TCT GCT 311 Gly Glu Asp Leu Lys Glu Thr Val Gln Glu Val Tyr Glu Leu Ser Ala 50 55 60 65 GAG TAT GAA GGT AAG CAT GAC CCA AAG AAA CTA GAG GAA CTT GGA AAT 359 Glu Tyr Glu Gly Lys His Asp Pro Lys Lys Leu Glu Glu Leu Gly Asn 70 75 80 CTG ATA ACT AGT TTG GAT GCT GGA GAT TCC ATT GTG GTT GCC AAG TCC 407 Leu Ile Thr Ser Leu Asp Ala Gly Asp Ser Ile Val Val Ala Lys Ser 85 90 95 TTT TCC CAC ATG CTT AAC TTG GCC AAC TTA GCC GAA GAG GTC CAA ATT 455 Phe Ser His Met Leu Asn Leu Ala Asn Leu Ala Glu Glu Val Gln Ile 100 105 110 GCC CAC AGT CGA AGG AAC AAG TTG AAG AAA GGT GAT TTT GCT GAT GAA 503 Ala His Ser Arg Arg Asn Lys Leu Lys Lys Gly Asp Phe Ala Asp Glu 115 120 125 AAC AAT GCC ACC ACT GAA TCA GAC ATT GAA GAA ACT CTA AAG AAA CTT 551 Asn Asn Ala Thr Thr Glu Ser Asp Ile Glu Glu Thr Leu Lys Lys Leu 130 135 140 145 GTG GTG GAT ATG AAG AAG TCT CCT CAG GAA GTT TTT GAT GCA CTT AAA 599 Val Val Asp Met Lys Lys Ser Pro Gln Glu Val Phe Asp Ala Leu Lys 150 155 160 AAC CAG ACT GTT GAT CTG GTT CTT ACT GCT CAT CCT ACT CAA TCT GTC 647 Asn Gln Thr Val Asp Leu Val Leu Thr Ala His Pro Thr Gln Ser Val 165 170 175 CGT AGG TCT TTG CTT CAA AAA CAT GGA AGG ATA AGA AAT AAT TTA ACT 695 Arg Arg Ser Leu Leu Gln Lys His Gly Arg Ile Arg Asn Asn Leu Thr 180 185 190 CAG TTG TAT GCC AAA GAC ATC ACT CCT GAT GAT AAG CAG GAA CTT GAC 743 Gln Leu Tyr Ala Lys Asp Ile Thr Pro Asp Asp Lys Gln Glu Leu Asp 195 200 205 GAG GCT CTA CAG AGG GAG ATC CAA GCT GCA TTC CGT ACT GAT GAA ATC 791 Glu Ala Leu Gln Arg Glu Ile Gln Ala Ala Phe Arg Thr Asp Glu Ile 210 215 220 225 AGG AGG ACC CCT CCA ACC CCA CAA GAT GAG ATG AGA GCA GGG ATG AGC 839 Arg Arg Thr Pro Pro Thr Pro Gln Asp Glu Met Arg Ala Gly Met Ser 230 235 240 TAC TTC CAT GAA ACA ATT TGG AAG GGT GTA CCC ACA TTT CTA CGT CGT 887 Tyr Phe His Glu Thr Ile Trp Lys Gly Val Pro Thr Phe Leu Arg Arg 245 250 255 GTT GAT ACA GCT TTG AAG AAT ATA GGG ATC AAC GAA CGT GTC CCT TAT 935 Val Asp Thr Ala Leu Lys Asn Ile Gly Ile Asn Glu Arg Val Pro Tyr 260 265 270 AAT GCT CCT CTC ATT CAA TTT TCT TCT TGG ATG GGT GGA GAT CGT GAT 983 Asn Ala Pro Leu Ile Gln Phe Ser Ser Trp Met Gly Gly Asp Arg Asp 275 280 285 GGC AAT CCA AGA GTA ACT CCT GAA GTG ACC AGA GAT GTT TGC TTA TTG 1031 Gly Asn Pro Arg Val Thr Pro Glu Val Thr Arg Asp Val Cys Leu Leu 290 295 300 305 GCT AGA ATG ATG GCT GCT AAC TTG TAC TAC TCC CAG ATA GAG GAT CTT 1079 Ala Arg Met Met Ala Ala Asn Leu Tyr Tyr Ser Gln Ile Glu Asp Leu 310 315 320 ATG TTT GAG CTG TCA ATG TGG CGC TGC AAT GAC GAG CTA CGT GTC CGT 1127 Met Phe Glu Leu Ser Met Trp Arg Cys Asn Asp Glu Leu Arg Val Arg 325 330 335 GCA GAT GAA CTT AAC AGG TCT TCC AAG AAA AAT TCA GTC GCA AAA CAC 1175 Ala Asp Glu Leu Asn Arg Ser Ser Lys Lys Asn Ser Val Ala Lys His 340 345 350 TAC ATA GAA TTT TGG AAA GCC ATT CCT CCA AAT GAA CCA TAT CGT GTG 1223 Tyr Ile Glu Phe Trp Lys Ala Ile Pro Pro Asn Glu Pro Tyr Arg Val 355 360 365 CTA