JPH09503781A - アグルコンイソフラボン濃縮植物タンパク質抽出物及び単離物並びにその製造方法 - Google Patents

アグルコンイソフラボン濃縮植物タンパク質抽出物及び単離物並びにその製造方法

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JPH09503781A JP7511820A JP51182095A JPH09503781A JP H09503781 A JPH09503781 A JP H09503781A JP 7511820 A JP7511820 A JP 7511820A JP 51182095 A JP51182095 A JP 51182095A JP H09503781 A JPH09503781 A JP H09503781A
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Abstract

(57)【要約】 アグルコンイソフラボン濃縮植物タンパク質抽出物及び単離物並びにその製造及び回収方法が開示される。アグルコンイソフラボン抽出物は、グルコンイソフラボンを含む植物タンパク質原料を、タンパク質原料の等電点付近以上のpHを有する水性抽出剤で抽出し、グルコンイソフラボンを、アグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造する為に、十分な量のベータグルコシダーゼ酵素又はエステラーゼ酵素と、抽出物中の少なくとも大部分の該グルコンイソフラボンを、アグルコンイソフラボンへ転換するのに十分な時間、温度及びpHで反応させることによって造られる。アグルコンイソフラボン濃縮単離物は、反応抽出物のpHを植物タンパク質原料の等電点付近に調整してタンパク質原料を沈殿させ、タンパク質原料を分離してアグルコン濃縮単離物を製造する事により製造される。

Description

【発明の詳細な説明】 アグルコンイソフラボン濃縮植物タンパク質抽出物及び単離物並びにその製造 方法 発明の分野 本発明は、植物タンパク質原料から可溶性物質を抽出し、大部分のグルコンイ ソフラボンが、タンパク質単離物中に保留されるアグルコンイソフラボンに転換 される様な条件下で、1種以上のベータ−グルコシダーゼ酵素で処理する事によ る、アグルコンイソフラボンの濃縮された抽出物及び単離物の製造に関する。本 願は、米国特許出願番号第08/135,196(1993年10月12日出願)の一部継 続出願である。 発明の背景 イソフラボンは、大豆の様な植物タンパク質原料を含む種々のマメ科植物中に 存在する。これらの化合物としては、ダイジン(daidzin)、6″-OAcダイジン、 6″-OMal ダイジン、ダイザイン(daidzein)、ゲニスチン(genistin)、6″-OAc ゲニスチン、6″-OMal ゲニスチン、ゲニステイン(genistein)、グリシチン(gl ycitin)、6″-OAcグリシチン、6″-OMal グリシチン、グリシテイン(glycitei n)、ビオカニンA(biochanin A)、ホルムオノネチン(formononetin)及びクメス トロール(coumestrol)が挙げられる。一般に、これらの化合物は、大豆独特の苦 味と関係があり、工業製品、例えば単離物及び濃縮物の製造においては、これら の物質を除去する事が肝要であった。例えば、大豆フレークを水性アルカリ媒体 で抽出する大豆タンパク質単離物の従来の製造方法では、多くのイソフラボンが 抽出物中に溶解し、単離物を形成する為のタンパク質の酸沈殿の後に捨てられる ホエー中に溶解されて残る。酸沈殿されたタンパク質単離物中に残る残留イソフ ラボンは、単離物を徹底的に洗浄する事によって除去される。 