JPH08259565A - 鏡像異性体ヒドロキシル化キサンチン化合物 - Google Patents
鏡像異性体ヒドロキシル化キサンチン化合物Info
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Abstract
(57)【要約】 (修正有)
【課題】 種々の炎症性および増殖刺激を受けた非常に
多様な細胞において恒常性の維持に使用できる化合物お
よび医薬組成物を提供する。 【解決手段】 下記式: [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代りに1つ、又は隣接しな
い2つの酸素原子を含んでいてもよい、アルキル(C
1-12)である]で示される化合物を含む置換キサンチン
化合物。
多様な細胞において恒常性の維持に使用できる化合物お
よび医薬組成物を提供する。 【解決手段】 下記式: [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代りに1つ、又は隣接しな
い2つの酸素原子を含んでいてもよい、アルキル(C
1-12)である]で示される化合物を含む置換キサンチン
化合物。
Description
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、ヒドロキシル置換
キサンチン化合物の異性体(isomer)は立体特異
的な細胞二次伝達経路を介した刺激に対する細胞応答を
調節するのに有効な薬剤であるという発見に関する。具
体的には、本発明の化合物は、3,7−ジ置換キサンチ
ンの1位において置換された、直鎖アルキル(C5-8)
のω−1アルコールのRまたはS(好ましくはR)鏡像
異性体(enantiomer)である。本発明の化合
物は、特異的なsn-2不飽和ホスファチジン酸、およ
び細胞増殖刺激に応答してホスファチジン酸(PA)経
路を介して生産される対応するホスファチジン酸由来の
ジアシルグリセロールの細胞内レベルを制御するための
有効な拮抗薬である。
キサンチン化合物の異性体(isomer)は立体特異
的な細胞二次伝達経路を介した刺激に対する細胞応答を
調節するのに有効な薬剤であるという発見に関する。具
体的には、本発明の化合物は、3,7−ジ置換キサンチ
ンの1位において置換された、直鎖アルキル(C5-8)
のω−1アルコールのRまたはS(好ましくはR)鏡像
異性体(enantiomer)である。本発明の化合
物は、特異的なsn-2不飽和ホスファチジン酸、およ
び細胞増殖刺激に応答してホスファチジン酸(PA)経
路を介して生産される対応するホスファチジン酸由来の
ジアシルグリセロールの細胞内レベルを制御するための
有効な拮抗薬である。
【0002】
【従来の技術】ペントキシフィリン(1-(5-オキソヘ
キシル)-3,7-ジメチルキサンチン)(以下、PTXと
呼ぶ)は、キサンチン誘導体で、血流増加のための医薬
用途に広く使用されている。PTXは米国特許第3,4
22,307号および第3,737,433号に開示され
ている。PTXの代謝物については、DavisらのA
pplied Environment Microbi
ol. 48:327,1984に総説が述べられてい
る。PTXの代謝物の一つは1-(5-ヒドロキシヘキシ
ル)-3,7-ジメチルキサンチン(以下、M1と呼ばれて
いる)であり、ラセミ混合物(racemic mix
ture)として得られている。M1(ラセミ混合物)
もまた、(単に血流を増加するというのではなく)大脳
の血流を増加するものとして、米国特許第4,515,7
95号および第4,576,947号に開示されている。
さらに、米国特許第4,833,146号および第5,0
39,666号は、大脳血流を増強するために、キサン
チンのより短い炭素鎖を有する第三アルコール類似体の
使用を開示している。続く代謝の研究では、PTXはS
鏡像異性体に代謝されることが発見されている。
キシル)-3,7-ジメチルキサンチン)(以下、PTXと
呼ぶ)は、キサンチン誘導体で、血流増加のための医薬
用途に広く使用されている。PTXは米国特許第3,4
22,307号および第3,737,433号に開示され
ている。PTXの代謝物については、DavisらのA
pplied Environment Microbi
ol. 48:327,1984に総説が述べられてい
る。PTXの代謝物の一つは1-(5-ヒドロキシヘキシ
ル)-3,7-ジメチルキサンチン(以下、M1と呼ばれて
いる)であり、ラセミ混合物(racemic mix
ture)として得られている。M1(ラセミ混合物)
もまた、(単に血流を増加するというのではなく)大脳
の血流を増加するものとして、米国特許第4,515,7
95号および第4,576,947号に開示されている。
さらに、米国特許第4,833,146号および第5,0
39,666号は、大脳血流を増強するために、キサン
チンのより短い炭素鎖を有する第三アルコール類似体の
使用を開示している。続く代謝の研究では、PTXはS
鏡像異性体に代謝されることが発見されている。
【0003】さらに、米国特許第4,636,507号
は、PTXおよびM1(ラセミ混合物)は走化性刺激因
子に応答して多形核白血球に化学走性を引き起こす能力
を有することが記載されている。PTXおよび関連する
第三アルコール−置換キサンチンはある種のサイトカイ
ンの活性を抑制し、化学走性に影響を与える(米国特許
第4,965,271号および米国特許第5,096,90
6号)。同種異系骨髄移植を受けた患者にPTXおよび
GM−CSFを投与すると、患者の腫瘍壊死因子(TN
F)のレベルが下がる(Biancoら、 Blood
76:Supplement 1(522A),199
0)。TNFの検出可能なレベルでの減少に伴い、骨髄
移植に関連する合併症も減少した。しかし、健常な志願
者では、PTX投与を受けた者のTNFレベルは高かっ
た。従って、TNFレベルの上昇はこれらの合併症の主
要な要因ではない。
は、PTXおよびM1(ラセミ混合物)は走化性刺激因
子に応答して多形核白血球に化学走性を引き起こす能力
を有することが記載されている。PTXおよび関連する
第三アルコール−置換キサンチンはある種のサイトカイ
ンの活性を抑制し、化学走性に影響を与える(米国特許
第4,965,271号および米国特許第5,096,90
6号)。同種異系骨髄移植を受けた患者にPTXおよび
GM−CSFを投与すると、患者の腫瘍壊死因子(TN
F)のレベルが下がる(Biancoら、 Blood
76:Supplement 1(522A),199
0)。TNFの検出可能なレベルでの減少に伴い、骨髄
移植に関連する合併症も減少した。しかし、健常な志願
者では、PTX投与を受けた者のTNFレベルは高かっ
た。従って、TNFレベルの上昇はこれらの合併症の主
要な要因ではない。
【0004】キラル中心を有する薬剤は、通常ラセミ化
合物として販売される。どの開示を見てもM1代謝物は
立体特異性である。実際、(人体内の代謝により)M1
はS異性体のみまたは主にS異性体として生産されるよ
うである。薬剤をラセミ混合物として製造し服用するこ
とは、薬剤の各服用量に、通常は治療上の価値がなく予
想外の副作用を引き起こす可能性のある異性体が等量混
ざっていることを意味する。例えば、鎮静剤のサリドマ
イドはラセミ混合物として販売された。望みの鎮静活性
はR異性体が有していたが、混ざっているS異性体は催
奇物質で、この薬剤を使用している母親から生まれた赤
ん坊に先天的欠損症を引き起こす。結核菌抑制剤のエタ
ンブトールのR,R−鏡像異性体は失明を引き起こす可
能性がある。非ステロイド系抗炎症剤ベノキサプロフェ
ン(OraflexR)の致死に至らしめる副作用は、
もしこの薬剤が純粋な鏡像異性体として販売されていた
ならば避けられたかもしれない。
合物として販売される。どの開示を見てもM1代謝物は
立体特異性である。実際、(人体内の代謝により)M1
はS異性体のみまたは主にS異性体として生産されるよ
うである。薬剤をラセミ混合物として製造し服用するこ
とは、薬剤の各服用量に、通常は治療上の価値がなく予
想外の副作用を引き起こす可能性のある異性体が等量混
ざっていることを意味する。例えば、鎮静剤のサリドマ
イドはラセミ混合物として販売された。望みの鎮静活性
はR異性体が有していたが、混ざっているS異性体は催
奇物質で、この薬剤を使用している母親から生まれた赤
ん坊に先天的欠損症を引き起こす。結核菌抑制剤のエタ
ンブトールのR,R−鏡像異性体は失明を引き起こす可
能性がある。非ステロイド系抗炎症剤ベノキサプロフェ
ン(OraflexR)の致死に至らしめる副作用は、
もしこの薬剤が純粋な鏡像異性体として販売されていた
ならば避けられたかもしれない。
【0005】鏡像異性体の純度の課題は医薬の分野に限
られない。例えば、ASANA(iPr=イソプロピル)
は二つの非対称中心を有する合成ピレスロイド殺昆虫剤
である。有効な殺昆虫活性の大半は、可能性のある4種
類の立体異性体のうちのただ一種類にのみ存在する。さ
らに、殺昆虫作用を有しない3種類の立体異性体はある
種の植物種に対して細胞毒性を示す。従って、ASAN
Aは、立体異性体の混合物は適当でないので、単一の立
体異性体としてのみ販売され得る。
られない。例えば、ASANA(iPr=イソプロピル)
は二つの非対称中心を有する合成ピレスロイド殺昆虫剤
である。有効な殺昆虫活性の大半は、可能性のある4種
類の立体異性体のうちのただ一種類にのみ存在する。さ
らに、殺昆虫作用を有しない3種類の立体異性体はある
種の植物種に対して細胞毒性を示す。従って、ASAN
Aは、立体異性体の混合物は適当でないので、単一の立
体異性体としてのみ販売され得る。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】従って、人間または動
物に安全かつ効果的に投与でき、種々の炎症性刺激に対
して恒常性(homeostasis)を維持でき、そ
して、単一の異性体に存在する活性を有するように鏡像
異性体として純粋な効果的な治療用の化合物を発見する
ことが、当該分野において必要である。本発明は、その
ような化合物を探す過程において行われた。
物に安全かつ効果的に投与でき、種々の炎症性刺激に対
して恒常性(homeostasis)を維持でき、そ
して、単一の異性体に存在する活性を有するように鏡像
異性体として純粋な効果的な治療用の化合物を発見する
ことが、当該分野において必要である。本発明は、その
ような化合物を探す過程において行われた。
【0007】本発明者らは、本明細書中に記載されてい
る化合物は、種々の炎症性および増殖刺激を受けた非常
に多様な細胞において恒常性の維持に使用することがで
きることを発見した。さらに、本発明の化合物および医
薬組成物は、通常の薬剤投与経路(例えば、経口投与、
局所投与、非経口投与など)に適しており、有効な投与
量を提供することができることを発見した。
る化合物は、種々の炎症性および増殖刺激を受けた非常
に多様な細胞において恒常性の維持に使用することがで
きることを発見した。さらに、本発明の化合物および医
薬組成物は、通常の薬剤投与経路(例えば、経口投与、
局所投与、非経口投与など)に適しており、有効な投与
量を提供することができることを発見した。
【0008】本発明の化合物および医薬組成物は、3,
7−ジ置換キサンチンの1位において置換された直鎖ア
ルキル(C5-8)のω−1アルコールの、分離されたR
またはS(好ましくはR)鏡像異性体である。本発明の
化合物は、このような化合物を有効量投与する特定の投
与方式と同様に、外部刺激またはin situ 一次刺
激に対する細胞応答を調節するのに有効である。
7−ジ置換キサンチンの1位において置換された直鎖ア
ルキル(C5-8)のω−1アルコールの、分離されたR
またはS(好ましくはR)鏡像異性体である。本発明の
化合物は、このような化合物を有効量投与する特定の投
与方式と同様に、外部刺激またはin situ 一次刺
激に対する細胞応答を調節するのに有効である。
【0009】本発明の化合物は、下記の式:
【化2】 [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代わりに1つ、または隣接
しない2つの酸素原子を含んでいてもよいアルキル(C
1-12)である]のキサンチンコアから成る化合物および
該化合物を有する医薬組成物を構成する。R1は、好ま
しくはR鏡像異性体として水酸基を有するC6アルキル
である。
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代わりに1つ、または隣接
しない2つの酸素原子を含んでいてもよいアルキル(C
1-12)である]のキサンチンコアから成る化合物および
該化合物を有する医薬組成物を構成する。R1は、好ま
しくはR鏡像異性体として水酸基を有するC6アルキル
である。
【0010】本発明はさらに、本発明の化合物および薬
学的に受容可能な助剤から成り、患者に経口的、非経口
的、または局所的な投与により処方される、医薬組成物
を提供する。
学的に受容可能な助剤から成り、患者に経口的、非経口
的、または局所的な投与により処方される、医薬組成物
を提供する。
【0011】本発明はさらに、外部からの若しくはin
situの一次刺激に対する免疫応答若しくは(細胞
の細胞膜の内部葉状組織の隣接部で機能する、特異的な
リン脂質ベースの第二メッセンジャーによって媒介され
る)細胞性応答が抑制されることにより特徴付けられ
る、または、そのような抑制により治療される、種々の
病気を有する患者を治療する方法を提供する。第二伝達
経路は、種々の病状に特徴的な種々の有毒なまたは増殖
的な刺激に応答して活性化される。この第二伝達経路の
生化学について本明細書に記載する。より具体的には、
本発明は、ここに記載される第二伝達経路を介した細胞
シグナルを抑制することによって、種々の病状の臨床上
の症状を治療若しくは予防する、または他の治療による
毒性を緩和する方法に関する。病状または治療による毒
性は、下記のものからなるグループから選択される。
situの一次刺激に対する免疫応答若しくは(細胞
の細胞膜の内部葉状組織の隣接部で機能する、特異的な
リン脂質ベースの第二メッセンジャーによって媒介され
る)細胞性応答が抑制されることにより特徴付けられ
る、または、そのような抑制により治療される、種々の
病気を有する患者を治療する方法を提供する。第二伝達
経路は、種々の病状に特徴的な種々の有毒なまたは増殖
的な刺激に応答して活性化される。この第二伝達経路の
生化学について本明細書に記載する。より具体的には、
本発明は、ここに記載される第二伝達経路を介した細胞
シグナルを抑制することによって、種々の病状の臨床上
の症状を治療若しくは予防する、または他の治療による
毒性を緩和する方法に関する。病状または治療による毒
性は、下記のものからなるグループから選択される。
【0012】活性化癌遺伝子に応答した癌細胞の増殖;
細胞減少治療(cytoreductive therapies)又は微生物
性病原体の感染による血球細胞欠損(hematocytopeni
a);T細胞応答若しくはB細胞応答、および抗体の生
産による自己免疫疾患;敗血性ショック;腫瘍壊死因子
(TNF)に対する間葉細胞の耐性;PDGF−AA,
BB、FGF、EGF等の成長因子に応答した平滑筋細
胞、内皮細胞、繊維芽細胞およびその他の細胞種の増殖
のような、細胞増殖または細胞活性の脱制御(例えば、
アテローム硬化、再狭窄、卒中および冠状動脈疾患);
ヒト免疫不全ウイルス感染(AIDSおよびAIDS関
連合併症);IL−1、mip−1α、PDGF、また
はFGFに応答した腎糸球体間質細胞の、種々の炎症性
腎臓疾患を引き起こす増殖;炎症;シクロスポリンA
(cyclosporin A)またはアムホテリシン
B(amphotericin B)治療に応答する腎
臓糸球体または腎臓管の毒性;細胞減少治療(例えば、
細胞毒性薬剤または放射線)に反応した器官中毒(例え
ば、胃腸上皮または肺上皮);非アルキル化抗癌剤の抗
癌作用の増強;細胞表面メタロプロテアーゼの生産また
はIgEに反応したマスト細胞および好塩基球の脱顆粒
反応(degranulation)を特徴とする、炎
症性刺激(例えば、TNF、IL−1およびこれらに類
するもの)への反応したアレルギー;破骨細胞による破
骨細胞活性化因子(OAF)の過剰生産による骨の疾
患;神経伝達物質エピネフリンおよびアセチルコリンに
よるシグナル伝達の減少による中枢神経系(CNS)疾
患;並びにこれらの組み合わせ。
細胞減少治療(cytoreductive therapies)又は微生物
性病原体の感染による血球細胞欠損(hematocytopeni
a);T細胞応答若しくはB細胞応答、および抗体の生
産による自己免疫疾患;敗血性ショック;腫瘍壊死因子
(TNF)に対する間葉細胞の耐性;PDGF−AA,
BB、FGF、EGF等の成長因子に応答した平滑筋細
胞、内皮細胞、繊維芽細胞およびその他の細胞種の増殖
のような、細胞増殖または細胞活性の脱制御(例えば、
アテローム硬化、再狭窄、卒中および冠状動脈疾患);
ヒト免疫不全ウイルス感染(AIDSおよびAIDS関
連合併症);IL−1、mip−1α、PDGF、また
はFGFに応答した腎糸球体間質細胞の、種々の炎症性
腎臓疾患を引き起こす増殖;炎症;シクロスポリンA
(cyclosporin A)またはアムホテリシン
B(amphotericin B)治療に応答する腎
臓糸球体または腎臓管の毒性;細胞減少治療(例えば、
細胞毒性薬剤または放射線)に反応した器官中毒(例え
ば、胃腸上皮または肺上皮);非アルキル化抗癌剤の抗
癌作用の増強;細胞表面メタロプロテアーゼの生産また
はIgEに反応したマスト細胞および好塩基球の脱顆粒
反応(degranulation)を特徴とする、炎
症性刺激(例えば、TNF、IL−1およびこれらに類
するもの)への反応したアレルギー;破骨細胞による破
骨細胞活性化因子(OAF)の過剰生産による骨の疾
患;神経伝達物質エピネフリンおよびアセチルコリンに
よるシグナル伝達の減少による中枢神経系(CNS)疾
患;並びにこれらの組み合わせ。
【0013】特定のサイトカインを発現するように、ま
たは、増殖刺激若しくは有毒な刺激に応答して増殖する
ように細胞が刺激される場合、この刺激は特異的なリン
脂質ベースの第二メッセンジャーシグナル伝達経路を介
して伝達される。この第二伝達経路により、sn−2非
アラキドン酸不飽和化合物を含む一群のホスファチジン
酸(PA)のレベルが上昇し、該ホスファチジン酸(P
A)は対応するジアシルグリセロール(DAG)に迅速
に変換される。本発明の化合物および医薬組成物は、ホ
スファチジルイノシトール(PI)経路のような、細胞
の正常な調節機能に関与する他の第二伝達経路に影響を
与えることなく、この第二伝達経路に関与する立体特異
的な酵素を特異的に抑制する。ここに記載する、該第二
伝達経路に関与する1つまたは複数の酵素の抑制による
効果は、刺激、特に有害な刺激に対する標的細胞の応答
を”調節”することである。この生化学な現象(即ち、
サイトカインのような一次刺激に応答する、第二伝達経
路酵素の活性の抑制)は細胞シグナルに影響を与え、異
常な、炎症性のまたは有害な細胞シグナル機構による多
くの多様な病状に効果を及ぼす。
たは、増殖刺激若しくは有毒な刺激に応答して増殖する
ように細胞が刺激される場合、この刺激は特異的なリン
脂質ベースの第二メッセンジャーシグナル伝達経路を介
して伝達される。この第二伝達経路により、sn−2非
アラキドン酸不飽和化合物を含む一群のホスファチジン
酸(PA)のレベルが上昇し、該ホスファチジン酸(P
A)は対応するジアシルグリセロール(DAG)に迅速
に変換される。本発明の化合物および医薬組成物は、ホ
スファチジルイノシトール(PI)経路のような、細胞
の正常な調節機能に関与する他の第二伝達経路に影響を
与えることなく、この第二伝達経路に関与する立体特異
的な酵素を特異的に抑制する。ここに記載する、該第二
伝達経路に関与する1つまたは複数の酵素の抑制による
効果は、刺激、特に有害な刺激に対する標的細胞の応答
を”調節”することである。この生化学な現象(即ち、
サイトカインのような一次刺激に応答する、第二伝達経
路酵素の活性の抑制)は細胞シグナルに影響を与え、異
常な、炎症性のまたは有害な細胞シグナル機構による多
くの多様な病状に効果を及ぼす。
【0014】
【課題を解決するための手段】本発明は、第二メッセン
ジャー伝達系(Burstenら.,J.Biol.C
hem.266:20732,1991)の特定の段階
において細胞の反応を制御することができる一群の特定
化合物に向けられている。第二メッセンジャーは脂質ま
たはリン脂質であり、以下の略語を使用する。
ジャー伝達系(Burstenら.,J.Biol.C
hem.266:20732,1991)の特定の段階
において細胞の反応を制御することができる一群の特定
化合物に向けられている。第二メッセンジャーは脂質ま
たはリン脂質であり、以下の略語を使用する。
【0015】PE=ホスファチジルエタノールアミン LPE=リソホスフォエタノールアミン PA=ホスファチジン酸 LPA=リソホスファチジン酸 DAG=ジアシルグリセロール LPLD=リソホスフォリパーゼ−D LPAAT=リソホスファチジン酸アシルトランスフェ
ラーゼ PAPH=ホスファチジン酸ホスフォヒドロラーゼ PLA2=ホスフォリパーゼA−2 PLD=ホスフォリパーゼD PAA=ホスフォアラキドン酸 PLA−2=ホスフォリパーゼA2 PC=ホスファチジルコリン ”再生成”PAサイクリック経路=所定のsn−1及び
sn−2位置において,L飽和の2−リノレオイルまた
は1,2−ジレオリル/1,2−sn−ジリノレオイルで
置換されたPAA、LPA、PAおよびDAG中間体 ”古典的PI経路”=1−ステアロイル,2−アラキド
ノイル脂肪酸アシル側鎖で置換されたPI、DAG、P
A中間体 ”PLDによって生成されるPA”=例えば、1,2−
sn−ジオレオイル、1−アルキル、2−リノレオイ
ル、および1−アルキル,2−ドコサヘキサノイル側鎖
によって置換されているPE、PC、LPA、PA、お
よびDAG中間体 リソホスファチジン酸トランスフェ
ラーゼ(LPAAT)は,アシルCoAからアシル基を
導入することによって、リソホスファチジン酸(LP
A)からのホスファチジン酸(PA)への合成に関与す
る。PAホスフォヒドロラーゼ(PAPH)によるホス
フェート部分の加水分解によってDAGが生成される。
経路のこれらの現象は、細胞表面上の受容体に働く一次
刺激(例えば、IL−1、IL−2またはTNFなどの
サイトカイン)による刺激によって直ちに(1分以内)
誘導されると思われる。迅速な検出可能な効果として
は、PAおよびDAGレベルの上昇がある。本発明の化
合物の投与によってこの上昇が抑制される。
ラーゼ PAPH=ホスファチジン酸ホスフォヒドロラーゼ PLA2=ホスフォリパーゼA−2 PLD=ホスフォリパーゼD PAA=ホスフォアラキドン酸 PLA−2=ホスフォリパーゼA2 PC=ホスファチジルコリン ”再生成”PAサイクリック経路=所定のsn−1及び
sn−2位置において,L飽和の2−リノレオイルまた
は1,2−ジレオリル/1,2−sn−ジリノレオイルで
置換されたPAA、LPA、PAおよびDAG中間体 ”古典的PI経路”=1−ステアロイル,2−アラキド
ノイル脂肪酸アシル側鎖で置換されたPI、DAG、P
A中間体 ”PLDによって生成されるPA”=例えば、1,2−
sn−ジオレオイル、1−アルキル、2−リノレオイ
ル、および1−アルキル,2−ドコサヘキサノイル側鎖
によって置換されているPE、PC、LPA、PA、お
よびDAG中間体 リソホスファチジン酸トランスフェ
ラーゼ(LPAAT)は,アシルCoAからアシル基を
導入することによって、リソホスファチジン酸(LP
A)からのホスファチジン酸(PA)への合成に関与す
る。PAホスフォヒドロラーゼ(PAPH)によるホス
フェート部分の加水分解によってDAGが生成される。
経路のこれらの現象は、細胞表面上の受容体に働く一次
刺激(例えば、IL−1、IL−2またはTNFなどの
サイトカイン)による刺激によって直ちに(1分以内)
誘導されると思われる。迅速な検出可能な効果として
は、PAおよびDAGレベルの上昇がある。本発明の化
合物の投与によってこの上昇が抑制される。
【0016】本発明の化合物および医薬組成物は、1,
2−ジ不飽和および1−アルキル,2−不飽和亜種を有
する中間体に対する基質特異性を有する、PAPH酵素
のLPAAT亜種のインヒビターを含む。そのようなイ
ンヒビターの代表的な例の1つは(本発明の化合物には
含まれないが)PTXである。PIは含まず、主に1,
2−ジ不飽和および1−アルキル,2−不飽和亜種から
なるPAに由来する特異的な活性経路において、PTX
はPAPHをブロックする。これは、例えば、TNFで
刺激されたヒト糸球体間質細胞はPIからDAGを生産
し、PTX非存在下および存在下でPIを再生する現象
によって示される。後者の機構でPAまたはDAGがP
I以外のソース(source)から由来することを示
唆する証拠は何もない。本発明の化合物は、sn−2位
置にアラキドン酸以外の不飽和脂肪酸を有する基質に関
与する一群のPAPHおよびLPAATに影響を与える
が、これらの酵素のPI経路に関与する調節機能型には
与えないことを強調したい。
2−ジ不飽和および1−アルキル,2−不飽和亜種を有
する中間体に対する基質特異性を有する、PAPH酵素
のLPAAT亜種のインヒビターを含む。そのようなイ
ンヒビターの代表的な例の1つは(本発明の化合物には
含まれないが)PTXである。PIは含まず、主に1,
2−ジ不飽和および1−アルキル,2−不飽和亜種から
なるPAに由来する特異的な活性経路において、PTX
はPAPHをブロックする。これは、例えば、TNFで
刺激されたヒト糸球体間質細胞はPIからDAGを生産
し、PTX非存在下および存在下でPIを再生する現象
によって示される。後者の機構でPAまたはDAGがP
I以外のソース(source)から由来することを示
唆する証拠は何もない。本発明の化合物は、sn−2位
置にアラキドン酸以外の不飽和脂肪酸を有する基質に関
与する一群のPAPHおよびLPAATに影響を与える
が、これらの酵素のPI経路に関与する調節機能型には
与えないことを強調したい。
