JPH07155190A - 黄色色素の製造方法 - Google Patents
黄色色素の製造方法Info
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- JPH07155190A JPH07155190A JP5307737A JP30773793A JPH07155190A JP H07155190 A JPH07155190 A JP H07155190A JP 5307737 A JP5307737 A JP 5307737A JP 30773793 A JP30773793 A JP 30773793A JP H07155190 A JPH07155190 A JP H07155190A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- medium
- culture
- callus
- lactuca
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 ラクチュカ属に属する植物を組織培養し、得
られた培養物から黄色色素を採取することを特徴とする
黄色色素の製造方法。 【効果】 この方法によれば食品、化粧品等に用いるこ
とのできる安全性の高い黄色色素が、気候条件に左右さ
れず、短期間に大量に得られる。
られた培養物から黄色色素を採取することを特徴とする
黄色色素の製造方法。 【効果】 この方法によれば食品、化粧品等に用いるこ
とのできる安全性の高い黄色色素が、気候条件に左右さ
れず、短期間に大量に得られる。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は天然色素の製造方法、詳
しくは植物組織培養による天然色素の製造方法に関す
る。
しくは植物組織培養による天然色素の製造方法に関す
る。
【０００２】
【従来の技術】食品や化粧品等の人体に直接触れる製品
の着色に用いられる色素は、その安全性という観点から
使用し得る種類が制限されており、最近では合成着色料
の使用が制限される傾向にある。そのため人体に安全で
あると考えられる天然色素の開発が急がれている。この
ような天然色素は動・植物から抽出して得られるため、
その量は原料となる動・植物組織に依存する。したがっ
て気候条件や社会的影響を受けやすく生産が一定しない
という欠点がある。また一般に色素は動・植物中に微量
に存在するにすぎないため、これを得るには大量の原料
と大規模な装置が必要となる。
の着色に用いられる色素は、その安全性という観点から
使用し得る種類が制限されており、最近では合成着色料
の使用が制限される傾向にある。そのため人体に安全で
あると考えられる天然色素の開発が急がれている。この
ような天然色素は動・植物から抽出して得られるため、
その量は原料となる動・植物組織に依存する。したがっ
て気候条件や社会的影響を受けやすく生産が一定しない
という欠点がある。また一般に色素は動・植物中に微量
に存在するにすぎないため、これを得るには大量の原料
と大規模な装置が必要となる。
【０００３】これに対し、近年、植物の組織培養技術を
用いることにより、天然色素を効率よく得る方法が試み
られている。例えば赤色色素については特開昭５０−２
４４９４号公報、特開昭６１−１６６３９６号公報な
ど、青色色素については特開昭６１−２６０８８７号公
報、特開昭６３−４２６８９号公報など、黄色色素につ
いては特開昭６２−２５７３８４号公報などが挙げられ
る。
用いることにより、天然色素を効率よく得る方法が試み
られている。例えば赤色色素については特開昭５０−２
４４９４号公報、特開昭６１−１６６３９６号公報な
ど、青色色素については特開昭６１−２６０８８７号公
報、特開昭６３−４２６８９号公報など、黄色色素につ
いては特開昭６２−２５７３８４号公報などが挙げられ
る。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】しかしながら、従来用
いられている色素生産植物は、一般に人体に摂取されて
いる植物ではなく、その植物の生産する色素は天然色素
とはいえ、安全性の点から未だ充分とは言い難い。従っ
て、本発明の目的は、食用として広く用いられている植
物の組織培養により、効率よく黄色天然色素を得る方法
を提供することにある。
いられている色素生産植物は、一般に人体に摂取されて