大豆のような植物タンパク質中に含まれるイソフラボンは、人間の癌細胞、例 えば次の文献に開示されている様な乳癌細胞及び前立腺癌細胞の増殖を抑制する 可能性のある事が、最近確認された(“Genistein Inhibition of the Growth of Human Breast Cancer Cells,Independence from Estrogen Receptors and the Multi-Drug Resistance Gene”by Peterson and Barnes,Biochemical and Bio physical Research,Communications,Vol.179,No.1,pp.661-667,Aug 30, 1991;“Genistein and Biochanin A Inhibit the Growth of Human Prostate Ca ncer Cell but not Epidermal Growth Factor Receptor Tyrosine Autophosphor ylation”by Peterson and Barnes,The Prostate,Vol.22,pp.335-345(1993 );“Soybeans Inhibit Mammary Tumors in Models in Breast Cancer”by Barne s et al.,Mutagens and Carcinogens in the Diet,pp.239-253(1990)。 前述のイソフラボンの内の幾つかは、グルコース分子の結合したグルコシド又 はグルコンとして存在する。6″-OAcゲニスチンの様なグルコンの幾つかは、グ クコン分子それ自身の6つの位置に結合したアセテート基を含む。グルコシドを 含む全てのイソフラボンは、医学的評価の対象であるが、最も興味ある特定のイ ソフラボンは、グルコース分子が結合していないアグルコンである。これらのイ ソフラボンは、グルコン或いはイソフラボングルコシドの様な水溶性ではない。 この範疇に入る特定のイソフラボンは、ダイザイン、ゲニステイン及びグリシテ インである。これらのアグルコンは、次の一般式を有する。 ここで、R1、R2、R3及びR4は、H、OH及びOCH3から成る群から選ば れてもよい。それ故、本発明は、アグルコン及びそれらの物質を含む植物タンパ ク質単離物の濃縮物に関する。 グルコンイソフラボンをアグルコンイソフラボンへ転換する方法は、日本特許 出願第258,669号(Obata et al)に記載されている様に公知である。この方法は、 穏やかな範囲の転換のみを達成し、それ故望ましくなく、特に大規模工業生産に は望ましくない。更に、日本特許出願第258,669号(Obata et al)に記載されて いる方法は、タンパク質原料からのイソフラボンの除去を教示するが、アグルコ ンイソフラボン濃縮タンパク質抽出物又は単離物を如何に調製するかについては 開示していない。従って、少なくとも大部分の、そして好ましくは殆ど全てのグ ルコンイソフラボンをアグルコンイソフラボンへ転換し、アグルコンイソフラボ ン濃縮タンパク質抽出物及び単離物を製造する方法の必要性が存在する。 それ故、本発明の目的は、アグルコンイソフラボン濃縮抽出物及びタンパク質 単離物並びにその製造方法を提供する事である。この目的及びその他の目的は、 以下に示す本発明の詳細な説明で明らかとなる。 発明の要約 本発明は、アグルコンイソフラボン濃縮植物タンパク質抽出物及び単離物並び にその製造方法を提供する。この抽出物の製造方法は、植物タンパク質原料の等 電点付近以上のpHを有する水性抽出剤で、グルコンイソフラボンから成る植物タ ンパク質を抽出し、グルコンイソフラボンを、十分な量の1種以上のベーターグ ルコシダーゼ酵素と、抽出物中の少なくとも大部分のグルコンイソフラボンがア グルコンイソフラボンへ転換するのに十分な時間、温度及びpHで反応させ、そ れによってアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造する事を含む。又本発明は 、補足的なベータ−グルコシダーゼが、アグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製 造する為に、抽出物に添加される様な抽出物製造方法を提供する。更に、本発明 は、前述の抽出物のpHを、タンパク質原料を沈殿させる為にタンパク質原料の 等電点付近に調整する事によって、アグルコンイソフラボンを濃縮したタンパク 質単離物を製造する、アグルコン濃縮タンパク質単離物を得る方法を提供する。 次いで、得られるアグルコンイソフラボン濃縮単離物は分離されて、乾燥濃縮単 離物を形成する為に脱水される。