【0017】膜リン脂質の各サブクラス(例えば、P
A、PI、PE、PCおよびPS)は、各サブクラスの
代謝回転(trunover)と共に原形質膜の循環再
生産によって、一定量の特徴的な脂肪性アシル側鎖を有
する。PAはおおむね安定であるが、比較的少量しか存
在しない。休止細胞中のPAは、主に、通常ミリスチン
酸、ステアリン酸およびパルミチン酸からなる飽和アシ
ル側鎖から構成される。休止細胞では、PCのアシル側
鎖は、sn−1位置のアシルパルミチン酸およsn−2
位置のオレイン酸からなる。PEおよびPIは主に、s
n−1ステアリン酸およびsn−2アラキドン酸からな
る。
A、PI、PE、PCおよびPS)は、各サブクラスの
代謝回転(trunover)と共に原形質膜の循環再
生産によって、一定量の特徴的な脂肪性アシル側鎖を有
する。PAはおおむね安定であるが、比較的少量しか存
在しない。休止細胞中のPAは、主に、通常ミリスチン
酸、ステアリン酸およびパルミチン酸からなる飽和アシ
ル側鎖から構成される。休止細胞では、PCのアシル側
鎖は、sn−1位置のアシルパルミチン酸およsn−2
位置のオレイン酸からなる。PEおよびPIは主に、s
n−1ステアリン酸およびsn−2アラキドン酸からな
る。
【0018】このように特徴的アシル基をsn−1およ
びsn−2の位置に有することから、PA種の由来は、
sn−1およびsn−2の位置のアシル基の化学的性質
から導き出すことができる。例えば、PAが酵素PLD
の働きによってPCに由来する場合には、第二伝達経路
を経由したPC基質に特徴的なアシル側鎖を含むであろ
う。さらに、全ての1,2sn−基質種の由来は、その
由来に従って識別されるであろう。しかし、各リン脂質
種がDAGに加水分解される前にPAの型を経由するか
否かを知ることが重要である。PAに、続いてDAGに
変換されるリソ−PAが示されるであろう。この第二伝
達経路の複雑さについては、第二メッセンジャーの刺激
の後、所定の時間経過後の細胞における中間体の脂肪性
アシル側鎖化学(即ち、薄層クロマトグラフィーまたは
高圧液体クロマトグラフィー)の適切な分析によって解
決することができる。
びsn−2の位置に有することから、PA種の由来は、
sn−1およびsn−2の位置のアシル基の化学的性質
から導き出すことができる。例えば、PAが酵素PLD
の働きによってPCに由来する場合には、第二伝達経路
を経由したPC基質に特徴的なアシル側鎖を含むであろ
う。さらに、全ての1,2sn−基質種の由来は、その
由来に従って識別されるであろう。しかし、各リン脂質
種がDAGに加水分解される前にPAの型を経由するか
否かを知ることが重要である。PAに、続いてDAGに
変換されるリソ−PAが示されるであろう。この第二伝
達経路の複雑さについては、第二メッセンジャーの刺激
の後、所定の時間経過後の細胞における中間体の脂肪性
アシル側鎖化学(即ち、薄層クロマトグラフィーまたは
高圧液体クロマトグラフィー)の適切な分析によって解
決することができる。
【0019】好中球、並びに、ラット若しくはヒト糸球
体間質細胞のようなある種の糸球体間質細胞において
は、数種のシグナル伝達経路が直列的に、同時に、また
はその両方で活性化されると考えられる。例えば、好中
球においては、F−Met−Leu−PheはPLDの
作用を介してPAの形成を刺激し、やがて、ひき続いて
PAPHの作用を介してDAGが形成される。数分後、
古典的ホスフォイノシトール経路を通してPIからDA
Gが生成される。多くの細胞では、DAGは、PAAが
PLA−2によってsn−2加水分解され続いてLPA
ATによってsn−2トランスアシル化されるサイクル
によって再生成されたPA、並びにPLDによってP
E、PCまたはその双方の基質から生成されたPAから
のPLD経路の両方から生成される。
体間質細胞のようなある種の糸球体間質細胞において
は、数種のシグナル伝達経路が直列的に、同時に、また
はその両方で活性化されると考えられる。例えば、好中
球においては、F−Met−Leu−PheはPLDの
作用を介してPAの形成を刺激し、やがて、ひき続いて
PAPHの作用を介してDAGが形成される。数分後、
古典的ホスフォイノシトール経路を通してPIからDA
Gが生成される。多くの細胞では、DAGは、PAAが
PLA−2によってsn−2加水分解され続いてLPA
ATによってsn−2トランスアシル化されるサイクル
によって再生成されたPA、並びにPLDによってP
E、PCまたはその双方の基質から生成されたPAから
のPLD経路の両方から生成される。
【0020】ここに記載される方法は、PAおよびDA
Gの多様な亜種をアシル鎖組成に基づいて識別すること
を可能にする。この方法によって、本発明の第二伝達経
路を古典的PI経路のような他の経路と区別して活性化
する(および活性を抑制する)化合物を区別することが
できる。本発明の第二伝達経路は、sn−2位置にアラ
キドン酸塩以外の不飽和脂肪酸を有する基質、並びに、
古典的PI経路の一部である正常な細胞調節機構に関与
しないPAPHおよびLPAATの亜種を含む。本発明
の第二伝達経路に関与するPAPHおよびLPAAT酵
素は、基質の異なるアシル側鎖および異性体型に対し精
密に立体特異的である。従って、本発明の化合物は、実
質的に純粋な鏡像異性体であり、好ましくは水酸基に結
合したキラル炭素原子においてR鏡像異性体である。例
えば、CT1501のRとSの異性体は、図12に示し
たように異なるLPAAT抑制活性を持っている。さら
に、CT1501のR鏡像異性体(例えば、CT150
1R)は、ラセミ混合物(以下、M1と呼ぶ)より2−
3倍、そして、対応するS鏡像異性体よりさらにその何
倍もの効果を及ぼす。さらにまた、PTXはヒト体内で
代謝されると、ほとんどがM1のSエナチオマー、また
はCT1501Sに変換される。
Gの多様な亜種をアシル鎖組成に基づいて識別すること
を可能にする。この方法によって、本発明の第二伝達経
路を古典的PI経路のような他の経路と区別して活性化
する(および活性を抑制する)化合物を区別することが
できる。本発明の第二伝達経路は、sn−2位置にアラ
キドン酸塩以外の不飽和脂肪酸を有する基質、並びに、
古典的PI経路の一部である正常な細胞調節機構に関与
しないPAPHおよびLPAATの亜種を含む。本発明
の第二伝達経路に関与するPAPHおよびLPAAT酵
素は、基質の異なるアシル側鎖および異性体型に対し精
密に立体特異的である。従って、本発明の化合物は、実
質的に純粋な鏡像異性体であり、好ましくは水酸基に結
合したキラル炭素原子においてR鏡像異性体である。例
えば、CT1501のRとSの異性体は、図12に示し
たように異なるLPAAT抑制活性を持っている。さら
に、CT1501のR鏡像異性体(例えば、CT150
1R)は、ラセミ混合物(以下、M1と呼ぶ)より2−
3倍、そして、対応するS鏡像異性体よりさらにその何
倍もの効果を及ぼす。さらにまた、PTXはヒト体内で
代謝されると、ほとんどがM1のSエナチオマー、また
はCT1501Sに変換される。
【0021】PTX(in vitro)は(用量限度
副作用を起こさずに患者に与えられる濃度を越えた)高
い濃度において、LPAATにおけるPA亜種の生成を
阻害することによってPA/DAG経路を介した再生成
PAの形成を阻害する。PTXの存在下においてさえ
も、細胞はPLDの働きによってPAを生産し続け、ま
たDAGもホスフォリパーゼCの作用によってPCおよ
びPIから生成される。後者の経路は本発明の化合物ま
たはPTXによって抑制されない。PTX処理した細胞
では、再生成またはPLAによって生成されるPAに由
来するDAG(例えば、1,2−sn−ジオレオイルD
AG、1−アルキル,2−リノレオイルDAG、および
1−アルキル,2−ドコサヘキサンオリルDAG)は消
失する。従って、本発明の化合物およびPTXは、有害
な刺激によって細胞内で活性化されるが、正常な細胞調
節機構のシグナル伝達には利用されない、特異的な第二
伝達経路を選択的に抑制することによって、特定の種の
PAおよびDAGの生成のみを抑制する。
副作用を起こさずに患者に与えられる濃度を越えた)高
い濃度において、LPAATにおけるPA亜種の生成を
阻害することによってPA/DAG経路を介した再生成
PAの形成を阻害する。PTXの存在下においてさえ
も、細胞はPLDの働きによってPAを生産し続け、ま
たDAGもホスフォリパーゼCの作用によってPCおよ
びPIから生成される。後者の経路は本発明の化合物ま
たはPTXによって抑制されない。PTX処理した細胞
では、再生成またはPLAによって生成されるPAに由
来するDAG(例えば、1,2−sn−ジオレオイルD
AG、1−アルキル,2−リノレオイルDAG、および
1−アルキル,2−ドコサヘキサンオリルDAG)は消
失する。従って、本発明の化合物およびPTXは、有害
な刺激によって細胞内で活性化されるが、正常な細胞調
節機構のシグナル伝達には利用されない、特異的な第二
伝達経路を選択的に抑制することによって、特定の種の
PAおよびDAGの生成のみを抑制する。
【0022】本発明の化合物の治療上の用途 主に種々の有害な刺激によって活性化される特異的な第
二伝達経路の活性化の特異的な抑制は、本発明の化合物
に多様な臨床適応症を治療するのに使用できる可能性を
提供する。さらに、例えば炎症性サイトカインを介した
有害刺激によって活性化されるが、本発明の化合物によ
って特異的に抑制される、特異的な第二メッセンジャー
の活性化という共通点を共にする、多様な臨床適応症の
予想データが、ここに示されたin vitroおよび
in vivoのデータによって提供される。実際、本
発明の化合物が多様な異なる臨床適応を有することがで
きる理由は、本発明の化合物のこの活性機構によって説
明される。本発明の第二伝達経路の活性化は、有害な刺
激に対する応答の主要な媒体であり、例えば、炎症、免
疫応答、血球細胞の再生の抑制および癌細胞の増殖を引
き起こす細胞シグナルとなる。しかし、全てのインヒビ
ターがこの第二伝達経路の全ての酵素を阻害するわけで
はない。本発明の化合物は、炎症および血球細胞再生抑
制の最も効果的な媒体である。本発明の第二伝達経路に
よって伝達されるシグナルには、例えば、LPSによる
直接の細胞応答、抗原によるT細胞活性化、抗原による
B細胞活性化、IL−1 タイプ1受容体によって伝達
される(IL−1 タイプ2受容体によっては伝達され
ない)IL−1に対する細胞応答、TNF タイプ1受
容体、活性化癌遺伝子(例えば、ras,abl,he
r2−neu等)、低親和性GM−CSF(顆粒球マク
ロファージコロニー刺激因子)受容体、並びに、PDG
F、b−FGFおよびIL−1によって刺激された平滑
筋細胞増殖が含まれる。本発明の第二伝達経路を介して
は伝達されないシグナルもあり、これらのシグナルに
は、例えば、G−CSF(顆粒球コロニー刺激因子)、
インターロイキン−3(IL−3)、SCF(幹細胞因
子)およびGM−CSFによって誘導された造血細胞の
増殖;インターロイキン−8(IL−8)またはロイコ
トリエンB4によって誘導された好中球活性;IL−2
に応答したT細胞増殖;並びに酸性FGF(繊維芽細胞
成長因子)に応答した上皮細胞増殖、が含まれる。
二伝達経路の活性化の特異的な抑制は、本発明の化合物
に多様な臨床適応症を治療するのに使用できる可能性を
提供する。さらに、例えば炎症性サイトカインを介した
有害刺激によって活性化されるが、本発明の化合物によ
って特異的に抑制される、特異的な第二メッセンジャー
の活性化という共通点を共にする、多様な臨床適応症の
予想データが、ここに示されたin vitroおよび
in vivoのデータによって提供される。実際、本
発明の化合物が多様な異なる臨床適応を有することがで
きる理由は、本発明の化合物のこの活性機構によって説
明される。本発明の第二伝達経路の活性化は、有害な刺
激に対する応答の主要な媒体であり、例えば、炎症、免
疫応答、血球細胞の再生の抑制および癌細胞の増殖を引
き起こす細胞シグナルとなる。しかし、全てのインヒビ
ターがこの第二伝達経路の全ての酵素を阻害するわけで
はない。本発明の化合物は、炎症および血球細胞再生抑
制の最も効果的な媒体である。本発明の第二伝達経路に
よって伝達されるシグナルには、例えば、LPSによる
直接の細胞応答、抗原によるT細胞活性化、抗原による
B細胞活性化、IL−1 タイプ1受容体によって伝達
される(IL−1 タイプ2受容体によっては伝達され
ない)IL−1に対する細胞応答、TNF タイプ1受
容体、活性化癌遺伝子(例えば、ras,abl,he
r2−neu等)、低親和性GM−CSF(顆粒球マク
ロファージコロニー刺激因子)受容体、並びに、PDG
F、b−FGFおよびIL−1によって刺激された平滑
筋細胞増殖が含まれる。本発明の第二伝達経路を介して
は伝達されないシグナルもあり、これらのシグナルに
は、例えば、G−CSF(顆粒球コロニー刺激因子)、
インターロイキン−3(IL−3)、SCF(幹細胞因
子)およびGM−CSFによって誘導された造血細胞の
増殖;インターロイキン−8(IL−8)またはロイコ
トリエンB4によって誘導された好中球活性;IL−2
に応答したT細胞増殖;並びに酸性FGF(繊維芽細胞
成長因子)に応答した上皮細胞増殖、が含まれる。
【0023】In vitroでは本発明の化合物は下
記の機能を有する: (1)例えば、IL−1、およびPDGF(血小板由来
成長因子)を加えたIL−1によって誘導される平滑筋
細胞および腎臓糸球体間質細胞の増殖の抑制によって示
されるように、IL−1シグナルのタイプ1 受容体を
介した伝達を阻止する; (2)例えば、好中球のCD18の上皮細胞における管
細胞接着分子(VCAM)の阻止によって示されるよう
に、接着分子の調節を抑制する; (3)TNFおよびIL−1によって誘導されるメタロ
プロテアーゼを抑制する(炎症のモデル); (4)LPS誘導細胞活性化を阻止する(敗血症ショッ
クの予防および治療); (5)抗原または架橋CD複合体によるT細胞およびB
細胞の活性化を抑制する; (6)IgGによるマスト細胞活性化を抑制する;そし
て (7)形質転換細胞および癌細胞系の悪性表現型を抑制
する。
記の機能を有する: (1)例えば、IL−1、およびPDGF(血小板由来
成長因子)を加えたIL−1によって誘導される平滑筋
細胞および腎臓糸球体間質細胞の増殖の抑制によって示
されるように、IL−1シグナルのタイプ1 受容体を
介した伝達を阻止する; (2)例えば、好中球のCD18の上皮細胞における管
細胞接着分子(VCAM)の阻止によって示されるよう
に、接着分子の調節を抑制する; (3)TNFおよびIL−1によって誘導されるメタロ
プロテアーゼを抑制する(炎症のモデル); (4)LPS誘導細胞活性化を阻止する(敗血症ショッ
クの予防および治療); (5)抗原または架橋CD複合体によるT細胞およびB
細胞の活性化を抑制する; (6)IgGによるマスト細胞活性化を抑制する;そし
て (7)形質転換細胞および癌細胞系の悪性表現型を抑制
する。
【0024】前述のin vitro効果から、以下の
ようなin vivo生物学的効果が得られる。該in
vivo生物学的効果には、内毒素ショックの予防およ
び治療、癌細胞増殖の抑制、細胞減少治療後の造血細胞
の刺激、GVHD(移植細胞対宿主病)予防のための相
乗的免疫抑制、および細胞枯死過程(apoptoti
c process)の抑制を介した育毛の刺激が含ま
れるがこれらに限られない。内毒素ショックの治療およ
び予防、細胞減少治療後の造血細胞の刺激、およびヌー
ドマウスにおける育毛の刺激に関するin vivoの
データをここに示す。本発明の化合物、特にCT150
1Rは、造血の刺激、敗血症ショックの予防および治
療、並びに局所的に育毛の刺激に利用するために適用し
た場合に最も効果がある。本発明の第二伝達経路の抑制
剤は免疫抑制、急性炎症、慢性炎症およびGVHDに対
しても活性を有するが、本発明の化合物は、これらに対
しては前述の症状に対する程有効でなく、より高い分子
濃度を必要とする。
ようなin vivo生物学的効果が得られる。該in
vivo生物学的効果には、内毒素ショックの予防およ
び治療、癌細胞増殖の抑制、細胞減少治療後の造血細胞
の刺激、GVHD(移植細胞対宿主病)予防のための相
乗的免疫抑制、および細胞枯死過程(apoptoti
c process)の抑制を介した育毛の刺激が含ま
れるがこれらに限られない。内毒素ショックの治療およ
び予防、細胞減少治療後の造血細胞の刺激、およびヌー
ドマウスにおける育毛の刺激に関するin vivoの
データをここに示す。本発明の化合物、特にCT150
1Rは、造血の刺激、敗血症ショックの予防および治
療、並びに局所的に育毛の刺激に利用するために適用し
た場合に最も効果がある。本発明の第二伝達経路の抑制
剤は免疫抑制、急性炎症、慢性炎症およびGVHDに対
しても活性を有するが、本発明の化合物は、これらに対
しては前述の症状に対する程有効でなく、より高い分子
濃度を必要とする。
【0025】本発明の化合物はさらに、本発明の第二伝
達経路を通じて伝達される薬剤の副作用を抑制する補助
剤として有用である。これらの副作用には、例えば、イ
ンターロイキン−2(IL−2)の副作用、シクロスポ
リンAおよびFK506の腎臓副作用、並びにアンホテ
リシンBの副作用が含まれる。本発明の化合物は、抗原
誘導されるT細胞の活性化を抑制する点はシクロスポリ
ンまたはFK506と共通するが、NKおよびLAK細
胞の生成を阻害せず、T細胞からのIL−2の遊離およ
びIL−8の遊離を抑制しない点は異なることに注目す
べきである。
達経路を通じて伝達される薬剤の副作用を抑制する補助
剤として有用である。これらの副作用には、例えば、イ
ンターロイキン−2(IL−2)の副作用、シクロスポ
リンAおよびFK506の腎臓副作用、並びにアンホテ
リシンBの副作用が含まれる。本発明の化合物は、抗原
誘導されるT細胞の活性化を抑制する点はシクロスポリ
ンまたはFK506と共通するが、NKおよびLAK細
胞の生成を阻害せず、T細胞からのIL−2の遊離およ
びIL−8の遊離を抑制しない点は異なることに注目す
べきである。
【0026】メタロプロテアーゼは、腎糸球体疾患、関
節炎による関節破壊、および気腫による肺破壊のような
組織破壊を媒介し、癌転移に関与する。メタロプロテア
ーゼの3種類の例として、TNF、IL−1、およびP
DGF+bFGFによって誘導される92kDタイプV
ゼラチナーゼ、通常は構成酵素であり、TNF若しくは
IL−1によって誘導もされる72kDタイプIVコラゲ
ナーゼ、並びに、TNF若しくはIL−1によって誘導
されるストロメリシン/PUMP−1が挙げられる。本
発明の化合物は、TNFまたはIL−1による92kD
タイプVゼラチナーゼ誘導性メタロプロテアーゼを抑制
することができる。さらに、CT1501Rは100U
/mlのIL−1によって誘導されたPUMP−1活性
をコントール値の15%に減少させた。同じ実験によっ
て対照してみると、PTXはコントール値の95%にし
か減少させず、この値は有意ではなかった。従って、本
発明の化合物は、IL−1若しくはTNFによって誘導
されるある種のメタロプロテアーゼの誘導を阻害する
が、正常な組織再生成に関与する構成性のプロテアーゼ
(例えば、72kDタイプIVコラゲナーゼ)には関与し
ない。
節炎による関節破壊、および気腫による肺破壊のような
組織破壊を媒介し、癌転移に関与する。メタロプロテア
ーゼの3種類の例として、TNF、IL−1、およびP
DGF+bFGFによって誘導される92kDタイプV
ゼラチナーゼ、通常は構成酵素であり、TNF若しくは
IL−1によって誘導もされる72kDタイプIVコラゲ
ナーゼ、並びに、TNF若しくはIL−1によって誘導
されるストロメリシン/PUMP−1が挙げられる。本
発明の化合物は、TNFまたはIL−1による92kD
タイプVゼラチナーゼ誘導性メタロプロテアーゼを抑制
することができる。さらに、CT1501Rは100U
/mlのIL−1によって誘導されたPUMP−1活性
をコントール値の15%に減少させた。同じ実験によっ
て対照してみると、PTXはコントール値の95%にし
か減少させず、この値は有意ではなかった。従って、本
発明の化合物は、IL−1若しくはTNFによって誘導
されるある種のメタロプロテアーゼの誘導を阻害する
が、正常な組織再生成に関与する構成性のプロテアーゼ
(例えば、72kDタイプIVコラゲナーゼ)には関与し
ない。
【0027】本発明の化合物はタイプIIL−1受容体
を介したシグナル伝達を阻害するので、IL−1アンタ
ゴニストであると考えられる。”疾患におけるインター
ロイキン−1の機能”(Dinarello と Wol
ff N.Engl.J.Med.328,106,J
an.14,1993)という題名の最近の総説には、
IL−1の機能は”疾患の重要、迅速かつ直接的な決定
因子”であると記載されている。”例えば、敗血症で
は、IL−1は血管に直接働きかけて血小板活性化因子
および一酸化窒素の迅速な生産を介して血管拡張を誘導
する。一方、自己免疫疾患では、他の細胞を刺激して標
的細胞に働くサイトカインまたは酵素を生産させる。”
この総説は、IL−1によって媒介される一群の病気に
ついて記載している。それらには、敗血症症候群、関節
リウマチ、炎症性腸疾患、急性および骨髄性白血病、イ
ンシュリン依存性真性糖尿病、アテローム硬化、並び
に、移植拒絶、移植細胞対宿主病(GVHD),乾癬、
ぜん息、オステオポローシス、歯根膜疾患、自己免疫甲
状腺炎、アルコール性肝炎、子宮感染に伴う早期分娩、
さらに睡眠障害までも含むその他の病気、が含まれる。
本発明の化合物はIL−1 タイプI受容体を介した細胞
シグナルを抑制するIL−1アンタゴニストなので、上
述した全ての疾患の治療に有用である。
を介したシグナル伝達を阻害するので、IL−1アンタ
ゴニストであると考えられる。”疾患におけるインター
ロイキン−1の機能”(Dinarello と Wol
ff N.Engl.J.Med.328,106,J
an.14,1993)という題名の最近の総説には、
IL−1の機能は”疾患の重要、迅速かつ直接的な決定
因子”であると記載されている。”例えば、敗血症で
は、IL−1は血管に直接働きかけて血小板活性化因子
および一酸化窒素の迅速な生産を介して血管拡張を誘導
する。一方、自己免疫疾患では、他の細胞を刺激して標
的細胞に働くサイトカインまたは酵素を生産させる。”
この総説は、IL−1によって媒介される一群の病気に
ついて記載している。それらには、敗血症症候群、関節
リウマチ、炎症性腸疾患、急性および骨髄性白血病、イ
ンシュリン依存性真性糖尿病、アテローム硬化、並び
に、移植拒絶、移植細胞対宿主病(GVHD),乾癬、
ぜん息、オステオポローシス、歯根膜疾患、自己免疫甲
状腺炎、アルコール性肝炎、子宮感染に伴う早期分娩、
さらに睡眠障害までも含むその他の病気、が含まれる。
本発明の化合物はIL−1 タイプI受容体を介した細胞
シグナルを抑制するIL−1アンタゴニストなので、上
述した全ての疾患の治療に有用である。
【0028】例えば、敗血症症候群では、「IL−1誘
導ショックの機構は、血小板活性化因子、プロスタグラ
ンジンおよび一酸化窒素のような小さな媒介分子の原形
質濃度を増加させることができるIL−1の機能による
と思われる。これらは、効果的な血管拡張因子であり、
研究用動物にショックを引き起こす。IL−1の活性を
阻止するとこれらの媒介分子の合成および放出が防止さ
れる。動物では、IL−1を一回静脈注入すると、平均
動脈圧が減少し、全身血管抵抗が下がり、そして白血球
減少および血小板減少が引き起こされる。ヒトにおいて
も、IL−1を静脈投与すると、同様に急速に血圧が下
がり、1日に体重1kgあたり300ng以上服用する
と著しい低血圧が引き起こされる。」「IL−1活性を
阻止する治療上の利点は、恒常性に関与する分子の生成
に影響を与えずに、有害な生物学的作用を防止できる点
にある。」本発明の化合物は、IL−1 タイプII受容
体を介した細胞シグナルに影響を与えずに、IL−1
タイプI受容体を介した細胞シグナルのみを抑制するこ
とによって、Dinarelloによって見いだされた
要求を満たしている。
導ショックの機構は、血小板活性化因子、プロスタグラ
ンジンおよび一酸化窒素のような小さな媒介分子の原形
質濃度を増加させることができるIL−1の機能による
と思われる。これらは、効果的な血管拡張因子であり、
研究用動物にショックを引き起こす。IL−1の活性を
阻止するとこれらの媒介分子の合成および放出が防止さ
れる。動物では、IL−1を一回静脈注入すると、平均
動脈圧が減少し、全身血管抵抗が下がり、そして白血球
減少および血小板減少が引き起こされる。ヒトにおいて
も、IL−1を静脈投与すると、同様に急速に血圧が下
がり、1日に体重1kgあたり300ng以上服用する
と著しい低血圧が引き起こされる。」「IL−1活性を
阻止する治療上の利点は、恒常性に関与する分子の生成
に影響を与えずに、有害な生物学的作用を防止できる点
にある。」本発明の化合物は、IL−1 タイプII受容
体を介した細胞シグナルに影響を与えずに、IL−1
タイプI受容体を介した細胞シグナルのみを抑制するこ
とによって、Dinarelloによって見いだされた
要求を満たしている。
【0029】関節リウマチについては、Dinarel
loは以下のように述べている;「インターロイキン−
1が、関節リウマチの患者の滑膜(synovial
lining)および滑液に存在し、そのような患者由
来の滑膜組織の組織片はinvitroでIL−1を生
産する。関節内にインターロイキン−1を注入すると、
白血球浸潤、軟骨破壊、および関節周囲の骨の再生が動
物に誘導される。単離された軟骨細胞および骨細胞にお
いてin vitroで、インターロイキン−1は、ホ
スフォリパーゼおよびシクロオキシゲナーゼの遺伝子、
並びにコラゲナーゼの遺伝子の発現の引き金となり、そ
の活性を阻止することによって、ラットの細菌−細胞壁
誘導関節炎が減少される。」 従って、本発明の化合物
はIL−1アンタゴニストとして関節リウマチの治療お
よび予防に有用である。
loは以下のように述べている;「インターロイキン−
1が、関節リウマチの患者の滑膜(synovial
lining)および滑液に存在し、そのような患者由
来の滑膜組織の組織片はinvitroでIL−1を生
