JPH09510875A

JPH09510875A - 母親の末梢血からの胎児細胞の培養および単離

Info

Publication number: JPH09510875A
Application number: JP7525275A
Authority: JP
Inventors: パベルカ，カレン; マール，アンナ; クリンガー，キャサリン・ダブリュー
Original assignee: Genzyme Corp
Current assignee: Genzyme Corp
Priority date: 1994-03-29
Filing date: 1995-03-29
Publication date: 1997-11-04
Also published as: CA2183657A1; WO1995026417A1; EP0804614A1; AU2274595A

Abstract

(57)【要約】妊婦から得た末梢血試料からの胎児細胞、例えば、胎児赤血球系細胞を培養し、単離する方法を開示する。末梢血試料からの細胞を、細胞増殖因子、例えば、赤血球系細胞増殖因子、例えばエリスロポエチンを含有する培地中で培養して胎児細胞を培養する。培養の前に、末梢血試料から無核細胞を除去することができ、さらに／あるいは胎児細胞を豊富化させることができる。中期スプレッドを培養胎児細胞から調製することができる。胎児細胞マーカーまたは対象核酸配列を培養胎児細胞において検出することができる。培養胎児細胞を用いて胎児の性別を決定し、胎児における疾病を引き起こす変異および染色体異常を検出することができる。

Description

【発明の詳細な説明】母親の末梢血からの胎児細胞の培養および単離発明の背景すべての造血細胞は多能性幹細胞由来であり、それは適当な条件下で造血系統のうちの１つから数種の可能性のある系統へと分化する。これらの系統の１つである赤血球系細胞の系統は赤血球の産生へとつながる。無核赤血球または赤血球への成熟の進行は多能性幹細胞の赤血球系細胞系統になる性質から生じ、多能性幹細胞は赤血球系前駆細胞となり、発達中の細胞により受け取られるシグナルに応答して赤血球系前駆細胞のさらなる分化により成熟細胞となる。初期の赤血球系前駆細胞はブラスト・フォーミング・ユニット−エリスロイド（blast formin g unit-erythroid）（以後、ＢＦＵ−Ｅという）であり、それは発達してより成熟した赤血球系前駆細胞であるコロニー・フォーミング・ユニット−エリスロイド（colony forming unit-erythroid）（以後、ＣＦＵ−Ｅという）になる。特別な増殖因子であるエリスロポエチンにより剌激された場合、ＣＦＵ−Ｅは増殖し、成熟した無核赤血球の前駆体である有核赤血球（以後、ｎＲＢＣｓという）へと分化する。成人において、赤血球系細胞前駆体細胞は主に骨髄中に存在し、成人においてはそこで造血が起こり、赤血球系細胞前駆体細胞は末梢血中に循環しない。赤血球系細胞の分化に関するレビューについては、ベック,ダブリュ・エス（Beck,W.S.）、「ヘマトロジー（Hematology）第４版」マサチューセッツ州ケンブリッジ：ＭＩＴ・プレス（MIT Press）（第５版、１９９１年）ぼスタマトイアノプーロス,ジー（Stamatoyannopoulos,G.）、「ザ・モレキュラー・ベイシス・オブ・ブラッド・ディジージズ（The Molecular Basis of Blood Disea ses）、ペンシルベニア州フィラデルフィア：ダブリュ・ビー・サウンダース（W .B.Saunders）（第２版、１９９４年）、６６〜１０５頁参照。蛋白であるエリスロポエチンは、赤血球系細胞の発達に必要な増殖因子であって、主として腎臓により生産されるものである。もともとエリスロポエチンは貧血患者の尿から単離精製された（ミヤケ,ティー（Miyake,T.）ら、ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー（J.Biol.Chem.）