更に、本発明は、イソフラボンを、高い割合で 、植物タンパク質原料から回収する方法を提供する。 好適な実施態様の詳細な説明 本発明は、大豆製品に関して開示し、そしてその方法は、大豆原料からのアグ ルコンイソフラボン濃縮抽出物及び単離物の製造に適うものであるが、本発明は 、イソフラボンを含む種々の植物タンパク質源からのタンパク質抽出物及び単離 物の製造に、一般的に適用できる。その様な植物タンパク質源の例としては、大 豆原料を含む植物タンパク質原料がある。ここで使用される「大豆原料」なる言 葉は、大豆又はあらゆる大豆誘導体を指すものである。 好適な実施態様の抽出物又は単離物に関する出発原料は、大豆フレークであり 、その油は、溶剤抽出で除去されている。フレークは、タンパク質原料の等電点 付近以上のpH、好ましくは約6.0〜約10.0、最も好ましくは約6.7〜約9.7のpH を有する水性抽出剤で抽出される。若し、水性抽出剤のpHを上げようとする場合 は、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム及び水酸化カルシウムの様な一般的なア ルカリ試薬を使用してもよい。望ましいイソフラボン化合物は、一般に、水性抽 出物に可溶である。又、タンパク質原料中の固有のイソフラボンを出来るだけ多 く溶解させる為に、抽出物に対する大豆フレークの重量比を特定の水準に調節す る事は、水性抽出物中のそれらの化合物の回収を最大限にする為に望ましい。 タンパク質及びイソフラボンの抽出は、フレークに対する水性抽出剤の重量比 が、約8:1〜約16:1で、フレークの向流抽出を含む種々の方法で行う事が出来、 初期抽出物は、フレークの抽出に使用され、タンパク質及びイソフラボンの水性 抽出物を用意する。別に、二段階抽出方法も使用出来、その場合、第一段階での フレークに対する抽出剤の重量比は、約10:1から成り、次いで新鮮な抽出剤での フレークの第二抽出は、フレークに対する抽出剤の重量比が、約6:1以下で行い 、両段階でのフレークに対する抽出剤の合わせた重量比が、フレークに対する抽 出剤の全重量比の約16:1を越えない様にする。 不溶性物質を除去後、溶解したイソフラボンを含む、得られた水性タンパク質 抽出物を、大部分の、そして好ましくは殆ど全ての、グルコース分子の結合した グルコン形イソフラボンを、アグルコンイソフラボンへ転換する為に、1種以上 のベータ−グルコシダーゼ酵素と反応させる。ベータ−グルコシダーゼ酵素の好 適なpH範囲は、使用される特定のベータ−グルコシダーゼ酵素によって変わる 。抽出物のpHは、一般に、特定の酵素が、酵素と反応する前に、最も活性であ るpH範囲の辺りに調整される。pHは、一般に、食用の酸、例えば酢酸、硫酸 、 燐酸、塩酸又はその他適当な試薬を添加して調整する。 ベータ−グルコシダーゼ酵素は、大豆原料中に当然に存在するもの又は、ここ では「残留」酵素と称する微生物の増殖からのものであってもよく、又はタンパ ク質抽出物に添加されたものであってもよい。添加される酵素は、ここでは、「 補足的酵素」と称する。一般に、大豆原料又は抽出物中の残留酵素の濃度が、大 部分の、そして好ましくは殆ど全ての、グルコン形イソフラボンを、アグルコン 形へ転換するのに不十分な時は、補足的酵素を添加しなければならない。イソフ ラボンの転換を行うのに十分な酵素の量は、存在する酵素の型、酵素濃度の分布 、系のpH、及び存在する系の活性によって変化する。残留酵素、補足的酵素又 はその両方で、酵素の濃度を十分なものとしたならば、溶解したイソフラボンを 伴うタンパク質抽出物を、抽出物中に含まれる少なくとも大部分の、そして好ま しくは殆ど全てのグルコンイソフラボンをアグルコン形へ転換するのに十分な時 間、温度及びpHで、ベータ−グルコシダーゼ酵素と反応させる。 好ましいベータ−グルコシダーゼ酵素としては、ビオペクチナーゼ100L及 び300L、ビオペクチナーゼOK70L、ラクターゼF及びラクトザイムが挙 げられる。ラクターゼFは、アマノ国際酵素会社(Amano International Enzyme Co.,P.P.Box 1000,Troy,VA 22974)で市販するもので、約4〜約6の好適な pH範囲を有し、ラクトザイムは、ノボ社(Novo Industries,Enzyme Division, Novo Alle,DK-2880 Bagsvaerd,Denmark)の市販品で、約7の好適なpH範囲を 有する。