いる植物ではなく、その植物の生産する色素は天然色素
とはいえ、安全性の点から未だ充分とは言い難い。従っ
て、本発明の目的は、食用として広く用いられている植
物の組織培養により、効率よく黄色天然色素を得る方法
を提供することにある。
【０００５】
【課題を解決するための手段】上記目的を達成するた
め、本発明者らは、鋭意研究を行った結果、植物資源と
してキク科の食用の植物であるラクチュカ属に属する植
物を採用し、組織培養したところ、原料植物自体にはほ
とんど黄色が観察されないにもかかわらず、多量の黄色
色素が生産されることを見出し、本発明を完成するに至
った。
め、本発明者らは、鋭意研究を行った結果、植物資源と
してキク科の食用の植物であるラクチュカ属に属する植
物を採用し、組織培養したところ、原料植物自体にはほ
とんど黄色が観察されないにもかかわらず、多量の黄色
色素が生産されることを見出し、本発明を完成するに至
った。
【０００６】すなわち、本発明はラクチュカ属に属する
植物を組織培養し、得られた培養物から黄色色素を採取
することを特徴とする黄色色素の製造方法に係るもので
ある。
植物を組織培養し、得られた培養物から黄色色素を採取
することを特徴とする黄色色素の製造方法に係るもので
ある。
【０００７】本発明製造方法に用いられるラクチュカ属
に属する植物としては、例えばラクチュカ アングスタ
ーナ（Ｌａｃｔｕｃａ ａｎｇｕｓｔａｎａ）及びラク
チュカ サティーバ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖａ）
から選ばれるものが挙げられる。具体的にはチシャ（Ｌ
ａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖａ Ｌ．）、カキチシャ（Ｌ
ａｃｔｕｃａ ａｎｇｕｓｔａｎａ ｈｏｒｔ．）、タ
マチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖａ ｖａｒ．ｃ
ａｐｉｔａｔａ Ｌ．）、タチチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ
ｓａｔｉｖａ ｖａｒ．ｌｏｎｇｉｆｏｌｉａ Ｌａ
ｍ．）、チリメンチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖ
ａ ｖａｒ．ｃｒｉｓｐａ Ｌ．）が挙げられ、このう
ちチリメンチシャが特に好ましい。
に属する植物としては、例えばラクチュカ アングスタ
ーナ（Ｌａｃｔｕｃａ ａｎｇｕｓｔａｎａ）及びラク
チュカ サティーバ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖａ）
から選ばれるものが挙げられる。具体的にはチシャ（Ｌ
ａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖａ Ｌ．）、カキチシャ（Ｌ
ａｃｔｕｃａ ａｎｇｕｓｔａｎａ ｈｏｒｔ．）、タ
マチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖａ ｖａｒ．ｃ
ａｐｉｔａｔａ Ｌ．）、タチチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ
ｓａｔｉｖａ ｖａｒ．ｌｏｎｇｉｆｏｌｉａ Ｌａ
ｍ．）、チリメンチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓａｔｉｖ
ａ ｖａｒ．ｃｒｉｓｐａ Ｌ．）が挙げられ、このう
ちチリメンチシャが特に好ましい。
【０００８】本発明においては、かかるラクチュカ属に
属する植物組織から誘導されるカルスを培地で培養し、
その培養物から黄色色素を採取するのが好ましい。従っ
て、まず、ラクチュカ属に属する植物組織からカルスを
誘導する。
属する植物組織から誘導されるカルスを培地で培養し、
その培養物から黄色色素を採取するのが好ましい。従っ
て、まず、ラクチュカ属に属する植物組織からカルスを
誘導する。
【０００９】カルス誘導に用いる植物組織は、葉、茎、
根などの植物体の一部及び無菌的に発芽させた幼植物の
子葉、胚軸、根などのうちいずれを用いてもよい。また
使用される培地はなんら格別である必要はなく、植物の
組織培養に通常に用いられる培地でよい。例えばＭｕｒ
ａｓｈｉｇｅ−Ｓｋｏｏｇの培地、Ｌｉｎｓｍａｉｅｒ