第２５２巻、５５５８〜５５６４頁（１９７７年））。より最近になって、エリスロポエチンは分子的にクローン化され、特徴づけられた（ジャコブス,ケイ（Jacobs,K.）ら、ネイチャー（Nature）第３１３巻、８０６〜８０９頁（１９８５年）；リン,ピー(Lin,P. )ら、プロシーディングス・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシズ・ユーエスエイ（Proc.Natl.Acad.Sci.USA）第８２巻、７５８０〜７５８４頁（１９８５年））。インビトロ培養中の赤血球系前駆細胞の増殖を支持するためにエリスロポエチンが用いられてきた。例えば、骨髄由来のヒト・成人赤血球系前駆細胞およびへその尾の血液由来または胎児肝臓外移植物由来の胎児赤血球系前駆細胞が、エリスロポエチン含有培地中で細胞を培養することによりインビトロで増殖させられている（サザーランド,エイチ・ジェイ（Sutherland,H.J.）ら、ブラッド（Blood）第７４巻、１５６３〜１５７頁（１９８９年）；ボジャー, エム・ピー（Bodger,M.P.）、エクスペ・ヘマトロ（Exp.Hematol.）第１５巻、８６９〜８７６頁（１９８７年）；ペシュレ,エイ・アール（Peschle,A.R.）ら、ブラッド第５８巻、５６５〜５７２頁（１９８１年））。妊娠中、胎児起源の細胞は母親の末梢循環系に現れる。レビューのために、ビアンキ,ディー・ダブリュ（Bianchi,D.W.）およびクリンガー,ケイ・ダブリュ(K linger,K.W.)、ジェネティック・ディスオーダーズ・アンド・ザ・フェタス：プリベンション・アンド・トリートメント（Genetic Disorders and the Fetus:Pr evention and Treatment）第３版、ボルチモア／ロンドン：ザ・ジョン・ホプキンス・ユニバーシティー・プレス（The John Hopkins University Press）（１９２２年）参照。これらの細胞は、発達中の胎児の性および遺伝的性質に関する可能性のある情報源である。母親の末梢血試料中のこれらの胎児細胞の検出、単離および取り扱いは、出産前の診断および性の同定のための非侵入的手段を提供する。しかしながら、かかるアプローチの実行可能性は多くの要因により妨げられている。最も重要なことには、胎児細胞は母親の血液中に非常に限られた数しか存在せず、胎児細胞および母親の細胞の混合物中で豊富化することが必要であり、あるいは何らかの方法で胎児細胞を母親の細胞から分離する必要がある。胎児細胞の豊富化または分離を行うために用いられている１のアプローチは、特定の胎児細胞タイプに特異的な抗体を用いるものである。例えば、胎児特異的抗体を用いて、母親の成分からの胎児細胞のフローサイトメトリーによる分離を容易にすることができる（ハーゼンバーグ,エル・エイ（Herzenberg,L.A.）ら、プロシーディングス・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシズ・ユーエスエイ第７６巻、１４５３〜１４５５頁（１９７９年）；イバーソン,ジー・エム（Iverson,G.M.）ら、プレナタル・ダイアグノシス（Prenatal Diagnosis）第１巻、６１〜７３頁（１９８１年）；ビアンキ,ディー・ダブリュ（Bianchi,D .W.）ら、プレナタル・ダイアグノシス第１１巻、５２３〜５２８頁(１９９１年) ）。しかしながら、このアプローチは非常に特殊な試薬を必要とし、費用と労力がかかる可能性がある。診断目的に母親の末梢血由来の胎児細胞を用いることにおけるもう１つの制限は、中期の細胞は分析に好ましいのであるが、母親の末梢循環系におけるすべての胎児細胞が分裂しているとは限らないということである。発明の概要本発明は、胎児細胞の培養ならびに単離のための、および単離胎児細胞中の対象核酸配列の検出のための非侵入的方法を提供する。