ビオペクチナーゼ100L、300L及び、ビオペクチナーゼOK70 Lは、クエストインターナショナル(Quest International,Sarasoda,Florida) から手に入れる事が出来る。補足的酵素は、少なくとも大部分の、そして好まし くは殆ど全てのグルコンイソフラボンをアグルコンへ転換するのに十分な量を添 加する。補足的酵素の添加が必要な場合には、添加される酵素の量は、乾燥基準 でタンパク質沈殿物の約0.5%〜5%である。 他の種類の適当な酵素には、エステラーゼ酵素がある。これらの酵素は、イソ フラボン複合体からアセテート及びマロネート基を除去する事によって、アセテ ート及びマロネート化合物を、グルコンイソフラボンへ転換するので、ここに開 示される好適な実施態様方法には十分適合するものと考える。最も好適な実施態 様では、両方の型の酵素、即ちベータ−グルコシダーゼとエステラーゼ酵素が利 用される。 好適な実施態様の方法としては、1段階方法が好ましく、短時間で、容易且つ 経済的に、イソフラボンの非常に高い程度の転換を達成する。ここで使用される 「1段階」反応方法なる言葉は、或る種の反応パラメーター値が、一般に、その 反応の工程にわたって維持される反応方法を意味するものである。 非常に高い程度の転換とは、大豆原料抽出物中に存在するグルコン形の少なく とも大部分の、そして好ましくは殆ど全てのグルコンイソフラボンが、アグルコ ン形へ転換される事である。「大部分」なる言葉は、グルコンイソフラボンが、 少なくとも約50%のアグルコンイソフラボンへ転換する範囲を意味するもので ある。「殆ど全て」なる言葉は、グルコンイソフラボンが、少なくとも約80% 、最も好ましくは少なくとも約90%のアグルコンイソフラボンへ転換する範囲 を意味するものである。 特定の理論に拘泥する積りはないが、ここに述べられる方法の驚くべき、そし て予期せぬ高い程度の転換は、1段階反応方法中で利用されるプロセスパラメー ターの組み合わせの結果であると考える。反応系のpHは、約4〜約8、そして 最も好ましくは、1段階反応方法中でのイソフラボン複合体との反応前で酵素が 最も活性である値に維持されるか、それに近い値である事が好ましい。反応系の 温度は、約40℃〜約60℃、そして最も好ましくは、1段階反応方法中で、約 60℃の温度に維持されるか、それに近い値である事が好ましい。一般に、ここ で開示される1段階方法を介しての、アグルコンへの殆ど全てのグルコンイソフ ラボンの転換を達成する為に必要な時間は、約2時間〜約24時間である。 1種以上のベータグルコシド酵素との反応後、pHは、大豆タンパク質の等電 点、一般には約4.0〜約5.0の間、好ましくは約4.4〜約4.6の間に、酸の添加によ って調整される。等電点へのpHの調整は、難溶性アグルコンが濃縮した凝乳(c urd)の形でタンパク質を沈殿させる。沈殿に次いで、凝乳又は沈殿したタンパク 質は、アグルコンイソフラボン濃縮タンパク質単離物を形成する為に、ホエーか ら、例えば遠心分離機で分離される。 好適な実施態様では、たとえアグルコンが、他のイソフラボンより水に溶解し にくいとはゆうものの、アグルコンイソフラボン濃縮単離物を用意する為に、ア グルコンイソフラボンの除去を実質的に減少させる為に、沈殿タンパク質の洗浄 は、全体に避けるか、最小限とする。それ故、酸沈殿タンパク質を水で洗浄する 事は、完全に避けるか、或いは水での一度の洗浄に制限するのがよく、その間の 沈殿タンパク質に対する水の重量比は、約2:1〜約6:1の間である。酸沈殿 凝乳の洗浄の省略は、多量の洗浄がイソフラボンの少ない回収で行う事が出来る としても、イソフラボンの望ましい水準で濃縮単離物を用意する。中間的な量で の洗浄は、乾燥基準含有量で約1.5〜約3.5mg/gのゲニステインと、約1.0〜 約3.0mg/gのダイザイン含有量を有するタンパク質単離物を与える。 又、本発明は、大豆原料の様な植物タンパク質原料から、非常に高い割合でイ ソフラボンを回収する方法を提供する。ここに開示する方法により得ることので きる回収水準は、一般に、出発植物タンパク質中の特定のイソフラボンの全形態 の合計を基準として少なくとも50%、好ましくは65%、最も好ましくは80 %である。