JPH08259565A - 鏡像異性体ヒドロキシル化キサンチン化合物 - Google Patents

鏡像異性体ヒドロキシル化キサンチン化合物

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JPH08259565A
JPH08259565A JP8043625A JP4362596A JPH08259565A JP H08259565 A JPH08259565 A JP H08259565A JP 8043625 A JP8043625 A JP 8043625A JP 4362596 A JP4362596 A JP 4362596A JP H08259565 A JPH08259565 A JP H08259565A
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cells
cell
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ct1501r
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ビアンコ,ジェームズ・エイ
Paul Woodson
ウッドソン,ポール
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ポルベック,デーヴィッド
Jack Singer
シンガー,ジャック
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Cell Therapeutics Inc
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Abstract

(57)【要約】 (修正有) 【課題】 種々の炎症性および増殖刺激を受けた非常に
多様な細胞において恒常性の維持に使用できる化合物お
よび医薬組成物を提供する。 【解決手段】 下記式: [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代りに1つ、又は隣接しな
い2つの酸素原子を含んでいてもよい、アルキル(C
1-12)である]で示される化合物を含む置換キサンチン
化合物。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、ヒドロキシル置換
キサンチン化合物の異性体(isomer)は立体特異
的な細胞二次伝達経路を介した刺激に対する細胞応答を
調節するのに有効な薬剤であるという発見に関する。具
体的には、本発明の化合物は、3,7−ジ置換キサンチ
ンの1位において置換された、直鎖アルキル(C5-8
のω−1アルコールのRまたはS(好ましくはR)鏡像
異性体(enantiomer)である。本発明の化合
物は、特異的なsn-2不飽和ホスファチジン酸、およ
び細胞増殖刺激に応答してホスファチジン酸(PA)経
路を介して生産される対応するホスファチジン酸由来の
ジアシルグリセロールの細胞内レベルを制御するための
有効な拮抗薬である。
【0002】
【従来の技術】ペントキシフィリン(1-(5-オキソヘ
キシル)-3,7-ジメチルキサンチン)(以下、PTXと
呼ぶ)は、キサンチン誘導体で、血流増加のための医薬
用途に広く使用されている。PTXは米国特許第3,4
22,307号および第3,737,433号に開示され
ている。PTXの代謝物については、DavisらのA
pplied Environment Microbi
ol. 48:327,1984に総説が述べられてい
る。PTXの代謝物の一つは1-(5-ヒドロキシヘキシ
ル)-3,7-ジメチルキサンチン(以下、M1と呼ばれて
いる)であり、ラセミ混合物(racemic mix
ture)として得られている。M1(ラセミ混合物)
もまた、(単に血流を増加するというのではなく)大脳
の血流を増加するものとして、米国特許第4,515,7
95号および第4,576,947号に開示されている。
さらに、米国特許第4,833,146号および第5,0
39,666号は、大脳血流を増強するために、キサン
チンのより短い炭素鎖を有する第三アルコール類似体の
使用を開示している。続く代謝の研究では、PTXはS
鏡像異性体に代謝されることが発見されている。
【0003】さらに、米国特許第4,636,507号
は、PTXおよびM1(ラセミ混合物)は走化性刺激因
子に応答して多形核白血球に化学走性を引き起こす能力
を有することが記載されている。PTXおよび関連する
第三アルコール−置換キサンチンはある種のサイトカイ
ンの活性を抑制し、化学走性に影響を与える(米国特許
第4,965,271号および米国特許第5,096,90
6号)。同種異系骨髄移植を受けた患者にPTXおよび
GM−CSFを投与すると、患者の腫瘍壊死因子(TN
F)のレベルが下がる(Biancoら、 Blood
76:Supplement 1(522A),199
0)。TNFの検出可能なレベルでの減少に伴い、骨髄
移植に関連する合併症も減少した。しかし、健常な志願
者では、PTX投与を受けた者のTNFレベルは高かっ
た。従って、TNFレベルの上昇はこれらの合併症の主
要な要因ではない。
【0004】キラル中心を有する薬剤は、通常ラセミ化
合物として販売される。どの開示を見てもM1代謝物は
立体特異性である。実際、(人体内の代謝により)M1
はS異性体のみまたは主にS異性体として生産されるよ
うである。薬剤をラセミ混合物として製造し服用するこ
とは、薬剤の各服用量に、通常は治療上の価値がなく予
想外の副作用を引き起こす可能性のある異性体が等量混
ざっていることを意味する。例えば、鎮静剤のサリドマ
イドはラセミ混合物として販売された。望みの鎮静活性
はR異性体が有していたが、混ざっているS異性体は催
奇物質で、この薬剤を使用している母親から生まれた赤
ん坊に先天的欠損症を引き起こす。結核菌抑制剤のエタ
ンブトールのR,R−鏡像異性体は失明を引き起こす可
能性がある。非ステロイド系抗炎症剤ベノキサプロフェ
ン(OraflexR)の致死に至らしめる副作用は、
もしこの薬剤が純粋な鏡像異性体として販売されていた
ならば避けられたかもしれない。
【0005】鏡像異性体の純度の課題は医薬の分野に限
られない。例えば、ASANA(ir=イソプロピル)
は二つの非対称中心を有する合成ピレスロイド殺昆虫剤
である。有効な殺昆虫活性の大半は、可能性のある4種
類の立体異性体のうちのただ一種類にのみ存在する。さ
らに、殺昆虫作用を有しない3種類の立体異性体はある
種の植物種に対して細胞毒性を示す。従って、ASAN
Aは、立体異性体の混合物は適当でないので、単一の立
体異性体としてのみ販売され得る。
【0006】
【発明が解決しようとする課題】従って、人間または動
物に安全かつ効果的に投与でき、種々の炎症性刺激に対
して恒常性(homeostasis)を維持でき、そ
して、単一の異性体に存在する活性を有するように鏡像
異性体として純粋な効果的な治療用の化合物を発見する
ことが、当該分野において必要である。本発明は、その
ような化合物を探す過程において行われた。
【0007】本発明者らは、本明細書中に記載されてい
る化合物は、種々の炎症性および増殖刺激を受けた非常
に多様な細胞において恒常性の維持に使用することがで
きることを発見した。さらに、本発明の化合物および医
薬組成物は、通常の薬剤投与経路(例えば、経口投与、
局所投与、非経口投与など)に適しており、有効な投与
量を提供することができることを発見した。
【0008】本発明の化合物および医薬組成物は、3,
7−ジ置換キサンチンの1位において置換された直鎖ア
ルキル(C5-8)のω−1アルコールの、分離されたR
またはS(好ましくはR)鏡像異性体である。本発明の
化合物は、このような化合物を有効量投与する特定の投
与方式と同様に、外部刺激またはin situ 一次刺
激に対する細胞応答を調節するのに有効である。
【0009】本発明の化合物は、下記の式:
【化2】 [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代わりに1つ、または隣接
しない2つの酸素原子を含んでいてもよいアルキル(C
1-12)である]のキサンチンコアから成る化合物および
該化合物を有する医薬組成物を構成する。R1は、好ま
しくはR鏡像異性体として水酸基を有するC6アルキル
である。
【0010】本発明はさらに、本発明の化合物および薬
学的に受容可能な助剤から成り、患者に経口的、非経口
的、または局所的な投与により処方される、医薬組成物
を提供する。
【0011】本発明はさらに、外部からの若しくはin
situの一次刺激に対する免疫応答若しくは(細胞
の細胞膜の内部葉状組織の隣接部で機能する、特異的な
リン脂質ベースの第二メッセンジャーによって媒介され
る)細胞性応答が抑制されることにより特徴付けられ
る、または、そのような抑制により治療される、種々の
病気を有する患者を治療する方法を提供する。第二伝達
経路は、種々の病状に特徴的な種々の有毒なまたは増殖
的な刺激に応答して活性化される。この第二伝達経路の
生化学について本明細書に記載する。より具体的には、
本発明は、ここに記載される第二伝達経路を介した細胞
シグナルを抑制することによって、種々の病状の臨床上
の症状を治療若しくは予防する、または他の治療による
毒性を緩和する方法に関する。病状または治療による毒
性は、下記のものからなるグループから選択される。
【0012】活性化癌遺伝子に応答した癌細胞の増殖;
細胞減少治療(cytoreductive therapies)又は微生物
性病原体の感染による血球細胞欠損(hematocytopeni
a);T細胞応答若しくはB細胞応答、および抗体の生
産による自己免疫疾患;敗血性ショック;腫瘍壊死因子
(TNF)に対する間葉細胞の耐性;PDGF−AA,
BB、FGF、EGF等の成長因子に応答した平滑筋細
胞、内皮細胞、繊維芽細胞およびその他の細胞種の増殖
のような、細胞増殖または細胞活性の脱制御(例えば、
アテローム硬化、再狭窄、卒中および冠状動脈疾患);
ヒト免疫不全ウイルス感染(AIDSおよびAIDS関
連合併症);IL−1、mip−1α、PDGF、また
はFGFに応答した腎糸球体間質細胞の、種々の炎症性
腎臓疾患を引き起こす増殖;炎症;シクロスポリンA
(cyclosporin A)またはアムホテリシン
B(amphotericin B)治療に応答する腎
臓糸球体または腎臓管の毒性;細胞減少治療(例えば、
細胞毒性薬剤または放射線)に反応した器官中毒(例え
ば、胃腸上皮または肺上皮);非アルキル化抗癌剤の抗
癌作用の増強;細胞表面メタロプロテアーゼの生産また
はIgEに反応したマスト細胞および好塩基球の脱顆粒
反応(degranulation)を特徴とする、炎
症性刺激(例えば、TNF、IL−1およびこれらに類
するもの)への反応したアレルギー;破骨細胞による破
骨細胞活性化因子(OAF)の過剰生産による骨の疾
患;神経伝達物質エピネフリンおよびアセチルコリンに
よるシグナル伝達の減少による中枢神経系(CNS)疾
患;並びにこれらの組み合わせ。
【0013】特定のサイトカインを発現するように、ま
たは、増殖刺激若しくは有毒な刺激に応答して増殖する
ように細胞が刺激される場合、この刺激は特異的なリン
脂質ベースの第二メッセンジャーシグナル伝達経路を介
して伝達される。この第二伝達経路により、sn−2非
アラキドン酸不飽和化合物を含む一群のホスファチジン
酸(PA)のレベルが上昇し、該ホスファチジン酸(P
A)は対応するジアシルグリセロール(DAG)に迅速
に変換される。本発明の化合物および医薬組成物は、ホ
スファチジルイノシトール(PI)経路のような、細胞
の正常な調節機能に関与する他の第二伝達経路に影響を
与えることなく、この第二伝達経路に関与する立体特異
的な酵素を特異的に抑制する。ここに記載する、該第二
伝達経路に関与する1つまたは複数の酵素の抑制による
効果は、刺激、特に有害な刺激に対する標的細胞の応答
を”調節”することである。この生化学な現象(即ち、
サイトカインのような一次刺激に応答する、第二伝達経
路酵素の活性の抑制)は細胞シグナルに影響を与え、異
常な、炎症性のまたは有害な細胞シグナル機構による多
くの多様な病状に効果を及ぼす。
【0014】
【課題を解決するための手段】本発明は、第二メッセン
ジャー伝達系(Burstenら.,J.Biol.C
hem.266:20732,1991)の特定の段階
において細胞の反応を制御することができる一群の特定
化合物に向けられている。第二メッセンジャーは脂質ま
たはリン脂質であり、以下の略語を使用する。
【0015】PE=ホスファチジルエタノールアミン LPE=リソホスフォエタノールアミン PA=ホスファチジン酸 LPA=リソホスファチジン酸 DAG=ジアシルグリセロール LPLD=リソホスフォリパーゼ−D LPAAT=リソホスファチジン酸アシルトランスフェ
ラーゼ PAPH=ホスファチジン酸ホスフォヒドロラーゼ PLA2=ホスフォリパーゼA−2 PLD=ホスフォリパーゼD PAA=ホスフォアラキドン酸 PLA−2=ホスフォリパーゼA2 PC=ホスファチジルコリン ”再生成”PAサイクリック経路=所定のsn−1及び
sn−2位置において,L飽和の2−リノレオイルまた
は1,2−ジレオリル/1,2−sn−ジリノレオイルで
置換されたPAA、LPA、PAおよびDAG中間体 ”古典的PI経路”=1−ステアロイル,2−アラキド
ノイル脂肪酸アシル側鎖で置換されたPI、DAG、P
A中間体 ”PLDによって生成されるPA”=例えば、1,2−
sn−ジオレオイル、1−アルキル、2−リノレオイ
ル、および1−アルキル,2−ドコサヘキサノイル側鎖
によって置換されているPE、PC、LPA、PA、お
よびDAG中間体 リソホスファチジン酸トランスフェ
ラーゼ(LPAAT)は,アシルCoAからアシル基を
導入することによって、リソホスファチジン酸(LP
A)からのホスファチジン酸(PA)への合成に関与す
る。PAホスフォヒドロラーゼ(PAPH)によるホス
フェート部分の加水分解によってDAGが生成される。
経路のこれらの現象は、細胞表面上の受容体に働く一次