本発明は、少なくとも一部には、胎児細胞、例えば、胎児前駆細胞が妊婦の末梢血中に存在し、細胞増殖因子の存在下で該細胞を培養することにより選択的にインビトロで増殖させることができるという知見に基づく。１の具体例において、本発明は、胎児赤血球系細胞細胞の培養ならびに単離のための、および単離胎児赤血球系細胞細胞中の対象核酸配列を検出するための非侵入的方法を提供する。本発明は、少なくとも一部には、胎児前駆細胞が妊婦の末梢血中に存在し、細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンの存在下で該細胞を培養することにより選択的にインビトロで増殖させることができるという知見に基づく。本発明方法は、診断的に用いるに十分な数の胎児細胞を得るための非侵入的方法であって、モノクローナル抗体のごとき特殊な試薬またはフローサイトメーターのごとき高価な装置を必要としない方法を提供する。赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンの存在下での胎児赤血球系前駆細胞の培養は、細胞を増殖分化させて赤血球系細胞にする。次いで、胎児赤血球系細胞を単離し、さらなる分析に使用することができる。本発明は、末梢血試料中で母親の細胞よりも胎児細胞を豊富化させ、もとの試料中にあった総数よりも存在する胎児細胞の総数を膨大化させ、有糸分裂的に活性のある細胞を単離することを可能にする方法を提供する。このアプローチは、さらなる分析のために胎児細胞を得る単純で非侵入的な手段を提供するので、母親の末梢血由来の胎児赤血球系前駆細胞を培養することができることは大きな価値を有する。このアプローチの利点は、分析のために多数の胎児細胞を単離することが可能であり、他の方法よりも単純かつ経済的に母親の血液から分離されうるということである。なぜなら、これらの細胞は増殖しており、診断試験に用いる中期の胎児細胞の単離を可能にするからである。したがって、本発明は、分析および診断のために胎児細胞を得る手段としての、母親の末梢血試料からの胎児赤血球系細胞細胞の培養ならびに単離に関する。本発明方法は、母親の末梢血試料を得て、赤血球系前駆細胞を増殖させて赤血球系細胞に分化させる赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンを含有する培地中で細胞を培養し、次いで、胎児赤血球系細胞を単離することを包含する。この方法は、少なくとも一部には：１）母親の末梢循環系における胎児赤血球系前駆細胞の存在；２）母親の末梢循環系において母親の赤血球系前駆細胞がめったに存在しないこと；および３）母親の赤血球系前駆細胞よりも胎児赤血球系前駆細胞のほうがエリスロポエチンに対して高い感受性があることに基づく。培養の前に、末梢血試料を処理してある種の細胞タイプを除去し、そして／またはより少ない細胞数を培養工程に用いることができるようにある種の細胞タイプを豊富化することができる。例えば、培養前に、選択的溶解または密度勾配遠心分離により無核赤血球を試料から除去することができる。例えば、異なる密度勾配を用いる二重密度勾配遠心分離を行い、次いで、培養前に赤血球系前駆細胞を含む細胞層を単離することにより、赤血球系前駆細胞を試料中で豊富化することができる。培養後、例えば、細胞を取り扱うためにピペットを用いることにより、培地から１個またはそれ以上の別々の細胞コロニーをピックアップすることにより赤血球系細胞を単離することができる。次いで、コロニーの細胞を新鮮培地に移し、さらなる分析のために顕微鏡スライド上に置くか、ＤＮＡ源として用いるか、あるいは何らかの適当な方法でさらに分析を行うことができる。本発明のもう１つの態様は、赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチン中で母親の末梢血試料の細胞を培養した後の胎児赤血球系細胞細胞の同定方法に関する。