−Ｓｋｏｏｇの培地、Ｇａｍｂｏｒｇの培地、Ｗｈｉｔ
ｅの培地、Ｔｕｌｅｅｋｅの培地、Ｎｉｔｓｃｈ ＆
Ｎｉｔｓｃｈの培地及びこれらの改変培地などが用いら
れうる。カルス誘導をより促進させるために、必要に応
じて植物ホルモンが添加される。植物ホルモンとして
は、例えば、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４
−Ｄ）、α−ナフチル酢酸（ＮＡＡ）、インドール酢酸
（ＩＡＡ）、インドール酪酸（ＩＢＡ）等のオーキシン
類；フルフリルアミノプリン（カイネチン）、ベンジル
アデニン（ＢＡ）、イソペンテニルアミノプリン（２ｉ
Ｐ）等のサイトカイニン類；ジベレリン類（ＧＡ3）等
が挙げられる。その中でもオーキシン類単独、又はオー
キシン類とサイトカイニン類を組み合せた場合に良好な
結果が得られる。カルス誘導に必要な植物ホルモン濃度
はオーキシン類は１×１０-4Ｍ〜１×１０-7Ｍ、サイト
カイニン類は５×１０-5Ｍ〜５×１０-7Ｍが好ましい。
根などの植物体の一部及び無菌的に発芽させた幼植物の
子葉、胚軸、根などのうちいずれを用いてもよい。また
使用される培地はなんら格別である必要はなく、植物の
組織培養に通常に用いられる培地でよい。例えばＭｕｒ
ａｓｈｉｇｅ−Ｓｋｏｏｇの培地、Ｌｉｎｓｍａｉｅｒ
−Ｓｋｏｏｇの培地、Ｇａｍｂｏｒｇの培地、Ｗｈｉｔ
ｅの培地、Ｔｕｌｅｅｋｅの培地、Ｎｉｔｓｃｈ ＆
Ｎｉｔｓｃｈの培地及びこれらの改変培地などが用いら
れうる。カルス誘導をより促進させるために、必要に応
じて植物ホルモンが添加される。植物ホルモンとして
は、例えば、２，４−ジクロロフェノキシ酢酸（２，４
−Ｄ）、α−ナフチル酢酸（ＮＡＡ）、インドール酢酸
（ＩＡＡ）、インドール酪酸（ＩＢＡ）等のオーキシン
類；フルフリルアミノプリン（カイネチン）、ベンジル
アデニン（ＢＡ）、イソペンテニルアミノプリン（２ｉ
Ｐ）等のサイトカイニン類；ジベレリン類（ＧＡ3）等
が挙げられる。その中でもオーキシン類単独、又はオー
キシン類とサイトカイニン類を組み合せた場合に良好な
結果が得られる。カルス誘導に必要な植物ホルモン濃度
はオーキシン類は１×１０-4Ｍ〜１×１０-7Ｍ、サイト
カイニン類は５×１０-5Ｍ〜５×１０-7Ｍが好ましい。
【００１０】カルス誘導培地には上記の基本培地と植物
ホルモンの他に炭素源として糖が加えられる。糖として
は、たとえばグルコース、フルクトース、マンノース、
キシロース、アラビノース、ラムノース、フコース、サ
ッカロース等が挙げられ、これらのうち１種又は２種以
上を用いることができる。その濃度は１〜６重量％が好
ましい。誘導されたカルスは上記のカルス誘導培地で同
じ形態を維持したまま培養を続けることができる。
ホルモンの他に炭素源として糖が加えられる。糖として
は、たとえばグルコース、フルクトース、マンノース、
キシロース、アラビノース、ラムノース、フコース、サ
ッカロース等が挙げられ、これらのうち１種又は２種以
上を用いることができる。その濃度は１〜６重量％が好
ましい。誘導されたカルスは上記のカルス誘導培地で同
じ形態を維持したまま培養を続けることができる。
【００１１】黄色色素を製造するためには、カルスを寒
天培地等の固体培地又は液体培地で培養するが、就中、
液体培地で培養するのが好ましい。基本培地としてはカ
ルス誘導培地と同じものすなわちＭｕｒａｓｈｉｇｅ−
Ｓｋｏｏｇの培地、Ｌｉｎｓｍａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの
培地、Ｇａｍｂｏｒｇの培地、Ｗｈｉｔｅの培地、Ｔｕ
ｌｅｅｋｅの培地、Ｎｉｔｓｃｈ ＆ Ｎｉｔｓｃｈの
培地及びこれらの改変培地などが用いられうる。上記培
地に植物ホルモンを添加することにより黄色色素が効率
よく得られる。植物ホルモンとしては例えば、２，４−
Ｄ、ＮＡＡ、ＩＡＡ、ＩＢＡ等のオーキシン類；カイネ
チン、ＢＡ、２ｉＰ等のサイトカイニン類；ＧＡ3等の
ジベレリン類等が挙げられる。その中でもオーキシン類
単独、若しくはオーキシン類とサイトカイニン類を組み
合せた場合に良好な結果が得られる。その濃度は用いる
植物ホルモンによってやや異なるが基本的にオーキシン
類は１×１０-4Ｍ〜１×１０-7Ｍ、サイトカイニン類は
５×１０-5Ｍ〜５×１０-7Ｍ、ジベレリン類は５×１０
-5Ｍ〜１×１０-7Ｍが好ましい。色素生産用培地は上記