特定の理論に拘泥する積りはないが、ここに開示する転換反応からの 高い回収系統は、開示された種々のプロセスオペレイションと結び付いているも のと考える。処理の特定の段階で、比較的可溶性で、アグルコン形を殆ど溶解し ないグルコンイソフラボン複合体を転換する事によって、供給物質から、高収率 でイソフラボンを最終生成物として回収する事が可能である。 以下の実施例は、特定のものではあるが、本発明の実施態様を限定するもので はない。 実施例 抽出され、脱脂された大豆フレーク(細粉)5gを、水5gに添加してサンプ ルを調製し、pHを7及び8に調整した。酵素濃度が、各サンプル中の固形分の 約5%重量であるそれぞれの上澄み液に、0.25gのラクターゼF又はラクト ザイムを添加した。サンプルを、40℃及び60℃で培養した。補助サンプルは 、酵素が添加される前(t=0)で、目標温度での24時間培養後に取り下げた。ラク ターゼF又はラクトザイムでの24時間培養後の大豆フレーク(細粉)の変化とそ の割合の分布が表1に示される。このサンプルは、補足的酵素と微生物を添加す る 前に滅菌されていず、汚染物の増殖は抑制されなかった。 これらのデータは、残留酵素及び補足的酵素の組み合わせによって達成され得 る転換の程度を示す。残留酵素源は、微生物増殖或いは体内に由来の大豆酵素で あってもよい。イソフラボン複合体のアグルコンへの顕著な転換は、pH8、6 0℃で24時間培養した大豆フレーク(細粉)で起こった。ここに開示するイソ フラボンの各タイプの濃度は、イソフラボンタイプの全ての形の合計を基準とす る。脱脂大豆フレークの16%水性懸濁液を作って、別のサンプルを調製した。 このサンプルを、pH4.5と7に調整し、45℃で24時間培養した。補助サン プルは、0及び24時間で採取した。全てのサンプルについて、イソフラボン含 有量を分析した。表2は、pH4.5と7で、45℃で24時間培養後の脱脂フレ ーク中の計算されたイソフラボンの割合分布の変化を示す。 これらのデータは、タンパク質原料中の残留酵素により達成され得る転換の程 度を示す。イソフラボン複合体のアグルコンへの顕著な転換は、pH7で、45 ℃で24時間培養後に起こった。 その他の実施例では、大豆から誘導されたタンパク質単離物中のゲニステイン 及びダイザインの回収割合が検討された。回収割合は、単離物中のゲニステイン (又はダイザイン)の量を決定し、大豆出発原料中のゲニステイン(又はダイザ イン)の全形態の合計量を基準とした割合としての量を表示する事によって明ら かとなった。100gの脱脂大豆細粉を、1,000gの水で抽出し、32℃の 温度の水酸化ナトリウムの添加でpH9.7に調整し、細粉に対する水の重量割合 を10:1とした。細粉を抽出物から分離し、pH9.7、温度32℃の水性抽出 物600gで再抽出した。第二抽出段階で、細粉に対する水の重量割合は6:1 となった。細粉を、遠心分離機で分離し、第一、第二抽出物を組み合わせ、大豆 ホエーのスラリーを形成する為に、pHを4.5に調整した。スラリーを50℃に 加熱し、酵素ラクターゼFの凝乳の2%乾燥重量を添加した。グルコンイソフラ ボンのアグルコン形への完全な転換を確実にする為に、スラリーを50℃で16 時間反応させた。アグルコン濃縮単離物を形成する為、遠心分離機で、ホエーか ら酸沈殿凝乳を分離した。水での沈殿凝乳の更なる洗浄は避けた。単離物中に回 収されたゲニステインの量は、出発原料(脱脂大豆細粉)中のゲニスチン及びゲ ニステインの全形態の合計の86%であった。同様に、単離物中に回収されたダ イアジンの量は75%であった。 以下は、大豆製品中のイソフラボンを定量化する為の方法についての記述であ る。イソフラボンは、0.75gのサンプル(噴霧乾燥又は細かに粉砕した粉) を80/20のメタノール/水溶媒の50ml混合する事によって、大豆製品か ら抽出した。混合物を、オービタルシェイカーで、室温で2時間振盪した。2時 間後、残った不溶解物質を、ワットマン42番濾紙でろ過して除去した。ろ液の 5ml水4mlびメタノール1mlで希釈した。 抽出イソフラボンを、ベックマンC18逆転相カラムを使用して、HPLC( 高速液体クロマトグラフィー)で分離した。