この方法は、胎児起源であると細胞を同定するする手段としての赤血球系細胞上の胎児細胞マーカーを検出することを包含する。本発明のさらなる態様は、培養後の胎児赤血球系細胞の胎児核酸中の対象核酸配列の検出を包含する。培養した赤血球系細胞由来のＤＮＡにおけるＹ染色体ＤＮＡ、疾病を引き起こす変異に関連した遺伝子、または染色体異常の検出はすべて本発明の範囲内である。また、本発明は、母親の血液試料から中期の胎児細胞を単離する方法に関する。この方法において、エリスロポエチン中での細胞培養後、細胞周期による細胞分裂の進行を抑制する薬剤、または細胞増殖を同調させる薬剤に細胞を曝露する。中期の細胞は顕微鏡で検出され、単離されうる。次いで、中期の細胞をさらなる分析および診断試験のために用いることができる。さらに本発明は、妊婦から得た末梢血試料由来の胎児赤血球系前駆細胞を培養することにより、経産妊婦において現在の妊娠に由来する胎児細胞を優先的に単離する方法を提供する。この方法は、赤血球系前駆細胞の短いライフスパン（約３カ月）に基づくものであり、培養後単離されたいずれの胎児赤血球系細胞も、いずれかの以前の胎児由来というよろはむしろ現在の胎児由来のはずである。図面の簡単な説明図１は、密度勾配に沿った赤血球系前駆細胞および有核赤血球の相対的分布を示すスキーム的ダイヤグラムである。図２は、エリスロポエチン含有メチルセルロース培地において増殖中のＣＦＵ −Ｅコロニーの写真である。図３は、エリスロポエチン含有メチルセルロース培地において増殖中の初期ＢＦＵ−Ｅコロニーの写真である。発明の詳細な説明本発明は、母親の末梢血試料由来の胎児細胞の培養方法に関する。該方法は、妊婦から末梢血試料を得て、次いで、増殖因子含有培地にて試料中の細胞を培養することを包含する。胎児細胞を培地から単離し、対象核酸配列を胎児ＤＮＡにおいて検出する。１の具体例において、本発明は、母親の末梢血試料由来の胎児赤血球系細胞細胞の培養方法に関する。該方法は、胎児赤血球系前駆細胞を増殖させて胎児赤血球系細胞に分化させる赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンを含有する培地中でインビトロで血液試料に存在する胎児赤血球系前駆細胞を培養することを包含する。培養後、胎児赤血球系細胞細胞を単離することができる。１の具体例において、本発明方法は、妊婦から末梢血試料を得て、赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンを含有する培地にて末梢血試料中の細胞を培養し、次いで、胎児赤血球系細胞を培地から単離することからなる。用語「妊婦由来の末梢血試料」は、母親の血液試料をも意味し、胎児のいる妊婦由来の末梢血ソース（例えば、腕の静脈からのもの）から得た（例えば、注射器で）血液試料を包含する。本発明方法において使用する前に、ヘパリンのごとき血液凝固を抑制する剤で末梢血試料を処理することができる。好ましくは、末梢血試料は約５〜２０ｍｌの血液を含有する。より好ましくは、試料は約１０ｍｌの血液を含有する。妊娠６週程度で試料を得てもよく、あるいは２回目の３カ月の中期あたりで得てもよいが、好ましくは、妊娠約８週ないし１６週の間に得る。最も好ましくは、試料を妊娠約１２週で得る。妊娠１２週において、胎児血液中１ミリリットルの循環血液あたり約５００００個のｎＲＢＣｓが存在するが、妊娠２０週までには胎児血液１ミリリットルあたりわずか約１０００個しか存在しなくなることが知られている（ホルツグレーブ,ダブリュ（Holzgreve,W.）ら、ザ・ジャーナル・オブ・リプロダクティブ・メディシン（The Journal of Repro ductive Medicine）第３７巻、４１０〜４１８頁（１９９２年））。用語「培地」で「細胞を培養」とは、一般的には、細胞の生存に適する培地に細胞を接触させ、一定時間細胞の生存に適する条件下で培地中の細胞をインキュベーションして細胞を増殖およびおそらくは分化させることをいう。