産する。関節内にインターロイキン−1を注入すると、
白血球浸潤、軟骨破壊、および関節周囲の骨の再生が動
物に誘導される。単離された軟骨細胞および骨細胞にお
いてin vitroで、インターロイキン−1は、ホ
スフォリパーゼおよびシクロオキシゲナーゼの遺伝子、
並びにコラゲナーゼの遺伝子の発現の引き金となり、そ
の活性を阻止することによって、ラットの細菌−細胞壁
誘導関節炎が減少される。」 従って、本発明の化合物
はIL−1アンタゴニストとして関節リウマチの治療お
よび予防に有用である。
【0030】炎症性腸疾患については、潰瘍性大腸炎お
よびクローン病(限局性回腸炎)は、活性化された好中
球およびマクロファージを含む、腸の浸潤性病巣によっ
て特徴付けられる。IL−1は、プロスタグランジンE
2(PGE2)およびロイコトリエンB4(LTB4)のよ
うな炎症性エイコサノイド(eicosanoid)、
並びにIL−8(好中球化学誘因機能および好中球刺激
機能を有する炎症性サイトカイン)の生成を誘導するこ
とができる。PGE2およびLTB4の組織内濃度は潰瘍
性大腸炎を病む患者の重病度と関連し、炎症性腸疾患を
病む患者ではIL−1およびIL−8の組織内濃度が高
い。従って、本発明の化合物のようなIL−1アンタゴ
ニストは炎症性腸疾患の治療に効果的であろう。
よびクローン病(限局性回腸炎)は、活性化された好中
球およびマクロファージを含む、腸の浸潤性病巣によっ
て特徴付けられる。IL−1は、プロスタグランジンE
2(PGE2)およびロイコトリエンB4(LTB4)のよ
うな炎症性エイコサノイド(eicosanoid)、
並びにIL−8(好中球化学誘因機能および好中球刺激
機能を有する炎症性サイトカイン)の生成を誘導するこ
とができる。PGE2およびLTB4の組織内濃度は潰瘍
性大腸炎を病む患者の重病度と関連し、炎症性腸疾患を
病む患者ではIL−1およびIL−8の組織内濃度が高
い。従って、本発明の化合物のようなIL−1アンタゴ
ニストは炎症性腸疾患の治療に効果的であろう。
【0031】急性および慢性の骨髄性白血病について
は、IL−1がこのような癌細胞に対する増殖因子とし
て機能することを示す証拠が次々と得られている。従っ
て、本発明の化合物は、急性および慢性の骨髄性白血病
が悪化するのを防止するのに効果的であると思われる。
は、IL−1がこのような癌細胞に対する増殖因子とし
て機能することを示す証拠が次々と得られている。従っ
て、本発明の化合物は、急性および慢性の骨髄性白血病
が悪化するのを防止するのに効果的であると思われる。
【0032】インシュリン依存性真性糖尿病(IDD
M)は、ランゲルハンス島のβ細胞の破壊による自己免
疫疾患で、免疫担当細胞によって媒介されると考えられ
ている。自然発生のIDDM動物(BBラットまたはN
ODマウス)のランゲルハンス島は、IL−1を含む炎
症性細胞を有する。従って、本発明の化合物は、IDD
Mの予防および治療に有用であると思われる。
M)は、ランゲルハンス島のβ細胞の破壊による自己免
疫疾患で、免疫担当細胞によって媒介されると考えられ
ている。自然発生のIDDM動物(BBラットまたはN
ODマウス)のランゲルハンス島は、IL−1を含む炎
症性細胞を有する。従って、本発明の化合物は、IDD
Mの予防および治療に有用であると思われる。
【0033】IL−1はアテローム硬化症の発生にも関
与している。内皮細胞はIL−1の標的である。IL−
1は管状平滑筋細胞の増殖を刺激する。高コレステロー
ル症ウサギ由来の脂肪性動脈プラークから単離された気
泡細胞は、IL−1βおよびIL−1βメッセンジャー
RNAを含んでいる。末梢血液単球に取り込まれると、
これらの細胞によるIL−1が生産が開始される。IL
−1はPDGFの生産も刺激する。これらのことを合わ
せて考えると、IL−1はアテローム硬化病変の進行に
関与しているといえる。従って、本発明の化合物のよう
なIL−1アンタゴニストは、アテローム硬化の予防お
よび治療に有用であると思われる。
与している。内皮細胞はIL−1の標的である。IL−
1は管状平滑筋細胞の増殖を刺激する。高コレステロー
ル症ウサギ由来の脂肪性動脈プラークから単離された気
泡細胞は、IL−1βおよびIL−1βメッセンジャー
RNAを含んでいる。末梢血液単球に取り込まれると、
これらの細胞によるIL−1が生産が開始される。IL
−1はPDGFの生産も刺激する。これらのことを合わ
せて考えると、IL−1はアテローム硬化病変の進行に
関与しているといえる。従って、本発明の化合物のよう
なIL−1アンタゴニストは、アテローム硬化の予防お
よび治療に有用であると思われる。
【0034】本発明の化合物の生理学的および薬理学的
効果のIn vitroアッセイ 本発明の化合物の、免疫活性を調節し抗癌活性を有する
作用についての測定には、様々の細胞系を用いた多様な
in vitro分析を用いることができる。例えば、
混合白血球反応(MLR)は本発明の各化合物の生物学
的活性を決定するための有効なスクリーニング法を提供
する。MLRにおいて、PBMCs(末梢血液単球細
胞)は、健常な志願者の全血液を凝血防止のためにヘパ
リンを含んだ容器に採血し、等量のハンクス塩平衡化溶
液(HBSS)で希釈することによって得る。この混合
物をFicoll−HypaqueR勾配(比重1.0
8)のようなショ糖密度勾配に上層し、室温または冷却
して1000×gで25分間遠心する。PBMCを血漿
−フィコール界面のバンドから得て分離し、HBSSな
どの塩溶液で少なくとも2回は洗浄する。混入している
赤血球細胞をACK溶解(37℃、10分)などによっ
て溶解し、PBMCsをHBSS中で2回洗浄する。精
製PBMCsのペレットを完全培地、例えばRPMI1
640に20%ヒト不活性化血清を加えたもの、に再懸
濁する。96穴マイクロタイタープレート中で行う2種
類のMLRによって、同種異系刺激に対するPBMCの
増殖反応を決定する。簡単に述べると、完全培地200
μl中の約105個のテスト用精製PBMC細胞を、約
105個の自己由来(コントロール培養物)またはHL
Aの異なる個体に由来する同種異系(刺激培養物)のP
BMC細胞と共培養する。細胞をマイクロタイタープレ
ートに加える時に、種々の用量の化合物(薬剤)を添加
する。培養物を5%CO2条件下、37℃で6日間イン
キュベートする。インキュベーションの最後にトリチウ
ム−チミジンを加え(例えば、40−60Ci/mmo
leのものを1μCi/ウェル)、液体シンチレーショ
ンカウンターで増殖を調べる。
効果のIn vitroアッセイ 本発明の化合物の、免疫活性を調節し抗癌活性を有する
作用についての測定には、様々の細胞系を用いた多様な
in vitro分析を用いることができる。例えば、
混合白血球反応(MLR)は本発明の各化合物の生物学
的活性を決定するための有効なスクリーニング法を提供
する。MLRにおいて、PBMCs(末梢血液単球細
胞)は、健常な志願者の全血液を凝血防止のためにヘパ
リンを含んだ容器に採血し、等量のハンクス塩平衡化溶
液(HBSS)で希釈することによって得る。この混合
物をFicoll−HypaqueR勾配(比重1.0
8)のようなショ糖密度勾配に上層し、室温または冷却
して1000×gで25分間遠心する。PBMCを血漿
−フィコール界面のバンドから得て分離し、HBSSな
どの塩溶液で少なくとも2回は洗浄する。混入している
赤血球細胞をACK溶解(37℃、10分)などによっ
て溶解し、PBMCsをHBSS中で2回洗浄する。精
製PBMCsのペレットを完全培地、例えばRPMI1
640に20%ヒト不活性化血清を加えたもの、に再懸
濁する。96穴マイクロタイタープレート中で行う2種
類のMLRによって、同種異系刺激に対するPBMCの
増殖反応を決定する。簡単に述べると、完全培地200
μl中の約105個のテスト用精製PBMC細胞を、約
105個の自己由来(コントロール培養物)またはHL
Aの異なる個体に由来する同種異系(刺激培養物)のP
BMC細胞と共培養する。細胞をマイクロタイタープレ
ートに加える時に、種々の用量の化合物(薬剤)を添加
する。培養物を5%CO2条件下、37℃で6日間イン
キュベートする。インキュベーションの最後にトリチウ
ム−チミジンを加え(例えば、40−60Ci/mmo
leのものを1μCi/ウェル)、液体シンチレーショ
ンカウンターで増殖を調べる。
【0035】CoAとインターロイキン−1(IL−
1)またはインターロイキン−2(IL−2)の刺激に
よって誘導された胸腺細胞の活性化および増殖の、本発
明の化合物による抑制効果を評価するために胸腺細胞共
刺激因子分析を行う。マウス(例えば、Balb/Cマ
ウスのメス)の胸腺を回収し、培養培地(例えば血清を
加えないRPMI1640)に分離する。分離された胸
腺組織および細胞懸濁液を遠心管に移して静置し、HB
SS洗浄し、血清を加えた培養培地(例えば、10%胎
児ウシ血清を加えたRPMI1640)に再懸濁する。
混入している赤血球細胞を全て溶解させ、生存している
細胞を再懸濁して数を数える。胸腺細胞をプレートし
(例えば、96穴プレートに密度2×105細胞/
穴)、刺激剤、例えば、Con A、IL−1(例えば
IL−1α)またはIL−2、をウェルに加える。細胞
を37℃で4日間インキュベートする。4日目に細胞を
トリチウム−チミジンでパルスし、増殖を調べる。本発
明の化合物は刺激剤添加と共に加える。
1)またはインターロイキン−2(IL−2)の刺激に
よって誘導された胸腺細胞の活性化および増殖の、本発
明の化合物による抑制効果を評価するために胸腺細胞共
刺激因子分析を行う。マウス(例えば、Balb/Cマ
ウスのメス)の胸腺を回収し、培養培地(例えば血清を
加えないRPMI1640)に分離する。分離された胸
腺組織および細胞懸濁液を遠心管に移して静置し、HB
SS洗浄し、血清を加えた培養培地(例えば、10%胎
児ウシ血清を加えたRPMI1640)に再懸濁する。
混入している赤血球細胞を全て溶解させ、生存している
細胞を再懸濁して数を数える。胸腺細胞をプレートし
(例えば、96穴プレートに密度2×105細胞/
穴)、刺激剤、例えば、Con A、IL−1(例えば
IL−1α)またはIL−2、をウェルに加える。細胞
を37℃で4日間インキュベートする。4日目に細胞を
トリチウム−チミジンでパルスし、増殖を調べる。本発
明の化合物は刺激剤添加と共に加える。
【0036】生物学的活性測定に適当な用量を決定し、
活性の性質を調べるときのin vitro分析におけ
る細胞毒性反応を防ぐために、本発明の各化合物の細胞
毒性について調べた。細胞(例えば、NIH−3T3、
Ras形質転換3T3細胞、悪性メラノーマLD2細胞
等)をマイクロタイタープレートに加え、プレートの2
日後に薬剤を加えた。薬剤添加の24、48または72
時間後に、蛍光生存力染色(例えば、2',7'-ビス-
(2-カルボキシエチル)-5-(および-6)-カルボキ
シフルオレセイン アセトキシメチルエステル、BCE
CF励起488nmおよび発光525nm)によって細
胞生存力を調べる。
活性の性質を調べるときのin vitro分析におけ
る細胞毒性反応を防ぐために、本発明の各化合物の細胞
毒性について調べた。細胞(例えば、NIH−3T3、
Ras形質転換3T3細胞、悪性メラノーマLD2細胞
等)をマイクロタイタープレートに加え、プレートの2
日後に薬剤を加えた。薬剤添加の24、48または72
時間後に、蛍光生存力染色(例えば、2',7'-ビス-
(2-カルボキシエチル)-5-(および-6)-カルボキ
シフルオレセイン アセトキシメチルエステル、BCE
CF励起488nmおよび発光525nm)によって細
胞生存力を調べる。
【0037】本発明の化合物の活性の別の測定法は、ヒ
ト由来の間質細胞を用いたPDGF(血小板由来成長因
子)増殖反応を調べることを含む。ヒト間質細胞を所定
の培地(例えば、69%マックコイ培地、12.5%胎
児ウシ血清、12.5%ウマ血清。1%抗生物質、1%
グルタミン、1%添加ビタミン、0.8%必須アミノ
酸、1%ピルビン酸ナトリウム、1%重炭酸ナトリウ
ム、0.4%非必須アミノ酸、および0.36%ヒドロコ
ルチゾン)にプレートする(例えば、2000細胞/
穴)。2−3日後、間質細胞を血清を含まない培地で枯
渇させる。24時間後に、IL−1α若しくはTNFを
加えた、若しくは加えていないPDGF−AA、PDG
F−BBまたは塩基性FGF(繊維芽細胞成長因子)の
ような増殖因子、およびトリチウム チミジンで細胞を
処理する。液体シンチレーションカウンターで細胞増殖
を測定する。
ト由来の間質細胞を用いたPDGF(血小板由来成長因
子)増殖反応を調べることを含む。ヒト間質細胞を所定
の培地(例えば、69%マックコイ培地、12.5%胎
児ウシ血清、12.5%ウマ血清。1%抗生物質、1%
グルタミン、1%添加ビタミン、0.8%必須アミノ
酸、1%ピルビン酸ナトリウム、1%重炭酸ナトリウ
ム、0.4%非必須アミノ酸、および0.36%ヒドロコ
ルチゾン)にプレートする(例えば、2000細胞/
穴)。2−3日後、間質細胞を血清を含まない培地で枯
渇させる。24時間後に、IL−1α若しくはTNFを
加えた、若しくは加えていないPDGF−AA、PDG
F−BBまたは塩基性FGF(繊維芽細胞成長因子)の
ような増殖因子、およびトリチウム チミジンで細胞を
処理する。液体シンチレーションカウンターで細胞増殖
を測定する。
【0038】B細胞増殖アッセイによって、抗ミュー抗
体(40μg/ml)、IL−4またはPMA(2.5n
M)で刺激されたB細胞の増殖を抑制する本発明の化合
物の効果を調べることができる。ラモス(Ramos)
B細胞腫瘍細胞、またはマウス脾細胞を刺激剤、本発明
の化合物およびトリチウム チミジンと共にインキュベ
ートし、刺激剤によって誘導された細胞増殖の抑制を測
定することができる。
体(40μg/ml)、IL−4またはPMA(2.5n
M)で刺激されたB細胞の増殖を抑制する本発明の化合
物の効果を調べることができる。ラモス(Ramos)
B細胞腫瘍細胞、またはマウス脾細胞を刺激剤、本発明
の化合物およびトリチウム チミジンと共にインキュベ
ートし、刺激剤によって誘導された細胞増殖の抑制を測
定することができる。
【0039】薬剤抑制活性は、刺激された細胞中の管細
胞接着分子(VCAM)のレベルを調べることによって
測定することもできる。初期継代ヒト臍静脈内皮細胞
(HUVEC)(Cell Systems,Inc.ま
たはCloneticsのような企業から入手した)を
10%胎児ウシ血清を含む培地(例えば、Hepes緩
衝培地、Cell Systems)に、繊維芽細胞成
長因子(酸性FGF、Cell Systems,In
c.)またはTNFのような刺激剤を添加したもので培
養する。細胞をマイクロタイタープレートのウェルにプ
レートし(例えば、5×104/穴)、37℃で72時
間インキュベートする。休止細胞を回収し(例えば、
0.4% EDTAで20−30分処理)、培地中(例え
ば、0.01%ナトリウムアジドを含む、0.1%ウシ血
清アルブミンを加えたリン酸塩緩衝液)で洗浄し、氷冷
下、ヒトVCAMを認識するモノクローナル抗体(”一
次抗体”)(例えば、ヒトVCAMを認識するマウスモ
ノクローナル抗体1μg、Genzyme)で標識す
る。60分の氷冷後、細胞を冷却洗浄培地で洗浄し(好
ましくは2回)、一次抗体を認識する抗体(例えば、フ
ィコエリトリンを結合したヤギ抗マウスIgG 1μ
g、CalTag,Inc.)と共にインキュベートす
る。氷冷30分後、細胞を2回洗浄し、フローサイトメ
ーター(Coulter EliteR)を用い、適当
な励起波長および発光波長で(例えば、フィコエリトリ
ンを用いた場合は、励起が488nm,発光が525n
m)分析する。
胞接着分子(VCAM)のレベルを調べることによって
測定することもできる。初期継代ヒト臍静脈内皮細胞
(HUVEC)(Cell Systems,Inc.ま
たはCloneticsのような企業から入手した)を
10%胎児ウシ血清を含む培地(例えば、Hepes緩
衝培地、Cell Systems)に、繊維芽細胞成
長因子(酸性FGF、Cell Systems,In
c.)またはTNFのような刺激剤を添加したもので培
養する。細胞をマイクロタイタープレートのウェルにプ
レートし(例えば、5×104/穴)、37℃で72時
間インキュベートする。休止細胞を回収し(例えば、
0.4% EDTAで20−30分処理)、培地中(例え
ば、0.01%ナトリウムアジドを含む、0.1%ウシ血
清アルブミンを加えたリン酸塩緩衝液)で洗浄し、氷冷
下、ヒトVCAMを認識するモノクローナル抗体(”一
次抗体”)(例えば、ヒトVCAMを認識するマウスモ
ノクローナル抗体1μg、Genzyme)で標識す
る。60分の氷冷後、細胞を冷却洗浄培地で洗浄し(好
ましくは2回)、一次抗体を認識する抗体(例えば、フ
ィコエリトリンを結合したヤギ抗マウスIgG 1μ
g、CalTag,Inc.)と共にインキュベートす
る。氷冷30分後、細胞を2回洗浄し、フローサイトメ
ーター(Coulter EliteR)を用い、適当
な励起波長および発光波長で(例えば、フィコエリトリ
ンを用いた場合は、励起が488nm,発光が525n
m)分析する。
【0040】関連する2種の酵素、リソホスファチジン
酸アシルトランスフェラーゼ(LPAAT)とホスファ
チジン酸ホスフォリルヒドロラーゼ(PAPH)の抑制
を、1つのin vitroアッセイによって調べるこ
とができる。このアッセイは、一次刺激(例えば、種々
のサイトカイン、成長因子、癌遺伝子産物、推定される
治療剤、放射線照射、ウイルス感染、毒素、細菌感染お
よびその産物、並びに標的細胞に(妨害まではしないと
しても)有害な影響を与えるあらゆる刺激)を加えた標
的細胞を、種々の用量の本発明の化合物の存在下または
非存在下でインキュベートすることを含む。標的細胞に
は、例えば、以下のような亜細胞性物質が含まれる。
酸アシルトランスフェラーゼ(LPAAT)とホスファ
チジン酸ホスフォリルヒドロラーゼ(PAPH)の抑制
を、1つのin vitroアッセイによって調べるこ
とができる。このアッセイは、一次刺激(例えば、種々
のサイトカイン、成長因子、癌遺伝子産物、推定される
治療剤、放射線照射、ウイルス感染、毒素、細菌感染お
よびその産物、並びに標的細胞に(妨害まではしないと
しても)有害な影響を与えるあらゆる刺激)を加えた標
的細胞を、種々の用量の本発明の化合物の存在下または
非存在下でインキュベートすることを含む。標的細胞に
は、例えば、以下のような亜細胞性物質が含まれる。
【0041】間葉細胞および/または外胚葉由来のミク
ロソーム、特に骨髄間質細胞または、ヒト若しくはラッ
ト糸球体細胞由来のミクロソーム;脳由来のミクロソー
ムまたはシナプトソーム;富原形質膜ミクロソーム、B
urstenら(J.Biol.Chem.226:20
732−20743,1991)に記載されたようにし
て得られた原形質膜、または界面活性剤で溶解させたミ
クロソーム;シナプトソーム、および、例えば、NP−
40、ミラナル(Miranal)、SDS若しくはその
他の中性界面活性剤を用いて溶解された膜またはその他
の細胞調製品;そして界面活性剤で溶解され、組み換え
られ、または、さらに精製された細胞蛋白質の調製品
(LPAATおよび/またはPAPH蛋白質を含む) 短時間インキュベートした後、細胞脂質を抽出し、標準
的な方法に従って薄層クロマトグラフィーで分析する。
簡単に述べると、例えばクロロホルム/メタノール
2:1(v/v)を用いて脂質を抽出し、抽出物を、Bur
sten andHarris, Biochemist
ry 30:6195−6203,1991に記載され
たようにHPLCにかける。RaininR mu-Po
rasilカラムを使用し、3:4 ヘキサン:プロパノ
ール有機担体を用い、および、分離の初めの10分間は
1−10%水勾配を用いて行った。溶出パターンのピー
クの検出は離れた二重結合を検出する紫外線範囲で行っ
た。不飽和PAおよびDAGに相当するピークが抽出パ
ターンに示される。この方法はPAおよびDAGの多様
な型を区別できるので、本発明の(R)または(S)化合物
によって影響を受ける経路における相当する型も直接測
定できることが重要である。これらの化合物のアシル置
換体の性質の確認は、ファスト−アトム ボンバード マ
ス スペクトロスコピー(fast−atom bomb
ardment mass spectroscopy)
によって行うことができる。このようにして、関連する
不飽和(非アラキドン酸)PAおよびDAG亜種を検出
できる。使用する時間は、サイトカインなどの一次刺激
による活性化から5−60秒である。この技術によっ
て、種々の脂質成分のレベルを時間の関数として調べる
ことができる。
ロソーム、特に骨髄間質細胞または、ヒト若しくはラッ
ト糸球体細胞由来のミクロソーム;脳由来のミクロソー
ムまたはシナプトソーム;富原形質膜ミクロソーム、B
urstenら(J.Biol.Chem.226:20
732−20743,1991)に記載されたようにし
て得られた原形質膜、または界面活性剤で溶解させたミ
クロソーム;シナプトソーム、および、例えば、NP−
40、ミラナル(Miranal)、SDS若しくはその
他の中性界面活性剤を用いて溶解された膜またはその他
の細胞調製品;そして界面活性剤で溶解され、組み換え
られ、または、さらに精製された細胞蛋白質の調製品
(LPAATおよび/またはPAPH蛋白質を含む) 短時間インキュベートした後、細胞脂質を抽出し、標準
的な方法に従って薄層クロマトグラフィーで分析する。
簡単に述べると、例えばクロロホルム/メタノール
2:1(v/v)を用いて脂質を抽出し、抽出物を、Bur
sten andHarris, Biochemist
ry 30:6195−6203,1991に記載され
たようにHPLCにかける。RaininR mu-Po
rasilカラムを使用し、3:4 ヘキサン:プロパノ
ール有機担体を用い、および、分離の初めの10分間は
1−10%水勾配を用いて行った。溶出パターンのピー
クの検出は離れた二重結合を検出する紫外線範囲で行っ
た。不飽和PAおよびDAGに相当するピークが抽出パ
ターンに示される。この方法はPAおよびDAGの多様
な型を区別できるので、本発明の(R)または(S)化合物
によって影響を受ける経路における相当する型も直接測
定できることが重要である。これらの化合物のアシル置
換体の性質の確認は、ファスト−アトム ボンバード マ
ス スペクトロスコピー(fast−atom bomb
ardment mass spectroscopy)
によって行うことができる。このようにして、関連する
不飽和(非アラキドン酸)PAおよびDAG亜種を検出
できる。使用する時間は、サイトカインなどの一次刺激
による活性化から5−60秒である。この技術によっ
て、種々の脂質成分のレベルを時間の関数として調べる
ことができる。
【0042】TNFを介した細胞毒性に対する、本発明
の化合物による抑制活性を調べることができる。この分
析では、L929マウス繊維芽細胞(104細胞/穴)
を種々の用量の各化合物および培地コントロールと共に
2時間インキュベートする。TNF−α(R&D Sy
stems)を500pg/mlの濃度(TNFのLD
50(125pg/ml)の4倍)で添加する。細胞+薬
剤(または−薬剤)+TNFを37℃で40時間インキ
ュベートする。培地を取り除いて2%血清および10μ
g/mlのBCECF蛍光色素を含む新たな培地と交換
し、30分間インキュベートする。蛍光色素を含む培地
を取り除き、PBS(リン酸塩緩衝液)と交換し、各ウ
ェルの蛍光を分析した。
の化合物による抑制活性を調べることができる。この分
析では、L929マウス繊維芽細胞(104細胞/穴)
を種々の用量の各化合物および培地コントロールと共に
2時間インキュベートする。TNF−α(R&D Sy
stems)を500pg/mlの濃度(TNFのLD
50(125pg/ml)の4倍)で添加する。細胞+薬
剤(または−薬剤)+TNFを37℃で40時間インキ
ュベートする。培地を取り除いて2%血清および10μ
g/mlのBCECF蛍光色素を含む新たな培地と交換
し、30分間インキュベートする。蛍光色素を含む培地
を取り除き、PBS(リン酸塩緩衝液)と交換し、各ウ
ェルの蛍光を分析した。
【0043】さらに別の方法により、TNF-活性化H
UVEC細胞に対するU937細胞の接着の、薬剤によ
る抑制の効果を調べることができる。この実験では、H
UVEC細胞をヒトTNF−α(20ng/ml)およ
び種々の濃度の薬剤と共に14−16時間インキュベー
トする。U937細胞(ヒト単核細胞系)を、蛍光色
素、BCECF(10μg/ml)と共にインキュベー
トして標識する。U937細胞調製品(2.5×104細
胞/穴)を活性化HUVEC細胞の上に上層する。細胞
を逆遠心して、部分的に接着していたり、全く接着して
いないU937細胞を取り除く。蛍光プレートリーダー
を用い、接着したU937細胞の蛍光を測定する。
UVEC細胞に対するU937細胞の接着の、薬剤によ
る抑制の効果を調べることができる。この実験では、H
UVEC細胞をヒトTNF−α(20ng/ml)およ
び種々の濃度の薬剤と共に14−16時間インキュベー
トする。U937細胞(ヒト単核細胞系)を、蛍光色
素、BCECF(10μg/ml)と共にインキュベー
トして標識する。U937細胞調製品(2.5×104細
胞/穴)を活性化HUVEC細胞の上に上層する。細胞
を逆遠心して、部分的に接着していたり、全く接着して
いないU937細胞を取り除く。蛍光プレートリーダー
を用い、接着したU937細胞の蛍光を測定する。
【0044】本発明の化合物 本発明の化合物および医薬組成物は、3,7−ジ置換キ
サンチンの1位において置換された直鎖アルキル(C
5-8)のω−1アルコールの分離されたRまたはS(好
ましくはR)鏡像異性体である。本発明の化合物は、こ
のような化合物を有効量投与する特定の投与方式と同様
に、外部刺激またはin situ 一次刺激に対する細
胞応答を調節するのに有効である。
サンチンの1位において置換された直鎖アルキル(C
5-8)のω−1アルコールの分離されたRまたはS(好
ましくはR)鏡像異性体である。本発明の化合物は、こ
のような化合物を有効量投与する特定の投与方式と同様
に、外部刺激またはin situ 一次刺激に対する細
胞応答を調節するのに有効である。