CTG GGT GAA GTA AGG AAT AGG CTT TAC CAG ACT CGT GAA CGC TCA 1271 Leu Leu Gly Glu Val Arg Asn Arg Leu Tyr Gln Thr Arg Glu Arg Ser 370 375 380 385 CGC CAT TTG CTA GCT CAC GGA TAC TCT GAC ATT CCA GAG GAA GAG ACT 1319 Arg His Leu Leu Ala His Gly Tyr Ser Asp Ile Pro Glu Glu Glu Thr 390 395 400 TTT ACC AAT GTT GAG GAG TTC TTG GAA CCC CTT GAA CTC TGT TAC AGA 1367 Phe Thr Asn Val Glu Glu Phe Leu Glu Pro Leu Glu Leu Cys Tyr Arg 405 410 415 TCA CTC TGT GCT TGT GGC GAT CGT GCA ATT GCC GAT GGA AGC CTT CTA 1415 Ser Leu Cys Ala Cys Gly Asp Arg Ala Ile Ala Asp Gly Ser Leu Leu 420 425 430 GAT TTC TTG AGA CAA GTC TCT ACT TTC GGA CTC TCC CTA GTG AGG CTT 1463 Asp Phe Leu Arg Gln Val Ser Thr Phe Gly Leu Ser Leu Val Arg Leu 435 440 445 GAC ATA AGG CAA GAG TCA GAC CGC CAC ACA GAC GTC TTA GAC GCC ATC 1511 Asp Ile Arg Gln Glu Ser Asp Arg His Thr Asp Val Leu Asp Ala Ile 450 455 460 465 ACC AAA CAT TTA GAA ATA GGC TCA TAC CAG GAA TGG TCG GAG GAA AAA 1559 Thr Lys His Leu Glu Ile Gly Ser Tyr Gln Glu Trp Ser Glu Glu Lys 470 475 480 CGG CAG CAA TGG CTT TTA TCT GAG TTG AGT GGC AAA CGG CCC CTA TTC 1607 Arg Gln Gln Trp Leu Leu Ser Glu Leu Ser Gly Lys Arg Pro Leu Phe 485 490 495 GGC CCT GAT CTT CCC CAA ACC GAA GAA ATC AGA GAC GTG TTG GAG ACA 1655 Gly Pro Asp Leu Pro Gln Thr Glu Glu Ile Arg Asp Val Leu Glu Thr 500 505 510 TTC CAT GTC ATA GCA GAG CTT CCA CTA GAC AAC TTT GGA GCA TAC ATC 1703 Phe His Val Ile Ala Glu Leu Pro Leu Asp Asn Phe Gly Ala Tyr Ile 515 520 525 ATC TCA ATG GCA ACT GCA CCT TCT GAT GTG CTT GCA GTT GAG CTT CTG 1751 Ile Ser Met Ala Thr Ala Pro Ser Asp Val Leu Ala Val Glu Leu Leu 530 535 540 545 CAG CGC GAA TGC CAT GTC AAG CAT CCA CTA AGA GTT GTG CCA TTG TTT 1799 Gln Arg Glu Cys His Val Lys His Pro Leu Arg Val Val Pro Leu Phe 550 555 560 GAG AAG CTA GCT GAT CTA GAA GCA GCA CCG GCC GCG TTG GCG CGA TTG 1847 Glu Lys Leu Ala Asp Leu Glu Ala Ala Pro Ala Ala Leu Ala Arg Leu 565 570 575 TTC TCT GTA GAC TGG TAC AGA AAC AGG ATC AAT GGG AAG CAG GAA GTG 1895 Phe Ser Val Asp Trp Tyr Arg Asn Arg Ile Asn Gly Lys Gln Glu Val 580 585 590 ATG ATA GGC TAT TCT GAT TCT GGC AAA GAT GCT GGA AGG TTT TCA GCT 1943 Met Ile Gly Tyr Ser Asp Ser Gly Lys Asp Ala Gly Arg Phe Ser Ala 595 600 605 GCA TGG CAG CTG TAT AAG GCT CAG GAG GAG CTT ATA ATG GTG GCT AAG 1991 Ala Trp Gln Leu Tyr Lys Ala Gln Glu Glu Leu Ile Met Val Ala Lys 610 615 620 625 CAG TAT GGT GTG AAG CTG ACA ATG TTC CAT GGT CGT GGA GGG ACA GTT 2039 Gln Tyr Gly Val Lys Leu Thr Met Phe His Gly Arg Gly Gly Thr Val 630 635 640 GGA AGA GGA GGT GGT CCA ACT CAC CTT GCT ATT CTG TCT CAG CCT CCT 2087 Gly Arg Gly Gly Gly Pro Thr His Leu Ala Ile Leu Ser Gln Pro Pro 645 650 655 GAA ACC ATT CAT GGA TCG CTG CGC GTG ACT GTC CAA GGT GAA GTT ATT 2135 Glu Thr Ile His Gly Ser Leu Arg Val Thr Val Gln Gly Glu Val Ile 660 665 670 GAG CAA TCG TTT GGA GAG CAG CAC TTG TGC TTC AGA ACG CTT CAA AGG 2183 Glu