の基本培地と植物ホルモンの他に炭素源として糖が加え
られる。糖としては、たとえばグルコース、フルクトー
ス、マンノース、キシロース、アラビノース、ラムノー
ス、フコース、サッカロース等が挙げられる。色素生産
は添加する炭素源の種類により強く影響されるものでは
なく、通常これらのうち１種又は２種以上を用いること
ができる。その濃度は１〜６重量％が好ましい。培養法
は特に制限されないが、通常２０〜３０℃、暗所で１０
〜３０日間振とう培養を行うのが好ましい。
天培地等の固体培地又は液体培地で培養するが、就中、
液体培地で培養するのが好ましい。基本培地としてはカ
ルス誘導培地と同じものすなわちＭｕｒａｓｈｉｇｅ−
Ｓｋｏｏｇの培地、Ｌｉｎｓｍａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの
培地、Ｇａｍｂｏｒｇの培地、Ｗｈｉｔｅの培地、Ｔｕ
ｌｅｅｋｅの培地、Ｎｉｔｓｃｈ ＆ Ｎｉｔｓｃｈの
培地及びこれらの改変培地などが用いられうる。上記培
地に植物ホルモンを添加することにより黄色色素が効率
よく得られる。植物ホルモンとしては例えば、２，４−
Ｄ、ＮＡＡ、ＩＡＡ、ＩＢＡ等のオーキシン類；カイネ
チン、ＢＡ、２ｉＰ等のサイトカイニン類；ＧＡ3等の
ジベレリン類等が挙げられる。その中でもオーキシン類
単独、若しくはオーキシン類とサイトカイニン類を組み
合せた場合に良好な結果が得られる。その濃度は用いる
植物ホルモンによってやや異なるが基本的にオーキシン
類は１×１０-4Ｍ〜１×１０-7Ｍ、サイトカイニン類は
５×１０-5Ｍ〜５×１０-7Ｍ、ジベレリン類は５×１０
-5Ｍ〜１×１０-7Ｍが好ましい。色素生産用培地は上記
の基本培地と植物ホルモンの他に炭素源として糖が加え
られる。糖としては、たとえばグルコース、フルクトー
ス、マンノース、キシロース、アラビノース、ラムノー
ス、フコース、サッカロース等が挙げられる。色素生産
は添加する炭素源の種類により強く影響されるものでは
なく、通常これらのうち１種又は２種以上を用いること
ができる。その濃度は１〜６重量％が好ましい。培養法
は特に制限されないが、通常２０〜３０℃、暗所で１０
〜３０日間振とう培養を行うのが好ましい。
【００１２】このようにして培養された細胞は黄色色素
を生産するようになる。生産された黄色色素は細胞内部
から培地中へも生産されるようになる。そのため得られ
た培養物から黄色色素を採取するには、例えば培養物か
ら遠心分離又は濾過等によりカルスを集め、有機溶剤等
により抽出する方法、カルスを新たな培地に移した後培
地から色素を抽出する方法、培養物全てを有機溶剤で抽
出する方法等が可能である。黄色色素を抽出するための
有機溶剤としては、エーテル、ヘキサン、酢酸エチル等
の通常の有機溶剤が用いられうる。液体培地により培養
を行った場合には、細胞を濾別した後、培養液から直接
有機溶剤を用いて色素を抽出することができる。そのた
め液体培地から濾別された細胞は引き続き培養に供する
ことができるので、連続して色素生産をすることが可能
である。
を生産するようになる。生産された黄色色素は細胞内部
から培地中へも生産されるようになる。そのため得られ
た培養物から黄色色素を採取するには、例えば培養物か
ら遠心分離又は濾過等によりカルスを集め、有機溶剤等
により抽出する方法、カルスを新たな培地に移した後培
地から色素を抽出する方法、培養物全てを有機溶剤で抽
出する方法等が可能である。黄色色素を抽出するための
有機溶剤としては、エーテル、ヘキサン、酢酸エチル等
の通常の有機溶剤が用いられうる。液体培地により培養
を行った場合には、細胞を濾別した後、培養液から直接
有機溶剤を用いて色素を抽出することができる。そのた
め液体培地から濾別された細胞は引き続き培養に供する
ことができるので、連続して色素生産をすることが可能
である。
【００１３】
【発明の効果】このように黄色色素を含有する細胞を増
殖し、長期に渡って継代培養しても細胞形態や増殖率、
色素含量は変化しない。そのため気候条件に左右され
ず、短期間に大量の黄色色素を得ることができる。ま
た、暗所で培養された細胞により得られた色素は、クロ
ロプラスト等の緑色色素が混入することが無く均質にな
りうる。本黄色色素は食品、化粧品等の着色料として、
例えばジュース、ワイン等の飲料、羊かん等の菓子、ゼ
リー等の冷菓、口紅、アイシャドウ等のメイクアップ用