刺激(例えば、IL−1、IL−2またはTNFなどの
サイトカイン)による刺激によって直ちに(1分以内)
誘導されると思われる。迅速な検出可能な効果として
は、PAおよびDAGレベルの上昇がある。本発明の化
合物の投与によってこの上昇が抑制される。
【0016】本発明の化合物および医薬組成物は、1,
2−ジ不飽和および1−アルキル,2−不飽和亜種を有
する中間体に対する基質特異性を有する、PAPH酵素
のLPAAT亜種のインヒビターを含む。そのようなイ
ンヒビターの代表的な例の1つは(本発明の化合物には
含まれないが)PTXである。PIは含まず、主に1,
2−ジ不飽和および1−アルキル,2−不飽和亜種から
なるPAに由来する特異的な活性経路において、PTX
はPAPHをブロックする。これは、例えば、TNFで
刺激されたヒト糸球体間質細胞はPIからDAGを生産
し、PTX非存在下および存在下でPIを再生する現象
によって示される。後者の機構でPAまたはDAGがP
I以外のソース(source)から由来することを示
唆する証拠は何もない。本発明の化合物は、sn−2位
置にアラキドン酸以外の不飽和脂肪酸を有する基質に関
与する一群のPAPHおよびLPAATに影響を与える
が、これらの酵素のPI経路に関与する調節機能型には
与えないことを強調したい。
【0017】膜リン脂質の各サブクラス(例えば、P
A、PI、PE、PCおよびPS)は、各サブクラスの
代謝回転(trunover)と共に原形質膜の循環再
生産によって、一定量の特徴的な脂肪性アシル側鎖を有
する。PAはおおむね安定であるが、比較的少量しか存
在しない。休止細胞中のPAは、主に、通常ミリスチン
酸、ステアリン酸およびパルミチン酸からなる飽和アシ
ル側鎖から構成される。休止細胞では、PCのアシル側
鎖は、sn−1位置のアシルパルミチン酸およsn−2
位置のオレイン酸からなる。PEおよびPIは主に、s
n−1ステアリン酸およびsn−2アラキドン酸からな
る。
【0018】このように特徴的アシル基をsn−1およ
びsn−2の位置に有することから、PA種の由来は、
sn−1およびsn−2の位置のアシル基の化学的性質
から導き出すことができる。例えば、PAが酵素PLD
の働きによってPCに由来する場合には、第二伝達経路
を経由したPC基質に特徴的なアシル側鎖を含むであろ
う。さらに、全ての1,2sn−基質種の由来は、その
由来に従って識別されるであろう。しかし、各リン脂質
種がDAGに加水分解される前にPAの型を経由するか
否かを知ることが重要である。PAに、続いてDAGに
変換されるリソ−PAが示されるであろう。この第二伝
達経路の複雑さについては、第二メッセンジャーの刺激
の後、所定の時間経過後の細胞における中間体の脂肪性
アシル側鎖化学(即ち、薄層クロマトグラフィーまたは
高圧液体クロマトグラフィー)の適切な分析によって解
決することができる。
【0019】好中球、並びに、ラット若しくはヒト糸球
体間質細胞のようなある種の糸球体間質細胞において
は、数種のシグナル伝達経路が直列的に、同時に、また
はその両方で活性化されると考えられる。例えば、好中
球においては、F−Met−Leu−PheはPLDの
作用を介してPAの形成を刺激し、やがて、ひき続いて
PAPHの作用を介してDAGが形成される。数分後、
古典的ホスフォイノシトール経路を通してPIからDA
Gが生成される。多くの細胞では、DAGは、PAAが
PLA−2によってsn−2加水分解され続いてLPA
ATによってsn−2トランスアシル化されるサイクル
によって再生成されたPA、並びにPLDによってP
E、PCまたはその双方の基質から生成されたPAから
のPLD経路の両方から生成される。
【0020】ここに記載される方法は、PAおよびDA
Gの多様な亜種をアシル鎖組成に基づいて識別すること
を可能にする。この方法によって、本発明の第二伝達経
路を古典的PI経路のような他の経路と区別して活性化
する(および活性を抑制する)化合物を区別することが
できる。本発明の第二伝達経路は、sn−2位置にアラ
キドン酸塩以外の不飽和脂肪酸を有する基質、並びに、
古典的PI経路の一部である正常な細胞調節機構に関与
しないPAPHおよびLPAATの亜種を含む。本発明
の第二伝達経路に関与するPAPHおよびLPAAT酵
素は、基質の異なるアシル側鎖および異性体型に対し精
密に立体特異的である。従って、本発明の化合物は、実
質的に純粋な鏡像異性体であり、好ましくは水酸基に結
合したキラル炭素原子においてR鏡像異性体である。例
えば、CT1501のRとSの異性体は、図12に示し
たように異なるLPAAT抑制活性を持っている。さら
に、CT1501のR鏡像異性体(例えば、CT150
1R)は、ラセミ混合物(以下、M1と呼ぶ)より2−
3倍、そして、対応するS鏡像異性体よりさらにその何
倍もの効果を及ぼす。さらにまた、PTXはヒト体内で
代謝されると、ほとんどがM1のSエナチオマー、また
はCT1501Sに変換される。
【0021】PTX(in vitro)は(用量限度
副作用を起こさずに患者に与えられる濃度を越えた)高
い濃度において、LPAATにおけるPA亜種の生成を
阻害することによってPA/DAG経路を介した再生成
PAの形成を阻害する。PTXの存在下においてさえ
も、細胞はPLDの働きによってPAを生産し続け、ま
たDAGもホスフォリパーゼCの作用によってPCおよ
びPIから生成される。後者の経路は本発明の化合物ま
たはPTXによって抑制されない。PTX処理した細胞
では、再生成またはPLAによって生成されるPAに由
来するDAG(例えば、1,2−sn−ジオレオイルD
AG、1−アルキル,2−リノレオイルDAG、および
1−アルキル,2−ドコサヘキサンオリルDAG)は消
失する。従って、本発明の化合物およびPTXは、有害
な刺激によって細胞内で活性化されるが、正常な細胞調
節機構のシグナル伝達には利用されない、特異的な第二
伝達経路を選択的に抑制することによって、特定の種の
PAおよびDAGの生成のみを抑制する。
【0022】本発明の化合物の治療上の用途 主に種々の有害な刺激によって活性化される特異的な第
二伝達経路の活性化の特異的な抑制は、本発明の化合物
に多様な臨床適応症を治療するのに使用できる可能性を
提供する。さらに、例えば炎症性サイトカインを介した
有害刺激によって活性化されるが、本発明の化合物によ
って特異的に抑制される、特異的な第二メッセンジャー
の活性化という共通点を共にする、多様な臨床適応症の
予想データが、ここに示されたin vitroおよび
in vivoのデータによって提供される。実際、本
発明の化合物が多様な異なる臨床適応を有することがで
きる理由は、本発明の化合物のこの活性機構によって説
明される。本発明の第二伝達経路の活性化は、有害な刺
激に対する応答の主要な媒体であり、例えば、炎症、免
疫応答、血球細胞の再生の抑制および癌細胞の増殖を引
き起こす細胞シグナルとなる。しかし、全てのインヒビ
ターがこの第二伝達経路の全ての酵素を阻害するわけで
はない。本発明の化合物は、炎症および血球細胞再生抑
制の最も効果的な媒体である。本発明の第二伝達経路に
よって伝達されるシグナルには、例えば、LPSによる
直接の細胞応答、抗原によるT細胞活性化、抗原による
B細胞活性化、IL−1 タイプ1受容体によって伝達
される(IL−1 タイプ2受容体によっては伝達され
ない)IL−1に対する細胞応答、TNF タイプ1受
容体、活性化癌遺伝子(例えば、ras,abl,he
r2−neu等)、低親和性GM−CSF(顆粒球マク
ロファージコロニー刺激因子)受容体、並びに、PDG
F、b−FGFおよびIL−1によって刺激された平滑
筋細胞増殖が含まれる。本発明の第二伝達経路を介して
は伝達されないシグナルもあり、これらのシグナルに
は、例えば、G−CSF(顆粒球コロニー刺激因子)、
インターロイキン−3(IL−3)、SCF(幹細胞因
子)およびGM−CSFによって誘導された造血細胞の
増殖;インターロイキン−8(IL−8)またはロイコ
トリエンB4によって誘導された好中球活性;IL−2
に応答したT細胞増殖;並びに酸性FGF(繊維芽細胞
成長因子)に応答した上皮細胞増殖、が含まれる。
【0023】In vitroでは本発明の化合物は下
記の機能を有する: (1)例えば、IL−1、およびPDGF(血小板由来
成長因子)を加えたIL−1によって誘導される平滑筋
細胞および腎臓糸球体間質細胞の増殖の抑制によって示
されるように、IL−1シグナルのタイプ1 受容体を
介した伝達を阻止する; (2)例えば、好中球のCD18の上皮細胞における管
細胞接着分子(VCAM)の阻止によって示されるよう
に、接着分子の調節を抑制する; (3)TNFおよびIL−1によって誘導されるメタロ
プロテアーゼを抑制する(炎症のモデル); (4)LPS誘導細胞活性化を阻止する(敗血症ショッ
クの予防および治療); (5)抗原または架橋CD複合体によるT細胞およびB
細胞の活性化を抑制する; (6)IgGによるマスト細胞活性化を抑制する;そし
て (7)形質転換細胞および癌細胞系の悪性表現型を抑制
する。
【0024】前述のin vitro効果から、以下の
ようなin vivo生物学的効果が得られる。該in
vivo生物学的効果には、内毒素ショックの予防およ
び治療、癌細胞増殖の抑制、細胞減少治療後の造血細胞
の刺激、GVHD(移植細胞対宿主病)予防のための相
乗的免疫抑制、および細胞枯死過程(apoptoti
c process)の抑制を介した育毛の刺激が含ま
れるがこれらに限られない。内毒素ショックの治療およ
び予防、細胞減少治療後の造血細胞の刺激、およびヌー
ドマウスにおける育毛の刺激に関するin vivoの
データをここに示す。本発明の化合物、特にCT150
1Rは、造血の刺激、敗血症ショックの予防および治
療、並びに局所的に育毛の刺激に利用するために適用し
た場合に最も効果がある。本発明の第二伝達経路の抑制
剤は免疫抑制、急性炎症、慢性炎症およびGVHDに対
しても活性を有するが、本発明の化合物は、これらに対
しては前述の症状に対する程有効でなく、より高い分子
濃度を必要とする。
【0025】本発明の化合物はさらに、本発明の第二伝
達経路を通じて伝達される薬剤の副作用を抑制する補助
剤として有用である。これらの副作用には、例えば、イ
ンターロイキン−2(IL−2)の副作用、シクロスポ
リンAおよびFK506の腎臓副作用、並びにアンホテ
リシンBの副作用が含まれる。本発明の化合物は、抗原
誘導されるT細胞の活性化を抑制する点はシクロスポリ
ンまたはFK506と共通するが、NKおよびLAK細
胞の生成を阻害せず、T細胞からのIL−2の遊離およ
びIL−8の遊離を抑制しない点は異なることに注目す
べきである。
【0026】メタロプロテアーゼは、腎糸球体疾患、関
節炎による関節破壊、および気腫による肺破壊のような
組織破壊を媒介し、癌転移に関与する。メタロプロテア
ーゼの3種類の例として、TNF、IL−1、およびP
DGF+bFGFによって誘導される92kDタイプV
ゼラチナーゼ、通常は構成酵素であり、TNF若しくは
IL−1によって誘導もされる72kDタイプIVコラゲ
ナーゼ、並びに、TNF若しくはIL−1によって誘導
されるストロメリシン/PUMP−1が挙げられる。本
発明の化合物は、TNFまたはIL−1による92kD
タイプVゼラチナーゼ誘導性メタロプロテアーゼを抑制
することができる。さらに、CT1501Rは100U
/mlのIL−1によって誘導されたPUMP−1活性
をコントール値の15%に減少させた。同じ実験によっ
て対照してみると、PTXはコントール値の95%にし
か減少させず、この値は有意ではなかった。従って、本
発明の化合物は、IL−1若しくはTNFによって誘導
されるある種のメタロプロテアーゼの誘導を阻害する
が、正常な組織再生成に関与する構成性のプロテアーゼ
(例えば、72kDタイプIVコラゲナーゼ)には関与し
ない。
【0027】本発明の化合物はタイプIIL−1受容体
を介したシグナル伝達を阻害するので、IL−1アンタ
ゴニストであると考えられる。”疾患におけるインター
ロイキン−1の機能”(Dinarello と Wol
ff N.Engl.J.Med.328,106,J
an.14,1993)という題名の最近の総説には、
IL−1の機能は”疾患の重要、迅速かつ直接的な決定
因子”であると記載されている。”例えば、敗血症で
は、IL−1は血管に直接働きかけて血小板活性化因子
および一酸化窒素の迅速な生産を介して血管拡張を誘導
する。一方、自己免疫疾患では、他の細胞を刺激して標
的細胞に働くサイトカインまたは酵素を生産させる。”
この総説は、IL−1によって媒介される一群の病気に
ついて記載している。それらには、敗血症症候群、関節
リウマチ、炎症性腸疾患、急性および骨髄性白血病、イ
ンシュリン依存性真性糖尿病、アテローム硬化、並び
に、移植拒絶、移植細胞対宿主病(GVHD),乾癬、
ぜん息、オステオポローシス、歯根膜疾患、自己免疫甲
状腺炎、アルコール性肝炎、子宮感染に伴う早期分娩、
さらに睡眠障害までも含むその他の病気、が含まれる。
本発明の化合物はIL−1 タイプI受容体を介した細胞
シグナルを抑制するIL−1アンタゴニストなので、上
述した全ての疾患の治療に有用である。
【0028】例えば、敗血症症候群では、「IL−1誘
導ショックの機構は、血小板活性化因子、プロスタグラ
ンジンおよび一酸化窒素のような小さな媒介分子の原形
質濃度を増加させることができるIL−1の機能による
と思われる。これらは、効果的な血管拡張因子であり、
研究用動物にショックを引き起こす。IL−1の活性を
阻止するとこれらの媒介分子の合成および放出が防止さ
れる。動物では、IL−1を一回静脈注入すると、平均
動脈圧が減少し、全身血管抵抗が下がり、そして白血球
減少および血小板減少が引き起こされる。ヒトにおいて
も、IL−1を静脈投与すると、同様に急速に血圧が下
がり、1日に体重1kgあたり300ng以上服用する
と著しい低血圧が引き起こされる。」「IL−1活性を
阻止する治療上の利点は、恒常性に関与する分子の生成
に影響を与えずに、有害な生物学的作用を防止できる点
にある。」本発明の化合物は、IL−1 タイプII受容