Gln Ser Phe Gly Glu Gln His Leu Cys Phe Arg Thr Leu Gln Arg 675 680 685 TTC ACT GCA GCT ACT CTA GAA CAT GGA ATG CAC CCT CCA ATT TCT CCT 2231 Phe Thr Ala Ala Thr Leu Glu His Gly Met His Pro Pro Ile Ser Pro 690 695 700 705 AAA CCG GAA TGG AGG GCT TTG ATG GAT GAG ATG GCT GTC ATT GCC ACT 2279 Lys Pro Glu Trp Arg Ala Leu Met Asp Glu Met Ala Val Ile Ala Thr 710 715 720 GAG GAG TAC CGG TCC ATT GTG TTC AAA GAA CCA CGA TTT GTT GAG TAT 2327 Glu Glu Tyr Arg Ser Ile Val Phe Lys Glu Pro Arg Phe Val Glu Tyr 725 730 735 TTC CGC CTG GCC ACA CCT GAG TTG GAG TAC GGG AGG ATG AAC ATT GGA 2375 Phe Arg Leu Ala Thr Pro Glu Leu Glu Tyr Gly Arg Met Asn Ile Gly 740 745 750 AGT CGA CCA GCA AAG AGG AGG CCA AGT GGA GGT ATT GAG ACA CTC CGT 2423 Ser Arg Pro Ala Lys Arg Arg Pro Ser Gly Gly Ile Glu Thr Leu Arg 755 760 765 GCC ATA CCT TGG ATC TTT GCC TGG ACA CAA ACA AGG TTC CAT CTT CCA 2471 Ala Ile Pro Trp Ile Phe Ala Trp Thr Gln Thr Arg Phe His Leu Pro 770 775 780 785 GTG TGG CTA GGC TTT GGT GCA GCA TTC AAA CAT GTT ATT GAG AAG GAT 2519 Val Trp Leu Gly Phe Gly Ala Ala Phe Lys His Val Ile Glu Lys Asp 790 795 800 GTT AGG AAT ATT CAT GTG CTG CAG GAG ATG TAC AAT CAA TGG CCT TTC 2567 Val Arg Asn Ile His Val Leu Gln Glu Met Tyr Asn Gln Trp Pro Phe 805 810 815 TTT AGG GTC ACT ATT GAT TTA GTG GAA ATG GTG TTT GCC AAA GGA GAC 2615 Phe Arg Val Thr Ile Asp Leu Val Glu Met Val Phe Ala Lys Gly Asp 820 825 830 CCA GGG ATA GCT GCT CTT TAT GAT AGG CTC CTT GTT TCA GAG GAT CTG 2663 Pro Gly Ile Ala Ala Leu Tyr Asp Arg Leu Leu Val Ser Glu Asp Leu 835 840 845 TGG TCA TTT GGG GAG CAG TTG AGG ACC ATG TAC GAA GAA ACC AAG GAA 2711 Trp Ser Phe Gly Glu Gln Leu Arg Thr Met Tyr Glu Glu Thr Lys Glu 850 855 860 865 CTC CTC CTT CAG GTG GCT GGC CAT AGG GAT CTT CTT GAA GGA GAT CCA 2759 Leu Leu Leu Gln Val Ala Gly His Arg Asp Leu Leu Glu Gly Asp Pro 870 875 880 TAC TTG AAG CAA AGA CTG CGC TTG CGT GAT TCT TAT ATT ACT ACC CTA 2807 Tyr Leu Lys Gln Arg Leu Arg Leu Arg Asp Ser Tyr Ile Thr Thr Leu 885 890 895 AAC GTG TGC CAA GCC TAC ACG TTG AAA CGT ATC CGT GAT CCA AAC TAT 2855 Asn Val Cys Gln Ala Tyr Thr Leu Lys Arg Ile Arg Asp Pro Asn Tyr 900 905 910 AAT GTG AAG CTG CGC CCT CAC ATC TCC AAA GAG TCT ATA GAG ATA AGT 2903 Asn Val Lys Leu Arg Pro His Ile Ser Lys Glu Ser Ile Glu Ile Ser 915 920 925 AAA CCT GCT GAT GAA CTT ATA ACA CTT AAC CCA ACA AGT GAA TAT GCA 2951 Lys Pro Ala Asp Glu Leu Ile Thr Leu Asn Pro Thr Ser Glu Tyr Ala 930 935 940 945 CCT GGT TTG GAA GAC ACC CTC ATT CTC ACC ATG AAG GGT ATT GCT GCT 2999 Pro Gly Leu Glu Asp Thr Leu Ile Leu Thr Met Lys Gly Ile Ala Ala 950 955 960 GGC TTG CAA AAC ACT GGC TAAATCTGAG TTTTTGTCTT CTCTTTGGTT 3047 Gly Leu Gln Asn Thr Gly 965 CCACTTTTAT TTTCTGTTTC CTTTATCAGA AATAACGAGT TTAGCTGCAT GCACCAAAGG 3107 GTGTTTTTCC CTCCCCTGTA CCCATGTTTC CATTATAAGA TATTACAGAG AGATAGCTGC 3167 CGCAAAATGA GACAATGCAA GTATGCAACT GATTCTTATG TTCC 3211

