JPH08284A - セファロスポラン酸誘導体の製造法 - Google Patents
セファロスポラン酸誘導体の製造法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【構成】 一般式(2)
(式中、Aは水素原子またはフェニルアセチル基、Rは
水素原子、水酸基、アセトキシ基またはハロゲン原子を
示す)で表される3−置換メチル−3−セフェム−4−
カルボン酸とクロロ酢酸低級アルキルエステルを水性媒
体中前記一般式(2)で表される3−置換メチル−3−
セフェム−4−カルボン酸とクロロ酢酸低級アルキルエ
ステルとから7−クロロアセトアミド−3−置換メチル
−3−セフェム−4−カルボン酸に変換する能力を有す
るアシラーゼまたはその含有物の存在下反応させること
を特徴とする7−クロロアセトアミド−3−置換メチル
−3−セフェム−4−カルボン酸の製造法。 【効果】 本酵素的製造法によりセファロスポリン系抗
生物質の製造中間体である7−クロロアセトアミド−3
−置換メチル−3−セフェム−4−カルボン酸を公知の
化学法より簡便、容易且つ高収率で得られ、しかも、公
害防止上の問題となる廃液を発生しない方法を提供する
ことができる。 【化1】
水素原子、水酸基、アセトキシ基またはハロゲン原子を
示す)で表される3−置換メチル−3−セフェム−4−
カルボン酸とクロロ酢酸低級アルキルエステルを水性媒
体中前記一般式(2)で表される3−置換メチル−3−
セフェム−4−カルボン酸とクロロ酢酸低級アルキルエ
ステルとから7−クロロアセトアミド−3−置換メチル
−3−セフェム−4−カルボン酸に変換する能力を有す
るアシラーゼまたはその含有物の存在下反応させること
を特徴とする7−クロロアセトアミド−3−置換メチル
−3−セフェム−4−カルボン酸の製造法。 【効果】 本酵素的製造法によりセファロスポリン系抗
生物質の製造中間体である7−クロロアセトアミド−3
−置換メチル−3−セフェム−4−カルボン酸を公知の
化学法より簡便、容易且つ高収率で得られ、しかも、公
害防止上の問題となる廃液を発生しない方法を提供する
ことができる。 【化1】
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は、医薬品として優れた抗
菌活性を有する種々のセファロスポリン系抗生物質の製
造における有用な中間体の酵素的製造法に関する。さら
に詳しくは、本発明は、7−アミノまたはフェニルアセ
チルアミノ−セファロスポラン酸誘導体から7−クロロ
アセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体の酵素的製
造法に関する。
菌活性を有する種々のセファロスポリン系抗生物質の製
造における有用な中間体の酵素的製造法に関する。さら
に詳しくは、本発明は、7−アミノまたはフェニルアセ
チルアミノ−セファロスポラン酸誘導体から7−クロロ
アセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体の酵素的製
造法に関する。
【0002】
【従来の技術】現在、医薬品として使用されているセフ
ァロスポリン系抗生物質は、セフェム環の3位に種々の
置換基を導入することにより優れた抗菌活性を有するセ
ファロスポリン化合物が次々登場している。
ァロスポリン系抗生物質は、セフェム環の3位に種々の
置換基を導入することにより優れた抗菌活性を有するセ
ファロスポリン化合物が次々登場している。
【0003】3位の置換基の多様化に伴い、7位のアミ
ノ基に保護基をもち、3位の反応性を高めた原料中間体
が種々報告されている(特開昭58−74689号公報
等参照)。
ノ基に保護基をもち、3位の反応性を高めた原料中間体
が種々報告されている(特開昭58−74689号公報
等参照)。
【0004】上記の原料中間体の1つとして、7−クロ
ロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体を使用す
る方法が種々報告されている(特開昭49−30386
号、特開昭50−52086号、特開昭51−4378
4号、特開昭53−119885号公報等参照)。
ロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体を使用す
る方法が種々報告されている(特開昭49−30386
号、特開昭50−52086号、特開昭51−4378
4号、特開昭53−119885号公報等参照)。
【0005】7位のアミノ基の保護基として、クロロア
セチル基を使用した場合、その脱保護化に際し、簡便且
つ容易に脱離することができるので、リン化合物等の公
害防止上の問題となる廃液を発生しない点で非常に優れ
ている。
セチル基を使用した場合、その脱保護化に際し、簡便且
つ容易に脱離することができるので、リン化合物等の公
害防止上の問題となる廃液を発生しない点で非常に優れ
ている。
【0006】従来、7−アミノセファロスポラン酸誘導
体を出発原料にし、その7位のアミノ基の保護基として
クロロアセチル基を導入する方法としては、化学的方法
が行われており、通常のアミノ基へのアシル基導入法に
従って7−アミノセファロスポラン酸誘導体にクロロ酢
酸クロライドまたはクロロ酢酸無水物を反応させる方法
が周知である。また、7−フェニルアセチルアミノまた
はフェノキシアセチルアミノ−セファロスポラン酸エス
テル誘導体にクロロアセチルクロライドを反応させるこ
とによりアシル交換反応による方法も報告されている
(特開昭48−15894号公報)。
体を出発原料にし、その7位のアミノ基の保護基として
クロロアセチル基を導入する方法としては、化学的方法
が行われており、通常のアミノ基へのアシル基導入法に
従って7−アミノセファロスポラン酸誘導体にクロロ酢
酸クロライドまたはクロロ酢酸無水物を反応させる方法
が周知である。また、7−フェニルアセチルアミノまた
はフェノキシアセチルアミノ−セファロスポラン酸エス
テル誘導体にクロロアセチルクロライドを反応させるこ
