JPH09238676A - ビブリオ エスピー smy−2株 - Google Patents

ビブリオ エスピー smy−2株

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JPH09238676A
JPH09238676A JP8051574A JP5157496A JPH09238676A JP H09238676 A JPH09238676 A JP H09238676A JP 8051574 A JP8051574 A JP 8051574A JP 5157496 A JP5157496 A JP 5157496A JP H09238676 A JPH09238676 A JP H09238676A
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JP
Japan
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vibrio
alp
strain
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activity
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Application number
JP8051574A
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English (en)
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Hitomi Obara
仁実 小原
Masahito Yahata
雅人 矢幡
Kazuyuki Uchida
和之 内田
Kazue Kawahara
一恵 川原
Takuma Yano
拓磨 矢野
Ken Iwata
建 岩田
Hitoshi Kondo
仁司 近藤
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Shimadzu Corp
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Shimadzu Corp
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Abstract

(57)【要約】 【課題】 本発明は、比活性の高いアルカリフォスファ
ターゼ産生能を有する微生物を提供することを目的とす
る。 【解決手段】 本発明は、ビブリオ(Vibrio)属に属
し、アルカリフォスファターゼ(EC.3.1.3.
1)産生能を有するビブリオ エスピー(Vibrio sp.)
SMY−2株(FERM P−15017)を提供す
る。本発明のビブリオエスピー SMY−2株の生育は
図1に示すように、培養開始から約8時間後に最大に達
し、また、菌体内のAlP活性は、培養開始から約5時
間後から急激に上昇し、約8時間後に最大に達し、培養
を終了した約15時間後まで、その活性は変化しなかっ
た。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、比活性の高いアル
カリフォスファターゼ(EC.3.1.3.1)(以
下、AlPと略記する)を産生する新規な微生物に関す
るものである。
【0002】
【従来の技術】近年、酵素は、その反応の安定性や基質
の特異性が着目され、光学的定量化の容易性から、医療
分野や食品分野などで各種成分の分析などに広く利用さ
れている。なかでもAlPは、酵素免疫測定法における
標識酵素として種々の診断に広く用いられている。Al
Pを標識酵素として用いる場合、分析対象となる物質の
抗原、抗体、又は目的の分析対象物質に特異的に結合す
る物質にAlPを結合させ、これを検査試料に添加して
分析対象物質と結合させることで新たに生じた結合体を
分別し、この結合体のAlP活性を測定することによ
り、分析対象物質を定量することができる。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】この様な分析では、分
析対象物質が、検査試料中に微量にしか存在しない場合
が多く、このため測定感度に優れた分析条件が望まれ
る。AlPによる標識は、AlPと上述の物質との分子
間での結合によるため、高い測定感度を得るためには、
AlP分子が高い活性を示すことが必要である。そのた