イソフラボンをカラム上に噴射し、 88%のメタノール、10%の水及び2%の氷酢酸での開始、及び98%のメタ ノール及び2%の氷酢酸での終点溶媒勾配で溶出した。流速0.4ml/分で、 全てのイソフラボン、即ちゲニスチン、6″-0-アセチルゲニスチン、6″-O-マ ロニルゲニスチン、ゲニステイン、ダイジン、6″-O-アセチルダイジン、6″- 0-マロニルダイジン、ダイジン、グリシチン及びその誘導体及びグリシテインが 、明らかに再溶解された。ピーク検出は、262mmでの紫外線吸光度による。ピー クの同定は、質量分析計で行った。 定量化は、インドフィンク化学会社(Indofinc Chemical Company)から購入し た純粋標準試薬(ゲニスチン、ゲニステイン、ダイジン及びダイザイン)を使用 して達成した。応答因子(集積領域/濃度)は、上記化合物のそれぞれについて 計算し、未知のサンプルの定量化の為に使用した。純粋の標準試薬を利用しない 複合体形に対しては、応答因子は、親分子のものとし推定し、分子量の違いを補 正した。グリシチンに対する応答因子は、分子量の違いを補正したゲニスチンの それと推定した。 この方法は、それぞれ個々のイソフラボンの性質を用意する。全ての複合体形 が、それらの個々の非複合体形へ転換されるならば、便宜的に、全ゲニステイン 、全ダイザイン及び全グリシテインが計算出来、それら化合物の凝集体重量を表 示出来る。又、これらの合計は、複合体形を転換する為の酸加水分解を使用する 方法で、直接に測定出来る。 勿論、前述の記載は、本発明の単に好ましい実施態様であって、均等論を含む 特許法の原理に関して解釈される添付のクレームに示される精神とその広範な観 点から離れる事なしに、様々な変化或いは変更が成される事が理解される。 専用権或いは特許権がクレームされる本発明の実施態様は次の通り定義される 。
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Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 1.植物タンパク質原料からアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造する方法 であって、 (a)グルコンイソフラボンを含む植物タンパク質原料を、該植物タンパク 質原料の等電点付近以上のpHを有する水性抽出剤で抽出してタンパク質及びグ ルコンイソフラボンを含む水性抽出物を製造し、そして (b)該グルコンイソフラボンを、少なくとも1種のベータ−グルコシダー ゼ酵素とエステラーゼ酵素と、該抽出物中の少なくとも大部分の該グルコンイソ フラボンをアグルコンイソフラボンへ転換するのに十分な時間、温度及びpHで 反応させてアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造する事を特徴とする方法。 2.抽出が、約6〜約10のpHで行われる、請求項1記載の方法。 3.抽出が、約6.7〜約9.7のpHで行われる、請求項2記載の方法。 4.該植物タンパク質原料の抽出が、二重抽出から成る、請求項1記載の方法。 5.該植物タンパク質原料に対する該抽出剤の重量比が、約8:1〜約16:1 である、請求項1記載の方法。 6.該時間が、約2時間〜約24時間である、請求項1記載の方法。 7.該時間が、約24時間である、請求項6記載の方法。 8.該温度が、約40℃〜約60℃である、請求項1記載の方法。 9.該温度が、約60℃である、請求項8記載の方法。 10.該pHが、約4〜約8である、請求項1記載の方法。 11.該pHが、約4.5である、請求項10記載の方法。 12.該時間が約24時間であり、該温度が約60℃であり、該pHが約4.5であ る、請求項1記載の方法。 13.(c)該アグルコンイソフラボン濃縮抽出物のpHを、該植物タンパク質原 料の等電点付近に調整して該タンパク質原料を沈殿させ、そして (d)沈殿したタンパク質原料を分離して、アグルコンイソフラボン濃縮タ ンパク質単離物を製造する事を更に含む、請求項1記載の方法。 14.該単離物の洗浄が避けられる、請求項13記載の方法。 15.該単離物を、該沈殿タンパク質原料の重量の約6倍より少ない重量の水で洗 浄する、請求項13記載の方法。 