体を介した細胞シグナルに影響を与えずに、IL−1
タイプI受容体を介した細胞シグナルのみを抑制するこ
とによって、Dinarelloによって見いだされた
要求を満たしている。
【0029】関節リウマチについては、Dinarel
loは以下のように述べている;「インターロイキン−
1が、関節リウマチの患者の滑膜(synovial
lining)および滑液に存在し、そのような患者由
来の滑膜組織の組織片はinvitroでIL−1を生
産する。関節内にインターロイキン−1を注入すると、
白血球浸潤、軟骨破壊、および関節周囲の骨の再生が動
物に誘導される。単離された軟骨細胞および骨細胞にお
いてin vitroで、インターロイキン−1は、ホ
スフォリパーゼおよびシクロオキシゲナーゼの遺伝子、
並びにコラゲナーゼの遺伝子の発現の引き金となり、そ
の活性を阻止することによって、ラットの細菌−細胞壁
誘導関節炎が減少される。」 従って、本発明の化合物
はIL−1アンタゴニストとして関節リウマチの治療お
よび予防に有用である。
【0030】炎症性腸疾患については、潰瘍性大腸炎お
よびクローン病(限局性回腸炎)は、活性化された好中
球およびマクロファージを含む、腸の浸潤性病巣によっ
て特徴付けられる。IL−1は、プロスタグランジンE
2(PGE2)およびロイコトリエンB4(LTB4)のよ
うな炎症性エイコサノイド(eicosanoid)、
並びにIL−8(好中球化学誘因機能および好中球刺激
機能を有する炎症性サイトカイン)の生成を誘導するこ
とができる。PGE2およびLTB4の組織内濃度は潰瘍
性大腸炎を病む患者の重病度と関連し、炎症性腸疾患を
病む患者ではIL−1およびIL−8の組織内濃度が高
い。従って、本発明の化合物のようなIL−1アンタゴ
ニストは炎症性腸疾患の治療に効果的であろう。
【0031】急性および慢性の骨髄性白血病について
は、IL−1がこのような癌細胞に対する増殖因子とし
て機能することを示す証拠が次々と得られている。従っ
て、本発明の化合物は、急性および慢性の骨髄性白血病
が悪化するのを防止するのに効果的であると思われる。
【0032】インシュリン依存性真性糖尿病(IDD
M)は、ランゲルハンス島のβ細胞の破壊による自己免
疫疾患で、免疫担当細胞によって媒介されると考えられ
ている。自然発生のIDDM動物(BBラットまたはN
ODマウス)のランゲルハンス島は、IL−1を含む炎
症性細胞を有する。従って、本発明の化合物は、IDD
Mの予防および治療に有用であると思われる。
【0033】IL−1はアテローム硬化症の発生にも関
与している。内皮細胞はIL−1の標的である。IL−
1は管状平滑筋細胞の増殖を刺激する。高コレステロー
ル症ウサギ由来の脂肪性動脈プラークから単離された気
泡細胞は、IL−1βおよびIL−1βメッセンジャー
RNAを含んでいる。末梢血液単球に取り込まれると、
これらの細胞によるIL−1が生産が開始される。IL
−1はPDGFの生産も刺激する。これらのことを合わ
せて考えると、IL−1はアテローム硬化病変の進行に
関与しているといえる。従って、本発明の化合物のよう
なIL−1アンタゴニストは、アテローム硬化の予防お
よび治療に有用であると思われる。
【0034】本発明の化合物の生理学的および薬理学的
効果のIn vitroアッセイ 本発明の化合物の、免疫活性を調節し抗癌活性を有する
作用についての測定には、様々の細胞系を用いた多様な
in vitro分析を用いることができる。例えば、
混合白血球反応(MLR)は本発明の各化合物の生物学
的活性を決定するための有効なスクリーニング法を提供
する。MLRにおいて、PBMCs(末梢血液単球細
胞)は、健常な志願者の全血液を凝血防止のためにヘパ
リンを含んだ容器に採血し、等量のハンクス塩平衡化溶
液(HBSS)で希釈することによって得る。この混合
物をFicoll−HypaqueR勾配(比重1.0
8)のようなショ糖密度勾配に上層し、室温または冷却
して1000×gで25分間遠心する。PBMCを血漿
−フィコール界面のバンドから得て分離し、HBSSな
どの塩溶液で少なくとも2回は洗浄する。混入している
赤血球細胞をACK溶解(37℃、10分)などによっ
て溶解し、PBMCsをHBSS中で2回洗浄する。精
製PBMCsのペレットを完全培地、例えばRPMI1
640に20%ヒト不活性化血清を加えたもの、に再懸
濁する。96穴マイクロタイタープレート中で行う2種
類のMLRによって、同種異系刺激に対するPBMCの
増殖反応を決定する。簡単に述べると、完全培地200
μl中の約105個のテスト用精製PBMC細胞を、約
105個の自己由来(コントロール培養物)またはHL
Aの異なる個体に由来する同種異系(刺激培養物)のP
BMC細胞と共培養する。細胞をマイクロタイタープレ
ートに加える時に、種々の用量の化合物(薬剤)を添加
する。培養物を5%CO2条件下、37℃で6日間イン
キュベートする。インキュベーションの最後にトリチウ
ム−チミジンを加え(例えば、40−60Ci/mmo
leのものを1μCi/ウェル)、液体シンチレーショ
ンカウンターで増殖を調べる。
【0035】CoAとインターロイキン−1(IL−
1)またはインターロイキン−2(IL−2)の刺激に
よって誘導された胸腺細胞の活性化および増殖の、本発
明の化合物による抑制効果を評価するために胸腺細胞共
刺激因子分析を行う。マウス(例えば、Balb/Cマ
ウスのメス)の胸腺を回収し、培養培地(例えば血清を
加えないRPMI1640)に分離する。分離された胸
腺組織および細胞懸濁液を遠心管に移して静置し、HB
SS洗浄し、血清を加えた培養培地(例えば、10%胎
児ウシ血清を加えたRPMI1640)に再懸濁する。
混入している赤血球細胞を全て溶解させ、生存している
細胞を再懸濁して数を数える。胸腺細胞をプレートし
(例えば、96穴プレートに密度2×105細胞/
穴)、刺激剤、例えば、Con A、IL−1(例えば
IL−1α)またはIL−2、をウェルに加える。細胞
を37℃で4日間インキュベートする。4日目に細胞を
トリチウム−チミジンでパルスし、増殖を調べる。本発
明の化合物は刺激剤添加と共に加える。
【0036】生物学的活性測定に適当な用量を決定し、
活性の性質を調べるときのin vitro分析におけ
る細胞毒性反応を防ぐために、本発明の各化合物の細胞
毒性について調べた。細胞(例えば、NIH−3T3、
Ras形質転換3T3細胞、悪性メラノーマLD2細胞
等)をマイクロタイタープレートに加え、プレートの2
日後に薬剤を加えた。薬剤添加の24、48または72
時間後に、蛍光生存力染色(例えば、2',7'-ビス-
(2-カルボキシエチル)-5-(および-6)-カルボキ
シフルオレセイン アセトキシメチルエステル、BCE
CF励起488nmおよび発光525nm)によって細
胞生存力を調べる。
【0037】本発明の化合物の活性の別の測定法は、ヒ
ト由来の間質細胞を用いたPDGF(血小板由来成長因
子)増殖反応を調べることを含む。ヒト間質細胞を所定
の培地(例えば、69%マックコイ培地、12.5%胎
児ウシ血清、12.5%ウマ血清。1%抗生物質、1%
グルタミン、1%添加ビタミン、0.8%必須アミノ
酸、1%ピルビン酸ナトリウム、1%重炭酸ナトリウ
ム、0.4%非必須アミノ酸、および0.36%ヒドロコ
ルチゾン)にプレートする(例えば、2000細胞/
穴)。2−3日後、間質細胞を血清を含まない培地で枯
渇させる。24時間後に、IL−1α若しくはTNFを
加えた、若しくは加えていないPDGF−AA、PDG
F−BBまたは塩基性FGF(繊維芽細胞成長因子)の
ような増殖因子、およびトリチウム チミジンで細胞を
処理する。液体シンチレーションカウンターで細胞増殖
を測定する。
【0038】B細胞増殖アッセイによって、抗ミュー抗
体(40μg/ml)、IL−4またはPMA(2.5n
M)で刺激されたB細胞の増殖を抑制する本発明の化合
物の効果を調べることができる。ラモス(Ramos)
B細胞腫瘍細胞、またはマウス脾細胞を刺激剤、本発明
の化合物およびトリチウム チミジンと共にインキュベ
ートし、刺激剤によって誘導された細胞増殖の抑制を測
定することができる。
【0039】薬剤抑制活性は、刺激された細胞中の管細
胞接着分子(VCAM)のレベルを調べることによって
測定することもできる。初期継代ヒト臍静脈内皮細胞
(HUVEC)(Cell Systems,Inc.ま
たはCloneticsのような企業から入手した)を
10%胎児ウシ血清を含む培地(例えば、Hepes緩
衝培地、Cell Systems)に、繊維芽細胞成
長因子(酸性FGF、Cell Systems,In
c.)またはTNFのような刺激剤を添加したもので培
養する。細胞をマイクロタイタープレートのウェルにプ
レートし(例えば、5×104/穴)、37℃で72時
間インキュベートする。休止細胞を回収し(例えば、
0.4% EDTAで20−30分処理)、培地中(例え
ば、0.01%ナトリウムアジドを含む、0.1%ウシ血
清アルブミンを加えたリン酸塩緩衝液)で洗浄し、氷冷
下、ヒトVCAMを認識するモノクローナル抗体(”一
次抗体”)(例えば、ヒトVCAMを認識するマウスモ
ノクローナル抗体1μg、Genzyme)で標識す
る。60分の氷冷後、細胞を冷却洗浄培地で洗浄し(好
ましくは2回)、一次抗体を認識する抗体(例えば、フ
ィコエリトリンを結合したヤギ抗マウスIgG 1μ
g、CalTag,Inc.)と共にインキュベートす
る。氷冷30分後、細胞を2回洗浄し、フローサイトメ
ーター(Coulter EliteR)を用い、適当
な励起波長および発光波長で(例えば、フィコエリトリ
ンを用いた場合は、励起が488nm,発光が525n
m)分析する。
【0040】関連する2種の酵素、リソホスファチジン
酸アシルトランスフェラーゼ(LPAAT)とホスファ
チジン酸ホスフォリルヒドロラーゼ(PAPH)の抑制
を、1つのin vitroアッセイによって調べるこ
とができる。このアッセイは、一次刺激(例えば、種々
のサイトカイン、成長因子、癌遺伝子産物、推定される
治療剤、放射線照射、ウイルス感染、毒素、細菌感染お
よびその産物、並びに標的細胞に(妨害まではしないと
しても)有害な影響を与えるあらゆる刺激)を加えた標
的細胞を、種々の用量の本発明の化合物の存在下または
非存在下でインキュベートすることを含む。標的細胞に
は、例えば、以下のような亜細胞性物質が含まれる。
【0041】間葉細胞および/または外胚葉由来のミク
ロソーム、特に骨髄間質細胞または、ヒト若しくはラッ
ト糸球体細胞由来のミクロソーム;脳由来のミクロソー
ムまたはシナプトソーム;富原形質膜ミクロソーム、B
urstenら(J.Biol.Chem.226:20
732−20743,1991)に記載されたようにし
て得られた原形質膜、または界面活性剤で溶解させたミ
クロソーム;シナプトソーム、および、例えば、NP−
40、ミラナル(Miranal)、SDS若しくはその
他の中性界面活性剤を用いて溶解された膜またはその他
の細胞調製品;そして界面活性剤で溶解され、組み換え
られ、または、さらに精製された細胞蛋白質の調製品
(LPAATおよび/またはPAPH蛋白質を含む) 短時間インキュベートした後、細胞脂質を抽出し、標準
的な方法に従って薄層クロマトグラフィーで分析する。
簡単に述べると、例えばクロロホルム/メタノール
2:1(v/v)を用いて脂質を抽出し、抽出物を、Bur
sten andHarris, Biochemist
ry 30:6195−6203,1991に記載され
たようにHPLCにかける。RaininR mu-Po
rasilカラムを使用し、3:4 ヘキサン:プロパノ
ール有機担体を用い、および、分離の初めの10分間は
1−10%水勾配を用いて行った。溶出パターンのピー
クの検出は離れた二重結合を検出する紫外線範囲で行っ
た。不飽和PAおよびDAGに相当するピークが抽出パ
ターンに示される。この方法はPAおよびDAGの多様
な型を区別できるので、本発明の(R)または(S)化合物
によって影響を受ける経路における相当する型も直接測
定できることが重要である。これらの化合物のアシル置
換体の性質の確認は、ファスト−アトム ボンバード マ
ス スペクトロスコピー(fast−atom bomb
ardment mass spectroscopy)
によって行うことができる。このようにして、関連する
不飽和(非アラキドン酸)PAおよびDAG亜種を検出
できる。使用する時間は、サイトカインなどの一次刺激
による活性化から5−60秒である。この技術によっ
て、種々の脂質成分のレベルを時間の関数として調べる
ことができる。
【0042】TNFを介した細胞毒性に対する、本発明
の化合物による抑制活性を調べることができる。この分
析では、L929マウス繊維芽細胞(104細胞/穴)
を種々の用量の各化合物および培地コントロールと共に
2時間インキュベートする。TNF−α(R&D Sy
stems)を500pg/mlの濃度(TNFのLD
50(125pg/ml)の4倍)で添加する。細胞+薬
剤(または−薬剤)+TNFを37℃で40時間インキ
ュベートする。培地を取り除いて2%血清および10μ
g/mlのBCECF蛍光色素を含む新たな培地と交換
し、30分間インキュベートする。蛍光色素を含む培地
を取り除き、PBS(リン酸塩緩衝液)と交換し、各ウ
ェルの蛍光を分析した。
【0043】さらに別の方法により、TNF-活性化H
UVEC細胞に対するU937細胞の接着の、薬剤によ
る抑制の効果を調べることができる。この実験では、H
UVEC細胞をヒトTNF−α(20ng/ml)およ
び種々の濃度の薬剤と共に14−16時間インキュベー
トする。U937細胞(ヒト単核細胞系)を、蛍光色
素、BCECF(10μg/ml)と共にインキュベー
トして標識する。U937細胞調製品(2.5×104
胞/穴)を活性化HUVEC細胞の上に上層する。細胞
を逆遠心して、部分的に接着していたり、全く接着して
いないU937細胞を取り除く。蛍光プレートリーダー
を用い、接着したU937細胞の蛍光を測定する。
【0044】本発明の化合物 本発明の化合物および医薬組成物は、3,7−ジ置換キ
サンチンの1位において置換された直鎖アルキル(C