めには、標識酵素であるAlPが高い比活性を有するこ
とが望ましい。
【0004】従来、AlPは、主として大腸菌あるいは
仔ウシ小腸から生産されており、その供給源が限られて
いた。しかし、大腸菌由来のAlPは比活性が低いた
め、標識酵素としては、主に、仔ウシ小腸由来のAlP
が用いられている。しかし、仔ウシ小腸由来AlPは、
臓器からの破砕抽出の際、プロテアーゼや、有機溶剤を
用いる等、煩雑な操作を経た後、数種のカラムを用いて
精製しなければならなかった。
【0005】このような理由から、高い比活性を示すA
lPを効率よく得るための手段が強く要望されていた。
本発明は、高い比活性を示すAlPを産生する新規な微
生物を提供することを目的とするものである。
【0006】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記の課
題を解決するために、自然界の微生物を対象に広くスク
リーニングした結果、高い比活性を示すAlPを産生す
るビブリオ属に属する微生物を見出し、本発明を完成す
るに至った。
【0007】すなわち、本発明は、ビブリオ(Vibrio)
属に属し、AlP産生能を有することを特徴とするビブ
リオ エスピー(Vibrio sp.)SMY−2株(FERM
P−15017)を要旨とするものである。
【0008】
【発明の実施の形態】以下、本発明を詳細に説明する。
【0009】まず、本発明の菌株であるビブリオ エス
ピー(Vibrio sp.)SMY−2株と、その類縁と考えら
れる既存のビブリオ属菌であるビブリオ スプレンディ
ダス(Vibrio splendidus biovar 1及びbiovar 2)及び
ビブリオ ツビアシ(Vibriotubiashii)の菌学的性質
について説明する。なお、dは菌株によって異なること
を、NDは記載がないことを、FAは通性嫌気性を示す。
【0010】 Vibrio sp. Vibrio splendidus Vibrio SMY-2 biovar 1 biovar 2 tubiashii (1)形態的特徴 (a)細胞の形 桿菌 桿菌 桿菌 桿菌 (b)運動性 有 有 有 有 (c)鞭毛 単極毛 極毛 極毛 極毛 (d)胞子形成能 無 無 無 無 (e)グラム染色性 陰性 陰性 陰性 陰性 (2)生育状態 (a)ZoBell 2216b 円形を示し ND ND ND 寒天平板培養 表面は平滑 (b)ゼラチンの液化 有 有 有 有 (3)生理学的性質 (a)硝酸塩の還元 無 有 有 有 (b)VPテスト 陰性 陰性 陰性 陰性 (c)オキシダーゼ活性 陽性 陽性 陽性 陽性 (d)カタラーゼ活性 陽性 陽性 陽性 陽性 (e)色素の生成 無 無 無 無 (f)発光性 無 有 無 無 (g)デンプンの 有 有 有 有 加水分解 (h)アルギニンの 有 無 無 d 加水分解 (i)塩類要求性 0%NaCl下での生育 無 ND ND ND 2%NaCl下での生育 有 ND ND ND (j)生育の範囲 4℃での生育 無 d 無 無 35℃での生育 有 d 無 d (k)酸素に対する挙動 FA FA FA FA (l)OFテスト F F F F (m)PHBの蓄積 無 無 無 ND (n)PHBの利用能 無 無 無 d (o)リパーゼ活性 陽性 陽性 陽性 陽性 (p)マンニトール 無 有 有 有 資化性 (q)各種炭素源から の酸の生成 D−グルコース 有 有 有 ND セロビオース 無 有 d 有 D−ガラクトース 無 有 無 有 グルコン酸 無 d 無 有 L−グルタミン酸 有 有 d ND グリシン 有 有 d 有 プトレスシン 無 無 無 d シュークロース 有 d 無 有 トレハロース 有 有 有 有 (r)グルコースから 無 無 無 無 のガスの産生 (3)DNAのGC含量 45 45〜46 45〜46 43〜45 (モル%) 以上に示したビブリオ エスピー(Vibrio sp.)SMY
−2株についての菌学的性質から、バージィのマニュア
ル・オブ・システマティック・バクテリオロジー(Barg
ey’s Mannual of Systematic Bacteriology) 第1巻
(1984年)、バージィのマニュアル・オブ・ディタ
ーミネイティブ・バクテリオロジィー(Bargey’s Mann
ual of Determinative Bacteriology ) 第9版(19
94年)、インターナショナル・ジャーナル・オブ・シ
ステマティック・バクテリオロジー(International Jo