【0045】本発明の化合物は、下記の式:
【化3】 [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代わりに1つ、または隣接
しない2つの酸素原子を含んでいてもよいアルキル(C
1-12)である]のキサンチンコアから成る化合物および
医薬組成物を構成する。R1は、好ましくはR鏡像異性
体として水酸基を有するC6アルキルである 本発明はさらに、本発明の化合物および薬学的に受容可
能な助剤から成り、患者に経口的、非経口的、または局
所的な投与により処方される、医薬組成物を提供する。
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代わりに1つ、または隣接
しない2つの酸素原子を含んでいてもよいアルキル(C
1-12)である]のキサンチンコアから成る化合物および
医薬組成物を構成する。R1は、好ましくはR鏡像異性
体として水酸基を有するC6アルキルである 本発明はさらに、本発明の化合物および薬学的に受容可
能な助剤から成り、患者に経口的、非経口的、または局
所的な投与により処方される、医薬組成物を提供する。
【0046】本発明はさらに、1つまたは複数の本発明
の化合物および薬学的に受容可能な担体若しくは賦形剤
からなる医薬組成物を含む。本発明の化合物または医薬
組成物を用いて患者を治療するには、体外療法としてi
n vitro培養で患者に接触させるか、または、治
療すべき細胞を有する患者に本発明の化合物または医薬
組成物を(経口的、非経口的、または局部的に)投与す
る。
の化合物および薬学的に受容可能な担体若しくは賦形剤
からなる医薬組成物を含む。本発明の化合物または医薬
組成物を用いて患者を治療するには、体外療法としてi
n vitro培養で患者に接触させるか、または、治
療すべき細胞を有する患者に本発明の化合物または医薬
組成物を(経口的、非経口的、または局部的に)投与す
る。
【0047】1-(5-ヒドロキシ-n-ヘキシル)-3,7-
ジメチルキサンチンの(R)または(S)鏡像異性体は周知
であり、以下のような当該分野において知られている慣
用技術によって調製される。
ジメチルキサンチンの(R)または(S)鏡像異性体は周知
であり、以下のような当該分野において知られている慣
用技術によって調製される。
【0048】Davisら.,Xenobiotic
a,15:1001,1985およびDavisら.,
Applied and Enviromental M
icrobiology 48:327,1984に記
載されている、例えばRhodotorula rub
raを用いた微生物学的技術;Davisら(1984)
(前述)の(R)-アルファ-メトキシ-アルファ-トリフルオ
ロメチル-フェニル酢酸((r)-MTFPA)のような光
学活性化酸、その他の光学活性化酸から形成させたジア
ステレオマーエステルのラセミ体を分離する;ヨーロッ
パ特許公開第0435153号に記載されているよう
に、(R)または(S)-5-ヒドロキシ-n-ヘキシル基をジ
メチルキサンチンの1位に導入することによる直接的化
学合成;鏡像異性体選択的変換(例えば、鏡像異性体エ
ステルを第三ホスフィン、アゾジカルボン酸ジアルキル
エステルおよびカルボン酸と共に加熱するか、または鏡
像異性体アルコールを、所望により塩基を含んだ中性溶
媒中で有機スルホン酸エステルに変換する。):得られ
た脂肪族カルボン酸エステルを加熱し、塩基を含むアル
コール性または水性の溶媒で加溶媒分解(例えば、炭酸
カリウムを含むメタノール分解)を行い、ヨーロッパ特
許公開第435153号または第435152号に記載
されたような鏡像異性体アルコールを得る。
a,15:1001,1985およびDavisら.,
Applied and Enviromental M
icrobiology 48:327,1984に記
載されている、例えばRhodotorula rub
raを用いた微生物学的技術;Davisら(1984)
(前述)の(R)-アルファ-メトキシ-アルファ-トリフルオ
ロメチル-フェニル酢酸((r)-MTFPA)のような光
学活性化酸、その他の光学活性化酸から形成させたジア
ステレオマーエステルのラセミ体を分離する;ヨーロッ
パ特許公開第0435153号に記載されているよう
に、(R)または(S)-5-ヒドロキシ-n-ヘキシル基をジ
メチルキサンチンの1位に導入することによる直接的化
学合成;鏡像異性体選択的変換(例えば、鏡像異性体エ
ステルを第三ホスフィン、アゾジカルボン酸ジアルキル
エステルおよびカルボン酸と共に加熱するか、または鏡
像異性体アルコールを、所望により塩基を含んだ中性溶
媒中で有機スルホン酸エステルに変換する。):得られ
た脂肪族カルボン酸エステルを加熱し、塩基を含むアル
コール性または水性の溶媒で加溶媒分解(例えば、炭酸
カリウムを含むメタノール分解)を行い、ヨーロッパ特
許公開第435153号または第435152号に記載
されたような鏡像異性体アルコールを得る。
【0049】(R)または(S)鏡像異性体を得るための特
に好ましい方法は、J.Org.Chem.55:227
4,1990に記載された方法の変型に基づく直接合成
である(図9)。この方法では、4−ブロモ−1−ブテ
ンを、ボロントリクロライドおよびトリエチルシランと
共にペンタンのような不活性炭化水素溶媒中で約−10
℃から−78℃の低温条件下で熱し、4−ブロモ−1
(ジクロロ)ボロブタンを得る。この産物を同程度の低
温下でジエチルエーテルまたはジグリム(diglym
e)のような不活性溶媒中、(R)−または(S)−ピナン
ジオールで処理し、(R)−または(S)−ピナンジオール
4−ブロモブチルボレートを得る。この産物を、アル
ゴンのような不活性な雰囲気下、−100℃(またはも
う少し高い温度)において、テトラヒドロフランのよう
な不活性な溶媒中、LiCHCl2で処理し、つづいて
無水塩化亜鉛を加えて(R)−または(S)-ピナンジオー
ル 5-ブロモ-1-クロロペンチルボレートを得る。この
産物を、テトラヒドロフラン中、約−10℃から約−7
8℃において、メチルマグネシウム臭化物で処理し、R
またはS-ピナンジオール 5-ブロモ-1-メチルペンチ
ルボレートを得る。この産物を、ジメチルスルホキシド
(DMSO)中、約−10℃から約0℃において、テオブ
ロミンで処理し、続いて約28℃、5トルにおいてDM
SOを留去し、約95%の非常に高い収率で相当する1
-N-アルキル化キサンチンを得る。続いて過剰量の水酸
化ナトリウム溶液のように強い塩基性溶液中で酸化加水
分解を行うと、ホウ素原子および(R)−または(S)-ピ
ナンジオール残基が取り除かれる。イソプロパノール等
の溶媒からの再結晶化といった慣用の回収法によって産
物を得ることができる。下記にこの好ましい合成法を図
示する。
に好ましい方法は、J.Org.Chem.55:227
4,1990に記載された方法の変型に基づく直接合成
である(図9)。この方法では、4−ブロモ−1−ブテ
ンを、ボロントリクロライドおよびトリエチルシランと
共にペンタンのような不活性炭化水素溶媒中で約−10
℃から−78℃の低温条件下で熱し、4−ブロモ−1
(ジクロロ)ボロブタンを得る。この産物を同程度の低
温下でジエチルエーテルまたはジグリム(diglym
e)のような不活性溶媒中、(R)−または(S)−ピナン
ジオールで処理し、(R)−または(S)−ピナンジオール
4−ブロモブチルボレートを得る。この産物を、アル
ゴンのような不活性な雰囲気下、−100℃(またはも
う少し高い温度)において、テトラヒドロフランのよう
な不活性な溶媒中、LiCHCl2で処理し、つづいて
無水塩化亜鉛を加えて(R)−または(S)-ピナンジオー
ル 5-ブロモ-1-クロロペンチルボレートを得る。この
産物を、テトラヒドロフラン中、約−10℃から約−7
8℃において、メチルマグネシウム臭化物で処理し、R
またはS-ピナンジオール 5-ブロモ-1-メチルペンチ
ルボレートを得る。この産物を、ジメチルスルホキシド
(DMSO)中、約−10℃から約0℃において、テオブ
ロミンで処理し、続いて約28℃、5トルにおいてDM
SOを留去し、約95%の非常に高い収率で相当する1
-N-アルキル化キサンチンを得る。続いて過剰量の水酸
化ナトリウム溶液のように強い塩基性溶液中で酸化加水
分解を行うと、ホウ素原子および(R)−または(S)-ピ
ナンジオール残基が取り除かれる。イソプロパノール等
の溶媒からの再結晶化といった慣用の回収法によって産
物を得ることができる。下記にこの好ましい合成法を図
示する。
【0050】
【化4】
【0051】
【化5】
【0052】
【化6】
【0053】
【化7】
【0054】
【化8】
【0055】
【化9】
【0056】反応5−9についての参考文献 J.Am.Chem.Soc.Vol.108,No.4,1
986 Matteson,Sadhu&Peterson 前述の合成法においてはピナンジオールをキラルディレ
クターとして使用する。ピナンジオールは以下の合成工
程に従って合成できる。
986 Matteson,Sadhu&Peterson 前述の合成法においてはピナンジオールをキラルディレ
クターとして使用する。ピナンジオールは以下の合成工
程に従って合成できる。
【0057】
【化10】
【0058】合成過程は−(−)−α−ピネンを利用す
るが、これは商業的スケールの量で入手できない場合が
しばしばある。しかし、下記の工程に従って、−(−)
−β−ピネンから−(−)−α−ピネンを合成すること
ができる。
るが、これは商業的スケールの量で入手できない場合が
しばしばある。しかし、下記の工程に従って、−(−)
−β−ピネンから−(−)−α−ピネンを合成すること
ができる。
【0059】
【化11】
【0060】反応10においてピナンジオールを再生成
し、この重要な、出発材料およびキラルディレクターを
再循環させて何回もの反応で繰り返し用いることが重要
である。ピナンジオールを再生成するための望ましい再
循環法を以下に示す:
し、この重要な、出発材料およびキラルディレクターを
再循環させて何回もの反応で繰り返し用いることが重要
である。ピナンジオールを再生成するための望ましい再
循環法を以下に示す:
【化12】
【0061】本発明の化合物と薬剤組成物の用途 本発明の化合物は一次刺激が接触する細胞中のホメオス
タシスを、一次刺激後の数秒以内に招来される第2シグ
ナル伝達経路に対するこれらの一次刺激の影響を和らげ
ることによって、維持する機構を提供する。例えば、i
n vivo又はex vivoでの本発明の化合物の
投与は、その挙動を改良すべき細胞を本発明の化合物又
はその薬剤組成物の有効量と接触させることを含む細胞
挙動の改良方法を提供する、前記方法は: (1)腫瘍細胞の増殖を抑制する方法であり、前記量は
前記増殖を抑制するために充分である;又は(2)造血
幹細胞から赤血球、血小板、リンパ球及び顆粒球への分
化を促進する方法であり、前記量は前記増殖を抑制する
ために充分である;又は(3)抗原もしくはIL−2刺
激によるT細胞の活性化を抑制する方法であり、前記量
は前記活性化を促進するために充分である;又は(4)
内毒素、TNF、IL−1もしくはGM−CSF刺激に
よる単球/マクロファージ細胞の活性化を抑制する方法
であり、前記量は前記活性化を抑制するために充分であ
る;又は(5)腫瘍壊死因子の細胞毒性効果に対する間
葉細胞の耐性を強化する方法であり、前記量は前記耐性
を強化するために充分である;又は(6)抗原、IL−
4もしくはCD40リガンドに反応したB細胞の抗体産
生を抑制する方法であり、前記量は前記抗体産生を抑制
するために充分である;又は(7)平滑筋細胞の増殖を
刺激することができる成長因子に反応した平滑筋細胞の
増殖を抑制する方法であり、前記量は前記増殖を抑制す
るために充分である;又は(8)内皮細胞によって与え
られる全身血管の抵抗を弱める方法であり、前記量は高
血圧誘導物質の放出を減ずるために充分である;又は
(9)内皮細胞によって与えられる全身血管の抵抗を弱
める方法であり、前記量は抗高血圧性誘導物質の放出を
強化するために充分である;又は(10)そのエンハン
サーによって誘導される接着分子の発現を減ずる方法で
あり、前記量は前記発現を減ずるために充分である;又
は(11)HIVによるT細胞の活性化を抑制する方法
であり、前記量は前記活性化を抑制し、従ってウイルス
複製を抑制するために充分である;又は(12)IL−
1及び/又はmip−1α及び/又はPDGF及び/又
はFGFによる刺激に反応した腎臓糸球体間質細胞の増
殖を抑制する方法であり、前記量は前記増殖を抑制する
ために充分である;又は(13)シクロスポリンAもし
くはアンホテリシンBに対する腎臓糸球体細胞又は尿細
管細胞の抵抗を強化する方法であり、前記量は前記抵抗
を強化するために充分である;又は(14)TNF処理
骨髄間質細胞における成長刺激因子産生の抑制を防止す
る方法であり、前記量は前記抑制を防止するために充分
である;又は(15)IL−1、TNF、もしくは内毒
素刺激単球及びマクロファージによるmipー1α放出
を防止する方法である;又は(16)IL−1、TN
F、もしくは内毒素処理巨核球、繊維芽細胞及びマクロ
ファージによる血小板活性化因子の放出を防止する方法
である;又は(17)TNF処理造血前駆細胞中のサイ
トカイン受容体のダウンレギュレーションを防止する方
法であり、前記量が前記ダウンレギュレーションを防止
するために充分である;又は(18)IL−1刺激され
たもしくはTNF刺激された糸球体上皮細胞又は滑膜細
胞におけるメタロプロテアーゼの産生を抑制する方法で
あり、前記量は前記産生を強化するために充分である;
又は(19)細胞毒性薬物もしくは放射線に対する胃腸
もしくは肺の上皮細胞の抵抗を強化する方法であり、前
記量は前記抵抗を強化するために充分である;又は(2
0)非アルキル化抗腫瘍剤の抗腫瘍効果を強化する方法
であり、前記量は前記効果を強化するために充分であ
る;又は(21)IL−1に反応した破骨活性化因子の
産生を抑制する方法であり、前記量は前記産生を抑制す
るために充分である;又は(22)IgEに反応した脱
顆粒を抑制する方法であり、前記量は前記脱顆粒を抑制
するために充分である;又は(23)アドレナリン作動
性神経伝達物質、ドーパミン、ノルエピネフリンもしく
はエピネフリン、又は神経伝達物質であるアセチルコリ
ンの放出を強化する方法であり、前記量は前記放出を強
化するために充分である;又は(24)アドレナリン作
動性神経伝達物質、ドーパミン、ノルエピネフリンもし
くはエピネフリン、又は神経伝達物質であるアセチルコ
リンのシナプス後の“遅い電流(slow current)”効果を
調節する方法であり、前記量はこのような遅い電流を調
節するために充分である。
タシスを、一次刺激後の数秒以内に招来される第2シグ
ナル伝達経路に対するこれらの一次刺激の影響を和らげ
ることによって、維持する機構を提供する。例えば、i
n vivo又はex vivoでの本発明の化合物の
投与は、その挙動を改良すべき細胞を本発明の化合物又
はその薬剤組成物の有効量と接触させることを含む細胞
挙動の改良方法を提供する、前記方法は: (1)腫瘍細胞の増殖を抑制する方法であり、前記量は
前記増殖を抑制するために充分である;又は(2)造血
幹細胞から赤血球、血小板、リンパ球及び顆粒球への分
化を促進する方法であり、前記量は前記増殖を抑制する
ために充分である;又は(3)抗原もしくはIL−2刺
激によるT細胞の活性化を抑制する方法であり、前記量
は前記活性化を促進するために充分である;又は(4)
内毒素、TNF、IL−1もしくはGM−CSF刺激に
よる単球/マクロファージ細胞の活性化を抑制する方法
であり、前記量は前記活性化を抑制するために充分であ
る;又は(5)腫瘍壊死因子の細胞毒性効果に対する間
葉細胞の耐性を強化する方法であり、前記量は前記耐性
を強化するために充分である;又は(6)抗原、IL−
4もしくはCD40リガンドに反応したB細胞の抗体産
生を抑制する方法であり、前記量は前記抗体産生を抑制
するために充分である;又は(7)平滑筋細胞の増殖を
刺激することができる成長因子に反応した平滑筋細胞の
増殖を抑制する方法であり、前記量は前記増殖を抑制す
るために充分である;又は(8)内皮細胞によって与え
られる全身血管の抵抗を弱める方法であり、前記量は高
血圧誘導物質の放出を減ずるために充分である;又は
(9)内皮細胞によって与えられる全身血管の抵抗を弱
める方法であり、前記量は抗高血圧性誘導物質の放出を
強化するために充分である;又は(10)そのエンハン
サーによって誘導される接着分子の発現を減ずる方法で
あり、前記量は前記発現を減ずるために充分である;又
は(11)HIVによるT細胞の活性化を抑制する方法
であり、前記量は前記活性化を抑制し、従ってウイルス
複製を抑制するために充分である;又は(12)IL−
1及び/又はmip−1α及び/又はPDGF及び/又
はFGFによる刺激に反応した腎臓糸球体間質細胞の増
殖を抑制する方法であり、前記量は前記増殖を抑制する
ために充分である;又は(13)シクロスポリンAもし
くはアンホテリシンBに対する腎臓糸球体細胞又は尿細
管細胞の抵抗を強化する方法であり、前記量は前記抵抗
を強化するために充分である;又は(14)TNF処理
骨髄間質細胞における成長刺激因子産生の抑制を防止す
る方法であり、前記量は前記抑制を防止するために充分
である;又は(15)IL−1、TNF、もしくは内毒
素刺激単球及びマクロファージによるmipー1α放出
を防止する方法である;又は(16)IL−1、TN
F、もしくは内毒素処理巨核球、繊維芽細胞及びマクロ
ファージによる血小板活性化因子の放出を防止する方法
である;又は(17)TNF処理造血前駆細胞中のサイ
トカイン受容体のダウンレギュレーションを防止する方
法であり、前記量が前記ダウンレギュレーションを防止
するために充分である;又は(18)IL−1刺激され
たもしくはTNF刺激された糸球体上皮細胞又は滑膜細
胞におけるメタロプロテアーゼの産生を抑制する方法で
あり、前記量は前記産生を強化するために充分である;
又は(19)細胞毒性薬物もしくは放射線に対する胃腸
もしくは肺の上皮細胞の抵抗を強化する方法であり、前
記量は前記抵抗を強化するために充分である;又は(2
0)非アルキル化抗腫瘍剤の抗腫瘍効果を強化する方法
であり、前記量は前記効果を強化するために充分であ
る;又は(21)IL−1に反応した破骨活性化因子の
産生を抑制する方法であり、前記量は前記産生を抑制す
るために充分である;又は(22)IgEに反応した脱
顆粒を抑制する方法であり、前記量は前記脱顆粒を抑制
するために充分である;又は(23)アドレナリン作動
性神経伝達物質、ドーパミン、ノルエピネフリンもしく
はエピネフリン、又は神経伝達物質であるアセチルコリ
ンの放出を強化する方法であり、前記量は前記放出を強
化するために充分である;又は(24)アドレナリン作
動性神経伝達物質、ドーパミン、ノルエピネフリンもし
くはエピネフリン、又は神経伝達物質であるアセチルコ
リンのシナプス後の“遅い電流(slow current)”効果を
調節する方法であり、前記量はこのような遅い電流を調
節するために充分である。
【0062】例えば、本発明の化合物は骨髄移植(BM
T)を受ける患者に関して、BMTが適合同種異系、不
適合同種異系又は自己由来のいずれであるかに関係な
く、用いられる。自己由来移植片を受容する患者は、対
宿主移植片病(GVHD)を発現しないので必ずしも免
疫抑制剤を投与される必要がないとしても、本発明の化
合物による治療によって援助される。しかし、移植を実
施した対象の疾患に関連して用いられる化学療法又は放
射線療法の有害な効果は、患者の細胞に対する負の刺激
を構成する。
T)を受ける患者に関して、BMTが適合同種異系、不
適合同種異系又は自己由来のいずれであるかに関係な
く、用いられる。自己由来移植片を受容する患者は、対
宿主移植片病(GVHD)を発現しないので必ずしも免
疫抑制剤を投与される必要がないとしても、本発明の化
合物による治療によって援助される。しかし、移植を実
施した対象の疾患に関連して用いられる化学療法又は放
射線療法の有害な効果は、患者の細胞に対する負の刺激
を構成する。
【0063】一般に、BMTを受ける患者は全て、全身
照射の有無に拘わらず、正常な骨髄回復のために致死量
を越える化学療法の投与を必要とする。このことは患者
を救うために貯蔵された患者骨髄又はドナー骨髄を用い
ることに合理的根拠を与える。一般に、新しい又は貯蔵
された骨髄を注入する前の連続した7〜10日間、患者
に化学療法又は放射線療法を行う。患者に骨髄を投与す
る日は移植の0日と表される。患者が化学/放射線療法
(chemo/radiation)を受容する、その前の日々は負数で
表される。その後の日々は正数で表される。
照射の有無に拘わらず、正常な骨髄回復のために致死量
を越える化学療法の投与を必要とする。このことは患者
を救うために貯蔵された患者骨髄又はドナー骨髄を用い
ることに合理的根拠を与える。一般に、新しい又は貯蔵
された骨髄を注入する前の連続した7〜10日間、患者
に化学療法又は放射線療法を行う。患者に骨髄を投与す
る日は移植の0日と表される。患者が化学/放射線療法
(chemo/radiation)を受容する、その前の日々は負数で
表される。その後の日々は正数で表される。
【0064】BMT受容者にマイナスの応答が生ずる時
間の中央値(median time)は移植後の最初の100日間
内である。それ故、統計的には、患者が100日目まで
生存するならば、これらの患者が生存し続けるチャンス
は有意に強化される。本発明の化合物は患者の生存率を
高めることができる。受容可能と考えられる、最初の1
00日間の致死率は“良好な危険性(good risk)”患者
の15〜20%であり、“高危険性”患者の30〜40
%である。これらの致死率は化学/放射線療法の高い投
与量の直接的な影響によるものである。さらに、GVH
Dは同種異系の骨髄受容者における死亡率にも寄与す
る。
間の中央値(median time)は移植後の最初の100日間
内である。それ故、統計的には、患者が100日目まで
生存するならば、これらの患者が生存し続けるチャンス
は有意に強化される。本発明の化合物は患者の生存率を
高めることができる。受容可能と考えられる、最初の1
00日間の致死率は“良好な危険性(good risk)”患者
の15〜20%であり、“高危険性”患者の30〜40
%である。これらの致死率は化学/放射線療法の高い投
与量の直接的な影響によるものである。さらに、GVH
Dは同種異系の骨髄受容者における死亡率にも寄与す
る。
【0065】本発明の化合物の投与が有用である他の適
応症には、腫瘍に伴う苦痛の存在、ホルモン関連障害、
神経障害、自己免疫疾患、炎症、再狭窄、冠状動脈疾
患、アテローム硬化症、高血圧、望ましくない免疫応
答、ウイルス感染症、腎炎、粘膜炎(mucositis)、及び
種々なアレルギー反応がある。アレルギー反応の予防は
急性アレルギー反応の予防、並びに、鼻漏、シナスドレ
ナージ(sinus drainage)、散在性組織浮腫及び全身化そ
う痒症の緩和又は予防を含む。慢性アレルギー反応の他
の症状は、上記症状の他に、めまい感、下痢、組織充血
及び、局在化白血球浸潤を伴う涙腺腫脹(lacrimal swel
ling)を含む。アレルギー反応はまた、ロイコトリエン
放出とその遠位効果をも付随し、気道閉塞の発現を含む
喘息症状、FEVIの減少、生体能力の変化及び大量の
粘液産生を含む。
応症には、腫瘍に伴う苦痛の存在、ホルモン関連障害、
神経障害、自己免疫疾患、炎症、再狭窄、冠状動脈疾
患、アテローム硬化症、高血圧、望ましくない免疫応
答、ウイルス感染症、腎炎、粘膜炎(mucositis)、及び
種々なアレルギー反応がある。アレルギー反応の予防は
急性アレルギー反応の予防、並びに、鼻漏、シナスドレ
ナージ(sinus drainage)、散在性組織浮腫及び全身化そ
う痒症の緩和又は予防を含む。慢性アレルギー反応の他
の症状は、上記症状の他に、めまい感、下痢、組織充血
及び、局在化白血球浸潤を伴う涙腺腫脹(lacrimal swel
ling)を含む。アレルギー反応はまた、ロイコトリエン
放出とその遠位効果をも付随し、気道閉塞の発現を含む
喘息症状、FEVIの減少、生体能力の変化及び大量の
粘液産生を含む。
【0066】本発明の化合物の投与に適した、他の対象
は例えば化学療法剤又は照射療法のような腫瘍の治療の
ための細胞減少(cytoreductive)剤を投与され、並びに
例えばIL−2のような生物学的反応調節剤及び例えば
リンホカイン活性化キラー細胞(LAK)と腫瘍浸潤リ
ンパ球(TIL細胞)とのような腫瘍抑制細胞による治
療を受ける患者;他の方法で治療されたか否かに拘わら
ず、急性及び慢性の骨髄性白血病、ヘアリー・セル白血
病、リンパ種、巨核球白血病等を含めた、一般に新生物
に罹患した患者;細菌、真菌類、原生動物もしくはウイ
ルス感染によって生ずる疾患状態に罹患した患者;心臓
手術を受けた患者のような、例えば再狭窄としての不快
な平滑筋細胞増殖を示す患者;自己免疫疾患に罹患し、
T細胞及びB細胞の不活化を必要とする患者;及び神経
障害を有する患者を含む。
は例えば化学療法剤又は照射療法のような腫瘍の治療の
ための細胞減少(cytoreductive)剤を投与され、並びに
例えばIL−2のような生物学的反応調節剤及び例えば
リンホカイン活性化キラー細胞(LAK)と腫瘍浸潤リ
ンパ球(TIL細胞)とのような腫瘍抑制細胞による治
療を受ける患者;他の方法で治療されたか否かに拘わら
ず、急性及び慢性の骨髄性白血病、ヘアリー・セル白血
病、リンパ種、巨核球白血病等を含めた、一般に新生物
に罹患した患者;細菌、真菌類、原生動物もしくはウイ
ルス感染によって生ずる疾患状態に罹患した患者;心臓
手術を受けた患者のような、例えば再狭窄としての不快
な平滑筋細胞増殖を示す患者;自己免疫疾患に罹患し、
T細胞及びB細胞の不活化を必要とする患者;及び神経
障害を有する患者を含む。
【0067】本発明の化合物はさらに、アセチルコリン
及び/またはエピネフリンによるシナプトソームの刺激
に起因する関連したPA及びDAGの強化されたレベル
を減ずることができる。このことは、本発明の化合物の
効果が例えばドーパミンのような抑制的神経伝達物質の
放出を強化することと、このような神経伝達物質の遠位