5-8)のω−1アルコールの分離されたRまたはS(好
ましくはR)鏡像異性体である。本発明の化合物は、こ
のような化合物を有効量投与する特定の投与方式と同様
に、外部刺激またはin situ 一次刺激に対する細
胞応答を調節するのに有効である。
【0045】本発明の化合物は、下記の式:
【化3】 [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
まない分離された鏡像異性体であり、R2およびR3は独
立に、所望により炭素原子の代わりに1つ、または隣接
しない2つの酸素原子を含んでいてもよいアルキル(C
1-12)である]のキサンチンコアから成る化合物および
医薬組成物を構成する。R1は、好ましくはR鏡像異性
体として水酸基を有するC6アルキルである 本発明はさらに、本発明の化合物および薬学的に受容可
能な助剤から成り、患者に経口的、非経口的、または局
所的な投与により処方される、医薬組成物を提供する。
【0046】本発明はさらに、1つまたは複数の本発明
の化合物および薬学的に受容可能な担体若しくは賦形剤
からなる医薬組成物を含む。本発明の化合物または医薬
組成物を用いて患者を治療するには、体外療法としてi
n vitro培養で患者に接触させるか、または、治
療すべき細胞を有する患者に本発明の化合物または医薬
組成物を(経口的、非経口的、または局部的に)投与す
る。
【0047】1-(5-ヒドロキシ-n-ヘキシル)-3,7-
ジメチルキサンチンの(R)または(S)鏡像異性体は周知
であり、以下のような当該分野において知られている慣
用技術によって調製される。
【0048】Davisら.,Xenobiotic
a,15:1001,1985およびDavisら.,
Applied and Enviromental M
icrobiology 48:327,1984に記
載されている、例えばRhodotorula rub
raを用いた微生物学的技術;Davisら(1984)
(前述)の(R)-アルファ-メトキシ-アルファ-トリフルオ
ロメチル-フェニル酢酸((r)-MTFPA)のような光
学活性化酸、その他の光学活性化酸から形成させたジア
ステレオマーエステルのラセミ体を分離する;ヨーロッ
パ特許公開第0435153号に記載されているよう
に、(R)または(S)-5-ヒドロキシ-n-ヘキシル基をジ
メチルキサンチンの1位に導入することによる直接的化
学合成;鏡像異性体選択的変換(例えば、鏡像異性体エ
ステルを第三ホスフィン、アゾジカルボン酸ジアルキル
エステルおよびカルボン酸と共に加熱するか、または鏡
像異性体アルコールを、所望により塩基を含んだ中性溶
媒中で有機スルホン酸エステルに変換する。):得られ
た脂肪族カルボン酸エステルを加熱し、塩基を含むアル
コール性または水性の溶媒で加溶媒分解(例えば、炭酸
カリウムを含むメタノール分解)を行い、ヨーロッパ特
許公開第435153号または第435152号に記載
されたような鏡像異性体アルコールを得る。
【0049】(R)または(S)鏡像異性体を得るための特
に好ましい方法は、J.Org.Chem.55:227
4,1990に記載された方法の変型に基づく直接合成
である(図9)。この方法では、4−ブロモ−1−ブテ
ンを、ボロントリクロライドおよびトリエチルシランと
共にペンタンのような不活性炭化水素溶媒中で約−10
℃から−78℃の低温条件下で熱し、4−ブロモ−1
(ジクロロ)ボロブタンを得る。この産物を同程度の低
温下でジエチルエーテルまたはジグリム(diglym
e)のような不活性溶媒中、(R)−または(S)−ピナン
ジオールで処理し、(R)−または(S)−ピナンジオール
4−ブロモブチルボレートを得る。この産物を、アル
ゴンのような不活性な雰囲気下、−100℃(またはも
う少し高い温度)において、テトラヒドロフランのよう
な不活性な溶媒中、LiCHCl2で処理し、つづいて
無水塩化亜鉛を加えて(R)−または(S)-ピナンジオー
ル 5-ブロモ-1-クロロペンチルボレートを得る。この
産物を、テトラヒドロフラン中、約−10℃から約−7
8℃において、メチルマグネシウム臭化物で処理し、R
またはS-ピナンジオール 5-ブロモ-1-メチルペンチ
ルボレートを得る。この産物を、ジメチルスルホキシド
(DMSO)中、約−10℃から約0℃において、テオブ
ロミンで処理し、続いて約28℃、5トルにおいてDM
SOを留去し、約95%の非常に高い収率で相当する1
-N-アルキル化キサンチンを得る。続いて過剰量の水酸
化ナトリウム溶液のように強い塩基性溶液中で酸化加水
分解を行うと、ホウ素原子および(R)−または(S)-ピ
ナンジオール残基が取り除かれる。イソプロパノール等
の溶媒からの再結晶化といった慣用の回収法によって産
物を得ることができる。下記にこの好ましい合成法を図
示する。
【0050】
【化4】
【0051】
【化5】
【0052】
【化6】
【0053】
【化7】
【0054】
【化8】
【0055】
【化9】
【0056】反応5−9についての参考文献 J.Am.Chem.Soc.Vol.108,No.4,1
986 Matteson,Sadhu&Peterson 前述の合成法においてはピナンジオールをキラルディレ
クターとして使用する。ピナンジオールは以下の合成工
程に従って合成できる。
【0057】
【化10】
【0058】合成過程は−(−)−α−ピネンを利用す
るが、これは商業的スケールの量で入手できない場合が
しばしばある。しかし、下記の工程に従って、−(−)
−β−ピネンから−(−)−α−ピネンを合成すること
ができる。
【0059】
【化11】
【0060】反応10においてピナンジオールを再生成
し、この重要な、出発材料およびキラルディレクターを
再循環させて何回もの反応で繰り返し用いることが重要
である。ピナンジオールを再生成するための望ましい再
循環法を以下に示す:
【化12】
【0061】本発明の化合物と薬剤組成物の用途 本発明の化合物は一次刺激が接触する細胞中のホメオス
タシスを、一次刺激後の数秒以内に招来される第2シグ
ナル伝達経路に対するこれらの一次刺激の影響を和らげ
ることによって、維持する機構を提供する。例えば、i
n vivo又はex vivoでの本発明の化合物の
投与は、その挙動を改良すべき細胞を本発明の化合物又
はその薬剤組成物の有効量と接触させることを含む細胞
挙動の改良方法を提供する、前記方法は: (1)腫瘍細胞の増殖を抑制する方法であり、前記量は
前記増殖を抑制するために充分である;又は(2)造血
幹細胞から赤血球、血小板、リンパ球及び顆粒球への分
化を促進する方法であり、前記量は前記増殖を抑制する
ために充分である;又は(3)抗原もしくはIL−2刺
激によるT細胞の活性化を抑制する方法であり、前記量
は前記活性化を促進するために充分である;又は(4)
内毒素、TNF、IL−1もしくはGM−CSF刺激に
よる単球/マクロファージ細胞の活性化を抑制する方法
であり、前記量は前記活性化を抑制するために充分であ
る;又は(5)腫瘍壊死因子の細胞毒性効果に対する間
葉細胞の耐性を強化する方法であり、前記量は前記耐性
を強化するために充分である;又は(6)抗原、IL−
4もしくはCD40リガンドに反応したB細胞の抗体産
生を抑制する方法であり、前記量は前記抗体産生を抑制
するために充分である;又は(7)平滑筋細胞の増殖を
刺激することができる成長因子に反応した平滑筋細胞の
増殖を抑制する方法であり、前記量は前記増殖を抑制す
るために充分である;又は(8)内皮細胞によって与え
られる全身血管の抵抗を弱める方法であり、前記量は高
血圧誘導物質の放出を減ずるために充分である;又は
(9)内皮細胞によって与えられる全身血管の抵抗を弱
める方法であり、前記量は抗高血圧性誘導物質の放出を
強化するために充分である;又は(10)そのエンハン
サーによって誘導される接着分子の発現を減ずる方法で
あり、前記量は前記発現を減ずるために充分である;又
は(11)HIVによるT細胞の活性化を抑制する方法
であり、前記量は前記活性化を抑制し、従ってウイルス
複製を抑制するために充分である;又は(12)IL−
1及び/又はmip−1α及び/又はPDGF及び/又
はFGFによる刺激に反応した腎臓糸球体間質細胞の増
殖を抑制する方法であり、前記量は前記増殖を抑制する
ために充分である;又は(13)シクロスポリンAもし
くはアンホテリシンBに対する腎臓糸球体細胞又は尿細
管細胞の抵抗を強化する方法であり、前記量は前記抵抗
を強化するために充分である;又は(14)TNF処理
骨髄間質細胞における成長刺激因子産生の抑制を防止す
る方法であり、前記量は前記抑制を防止するために充分
である;又は(15)IL−1、TNF、もしくは内毒
素刺激単球及びマクロファージによるmipー1α放出
を防止する方法である;又は(16)IL−1、TN
F、もしくは内毒素処理巨核球、繊維芽細胞及びマクロ
ファージによる血小板活性化因子の放出を防止する方法
である;又は(17)TNF処理造血前駆細胞中のサイ
トカイン受容体のダウンレギュレーションを防止する方
法であり、前記量が前記ダウンレギュレーションを防止
するために充分である;又は(18)IL−1刺激され
たもしくはTNF刺激された糸球体上皮細胞又は滑膜細
胞におけるメタロプロテアーゼの産生を抑制する方法で
あり、前記量は前記産生を強化するために充分である;
又は(19)細胞毒性薬物もしくは放射線に対する胃腸
もしくは肺の上皮細胞の抵抗を強化する方法であり、前
記量は前記抵抗を強化するために充分である;又は(2
0)非アルキル化抗腫瘍剤の抗腫瘍効果を強化する方法
であり、前記量は前記効果を強化するために充分であ
る;又は(21)IL−1に反応した破骨活性化因子の
産生を抑制する方法であり、前記量は前記産生を抑制す
るために充分である;又は(22)IgEに反応した脱
顆粒を抑制する方法であり、前記量は前記脱顆粒を抑制
するために充分である;又は(23)アドレナリン作動
性神経伝達物質、ドーパミン、ノルエピネフリンもしく
はエピネフリン、又は神経伝達物質であるアセチルコリ
ンの放出を強化する方法であり、前記量は前記放出を強
化するために充分である;又は(24)アドレナリン作
動性神経伝達物質、ドーパミン、ノルエピネフリンもし
くはエピネフリン、又は神経伝達物質であるアセチルコ
リンのシナプス後の“遅い電流(slow current)”効果を
調節する方法であり、前記量はこのような遅い電流を調
節するために充分である。
【0062】例えば、本発明の化合物は骨髄移植(BM
T)を受ける患者に関して、BMTが適合同種異系、不
適合同種異系又は自己由来のいずれであるかに関係な
く、用いられる。自己由来移植片を受容する患者は、対
宿主移植片病(GVHD)を発現しないので必ずしも免
疫抑制剤を投与される必要がないとしても、本発明の化
合物による治療によって援助される。しかし、移植を実
施した対象の疾患に関連して用いられる化学療法又は放
射線療法の有害な効果は、患者の細胞に対する負の刺激
を構成する。
【0063】一般に、BMTを受ける患者は全て、全身
照射の有無に拘わらず、正常な骨髄回復のために致死量
を越える化学療法の投与を必要とする。このことは患者
を救うために貯蔵された患者骨髄又はドナー骨髄を用い
ることに合理的根拠を与える。一般に、新しい又は貯蔵
された骨髄を注入する前の連続した7〜10日間、患者
に化学療法又は放射線療法を行う。患者に骨髄を投与す
る日は移植の0日と表される。患者が化学/放射線療法
(chemo/radiation)を受容する、その前の日々は負数で
表される。その後の日々は正数で表される。
【0064】BMT受容者にマイナスの応答が生ずる時
間の中央値(median time)は移植後の最初の100日間
内である。それ故、統計的には、患者が100日目まで
生存するならば、これらの患者が生存し続けるチャンス
は有意に強化される。本発明の化合物は患者の生存率を
高めることができる。受容可能と考えられる、最初の1
00日間の致死率は“良好な危険性(good risk)”患者
の15〜20%であり、“高危険性”患者の30〜40
%である。これらの致死率は化学/放射線療法の高い投
与量の直接的な影響によるものである。さらに、GVH
Dは同種異系の骨髄受容者における死亡率にも寄与す
る。
【0065】本発明の化合物の投与が有用である他の適
応症には、腫瘍に伴う苦痛の存在、ホルモン関連障害、
神経障害、自己免疫疾患、炎症、再狭窄、冠状動脈疾
患、アテローム硬化症、高血圧、望ましくない免疫応
答、ウイルス感染症、腎炎、粘膜炎(mucositis)、及び
種々なアレルギー反応がある。アレルギー反応の予防は
急性アレルギー反応の予防、並びに、鼻漏、シナスドレ
ナージ(sinus drainage)、散在性組織浮腫及び全身化そ
う痒症の緩和又は予防を含む。慢性アレルギー反応の他
の症状は、上記症状の他に、めまい感、下痢、組織充血
及び、局在化白血球浸潤を伴う涙腺腫脹(lacrimal swel
ling)を含む。アレルギー反応はまた、ロイコトリエン
放出とその遠位効果をも付随し、気道閉塞の発現を含む
喘息症状、FEVIの減少、生体能力の変化及び大量の
粘液産生を含む。
【0066】本発明の化合物の投与に適した、他の対象
は例えば化学療法剤又は照射療法のような腫瘍の治療の
ための細胞減少(cytoreductive)剤を投与され、並びに
例えばIL−2のような生物学的反応調節剤及び例えば
リンホカイン活性化キラー細胞(LAK)と腫瘍浸潤リ
ンパ球(TIL細胞)とのような腫瘍抑制細胞による治
療を受ける患者;他の方法で治療されたか否かに拘わら
ず、急性及び慢性の骨髄性白血病、ヘアリー・セル白血
病、リンパ種、巨核球白血病等を含めた、一般に新生物
に罹患した患者;細菌、真菌類、原生動物もしくはウイ
ルス感染によって生ずる疾患状態に罹患した患者;心臓
手術を受けた患者のような、例えば再狭窄としての不快
な平滑筋細胞増殖を示す患者;自己免疫疾患に罹患し、
T細胞及びB細胞の不活化を必要とする患者;及び神経
障害を有する患者を含む。
【0067】本発明の化合物はさらに、アセチルコリン
及び/またはエピネフリンによるシナプトソームの刺激
に起因する関連したPA及びDAGの強化されたレベル