urnal of Systematic Bacteriology) 第34巻、1〜
4頁(1984年)に記載されている各種細菌の性状か
ら検討した結果、本菌株はビブリオ(Vibrio)属に属す
る細菌と判明した。
【0011】また、本菌株は、上述した文献に記載され
ているビブリオ属細菌のうち、ビブリオ スプレンディ
ダス(Vibrio splendidus biovar 1及びbiovar 2)及び
ビブリオ ツビアシ(Vibrio tubiashii)とよく似た性
状を示したが、本菌株が硝酸塩の還元能及びマンニトー
ルの資化性能が無いのに対し、ビブリオ スプレンディ
ダス(Vibrio splendidus biovar 1及びbiovar 2)及び
ビブリオ ツビアシ(Vibrio tubiashii)は、共にその
能力を有することから、本菌株はこれらの種とは異なる
ものであると判断された。よって、本菌株は、新菌株と
判断できるので、ビブリオ エスピー(Vibrio sp.)S
MY−2株と命名し、平成7年6月29日付で通産省工
業技術院生命工学工業技術研究所に寄託した。その寄託
番号はFERM P−15017である。
【0012】本発明の菌株を培養する際の栄養培地に添
加する窒素源としては、硫酸アンモニウム、塩化アンモ
ニウム、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、カザミノ酸
などの無機物又は有機物が使用できる。また、炭素源と
しては、グルコース、シュークロース、デンプンなどが
使用できる。さらに、無機塩類としては、カリウム、ナ
トリウム、鉄、マグネシウム、マンガンなどの各塩類、
ビタミン類などを使用してもよい。
【0013】培養条件としては、好気的あるいは微好気
的条件で行われ、培養温度としては、10〜35℃で行
われ、好ましくは20〜30℃、最適には25〜30℃
下で行われる。培地のpHとしては、6.0〜9.5、
好ましくは7.0〜9.0、最適には7.4〜8.6で
ある。このような条件下で3〜40時間、好ましくは4
〜20時間、最適には5〜15時間培養することによ
り、AlP産生能を有する菌体を得ることができる。
【0014】このようにして得られた菌株からAlPを
単離・精製する方法としては、例えば、培養終了後、遠
心分離や濾過などの操作で培養液から菌体を回収し、菌
体から粗酵素液を抽出し、精製すればよい。抽出法とし
ては、超音波破砕、圧破砕、界面活性剤処理、リゾチー
ム処理などいずれを用いてもよく、こうした処理後、遠
心分離により細胞片を除去し、粗酵素液を得る。粗酵素
液については、イオン交換クロマトグラフィー、アフィ
ニティークロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィ
ー、ゲル濾過クロマトグラフィー等のクロマトグラフィ
ーを組み合わせることにより、目的とするAlPを単離
・精製することができる。イオン交換樹脂としては、Q
AE−トヨパール550C(東ソー社製)、DEAE−
セファロースFF(ファルマシア社製)など、アフィニ
ティークロマト用樹脂としては、レッドセファロースC
L−6B、ブルーセファロースCL−6Bカラム(以
上、ファルマシア社製)など、疎水クロマト用樹脂とし
ては、オクチル−セファロースCL−4Bカラム(ファ
ルマシア社製)、フェニルセファロース6FF(ファル
マシア社製)など、ゲル濾過用担体又は樹脂としては、
セファデックスG−100、ウルトロゲルACA34な
どが挙げられる。また、これらのカラムクロマトグラフ
ィーに加え、硫酸ストレプトマイシンや硫酸プロタミン
処理による除核酸、硫酸アンモニウム処理によるタンパ
ク質の塩析を行ってもよい。
【0015】なお、活性の測定は10mMのp−ニトロ
フェニルリン酸ナトリウム(以下、PNPPと略記す
る。:ナカライテスクより購入、コードNo.250−
19GR)、1.0mMの塩化マグネシウム6水和物
(和光純薬より購入、コードNo.135−0016
5)を含む1Mのジエタノールアミン(以下、DEAと
略記する。:和光純薬より購入、コードNo.093−
03115)緩衝液(pH10.0)に酵素溶液を加
え、緩やかに混和した後、405nmにおける吸光度変
化により測定した。なお、測定は、37℃で行い、1分
間に1マイクロモルのp−ニトロフェノールを生成させ
る酵素量を1単位(U)とした。
【0016】
【実施例】次に、本発明を実施例によって具体的に説明
する。
【0017】[実施例1]酵母エキス0.1%(重量%
を表す。以下同様)(オリエンタル酵母工業、コードN