16.該単離物を、該沈殿タンパク質原料の重量の約4倍より少ない重量の水で洗 浄する、請求項15記載の方法。 17.請求項1記載の方法で製造されるアグルコンイソフラボン濃縮抽出物。 18.請求項13記載の方法で製造されるアグルコンイソフラボン濃縮単離物。 19.該単離物が、大豆から造られる、請求項18記載の単離物。 20.該植物タンパク質原料が、大豆原料から成る、請求項1記載の方法。 21.殆ど全てのグルコンイソフラボンが、アグルコンイソフラボンへ転換される 、請求項1記載の方法。 22.植物タンパク質原料からアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造する方法 であって、 (a)グルコンイソフラボン及び、少なくとも1種のベータ−グルコシダー ゼ酵素及びエステラーゼ酵素の十分な残留酵素を含む植物タンパク質原料を、該 植物タンパク質原料の等電点付近以上のpHを有する水性抽出剤で抽出してタン パク質及びグルコンイソフラボンを含む水性抽出物を製造し、そして (b)該グルコンイソフラボンを、該残留酵素と、該抽出物中の少なくとも 大部分の該グルコンイソフラボンをアグルコンイソフラボンへ転換するのに十分 な時間、温度及びpHで反応させてアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造す ることを特徴とする方法。 23.抽出が、約6〜約10のpHで行われる、請求項22記載の方法。 24.抽出が、約6.7〜約9.7のpHで行われる、請求項23記載の方法。 25.該植物タンパク質原料の抽出が、二重抽出から成る、請求項22記載の方法 。 26.該植物タンパク質原料に対する該抽出剤の重量比が、約8:1〜約16:1 である、請求項22記載の方法。 27.該時間が、約2時間〜約24時間である、請求項22記載の方法。 28.該時間が、約24時間である、請求項27記載の方法。 29.該温度が、約40℃〜約60℃である、請求項22記載の方法。 30.該温度が、約60℃である、請求項29記載の方法。 31.該pHが、約4〜約8である、請求項22記載の方法。 32.該pHが、約4.5である、請求項31記載の方法。 33.該時間が約24時間であり、該温度が約60℃であり、該pHが約4.5であ る、請求項22記載の方法。 34.(c)該アグルコンイソフラボン濃縮抽出物のpHを、該植物タンパク質原 料の等電点付近に調整して該タンパク質原料を沈殿させ、そして (d)沈殿したタンパク質原料を分離して、アグルコンイソフラボン濃縮タ ンパク質単離物を製造する事を更に含む、請求項22記載の方法。 35.該単離物の洗浄が避けられる、請求項34記載の方法。 36.該単離物を、該沈殿タンパク質原料の重量の約6倍より少ない重量の水で洗 浄する、請求項34記載の方法。 37.該単離物を、該沈殿タンパク質原料の重量の約4倍より少ない重量の水で洗 浄する、請求項36記載の方法。 38.請求項22記載の方法で製造されるアグルコンイソフラボン濃縮抽出物。 39.請求項34記載の方法で製造されるアグルコンイソフラボン濃縮タンパク質 単離物。 40.該単離物が、大豆から造られる、請求項34記載の方法。 41.該植物タンパク質原料が、大豆原料から成る、請求項22記載の方法。 42.殆ど全てのグルコンイソフラボンが、アグルコンイソフラボンへ転換される 、請求項22記載の方法。 43.植物タンパク質原料からアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を製造する方法 であって、 (a)グルコンイソフラボンを含む植物タンパク質原料を、該植物タンパク 質原料の等電点付近以上のpHを有する水性抽出剤で抽出してタンパク質及びグ ルコンイソフラボンを含む水性抽出物を製造し、 (b)少なくとも1種のベータ−グルコシダーゼ酵素及びエステラーゼ酵素 である補足的酵素を、該抽出物に添加して、該抽出物中の酵素の全濃度を、該抽 出物中の該グルコンイソフラボンの少なくとも大部分をアグルコンイソフラボン へ転換するのに十分なものとし、そして (c)該グルコンイソフラボンを、該抽出物中の少なくとも大部分の該グル コンイソフラボンをアグルコンイソフラボンへ転換するのに十分な時間、温度及 びpHで、酵素と反応させ、それによってアグルコンイソフラボン濃縮抽出物を 製造する事を含む方法。 