を減ずることができる。このことは、本発明の化合物の
効果が例えばドーパミンのような抑制的神経伝達物質の
放出を強化することと、このような神経伝達物質の遠位
の“遅い電流”効果を調節することの両方であることを
示唆する。
【0068】このように、本発明の薬物は発作閾値を高
め、例えばストリキニーネのような神経毒に対してシナ
プスを安定化し、例えばL−ドーパのような抗パーキン
ソン病薬の効果を強化し、催眠性化合物の効果を強化
し、トランキライザーの投与に起因する運動障害を軽減
し、例えば発作(stroke)のような脳血管イベント後の進
行性神経死を付随するニューロン過度燃焼を軽減又は防
止するためにも有用である。さらに、本発明の化合物は
ノルエピネフリン欠乏うつ病及び内因性グルココルチコ
イドの放出に関連したうつ病の治療に有用であり、デキ
サメタゾン又はメチルプレドニソロンの中枢神経系に対
する毒性を防止し、この薬物への嗜癖なしに慢性疼痛を
治療することができる。さらに、本発明の化合物は学習
及び注意力欠陥を有する小児の治療に有用であり、一般
に、例えばアルツハイマー病患者を含めた器官的欠陥を
有する対象における記憶を改良する。
【0069】投与量は変化するが、本発明の化合物をこ
のような治療を必要とするヒト対象に、患者の体重に依
存して、約200mg〜約5000mg/日の、有効な
経口、非経口、又は静脈内の致死下投与量として投与す
る場合には、治療効果が達せられる。白血病の治療にお
ける特に好ましい使用計画(regimen)は4〜50mg/
体重kgである。しかし、如何なる特定の対象に対して
も、個人のニーズと、本発明の化合物を投与する又は本
発明の化合物の投与を指図する人の専門的判定とに合わ
せて特定の投与計画を調節しなければならないことを理
解すべきである。
【0070】P−450抑制剤の同時投与 本発明の化合物をP−450抑制剤と共にin viv
o同時投与することは、本発明の化合物の長い半減期に
よる効果の強化を生ずる。このin vivo効果は本
発明の化合物の分解経路の阻害による;特に、キサンチ
ン環のN7位置における脱アルキル化によるものであ
る。例えば、NIH3T3−D5C3細胞を用いて、形
質転換の表現型制御、本発明の化合物単独によるインキ
ュベーション、及び本発明の化合物とP−450抑制剤
との同時インキュベーションを比較することによって、
本発明の化合物単独又はP−450抑制剤との併用との
効果を比較することができる。
【0071】P−450を抑制する化合物には、例え
ば、(mg範囲の一日投与量)で、プロプラノール(2
0−100)、メタプロロール(20−100);ヴェ
ラパミル(100−400)、ディルチアゼム(100
−400)、ニフェジピン(60−100);シメチジ
ン(400−2,400);シプロフロキサシン(50
0−2,000)、エノキサシン(500−2,00
0)、ノルフロキサシン(500−2,000)、オフ
ロキサシン(500−2,000)、パーフロキサシン
(500−2,000);エリスロマイシン(100−
1,000)、トロレアンドマイシン(100−1,0
00);ケトコニゾール(100−2,000)、チア
ベンザドール(100−1,000);イソニアジド
(100−1,000);メキシレチン(100−1,
000)及びデキサメタゾン(1−100mg)があ
る。
【0072】適当な処方は治療すべき障害の性質、選択
した薬物の性質、及び主治医(attending physician)の
判定に依存する。一般に、本発明の化合物は注射用又は
経口投与用のいずれかのために処方されるが、例えば経
粘膜もしくは経皮経路のような、他の投与形式も使用可
能である。これらの化合物の適当な処方は、例えばRe
mington’s Pharmaceutical
Science(最新版),マック パブリッシュイン
グ カンパニー(Mack Publishing Company)、イースト
ン、PAに見い出すことができる。
【0073】選択した本発明の化合物に依存して、例え
ばキノロンのようなP−450抑制剤の同時投与によっ
て、投与量レベルをかなり減ずることができる。或い
は、このようなキノロンによって強い相乗効果を得るこ
とができる。
【0074】下記実施例によって本発明を説明するが、
これらの実施例を、本発明を限定するものと見なすべき
ではない。これらの実施例において、PTXはペントキ
シフィリンを意味する。
【0075】
【実施例】実施例1 この実施例はラセミMIの分解によるCT1501Rの
合成を説明する。反応バイアル中のMIによって飽和さ
れたエーテルに、3.0当量のピリジン(水素化カルシ
ウムから新たに蒸留したもの)及び3.0当量のR−
(+)−1−メトキシ−1−トリフルオロメチル−フェ
ニル酢酸((+)−MTFPA)の酸塩化物を加えた。
この反応バイアルを密封し、50℃に1時間加温し、乾
燥するまで窒素流下に置き、次に75%MeOH/H2
O中で再構成した。(75%MeOH/H2O)90
%、アセトニトリル(AcN)3%、水7%から成るイ
ソクラチック(isocratic)系を3.0ml/分の流量で
250x10mmウルトレメックス(Ultremex)5C−1
8カラム[フェノメネックス(Phenomenex),カリフォル
ニア州,トーランス,90501]に通すことによっ
て、分離を行った。サンプルを75%MeOH/H2
中のMTFPAーMIの10%溶液として調製して、1
00μlアリコートを7分間毎に21分間注入した(4
回注入)。化合物は29.8分間目[(S−MI)−M
TFPA]、及び31.4分間目[(R−MI)−MT
FPA]に溶離して、95%分離した。ダール(Dale)等
が述べているように(J.Org.Chem.34:2
543,1969年)、NMRに基づいて無水構造を割
り当てた。回収された画分を一緒にし、回転蒸発(rotov
ap)によって量を減じた。最初に、サンプルをMeOH
とAcNとを除去するためにのみ蒸発させ、その後にこ
れらをクロロホルムによって抽出した。この溶媒を乾燥
させ、真空下で除去した。後に、該エステルが水の除去
に必要な軽度の(minor)温度上昇に安定であることが研
究によって示された後に、この抽出工程は省略した。
【0076】(+)−MTFPA−MI立体異性体の加
水分解 MTFPAエステルの加水分解の進行を監視するため
に、直接MIと、存在する総エステルとを定量する分析
法を開発することが必要であった。傾斜プログラムを用
いて、注入後1.0〜8.0分間から可動相を(75%
MeOH/水)40%,AcN40%,水10%から
(75%MeOH/水)40%,AcN60%までに変
えた。最終条件を3分間維持し、その後、カラムを再平
衡化した。溶出液を280nmにおいて監視し、遊離M
Iと誘導体化MIとの保持時間はそれぞれ6.5分間と
12.3分間であった。この系を用いて、誘導体化MI
の立体異性体は分離されなかったので、この系はMTF
PAエステルの加水分解を監視するための分析手段とし
て用いることができた。
【0077】EtOH4.0ml中の純粋なMTFPA
−MIエステル(R又はS誘導体)30mgに、水素化
ホウ素ナトリウム(NaBH)約40mgを加え、この
混合物を油浴中で70℃に加熱した。日中4時間毎にさ
らに水素化ホウ素ナトリウム(20mg)を加えた。5
4時間後に反応は、MI+MIエステルの総ピーク面積
の損失なく、約90%完成した(HPLCによる)。反
応を一塩基性リン酸ナトリウム/水によって停止させ、
HClによってpH3.5に調節し、EtOHを真空下
で除去し、未反応エステルとMIとをクロロホルム中に
抽出した。このクロロホルムを硫酸ナトリウム上で乾燥
させ、真空下で除去した。粗生成物を分取クロマトグラ
フィーを用いて、250x10mmカラムによって3.
0ml/分の流量を用いる、MIに関して上述した溶媒
傾斜法(solvent gradient)によって、精製した。回収し
た画分を真空下で蒸発乾固させ、エーテルを加えて磨砕
し、鏡像異性体の過剰度(enantiomeric excess)に関し
て分析した(両異性体に関して>95%)。エーテルを
窒素下で除去し、得られた結晶を最少量の標準生理食塩
水中に溶解した。この標準化溶液を標準生理食塩水によ
って希釈して、各鏡像異性体の10mM溶液を調製し
た。再形成MTFPAエステルのHPLCによって鏡像
異性体のアイデンティティ(identity)を確認した。
【0078】実施例2 この実施例は、実験室規模でのキラル ディレクター(c
hiral director)としてRピナンジオールを用いる
(R)−1−(5−ヒドロキシヘキシル)−3,7−ジ
メチルキサンチン(CT1501R)の製造方法を説明
する。500ml丸底フラスコ中でトリエチルシラン
(83.49g,0.718モル)と4−ブロモー1−
ブテン(97g,0.718モル)とを混合し、−78
℃に冷却した。1リットル丸底フラスコ中で三塩化ホウ
素(84.13g,0.718モル)ガスを−78℃に
おいて凝縮させ、ペンタン400mlを加えた。シラン
/ブテン混合物を三塩化ホウ素溶液に、アルゴン下で撹
拌しながら、カニューレを介して滴加し、この間内部温
度を−78℃に維持した。添加の終了時に、3当量のメ
タノールを溶液に滴加した。次に、溶液を室温に加温
し、ペンタン、HCl及び過剰なメタノールを大気圧に
おいてアルゴン下で留去した。残渣を真空蒸留して、ジ
メチル 4−ブロモブチルボロネート(0.9torr
においてbp70−79℃,収量127.5g,収率8
5%)を得た。
【0079】500ml丸底フラスコ中で、(R)−ピ
ナンジオール(62g,0.365モル)とジメチル
4−ブロモブチルボロネート(75g,0.359モ
ル)とを200mlのジエチルエーテルと共に撹拌し
た。30分間後に、エーテルを真空下で除去して、残渣
を蒸留して、(R)−ピナンジオール−4−ブロモブチ
ルボロネート(1.6−1.9torrにおいてbp1
34−141℃,110.85g,収率98%)を得
た。
【0080】同族体化反応を実施するために、塩化メチ
レン(31.47g,0.370モル)と無水THF5
00mlとをサイドアーム付き1リットル丸底フラスコ
中でアルゴン下において、撹拌しながら−100℃に冷
却した。この冷却した溶液に、アルゴン下で撹拌しなが
ら、n−ブチルリチウム(ヘキサン中1.4N)212
mlをフラスコの側面に沿って45分間かけて滴加し、
この間内部温度を−100℃に維持した。添加の終了
後、溶液を20分間撹拌させた。ピナンジオール−4−
ブロモブチルボロネート(77.82g,0.247モ
ル)に、無水THF100mlを混合し、−78℃に冷
却し、次に内部温度を100℃に維持しながら、リチウ
ムメチルジクロリド溶液に加えた。添加の終了時に、完
全に乾燥した塩化亜鉛(30.29g,0.222モ
ル)を加えた。この溶液をアルゴン下で10時間撹拌
し、室温に加温した。溶媒を真空下で除去した。この残
渣に、石油エーテル500mlと飽和塩化アンモニウム
水溶液300mlとを加えた。有機相を分離し、飽和塩
化アンモニウム溶液(2x250ml)によって洗浄し
た。水層を一緒にし、石油エーテル(2x250ml)
で洗浄した。有機相を一緒にし、硫酸ナトリウムによっ
て乾燥させ、濾過し、蒸発させて、粗ピナンジオール
(R)ブロモペンチルボロネート,粗重量92.13g
(102%)を得た。
【0081】500ml丸底フラスコ中で、無水THF
300mlと前の反応からの粗ピナンジオール(R)−
1−クロロー5−ブロモペンチルボロネート(推定89
g,0.247モル)とを混合し、アルゴン下で撹拌し
ながらー78℃に冷却した。この溶液に臭化メチルマグ
ネシウム(3.26N,79.6ml)を加えた。この
溶液を一晩かけて室温に加温した。石油エーテル(50
0ml)と飽和塩化アンモニウム(250ml)とを加
えて、エマルジョンを形成した。水相を分離した。有機
相を飽和塩化アンモニウム溶液(2x250ml)で洗
浄し、エマルジョンを消失させた。一緒にした水相を石
油エーテル(2x250ml)によって洗浄した。一緒
にした有機相を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、
真空下で蒸発させて、粗ピナンジオール(R)−5−ブ
ロモ−1−メチルペンチルボロネート85.85gを得
た。
【0082】5リットル−フラスコ中で、DMSO 2
リットルのDMSOとテオブロミン(44.51g,
0.247モル)とをアルゴン下で撹拌しながら混合し
た。この溶液に水素化ナトリウム(9.9g,0.24
7モル)を2アリコートとして加え、テオブロミンが溶
解するまで撹拌させた。3時間後に、この溶液に前の反
応からのピナンジオール(R)−5−ブロモー1−メチ
ルペンチルボロネート(84.75g,0.247モ
ル)を正確に(neat)滴加し、12時間撹拌させ
た。
【0083】溶液からDMSOを蒸留した(再循環可
能)。残渣を塩化メチレン500mlと水500mlと
によって処理した。水相を除去し、有機相を水(3x7
50ml)によって洗浄した。水相を一緒にし、塩化メ
チレン2x500mlによって洗浄した。有機相を一緒
にして、硫酸ナトリウムによって乾燥させ、濾過して、
溶媒を真空下で除去し、ピナンジオール(R)−5−
(3,7−ジメチルキサンチン)−1−メチルペンチル
ボロネート(88.14g,収率80%)を得た。
【0084】このボロネートを次にTHF/水(各30
0ml)中に溶解し、混合物をアルゴン下で撹拌しなが
ら0℃に冷却した。内部温度を0℃に維持しながら、3
N水酸化カリウム95mlを滴加し、その後に30%過
酸化水素32.3mlを滴加した。混合物を2時間撹拌
し、固形物を濾別した。水と塩化メチレン(各300m
l)を加えた。相を分離し、水相を塩化メチレン(4x
100ml)によって洗浄した。一緒にした有機相を硫
酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、蒸発させた。残渣
を少量の塩化メチレンとそれより多量のエーテルとによ
って再結晶させた。収量は(R)−1−(5−ヒドロキ
シヘキシル)−3,7−ジメチルキサンチン(m.p.