o.41207000)、カザミノ酸(日本製薬、カザ
ミノ酸「ダイゴ」、コードNo.398−00657)
0.5%、クエン酸鉄 (III)n水和物(和光純薬、コー
ドNo.097−02415)0.01%、塩化ナトリ
ウム(和光純薬、コードNo.194−01677)
2.0%、塩化マグネシウム・6水和物(和光純薬、コ
ードNo.135−00165)0.88%、硫酸ナト
リウム・10水和物(和光純薬、コードNo.193−
03325)0.32%、塩化カルシウム・6水和物
(ナカライテスク、コードNo.067−32EP)
0.18%、塩化カリウム(ナカライテスク、コードN
o.285−13EP)0.055%、炭酸ナトリウム
(和光純薬、コードNo.196−01595)0.0
16%、硫酸鉄(II)・7水和物(ナカライテスク、コ
ードNo.195−31EP)0.001%、臭化カリ
ウム(ナカライテスク、コードNo.285−02E
P)0.008%、塩化ストロンチウム・6水和物(ナ
カライテスク、コードNo.325−08EP)0.0
034%、ホウ酸(和光純薬、コードNo.021−0
2195)0.022%、ケイ酸ナトリウム(和光純
薬、コードNo.190−03215)0.0004
%、フッ化ナトリウム(和光純薬、コードNo.196
−01975)0.0024%、硝酸ナトリウム(和光
純薬、コードNo.192−02555)0.0001
6%、リン酸2ナトリウム・12水和物(ナカライテス
ク、コードNo.317−22EP)0.0008%、
pH7.6よりなる培地20リットルを30リットル容
のジャーファーメンターに仕込み、121℃で15分間
オートクレーブ滅菌した後、ビブリオ エスピー(Vibr
io sp.)SMY−2株(FERM P−15017)を
接種し、28℃で15時間、0.5vvm 、300rpm
で通気・攪拌しながら培養した。この際、経時的に菌の
生育及び菌体内のAlP活性を調べた。
【0018】菌の生育は、培養液の濁度(OD660)
を測定することにより調べた。また、菌体内のAlP活
性は、以下の手順で測定した。すなわち、培養液1ml
を遠心分離し、沈殿した菌体を、20mMのリン酸緩衝
液(pH7.5)1mlに懸濁し、200Wで10分間
超音波処理することにより細胞を破砕した。破砕後、遠
心分離により細胞片を除去し、得られた上清中のAlP
活性を測定した。
【0019】その結果を図1に示す。図1は、本発明の
ビブリオ エスピー SMY−2株を培養したときの、
菌の生育及び菌体内のAlP活性の経時変化を示す図で
あり、縦軸に菌の生育及び培養液1ml中の菌体のAl
P活性を、横軸に培養時間を示している。
【0020】図1からわかるように、培養開始から約8
時間後に菌の生育は最大に達し、また、菌体内のAlP
活性は、培養開始から約5時間後から急激に上昇し、約
8時間後に最大に達し、培養を終了した約15時間後ま
で、その活性は変化しなかった。
【0021】培養終了後、遠心分離により菌体を採取し
て約70gの菌体を得た。菌体中のAlP含量を測定し
たところ、約260万U/kg湿菌体の値を示した。得
られた菌体を凍結状態で保存した。
【0022】[参考例1]実施例1で得た凍結菌体約5
0gを20mMのリン酸緩衝液(pH7.5)0.4リ
ットルに懸濁し、200Wで10分間超音波処理するこ
とにより細胞を破砕した。破砕後、遠心分離により細胞
片を除去し、AlPを含む粗酵素液を得た。 この粗酵
素液を、予め20mMのリン酸緩衝液(pH7.5)で
平衡化したDEAE−セファロースFF(ファルマシ
ア、コードNo.17−0709−01)カラム(カラ
ムサイズ、内径3.2cm、高さ12cm)に通じ、
0.5MのNaClを含む20mMのリン酸緩衝液(p
H7.5)で溶出したところ、NaCl濃度0.2〜
0.3M近くに活性が溶出した。
【0023】この溶出画分を、予め20mMのリン酸緩
衝液(pH7.5)で平衡化したQAE−トヨパール5
50C(東ソー社製、コードNo.014026)カラ
ム(カラムサイズ、内径3.2cm、高さ5cm)に通
じ、NaCl濃度を徐々に上げて溶出させたところ、N
aCl濃度0.6〜0.8Mの近くに活性画分が溶出し
た。この溶出画分に、硫酸アンモニウム(和光純薬、コ
ードNo.019−06735)を1.0Mになるよう
に加え、予め1Mの硫酸アンモニウムを含む20mMリ
ン酸緩衝液(pH7.5)で平衡化されたフェニルセフ
ァロース6FF(ファルマシア社製、コードNo.17