とによりアシル交換反応による方法も報告されている
(特開昭48−15894号公報)。
【0007】他方、7−アミノ−セフェム化合物にD−
フェニルグリシル基、2−チエニルアセチル基等のアシ
ル基を酵素的に導入する方法種々知られている(特公昭
50−6551号、特公昭52−20552号、特公昭
52−31436号、特公昭55−2958号、特開昭
49−20395号、特公昭52−31035号、特開
昭49−47594号、特公昭54−37237号、特
公昭55−48799号、特公昭57−59760号、
特公昭54−31080号、特公昭57−22559
号、特公昭58−6476号、特公昭57−35960
号、特開昭53−118591号公報等参照)。
フェニルグリシル基、2−チエニルアセチル基等のアシ
ル基を酵素的に導入する方法種々知られている(特公昭
50−6551号、特公昭52−20552号、特公昭
52−31436号、特公昭55−2958号、特開昭
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号、特開昭53−118591号公報等参照)。
【0008】
【発明が解決しようとする課題】7位のアミノ基にクロ
ロアセチル基を化学的に導入する場合、大量の有機溶媒
と非常に反応性が高く人体に有害なクロロ酢酸ハライド
を使用し、環境上問題となる。また、4位のカルボン酸
をアシル化してカルボキシル保護基で保護する必要があ
り、製造工程が煩雑となる。
ロアセチル基を化学的に導入する場合、大量の有機溶媒
と非常に反応性が高く人体に有害なクロロ酢酸ハライド
を使用し、環境上問題となる。また、4位のカルボン酸
をアシル化してカルボキシル保護基で保護する必要があ
り、製造工程が煩雑となる。
【0009】さらにまた、7−アミノセファロスポラン
酸(7−ACA)を原料として7位のアミノ基にアシル
基を導入後、3位のアセトキシメチル基の加水分解して
ヒドロキシメチル基に変換する場合、この加水分解を工
業的に有利な酵素法で行おうとするとき、一旦、有機溶
媒を分離し、単離、乾燥する工程が必要となり、工業的
に不利である。また、ペニシリンGを原料として合成さ
れる7−フェニルアセトアミド−3−メチル−3−セフ
ェム化合物より目的のセファロスポラン酸誘導体を合成
する場合には、一旦フェニルアセチル基を脱離する必要
があるが、この脱離を化学的に行う場合、上記と同様に
大量の有機溶媒、反応性が高く人体に有害な試薬を使用
し、環境上の問題がある。さらに、4位のカルボン酸を
アシル化してカルボキシル保護基で保護する必要があ
り、製造工程が煩雑となる。
酸(7−ACA)を原料として7位のアミノ基にアシル
基を導入後、3位のアセトキシメチル基の加水分解して
ヒドロキシメチル基に変換する場合、この加水分解を工
業的に有利な酵素法で行おうとするとき、一旦、有機溶
媒を分離し、単離、乾燥する工程が必要となり、工業的
に不利である。また、ペニシリンGを原料として合成さ
れる7−フェニルアセトアミド−3−メチル−3−セフ
ェム化合物より目的のセファロスポラン酸誘導体を合成
する場合には、一旦フェニルアセチル基を脱離する必要
があるが、この脱離を化学的に行う場合、上記と同様に
大量の有機溶媒、反応性が高く人体に有害な試薬を使用
し、環境上の問題がある。さらに、4位のカルボン酸を
アシル化してカルボキシル保護基で保護する必要があ
り、製造工程が煩雑となる。
【0010】一方、7位のアミノ基に酵素的にアシル基
を導入する公知の方法は、いずれも生成した目的物と反
応に使用する活性な前駆体とが酵素的に加水分解され、
且つ生成した目的物の加水分解反応は合成反応速度と比
較し同等程度であるため合成収率が80%以下である。
を導入する公知の方法は、いずれも生成した目的物と反
応に使用する活性な前駆体とが酵素的に加水分解され、
且つ生成した目的物の加水分解反応は合成反応速度と比
較し同等程度であるため合成収率が80%以下である。
【0011】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の種
々の問題を解決するに当り、7位のアミノ基の保護基と
して導入する置換基として、その脱保護に際し、簡便且
つ容易でリン化合物等の公害防止上の問題となる廃液を
発生しないクロロアセチル基を選択し、この置換基をセ
ファロスポラン酸誘導体に導入すべく鋭意研究を続けた
結果、意外なことに、特定のアシラーゼによるクロロア
セチル基の7位のアミノ基への導入反応においては、生
成された目的物が実質的にアシラーゼによる加水分解を
受けないため、従来の報告で例を見ない高収率で得られ
ることを見出し、本発明を完成させるに至ったものであ
る。
々の問題を解決するに当り、7位のアミノ基の保護基と
して導入する置換基として、その脱保護に際し、簡便且
つ容易でリン化合物等の公害防止上の問題となる廃液を
発生しないクロロアセチル基を選択し、この置換基をセ
ファロスポラン酸誘導体に導入すべく鋭意研究を続けた
結果、意外なことに、特定のアシラーゼによるクロロア
セチル基の7位のアミノ基への導入反応においては、生
成された目的物が実質的にアシラーゼによる加水分解を
受けないため、従来の報告で例を見ない高収率で得られ
ることを見出し、本発明を完成させるに至ったものであ
る。
【0012】すなわち、本発明は、一般式(2)
【化3】 (式中、Aは水素原子またはフェニルアセチル基、Rは
水素原子、水酸基、アセトキシ基またはハロゲン原子を
示す)で表されるセファロスポラン酸誘導体とクロロ酢
酸低級アルキルエステルを水性媒体中前記一般式(2)
で表されるセファロスポラン酸誘導体〔以下、単に「化
合物(2)」と称する〕 とクロロ酢酸低級アルキルエ
ステルとから一般式(1)
水素原子、水酸基、アセトキシ基またはハロゲン原子を
示す)で表されるセファロスポラン酸誘導体とクロロ酢
酸低級アルキルエステルを水性媒体中前記一般式(2)
で表されるセファロスポラン酸誘導体〔以下、単に「化
合物(2)」と称する〕 とクロロ酢酸低級アルキルエ
ステルとから一般式(1)