105−108℃)46.3g(87%)であった、
[α]D=−5.63,約96%ee。
【0085】実施例3 この実施例はキラル ディレクターとしてDICHED
を用いる(R)−1−(5−ヒドロキシヘキシル)−
3,7−ジメチルキサンチン(CT1501R)の製造
方法を説明する。実施例2に述べたピナンジオール キ
ラル ディレクターの代わりに(1S,2S)−(1,
2)−ジシクロヘキシルエタンジオール(DICHE
D)を用いることができる。このキラル ディレクター
はピナンジオールよりも容易に回収される(95%)。
DICHEDはシャープレス(Sharpless)等,J.Or
g.Chem.57:2768,1992年に述べられ
ている方法に従って製造することができる。上述したよ
うに製造されたジメチル−4−ブロモブチルボロネート
(10.1g,48.06ミリモル)に、エーテル10
0ml中の(S,S)−DICHED 10.54g
(46.6ミリモル)を混合した。30分間後に、エー
テルを除去し、残渣をシリカゲル10gの短いカラムに
通し、石油エーテル/エーテル(9:1)で溶出し、
(S,S)DICHED類似体4−ブロモブチルボロネ
ート17.8gを得た。
【0086】実施例2に述べたように、下記量:DIC
HED4−ブロモブチルボロネート17.8g;塩化メ
チレン6.11g;1.4N n−ブチルリチウム4
1.2ml;THF100ml及び無水塩化亜鉛5.8
9gを用いて、同族体化反応を実施した。
【0087】実施例2におけるように、下記量:DIC
HED(R)−1−クロロー5−ブロモペンチルボロネ
ート20.04g;3.0N臭化メチルマグネシウム1
6.7ml;及びTHF150mlを用いて、グリニャ
ール反応を実施した。
【0088】50mlフラスコにおいてTHF(10m
l)中にDICHED5−ブロモー1−メチルペンチル
ボロネートを溶解することによって、(R)−6−ブロ
モヘキサン−2−オールを得るためのDICHEDボロ
ネートの酸化を実施した。水(10ml)を溶液に加え
た。この溶液をアルゴン下で撹拌しながら0℃に冷却し
た。炭酸ナトリウム(3M溶液16.5ml)を加えた
後に、30%過酸化水素 8mlを加えた。溶液を濾過
し、ペンタン20mlを加え、再び濾過した。水相を分
離し、ペンタン(2x10ml)によって洗浄した。有
機相を硫酸ナトリウム上で乾燥させ、濾過し、溶媒を蒸
発させて、(R)−6−ブロモーヘキサンー2−オール
を粗収量8.9gで得た。真空蒸留によって、旋光度−
13.89[α]549を有する純粋物質を収量7.1g
(84%)で得た。
【0089】(R)−ブロモアルコールをテオブロミン
に加えた。テオブロミン(2.02g,11.2ミリモ
ル)の混合物をDMSO(30ml)中で撹拌し、水素
化ナトリウム282mg(11.8ミリモル)を加え
た。この反応混合物を80分間、激しく撹拌した。ブロ
モアルコール(2.03g,11.2ミリモル)を滴加
し、撹拌を21時間続けた。DMSOを完全なポンプ真
空下で留去した。水(100ml)を加えた。混合物を
25%エタノール/塩化メチレン(3x50ml)によ
って抽出し、一緒にした抽出物を硫酸マグネシウム上で
乾燥させ、蒸発させた。残渣を塩化メチレン20ml中
に入れ、エーテル150mlを加えた。(R)−1−
(5−ヒドロキシヘキシル)−3,7−ジメチルキサン
チン(1.5g,5.36ミリモル,収率47.8%)
のベージュ色結晶が形成された。生成物の他の500m
gを次の24時間にわたって結晶化させて、キラル ク
ロマトグラフィーによって94%より大きいeeを有す
る総収量2g(全体で64%)を得た。
【0090】実施例4 この実施例は(RもしくはS)−1−(6−ヒドロキシ
ヘプチル)−3,7−ジメチル−10−キサンチン又は
(RもしくはS)−7−ヒドロキシオクチル−3,7−
ジメチルキサンチンの合成法を説明する。これらの化合
物は上述の適当なピナンジオール/DICHED方法を
用いて、出発物質として長鎖ブロモーオレフィン,5−
ブロモ−1−ペンテン及び6−ブロモー1−ヘキセン,
15をそれぞれ用いることによって、製造した。
【0091】実施例5 この実施例はCT1501RとPTXとの混合リンパ球
反応を説明する。この混合リンパ球反応は、ツーウェイ
(two−way)混合リンパ球反応において測定され
る、同種異系刺激に対するPBMC(末梢血単核細胞)
の増殖反応を示す。CT1501RとPTXとの両方は
図1に示した、この免疫調節活性分析法において活性を
示した。
【0092】実施例6 この実施例は架橋した抗マウス(anti-mu)抗体及び/又
はインターロイキン−4(IL−4)によって刺激され
たマウスB細胞増殖の抑制に対するCT1501Rの効
果を示す。図2は、指示された増殖シグナルによって惹
起されるB細胞増殖をCT1501Rが抑制したことを
示す。
【0093】図3は、コンカナバリンA(ConA)及
びインターロイキンー1α(IL−1α)若しくはイン
ターロイキン−2(IL−2)によって惹起される増殖
を抑制するCT1501Rの効果を示す。CT1501
RはConA及びIL−1α若しくはIL−2による活
性化の2時間前に指示用量で細胞に加えた。CT150
1Rは、図3に示した用量−反応関係で胸腺細胞増殖を
抑制した。バックグラウンド カウントは200cpm
未満であった。
【0094】図4は、PDGF(血小板由来増殖因子)
及びIL−1によって刺激された平滑筋増殖の抑制に対
するCT1501RとPTXとの効果を示す。PDGF
とIL−1とによる活性化の2時間前に、CT1501
RとPTXとを別々に細胞に加えた。両方の薬物は図4
に示したように高い試験用量で平滑筋細胞増殖を抑制
し、CT1501RはPTXよりも高活性であった。
【0095】実施例7 この実施例はサイトカイン放出と細胞接着との抑制を含
めた、CT1501Rのin vitro効果を説明す
る。我々は内毒素、TNF−α又はIL−1αによって
刺激された、サイトカイン放出と活性化ヒト臍(umbilic
al)内皮細胞への接着とに対するCT1501Rの効果
を測定した。
【0096】マウス腹腔滲出細胞マクロファージ(PE
C)をマウス腹腔の灌流によって単離し、96孔トレー
中において5x105細胞/孔で培養した。刺激物の添
加の1時間前に培養物にCT1501Rを添加して又は
添加せずに、細胞をサルモネラ アボルタス(Salmonell
a abortus)に等しく由来する(equi-derived)内毒素[L
PS;シグマケミカル社(Sigma Chemical Co.),L−1
887]5μg/ml又はIL−1α[ゲンザイム(Gen
zyme);マサチューセッツ州,ケンブリッジ]50ng
/mlによって刺激した。その後の種々な時間に、上澄
み液を取り出して、市販用の96孔マイクロタイター免
疫検定キット[ゲンザイム;TNF;エンドゲン(Endog
en),マサチューセッツ州,ボストン;IL−1α]を
用いて、製造者の仕様書に従ってTNF−α又はIL−
1αのレベルを分析した。接着検査のためには、早期継
代(early passage)ヒト臍静脈内皮細胞(HUVEC)
を商業的供給者[クローネチックス(Clonetics),カリ
フォルニア州,サンジエゴ又はセル システムズ(Cell
Systems),ワシントン州,シアトル]から入手して、酸
性FGF(セル システムズ cat401−111)
を補充した、一定のヘペス(Hepes)緩衝化無血清培地
(セル システムズ cat301−180)中で培養
した。96孔マイクロタイタープレートの各孔中で40
00細胞を培養し、37℃において72時間インキュベ
ートさせた。組織球白血病細胞ラインU937を10%
ウシ胎児血清補充RPMI 1640培地中で刺激し
た。HUVEC又はU937細胞をLPS、IL−1α
又はTNF−αによって12時間刺激した。接着分析の
ために、U937細胞を蛍光生死判別(viability)ステ
イン、2’,7’−ビスー(2−カルボキシエチル)−
5−(及びー6)−カルボキシフルオレセインアセトキ
シメチルエステル(BCECF)によって標識した。簡
単には、細胞をRPMI−1640培地+10%ウシ胎
児血清中でBCECF10μg/mlによって37℃に
おいて30分間標識した。細胞を完全培地によって1回
洗浄し、HUVEC培養物に50,000細胞/孔を加
えた。サンプルを37℃において30分間インキュベー
トし、インバートし(inverted)、400xgで10分間
遠心した。ハンクス平衡塩類溶液(Hank's Balanced Sal
t Solution)(HBSS)100mlを添加した後に、
このマイクロタイタープレートを次にミリポアーサイト
フルオール(Millipore Cytofluor)蛍光プレートリーダ
ー上で分析した(励起488nm;発光525nm)。
細胞の連続希釈物の蛍光は20〜100,000細胞/
孔の広範囲な細胞濃度にわたって直線的な濃度関係を示
した(データを示さず)。全ての実験は少なくとも2回
繰り返し、全ての結果は上述の実験の結果を実証した。
【0097】CT1501RはLPS刺激PEC細胞か
らのTNF−α放出を抑制した。細胞は250mM C
T1501Rによって前処理し、上澄み液をELISA
によってLPS刺激後の時間の関数としての放出TNR
−αに関して分析した。CT1501Rは、6〜24時
間目におけるLPS誘導レベルの約50%から48時間
目における約70%までの範囲にわたって、あらゆる時
点においてTNF−α放出を有意に抑制した。図18に
は、放出TNFに対するCT1501Rの効果の用量−
反応を示す。種々な濃度のCT1501Rによる処理の
1時間後に、PEC細胞をLPSによって刺激した。5
0%抑制のCT1501R濃度は約30μMであった。
500μMでは、CT1501Rの抑制効果は最大LP
S刺激(1428pg/ml)の約40%であった。
【0098】LPSは腹腔マクロファージにおけるIL
−1α放出を刺激し、IL−1α放出はLPS刺激後1
2時間までに24pg/mlレベルに増加し、48時間
までに31pg/mlに増加する(図19)。CT15
01Rの添加は12〜48時間目にIL−1α放出を有
意に減じ、24時間目に約50%の最大抑制を示した。
腹腔マクロファージをLPSではなくIL−1α50n
g/mlによって刺激した場合には(図20)、CT1
501RはTNF−αの放出をも抑制した(図20)。
CT1501Rの添加は試験した時点におけるTNF−
αの誘導レベルの50〜70%抑制を生じた。
【0099】免疫系統の細胞は血管内皮細胞を識別し、
結合することによって血液から出る。その後、免疫細胞
は内皮細胞と周囲の組織との間を移動する。免疫細胞の
内皮細胞接着と血管外溢出とのモデルは、炎症とアテロ
ーム発生反応とのin vivo処理(manipulation)の
予測モデルを提供する。TNF−α、IL−1α又はL
PSによる内皮細胞の活性化はある種の接着分子をアッ
プーレギュレート(up-regulate)して、リンパ球、単
球、好酸球及び好中球へのそれらの接着性を高める。細
胞ラインU937を用いて、活性化HUVECへの接着
の抑制に対するCT1501Rの効果を試験した。U9
37細胞は、内皮細胞上に表現される免疫グロブリン
スーパーファミリー(superfamily)のメンバーである血
管接着分子1(VCAM)を介する内皮細胞への単球接
着を仲介するインテグリンVLA−4の発現を含む、単
球の特徴的な、多くの表現型を表現する。HUVECを
TNF−α、IL−1α又はLPSから選択した活性剤
によって、活性剤の添加の1時間前に250μM CT
1501Rを添加して又は添加せずに、処理した。図2
1に示すように、CT1501Rの添加によってHUV
ECへのU937細胞のバックグラウンド結合に対する
有意な影響は存在しなかった。しかし、CT1501R
によって前処理した活性化HUVECの相対的接着性に
は顕著な抑制が存在した。CT1501Rによるこの抑
制はTNF−α、IL−1α又はLPSのいずれかによ
るHUVECの刺激によって観察された。
【0100】逆にいえば、IL−1αによるU937細
胞の活性化は非刺激HUVECへのそれらの接着性をも
高めた(図22)。250μM CT1501Rによる
U937細胞の前処理はHUVECへの接着のIL−1
α仲介増加をバックグラウンド レベル近くまで効果的
に阻止した。
【0101】CT1501Rは、腹腔マクロファージ、
ヒトU937組織球性白血病細胞ライン、及びヒト臍静
脈内皮細胞において、LPS、TNF−α及びIL−1
αー仲介炎症シグナル形成経路と、同時に生ずる細胞反
応とを抑制した。CT1501RはLPSによって刺激
された腹腔マクロファージからの炎症前サイトカインの
TNF−α及びIL−1αの放出を有意に減少させた。
【0102】LPS 10μg/ml刺激を用いたTN
F−α抑制のIC50は約30μMであった。CT15
01RはIL−1α活性化PECからのTNF−α放出
を阻止した。CT1501RはTNF−α、IL−1α
又はLPS活性化HUVECへのU937細胞の接着増
加を阻止した。最後に、CT1501Rは、IL−1α
誘導活性化とU937細胞の非刺激HUVECへの接着
性上昇とを阻止した。
【0103】実施例8 この実施例は、CT1501Rの局所塗布を含む、ヌー
ドマウスのヘア試験を説明する。チャールス リバー
ラボラトリーズ(Charles River Laboratories)からの生
後6〜8週間の雌のnu/nuマウスをバイオサポート
リサーチ サポート サービス(Biosupport Research
Support Services)(ワシントン州,シアトル)におい
て加圧滅菌したマイクロアイソレーター(micro isolato
r)装置に収容して、高塩素処理した加圧滅菌水、照射し
た齧歯類食餌を与え、層流フード下に保持した。ケージ
(caging)は毎週交換し、水は週2回交換した。各試験の
開始前、5日間マウスを順化させた。
【0104】加熱した親水性軟膏(USP)にCT15
01Rを1%濃度で加えることによって、最初の局所製
剤を調製し、凝固させた。
【0105】この最初のCT1501R局所製剤をヌー
ドマウスの左わき腹に1日に2回、16日間滅菌アプリ
ケーターによって塗布し、右わき腹には同じ基剤中の別
の化合物を塗布した。マウスは層流フード下で、顔面マ
スクと滅菌手袋を着用した塗布者によって取り扱った。
16日間後に、マウス1匹を頚部脱臼によって殺し、肩
/わき腹の処置部分と背側骨盤(臀部)の非処置部分と
から皮膚生検材料(biopsy)を採取した。試験片を10%
緩衝化ホルマリン中に入れた。生検材料は組織病理学の
ために獣医の皮膚病理学者に送った。この処置の6週間
後に、第2マウスを安楽死させ、第1マウスと同様に生
検材料を採取した。組織病理学のためにサンプルを送っ
た。
【0106】第1実験からの結果は、処置部分が非処置
部分よりも有意により正常な外観の毛包を有することを
示す。CT1501Rと他方の化合物との両方に関し
て、処置部分では無数の毛鞘が毛包から出ているのが見
られ、これに対して非処置部分では毛鞘が全く見られな
かった。
【0107】第2実験では、育毛適応に関して認可され
ている、市販の局所ミノキシジル(minoxidil)製剤[ロ
ゲイン(Rogaine)(登録商標),アプジョーン(Upjoh
n)]と共に、CT1501Rの局所塗布を実施した。バ
ンチン アンド キングマン ユニバーサル(Bantin an
d Kingman Universal)からの生後5〜6週間の雌のnu
/nuマウスをバイオサポート リサーチ サポート
サービス(ワシントン州,シアトル)において加圧滅菌
したマイクロアイソレーター装置に収容して、高塩素処
理した加圧滅菌水、照射した齧歯類食餌を与え、層流フ
ード下に保持した。ケージは毎週交換し、水は週2回交
換した。試験の開始前、7日間マウスを順化させた。
【0108】CT1501Rと他の2種の化合物とをE
TOH60%、水10%及びPEG30%の局所製剤と
して、ビヒクルのみと共に調製した。ミノキシジルは地
方の薬局から市販製剤ロゲイン(登録商標)として購入
した。ロゲイン(登録商標)は同一の製剤ベース(formu
lation base)で販売されている。マウスは各供試品に特
有の、固有尾標識によって確認した。マウス2匹/群は
CT1501Rと他の1種の化合物によって処置した。
マウス1匹はビヒクルとミノキシジルの各々によって処
置した。マウスは層流フード下で、顔面マスクと滅菌手
袋を着用した塗布者によって取り扱った。溶液又はマウ
スの汚染を避けるために、各マウスは別々の滅菌アプリ
ケーターによって1日に2回処置した。全てのマウスに
頭蓋骨の基部から尾の基部まで背中の中心線に沿って、
約1.5cm幅に、適当な供試品をストリップ状に塗布
した。34日間後に、全てのマウスをハロタン麻酔薬の
過剰量によって安楽死させた。皮膚生検材料を肩甲骨の
間の頚部の首筋に沿ってマウス7匹の各々から採取した
(およそのサイズは1x1.5cmであった)。全ての
試験片をガーゼ上に置いて血液と流体を除去し、木製舌
圧子の切片に固定し、側面を下にして試験片を10%緩
衝化ホルマリンを含む、別々に標識した容器に入れた。
定性的組織病理学的検査のために、試験片を獣医の皮膚
病理学者に送った。
【0109】主観的検査は、ビヒクル処置マウス(対
照)が最低に毛包を発現させたことを明らかにした。ミ
ノキシジル処置マウスでは処置に対するヘア反応が明ら
かであった。CT1501Rと他方の化合物によって処
置されたマウスは毛包の最大濃度を有した。さらに、マ
ウスの目視検査は、CT1501RマウスはCT150
1R、ミノキシジル及び対照から成る群の中で最大に
“毛深い”ことを示した。それ故、CT1501Rはこ
のモデルにおける育毛促進に少なくともミノキシジルと
同程度に良好であった。従って、1〜4%CT1501
R(重量による)の局所製剤は禿頭症を治療し、育毛を
促進するための有効な治療組成物である。
【0110】実施例9 この実施例は内毒素の致死量を投与されたマウスの生存
率(survival)に対するCT1501Rの効果を説明す
る。我々は、CT1501Rがマウス モデルにおける
内毒素誘導致死を防止するかどうかを判定した。バイオ
メンブラン インスチチュート(Biomembrane Institut
e)(ワシントン州,シアトル)のアニマルユーズ コミ
ティ(Animal Use Committee)によって認可されたプロト
コール下で、既に発表された報告[アシュケナジ(Ashke
nazi)等,Proc.Natl.Acad.Sci.