の“遅い電流”効果を調節することの両方であることを
示唆する。
及び/またはエピネフリンによるシナプトソームの刺激
に起因する関連したPA及びDAGの強化されたレベル
を減ずることができる。このことは、本発明の化合物の
効果が例えばドーパミンのような抑制的神経伝達物質の
放出を強化することと、このような神経伝達物質の遠位
の“遅い電流”効果を調節することの両方であることを
示唆する。
【0068】このように、本発明の薬物は発作閾値を高
め、例えばストリキニーネのような神経毒に対してシナ
プスを安定化し、例えばL−ドーパのような抗パーキン
ソン病薬の効果を強化し、催眠性化合物の効果を強化
し、トランキライザーの投与に起因する運動障害を軽減
し、例えば発作(stroke)のような脳血管イベント後の進
行性神経死を付随するニューロン過度燃焼を軽減又は防
止するためにも有用である。さらに、本発明の化合物は
ノルエピネフリン欠乏うつ病及び内因性グルココルチコ
イドの放出に関連したうつ病の治療に有用であり、デキ
サメタゾン又はメチルプレドニソロンの中枢神経系に対
する毒性を防止し、この薬物への嗜癖なしに慢性疼痛を
治療することができる。さらに、本発明の化合物は学習
及び注意力欠陥を有する小児の治療に有用であり、一般
に、例えばアルツハイマー病患者を含めた器官的欠陥を
有する対象における記憶を改良する。
め、例えばストリキニーネのような神経毒に対してシナ
プスを安定化し、例えばL−ドーパのような抗パーキン
ソン病薬の効果を強化し、催眠性化合物の効果を強化
し、トランキライザーの投与に起因する運動障害を軽減
し、例えば発作(stroke)のような脳血管イベント後の進
行性神経死を付随するニューロン過度燃焼を軽減又は防
止するためにも有用である。さらに、本発明の化合物は
ノルエピネフリン欠乏うつ病及び内因性グルココルチコ
イドの放出に関連したうつ病の治療に有用であり、デキ
サメタゾン又はメチルプレドニソロンの中枢神経系に対
する毒性を防止し、この薬物への嗜癖なしに慢性疼痛を
治療することができる。さらに、本発明の化合物は学習
及び注意力欠陥を有する小児の治療に有用であり、一般
に、例えばアルツハイマー病患者を含めた器官的欠陥を
有する対象における記憶を改良する。
【0069】投与量は変化するが、本発明の化合物をこ
のような治療を必要とするヒト対象に、患者の体重に依
存して、約200mg〜約5000mg/日の、有効な
経口、非経口、又は静脈内の致死下投与量として投与す
る場合には、治療効果が達せられる。白血病の治療にお
ける特に好ましい使用計画(regimen)は4〜50mg/
体重kgである。しかし、如何なる特定の対象に対して
も、個人のニーズと、本発明の化合物を投与する又は本
発明の化合物の投与を指図する人の専門的判定とに合わ
せて特定の投与計画を調節しなければならないことを理
解すべきである。
のような治療を必要とするヒト対象に、患者の体重に依
存して、約200mg〜約5000mg/日の、有効な
経口、非経口、又は静脈内の致死下投与量として投与す
る場合には、治療効果が達せられる。白血病の治療にお
ける特に好ましい使用計画(regimen)は4〜50mg/
体重kgである。しかし、如何なる特定の対象に対して
も、個人のニーズと、本発明の化合物を投与する又は本
発明の化合物の投与を指図する人の専門的判定とに合わ
せて特定の投与計画を調節しなければならないことを理
解すべきである。
【0070】P−450抑制剤の同時投与 本発明の化合物をP−450抑制剤と共にin viv
o同時投与することは、本発明の化合物の長い半減期に
よる効果の強化を生ずる。このin vivo効果は本
発明の化合物の分解経路の阻害による;特に、キサンチ
ン環のN7位置における脱アルキル化によるものであ
る。例えば、NIH3T3−D5C3細胞を用いて、形
質転換の表現型制御、本発明の化合物単独によるインキ
ュベーション、及び本発明の化合物とP−450抑制剤
との同時インキュベーションを比較することによって、
本発明の化合物単独又はP−450抑制剤との併用との
効果を比較することができる。
o同時投与することは、本発明の化合物の長い半減期に
よる効果の強化を生ずる。このin vivo効果は本
発明の化合物の分解経路の阻害による;特に、キサンチ
ン環のN7位置における脱アルキル化によるものであ
る。例えば、NIH3T3−D5C3細胞を用いて、形
質転換の表現型制御、本発明の化合物単独によるインキ
ュベーション、及び本発明の化合物とP−450抑制剤
との同時インキュベーションを比較することによって、
本発明の化合物単独又はP−450抑制剤との併用との
効果を比較することができる。
【0071】P−450を抑制する化合物には、例え
ば、(mg範囲の一日投与量)で、プロプラノール(2
0−100)、メタプロロール(20−100);ヴェ
ラパミル(100−400)、ディルチアゼム(100
−400)、ニフェジピン(60−100);シメチジ
ン(400−2,400);シプロフロキサシン(50
0−2,000)、エノキサシン(500−2,00
0)、ノルフロキサシン(500−2,000)、オフ
ロキサシン(500−2,000)、パーフロキサシン
(500−2,000);エリスロマイシン(100−
1,000)、トロレアンドマイシン(100−1,0
00);ケトコニゾール(100−2,000)、チア
ベンザドール(100−1,000);イソニアジド
(100−1,000);メキシレチン(100−1,
000)及びデキサメタゾン(1−100mg)があ
る。
ば、(mg範囲の一日投与量)で、プロプラノール(2
0−100)、メタプロロール(20−100);ヴェ
ラパミル(100−400)、ディルチアゼム(100
−400)、ニフェジピン(60−100);シメチジ
ン(400−2,400);シプロフロキサシン(50
0−2,000)、エノキサシン(500−2,00
0)、ノルフロキサシン(500−2,000)、オフ
ロキサシン(500−2,000)、パーフロキサシン
(500−2,000);エリスロマイシン(100−
1,000)、トロレアンドマイシン(100−1,0
00);ケトコニゾール(100−2,000)、チア
ベンザドール(100−1,000);イソニアジド
(100−1,000);メキシレチン(100−1,
000)及びデキサメタゾン(1−100mg)があ
る。
【0072】適当な処方は治療すべき障害の性質、選択
した薬物の性質、及び主治医(attending physician)の
判定に依存する。一般に、本発明の化合物は注射用又は
経口投与用のいずれかのために処方されるが、例えば経
粘膜もしくは経皮経路のような、他の投与形式も使用可
能である。これらの化合物の適当な処方は、例えばRe
mington’s Pharmaceutical
Science(最新版),マック パブリッシュイン
グ カンパニー(Mack Publishing Company)、イースト
ン、PAに見い出すことができる。
した薬物の性質、及び主治医(attending physician)の
判定に依存する。一般に、本発明の化合物は注射用又は
経口投与用のいずれかのために処方されるが、例えば経
粘膜もしくは経皮経路のような、他の投与形式も使用可
能である。これらの化合物の適当な処方は、例えばRe
mington’s Pharmaceutical
Science(最新版),マック パブリッシュイン
グ カンパニー(Mack Publishing Company)、イースト
ン、PAに見い出すことができる。
【0073】選択した本発明の化合物に依存して、例え
ばキノロンのようなP−450抑制剤の同時投与によっ
て、投与量レベルをかなり減ずることができる。或い
は、このようなキノロンによって強い相乗効果を得るこ
とができる。
ばキノロンのようなP−450抑制剤の同時投与によっ
て、投与量レベルをかなり減ずることができる。或い
は、このようなキノロンによって強い相乗効果を得るこ
とができる。
【0074】下記実施例によって本発明を説明するが、
これらの実施例を、本発明を限定するものと見なすべき
ではない。これらの実施例において、PTXはペントキ
シフィリンを意味する。
これらの実施例を、本発明を限定するものと見なすべき
ではない。これらの実施例において、PTXはペントキ
シフィリンを意味する。
【0075】
【実施例】実施例1 この実施例はラセミMIの分解によるCT1501Rの
合成を説明する。反応バイアル中のMIによって飽和さ
れたエーテルに、3.0当量のピリジン(水素化カルシ
ウムから新たに蒸留したもの)及び3.0当量のR−
(+)−1−メトキシ−1−トリフルオロメチル−フェ
ニル酢酸((+)−MTFPA)の酸塩化物を加えた。
この反応バイアルを密封し、50℃に1時間加温し、乾
燥するまで窒素流下に置き、次に75%MeOH/H2
O中で再構成した。(75%MeOH/H2O)90
%、アセトニトリル(AcN)3%、水7%から成るイ
ソクラチック(isocratic)系を3.0ml/分の流量で
250x10mmウルトレメックス(Ultremex)5C−1
8カラム[フェノメネックス(Phenomenex),カリフォル
ニア州,トーランス,90501]に通すことによっ
て、分離を行った。サンプルを75%MeOH/H2O
中のMTFPAーMIの10%溶液として調製して、1
00μlアリコートを7分間毎に21分間注入した(4
回注入)。化合物は29.8分間目[(S−MI)−M
TFPA]、及び31.4分間目[(R−MI)−MT
FPA]に溶離して、95%分離した。ダール(Dale)等
が述べているように(J.Org.Chem.34:2
543,1969年)、NMRに基づいて無水構造を割
り当てた。回収された画分を一緒にし、回転蒸発(rotov
ap)によって量を減じた。最初に、サンプルをMeOH
とAcNとを除去するためにのみ蒸発させ、その後にこ
れらをクロロホルムによって抽出した。この溶媒を乾燥
させ、真空下で除去した。後に、該エステルが水の除去
に必要な軽度の(minor)温度上昇に安定であることが研
究によって示された後に、この抽出工程は省略した。
合成を説明する。反応バイアル中のMIによって飽和さ
れたエーテルに、3.0当量のピリジン(水素化カルシ
ウムから新たに蒸留したもの)及び3.0当量のR−
(+)−1−メトキシ−1−トリフルオロメチル−フェ
ニル酢酸((+)−MTFPA)の酸塩化物を加えた。
この反応バイアルを密封し、50℃に1時間加温し、乾
燥するまで窒素流下に置き、次に75%MeOH/H2
O中で再構成した。(75%MeOH/H2O)90
%、アセトニトリル(AcN)3%、水7%から成るイ
ソクラチック(isocratic)系を3.0ml/分の流量で
250x10mmウルトレメックス(Ultremex)5C−1
8カラム[フェノメネックス(Phenomenex),カリフォル
ニア州,トーランス,90501]に通すことによっ
て、分離を行った。サンプルを75%MeOH/H2O
中のMTFPAーMIの10%溶液として調製して、1
00μlアリコートを7分間毎に21分間注入した(4
回注入)。化合物は29.8分間目[(S−MI)−M
TFPA]、及び31.4分間目[(R−MI)−MT
FPA]に溶離して、95%分離した。ダール(Dale)等
が述べているように(J.Org.Chem.34:2
543,1969年)、NMRに基づいて無水構造を割
り当てた。回収された画分を一緒にし、回転蒸発(rotov
ap)によって量を減じた。最初に、サンプルをMeOH
とAcNとを除去するためにのみ蒸発させ、その後にこ
れらをクロロホルムによって抽出した。この溶媒を乾燥
させ、真空下で除去した。後に、該エステルが水の除去
に必要な軽度の(minor)温度上昇に安定であることが研
究によって示された後に、この抽出工程は省略した。
【0076】(+)−MTFPA−MI立体異性体の加
水分解 MTFPAエステルの加水分解の進行を監視するため
に、直接MIと、存在する総エステルとを定量する分析
法を開発することが必要であった。傾斜プログラムを用
いて、注入後1.0〜8.0分間から可動相を(75%
MeOH/水)40%,AcN40%,水10%から
(75%MeOH/水)40%,AcN60%までに変
えた。最終条件を3分間維持し、その後、カラムを再平
衡化した。溶出液を280nmにおいて監視し、遊離M
Iと誘導体化MIとの保持時間はそれぞれ6.5分間と
12.3分間であった。この系を用いて、誘導体化MI
の立体異性体は分離されなかったので、この系はMTF
PAエステルの加水分解を監視するための分析手段とし
て用いることができた。
水分解 MTFPAエステルの加水分解の進行を監視するため
に、直接MIと、存在する総エステルとを定量する分析
法を開発することが必要であった。傾斜プログラムを用
いて、注入後1.0〜8.0分間から可動相を(75%
MeOH/水)40%,AcN40%,水10%から
(75%MeOH/水)40%,AcN60%までに変
えた。最終条件を3分間維持し、その後、カラムを再平
衡化した。溶出液を280nmにおいて監視し、遊離M
Iと誘導体化MIとの保持時間はそれぞれ6.5分間と
12.3分間であった。この系を用いて、誘導体化MI
の立体異性体は分離されなかったので、この系はMTF
PAエステルの加水分解を監視するための分析手段とし
て用いることができた。
【0077】EtOH4.0ml中の純粋なMTFPA
−MIエステル(R又はS誘導体)30mgに、水素化
ホウ素ナトリウム(NaBH)約40mgを加え、この
混合物を油浴中で70℃に加熱した。日中4時間毎にさ
らに水素化ホウ素ナトリウム(20mg)を加えた。5
4時間後に反応は、MI+MIエステルの総ピーク面積
の損失なく、約90%完成した(HPLCによる)。反
応を一塩基性リン酸ナトリウム/水によって停止させ、
HClによってpH3.5に調節し、EtOHを真空下
で除去し、未反応エステルとMIとをクロロホルム中に
抽出した。このクロロホルムを硫酸ナトリウム上で乾燥
させ、真空下で除去した。粗生成物を分取クロマトグラ
フィーを用いて、250x10mmカラムによって3.
0ml/分の流量を用いる、MIに関して上述した溶媒
傾斜法(solvent gradient)によって、精製した。回収し
た画分を真空下で蒸発乾固させ、エーテルを加えて磨砕
し、鏡像異性体の過剰度(enantiomeric excess)に関し
て分析した(両異性体に関して>95%)。エーテルを
窒素下で除去し、得られた結晶を最少量の標準生理食塩
水中に溶解した。この標準化溶液を標準生理食塩水によ
って希釈して、各鏡像異性体の10mM溶液を調製し
た。再形成MTFPAエステルのHPLCによって鏡像
異性体のアイデンティティ(identity)を確認した。
−MIエステル(R又はS誘導体)30mgに、水素化
ホウ素ナトリウム(NaBH)約40mgを加え、この
混合物を油浴中で70℃に加熱した。日中4時間毎にさ
らに水素化ホウ素ナトリウム(20mg)を加えた。5
4時間後に反応は、MI+MIエステルの総ピーク面積
の損失なく、約90%完成した(HPLCによる)。反
応を一塩基性リン酸ナトリウム/水によって停止させ、
HClによってpH3.5に調節し、EtOHを真空下
で除去し、未反応エステルとMIとをクロロホルム中に
抽出した。このクロロホルムを硫酸ナトリウム上で乾燥
させ、真空下で除去した。粗生成物を分取クロマトグラ
フィーを用いて、250x10mmカラムによって3.
0ml/分の流量を用いる、MIに関して上述した溶媒
傾斜法(solvent gradient)によって、精製した。回収し
た画分を真空下で蒸発乾固させ、エーテルを加えて磨砕
し、鏡像異性体の過剰度(enantiomeric excess)に関し
て分析した(両異性体に関して>95%)。エーテルを
窒素下で除去し、得られた結晶を最少量の標準生理食塩
水中に溶解した。この標準化溶液を標準生理食塩水によ
って希釈して、各鏡像異性体の10mM溶液を調製し
た。再形成MTFPAエステルのHPLCによって鏡像
異性体のアイデンティティ(identity)を確認した。
【0078】実施例2 この実施例は、実験室規模でのキラル ディレクター(c
hiral director)としてRピナンジオールを用いる
(R)−1−(5−ヒドロキシヘキシル)−3,7−ジ
メチルキサンチン(CT1501R)の製造方法を説明
する。500ml丸底フラスコ中でトリエチルシラン
(83.49g,0.718モル)と4−ブロモー1−
ブテン(97g,0.718モル)とを混合し、−78
℃に冷却した。1リットル丸底フラスコ中で三塩化ホウ
素(84.13g,0.718モル)ガスを−78℃に
おいて凝縮させ、ペンタン400mlを加えた。シラン
/ブテン混合物を三塩化ホウ素溶液に、アルゴン下で撹
拌しながら、カニューレを介して滴加し、この間内部温
度を−78℃に維持した。添加の終了時に、3当量のメ
タノールを溶液に滴加した。次に、溶液を室温に加温
し、ペンタン、HCl及び過剰なメタノールを大気圧に
おいてアルゴン下で留去した。残渣を真空蒸留して、ジ
メチル 4−ブロモブチルボロネート(0.9torr
においてbp70−79℃,収量127.5g,収率8
5%)を得た。
hiral director)としてRピナンジオールを用いる
(R)−1−(5−ヒドロキシヘキシル)−3,7−ジ
メチルキサンチン(CT1501R)の製造方法を説明
する。500ml丸底フラスコ中でトリエチルシラン
(83.49g,0.718モル)と4−ブロモー1−
ブテン(97g,0.718モル)とを混合し、−78
℃に冷却した。1リットル丸底フラスコ中で三塩化ホウ
素(84.13g,0.718モル)ガスを−78℃に
おいて凝縮させ、ペンタン400mlを加えた。シラン
/ブテン混合物を三塩化ホウ素溶液に、アルゴン下で撹
拌しながら、カニューレを介して滴加し、この間内部温
度を−78℃に維持した。添加の終了時に、3当量のメ
タノールを溶液に滴加した。次に、溶液を室温に加温
し、ペンタン、HCl及び過剰なメタノールを大気圧に
おいてアルゴン下で留去した。残渣を真空蒸留して、ジ
メチル 4−ブロモブチルボロネート(0.9torr
においてbp70−79℃,収量127.5g,収率8
5%)を得た。
【0079】500ml丸底フラスコ中で、(R)−ピ
ナンジオール(62g,0.365モル)とジメチル
4−ブロモブチルボロネート(75g,0.359モ
ル)とを200mlのジエチルエーテルと共に撹拌し
た。30分間後に、エーテルを真空下で除去して、残渣
を蒸留して、(R)−ピナンジオール−4−ブロモブチ
ルボロネート(1.6−1.9torrにおいてbp1
34−141℃,110.85g,収率98%)を得
た。
ナンジオール(62g,0.365モル)とジメチル
4−ブロモブチルボロネート(75g,0.359モ
ル)とを200mlのジエチルエーテルと共に撹拌し
た。30分間後に、エーテルを真空下で除去して、残渣
を蒸留して、(R)−ピナンジオール−4−ブロモブチ
ルボロネート(1.6−1.9torrにおいてbp1
34−141℃,110.85g,収率98%)を得
た。
【0080】同族体化反応を実施するために、塩化メチ
レン(31.47g,0.370モル)と無水THF5
00mlとをサイドアーム付き1リットル丸底フラスコ
中でアルゴン下において、撹拌しながら−100℃に冷
却した。この冷却した溶液に、アルゴン下で撹拌しなが
ら、n−ブチルリチウム(ヘキサン中1.4N)212
mlをフラスコの側面に沿って45分間かけて滴加し、
この間内部温度を−100℃に維持した。添加の終了
後、溶液を20分間撹拌させた。ピナンジオール−4−
ブロモブチルボロネート(77.82g,0.247モ
ル)に、無水THF100mlを混合し、−78℃に冷
却し、次に内部温度を100℃に維持しながら、リチウ
ムメチルジクロリド溶液に加えた。添加の終了時に、完
全に乾燥した塩化亜鉛(30.29g,0.222モ
ル)を加えた。この溶液をアルゴン下で10時間撹拌
し、室温に加温した。溶媒を真空下で除去した。この残
渣に、石油エーテル500mlと飽和塩化アンモニウム
水溶液300mlとを加えた。有機相を分離し、飽和塩
化アンモニウム溶液(2x250ml)によって洗浄し
た。水層を一緒にし、石油エーテル(2x250ml)
で洗浄した。有機相を一緒にし、硫酸ナトリウムによっ
て乾燥させ、濾過し、蒸発させて、粗ピナンジオール
(R)ブロモペンチルボロネート,粗重量92.13g
(102%)を得た。
レン(31.47g,0.370モル)と無水THF5
00mlとをサイドアーム付き1リットル丸底フラスコ
中でアルゴン下において、撹拌しながら−100℃に冷
却した。この冷却した溶液に、アルゴン下で撹拌しなが
ら、n−ブチルリチウム(ヘキサン中1.4N)212
mlをフラスコの側面に沿って45分間かけて滴加し、
この間内部温度を−100℃に維持した。添加の終了
後、溶液を20分間撹拌させた。ピナンジオール−4−
ブロモブチルボロネート(77.82g,0.247モ
ル)に、無水THF100mlを混合し、−78℃に冷
却し、次に内部温度を100℃に維持しながら、リチウ
ムメチルジクロリド溶液に加えた。添加の終了時に、完
全に乾燥した塩化亜鉛(30.29g,0.222モ
ル)を加えた。この溶液をアルゴン下で10時間撹拌
し、室温に加温した。溶媒を真空下で除去した。この残
渣に、石油エーテル500mlと飽和塩化アンモニウム
水溶液300mlとを加えた。有機相を分離し、飽和塩
化アンモニウム溶液(2x250ml)によって洗浄し
た。水層を一緒にし、石油エーテル(2x250ml)
で洗浄した。有機相を一緒にし、硫酸ナトリウムによっ
て乾燥させ、濾過し、蒸発させて、粗ピナンジオール
(R)ブロモペンチルボロネート,粗重量92.13g
(102%)を得た。
【0081】500ml丸底フラスコ中で、無水THF
300mlと前の反応からの粗ピナンジオール(R)−
1−クロロー5−ブロモペンチルボロネート(推定89
g,0.247モル)とを混合し、アルゴン下で撹拌し
ながらー78℃に冷却した。この溶液に臭化メチルマグ
ネシウム(3.26N,79.6ml)を加えた。この
溶液を一晩かけて室温に加温した。石油エーテル(50
0ml)と飽和塩化アンモニウム(250ml)とを加
えて、エマルジョンを形成した。水相を分離した。有機
相を飽和塩化アンモニウム溶液(2x250ml)で洗
浄し、エマルジョンを消失させた。一緒にした水相を石
油エーテル(2x250ml)によって洗浄した。一緒
にした有機相を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、
真空下で蒸発させて、粗ピナンジオール(R)−5−ブ
ロモ−1−メチルペンチルボロネート85.85gを得
た。
300mlと前の反応からの粗ピナンジオール(R)−
1−クロロー5−ブロモペンチルボロネート(推定89
g,0.247モル)とを混合し、アルゴン下で撹拌し
ながらー78℃に冷却した。この溶液に臭化メチルマグ
ネシウム(3.26N,79.6ml)を加えた。この
溶液を一晩かけて室温に加温した。石油エーテル(50
0ml)と飽和塩化アンモニウム(250ml)とを加
えて、エマルジョンを形成した。水相を分離した。有機
相を飽和塩化アンモニウム溶液(2x250ml)で洗
浄し、エマルジョンを消失させた。一緒にした水相を石
油エーテル(2x250ml)によって洗浄した。一緒
にした有機相を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、
真空下で蒸発させて、粗ピナンジオール(R)−5−ブ
ロモ−1−メチルペンチルボロネート85.85gを得
た。
【0082】5リットル−フラスコ中で、DMSO 2
リットルのDMSOとテオブロミン(44.51g,
0.247モル)とをアルゴン下で撹拌しながら混合し
た。この溶液に水素化ナトリウム(9.9g,0.24
7モル)を2アリコートとして加え、テオブロミンが溶
解するまで撹拌させた。3時間後に、この溶液に前の反
応からのピナンジオール(R)−5−ブロモー1−メチ
ルペンチルボロネート(84.75g,0.247モ
ル)を正確に(neat)滴加し、12時間撹拌させ
た。
リットルのDMSOとテオブロミン(44.51g,
0.247モル)とをアルゴン下で撹拌しながら混合し
た。この溶液に水素化ナトリウム(9.9g,0.24
7モル)を2アリコートとして加え、テオブロミンが溶
解するまで撹拌させた。3時間後に、この溶液に前の反
応からのピナンジオール(R)−5−ブロモー1−メチ
ルペンチルボロネート(84.75g,0.247モ
ル)を正確に(neat)滴加し、12時間撹拌させ
た。
【0083】溶液からDMSOを蒸留した(再循環可
能)。残渣を塩化メチレン500mlと水500mlと
によって処理した。水相を除去し、有機相を水(3x7
50ml)によって洗浄した。水相を一緒にし、塩化メ
チレン2x500mlによって洗浄した。有機相を一緒
にして、硫酸ナトリウムによって乾燥させ、濾過して、
溶媒を真空下で除去し、ピナンジオール(R)−5−
(3,7−ジメチルキサンチン)−1−メチルペンチル
ボロネート(88.14g,収率80%)を得た。
能)。残渣を塩化メチレン500mlと水500mlと
によって処理した。水相を除去し、有機相を水(3x7
50ml)によって洗浄した。水相を一緒にし、塩化メ
チレン2x500mlによって洗浄した。有機相を一緒
にして、硫酸ナトリウムによって乾燥させ、濾過して、
溶媒を真空下で除去し、ピナンジオール(R)−5−
(3,7−ジメチルキサンチン)−1−メチルペンチル
ボロネート(88.14g,収率80%)を得た。
【0084】このボロネートを次にTHF/水(各30
0ml)中に溶解し、混合物をアルゴン下で撹拌しなが
ら0℃に冷却した。内部温度を0℃に維持しながら、3
N水酸化カリウム95mlを滴加し、その後に30%過
酸化水素32.3mlを滴加した。混合物を2時間撹拌
し、固形物を濾別した。水と塩化メチレン(各300m
l)を加えた。相を分離し、水相を塩化メチレン(4x
100ml)によって洗浄した。一緒にした有機相を硫
酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、蒸発させた。残渣
を少量の塩化メチレンとそれより多量のエーテルとによ
って再結晶させた。収量は(R)−1−(5−ヒドロキ
シヘキシル)−3,7−ジメチルキサンチン(m.p.