【0013】
【化4】 (式中、Rは前記と同じ意味を有する)で表される7−
クロロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体に変
換する能力を有するアシラーゼ〔以下、単に「本アシラ
ーゼ」と称する〕またはその含有物の存在下反応させる
ことを特徴とする前記一般式(1)で表される7−クロ
ロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体〔以下、
単に「目的化合物(1)」と称する〕の製造法を提供す
るものである。
クロロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体に変
換する能力を有するアシラーゼ〔以下、単に「本アシラ
ーゼ」と称する〕またはその含有物の存在下反応させる
ことを特徴とする前記一般式(1)で表される7−クロ
ロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体〔以下、
単に「目的化合物(1)」と称する〕の製造法を提供す
るものである。
【0014】本発明で使用される本アシラーゼは、バチ
ルス・メガテリウムまたはエッシェリヒア・コリ由来の
アシラーゼが有利である。工業的に製造する場合には、
バチルス・メガテリウムB−400(FERM P−7
48)、バチルス・メガテリウムATCC14945、
エッシェリヒア・コリATCC11105等の微生物を
培養し、得られた培養物から本アシラーゼを分離、精製
すればよい。
ルス・メガテリウムまたはエッシェリヒア・コリ由来の
アシラーゼが有利である。工業的に製造する場合には、
バチルス・メガテリウムB−400(FERM P−7
48)、バチルス・メガテリウムATCC14945、
エッシェリヒア・コリATCC11105等の微生物を
培養し、得られた培養物から本アシラーゼを分離、精製
すればよい。
【0015】バチルス・メガテリウムB−400の菌学
的性質については特公昭50−6551号公報に記載さ
れており、エッシェリヒア・コリATCC11105の
使用については特公昭39−25125号、特公昭38
−9936号、特公昭40−7896号、特公昭42−
22377号公報等に記載されている。
的性質については特公昭50−6551号公報に記載さ
れており、エッシェリヒア・コリATCC11105の
使用については特公昭39−25125号、特公昭38
−9936号、特公昭40−7896号、特公昭42−
22377号公報等に記載されている。
【0016】上記微生物の培養は、公知の方法に従って
行うことができる。使用する培地は、一般細菌の栄養源
として公知のものが利用でき、例えばグルコース、フラ
クトース、マルトース、シュクロース、廃糖蜜、澱粉、
澱粉加水分解物、ポテト、酢酸、オレイン酸エチル、エ
タノール等の炭素源、硝酸、硫酸アンモニウム、塩化ア
ンモニウム、アンモニア等の無機窒素源、酵母エキス、
麦芽エキス、ペプトン、肉エキス、コーン・スチープ・
リカー、ディスティラーズ・ソルブル、フィッシュミー
ル、大豆浸出液、大豆蛋白分解物等の有機窒素源、L−
バリン、L−グルタミン酸等のアミノ酸、リン酸、マグ
ネシウム、カリウム、鉄、コバルト、マンガン等の無機
栄養源を適宜組み合わせて使用できる。培地のpHは5
〜9の範囲で選べばよく、好ましくは6〜8の間であ
る。培養温度は15〜45℃、好ましくは25〜40℃
の間である。培養日数は1〜10日の範囲で、酵素活性
が最大になるまで培養すればよい。
行うことができる。使用する培地は、一般細菌の栄養源
として公知のものが利用でき、例えばグルコース、フラ
クトース、マルトース、シュクロース、廃糖蜜、澱粉、
澱粉加水分解物、ポテト、酢酸、オレイン酸エチル、エ
タノール等の炭素源、硝酸、硫酸アンモニウム、塩化ア
ンモニウム、アンモニア等の無機窒素源、酵母エキス、
麦芽エキス、ペプトン、肉エキス、コーン・スチープ・
リカー、ディスティラーズ・ソルブル、フィッシュミー
ル、大豆浸出液、大豆蛋白分解物等の有機窒素源、L−
バリン、L−グルタミン酸等のアミノ酸、リン酸、マグ
ネシウム、カリウム、鉄、コバルト、マンガン等の無機
栄養源を適宜組み合わせて使用できる。培地のpHは5
〜9の範囲で選べばよく、好ましくは6〜8の間であ
る。培養温度は15〜45℃、好ましくは25〜40℃
の間である。培養日数は1〜10日の範囲で、酵素活性
が最大になるまで培養すればよい。
【0017】得られた培養物から本アシラーゼを分離、
精製するには、本酵素は生産菌によりその存在状態が異
なり、菌体内酵素あるいは菌体外酵素として存在する。
菌体内酵素である場合は、菌体を磨砕、超短波等の処理
による菌体破壊物、セチルピリジウムクロライド等の処
理による菌体溶解液を塩析、分画沈澱、透析、吸着クロ
マトグラフィー、ゲル濾過等の公知の酵素分離・精製手
段により分離、精製することができる。また、菌体外酵
素である場合には、培養物から菌体を分離した培養濾液
を前記の公知の酵素分離・精製手段により分離、精製す
ることができる。
精製するには、本酵素は生産菌によりその存在状態が異
なり、菌体内酵素あるいは菌体外酵素として存在する。
菌体内酵素である場合は、菌体を磨砕、超短波等の処理
による菌体破壊物、セチルピリジウムクロライド等の処
理による菌体溶解液を塩析、分画沈澱、透析、吸着クロ
マトグラフィー、ゲル濾過等の公知の酵素分離・精製手
段により分離、精製することができる。また、菌体外酵
素である場合には、培養物から菌体を分離した培養濾液
を前記の公知の酵素分離・精製手段により分離、精製す
ることができる。
【0018】本発明において、本アシラーゼ含有物と
は、本アシラーゼ活性を保持している限り如何なる形態
でも存在していてもよいことを意味する。例えば、本ア
シラーゼが菌体内酵素である場合、本アシラーゼ生産菌
の培養物、培養物から集菌して得た生菌体、物理的ある
いは化学的方法による菌体処理物、すなわち、アセト
ン、メタノール、エタノール等の処理による乾燥菌体、