用語「培地」は、胎児細胞、例えば、赤血球系前駆細胞の生存および増殖を可能にする液体もしくは半固体溶液または材料を包含する。一般的には、適当な培地は、炭水化物のごとき栄養源（例えば、糖）、血清（例えば、ウシ・胎児血清）中に見いだされるような一般的な増殖因子、および補足されるＬ−グルタミンのごときアミノ酸を含有する。培地は、ペニシリンおよびストレプトマイシンのごとき抗生物質、還元剤（例えば、２−メルカプトエタノール）、付加的な蛋白（例えば、ウシ・血清アルブミン）、緩衝化剤（例えば、重炭酸ナトリウム）および／またはｐＨ指示薬（例えば、フェノールレッド）を含有してもよい。一般的には、培養中の哺乳動物細胞の生存に適した条件は、３７℃、４％〜５％ＣＯ₂である。培養時間の長さは、所望細胞数（すなわち、所望細胞数を得るに必要な増殖の程度）および／または所望の細胞分化により変更されるが、一般的には少なくとも約４８時間である。好ましくは、細胞を約４日間培養する。より好ましくは、細胞を約６日間培養する。好ましい具体例において、さらに培地は半固体マトリックス材料を包含する。用語「半固体マトリックス材料」は、液体培地に添加された場合、液体培地をゼラチン性の半固体状態に変化させる物質を包含する。半固体培地は、やはり細胞が増殖するが（すなわち、細胞増殖を阻害しない程度には固くない）、培地中の単離細胞が増殖位置から移動できない培地である。半固体マトリックス材料は増殖中の細胞を該マトリックス材料に付着させ、そのことにより、培地中での細胞の移動を防止する。半固体培地中の単一細胞の増殖は、もとの単一細胞からの分裂により生じる個別の細胞コロニーを生じる。半固体培地の光学顕微鏡試験により１の細胞コロニーを他の細胞コロニーから識別することができる。適当な半固体マトリックスは、メチルセルロース、寒天ゲルおよび血漿クロットを包含する。例えば、ステファンソン,ジェイ・アール（Stephenson,J.R.）ら、プロシーディングス・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシズ・ユーエスエイ第６８巻、１５４２〜１５４６頁（１９７１年）；イスカブ,エヌ・エヌ（Iscove, N.N.）ら、ジャーナル・オブ・セル・フィジオロジー（J.Cell Physiol.）第８３巻、３０９〜３２０頁（１９７４年）；およびパイク,ビー・エル（Pike,B.L. ）とロビンソン,ダブリュ・エイ（Robinson,W.A.）、ジャーナル・オブ・セル・フィジオロジー第７６巻、７７頁（１９７０年）参照。母親の血液試料からの胎児細胞の分離にとり好ましい培地は、１.１％メチルセルロース、３０％ウシ胎児血清、１％ＢＳＡ、１％ペニシリン−ストレプトマイシン、１％Ｌ−グルタミン、１０^-4Ｍの２−メルカプトエタノールを添加したイスカブの改変ダルベッコ培地（Iscove's Modified Dulbecco's Medium）（ＩＭＤＭ；市販品；ホイティカー（Whitaker）のシグマ（Sigma）社製）である。好ましい培養条件は、３７℃、４％〜５％ＣＯ₂で約９６時間の細胞のインキュベーションである。典型的には、培養ディッシュまたは培養フラスコのごとき培地のための適当な容器中で細胞を培養する。母親の血液試料の細胞が培養される培地は細胞増殖因子をも含有する。用語「細胞増殖因子」は胎児細胞の増殖または分化を刺激する因子を包含する。細胞増殖因子の例は：リンパ球前駆細胞の分化を刺激する因子、例えば、インターロイキン−２（ＩＬ−２）、インターロイキン−４（ＩＬ−４）ならびにインターロイキン−７（ＩＬ−７）、および造血前駆細胞を刺激する因子、例えば、造血細胞増殖因子（赤血球系細胞増殖因子を含む）、例えばインターロイキン−３（ＩＬ−３）、顆粒球−マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、単球− マクロファージコロニー−刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、顆粒球コロニー−刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、およびヒト・組み換え幹細胞因子（ｒｈＳＣＦ）包含する。