U.S.A.88:10535−10539,1991
年]と同様に、生後6〜8週間の雌のBalb/マウ
スに内毒素を注入することによって、敗血症性ショック
をモデル化した。リン酸塩緩衝化生理食塩水(PBS)
中のサルモネラ アボルタス(Salmonella abortus)に等
しく由来する内毒素(シグマケミカル社,L−188
7)の約LD100量(10μg/g)を動物に静脈内注
入(i.v.)した。100μg/kgの用量のCT1
501Rを1日3回腹腔内に注入した(100ml/注
入)。対照マウスには同時に同量のビヒクル対照(PB
S)を注入した。生存率を少なくとも72時間追跡し
た。
【0111】血漿中のサイトカイン レベルのELIS
A測定のために、麻酔したマウスの眼窩後方(retroorbi
tal)又は心臓穿刺によって血液を回収し、直ちに遠心
し、EDTA血漿を−70℃において貯蔵した。粒子を
含まない血漿を氷上で解凍し、標準マウス血漿を用いて
標準曲線を形成して、商業的ELISA検定法を用いて
サイトカイン レベルを測定した。マウス腫瘍壊死因子
αキットとインターロイキン−1αキットとは、ゲンザ
イム(マサチューセッツ州,ケンブリッジ)とエンドゲ
ン(マサチューセッツ州,ボストン)とからそれぞれ購
入した。各データ点はマウス3匹からプールしたEDT
A血清から得た、2つのELISA測定値の平均値であ
った。表3に要約したデータは独立した2回の実験から
集めたものであり;表4と5からのデータは1データ点
につきマウス3匹の単回実験から得たものである。
【0112】マウス10匹を実験マウスと同じスケジュ
ールでPBS単独又はCT1501R単独でそれぞれ処
置した。不利な効果は認められず、生存率は実験の過程
を通して100%であった(データは示さず)。内毒素
の生存率データは全体で6回の独立した実験から要約し
た。要約の表1は6回の実験の各々の結果を列挙する。
累積生存率を表2に示し、図5としてプロットする。図
5において、各時点はマウス少なくとも20匹/群を含
む、少なくとも3回の実験を表す。フィッシャーの完全
片側検定を用いた生存データの確率分析は表3として示
す。LPS処置の直後にCT1501Rを投与した場合
には、有意な保護が与えられた。LPS処置後72時間
目の累積生存率は、LPS単独処置動物の7%に比べ
て、60%であった(p=<0.0005;表3)。
【0113】LPS処置後のCT1501R投与時間遅
延の効果も図5に示す。動物をLPSで処置し、このL
PS処置の2時間後又は4時間後に、CT1501Rを
投与した。この場合にも、CT1501Rは有意な保護
を与えた。CT1501R処置マウスの生存率は、LP
S単独処置動物の7%に比べて、2時間目に55%であ
り、4時間目には37%であった(それぞれ、p=0.
0005とp=0.001;表3)。
【0114】S.アボルタス内毒素による処置後の時間
の関数として、マウスの血漿内のTNF−α、IL−1
α及びIL−6のレベルを測定した。これらのデータを
内毒素による処置直後にCT1501Rの単回i.p.
注入によって処置した動物と比較した。TNF−αレベ
ルは内毒素処置の1時間以内にピークに達した(表4と
図6)。CT1501Rによるマウス処置は、測定した
あらゆる時点において内毒素処置マウスのEDTA血漿
中のTNF−αレベルを減じた。特に、内毒素後の0.
5時間目及び1時間目のTNF−αピークレベルは、C
T1501R処置マウスではそれぞれ2.5分の1と
2.6分の1に減少した。
【0115】IL−1αの血漿レベルも内毒素直後のC
T1501R処置によって減少した(表5;図7)。特
に、内毒素後の6、12及び18時間目に観察されたピ
ークレベルは、それぞれ1.2分の1、4.3分の1及
び3.2分の1に減少した。最後に、IL−6測定を同
じやり方で実施した(表6;図8)。3、6及び12時
間目におけるピーク血漿レベルもCT1501R処置動
物では減少した(それぞれ、1.7分の1、2.0分の
1及び4.1分の1に減少)。
【0116】マウス44匹中の41匹には致死量であっ
た内毒素量を受容したマウスの生存率を,CT1501
Rは有意に強化した。CT1501Rを内毒素と同時
に、又は内毒素処置の2時間後又は4時間後に投与した
場合には、対照と比べて、生存率が改良された。内毒素
直後のCT1501Rの1回量の投与は、TNF−α、
IL−1α及びIL−6のピーク血漿レベルを有意に減
少した。
【0117】
【表1】 表1.独立したマウス敗血症実験6回からの生存率データ 実験.# LPS後の LPS後の時間(生存数/全体) CT1501R投与時間 24時間 48時間 72時間 1 LPSのみ 2/4 0/4 0/4 t=0時間 4/5 4/5 4/5 t=2時間 4/5 3/5 3/5 2 LPSのみ 0/5 0/5 0/5 t=0時間 5/5 5/5 5/5 t=2時間 5/5 5/5 5/5 3 LPSのみ 1/5 1/5 1/5 t=4時間 5/5 3/5 3/5 4 LPSのみ 1/10 1/10 1/10 t=4時間 7/10 5/10 5/10 5 LPSのみ 0/10 0/10 0/10 t=0時間 9/10 7/10 3/10 t=2時間 5/10 3/10 3/10 t=4時間 7/10 4/10 2/10 6 LPSのみ 3/10 1/10 1/10 t=4時間 3/10 3/10 3/10
【0118】
【表2】 表2.表1に基づくデータからの累積マウス生存率 実験回数 LPS後の LPS後の時間(生存数/全体) CT1501R投与時間 24時間 48時間 72時間 n=6 LPSのみ 7/44 3/44 3/44 n=3 t=0時間 18/20 16/20 12/20 n=3 t=2時間 14/20 11/20 11/20 n=4 t=4時間 22/35 15/35 13/35
【0119】
【表3】 表3.表2のマウス敗血症生存率データに対するフィッシャー完全P値(片側) 実験回数 CT1501R P値(LPS後の時間投与時間 24時間 48時間 72時間 n=6 LPSのみ n=3 t=0時間 <0.0005 <0.0005 <0.0005 n=3 t=2時間 <0.0005 0.0005 0.0005 n=4 t=4時間 <0.0005 0.0002 0.001
【0120】
【表4】 表4.マウス血漿TNF−αELISA測定値からの平均化データ LPS後の時間 血漿TNF(pg/ml) LPSのみ LPS+CT1501R 0 0 0 0.17 8 6 0.5 990 390 1 4480 1728 2 1585 940 4 655 400 6 545 350
【0121】
【表5】 表5.マウス血漿IL−1αELISA測定値からのデータ LPS後の時間 血漿IL−1(pg/ml) LPSのみ LPS+CT1501R 0 0 0 0.17 0 0 0.5 0.01 22 1 2.25 10.8 3 41.3 33.2 6 166 133 12 139 32.3 18 150 46.7 24 16.6 43.5 36 全て死亡 18.8 48 全て死亡 0
【0122】
【表6】 表6.マウス血漿IL−6ELISA測定値からのデータ LPS後の時間 血漿IL−6(pg/ml) LPSのみ LPS+CT1501R 0 0 0 0.17 0.2 0.14 0.5 3.86 1 1 24 31.8 3 317 183 6 247 121 12 119 29.6 18 59 19.8 24 31 25.6 36 0 1.64 48 2 0.4
【0123】実施例10 この実施例はマウスにおける5−フルオロウラシル(5
−FU)誘導骨髄抑圧に対するCT1501Rの効果を
説明する。我々は、マウスモデルにおける細胞毒性化学
療法後の造血再形成のために必要な時間にCT1501
Rが影響するか否かを判定した。雌のBalb/Cマウ
ス[VAF,チャールス リバー ラボラトリーズ(Cha
rles River Laboratories),生後6〜8週間,約17.
3〜18.5g]を5−FUによって、実験1では20
0mg/kg又は実験2では190μg/kgの用量
で、腹腔内(i.p.)処置した。CT1501R又は
ビヒクル対照を5−FU投与の1日前から出発して10
0μg/kgの用量でi.p.投与して、実験1では1
3日目に、実験2では15日目に最後のマウスを殺すま
で続けた。対照には、5−FUを含まないCT1501
R又はビヒクルによって処置したマウスを含めた。5−
FU投与の2日間後から出発して、マウス(4匹/群)
をハロタン麻酔下での心臓穿刺後の頚部脱臼によって殺
し、総白血球算定と血球分画(differential count)を実
施した。血小板算定は位相対比顕微鏡を用いて2回実施
した。大腿骨を回収し、大腿骨あたりの顆粒球−マクロ
ファージコロニー形成細胞(CFU−GM)数を成長因
子としてポークウィードマイトジェン(pokeweed mitoge
n)脾臓ならし培地を用いる標準検定法[テリー フォッ
クス ラボラトリーズ(Terry Fox Laboratories);ブリ
ティッシュコロンビア州,ヴァンクーバー]を用いて測
定した。各大腿骨は別々に3回培養し、各実験時点の平
均値を算出した。統計分析に用いた標準偏差は各大腿骨
に関して測定された平均コロニー数の偏差であった。
【0124】ビヒクル対照又はCT1501Rによって
処置したマウスは明らかな不利な影響を受けなかった。
ビヒクル対照のみで処置されたマウスは、時間と共に、
絶対好中球数(ANC)及び白血球数(WBC)の増加
を示したが、これはCT1501R処置マウスでは見ら
れなかった。これらの差は0日目の値と4日目及び8日
目の値とは有意に異なった(それぞれ、p=0.012
とp=0.016;両側スチューデント検定)。CT1
501R投与マウスに比較した場合に、対照処置マウス
は4日目に有意に高い白血球数を有し(p=0.00
9)、12日目に有意に高い好中球数を有した(p=
0.028)。対照処置マウスは0日目の値に比べて、
12日目の顆粒球数の有意な上昇を示した(p=0.0
28)。CT1501R処置マウスのWBCとANCは
対照値の1SD内に留まった。
【0125】5−FU処置マウスのWBCは、6日目及
び10日目に、CT1501R処置マウスにおけるより
もビヒクル処置対照マウスにおいて有意に低かった(そ
れぞれ、p=0.019とp=0.036)(図1
0)。血球分画では、全ての血球(cell)は6日目と8日
目に両群においてリンパ球の形状を有した。CT150
1R処置マウスでは10日目に幾つかの単球が認めら
れ、顆粒球は稀に認められた。13日目に、440±1
7/mm3の平均値±SD ANCを有したが、対照マ
ウスは180±10/mm3を有した(p=0.05)
(図10)。
【0126】造血前駆細胞の回復はCFU−GM数/大
腿骨の測定によって推定される。5−FU処置後に、ビ
ヒクル対照とCT1501R処置マウスの両方は、回復
の開始時の8日目までに測定不能なレベル近くにCFU
−GMを抑圧した(図13)。13日目までに、有意な
分散が存在した。CT1501R処置マウスはビヒクル
対照動物(p=0.024)及び0日目に処置前に殺し
た動物(p=0.05)よりも有意に多いCFU−GM
数/大腿骨を13日目に有し、このことは前駆細胞回復
のオーバーシュート(overshoot)が存在することを実証
した。
【0127】実験2は下記事項:(1)5−FU用量を
185mg/kgに減じた;(2)10日目から15日
目まで毎日採血(blood draw)を実施した;及び(3)血
小板算定を実施したことを除いて、実験1と同様であっ
た。実験2からの結果は、図10〜13にグラフとして
示す。第1実験と同様に、CT1501Rによって処置
したマウスは有意に高いWBCを有した(図10)。C
T1501R処置マウスでは、好中球回復が増進された
(図12)。血小板最低数(nadir)と回復率もビヒクル
対照動物に比べて増加した(図11)。細胞数/大腿骨
は造血回復中に、CFU−GM数/大腿骨と同様に、対
照動物に比べて増加した(図13)。
【0128】5−FUの高度骨髄抑圧量を受容したマウ
スでは、CT1501R処置が好中球数の上昇率と、関
連する骨髄性前駆細胞による骨髄再集団(marrow repopu
lation)率とを増加させた。CT1501Rは各測定時
点において総WBCの5−FU誘導抑制を阻止した。し
かし、10日目までに、小リンパ球の形態学的出現によ
って細胞は増加した。実験1では13日目に、実験2で
は10日目にCT1501R処置マウス中の好中球はビ
ヒクル対照処置マウスにおけるよりも有意に増加した。
CT1501Rによる造血回復の刺激は巨核球系統にも
影響を与えた。試験動物は対照動物よりも有意に高い血
小板最低数を有し、ビヒクル対照よりも迅速な血小板数
上昇と大きなオーバーシュートとを示した。
【0129】造血の刺激は骨髄細胞充実性(marrow cel
lurality)の回復と骨髄前駆細胞の定量化との両方によ
っても証明された。CT1501R処置マウスは造血回
復中に、対照動物に比べて、CFU−GM数/大腿骨の
約2倍の増加を示した。
【0130】5−FUを受容しなかった動物では、CT
1501Rによる処置がビヒクル対照に付随するANC
上昇とCFU−GM/大腿骨上昇の両方を阻止した。C
T1501R処置動物の全てが非注入対照の1標準偏差
以内にANCを維持した。CT1501Rが1日2回の
i.p.注入に対するストレス誘導反応と恐らくサイト
カイン誘導反応をも阻止したように思われる。
【0131】総合的に、上記データは細胞毒性薬物又は
細胞減少治療後の造血再構成を促進するためのCT15
01Rと本発明化合物との使用方法を支持する。
【図面の簡単な説明】
【図1】図1は、CT1501R(R-(-)(5−ヒドロ