磨砕、超短波等の処理による菌体破壊物、セチルピリジ
ウムクロライド等の処理による菌体溶解液、塩析、分画
沈澱、透析、吸着クロマトグラフィー、ゲル濾過等の公
知の酵素分離・精製手段により部分的に分離、精製した
酵素製剤が挙げられる。
は、本アシラーゼ活性を保持している限り如何なる形態
でも存在していてもよいことを意味する。例えば、本ア
シラーゼが菌体内酵素である場合、本アシラーゼ生産菌
の培養物、培養物から集菌して得た生菌体、物理的ある
いは化学的方法による菌体処理物、すなわち、アセト
ン、メタノール、エタノール等の処理による乾燥菌体、
磨砕、超短波等の処理による菌体破壊物、セチルピリジ
ウムクロライド等の処理による菌体溶解液、塩析、分画
沈澱、透析、吸着クロマトグラフィー、ゲル濾過等の公
知の酵素分離・精製手段により部分的に分離、精製した
酵素製剤が挙げられる。
【0019】また、本アシラーゼが菌体外酵素である場
合、本アシラーゼ生産菌の培養物、培養物から徐菌して
得た培養濾液、培養濾液から塩析、分画沈澱、透析、吸
着クロマトグラフィー、ゲル濾過等の公知の酵素分離・
精製手段により部分的に分離、精製した酵素製剤が挙げ
られる。
合、本アシラーゼ生産菌の培養物、培養物から徐菌して
得た培養濾液、培養濾液から塩析、分画沈澱、透析、吸
着クロマトグラフィー、ゲル濾過等の公知の酵素分離・
精製手段により部分的に分離、精製した酵素製剤が挙げ
られる。
【0020】さらにまた、本アシラーゼ、部分的に分離
・精製された段階で存在する本酵素含有液または生菌
体、乾燥菌体、菌体破壊物等の固体状態で存在する本酵
素含有物を固定化酵素あるいは固定化菌体を調製する公
知の方法に従って、公知の固体化用担体に固定化して得
た固定化酵素あるいは固定化菌体も本アシラーゼ含有物
に包含される。
・精製された段階で存在する本酵素含有液または生菌
体、乾燥菌体、菌体破壊物等の固体状態で存在する本酵
素含有物を固定化酵素あるいは固定化菌体を調製する公
知の方法に従って、公知の固体化用担体に固定化して得
た固定化酵素あるいは固定化菌体も本アシラーゼ含有物
に包含される。
【0021】上記の固定化方法としては、共有結合法、
物理的吸着法、イオン結合法、生化学的特異結合法等の
担体結合法、格子型、マイクロカプセル型、リポソーム
型、膜型等の包括固定化法が好ましい。使用する担体と
しては、イオン交換樹脂、吸着樹脂等の有機化合物、活
性炭等の無機化合物、キチン等の天然物質、セラミック
等の人工基質が挙げられる。
物理的吸着法、イオン結合法、生化学的特異結合法等の
担体結合法、格子型、マイクロカプセル型、リポソーム
型、膜型等の包括固定化法が好ましい。使用する担体と
しては、イオン交換樹脂、吸着樹脂等の有機化合物、活
性炭等の無機化合物、キチン等の天然物質、セラミック
等の人工基質が挙げられる。
【0022】前記のバチルス・メガテリウムおよびエッ
シェリヒア・コリATCC11105由来のアシラーゼ
は古くから知られており〔Methods of En
zymol.,43,705−721(1975)、A
pplied Biochemistry and B
iotechnology,Vol.9,537−55
4(1984)、Prosess Biochemis
try,27,131−143(1992)等参照〕、
固定化ペニシリンアシラーゼ(旭化成工業社製、特公昭
62−47516号公報参照)、ペニシリンアミダーゼ
(Penicillin amidase immob
ilized on EupergitC from
E.coli、Fluka社製)等の固定化酵素の形態
で市販されている。
シェリヒア・コリATCC11105由来のアシラーゼ
は古くから知られており〔Methods of En
zymol.,43,705−721(1975)、A
pplied Biochemistry and B
iotechnology,Vol.9,537−55
4(1984)、Prosess Biochemis
try,27,131−143(1992)等参照〕、
固定化ペニシリンアシラーゼ(旭化成工業社製、特公昭
62−47516号公報参照)、ペニシリンアミダーゼ
(Penicillin amidase immob
ilized on EupergitC from
E.coli、Fluka社製)等の固定化酵素の形態
で市販されている。
【0023】本発明において使用される化合物(2)は
公知物質であるが、Aが水素原子である物質としては、
7−ACA、7−アミノ−3−メチル−3−セフェム−
4−カルボン酸(デアセトキシ−7−ACA)、7−ア
ミノ−3−ヒドロキシメチル−3−セフェム−4−カル
ボン酸(デアセチル−7−ACA)、7−アミノ−3−
クロロメチル−3−3−セフェム−4−カルボン酸、7
−アミノ−3−ブロモメチル−3−セフェム−4−カル
ボン酸等が例示され、Aがフェニルアセチル基である物
質としては、7−フェニルアセトアミド−3−メチル−
3−セフェム−4−カルボン酸、7−フェニルアセトア
ミド−3−ヒドロキシメチル−3−セフェム−4−カル
ボン酸、7−フェニルアセトアミド−3−クロロメチル
−3−セフェム−4−カルボン酸、7−フェニルアセト
アミド−3−ブロモメチル−3−セフェム−4−カルボ
ン酸等が例示される。
公知物質であるが、Aが水素原子である物質としては、
7−ACA、7−アミノ−3−メチル−3−セフェム−
4−カルボン酸(デアセトキシ−7−ACA)、7−ア
ミノ−3−ヒドロキシメチル−3−セフェム−4−カル
ボン酸(デアセチル−7−ACA)、7−アミノ−3−
クロロメチル−3−3−セフェム−4−カルボン酸、7
−アミノ−3−ブロモメチル−3−セフェム−4−カル
ボン酸等が例示され、Aがフェニルアセチル基である物
質としては、7−フェニルアセトアミド−3−メチル−
3−セフェム−4−カルボン酸、7−フェニルアセトア
ミド−3−ヒドロキシメチル−3−セフェム−4−カル
ボン酸、7−フェニルアセトアミド−3−クロロメチル
−3−セフェム−4−カルボン酸、7−フェニルアセト