化粧品等に用いることができる。
殖し、長期に渡って継代培養しても細胞形態や増殖率、
色素含量は変化しない。そのため気候条件に左右され
ず、短期間に大量の黄色色素を得ることができる。ま
た、暗所で培養された細胞により得られた色素は、クロ
ロプラスト等の緑色色素が混入することが無く均質にな
りうる。本黄色色素は食品、化粧品等の着色料として、
例えばジュース、ワイン等の飲料、羊かん等の菓子、ゼ
リー等の冷菓、口紅、アイシャドウ等のメイクアップ用
化粧品等に用いることができる。
【００１４】
【実施例】次に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明
するが、本発明はこれに限定されるものではない。
するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００１５】実施例１ （ａ）カルスの誘導：チリメンチシャ（Ｌａｃｔｕｃａ
ｓａｔｉｖａ ｖａｒ．ｃｒｉｓｐａ Ｌ．）の種子
を７０％エタノール溶液で１分間滅菌し、更に１％次亜
塩素酸ナトリウム溶液で１０分間滅菌した後、滅菌水で
洗浄した。滅菌処理された種子は、発芽用培地上に播種
した。発芽用培地としては植物ホルモンを含まないＬｉ
ｎｓｍａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの培地に０．８％となるよ
うに寒天を加えた固形培地とし、炭素源としては３％シ
ュークロースを添加した。この培地を０．１ＮのＫＯＨ
でpH５．７に調整し、オートクレーブによる滅菌を行い
用いた。２５℃、暗所で無菌的に発芽させ、発芽後３日
目に無菌幼植物を採取し、胚軸部分を切取りカルス誘導
用培地に置床した。カルス誘導培地は、０．８％寒天を
含むＬｉｎｓｍａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの培地を用いた。
植物ホルモンとしては、オーキシンとして１０-6Ｍ Ｎ
ＡＡ、サイトカイニンとして１０-6Ｍ ＢＡを添加し
た。炭素源としては３％シュークロースを添加した。こ
の培地を０．１ＮのＫＯＨでpH５．７に調整した後、前
述の方法で滅菌した。培養は２５℃、暗所で行った。約
３０日間の培養の後、外殖片からやや黄色を帯びたカル
スが誘導された。
ｓａｔｉｖａ ｖａｒ．ｃｒｉｓｐａ Ｌ．）の種子
を７０％エタノール溶液で１分間滅菌し、更に１％次亜
塩素酸ナトリウム溶液で１０分間滅菌した後、滅菌水で
洗浄した。滅菌処理された種子は、発芽用培地上に播種
した。発芽用培地としては植物ホルモンを含まないＬｉ
ｎｓｍａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの培地に０．８％となるよ
うに寒天を加えた固形培地とし、炭素源としては３％シ
ュークロースを添加した。この培地を０．１ＮのＫＯＨ
でpH５．７に調整し、オートクレーブによる滅菌を行い
用いた。２５℃、暗所で無菌的に発芽させ、発芽後３日
目に無菌幼植物を採取し、胚軸部分を切取りカルス誘導
用培地に置床した。カルス誘導培地は、０．８％寒天を
含むＬｉｎｓｍａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの培地を用いた。
植物ホルモンとしては、オーキシンとして１０-6Ｍ Ｎ
ＡＡ、サイトカイニンとして１０-6Ｍ ＢＡを添加し
た。炭素源としては３％シュークロースを添加した。こ
の培地を０．１ＮのＫＯＨでpH５．７に調整した後、前
述の方法で滅菌した。培養は２５℃、暗所で行った。約
３０日間の培養の後、外殖片からやや黄色を帯びたカル
スが誘導された。
【００１６】（ｂ）カルスの継代培養：（ａ）において
誘導されたカルスは誘導用培地と同一の培地を用いて同
一条件下で培養され約３０日おきに新しい培地に移植さ
れた。 （ｃ）生産培養：（ｂ）において１０代以上継代培養さ
れたカルスについて、色素生産用液体培地を用いて振と
う培養を行った。色素生産用培地としては、Ｌｉｎｓｍ
ａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの培地に、植物ホルモンをオーキ
シンとして１０ -5Ｍ ＮＡＡ、サイトカイニンとして１
０-6Ｍ ＢＡを添加した。炭素源としては３％シューク
ロースを添加した。この培地を０．１ＮのＫＯＨでpH
５．７に調整した後、前述の方法で滅菌して用いた。培