【００６３】配列番号：3 配列の長さ：17 配列の型：核酸鎖の数：一本鎖トポロジー：直鎖状配列の種類：他の核酸合成ＤＮＡ配列 GTTTTCCCAG TCACGAC 17

【００６４】配列番号：4 配列の長さ：17 配列の型：核酸鎖の数：一本鎖トポロジー：直鎖状配列の種類：他の核酸合成ＤＮＡ配列 CAGGAAACAG CTATGAC 17

【００６５】配列番号：5 配列の長さ：28 配列の型：核酸鎖の数：一本鎖トポロジー：直鎖状配列の種類：他の核酸合成ＤＮＡ配列 CTTCTAGACT TCTCTCTCTC TCTGTCAT 28

【００６６】配列番号：6 配列の長さ：28 配列の型：核酸鎖の数：一本鎖トポロジー：直鎖状配列の種類：他の核酸合成ＤＮＡ配列 GCTCTAGAAA CTTTTCAAAG TACCCCAA 28

【００６７】

【図面の簡単な説明】

【図１】プラスミドpSLG/PEPIの構築を示す図。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁵ 識別記号庁内整理番号ＦＩ技術表示箇所Ｃ１２Ｎ 15/60

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】配列番号１に示す塩基配列を有するホス
ホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子のプロモ
ーター領域及び５’非翻訳領域。
【請求項２】配列番号１に示す塩基配列のうち、塩基
番号１〜８６２の塩基配列を有するホスホエノールピル
ビン酸カルボキシラーゼ遺伝子のプロモーター領域。
【請求項３】配列番号１に示す塩基配列のうち、塩基
番号８６３〜１２６１の塩基配列を有するホスホエノー
ルピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子の第一イントロン
を含む５’非翻訳領域の全部又は一部。
【請求項４】植物で発現可能なプロモーターと、請求
項３記載の５’非翻訳領域の全部又は一部と、タンパク
をコードする構造遺伝子を連結して得られる配列を植物
細胞に導入することにより、前記構造遺伝子の発現を増
強させる方法。
【請求項５】前記植物で発現可能なプロモーターが、
配列番号１に示す塩基配列のうち、塩基番号１〜８６２
の塩基配列を有するホスホエノールピルビン酸カルボキ
シラーゼ遺伝子のプロモーターであることを特徴とする
請求項４記載の遺伝子の発現を増強させる方法。
【請求項６】植物で発現可能なプロモーターと、請求
項３記載の５’非翻訳領域の全部又は一部と、タンパク
をコードする構造遺伝子とを連結して得られる配列を導
入した植物細胞。