−0973−05)カラム(カラムサイズ、内径1.6
cm、高さ5cm)に通じ、同緩衝液の硫酸アンモニウ
ム濃度を徐々に下げて溶出したところ、硫酸アンモニウ
ム濃度0.3〜0.2Mの近くに活性画分が溶出した。
【0024】この活性画分を集めて脱塩後、20mMリ
ン酸緩衝液(pH7.5)で平衡化したレッドセファロ
ースCL−6B(ファルマシア社製、コードNo.17
−0961−02)カラム(カラムサイズ、内径1.6
cm、高さ5cm)に通じ、NaCl濃度を徐々に上げ
て溶出したところ、NaCl濃度0.6〜0.8M付近
に活性画分が溶出した。このようにして得られたAlP
は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動において単一なバ
ンドとして検出され、精製酵素標品を得ることができ
た。また、活性の収率は約15%で、酵素1mg当たり
約8,300Uの比活性を示した。得られたAlPは以
下の理化学的性質を示していた。
【0025】(1)作用及び基質特異性:アルカリ性で
リン酸モノエステルを加水分解する。リン酸モノエステ
ルがp−ニトロフェニルリン酸の場合の反応のミカエリ
ス定数は約1mMである〔1MのDEA緩衝液(pH1
0.0)中で37℃で測定〕。
【0026】(2)至適pH:10.5付近(温度37
℃) (3)安定pH:7〜8 (4)作用適温の範囲:30℃から45℃までの範囲
(ジエタノールアミン緩衝液pH10.0) (5)分子量:約9万(ウルトゲルACA34ゲル濾過
クロマトグラフィー) [参考例2]参考例1で得たビブリオ エスピー(Vibr
io sp.)SMY−2株由来のAlP及び仔ウシ小腸由来
のAlP(ベーリンガーマンハイム社より購入、コード
No.567744)、大腸菌由来のAlP(シグマ社
より購入、コードNo.P−5931)の蛋白1mg当
たりの比活性を以下のようにして求めた。
【0027】すなわち、各AlP溶液を、蛋白濃度が
0.2〜0.3mg/mlとなるように調製し、この溶
液中のAlP活性を測定した。蛋白質の定量は、牛血清
アルブミン(ベーリンガーマンハイム、アルブミンフラ
クションV、コードNo.735094)を標準に、バ
イオ・ラッドラボラトリー社のプロテインアッセイ染色
液(コードNo.500−0006)を用いて行なっ
た。その結果を表1に示す。
【0028】
【表1】 表1の結果から明らかなように、ビブリオ エスピー
(Vibrio sp.)SMY−2株由来のAlPは、仔ウシ小
腸由来のAlPの約2.4倍、大腸菌由来のAlPの約
88倍の比活性を示した。
【0029】
【発明の効果】本発明の菌株は、比活性の高いAlP産
生能を有しているので、この菌株を培養することによ
り、容易に比活性の高いAlPを製造することができ
る。
【図面の簡単な説明】
【図1】本発明のビブリオ エスピー(Vibrio sp.)S
MY−2株を培養した際の、菌の生育及び菌体内のAl
P活性を経時的に示す図である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12R 1:63) (72)発明者 川原 一恵 京都府宇治市宇治小桜23番地 ユニチカ株 式会社中央研究所内 (72)発明者 矢野 拓磨 京都府宇治市宇治小桜23番地 ユニチカ株 式会社中央研究所内 (72)発明者 岩田 建 京都府宇治市宇治小桜23番地 ユニチカ株 式会社中央研究所内 (72)発明者 近藤 仁司 京都府宇治市宇治小桜23番地 ユニチカ株 式会社中央研究所内

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 ビブリオ(Vibrio)属に属し、アルカリ
    フォスファターゼ(EC.3.1.3.1)産生能を有
    することを特徴とするビブリオ エスピー(Vibrio s
    p.)SMY−2株(FERM P−15017)。
JP8051574A 1996-03-08 1996-03-08 ビブリオ エスピー smy−2株 Pending JPH09238676A (ja)

Priority Applications (1)

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JP8051574A JPH09238676A (ja) 1996-03-08 1996-03-08 ビブリオ エスピー smy−2株

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