アミド−3−ブロモメチル−3−セフェム−4−カルボ
ン酸等が例示される。
【0024】本発明に使用されるクロロ酢酸低級アルキ
ルエステルとしては、クロロ酢酸の炭素数1〜4個のア
ルキルエステルが挙げることができるが、工業的にはク
ロロ酢酸メチルエステルまたはクロロ酢酸エチルエステ
ルが好ましい。
ルエステルとしては、クロロ酢酸の炭素数1〜4個のア
ルキルエステルが挙げることができるが、工業的にはク
ロロ酢酸メチルエステルまたはクロロ酢酸エチルエステ
ルが好ましい。
【0025】本発明においては、水性媒体中、本アシラ
ーゼまたはその含有物の存在下化合物(1)とクロロ酢
酸低級アルキルエステルを酵素的に反応させるのである
が、使用する水性媒体としては、水、各種塩類を含む緩
衝液、例えばリン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、水または緩
衝液と親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール
等のアルコール溶媒、アセトン等のケトン溶媒、ジオキ
サン等のエーテル溶媒との混合溶媒が挙げられる。さら
には、該水性媒体と非親水性有機溶媒とからなる二相系
溶媒を使用してもよい。
ーゼまたはその含有物の存在下化合物(1)とクロロ酢
酸低級アルキルエステルを酵素的に反応させるのである
が、使用する水性媒体としては、水、各種塩類を含む緩
衝液、例えばリン酸緩衝液、ホウ酸緩衝液、水または緩
衝液と親水性有機溶媒、例えばメタノール、エタノール
等のアルコール溶媒、アセトン等のケトン溶媒、ジオキ
サン等のエーテル溶媒との混合溶媒が挙げられる。さら
には、該水性媒体と非親水性有機溶媒とからなる二相系
溶媒を使用してもよい。
【0026】上記の反応温度は、原料の種類、溶媒の種
類、本アシラーゼまたはその含有物の存在形態等、種々
の条件により必ずしも一定ではないが、通常は0〜80
℃、好ましくは10〜50℃の間で適宜選択される。化
合物(2)の濃度は0.001から70重量%、好まし
くは0.1〜40重量%の間で適宜選択される。
類、本アシラーゼまたはその含有物の存在形態等、種々
の条件により必ずしも一定ではないが、通常は0〜80
℃、好ましくは10〜50℃の間で適宜選択される。化
合物(2)の濃度は0.001から70重量%、好まし
くは0.1〜40重量%の間で適宜選択される。
【0027】クロロ酢酸低級アルキルエステルの使用量
は化合物(2)の1〜10倍の範囲で適宜選択される。
これらの基質は連続的あるいは間欠的に補充し、反応中
の濃度が上記の範囲に維持されるように添加してもよ
い。
は化合物(2)の1〜10倍の範囲で適宜選択される。
これらの基質は連続的あるいは間欠的に補充し、反応中
の濃度が上記の範囲に維持されるように添加してもよ
い。
【0028】上記酵素反応はpH約5〜9の範囲、好ま
しくは7〜9の範囲に維持されるのがよい。反応中、上
記pHを保持するため、アンモニア水、水酸化ナトリウ
ム水溶液等が適宜添加されてもよい。反応経過を薄層ク
ロマトグラフィー(TLC)、高速液体クロマトグラフ
ィー(HPLC)等により追跡できるので、化合物
(2)が消失するか、または目的化合物(1)が最大に
生成されるのを待って適宜反応を終了させればよい。通
常の反応時間は0.5〜100時間である。
しくは7〜9の範囲に維持されるのがよい。反応中、上
記pHを保持するため、アンモニア水、水酸化ナトリウ
ム水溶液等が適宜添加されてもよい。反応経過を薄層ク
ロマトグラフィー(TLC)、高速液体クロマトグラフ
ィー(HPLC)等により追跡できるので、化合物
(2)が消失するか、または目的化合物(1)が最大に
生成されるのを待って適宜反応を終了させればよい。通
常の反応時間は0.5〜100時間である。
【0029】反応液から目的化合物(1)を採取するに
は、公知のセファロスポリン化合物を分離・精製する公
知の方法に従って行うことができる。例えば、抽出、結
晶化、クロマトグラフィー等の適宜組み合わせにより行
われる。
は、公知のセファロスポリン化合物を分離・精製する公
知の方法に従って行うことができる。例えば、抽出、結
晶化、クロマトグラフィー等の適宜組み合わせにより行
われる。
【0030】
【発明の効果】アシラーゼによるクロロアセチル基のセ
フェム骨格の7位のアミノ基への導入反応においては、
生成された目的物が実質的にアシラーゼによる加水分解
を受けないため、合成反応収率が公知の他の酵素的合成
反応に比較し、極めて高い方法を提供することができ、
また、公知の化学法より簡便、容易且つ高収率で得ら
れ、公害防止上の問題となる廃液を発生しない方法を提
供することができる。
フェム骨格の7位のアミノ基への導入反応においては、
生成された目的物が実質的にアシラーゼによる加水分解
を受けないため、合成反応収率が公知の他の酵素的合成
反応に比較し、極めて高い方法を提供することができ、
また、公知の化学法より簡便、容易且つ高収率で得ら
れ、公害防止上の問題となる廃液を発生しない方法を提
供することができる。
【0031】
【実施例】次に、参考例、実施例および比較例を挙げて
本発明をさらに詳細に説明する。
本発明をさらに詳細に説明する。
【0032】
【参考例】ポリペプトン1%、肉エキス1%、食塩0.
5%、フェニル酢酸0.2%を含む液体培地(pH7.
0)50mlを500ml容三角フラスコに分注し、蒸
気滅菌した後、斜面培養しておいたバチルス・メガテリ
ウムB−400を接種し、30℃で30時間振盪培養し
た。培養後、培養物を合わせて遠心分離により菌体を除
去し、得られた培養液上清のpHを7.5に調整後、セ
ライト(JohnsManville Sales社製
No.560)20g/Lを添加し、2時間攪拌してペ
ニシリンGアシラーゼを吸着させた。次いで、濾過して
セライトを回収し、水洗後、24%硫安水溶液でペニシ
リンGアシラーゼを溶出し、リン酸カリウム緩衝液に対
して透析を行い、酵素精製液(60U/ml)を得た。
5%、フェニル酢酸0.2%を含む液体培地(pH7.