105−108℃)46.3g(87%)であった、
[α]D=−5.63,約96%ee。
0ml)中に溶解し、混合物をアルゴン下で撹拌しなが
ら0℃に冷却した。内部温度を0℃に維持しながら、3
N水酸化カリウム95mlを滴加し、その後に30%過
酸化水素32.3mlを滴加した。混合物を2時間撹拌
し、固形物を濾別した。水と塩化メチレン(各300m
l)を加えた。相を分離し、水相を塩化メチレン(4x
100ml)によって洗浄した。一緒にした有機相を硫
酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、蒸発させた。残渣
を少量の塩化メチレンとそれより多量のエーテルとによ
って再結晶させた。収量は(R)−1−(5−ヒドロキ
シヘキシル)−3,7−ジメチルキサンチン(m.p.
105−108℃)46.3g(87%)であった、
[α]D=−5.63,約96%ee。
【0085】実施例3 この実施例はキラル ディレクターとしてDICHED
を用いる(R)−1−(5−ヒドロキシヘキシル)−
3,7−ジメチルキサンチン(CT1501R)の製造
方法を説明する。実施例2に述べたピナンジオール キ
ラル ディレクターの代わりに(1S,2S)−(1,
2)−ジシクロヘキシルエタンジオール(DICHE
D)を用いることができる。このキラル ディレクター
はピナンジオールよりも容易に回収される(95%)。
DICHEDはシャープレス(Sharpless)等,J.Or
g.Chem.57:2768,1992年に述べられ
ている方法に従って製造することができる。上述したよ
うに製造されたジメチル−4−ブロモブチルボロネート
(10.1g,48.06ミリモル)に、エーテル10
0ml中の(S,S)−DICHED 10.54g
(46.6ミリモル)を混合した。30分間後に、エー
テルを除去し、残渣をシリカゲル10gの短いカラムに
通し、石油エーテル/エーテル(9:1)で溶出し、
(S,S)DICHED類似体4−ブロモブチルボロネ
ート17.8gを得た。
を用いる(R)−1−(5−ヒドロキシヘキシル)−
3,7−ジメチルキサンチン(CT1501R)の製造
方法を説明する。実施例2に述べたピナンジオール キ
ラル ディレクターの代わりに(1S,2S)−(1,
2)−ジシクロヘキシルエタンジオール(DICHE
D)を用いることができる。このキラル ディレクター
はピナンジオールよりも容易に回収される(95%)。
DICHEDはシャープレス(Sharpless)等,J.Or
g.Chem.57:2768,1992年に述べられ
ている方法に従って製造することができる。上述したよ
うに製造されたジメチル−4−ブロモブチルボロネート
(10.1g,48.06ミリモル)に、エーテル10
0ml中の(S,S)−DICHED 10.54g
(46.6ミリモル)を混合した。30分間後に、エー
テルを除去し、残渣をシリカゲル10gの短いカラムに
通し、石油エーテル/エーテル(9:1)で溶出し、
(S,S)DICHED類似体4−ブロモブチルボロネ
ート17.8gを得た。
【0086】実施例2に述べたように、下記量:DIC
HED4−ブロモブチルボロネート17.8g;塩化メ
チレン6.11g;1.4N n−ブチルリチウム4
1.2ml;THF100ml及び無水塩化亜鉛5.8
9gを用いて、同族体化反応を実施した。
HED4−ブロモブチルボロネート17.8g;塩化メ
チレン6.11g;1.4N n−ブチルリチウム4
1.2ml;THF100ml及び無水塩化亜鉛5.8
9gを用いて、同族体化反応を実施した。
【0087】実施例2におけるように、下記量:DIC
HED(R)−1−クロロー5−ブロモペンチルボロネ
ート20.04g;3.0N臭化メチルマグネシウム1
6.7ml;及びTHF150mlを用いて、グリニャ
ール反応を実施した。
HED(R)−1−クロロー5−ブロモペンチルボロネ
ート20.04g;3.0N臭化メチルマグネシウム1
6.7ml;及びTHF150mlを用いて、グリニャ
ール反応を実施した。
【0088】50mlフラスコにおいてTHF(10m
l)中にDICHED5−ブロモー1−メチルペンチル
ボロネートを溶解することによって、(R)−6−ブロ
モヘキサン−2−オールを得るためのDICHEDボロ
ネートの酸化を実施した。水(10ml)を溶液に加え
た。この溶液をアルゴン下で撹拌しながら0℃に冷却し
た。炭酸ナトリウム(3M溶液16.5ml)を加えた
後に、30%過酸化水素 8mlを加えた。溶液を濾過
し、ペンタン20mlを加え、再び濾過した。水相を分
離し、ペンタン(2x10ml)によって洗浄した。有
機相を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、溶媒を蒸
発させて、(R)−6−ブロモーヘキサンー2−オール
を粗収量8.9gで得た。真空蒸留によって、旋光度−
13.89[α]549を有する純粋物質を収量7.1g
(84%)で得た。
l)中にDICHED5−ブロモー1−メチルペンチル
ボロネートを溶解することによって、(R)−6−ブロ
モヘキサン−2−オールを得るためのDICHEDボロ
ネートの酸化を実施した。水(10ml)を溶液に加え
た。この溶液をアルゴン下で撹拌しながら0℃に冷却し
た。炭酸ナトリウム(3M溶液16.5ml)を加えた
後に、30%過酸化水素 8mlを加えた。溶液を濾過
し、ペンタン20mlを加え、再び濾過した。水相を分
離し、ペンタン(2x10ml)によって洗浄した。有
機相を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、溶媒を蒸
発させて、(R)−6−ブロモーヘキサンー2−オール
を粗収量8.9gで得た。真空蒸留によって、旋光度−
13.89[α]549を有する純粋物質を収量7.1g
(84%)で得た。
【0089】(R)−ブロモアルコールをテオブロミン
に加えた。テオブロミン(2.02g,11.2ミリモ
ル)の混合物をDMSO(30ml)中で撹拌し、水素
化ナトリウム282mg(11.8ミリモル)を加え
た。この反応混合物を80分間、激しく撹拌した。ブロ
モアルコール(2.03g,11.2ミリモル)を滴加
し、撹拌を21時間続けた。DMSOを完全なポンプ真
空下で留去した。水(100ml)を加えた。混合物を
25%エタノール/塩化メチレン(3x50ml)によ
って抽出し、一緒にした抽出物を硫酸マグネシウム上で
乾燥させ、蒸発させた。残渣を塩化メチレン20ml中
に入れ、エーテル150mlを加えた。(R)−1−
(5−ヒドロキシヘキシル)−3,7−ジメチルキサン
チン(1.5g,5.36ミリモル,収率47.8%)
のベージュ色結晶が形成された。生成物の他の500m
gを次の24時間にわたって結晶化させて、キラル ク
ロマトグラフィーによって94%より大きいeeを有す
る総収量2g(全体で64%)を得た。
に加えた。テオブロミン(2.02g,11.2ミリモ
ル)の混合物をDMSO(30ml)中で撹拌し、水素
化ナトリウム282mg(11.8ミリモル)を加え
た。この反応混合物を80分間、激しく撹拌した。ブロ
モアルコール(2.03g,11.2ミリモル)を滴加
し、撹拌を21時間続けた。DMSOを完全なポンプ真
空下で留去した。水(100ml)を加えた。混合物を
25%エタノール/塩化メチレン(3x50ml)によ
って抽出し、一緒にした抽出物を硫酸マグネシウム上で
乾燥させ、蒸発させた。残渣を塩化メチレン20ml中
に入れ、エーテル150mlを加えた。(R)−1−
(5−ヒドロキシヘキシル)−3,7−ジメチルキサン
チン(1.5g,5.36ミリモル,収率47.8%)
のベージュ色結晶が形成された。生成物の他の500m
gを次の24時間にわたって結晶化させて、キラル ク
ロマトグラフィーによって94%より大きいeeを有す
る総収量2g(全体で64%)を得た。
【0090】実施例4 この実施例は(RもしくはS)−1−(6−ヒドロキシ
ヘプチル)−3,7−ジメチル−10−キサンチン又は
(RもしくはS)−7−ヒドロキシオクチル−3,7−
ジメチルキサンチンの合成法を説明する。これらの化合
物は上述の適当なピナンジオール/DICHED方法を
用いて、出発物質として長鎖ブロモーオレフィン,5−
ブロモ−1−ペンテン及び6−ブロモー1−ヘキセン,
15をそれぞれ用いることによって、製造した。
ヘプチル)−3,7−ジメチル−10−キサンチン又は
(RもしくはS)−7−ヒドロキシオクチル−3,7−
ジメチルキサンチンの合成法を説明する。これらの化合
物は上述の適当なピナンジオール/DICHED方法を
用いて、出発物質として長鎖ブロモーオレフィン,5−
ブロモ−1−ペンテン及び6−ブロモー1−ヘキセン,
15をそれぞれ用いることによって、製造した。
【0091】実施例5 この実施例はCT1501RとPTXとの混合リンパ球
反応を説明する。この混合リンパ球反応は、ツーウェイ
(two−way)混合リンパ球反応において測定され
る、同種異系刺激に対するPBMC(末梢血単核細胞)
の増殖反応を示す。CT1501RとPTXとの両方は
図1に示した、この免疫調節活性分析法において活性を
示した。
反応を説明する。この混合リンパ球反応は、ツーウェイ
(two−way)混合リンパ球反応において測定され
る、同種異系刺激に対するPBMC(末梢血単核細胞)
の増殖反応を示す。CT1501RとPTXとの両方は
図1に示した、この免疫調節活性分析法において活性を
示した。
【0092】実施例6 この実施例は架橋した抗マウス(anti-mu)抗体及び/又
はインターロイキン−4(IL−4)によって刺激され
たマウスB細胞増殖の抑制に対するCT1501Rの効
果を示す。図2は、指示された増殖シグナルによって惹
起されるB細胞増殖をCT1501Rが抑制したことを
示す。
はインターロイキン−4(IL−4)によって刺激され
たマウスB細胞増殖の抑制に対するCT1501Rの効
果を示す。図2は、指示された増殖シグナルによって惹
起されるB細胞増殖をCT1501Rが抑制したことを
示す。
【0093】図3は、コンカナバリンA(ConA)及
びインターロイキンー1α(IL−1α)若しくはイン
ターロイキン−2(IL−2)によって惹起される増殖
を抑制するCT1501Rの効果を示す。CT1501
RはConA及びIL−1α若しくはIL−2による活
性化の2時間前に指示用量で細胞に加えた。CT150
1Rは、図3に示した用量−反応関係で胸腺細胞増殖を
抑制した。バックグラウンド カウントは200cpm
未満であった。
びインターロイキンー1α(IL−1α)若しくはイン
ターロイキン−2(IL−2)によって惹起される増殖
を抑制するCT1501Rの効果を示す。CT1501
RはConA及びIL−1α若しくはIL−2による活
性化の2時間前に指示用量で細胞に加えた。CT150
1Rは、図3に示した用量−反応関係で胸腺細胞増殖を
抑制した。バックグラウンド カウントは200cpm
未満であった。
【0094】図4は、PDGF(血小板由来増殖因子)
及びIL−1によって刺激された平滑筋増殖の抑制に対
するCT1501RとPTXとの効果を示す。PDGF
とIL−1とによる活性化の2時間前に、CT1501
RとPTXとを別々に細胞に加えた。両方の薬物は図4
に示したように高い試験用量で平滑筋細胞増殖を抑制
し、CT1501RはPTXよりも高活性であった。
及びIL−1によって刺激された平滑筋増殖の抑制に対
するCT1501RとPTXとの効果を示す。PDGF
とIL−1とによる活性化の2時間前に、CT1501
RとPTXとを別々に細胞に加えた。両方の薬物は図4
に示したように高い試験用量で平滑筋細胞増殖を抑制
し、CT1501RはPTXよりも高活性であった。
【0095】実施例7 この実施例はサイトカイン放出と細胞接着との抑制を含
めた、CT1501Rのin vitro効果を説明す
る。我々は内毒素、TNF−α又はIL−1αによって
刺激された、サイトカイン放出と活性化ヒト臍(umbilic
al)内皮細胞への接着とに対するCT1501Rの効果
を測定した。
めた、CT1501Rのin vitro効果を説明す
る。我々は内毒素、TNF−α又はIL−1αによって
刺激された、サイトカイン放出と活性化ヒト臍(umbilic
al)内皮細胞への接着とに対するCT1501Rの効果
を測定した。
【0096】マウス腹腔滲出細胞マクロファージ(PE
C)をマウス腹腔の灌流によって単離し、96孔トレー
中において5x105細胞/孔で培養した。刺激物の添
加の1時間前に培養物にCT1501Rを添加して又は
添加せずに、細胞をサルモネラ アボルタス(Salmonell
a abortus)に等しく由来する(equi-derived)内毒素[L
PS;シグマケミカル社(Sigma Chemical Co.),L−1
887]5μg/ml又はIL−1α[ゲンザイム(Gen
zyme);マサチューセッツ州,ケンブリッジ]50ng
/mlによって刺激した。その後の種々な時間に、上澄
み液を取り出して、市販用の96孔マイクロタイター免
疫検定キット[ゲンザイム;TNF;エンドゲン(Endog
en),マサチューセッツ州,ボストン;IL−1α]を
用いて、製造者の仕様書に従ってTNF−α又はIL−
1αのレベルを分析した。接着検査のためには、早期継
代(early passage)ヒト臍静脈内皮細胞(HUVEC)
を商業的供給者[クローネチックス(Clonetics),カリ
フォルニア州,サンジエゴ又はセル システムズ(Cell
Systems),ワシントン州,シアトル]から入手して、酸
性FGF(セル システムズ cat401−111)
を補充した、一定のヘペス(Hepes)緩衝化無血清培地
(セル システムズ cat301−180)中で培養
した。96孔マイクロタイタープレートの各孔中で40
00細胞を培養し、37℃において72時間インキュベ
ートさせた。組織球白血病細胞ラインU937を10%
ウシ胎児血清補充RPMI 1640培地中で刺激し
た。HUVEC又はU937細胞をLPS、IL−1α
又はTNF−αによって12時間刺激した。接着分析の
ために、U937細胞を蛍光生死判別(viability)ステ
イン、2’,7’−ビスー(2−カルボキシエチル)−
5−(及びー6)−カルボキシフルオレセインアセトキ
シメチルエステル(BCECF)によって標識した。簡
単には、細胞をRPMI−1640培地+10%ウシ胎
児血清中でBCECF10μg/mlによって37℃に
おいて30分間標識した。細胞を完全培地によって1回
洗浄し、HUVEC培養物に50,000細胞/孔を加
えた。サンプルを37℃において30分間インキュベー
トし、インバートし(inverted)、400xgで10分間
遠心した。ハンクス平衡塩類溶液(Hank's Balanced Sal
t Solution)(HBSS)100mlを添加した後に、
このマイクロタイタープレートを次にミリポアーサイト
フルオール(Millipore Cytofluor)蛍光プレートリーダ
ー上で分析した(励起488nm;発光525nm)。
細胞の連続希釈物の蛍光は20〜100,000細胞/
孔の広範囲な細胞濃度にわたって直線的な濃度関係を示
した(データを示さず)。全ての実験は少なくとも2回
繰り返し、全ての結果は上述の実験の結果を実証した。
C)をマウス腹腔の灌流によって単離し、96孔トレー
中において5x105細胞/孔で培養した。刺激物の添
加の1時間前に培養物にCT1501Rを添加して又は
添加せずに、細胞をサルモネラ アボルタス(Salmonell
a abortus)に等しく由来する(equi-derived)内毒素[L
PS;シグマケミカル社(Sigma Chemical Co.),L−1
887]5μg/ml又はIL−1α[ゲンザイム(Gen
zyme);マサチューセッツ州,ケンブリッジ]50ng
/mlによって刺激した。その後の種々な時間に、上澄
み液を取り出して、市販用の96孔マイクロタイター免
疫検定キット[ゲンザイム;TNF;エンドゲン(Endog
en),マサチューセッツ州,ボストン;IL−1α]を
用いて、製造者の仕様書に従ってTNF−α又はIL−
1αのレベルを分析した。接着検査のためには、早期継
代(early passage)ヒト臍静脈内皮細胞(HUVEC)
を商業的供給者[クローネチックス(Clonetics),カリ
フォルニア州,サンジエゴ又はセル システムズ(Cell
Systems),ワシントン州,シアトル]から入手して、酸
性FGF(セル システムズ cat401−111)
を補充した、一定のヘペス(Hepes)緩衝化無血清培地
(セル システムズ cat301−180)中で培養
した。96孔マイクロタイタープレートの各孔中で40
00細胞を培養し、37℃において72時間インキュベ
ートさせた。組織球白血病細胞ラインU937を10%
ウシ胎児血清補充RPMI 1640培地中で刺激し
た。HUVEC又はU937細胞をLPS、IL−1α
又はTNF−αによって12時間刺激した。接着分析の
ために、U937細胞を蛍光生死判別(viability)ステ
イン、2’,7’−ビスー(2−カルボキシエチル)−
5−(及びー6)−カルボキシフルオレセインアセトキ
シメチルエステル(BCECF)によって標識した。簡
単には、細胞をRPMI−1640培地+10%ウシ胎
児血清中でBCECF10μg/mlによって37℃に
おいて30分間標識した。細胞を完全培地によって1回
洗浄し、HUVEC培養物に50,000細胞/孔を加
えた。サンプルを37℃において30分間インキュベー
トし、インバートし(inverted)、400xgで10分間
遠心した。ハンクス平衡塩類溶液(Hank's Balanced Sal
t Solution)(HBSS)100mlを添加した後に、
このマイクロタイタープレートを次にミリポアーサイト
フルオール(Millipore Cytofluor)蛍光プレートリーダ
ー上で分析した(励起488nm;発光525nm)。
細胞の連続希釈物の蛍光は20〜100,000細胞/
孔の広範囲な細胞濃度にわたって直線的な濃度関係を示
した(データを示さず)。全ての実験は少なくとも2回
繰り返し、全ての結果は上述の実験の結果を実証した。
【0097】CT1501RはLPS刺激PEC細胞か
らのTNF−α放出を抑制した。細胞は250mM C
T1501Rによって前処理し、上澄み液をELISA
によってLPS刺激後の時間の関数としての放出TNR
−αに関して分析した。CT1501Rは、6〜24時
間目におけるLPS誘導レベルの約50%から48時間
目における約70%までの範囲にわたって、あらゆる時
点においてTNF−α放出を有意に抑制した。図18に
は、放出TNFに対するCT1501Rの効果の用量−
反応を示す。種々な濃度のCT1501Rによる処理の
1時間後に、PEC細胞をLPSによって刺激した。5
0%抑制のCT1501R濃度は約30μMであった。
500μMでは、CT1501Rの抑制効果は最大LP
S刺激(1428pg/ml)の約40%であった。
らのTNF−α放出を抑制した。細胞は250mM C
T1501Rによって前処理し、上澄み液をELISA
によってLPS刺激後の時間の関数としての放出TNR
−αに関して分析した。CT1501Rは、6〜24時
間目におけるLPS誘導レベルの約50%から48時間
目における約70%までの範囲にわたって、あらゆる時
点においてTNF−α放出を有意に抑制した。図18に
は、放出TNFに対するCT1501Rの効果の用量−
反応を示す。種々な濃度のCT1501Rによる処理の
1時間後に、PEC細胞をLPSによって刺激した。5
0%抑制のCT1501R濃度は約30μMであった。
500μMでは、CT1501Rの抑制効果は最大LP
S刺激(1428pg/ml)の約40%であった。
【0098】LPSは腹腔マクロファージにおけるIL
−1α放出を刺激し、IL−1α放出はLPS刺激後1
2時間までに24pg/mlレベルに増加し、48時間
までに31pg/mlに増加する(図19)。CT15
01Rの添加は12〜48時間目にIL−1α放出を有
意に減じ、24時間目に約50%の最大抑制を示した。
腹腔マクロファージをLPSではなくIL−1α50n
g/mlによって刺激した場合には(図20)、CT1
501RはTNF−αの放出をも抑制した(図20)。
CT1501Rの添加は試験した時点におけるTNF−
αの誘導レベルの50〜70%抑制を生じた。
−1α放出を刺激し、IL−1α放出はLPS刺激後1
2時間までに24pg/mlレベルに増加し、48時間
までに31pg/mlに増加する(図19)。CT15
01Rの添加は12〜48時間目にIL−1α放出を有
意に減じ、24時間目に約50%の最大抑制を示した。
腹腔マクロファージをLPSではなくIL−1α50n
g/mlによって刺激した場合には(図20)、CT1
501RはTNF−αの放出をも抑制した(図20)。
CT1501Rの添加は試験した時点におけるTNF−
αの誘導レベルの50〜70%抑制を生じた。
【0099】免疫系統の細胞は血管内皮細胞を識別し、
結合することによって血液から出る。その後、免疫細胞
は内皮細胞と周囲の組織との間を移動する。免疫細胞の
内皮細胞接着と血管外溢出とのモデルは、炎症とアテロ
ーム発生反応とのin vivo処理(manipulation)の
予測モデルを提供する。TNF−α、IL−1α又はL
PSによる内皮細胞の活性化はある種の接着分子をアッ
プーレギュレート(up-regulate)して、リンパ球、単
球、好酸球及び好中球へのそれらの接着性を高める。細
胞ラインU937を用いて、活性化HUVECへの接着
の抑制に対するCT1501Rの効果を試験した。U9
37細胞は、内皮細胞上に表現される免疫グロブリン
スーパーファミリー(superfamily)のメンバーである血
管接着分子1(VCAM)を介する内皮細胞への単球接
着を仲介するインテグリンVLA−4の発現を含む、単
球の特徴的な、多くの表現型を表現する。HUVECを
TNF−α、IL−1α又はLPSから選択した活性剤
によって、活性剤の添加の1時間前に250μM CT
1501Rを添加して又は添加せずに、処理した。図2
1に示すように、CT1501Rの添加によってHUV
ECへのU937細胞のバックグラウンド結合に対する
有意な影響は存在しなかった。しかし、CT1501R
によって前処理した活性化HUVECの相対的接着性に
は顕著な抑制が存在した。CT1501Rによるこの抑
制はTNF−α、IL−1α又はLPSのいずれかによ
るHUVECの刺激によって観察された。
結合することによって血液から出る。その後、免疫細胞
は内皮細胞と周囲の組織との間を移動する。免疫細胞の
内皮細胞接着と血管外溢出とのモデルは、炎症とアテロ
ーム発生反応とのin vivo処理(manipulation)の
予測モデルを提供する。TNF−α、IL−1α又はL
PSによる内皮細胞の活性化はある種の接着分子をアッ
プーレギュレート(up-regulate)して、リンパ球、単
球、好酸球及び好中球へのそれらの接着性を高める。細
胞ラインU937を用いて、活性化HUVECへの接着
の抑制に対するCT1501Rの効果を試験した。U9
37細胞は、内皮細胞上に表現される免疫グロブリン
スーパーファミリー(superfamily)のメンバーである血
管接着分子1(VCAM)を介する内皮細胞への単球接
着を仲介するインテグリンVLA−4の発現を含む、単
球の特徴的な、多くの表現型を表現する。HUVECを
TNF−α、IL−1α又はLPSから選択した活性剤
によって、活性剤の添加の1時間前に250μM CT
1501Rを添加して又は添加せずに、処理した。図2
1に示すように、CT1501Rの添加によってHUV
ECへのU937細胞のバックグラウンド結合に対する
有意な影響は存在しなかった。しかし、CT1501R
によって前処理した活性化HUVECの相対的接着性に
は顕著な抑制が存在した。CT1501Rによるこの抑
制はTNF−α、IL−1α又はLPSのいずれかによ
るHUVECの刺激によって観察された。
【0100】逆にいえば、IL−1αによるU937細
胞の活性化は非刺激HUVECへのそれらの接着性をも
高めた(図22)。250μM CT1501Rによる
U937細胞の前処理はHUVECへの接着のIL−1
α仲介増加をバックグラウンド レベル近くまで効果的
に阻止した。
胞の活性化は非刺激HUVECへのそれらの接着性をも
高めた(図22)。250μM CT1501Rによる
U937細胞の前処理はHUVECへの接着のIL−1
α仲介増加をバックグラウンド レベル近くまで効果的
に阻止した。
【0101】CT1501Rは、腹腔マクロファージ、
ヒトU937組織球性白血病細胞ライン、及びヒト臍静
脈内皮細胞において、LPS、TNF−α及びIL−1
αー仲介炎症シグナル形成経路と、同時に生ずる細胞反
応とを抑制した。CT1501RはLPSによって刺激
された腹腔マクロファージからの炎症前サイトカインの
TNF−α及びIL−1αの放出を有意に減少させた。
ヒトU937組織球性白血病細胞ライン、及びヒト臍静
脈内皮細胞において、LPS、TNF−α及びIL−1