44.抽出が、約6〜約10のpHで行われる、請求項43記載の方法。 45.抽出が、約6.7〜約9.7のpHで行われる、請求項44記載の方法。 46.該植物タンパク質原料の抽出が、二重抽出から成る、請求項43記載の方法 。 47.該植物タンパク質原料に対する該抽出剤の重量比が、約8:1〜約16:1 である、請求項43記載の方法。 48.該時間が、約2時間〜約24時間である、請求項43記載の方法。 49.該時間が、約24時間である、請求項48記載の方法。 50.該温度が、約40℃〜約60℃である、請求項43記載の方法。 51.該温度が、約60℃である、請求項50記載の方法。 52.該pHが、約4〜約8である、請求項43記載の方法。 53.該pHが、約4.5である、請求項52記載の方法。 54.該時間が約24時間であり、該温度が約60℃であり、該pHが約4.5であ る、請求項43記載の方法。 55.(d)該アグルコンイソフラボン濃縮抽出物のpHを、該植物タンパク質原 料の等電点付近に調整して該タンパク質原料を沈殿させ、そして (e)沈殿したタンパク質原料を分離して、アグルコンイソフラボン濃縮タ ンパク質単離物を製造する事を更に含む、請求項43記載の方法。 56.該単離物の洗浄が避けられる、請求項55記載の方法。 57.該単離物を、該沈殿タンパク質原料の重量の約6倍より少ない重量の水で洗 浄する、請求項55記載の方法。 58.該単離物を、該沈殿タンパク質原料の重量の約4倍より少ない重量の水で洗 浄する、請求項57記載の方法。 59.請求項43記載の方法で製造されるアグルコンイソフラボン濃縮抽出物。 60.請求項55記載の方法で製造されるアグルコンイソフラボン濃縮タンパク質 単離物。 61.該単離物が、大豆から造られる、請求項55記載の方法。 62.該植物タンパク質原料が、大豆原料から成る、請求項43記載の方法。 63.殆ど全てのグルコンイソフラボンが、アグルコンイソフラボンへ転換される 、請求項43記載の方法。 64.約1.5〜約3.5mg/gの乾燥基準ゲニステイン含有量及び約1.0〜約3.0mg /gの乾燥基準ダイザイン含有量を有する植物タンパク質単離物。 65.植物タンパク質原料から、少なくとも50%のイソフラボンを回収する方法 であって、 (a)イソフラボンを含む植物タンパク質原料を、該植物タンパク質原料の 等電点付近以上のpHを有する水性抽出物で抽出してタンパク質及びイソフラボ ンを含む水性抽出物を製造し、 (b)該イソフラボンを、該抽出物中の少なくとも大部分の該イソフラボン を、溶解性の低いイソフラボンへ転換するのに十分な時間、温度及びpHで、十 分な量の酵素と反応させて、イソフラボン濃縮抽出物を製造し、 (c)該抽出物のpHを、該植物タンパク質原料の等電点付近に調整して該 タンパク質原料を沈殿させ、そして (d)沈殿したタンパク質原料を分離して、該植物タンパク質原料中の少な くとも50%の該イソフラボンを含む単離物を回収することを特徴とする方法。 66.該酵素が、ベータ−グルコシダーゼ酵素及びエステラーゼ酵素からなる群か ら選ばれる、請求項65記載の方法。 67.該植物タンパク質原料中の少なくとも65%の該イソフラボンが、該単離物 中に回収される、請求項65記載の方法。 68.該植物タンパク質原料中の少なくとも80%の該イソフラボンが、該単離物 中に回収される、請求項65記載の方法。 69.該植物タンパク質原料が、大豆原料から成る、請求項65記載の方法。 70.請求項65記載の方法で製造されるタンパク質単離物。 71.請求項67記載の方法で製造されるタンパク質単離物。 72.請求項68記載の方法で製造されるタンパク質単離物。 73.該pHが、該残留酵素が該グルコンイソフラボンとの反応前に最も活性であ る値である、請求項1記載の方法。 74.該pHが、該残留酵素が該グルコンイソフラボンとの反応前に最も活性であ る値である、請求項22記載の方法。 75.該pHが、該残留酵素が該グルコンイソフラボンとの反応前に最も活性であ る値である、請求項43記載の方法。
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