0)50mlを500ml容三角フラスコに分注し、蒸
気滅菌した後、斜面培養しておいたバチルス・メガテリ
ウムB−400を接種し、30℃で30時間振盪培養し
た。培養後、培養物を合わせて遠心分離により菌体を除
去し、得られた培養液上清のpHを7.5に調整後、セ
ライト(JohnsManville Sales社製
No.560)20g/Lを添加し、2時間攪拌してペ
ニシリンGアシラーゼを吸着させた。次いで、濾過して
セライトを回収し、水洗後、24%硫安水溶液でペニシ
リンGアシラーゼを溶出し、リン酸カリウム緩衝液に対
して透析を行い、酵素精製液(60U/ml)を得た。
【0033】本アシラーゼ活性の活性測定法は次の方法
により求めた。上記酵素溶液を7−フェニルアセチルア
ミノ−デアセチル−セファロスポラン酸20mモル濃度
を含むリン酸緩衝液(pH7.5)中で25℃で20分
間反応させ、HPLCにより生成するデアセチル−7−
ACAを定量し、加水分解活性を求めた(活性1単位
(U)は1分間に1μモルのデセアセチル7−ACAを
加水分解する能力を示す)。
により求めた。上記酵素溶液を7−フェニルアセチルア
ミノ−デアセチル−セファロスポラン酸20mモル濃度
を含むリン酸緩衝液(pH7.5)中で25℃で20分
間反応させ、HPLCにより生成するデアセチル−7−
ACAを定量し、加水分解活性を求めた(活性1単位
(U)は1分間に1μモルのデセアセチル7−ACAを
加水分解する能力を示す)。
【0034】上記のHPLC分析は次の条件により行っ
た。 カラム:Cosmosil Packed Colum
e 4.6mm×150mm(Nacarai社製) 溶媒;0.5%酢酸アンモニウム水溶液:アセトニトリ
ル(19:10) 流速:1.0ml/分 波長:254nm 保持時間:7−フェニルアセチルアミノ−デアセチル−
セファロスポラン酸;6.7分、デアセチル−7−AC
A;2分
た。 カラム:Cosmosil Packed Colum
e 4.6mm×150mm(Nacarai社製) 溶媒;0.5%酢酸アンモニウム水溶液:アセトニトリ
ル(19:10) 流速:1.0ml/分 波長:254nm 保持時間:7−フェニルアセチルアミノ−デアセチル−
セファロスポラン酸;6.7分、デアセチル−7−AC
A;2分
【0035】
【実施例1】7−ACA20mモルとクロロ酢酸メチル
60mモルを蒸留水100mlに入れ、アンモニア水で
pHを7.5に調整した後、参考例で得たペニシリンG
アシラーゼ溶液5mlを添加し、反応中pHが7.5に
保持するようアンモニア水を添加しながら、25℃で1
80分間反応させた。反応終了液をHPLCで定量した
ところ、18.8mモルの7−クロロアセチルアミノセ
ファロスポラン酸が生成した。
60mモルを蒸留水100mlに入れ、アンモニア水で
pHを7.5に調整した後、参考例で得たペニシリンG
アシラーゼ溶液5mlを添加し、反応中pHが7.5に
保持するようアンモニア水を添加しながら、25℃で1
80分間反応させた。反応終了液をHPLCで定量した
ところ、18.8mモルの7−クロロアセチルアミノセ
ファロスポラン酸が生成した。
【0036】反応終了液に酢酸エチル200mlを添加
し、水溶液のpHを濃塩酸で2.0に調整した後、目的
物を溶媒抽出した。抽出液を飽和食塩水100mlで洗
浄した後、減圧濃縮した。得られた粉末を乾燥して7−
クロロアセチルアミノセファロスポラン酸3.0gを得
た。化合物の同定は、標品のクロマトグラフィーデータ
およびNMR、IRおよびUV等のスペクトルデータと
比較して行った。
し、水溶液のpHを濃塩酸で2.0に調整した後、目的
物を溶媒抽出した。抽出液を飽和食塩水100mlで洗
浄した後、減圧濃縮した。得られた粉末を乾燥して7−
クロロアセチルアミノセファロスポラン酸3.0gを得
た。化合物の同定は、標品のクロマトグラフィーデータ
およびNMR、IRおよびUV等のスペクトルデータと
比較して行った。
【0037】上記のHPLC分析は次の条件により行っ
た。 カラム:Cosmosil Packed Colum
e 4.6mm×150mm(Nacarai社製) 溶媒;0.5%酢酸アンモニウム水溶液:アセトニトリ
ル(96:9) 流速:1.0ml/分 波長:254nm 保持時間:7−クロロアセチルアミノ−デアセチル−セ
ファロスポラン酸;5.0分、デアセチル−7−AC
A;1.8分
た。 カラム:Cosmosil Packed Colum
e 4.6mm×150mm(Nacarai社製) 溶媒;0.5%酢酸アンモニウム水溶液:アセトニトリ
ル(96:9) 流速:1.0ml/分 波長:254nm 保持時間:7−クロロアセチルアミノ−デアセチル−セ
ファロスポラン酸;5.0分、デアセチル−7−AC
A;1.8分
【0038】
【実施例2】7−ACA20mモルとクロロ酢酸メチル
60mモルを蒸留水100mlに入れ、アンモニア水で
pHを7.5に調整した後、市販のペニシリンアミダー
ゼ(Penicillin amidase immo
bilized on Eupergit C fro
m E.coli、Fluka社製)12gを添加し、
反応中pHが7.5に保持するようアンモニア水を添加
しながら、25℃で180分間反応させた。反応終了液
をHPLCで定量したところ、18.8mモルの7−ク
ロロアセチルアミノセファロスポラン酸が生成した。
60mモルを蒸留水100mlに入れ、アンモニア水で
pHを7.5に調整した後、市販のペニシリンアミダー
ゼ(Penicillin amidase immo
bilized on Eupergit C fro
m E.coli、Fluka社製)12gを添加し、
反応中pHが7.5に保持するようアンモニア水を添加
しながら、25℃で180分間反応させた。反応終了液
をHPLCで定量したところ、18.8mモルの7−ク
ロロアセチルアミノセファロスポラン酸が生成した。
【0039】反応終了液に酢酸エチル200mlを添加
し、水溶液のpHを濃塩酸で2.0に調整した後、目的
物を溶媒抽出した。抽出液を飽和食塩水100mlで洗
浄した後、減圧濃縮した。得られた粉末を乾燥して7−
クロロアセチルアミノセファロスポラン酸3.0gを得
た。化合物の同定は、標品のクロマトグラフィーデータ
およびNMR、IRおよびUV等のスペクトルデータと
比較して行った。
し、水溶液のpHを濃塩酸で2.0に調整した後、目的
物を溶媒抽出した。抽出液を飽和食塩水100mlで洗
浄した後、減圧濃縮した。得られた粉末を乾燥して7−
クロロアセチルアミノセファロスポラン酸3.0gを得
た。化合物の同定は、標品のクロマトグラフィーデータ
およびNMR、IRおよびUV等のスペクトルデータと