αー仲介炎症シグナル形成経路と、同時に生ずる細胞反
応とを抑制した。CT1501RはLPSによって刺激
された腹腔マクロファージからの炎症前サイトカインの
TNF−α及びIL−1αの放出を有意に減少させた。
【0102】LPS 10μg/ml刺激を用いたTN
F−α抑制のIC50は約30μMであった。CT15
01RはIL−1α活性化PECからのTNF−α放出
を阻止した。CT1501RはTNF−α、IL−1α
又はLPS活性化HUVECへのU937細胞の接着増
加を阻止した。最後に、CT1501Rは、IL−1α
誘導活性化とU937細胞の非刺激HUVECへの接着
性上昇とを阻止した。
F−α抑制のIC50は約30μMであった。CT15
01RはIL−1α活性化PECからのTNF−α放出
を阻止した。CT1501RはTNF−α、IL−1α
又はLPS活性化HUVECへのU937細胞の接着増
加を阻止した。最後に、CT1501Rは、IL−1α
誘導活性化とU937細胞の非刺激HUVECへの接着
性上昇とを阻止した。
【0103】実施例8 この実施例は、CT1501Rの局所塗布を含む、ヌー
ドマウスのヘア試験を説明する。チャールス リバー
ラボラトリーズ(Charles River Laboratories)からの生
後6〜8週間の雌のnu/nuマウスをバイオサポート
リサーチ サポート サービス(Biosupport Research
Support Services)(ワシントン州,シアトル)におい
て加圧滅菌したマイクロアイソレーター(micro isolato
r)装置に収容して、高塩素処理した加圧滅菌水、照射し
た齧歯類食餌を与え、層流フード下に保持した。ケージ
(caging)は毎週交換し、水は週2回交換した。各試験の
開始前、5日間マウスを順化させた。
ドマウスのヘア試験を説明する。チャールス リバー
ラボラトリーズ(Charles River Laboratories)からの生
後6〜8週間の雌のnu/nuマウスをバイオサポート
リサーチ サポート サービス(Biosupport Research
Support Services)(ワシントン州,シアトル)におい
て加圧滅菌したマイクロアイソレーター(micro isolato
r)装置に収容して、高塩素処理した加圧滅菌水、照射し
た齧歯類食餌を与え、層流フード下に保持した。ケージ
(caging)は毎週交換し、水は週2回交換した。各試験の
開始前、5日間マウスを順化させた。
【0104】加熱した親水性軟膏(USP)にCT15
01Rを1%濃度で加えることによって、最初の局所製
剤を調製し、凝固させた。
01Rを1%濃度で加えることによって、最初の局所製
剤を調製し、凝固させた。
【0105】この最初のCT1501R局所製剤をヌー
ドマウスの左わき腹に1日に2回、16日間滅菌アプリ
ケーターによって塗布し、右わき腹には同じ基剤中の別
の化合物を塗布した。マウスは層流フード下で、顔面マ
スクと滅菌手袋を着用した塗布者によって取り扱った。
16日間後に、マウス1匹を頚部脱臼によって殺し、肩
/わき腹の処置部分と背側骨盤(臀部)の非処置部分と
から皮膚生検材料(biopsy)を採取した。試験片を10%
緩衝化ホルマリン中に入れた。生検材料は組織病理学の
ために獣医の皮膚病理学者に送った。この処置の6週間
後に、第2マウスを安楽死させ、第1マウスと同様に生
検材料を採取した。組織病理学のためにサンプルを送っ
た。
ドマウスの左わき腹に1日に2回、16日間滅菌アプリ
ケーターによって塗布し、右わき腹には同じ基剤中の別
の化合物を塗布した。マウスは層流フード下で、顔面マ
スクと滅菌手袋を着用した塗布者によって取り扱った。
16日間後に、マウス1匹を頚部脱臼によって殺し、肩
/わき腹の処置部分と背側骨盤(臀部)の非処置部分と
から皮膚生検材料(biopsy)を採取した。試験片を10%
緩衝化ホルマリン中に入れた。生検材料は組織病理学の
ために獣医の皮膚病理学者に送った。この処置の6週間
後に、第2マウスを安楽死させ、第1マウスと同様に生
検材料を採取した。組織病理学のためにサンプルを送っ
た。
【0106】第1実験からの結果は、処置部分が非処置
部分よりも有意により正常な外観の毛包を有することを
示す。CT1501Rと他方の化合物との両方に関し
て、処置部分では無数の毛鞘が毛包から出ているのが見
られ、これに対して非処置部分では毛鞘が全く見られな
かった。
部分よりも有意により正常な外観の毛包を有することを
示す。CT1501Rと他方の化合物との両方に関し
て、処置部分では無数の毛鞘が毛包から出ているのが見
られ、これに対して非処置部分では毛鞘が全く見られな
かった。
【0107】第2実験では、育毛適応に関して認可され
ている、市販の局所ミノキシジル(minoxidil)製剤[ロ
ゲイン(Rogaine)(登録商標),アプジョーン(Upjoh
n)]と共に、CT1501Rの局所塗布を実施した。バ
ンチン アンド キングマン ユニバーサル(Bantin an
d Kingman Universal)からの生後5〜6週間の雌のnu
/nuマウスをバイオサポート リサーチ サポート
サービス(ワシントン州,シアトル)において加圧滅菌
したマイクロアイソレーター装置に収容して、高塩素処
理した加圧滅菌水、照射した齧歯類食餌を与え、層流フ
ード下に保持した。ケージは毎週交換し、水は週2回交
換した。試験の開始前、7日間マウスを順化させた。
ている、市販の局所ミノキシジル(minoxidil)製剤[ロ
ゲイン(Rogaine)(登録商標),アプジョーン(Upjoh
n)]と共に、CT1501Rの局所塗布を実施した。バ
ンチン アンド キングマン ユニバーサル(Bantin an
d Kingman Universal)からの生後5〜6週間の雌のnu
/nuマウスをバイオサポート リサーチ サポート
サービス(ワシントン州,シアトル)において加圧滅菌
したマイクロアイソレーター装置に収容して、高塩素処
理した加圧滅菌水、照射した齧歯類食餌を与え、層流フ
ード下に保持した。ケージは毎週交換し、水は週2回交
換した。試験の開始前、7日間マウスを順化させた。
【0108】CT1501Rと他の2種の化合物とをE
TOH60%、水10%及びPEG30%の局所製剤と
して、ビヒクルのみと共に調製した。ミノキシジルは地
方の薬局から市販製剤ロゲイン(登録商標)として購入
した。ロゲイン(登録商標)は同一の製剤ベース(formu
lation base)で販売されている。マウスは各供試品に特
有の、固有尾標識によって確認した。マウス2匹/群は
CT1501Rと他の1種の化合物によって処置した。
マウス1匹はビヒクルとミノキシジルの各々によって処
置した。マウスは層流フード下で、顔面マスクと滅菌手
袋を着用した塗布者によって取り扱った。溶液又はマウ
スの汚染を避けるために、各マウスは別々の滅菌アプリ
ケーターによって1日に2回処置した。全てのマウスに
頭蓋骨の基部から尾の基部まで背中の中心線に沿って、
約1.5cm幅に、適当な供試品をストリップ状に塗布
した。34日間後に、全てのマウスをハロタン麻酔薬の
過剰量によって安楽死させた。皮膚生検材料を肩甲骨の
間の頚部の首筋に沿ってマウス7匹の各々から採取した
(およそのサイズは1x1.5cmであった)。全ての
試験片をガーゼ上に置いて血液と流体を除去し、木製舌
圧子の切片に固定し、側面を下にして試験片を10%緩
衝化ホルマリンを含む、別々に標識した容器に入れた。
定性的組織病理学的検査のために、試験片を獣医の皮膚
病理学者に送った。
TOH60%、水10%及びPEG30%の局所製剤と
して、ビヒクルのみと共に調製した。ミノキシジルは地
方の薬局から市販製剤ロゲイン(登録商標)として購入
した。ロゲイン(登録商標)は同一の製剤ベース(formu
lation base)で販売されている。マウスは各供試品に特
有の、固有尾標識によって確認した。マウス2匹/群は
CT1501Rと他の1種の化合物によって処置した。
マウス1匹はビヒクルとミノキシジルの各々によって処
置した。マウスは層流フード下で、顔面マスクと滅菌手
袋を着用した塗布者によって取り扱った。溶液又はマウ
スの汚染を避けるために、各マウスは別々の滅菌アプリ
ケーターによって1日に2回処置した。全てのマウスに
頭蓋骨の基部から尾の基部まで背中の中心線に沿って、
約1.5cm幅に、適当な供試品をストリップ状に塗布
した。34日間後に、全てのマウスをハロタン麻酔薬の
過剰量によって安楽死させた。皮膚生検材料を肩甲骨の
間の頚部の首筋に沿ってマウス7匹の各々から採取した
(およそのサイズは1x1.5cmであった)。全ての
試験片をガーゼ上に置いて血液と流体を除去し、木製舌
圧子の切片に固定し、側面を下にして試験片を10%緩
衝化ホルマリンを含む、別々に標識した容器に入れた。
定性的組織病理学的検査のために、試験片を獣医の皮膚
病理学者に送った。
【0109】主観的検査は、ビヒクル処置マウス(対
照)が最低に毛包を発現させたことを明らかにした。ミ
ノキシジル処置マウスでは処置に対するヘア反応が明ら
かであった。CT1501Rと他方の化合物によって処
置されたマウスは毛包の最大濃度を有した。さらに、マ
ウスの目視検査は、CT1501RマウスはCT150
1R、ミノキシジル及び対照から成る群の中で最大に
“毛深い”ことを示した。それ故、CT1501Rはこ
のモデルにおける育毛促進に少なくともミノキシジルと
同程度に良好であった。従って、1〜4%CT1501
R(重量による)の局所製剤は禿頭症を治療し、育毛を
促進するための有効な治療組成物である。
照)が最低に毛包を発現させたことを明らかにした。ミ
ノキシジル処置マウスでは処置に対するヘア反応が明ら
かであった。CT1501Rと他方の化合物によって処
置されたマウスは毛包の最大濃度を有した。さらに、マ
ウスの目視検査は、CT1501RマウスはCT150
1R、ミノキシジル及び対照から成る群の中で最大に
“毛深い”ことを示した。それ故、CT1501Rはこ
のモデルにおける育毛促進に少なくともミノキシジルと
同程度に良好であった。従って、1〜4%CT1501
R(重量による)の局所製剤は禿頭症を治療し、育毛を
促進するための有効な治療組成物である。
【0110】実施例9 この実施例は内毒素の致死量を投与されたマウスの生存
率(survival)に対するCT1501Rの効果を説明す
る。我々は、CT1501Rがマウス モデルにおける
内毒素誘導致死を防止するかどうかを判定した。バイオ
メンブラン インスチチュート(Biomembrane Institut
e)(ワシントン州,シアトル)のアニマルユーズ コミ
ティ(Animal Use Committee)によって認可されたプロト
コール下で、既に発表された報告[アシュケナジ(Ashke
nazi)等,Proc.Natl.Acad.Sci.
U.S.A.88:10535−10539,1991
年]と同様に、生後6〜8週間の雌のBalb/cマウ
スに内毒素を注入することによって、敗血症性ショック
をモデル化した。リン酸塩緩衝化生理食塩水(PBS)
中のサルモネラ アボルタス(Salmonella abortus)に等
しく由来する内毒素(シグマケミカル社,L−188
7)の約LD100量(10μg/g)を動物に静脈内注
入(i.v.)した。100μg/kgの用量のCT1
501Rを1日3回腹腔内に注入した(100ml/注
入)。対照マウスには同時に同量のビヒクル対照(PB
S)を注入した。生存率を少なくとも72時間追跡し
た。
率(survival)に対するCT1501Rの効果を説明す
る。我々は、CT1501Rがマウス モデルにおける
内毒素誘導致死を防止するかどうかを判定した。バイオ
メンブラン インスチチュート(Biomembrane Institut
e)(ワシントン州,シアトル)のアニマルユーズ コミ
ティ(Animal Use Committee)によって認可されたプロト
コール下で、既に発表された報告[アシュケナジ(Ashke
nazi)等,Proc.Natl.Acad.Sci.
U.S.A.88:10535−10539,1991
年]と同様に、生後6〜8週間の雌のBalb/cマウ
スに内毒素を注入することによって、敗血症性ショック
をモデル化した。リン酸塩緩衝化生理食塩水(PBS)
中のサルモネラ アボルタス(Salmonella abortus)に等
しく由来する内毒素(シグマケミカル社,L−188
7)の約LD100量(10μg/g)を動物に静脈内注
入(i.v.)した。100μg/kgの用量のCT1
501Rを1日3回腹腔内に注入した(100ml/注
入)。対照マウスには同時に同量のビヒクル対照(PB
S)を注入した。生存率を少なくとも72時間追跡し
た。
【0111】血漿中のサイトカイン レベルのELIS
A測定のために、麻酔したマウスの眼窩後方(retroorbi
tal)又は心臓穿刺によって血液を回収し、直ちに遠心
し、EDTA血漿を−70℃において貯蔵した。粒子を
含まない血漿を氷上で解凍し、標準マウス血漿を用いて
標準曲線を形成して、商業的ELISA検定法を用いて
サイトカイン レベルを測定した。マウス腫瘍壊死因子
αキットとインターロイキン−1αキットとは、ゲンザ
イム(マサチューセッツ州,ケンブリッジ)とエンドゲ
ン(マサチューセッツ州,ボストン)とからそれぞれ購
入した。各データ点はマウス3匹からプールしたEDT
A血清から得た、2つのELISA測定値の平均値であ
った。表3に要約したデータは独立した2回の実験から
集めたものであり;表4と5からのデータは1データ点
につきマウス3匹の単回実験から得たものである。
A測定のために、麻酔したマウスの眼窩後方(retroorbi
tal)又は心臓穿刺によって血液を回収し、直ちに遠心
し、EDTA血漿を−70℃において貯蔵した。粒子を
含まない血漿を氷上で解凍し、標準マウス血漿を用いて
標準曲線を形成して、商業的ELISA検定法を用いて
サイトカイン レベルを測定した。マウス腫瘍壊死因子
αキットとインターロイキン−1αキットとは、ゲンザ
イム(マサチューセッツ州,ケンブリッジ)とエンドゲ
ン(マサチューセッツ州,ボストン)とからそれぞれ購
入した。各データ点はマウス3匹からプールしたEDT
A血清から得た、2つのELISA測定値の平均値であ
った。表3に要約したデータは独立した2回の実験から
集めたものであり;表4と5からのデータは1データ点
につきマウス3匹の単回実験から得たものである。
【0112】マウス10匹を実験マウスと同じスケジュ
ールでPBS単独又はCT1501R単独でそれぞれ処
置した。不利な効果は認められず、生存率は実験の過程
を通して100%であった(データは示さず)。内毒素
の生存率データは全体で6回の独立した実験から要約し
た。要約の表1は6回の実験の各々の結果を列挙する。
累積生存率を表2に示し、図5としてプロットする。図
5において、各時点はマウス少なくとも20匹/群を含
む、少なくとも3回の実験を表す。フィッシャーの完全
片側検定を用いた生存データの確率分析は表3として示
す。LPS処置の直後にCT1501Rを投与した場合
には、有意な保護が与えられた。LPS処置後72時間
目の累積生存率は、LPS単独処置動物の7%に比べ
て、60%であった(p=<0.0005;表3)。
ールでPBS単独又はCT1501R単独でそれぞれ処
置した。不利な効果は認められず、生存率は実験の過程
を通して100%であった(データは示さず)。内毒素
の生存率データは全体で6回の独立した実験から要約し
た。要約の表1は6回の実験の各々の結果を列挙する。
累積生存率を表2に示し、図5としてプロットする。図
5において、各時点はマウス少なくとも20匹/群を含
む、少なくとも3回の実験を表す。フィッシャーの完全
片側検定を用いた生存データの確率分析は表3として示
す。LPS処置の直後にCT1501Rを投与した場合
には、有意な保護が与えられた。LPS処置後72時間
目の累積生存率は、LPS単独処置動物の7%に比べ
て、60%であった(p=<0.0005;表3)。
【0113】LPS処置後のCT1501R投与時間遅
延の効果も図5に示す。動物をLPSで処置し、このL
PS処置の2時間後又は4時間後に、CT1501Rを
投与した。この場合にも、CT1501Rは有意な保護
を与えた。CT1501R処置マウスの生存率は、LP
S単独処置動物の7%に比べて、2時間目に55%であ
り、4時間目には37%であった(それぞれ、p=0.
0005とp=0.001;表3)。
延の効果も図5に示す。動物をLPSで処置し、このL
PS処置の2時間後又は4時間後に、CT1501Rを
投与した。この場合にも、CT1501Rは有意な保護
を与えた。CT1501R処置マウスの生存率は、LP
S単独処置動物の7%に比べて、2時間目に55%であ
り、4時間目には37%であった(それぞれ、p=0.
0005とp=0.001;表3)。
【0114】S.アボルタス内毒素による処置後の時間
の関数として、マウスの血漿内のTNF−α、IL−1
α及びIL−6のレベルを測定した。これらのデータを
内毒素による処置直後にCT1501Rの単回i.p.
注入によって処置した動物と比較した。TNF−αレベ
ルは内毒素処置の1時間以内にピークに達した(表4と
図6)。CT1501Rによるマウス処置は、測定した
あらゆる時点において内毒素処置マウスのEDTA血漿
中のTNF−αレベルを減じた。特に、内毒素後の0.
5時間目及び1時間目のTNF−αピークレベルは、C
T1501R処置マウスではそれぞれ2.5分の1と
2.6分の1に減少した。
の関数として、マウスの血漿内のTNF−α、IL−1
α及びIL−6のレベルを測定した。これらのデータを
内毒素による処置直後にCT1501Rの単回i.p.
注入によって処置した動物と比較した。TNF−αレベ
ルは内毒素処置の1時間以内にピークに達した(表4と
図6)。CT1501Rによるマウス処置は、測定した
あらゆる時点において内毒素処置マウスのEDTA血漿
中のTNF−αレベルを減じた。特に、内毒素後の0.
5時間目及び1時間目のTNF−αピークレベルは、C
T1501R処置マウスではそれぞれ2.5分の1と
2.6分の1に減少した。
【0115】IL−1αの血漿レベルも内毒素直後のC
T1501R処置によって減少した(表5;図7)。特
に、内毒素後の6、12及び18時間目に観察されたピ
ークレベルは、それぞれ1.2分の1、4.3分の1及
び3.2分の1に減少した。最後に、IL−6測定を同
じやり方で実施した(表6;図8)。3、6及び12時
間目におけるピーク血漿レベルもCT1501R処置動
物では減少した(それぞれ、1.7分の1、2.0分の
1及び4.1分の1に減少)。
T1501R処置によって減少した(表5;図7)。特
に、内毒素後の6、12及び18時間目に観察されたピ
ークレベルは、それぞれ1.2分の1、4.3分の1及
び3.2分の1に減少した。最後に、IL−6測定を同
じやり方で実施した(表6;図8)。3、6及び12時
間目におけるピーク血漿レベルもCT1501R処置動
物では減少した(それぞれ、1.7分の1、2.0分の
1及び4.1分の1に減少)。
【0116】マウス44匹中の41匹には致死量であっ
た内毒素量を受容したマウスの生存率を,CT1501
Rは有意に強化した。CT1501Rを内毒素と同時
に、又は内毒素処置の2時間後又は4時間後に投与した
場合には、対照と比べて、生存率が改良された。内毒素
直後のCT1501Rの1回量の投与は、TNF−α、
IL−1α及びIL−6のピーク血漿レベルを有意に減
少した。
た内毒素量を受容したマウスの生存率を,CT1501
Rは有意に強化した。CT1501Rを内毒素と同時
に、又は内毒素処置の2時間後又は4時間後に投与した
場合には、対照と比べて、生存率が改良された。内毒素
直後のCT1501Rの1回量の投与は、TNF−α、
IL−1α及びIL−6のピーク血漿レベルを有意に減
少した。
【0117】
【表1】 表1.独立したマウス敗血症実験6回からの生存率データ 実験.# LPS後の LPS後の時間(生存数/全体) CT1501R投与時間 24時間 48時間 72時間 1 LPSのみ 2/4 0/4 0/4 t=0時間 4/5 4/5 4/5 t=2時間 4/5 3/5 3/5 2 LPSのみ 0/5 0/5 0/5 t=0時間 5/5 5/5 5/5 t=2時間 5/5 5/5 5/5 3 LPSのみ 1/5 1/5 1/5 t=4時間 5/5 3/5 3/5 4 LPSのみ 1/10 1/10 1/10 t=4時間 7/10 5/10 5/10 5 LPSのみ 0/10 0/10 0/10 t=0時間 9/10 7/10 3/10 t=2時間 5/10 3/10 3/10 t=4時間 7/10 4/10 2/10 6 LPSのみ 3/10 1/10 1/10 t=4時間 3/10 3/10 3/10
【0118】
【表2】 表2.表1に基づくデータからの累積マウス生存率 実験回数 LPS後の LPS後の時間(生存数/全体) CT1501R投与時間 24時間 48時間 72時間 n=6 LPSのみ 7/44 3/44 3/44 n=3 t=0時間 18/20 16/20 12/20 n=3 t=2時間 14/20 11/20 11/20 n=4 t=4時間 22/35 15/35 13/35
【0119】
【表3】 表3.表2のマウス敗血症生存率データに対するフィッシャー完全P値(片側) 実験回数 CT1501R P値(LPS後の時間) 投与時間 24時間 48時間 72時間 n=6 LPSのみ n=3 t=0時間 <0.0005 <0.0005 <0.0005 n=3 t=2時間 <0.0005 0.0005 0.0005 n=4 t=4時間 <0.0005 0.0002 0.001
【0120】
【表4】 表4.マウス血漿TNF−αELISA測定値からの平均化データ LPS後の時間 血漿TNF(pg/ml) LPSのみ LPS+CT1501R 0 0 0 0.17 8 6 0.5 990 390 1 4480 1728 2 1585 940 4 655 400 6 545 350
【0121】
【表5】 表5.マウス血漿IL−1αELISA測定値からのデータ LPS後の時間 血漿IL−1(pg/ml) LPSのみ LPS+CT1501R 0 0 0 0.17 0 0 0.5 0.01 22 1 2.25 10.8 3 41.3 33.2 6 166 133 12 139 32.3 18 150 46.7 24 16.6 43.5 36 全て死亡 18.8 48 全て死亡 0
【0122】
【表6】 表6.マウス血漿IL−6ELISA測定値からのデータ LPS後の時間 血漿IL−6(pg/ml) LPSのみ LPS+CT1501R 0 0 0 0.17 0.2 0.14 0.5 3.86 1 1 24 31.8 3 317 183 6 247 121 12 119 29.6 18 59 19.8 24 31 25.6 36 0 1.64 48 2 0.4
【0123】実施例10 この実施例はマウスにおける5−フルオロウラシル(5
−FU)誘導骨髄抑圧に対するCT1501Rの効果を
説明する。我々は、マウスモデルにおける細胞毒性化学
療法後の造血再形成のために必要な時間にCT1501
Rが影響するか否かを判定した。雌のBalb/Cマウ
ス[VAF,チャールス リバー ラボラトリーズ(Cha
rles River Laboratories),生後6〜8週間,約17.
3〜18.5g]を5−FUによって、実験1では20
0mg/kg又は実験2では190μg/kgの用量
で、腹腔内(i.p.)処置した。CT1501R又は
ビヒクル対照を5−FU投与の1日前から出発して10
0μg/kgの用量でi.p.投与して、実験1では1
3日目に、実験2では15日目に最後のマウスを殺すま
で続けた。対照には、5−FUを含まないCT1501
R又はビヒクルによって処置したマウスを含めた。5−
FU投与の2日間後から出発して、マウス(4匹/群)
をハロタン麻酔下での心臓穿刺後の頚部脱臼によって殺
し、総白血球算定と血球分画(differential count)を実
施した。血小板算定は位相対比顕微鏡を用いて2回実施
した。大腿骨を回収し、大腿骨あたりの顆粒球−マクロ
ファージコロニー形成細胞(CFU−GM)数を成長因
子としてポークウィードマイトジェン(pokeweed mitoge
n)脾臓ならし培地を用いる標準検定法[テリー フォッ
クス ラボラトリーズ(Terry Fox Laboratories);ブリ
ティッシュコロンビア州,ヴァンクーバー]を用いて測
定した。各大腿骨は別々に3回培養し、各実験時点の平
均値を算出した。統計分析に用いた標準偏差は各大腿骨
に関して測定された平均コロニー数の偏差であった。
−FU)誘導骨髄抑圧に対するCT1501Rの効果を
説明する。我々は、マウスモデルにおける細胞毒性化学
療法後の造血再形成のために必要な時間にCT1501
Rが影響するか否かを判定した。雌のBalb/Cマウ
ス[VAF,チャールス リバー ラボラトリーズ(Cha
rles River Laboratories),生後6〜8週間,約17.