キシヘキシル)テオブロミン)およびPTXに対する混
合リンパ球反応を示す。混合リンパ球反応は、ツーウェ
イ方式の混合リンパ球反応によって調べたところ、同種
異系刺激に対してPBMC(末梢血単核細胞)の増殖反
応を示す。CT1501RおよびPTXは共に、この免
疫調節活性測定方法において用量作用活性を示した。
【図2】図2は、抗ミュー抗体、IL−4、または抗ミ
ュー抗体にIL−4をクロスリンクしたものによって刺
激されたマウスB細胞の増殖のCT1501Rによる抑
制効果を示す。
【図3】図3は、コンカナバリンA(ConA)とイン
ターロイキン−1α(IL−1α若しくはインターロイ
キン−2(IL−2)による増殖のCT1501Rによ
る抑制効果を示す。ConAとIL−1α若しくはIL
−2による活性化の2時間前に、CT1501Rを示し
た用量だけ加えた。図3に示されるように、CT150
1Rは胸腺細胞の増殖を用量依存的に抑制した。バック
グランドは200cpmより小さかった。
【図4】図4は、PDGF(血小板由来成長因子)およ
びIL−1によって刺激された平滑筋の増殖のCT15
01RおよびPTXによる抑制効果を示す。PDGFお
よびIL−1による活性化の2時間前にCT1501R
およびPTXを別々に加えた。図4に示されるように、
両薬剤共、テストした中で高い用量を用いた場合に平滑
筋細胞の増殖を抑制した。CT1501RはPTXより
も活性が高かった。
【図5】図5は、マウスのエンドトキシンによる致死の
CT1501Rによる抑制を、最大6回の独立した実験
における生存マウスの累積パーセントで示す(N=実験
回数)。動物に10μg/gmのLPSを投与した(静
脈注射)。LPSを与えた直後(t=0)、2時間後
(t=2)、または4時間後(t=4)にマウスにCT
1501R(100mg/kg、腹腔内投与)の1回目
の投与を行った。その後、マウスにCT1501Rを1
日に3回投与し、動物の生存率をモニターした。
【図6】図6は、エンドトキシン処理後のマウス血清T
NF−αレベルを示す。各値は、2回のELISA測定
の平均からなる、2回の実験の平均値を示しており、各
点は3匹のマウスからプールした血漿について価を示
す。
【図7】図7は、マウス血漿IL−1αELISA測定
のデータを示す。データは、2回のELISA測定の平
均からなる、1回の実験の平均値を示しており、各点は
3匹のマウスからプールした血漿について価を示す。
【図8】図8は、マウス血漿IL−6ELISA測定の
データを示す。データは、2回のELISA測定の平均
からなる、1回の実験の平均値を示しており、各点は3
匹のマウスからプールした血漿について価を示す。
【図9】図9は、CT1501Rの大量合成工程の流れ
図(フローチャート)を示す。
【図10】図10は、5−フルオロウラシルで処理した
後(0日目)、1日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均WBCを示
す。この実験は、図10−13で述べられるように造血
のin vivoモデルである。各時点において4匹の
マウスのグループを瀉血した。グラフの各値は平均値±
1SDを示す。
【図11】図11は、5−フルオロウラシルで処理した
後(0日目)、0日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均血小板数を
示す。各時点において4匹のマウスのグループを瀉血し
た。グラフの各値は平均値±1SDを示す。
【図12】図12は、0日目からCT1501Rまたは
媒体コントロールを2回/日投与したマウスの平均好中
球数を絶対値で示す。各時点において4匹のマウスのグ
ループを瀉血した。グラフの各値は平均値±1SDを示
す。
【図13】図13は、5−フルオロウラシルで処理した
後(0日目)、0日目からCT1501Rまたは媒体コ
ントロールを2回/日投与したマウスの平均CFU−G
M/大腿骨を示す。各時点において4匹のマウスのグル
ープを殺し、一本の大腿骨を採集する。グラフの各値
は、三回の培養でテストした各個体当たりのコロニー数
の平均値±1SDを示す。
【図14】図14は、化学治療後の生存率に対するCT
−1501Rの効果を示す。
【図15】図15は、CT1501Rを、別の敗血症シ
ョック薬剤である、二官能性TNF受容体(Genen
tech社)(Ashkenaziら., Proc.N
atl.Acad.Sci.USA 88:10535,1
991)の公表されている値と比較したものである。両
薬剤は、致死量のLPS(エンドトキシン)投与とほぼ
同時に投与した。このin vivo実験の比較シリー
ズでは、薬剤投与の時間に関係なく、CT1501Rの
方がGenentech社製TNF受容体よりも一貫し
て生存率の増加を促進した。
【図16】図16は、CT1501Rを、別の敗血症シ
ョック薬剤である、二官能性TNF受容体(Genen
tech社)(Ashkenaziら., Proc.N
atl.Acad.Sci.USA 88:10535,1
991)の公表されている値と比較したものである。両
薬剤は、致死量のLPS(エンドトキシン)投与から2
時間後に(図16)投与した。このin vivo実験
の比較シリーズでは、薬剤投与の時間に関係なく、CT
1501Rの方がGenentech社製TNF受容体
よりも一貫して生存率の増加を促進した。
【図17】図17は、CT1501R、そのS異性体で
あるCT1501S、およびPTXのリソホスファチジ
ン酸アシルトランスフェラーゼ(LPAAT)(第二メ
ッセンジャーシグナル伝達に関与する酵素)に対するi
n vivo抑制についての比較を示している。図から
わかるように、臨床現場で達成可能なIC50濃度にお
いてCT1501Rのみが酵素活性を著しく阻害した。
LPAAT活性はIL−1βで刺激した3T3 Ras
形質転換繊維芽細胞を用いて決定した。
【図18】図18は、LPS活性化マウス腹腔マクロフ
ァージからのTNF−αの遊離のCT1501Rによる
抑制の用量作用曲線を示す。細胞を単離し、LPS活性
化(10mg/ml)の1時間前に種々の濃度のCT1
501Rの処理をするか、または処理を行わなかった。
24時間後に上清を集め、ELISAによってTNF−
αについて分析した(+/-SD)。
【図19】図19は、LPS活性化PECにおけるIL
−1αの遊離のCT1501Rによる抑制を示す。細胞
を単離し、LPS活性化(10μg/ml)の1時間前
にCT1501R(250μM)の処理するか、または
処理を行わなかった。所定の時間経過後に上清を集め、
ELISAによってIL−1αについて分析した(+/-
SD)。
【図20】図20は、IL−1α活性化マウス腹腔マク
ロファージからのTNF−αの遊離の抑制を示す。細胞
を単離し、IL−1α活性化の1時間前にCT1501
R(250μM)の処理をするか、または処理を行わな
かった。活性化から24、48、または72時間経過後
に上清を集め、ELISAによってTNF−αについて
分析した(+/-SD)。
【図21】図21は、U937細胞の活性化HUVEC
への接着の抑制を示す。HUVECに250μM CT
1501Rを加えた後1時間後に、または加えずに、I
L−1α(100ng/ml);TNF−α(10ng/
ml)若しくはLPS(10mg/ml)で刺激した。
12時間後に、細胞のBCECFラベルしたU937細
胞への接着について分析した。図21は、各処理グルー
プの相対BCECF蛍光(+/-SD)を示す。
【図22】図22は、活性化U937細胞のHUVEC
への接着の抑制を示す。U937細胞に250μM C
T1501Rを加えた後1時間後に、または加えずに、
種々の濃度のIL−1αで刺激した。12時間後に、U
937細胞をBCECFで標識し、HUVECへ接着さ
せた。図21は、各処理グループの相対BCECF蛍光
(+/-SD)を示す。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 ビアンコ,ジェームズ・エイ アメリカ合衆国ワシントン州98126,シア トル,ファウントレロイ・アベニュー 2349 サウスウエスト,ユニット ナンバ ー 301 (72)発明者 ウッドソン,ポール アメリカ合衆国ワシントン州98011,ボセ ル,ノースイースト・ワンハンドレッドフ ォーティセカンド・コート 9218 (72)発明者 ポルベック,デーヴィッド アメリカ合衆国ワシントン州98026,エド モンズ,ツーハンドレッドサーティエイ ス・ストリート 8723 サウスウエスト, ユニット ナンバー シー−11 (72)発明者 シンガー,ジャック アメリカ合衆国ワシントン州98112,シア トル,イースト・スプリング・ストリート 3515

Claims (13)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】式: 【化1】 [式中、R1は独立に、ω−1第二アルコールで置換さ
    れたアルキル(C5-8)の実質的に他の鏡像異性体を含
    まない分離された鏡像異性体であり、 R2およびR3は独立に、所望により炭素原子の代りに1
    つ、又は隣接しない2つの酸素原子を含んでいてもよ
    い、アルキル(C1-12)である]で示される化合物を含
    む置換キサンチン化合物。
  2. 【請求項2】R1がR鏡像異性体として水酸基を含むC6
    アルキルである請求項1記載の化合物。
  3. 【請求項3】R−1−(5−ヒドロキシヘキシル)テオ
    ブロミンである請求項2記載の化合物。
  4. 【請求項4】R1が6−ヒドロキシヘプチル又は7−ヒ
    ドロキシオクチルのR異性体である請求項1記載の化合
    物。
  5. 【請求項5】患者への経口投与、非経口投与、ex v
    ivo投与又は局所投与用に処方された、請求項1記載
    の化合物と薬剤学的に受容される助剤とを含む薬剤組成
    物。
  6. 【請求項6】化合物の経口投与量が約500mg〜約1
    500mg1日2回又は3回であり、非経口投与量が2
    4時間の過程にわたって投与される(静脈内注射、腹腔
    内投与、筋肉内注射又は皮下注射)約1.0g〜約5.
    0gであり、局所製剤濃度が約1重量%〜約4重量%で
    あり、ex vivo培養濃度が約10μM〜約500
    μMである請求項5記載の薬剤組成物。
  7. 【請求項7】増強した第二メッセンジャー活性によって
    仲介される疾患を治療する薬物を製造するための請求項
    1記載の置換キサンチン化合物の使用において、該疾患
    が外部の又はin situの第1刺激に対する免疫応
    答又は細胞反応を抑制することを特徴とする又は抑制す
    ることによって治療されることができ、該細胞反応が細
    胞の細胞膜の内部リーフレットに隣接して作用する特異
    的なリン脂質ベースの第2メッセンジャーによって仲介
    される前記使用。
  8. 【請求項8】活性化癌遺伝子に応答した癌細胞の増殖;
    細胞減少治療によって惹起される血球細胞欠損(hematoc
    ytopenia);T細胞応答若しくはB細胞応答、および抗
    体の産生によって惹起される自己免疫疾患;敗血症性シ
    ョック;腫瘍壊死因子(TNF)に対する間葉細胞の耐
    性;成長因子に応答した平滑筋細胞、内皮細胞、繊維芽
    細胞及びその他の種類の細胞の増殖;アテローム硬化
    症;再狭窄;冠状動脈疾患;血管疾患;ヒト免疫不全ウ
    イルス感染症;IL−1、mip−1α、PDGFもし
    くはFGFに応答した、腎臓糸球体間質細胞の増殖;炎
    症;シクロスポリンA又はアンホテリシンB治療に反応
    した腎臓糸球体もしくは尿細管中毒;細胞減少治療に応
    答した臓器中毒;非アルキル化抗癌剤の抗癌作用の増
    強;細胞表面メタロプロテアーゼの産生又はIgEに反
    応したマスト細胞および好塩基球の脱顆粒反応を特徴と
    する炎症刺激に反応したアレルギー;破骨細胞による破
    骨細胞活性化因子(OAF)の過剰産生によって惹起さ
    れる骨疾患;神経伝達物質のエピネフリン及びアセチル
    コリンのシグナル導入減少によって惹起される中枢神経
    系(CNS)疾患;及びこれらの組合せ:から成る群か
    ら選択される疾患を治療するための薬剤の製造への請求
    項1記載の置換キサンチン化合物の使用。
  9. 【請求項9】敗血症性ショックを含めた敗血症症状を治
    療又は予防するための薬剤の製造への請求項1記載の置
    換キサンチン化合物の使用。
  10. 【請求項10】細胞減少療法によって惹起される造血毒
    性又は器官毒性を治療又は予防するための薬剤の製造へ
    の請求項1記載の置換キサンチン化合物の使用。
  11. 【請求項11】シクロスポリンA及びFK506を含め
    た免疫抑制剤療法によって惹起される副作用を治療又は
    予防するための薬剤の製造への請求項1記載の置換キサ
    ンチン化合物の使用。
  12. 【請求項12】細胞減少療法によって惹起される疾患、
    禿頭症、脱毛又はアロペシア(alopecia)を治療するため
    の薬剤の製造への請求項1記載の置換キサンチン化合物
    の使用。
  13. 【請求項13】腫瘍に伴う苦痛、ホルモン関連障害、神
    経障害、自己免疫疾患、炎症、再狭窄、高血圧、好まし
    くない免疫反応、ウイルス感染症、腎炎、粘膜炎、アレ
    ルギー反応、及び中枢神経系の障害から成る群から選択
    される疾患を治療するための薬剤の製造への請求項1記
    載の置換キサンチン化合物の使用。
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