比較して行った。
【0040】
【実施例3】デアセチル7−ACA20mモルとクロロ
酢酸メチル60mモルを蒸留水100mlに入れ、アン
モニア水でpHを7.5に調整した後、参考例で得たペ
ニシリンGアシラーゼ溶液5mlを添加し、反応中pH
が7.5に保持するようアンモニア水を添加しながら、
25℃で180分間反応させた。反応終了液をHPLC
で定量したところ、18.8mモルの7−クロロアセチ
ルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸が生成し
た。上記のHPLC分析条件は実施例1に記載の条件と
同一の条件で行った。
酢酸メチル60mモルを蒸留水100mlに入れ、アン
モニア水でpHを7.5に調整した後、参考例で得たペ
ニシリンGアシラーゼ溶液5mlを添加し、反応中pH
が7.5に保持するようアンモニア水を添加しながら、
25℃で180分間反応させた。反応終了液をHPLC
で定量したところ、18.8mモルの7−クロロアセチ
ルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸が生成し
た。上記のHPLC分析条件は実施例1に記載の条件と
同一の条件で行った。
【0041】
【実施例4】参考例で得たペニシリンGアシラーゼ溶液
をデアセチル−7−ACA20mモル濃度とクロロ酢酸
メチル60mモル濃度を含むpH6.0〜8.5のリン
酸緩衝液中で20分間反応させ、合成活性を求めた。
(活性1単位(U)は1分間に1μモルの7−クロロア
セチルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸を生成
する能力を示す)
をデアセチル−7−ACA20mモル濃度とクロロ酢酸
メチル60mモル濃度を含むpH6.0〜8.5のリン
酸緩衝液中で20分間反応させ、合成活性を求めた。
(活性1単位(U)は1分間に1μモルの7−クロロア
セチルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸を生成
する能力を示す)
【0042】一方、同酵素液を7−クロロアセチルアミ
ノ−デアセチル−セファロスポラン酸20mモル濃度を
含むpH6.0〜8.5のリン酸緩衝液中で25℃で2
0分間反応させ、加水分解活性を求めた。(活性1単位
(U)は1分間に1μモルのデアセチル7−ACAを生
成する能力を示す)
ノ−デアセチル−セファロスポラン酸20mモル濃度を
含むpH6.0〜8.5のリン酸緩衝液中で25℃で2
0分間反応させ、加水分解活性を求めた。(活性1単位
(U)は1分間に1μモルのデアセチル7−ACAを生
成する能力を示す)
【0043】この結果を表1に示す。
【表1】
【0044】上記の結果から、参考例で得たペニシリン
Gアシラーゼ溶液によるデアセチル−7−ACAから7
−クロロアセチルアミノ−デアセチル−セファロスポラ
ン酸への合成活性は分解活性に比べ20倍以上と高く、
実質的に分解されないことが分かる。
Gアシラーゼ溶液によるデアセチル−7−ACAから7
−クロロアセチルアミノ−デアセチル−セファロスポラ
ン酸への合成活性は分解活性に比べ20倍以上と高く、
実質的に分解されないことが分かる。
【0045】
【比較例】参考例で得た酵素液および市販のペニシリン
アミダーゼをデアセチル−7−ACA20mモル濃度お
よびクロロ酢酸メチル、フェニル酢酸メチルまたはD−
フェニルグリシンメチルエステル60mモル濃度を含む
pH6.5または7.5のリン酸緩衝液中で25℃で2
0分間反応させ、合成活性を求めた。(活性1単位
(U)は1分間に1μモルの7−クロロアセチルアミノ
−デアセチル−セファロスポラン酸、7−フェニルアセ
チルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸または7
−D−フェニルグリシルアミノ−デアセチル−セファロ
スポラン酸を生成する能力を有する)
アミダーゼをデアセチル−7−ACA20mモル濃度お
よびクロロ酢酸メチル、フェニル酢酸メチルまたはD−
フェニルグリシンメチルエステル60mモル濃度を含む
pH6.5または7.5のリン酸緩衝液中で25℃で2
0分間反応させ、合成活性を求めた。(活性1単位
(U)は1分間に1μモルの7−クロロアセチルアミノ
−デアセチル−セファロスポラン酸、7−フェニルアセ
チルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸または7
−D−フェニルグリシルアミノ−デアセチル−セファロ
スポラン酸を生成する能力を有する)
【0046】一方、同酵素液を7−クロロアセチルアミ
ノ−デアセチル−セファロスポラン酸、7−フェニルア
セチルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸または
7−D−フェニルグリシルアミノ−デアセチル−セファ
ロスポラン酸20mモル濃度を含むpH6.5または
7.5のリン酸緩衝液中で25℃で20分間反応させ、
加水分解活性を求めた。(活性1単位(U)は1分間に
1μモルの各基質を加水分解する能力を示す)
ノ−デアセチル−セファロスポラン酸、7−フェニルア
セチルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸または
7−D−フェニルグリシルアミノ−デアセチル−セファ
ロスポラン酸20mモル濃度を含むpH6.5または
7.5のリン酸緩衝液中で25℃で20分間反応させ、
加水分解活性を求めた。(活性1単位(U)は1分間に
1μモルの各基質を加水分解する能力を示す)
【0047】この結果を表2に示す。
【表2】
【0048】上記の結果から、7位のアミノ基にフェニ
ルアセチルまたはD−フェニルグリシルの置換基が導入
されたデアセチル−セファロスポラン酸は、ペニシリン
Gアシラーゼによる合成活性と分解活性が同等であるの
に対し、本発明のクロロアセチル基が導入された置換基
に対しては、分解活性が非常に低く、非常に効率よくク
ロロアセチル基は導入されていることが分かる。
ルアセチルまたはD−フェニルグリシルの置換基が導入
されたデアセチル−セファロスポラン酸は、ペニシリン
Gアシラーゼによる合成活性と分解活性が同等であるの
に対し、本発明のクロロアセチル基が導入された置換基
に対しては、分解活性が非常に低く、非常に効率よくク
ロロアセチル基は導入されていることが分かる。
【0049】
【実施例5】デアセチル7−ACA35mモルとクロロ
酢酸メチル100mモルを蒸留水100mlに入れ、ア
ンモニア水を添加してpHを6.5または7.5に調整
した後、参考例で得たペニシリンGアシラーゼ溶液8.