3〜18.5g]を5−FUによって、実験1では20
0mg/kg又は実験2では190μg/kgの用量
で、腹腔内(i.p.)処置した。CT1501R又は
ビヒクル対照を5−FU投与の1日前から出発して10
0μg/kgの用量でi.p.投与して、実験1では1
3日目に、実験2では15日目に最後のマウスを殺すま
で続けた。対照には、5−FUを含まないCT1501
R又はビヒクルによって処置したマウスを含めた。5−
FU投与の2日間後から出発して、マウス(4匹/群)
をハロタン麻酔下での心臓穿刺後の頚部脱臼によって殺
し、総白血球算定と血球分画(differential count)を実
施した。血小板算定は位相対比顕微鏡を用いて2回実施
した。大腿骨を回収し、大腿骨あたりの顆粒球−マクロ
ファージコロニー形成細胞(CFU−GM)数を成長因
子としてポークウィードマイトジェン(pokeweed mitoge
n)脾臓ならし培地を用いる標準検定法[テリー フォッ
クス ラボラトリーズ(Terry Fox Laboratories);ブリ
ティッシュコロンビア州,ヴァンクーバー]を用いて測
定した。各大腿骨は別々に3回培養し、各実験時点の平
均値を算出した。統計分析に用いた標準偏差は各大腿骨
に関して測定された平均コロニー数の偏差であった。
【0124】ビヒクル対照又はCT1501Rによって
処置したマウスは明らかな不利な影響を受けなかった。
ビヒクル対照のみで処置されたマウスは、時間と共に、
絶対好中球数(ANC)及び白血球数(WBC)の増加
を示したが、これはCT1501R処置マウスでは見ら
れなかった。これらの差は0日目の値と4日目及び8日
目の値とは有意に異なった(それぞれ、p=0.012
とp=0.016;両側スチューデント検定)。CT1
501R投与マウスに比較した場合に、対照処置マウス
は4日目に有意に高い白血球数を有し(p=0.00
9)、12日目に有意に高い好中球数を有した(p=
0.028)。対照処置マウスは0日目の値に比べて、
12日目の顆粒球数の有意な上昇を示した(p=0.0
28)。CT1501R処置マウスのWBCとANCは
対照値の1SD内に留まった。
処置したマウスは明らかな不利な影響を受けなかった。
ビヒクル対照のみで処置されたマウスは、時間と共に、
絶対好中球数(ANC)及び白血球数(WBC)の増加
を示したが、これはCT1501R処置マウスでは見ら
れなかった。これらの差は0日目の値と4日目及び8日
目の値とは有意に異なった(それぞれ、p=0.012
とp=0.016;両側スチューデント検定)。CT1
501R投与マウスに比較した場合に、対照処置マウス
は4日目に有意に高い白血球数を有し(p=0.00
9)、12日目に有意に高い好中球数を有した(p=
0.028)。対照処置マウスは0日目の値に比べて、
12日目の顆粒球数の有意な上昇を示した(p=0.0
28)。CT1501R処置マウスのWBCとANCは
対照値の1SD内に留まった。
【0125】5−FU処置マウスのWBCは、6日目及
び10日目に、CT1501R処置マウスにおけるより
もビヒクル処置対照マウスにおいて有意に低かった(そ
れぞれ、p=0.019とp=0.036)(図1
0)。血球分画では、全ての血球(cell)は6日目と8日
目に両群においてリンパ球の形状を有した。CT150
1R処置マウスでは10日目に幾つかの単球が認めら
れ、顆粒球は稀に認められた。13日目に、440±1
7/mm3の平均値±SD ANCを有したが、対照マ
ウスは180±10/mm3を有した(p=0.05)
(図10)。
び10日目に、CT1501R処置マウスにおけるより
もビヒクル処置対照マウスにおいて有意に低かった(そ
れぞれ、p=0.019とp=0.036)(図1
0)。血球分画では、全ての血球(cell)は6日目と8日
目に両群においてリンパ球の形状を有した。CT150
1R処置マウスでは10日目に幾つかの単球が認めら
れ、顆粒球は稀に認められた。13日目に、440±1
7/mm3の平均値±SD ANCを有したが、対照マ
ウスは180±10/mm3を有した(p=0.05)
(図10)。
【0126】造血前駆細胞の回復はCFU−GM数/大
腿骨の測定によって推定される。5−FU処置後に、ビ
ヒクル対照とCT1501R処置マウスの両方は、回復
の開始時の8日目までに測定不能なレベル近くにCFU
−GMを抑圧した(図13)。13日目までに、有意な
分散が存在した。CT1501R処置マウスはビヒクル
対照動物(p=0.024)及び0日目に処置前に殺し
た動物(p=0.05)よりも有意に多いCFU−GM
数/大腿骨を13日目に有し、このことは前駆細胞回復
のオーバーシュート(overshoot)が存在することを実証
した。
腿骨の測定によって推定される。5−FU処置後に、ビ
ヒクル対照とCT1501R処置マウスの両方は、回復
の開始時の8日目までに測定不能なレベル近くにCFU
−GMを抑圧した(図13)。13日目までに、有意な
分散が存在した。CT1501R処置マウスはビヒクル
対照動物(p=0.024)及び0日目に処置前に殺し
た動物(p=0.05)よりも有意に多いCFU−GM
数/大腿骨を13日目に有し、このことは前駆細胞回復
のオーバーシュート(overshoot)が存在することを実証
した。
【0127】実験2は下記事項:(1)5−FU用量を
185mg/kgに減じた;(2)10日目から15日
目まで毎日採血(blood draw)を実施した;及び(3)血
小板算定を実施したことを除いて、実験1と同様であっ
た。実験2からの結果は、図10〜13にグラフとして
示す。第1実験と同様に、CT1501Rによって処置
したマウスは有意に高いWBCを有した(図10)。C
T1501R処置マウスでは、好中球回復が増進された
(図12)。血小板最低数(nadir)と回復率もビヒクル
対照動物に比べて増加した(図11)。細胞数/大腿骨
は造血回復中に、CFU−GM数/大腿骨と同様に、対
照動物に比べて増加した(図13)。
185mg/kgに減じた;(2)10日目から15日
目まで毎日採血(blood draw)を実施した;及び(3)血
小板算定を実施したことを除いて、実験1と同様であっ
た。実験2からの結果は、図10〜13にグラフとして
示す。第1実験と同様に、CT1501Rによって処置
したマウスは有意に高いWBCを有した(図10)。C
T1501R処置マウスでは、好中球回復が増進された
(図12)。血小板最低数(nadir)と回復率もビヒクル
対照動物に比べて増加した(図11)。細胞数/大腿骨
は造血回復中に、CFU−GM数/大腿骨と同様に、対
照動物に比べて増加した(図13)。
【0128】5−FUの高度骨髄抑圧量を受容したマウ
スでは、CT1501R処置が好中球数の上昇率と、関
連する骨髄性前駆細胞による骨髄再集団(marrow repopu
lation)率とを増加させた。CT1501Rは各測定時
点において総WBCの5−FU誘導抑制を阻止した。し
かし、10日目までに、小リンパ球の形態学的出現によ
って細胞は増加した。実験1では13日目に、実験2で
は10日目にCT1501R処置マウス中の好中球はビ
ヒクル対照処置マウスにおけるよりも有意に増加した。
CT1501Rによる造血回復の刺激は巨核球系統にも
影響を与えた。試験動物は対照動物よりも有意に高い血
小板最低数を有し、ビヒクル対照よりも迅速な血小板数
上昇と大きなオーバーシュートとを示した。
スでは、CT1501R処置が好中球数の上昇率と、関
連する骨髄性前駆細胞による骨髄再集団(marrow repopu
lation)率とを増加させた。CT1501Rは各測定時
点において総WBCの5−FU誘導抑制を阻止した。し
かし、10日目までに、小リンパ球の形態学的出現によ
って細胞は増加した。実験1では13日目に、実験2で
は10日目にCT1501R処置マウス中の好中球はビ
ヒクル対照処置マウスにおけるよりも有意に増加した。
CT1501Rによる造血回復の刺激は巨核球系統にも
影響を与えた。試験動物は対照動物よりも有意に高い血
小板最低数を有し、ビヒクル対照よりも迅速な血小板数
上昇と大きなオーバーシュートとを示した。
【0129】造血の刺激は骨髄細胞充実性(marrow cel
lurality)の回復と骨髄前駆細胞の定量化との両方によ
っても証明された。CT1501R処置マウスは造血回
復中に、対照動物に比べて、CFU−GM数/大腿骨の
約2倍の増加を示した。
lurality)の回復と骨髄前駆細胞の定量化との両方によ
っても証明された。CT1501R処置マウスは造血回
復中に、対照動物に比べて、CFU−GM数/大腿骨の
約2倍の増加を示した。
【0130】5−FUを受容しなかった動物では、CT
1501Rによる処置がビヒクル対照に付随するANC
上昇とCFU−GM/大腿骨上昇の両方を阻止した。C
T1501R処置動物の全てが非注入対照の1標準偏差
以内にANCを維持した。CT1501Rが1日2回の
i.p.注入に対するストレス誘導反応と恐らくサイト
カイン誘導反応をも阻止したように思われる。
1501Rによる処置がビヒクル対照に付随するANC
上昇とCFU−GM/大腿骨上昇の両方を阻止した。C
T1501R処置動物の全てが非注入対照の1標準偏差
以内にANCを維持した。CT1501Rが1日2回の
i.p.注入に対するストレス誘導反応と恐らくサイト
カイン誘導反応をも阻止したように思われる。
【0131】総合的に、上記データは細胞毒性薬物又は
細胞減少治療後の造血再構成を促進するためのCT15
01Rと本発明化合物との使用方法を支持する。
細胞減少治療後の造血再構成を促進するためのCT15
01Rと本発明化合物との使用方法を支持する。
【図1】図1は、CT1501R(R-(-)(5−ヒドロ
キシヘキシル)テオブロミン)およびPTXに対する混
合リンパ球反応を示す。混合リンパ球反応は、ツーウェ
イ方式の混合リンパ球反応によって調べたところ、同種
異系刺激に対してPBMC(末梢血単核細胞)の増殖反
応を示す。CT1501RおよびPTXは共に、この免
疫調節活性測定方法において用量作用活性を示した。
キシヘキシル)テオブロミン)およびPTXに対する混
合リンパ球反応を示す。混合リンパ球反応は、ツーウェ
イ方式の混合リンパ球反応によって調べたところ、同種
異系刺激に対してPBMC(末梢血単核細胞)の増殖反
応を示す。CT1501RおよびPTXは共に、この免
疫調節活性測定方法において用量作用活性を示した。
【図2】図2は、抗ミュー抗体、IL−4、または抗ミ
ュー抗体にIL−4をクロスリンクしたものによって刺
激されたマウスB細胞の増殖のCT1501Rによる抑
制効果を示す。
ュー抗体にIL−4をクロスリンクしたものによって刺
激されたマウスB細胞の増殖のCT1501Rによる抑
制効果を示す。
【図3】図3は、コンカナバリンA(ConA)とイン
ターロイキン−1α(IL−1α若しくはインターロイ
キン−2(IL−2)による増殖のCT1501Rによ
る抑制効果を示す。ConAとIL−1α若しくはIL
−2による活性化の2時間前に、CT1501Rを示し
た用量だけ加えた。図3に示されるように、CT150
1Rは胸腺細胞の増殖を用量依存的に抑制した。バック
グランドは200cpmより小さかった。
ターロイキン−1α(IL−1α若しくはインターロイ
キン−2(IL−2)による増殖のCT1501Rによ
る抑制効果を示す。ConAとIL−1α若しくはIL
−2による活性化の2時間前に、CT1501Rを示し
た用量だけ加えた。図3に示されるように、CT150
1Rは胸腺細胞の増殖を用量依存的に抑制した。バック
グランドは200cpmより小さかった。
【図4】図4は、PDGF(血小板由来成長因子)およ
びIL−1によって刺激された平滑筋の増殖のCT15
01RおよびPTXによる抑制効果を示す。PDGFお
よびIL−1による活性化の2時間前にCT1501R
およびPTXを別々に加えた。図4に示されるように、
両薬剤共、テストした中で高い用量を用いた場合に平滑
筋細胞の増殖を抑制した。CT1501RはPTXより
も活性が高かった。
びIL−1によって刺激された平滑筋の増殖のCT15
01RおよびPTXによる抑制効果を示す。PDGFお
よびIL−1による活性化の2時間前にCT1501R
およびPTXを別々に加えた。図4に示されるように、
両薬剤共、テストした中で高い用量を用いた場合に平滑
筋細胞の増殖を抑制した。CT1501RはPTXより
も活性が高かった。
【図5】図5は、マウスのエンドトキシンによる致死の
CT1501Rによる抑制を、最大6回の独立した実験
における生存マウスの累積パーセントで示す(N=実験
回数)。動物に10μg/gmのLPSを投与した(静
脈注射)。LPSを与えた直後(t=0)、2時間後
(t=2)、または4時間後(t=4)にマウスにCT
1501R(100mg/kg、腹腔内投与)の1回目
の投与を行った。その後、マウスにCT1501Rを1
日に3回投与し、動物の生存率をモニターした。
CT1501Rによる抑制を、最大6回の独立した実験
における生存マウスの累積パーセントで示す(N=実験
回数)。動物に10μg/gmのLPSを投与した(静
脈注射)。LPSを与えた直後(t=0)、2時間後
(t=2)、または4時間後(t=4)にマウスにCT
1501R(100mg/kg、腹腔内投与)の1回目
の投与を行った。その後、マウスにCT1501Rを1
日に3回投与し、動物の生存率をモニターした。
【図6】図6は、エンドトキシン処理後のマウス血清T
NF−αレベルを示す。各値は、2回のELISA測定
の平均からなる、2回の実験の平均値を示しており、各
点は3匹のマウスからプールした血漿について価を示
す。
NF−αレベルを示す。各値は、2回のELISA測定
の平均からなる、2回の実験の平均値を示しており、各
点は3匹のマウスからプールした血漿について価を示
す。
【図7】図7は、マウス血漿IL−1αELISA測定
のデータを示す。データは、2回のELISA測定の平
均からなる、1回の実験の平均値を示しており、各点は
3匹のマウスからプールした血漿について価を示す。
のデータを示す。データは、2回のELISA測定の平
均からなる、1回の実験の平均値を示しており、各点は
3匹のマウスからプールした血漿について価を示す。
【図8】図8は、マウス血漿IL−6ELISA測定の
データを示す。データは、2回のELISA測定の平均
からなる、1回の実験の平均値を示しており、各点は3
匹のマウスからプールした血漿について価を示す。
データを示す。データは、2回のELISA測定の平均
からなる、1回の実験の平均値を示しており、各点は3
匹のマウスからプールした血漿について価を示す。
【図9】図9は、CT1501Rの大量合成工程の流れ
図(フローチャート)を示す。
図(フローチャート)を示す。
【図10】図10は、5−フルオロウラシルで処理した
後(0日目)、1日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均WBCを示
す。この実験は、図10−13で述べられるように造血
のin vivoモデルである。各時点において4匹の
マウスのグループを瀉血した。グラフの各値は平均値±
1SDを示す。
後(0日目)、1日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均WBCを示
す。この実験は、図10−13で述べられるように造血
のin vivoモデルである。各時点において4匹の
マウスのグループを瀉血した。グラフの各値は平均値±
1SDを示す。
【図11】図11は、5−フルオロウラシルで処理した
後(0日目)、0日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均血小板数を
示す。各時点において4匹のマウスのグループを瀉血し
た。グラフの各値は平均値±1SDを示す。
後(0日目)、0日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均血小板数を
示す。各時点において4匹のマウスのグループを瀉血し
た。グラフの各値は平均値±1SDを示す。
【図12】図12は、0日目からCT1501Rまたは
媒体コントロールを2回/日投与したマウスの平均好中
球数を絶対値で示す。各時点において4匹のマウスのグ
ループを瀉血した。グラフの各値は平均値±1SDを示
す。
媒体コントロールを2回/日投与したマウスの平均好中
球数を絶対値で示す。各時点において4匹のマウスのグ
ループを瀉血した。グラフの各値は平均値±1SDを示
す。
【図13】図13は、5−フルオロウラシルで処理した
後(0日目)、0日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均CFU−G
M/大腿骨を示す。各時点において4匹のマウスのグル
ープを殺し、一本の大腿骨を採集する。グラフの各値
は、三回の培養でテストした各個体当たりのコロニー数
の平均値±1SDを示す。
後(0日目)、0日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均CFU−G
M/大腿骨を示す。各時点において4匹のマウスのグル
ープを殺し、一本の大腿骨を採集する。グラフの各値
は、三回の培養でテストした各個体当たりのコロニー数
の平均値±1SDを示す。
【図14】図14は、化学治療後の生存率に対するCT
−1501Rの効果を示す。
−1501Rの効果を示す。
【図15】図15は、CT1501Rを、別の敗血症シ
ョック薬剤である、二官能性TNF受容体(Genen
tech社)(Ashkenaziら., Proc.N
atl.Acad.Sci.USA 88:10535,1
991)の公表されている値と比較したものである。両
薬剤は、致死量のLPS(エンドトキシン)投与とほぼ
同時に投与した。このin vivo実験の比較シリー
ズでは、薬剤投与の時間に関係なく、CT1501Rの
方がGenentech社製TNF受容体よりも一貫し
て生存率の増加を促進した。
ョック薬剤である、二官能性TNF受容体(Genen
tech社)(Ashkenaziら., Proc.N
atl.Acad.Sci.USA 88:10535,1
991)の公表されている値と比較したものである。両
薬剤は、致死量のLPS(エンドトキシン)投与とほぼ
同時に投与した。このin vivo実験の比較シリー
ズでは、薬剤投与の時間に関係なく、CT1501Rの
方がGenentech社製TNF受容体よりも一貫し
て生存率の増加を促進した。
【図16】図16は、CT1501Rを、別の敗血症シ
ョック薬剤である、二官能性TNF受容体(Genen
tech社)(Ashkenaziら., Proc.N
atl.Acad.Sci.USA 88:10535,1
991)の公表されている値と比較したものである。両
薬剤は、致死量のLPS(エンドトキシン)投与から2
時間後に(図16)投与した。このin vivo実験
の比較シリーズでは、薬剤投与の時間に関係なく、CT
1501Rの方がGenentech社製TNF受容体
よりも一貫して生存率の増加を促進した。
ョック薬剤である、二官能性TNF受容体(Genen
tech社)(Ashkenaziら., Proc.N
atl.Acad.Sci.USA 88:10535,1
991)の公表されている値と比較したものである。両
薬剤は、致死量のLPS(エンドトキシン)投与から2
時間後に(図16)投与した。このin vivo実験
の比較シリーズでは、薬剤投与の時間に関係なく、CT
1501Rの方がGenentech社製TNF受容体
よりも一貫して生存率の増加を促進した。
【図17】図17は、CT1501R、そのS異性体で
あるCT1501S、およびPTXのリソホスファチジ
ン酸アシルトランスフェラーゼ(LPAAT)(第二メ
ッセンジャーシグナル伝達に関与する酵素)に対するi
n vivo抑制についての比較を示している。図から
わかるように、臨床現場で達成可能なIC50濃度にお
いてCT1501Rのみが酵素活性を著しく阻害した。
LPAAT活性はIL−1βで刺激した3T3 Ras
形質転換繊維芽細胞を用いて決定した。
あるCT1501S、およびPTXのリソホスファチジ
ン酸アシルトランスフェラーゼ(LPAAT)(第二メ
ッセンジャーシグナル伝達に関与する酵素)に対するi
n vivo抑制についての比較を示している。図から
わかるように、臨床現場で達成可能なIC50濃度にお
いてCT1501Rのみが酵素活性を著しく阻害した。
LPAAT活性はIL−1βで刺激した3T3 Ras
形質転換繊維芽細胞を用いて決定した。
【図18】図18は、LPS活性化マウス腹腔マクロフ
ァージからのTNF−αの遊離のCT1501Rによる
抑制の用量作用曲線を示す。細胞を単離し、LPS活性
化(10mg/ml)の1時間前に種々の濃度のCT1
501Rの処理をするか、または処理を行わなかった。
24時間後に上清を集め、ELISAによってTNF−
αについて分析した(+/-SD)。
ァージからのTNF−αの遊離のCT1501Rによる
抑制の用量作用曲線を示す。細胞を単離し、LPS活性
化(10mg/ml)の1時間前に種々の濃度のCT1
501Rの処理をするか、または処理を行わなかった。
24時間後に上清を集め、ELISAによってTNF−
αについて分析した(+/-SD)。
【図19】図19は、LPS活性化PECにおけるIL
−1αの遊離のCT1501Rによる抑制を示す。細胞
を単離し、LPS活性化(10μg/ml)の1時間前
にCT1501R(250μM)の処理するか、または
処理を行わなかった。所定の時間経過後に上清を集め、
ELISAによってIL−1αについて分析した(+/-
SD)。
−1αの遊離のCT1501Rによる抑制を示す。細胞
を単離し、LPS活性化(10μg/ml)の1時間前
にCT1501R(250μM)の処理するか、または
処理を行わなかった。所定の時間経過後に上清を集め、
ELISAによってIL−1αについて分析した(+/-
SD)。
【図20】図20は、IL−1α活性化マウス腹腔マク
ロファージからのTNF−αの遊離の抑制を示す。細胞
を単離し、IL−1α活性化の1時間前にCT1501
R(250μM)の処理をするか、または処理を行わな
かった。活性化から24、48、または72時間経過後
に上清を集め、ELISAによってTNF−αについて
分析した(+/-SD)。
ロファージからのTNF−αの遊離の抑制を示す。細胞
を単離し、IL−1α活性化の1時間前にCT1501
R(250μM)の処理をするか、または処理を行わな
かった。活性化から24、48、または72時間経過後
に上清を集め、ELISAによってTNF−αについて
分析した(+/-SD)。
【図21】図21は、U937細胞の活性化HUVEC
への接着の抑制を示す。HUVECに250μM CT
1501Rを加えた後1時間後に、または加えずに、I
L−1α(100ng/ml);TNF−α(10ng/
ml)若しくはLPS(10mg/ml)で刺激した。
12時間後に、細胞のBCECFラベルしたU937細
胞への接着について分析した。図21は、各処理グルー
プの相対BCECF蛍光(+/-SD)を示す。
への接着の抑制を示す。HUVECに250μM CT
1501Rを加えた後1時間後に、または加えずに、I
L−1α(100ng/ml);TNF−α(10ng/
ml)若しくはLPS(10mg/ml)で刺激した。
12時間後に、細胞のBCECFラベルしたU937細
胞への接着について分析した。図21は、各処理グルー
プの相対BCECF蛍光(+/-SD)を示す。
【図22】図22は、活性化U937細胞のHUVEC
への接着の抑制を示す。U937細胞に250μM C
T1501Rを加えた後1時間後に、または加えずに、
種々の濃度のIL−1αで刺激した。12時間後に、U
937細胞をBCECFで標識し、HUVECへ接着さ
せた。図21は、各処理グループの相対BCECF蛍光
(+/-SD)を示す。
への接着の抑制を示す。U937細胞に250μM C
T1501Rを加えた後1時間後に、または加えずに、
種々の濃度のIL−1αで刺激した。12時間後に、U
937細胞をBCECFで標識し、HUVECへ接着さ
せた。図21は、各処理グループの相対BCECF蛍光
(+/-SD)を示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ビアンコ,ジェームズ・エイ アメリカ合衆国ワシントン州98126,シア トル,ファウントレロイ・アベニュー 2349 サウスウエスト,ユニット ナンバ ー 301 (72)発明者 ウッドソン,ポール アメリカ合衆国ワシントン州98011,ボセ ル,ノースイースト・ワンハンドレッドフ ォーティセカンド・コート 9218 (72)発明者 ポルベック,デーヴィッド アメリカ合衆国ワシントン州98026,エド モンズ,ツーハンドレッドサーティエイ ス・ストリート 8723 サウスウエスト, ユニット ナンバー シー−11 (72)発明者 シンガー,ジャック アメリカ合衆国ワシントン州98112,シア トル,イースト・スプリング・ストリート 3515
Claims (13)
- 【請求項1】式: 【化1】 [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、 R2およびR3は独立に、所望により炭素原子の代りに1
つ、又は隣接しない2つの酸素原子を含んでいてもよ
い、アルキル(C1-12)である]で示される化合物を含
む置換キサンチン化合物。 - 【請求項2】R1がR鏡像異性体として水酸基を含むC6
アルキルである請求項1記載の化合物。 - 【請求項3】R−1−(5−ヒドロキシヘキシル)テオ
ブロミンである請求項2記載の化合物。 - 【請求項4】R1が6−ヒドロキシヘプチル又は7−ヒ
ドロキシオクチルのR異性体である請求項1記載の化合
物。 - 【請求項5】患者への経口投与、非経口投与、ex v
ivo投与又は局所投与用に処方された、請求項1記載
の化合物と薬剤学的に受容される助剤とを含む薬剤組成
物。 - 【請求項6】化合物の経口投与量が約500mg〜約1
500mg1日2回又は3回であり、非経口投与量が2
4時間の過程にわたって投与される(静脈内注射、腹腔
内投与、筋肉内注射又は皮下注射)約1.0g〜約5.
0gであり、局所製剤濃度が約1重量%〜約4重量%で
あり、ex vivo培養濃度が約10μM〜約500
μMである請求項5記載の薬剤組成物。 - 【請求項7】増強した第二メッセンジャー活性によって
仲介される疾患を治療する薬物を製造するための請求項
1記載の置換キサンチン化合物の使用において、該疾患
が外部の又はin situの第1刺激に対する免疫応
答又は細胞反応を抑制することを特徴とする又は抑制す
ることによって治療されることができ、該細胞反応が細
胞の細胞膜の内部リーフレットに隣接して作用する特異
的なリン脂質ベースの第2メッセンジャーによって仲介
される前記使用。 - 【請求項8】活性化癌遺伝子に応答した癌細胞の増殖;
細胞減少治療によって惹起される血球細胞欠損(hematoc
ytopenia);T細胞応答若しくはB細胞応答、および抗
体の産生によって惹起される自己免疫疾患;敗血症性シ
ョック;腫瘍壊死因子(TNF)に対する間葉細胞の耐
性;成長因子に応答した平滑筋細胞、内皮細胞、繊維芽
細胞及びその他の種類の細胞の増殖;アテローム硬化
症;再狭窄;冠状動脈疾患;血管疾患;ヒト免疫不全ウ
イルス感染症;IL−1、mip−1α、PDGFもし
くはFGFに応答した、腎臓糸球体間質細胞の増殖;炎
症;シクロスポリンA又はアンホテリシンB治療に反応
した腎臓糸球体もしくは尿細管中毒;細胞減少治療に応
答した臓器中毒;非アルキル化抗癌剤の抗癌作用の増
強;細胞表面メタロプロテアーゼの産生又はIgEに反
応したマスト細胞および好塩基球の脱顆粒反応を特徴と
する炎症刺激に反応したアレルギー;破骨細胞による破
骨細胞活性化因子(OAF)の過剰産生によって惹起さ
れる骨疾患;神経伝達物質のエピネフリン及びアセチル
コリンのシグナル導入減少によって惹起される中枢神経
系(CNS)疾患;及びこれらの組合せ:から成る群か
ら選択される疾患を治療するための薬剤の製造への請求
項1記載の置換キサンチン化合物の使用。 - 【請求項9】敗血症性ショックを含めた敗血症症状を治
療又は予防するための薬剤の製造への請求項1記載の置
換キサンチン化合物の使用。 - 【請求項10】細胞減少療法によって惹起される造血毒
性又は器官毒性を治療又は予防するための薬剤の製造へ
の請求項1記載の置換キサンチン化合物の使用。 - 【請求項11】シクロスポリンA及びFK506を含め
た免疫抑制剤療法によって惹起される副作用を治療又は
予防するための薬剤の製造への請求項1記載の置換キサ
ンチン化合物の使用。 - 【請求項12】細胞減少療法によって惹起される疾患、
禿頭症、脱毛又はアロペシア(alopecia)を治療するため
の薬剤の製造への請求項1記載の置換キサンチン化合物
の使用。 - 【請求項13】腫瘍に伴う苦痛、ホルモン関連障害、神
経障害、自己免疫疾患、炎症、再狭窄、高血圧、好まし
くない免疫反応、ウイルス感染症、腎炎、粘膜炎、アレ
ルギー反応、及び中枢神経系の障害から成る群から選択
される疾患を治療するための薬剤の製造への請求項1記
載の置換キサンチン化合物の使用。
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|---|---|---|---|
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| DE69528585D1 (de) * | 1994-05-16 | 2002-11-21 | Cell Therapeutics Inc | Asymmetrische synthese von chiralen sekondären alkoholen |
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| DE4430127A1 (de) * | 1994-08-25 | 1996-03-14 | Hoechst Ag | Kombinationspräparat, enthaltend Cyclosporin A oder FK506 und ein Xanthinderivat |
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| US6273913B1 (en) | 1997-04-18 | 2001-08-14 | Cordis Corporation | Modified stent useful for delivery of drugs along stent strut |
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