養は５００ml容三角フラスコに２５０mlの培地を入れ、
カルスを新鮮重で５ｇ摂取して、２５℃、暗所、１００
rpmで３０日間行った。培養開始後、数日のうちにカル
スは濃い黄色となり増殖を続けた。この際培地も黄色を
帯び培養を続けるに伴い黄色も濃くなった。
誘導されたカルスは誘導用培地と同一の培地を用いて同
一条件下で培養され約３０日おきに新しい培地に移植さ
れた。 （ｃ）生産培養：（ｂ）において１０代以上継代培養さ
れたカルスについて、色素生産用液体培地を用いて振と
う培養を行った。色素生産用培地としては、Ｌｉｎｓｍ
ａｉｅｒ−Ｓｋｏｏｇの培地に、植物ホルモンをオーキ
シンとして１０ -5Ｍ ＮＡＡ、サイトカイニンとして１
０-6Ｍ ＢＡを添加した。炭素源としては３％シューク
ロースを添加した。この培地を０．１ＮのＫＯＨでpH
５．７に調整した後、前述の方法で滅菌して用いた。培
養は５００ml容三角フラスコに２５０mlの培地を入れ、
カルスを新鮮重で５ｇ摂取して、２５℃、暗所、１００
rpmで３０日間行った。培養開始後、数日のうちにカル
スは濃い黄色となり増殖を続けた。この際培地も黄色を
帯び培養を続けるに伴い黄色も濃くなった。
【００１７】（ｄ）色素の抽出：（ｃ）において３０日
間培養を行った後、培養物を濾別し、新鮮重で約５０ｇ
のカルスを得た。このカルスは酢酸エチル２００mlを用
いて抽出を行った。更に同一の抽出操作を２回繰り返
し、得られた抽出液を合せ、ロータリーエバポレーター
で濃縮乾固した。得られた黄色色素は約０．１ｇであっ
た。
間培養を行った後、培養物を濾別し、新鮮重で約５０ｇ
のカルスを得た。このカルスは酢酸エチル２００mlを用
いて抽出を行った。更に同一の抽出操作を２回繰り返
し、得られた抽出液を合せ、ロータリーエバポレーター
で濃縮乾固した。得られた黄色色素は約０．１ｇであっ
た。
【００１８】（ｅ）色素の精製：（ｄ）において得られ
た黄色色素抽出物０．１ｇをシリカゲルカラムクロマト
グラフィによりヘキサン、酢酸エチルを用いて溶出し、
分画精製を行い、０．００２ｇの鮮やかな黄橙色の結晶
が得られた。
た黄色色素抽出物０．１ｇをシリカゲルカラムクロマト
グラフィによりヘキサン、酢酸エチルを用いて溶出し、
分画精製を行い、０．００２ｇの鮮やかな黄橙色の結晶
が得られた。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:91）
Claims (2)
- 【請求項１】 ラクチュカ属に属する植物を組織培養
し、得られた培養物から黄色色素を採取することを特徴
とする黄色色素の製造方法。 - 【請求項２】 ラクチュカ属に属する植物が、ラクチュ
カ アングスタナ（Ｌａｃｔｕｃａ ａｎｇｕｓｔａｎ
ａ）及びラクチュカ サティーバ（Ｌａｃｔｕｃａ ｓ
ａｔｉｖａ）から選ばれるものである請求項１記載の黄
色色素の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5307737A JPH07155190A (ja) | 1993-12-08 | 1993-12-08 | 黄色色素の製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5307737A JPH07155190A (ja) | 1993-12-08 | 1993-12-08 | 黄色色素の製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07155190A true JPH07155190A (ja) | 1995-06-20 |
Family
ID=17972660
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5307737A Pending JPH07155190A (ja) | 1993-12-08 | 1993-12-08 | 黄色色素の製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07155190A (ja) |
-
1993
- 1993-12-08 JP JP5307737A patent/JPH07155190A/ja active Pending
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