1mlを添加し、反応中pHが6.5または7.5に保
持するようアンモニア水を添加しながら、25℃でpH
が6.5または7.5に保持するようにアンモニア水を
添加しながら、180分間反応させた。反応終了液をH
PLCにて定量した結果、pH6.5では32.3mモ
ル、pH7.5では33.3mモルの7−クロロアセチ
ルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸が生成し
た。従って、上記の酵素反応条件が弱酸性、弱アルカリ
性のいずれの場合も良好な収率で得られることが分か
る。
酢酸メチル100mモルを蒸留水100mlに入れ、ア
ンモニア水を添加してpHを6.5または7.5に調整
した後、参考例で得たペニシリンGアシラーゼ溶液8.
1mlを添加し、反応中pHが6.5または7.5に保
持するようアンモニア水を添加しながら、25℃でpH
が6.5または7.5に保持するようにアンモニア水を
添加しながら、180分間反応させた。反応終了液をH
PLCにて定量した結果、pH6.5では32.3mモ
ル、pH7.5では33.3mモルの7−クロロアセチ
ルアミノ−デアセチル−セファロスポラン酸が生成し
た。従って、上記の酵素反応条件が弱酸性、弱アルカリ
性のいずれの場合も良好な収率で得られることが分か
る。
【0050】
【比較例】デアセチル7−ACA35mモルとフェニル
酢酸メチル100mモルを蒸留水100ml中に入れ、
アンモニア水を添加して、pHを6.5または7.5に
調整し、参考例で得たペニシリンGアシラーゼ溶液8.
1mlを添加し、25℃でpHが6.5または7.5に
保持するようにアンモニア水を添加しながら180分間
反応を行った。反応終了液をHPLCにて定量した結
果、pH6.5では26.3mモル、pH7.5では1
9.3mモルの7−フェニルアセチルアミノ−デアセチ
ル−セファロスポラン酸が生成した。従って、デアセチ
ル−7−ACAにフェニルアセチル基を導入する場合、
弱アルカリ性では収率が低下することが分かる。
酢酸メチル100mモルを蒸留水100ml中に入れ、
アンモニア水を添加して、pHを6.5または7.5に
調整し、参考例で得たペニシリンGアシラーゼ溶液8.
1mlを添加し、25℃でpHが6.5または7.5に
保持するようにアンモニア水を添加しながら180分間
反応を行った。反応終了液をHPLCにて定量した結
果、pH6.5では26.3mモル、pH7.5では1
9.3mモルの7−フェニルアセチルアミノ−デアセチ
ル−セファロスポラン酸が生成した。従って、デアセチ
ル−7−ACAにフェニルアセチル基を導入する場合、
弱アルカリ性では収率が低下することが分かる。
【0051】
【実施例6】7−フェニルアセチルアミノ−デアセトキ
シ−セファロスポラン酸5mモルとクロロ酢酸メチル1
5mモルを蒸留水100mlに入れ、アンモニア水を添
加してpHを7.5に調整し、参考例で得たペニシリン
Gアシラーゼ溶液1.25mlを添加し、25℃でpH
が7.5に保持するようにアンモニア水を添加しなが
ら、180分間反応させた。反応終了液をHPLCで定
量したところ、4.48mモルの7−クロロアセチルア
ミノ−デアセトキシ−セファロスポラン酸が生成した。
上記のHPLC分析条件は実施例1に記載の条件と同一
の条件で行った。
シ−セファロスポラン酸5mモルとクロロ酢酸メチル1
5mモルを蒸留水100mlに入れ、アンモニア水を添
加してpHを7.5に調整し、参考例で得たペニシリン
Gアシラーゼ溶液1.25mlを添加し、25℃でpH
が7.5に保持するようにアンモニア水を添加しなが
ら、180分間反応させた。反応終了液をHPLCで定
量したところ、4.48mモルの7−クロロアセチルア
ミノ−デアセトキシ−セファロスポラン酸が生成した。
上記のHPLC分析条件は実施例1に記載の条件と同一
の条件で行った。
Claims (2)
- 【請求項1】 一般式(2) 【化1】 (式中、Aは水素原子またはフェニルアセチル基、Rは
水素原子、水酸基、アセトキシ基またはハロゲン原子を
示す)で表されるセファロスポラン酸誘導体とクロロ酢
酸低級アルキルエステルを水性媒体中前記一般式(2)
で表されるセファロスポラン酸誘導体とクロロ酢酸低級
アルキルエステルとから一般式(1) 【化2】 (式中、Rは前記と同じ意味を有する)で表される7−
クロロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘導体に変
換する能力を有するアシラーゼまたはその含有物の存在
下反応させることを特徴とする前記一般式(1)で表さ
れる7−クロロアセチルアミノ−セファロスポラン酸誘
導体の製造法。 - 【請求項2】 アシラーゼまたはその含有物がバチルス
属またはエッシェリヒア属に属する該アシラーゼ生産菌
由来のアシラーゼまたはその含有物である請求項1記載
の製造法
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14294994A JPH08284A (ja) | 1994-06-24 | 1994-06-24 | セファロスポラン酸誘導体の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14294994A JPH08284A (ja) | 1994-06-24 | 1994-06-24 | セファロスポラン酸誘導体の製造法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH08284A true JPH08284A (ja) | 1996-01-09 |
Family
ID=15327401
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14294994A Withdrawn JPH08284A (ja) | 1994-06-24 | 1994-06-24 | セファロスポラン酸誘導体の製造法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH08284A (ja) |
-
1994
- 1994-06-24 JP JP14294994A patent/JPH08284A/ja not_active Withdrawn
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A300 | Withdrawal of application because of no request for examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A300 Effective date: 20010904 |