母親の血液試料中の細胞が培養される培地は、赤血球系細胞増殖因子を含有してもよい。用語「赤血球系細胞増殖因子」は、ヒト・赤血球系前駆細胞の成長および増殖を支持する因子を包含する。例は：エリスロポエチン（ＥＰＯ）、およびバースト促進活性（ＢＰＡ）包含する。これらの赤血球系細胞増殖因子を単独で、あるいは互いに組み合わせて与えることができる。用語「エリスロポエチン」は、ヒト・赤血球系前駆細胞の成長および増殖を支持する蛋白エリスロポエチンの調製物を包含する。天然ソースからのエリスロポエチン蛋白の精製によりエリスロポエチンを調製してもよく、あるいは組み換えＤＮＡ法によるエリスロポエチン遺伝子の発現によりエリスロポエチンを調製してもよい。ヒトの尿から単離されたエリスロポエチンの粗調製物を用いることができ、シグマから市販されている（カタログ番号Ｅ５０１１、５０Ｕ／ｍｇ）。他の市販調製物は、シグマＥ９７６１番（ヒト・組み換え型；１０００００Ｕ／ｍｇ）、Ｅ９７５７番（ヒト・尿由来；８００００Ｕ／ｍｌ）、Ｅ２６３９番（ヒト・尿由来；５００Ｖ／ｍｇ）およびＥ２５１４（ヒト・尿由来；１００Ｕ／ｍｇ）を包含する。好ましくは、エリスロポエチンはヒト由来であるが、ヒト・赤血球系前駆細胞の増殖および分化を支持できる別の種由来のエリスロポエチンを用いてもよい。例えば、ヒトおよびマウスの細胞はともに、ヒツジまたはヒトのエリスロポエチンにより刺激された（イスカブ,エヌ・エヌら、ジャーナル・オブ・セル・フィジオロジー第８３巻、３０９〜３２０頁（１９７４年）参照）。所望の赤血球系前駆細胞の増殖および／または分化の結果を得るに十分な濃度のエリスロポエチンを用いる。培地中のエリスロポエチンの好ましい濃度範囲は約０.２５Ｕ／ｍｌないし１Ｕ／ｍｌである。培地中のエリスロポエチンに曝露された赤血球系前駆細胞は刺激されて増殖し分化するであろう。多くの理由により、エリスロポエチンは、母親の血液試料由来の細胞中の胎児赤血球系前駆細胞の増殖および分化を優先的に刺激する。第１に、ヒト・胎児肝臓由来の胎児赤血球系前駆細胞は、ヒト・成人由来の赤血球系前駆細胞よりもエリスロポエチンの刺激効果に対して感受性があることが示されている（ペシュレ,シー（Peschle,C.）ら、ブラッド（Blood）第５８巻、５６５〜５７２頁（１９８１年）参照）。第２に、使用エリスロポエチン濃度（例えば、０.２５Ｕ／ｍｌないし１Ｕ／ｍｌ）は成人赤血球系前駆細胞の最適刺激濃度（２〜４Ｕ／ｍｌ）よりも低い（リンチ（Linch）ら、ブラッド第５９巻、９７６〜９７９頁（１９８２年）参照）。最後に、ヒト・成人における赤血球系前駆細胞は成人の造血部位である骨髄にのみにほぼ限られて見いだされ、それゆえ、もし存在してもわずかの母親の赤血球系前駆細胞しか母親の末梢血に存在しないはずである。２つのタイプの胎児赤血球系前駆細胞がエリスロポエチンの刺激効果に応答しうる。それらは：成熟もしくは後期ＢＦＵ−Ｅ（以後、Ｍ−ＢＦＵ−Ｅという）およびＣＦＵ−Ｅである。顕微鏡で調べることのできるそれらの形態により、Ｍ −ＢＦＵ−ＥおよびＣＦＵ−Ｅ由来のコロニーを互いに識別することができ、さらに他の細胞タイプから識別することができる。ＢＦＵ−Ｅ由来のコロニーは通常は１００個以上の細胞を含み、数千個の細胞を含むことができ、細胞の拡散した「バースト」または散在パターンに配列されている。ＣＦＵ−Ｅ由来のコロニーは、より小型でよりコンパクトなコロニーに配列された約２０ないし１５０個の細胞を含む。ＣＦＵ−Ｅ由来のコロニーは培養の最初に１週間で成熟するが、ＢＦＵ−Ｅ由来のコロニーは発達により長時間を要する。さらに、ＣＦＵ−Ｅ由来のコロニーはさらに成熟し、分化して有核赤芽球のごとき赤血球系細胞を形成し、顕微鏡で同定できる可視的なヘモグロビン形成を示す。赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンを含有する培地中で細胞を培養した後、赤血球系細胞を培地から単離する。用語「単離」は、他の細胞および／または培地からの１個またはそれ以上の細胞もしくは細胞コロニーの分離をいう。細胞を十分に低密度で半固体培地にて増殖させて個別の識別可能な細胞コロニーを形成させる場合、これらの細胞コロニーはすでに半固体培地中の他の細胞から単離されている。培地から細胞を取ることにより細胞または細胞コロニーをさらに単離することができる。例えば、光学顕微鏡下で培養物を試験することにより個別の細胞コロニーを同定し、培地から細胞を取り出すことにより培地から取ることができる。吸い出しパスツールピペットまたは他の適当なピペットのごとき器具を用いて細胞を効率的に取り出して細胞を取り扱うことができる。例えば、ピペットで取ることにより培地から細胞を分離したならば、細胞を保持容器（例えば、試験管）、固体支持体（例えば、顕微鏡スライド）、新鮮培地、または細胞のさらなる増殖、取り扱いもしくは分析に適した他の場所に移すことができる。好ましい具体例において、細胞の単一コロニーを培地から取り、顕微鏡スライドに移す。用語「胎児細胞」は、母親の末梢循環血液中に存在する胎児細胞を包含する。胎児細胞は、細胞増殖因子とのインキュベーション後に成熟細胞、例えば、顆粒球、単球または白血球に分化しうる胎児前駆細胞を包含する。例えば、胎児リンパ球前駆細胞をＩＬ−２、ＩＬ−７またはＩＬ−４とともに培養して成熟ＴまたはＢ−リンパ球に分化させることができる。Ｇ−ＣＳＦおよび／またはＧＭ−ＣＳＦのごとき因子とともに他の胎児前駆細胞を培養して成熟顆粒球に分化させることができる。用語「赤血球系細胞」は、赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンとともに培養することにより赤血球系前駆細胞から由来する細胞を包含する。赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンとともに赤血球系前駆細胞を培養することは、前駆細胞をより成熟した赤血球系統の発達段階へと分化させる。よって、培養後に存在する細胞は異なる段階の赤血球系の発達経路にある細胞タイプの混合物であってもよい。異なる段階の赤血球系の発達経路にある細胞は互いに形態学的に異なる可能性がある。ＢＦＵ−ＥおよびＣＦＵ−Ｅコロニーのごとき赤血球系前駆細胞の形態を有する細胞もしくは細胞のコロニー、または有核赤芽球のごとき可視的なヘモグロビン形成を伴う細胞を包含するより発達した赤血球系細胞は、赤血球系細胞増殖因子、例えばエリスロポエチン中での赤血球系前駆細胞の培養後に検出でき、培地から単離することができる。妊婦から得た末梢血試料由来の細胞を培養する前に、試料中の１またはそれ以上のタイプの細胞を豊富化するように試料を処理することができる。母親の血液試料は、リンパ球、単球、顆粒球、ならびに潜在的には胎児細胞、例えば赤血球系前駆細胞のごとき有核細胞、および無核成熟赤血球の両方を含有する。無核成熟赤血球は末梢血試料中の大部分の細胞を構成し、培養前にこれらの細胞を試料から除去することがしばしば望ましい。有核細胞に富む試料を得る豊富化の前の末梢血試料中に存在する有核細胞の割合に対して末梢血試料中に存在する有核細胞の割合を増加させることができる。次いで、有核細胞を豊富化した試料を培養に用いる。用語「有核細胞の割合」は、試料中の全細胞、すなわち、有核および無核細胞の数に対する有核細胞のパーセンテージをいう。用語「豊富化の前の.. ....に存在する割合に対して増加」は、試料中に存在する有核細胞のパーセンテージが、豊富化処理前の試料中に存在した有核細胞のパーセンテージよりも豊富化処理後において大きいことを意味する。試料から無核細胞を除去することにより、および／または無核細胞から有核細胞を分離することにより、有核細胞および無核細胞の両方を含有する末梢血のごとき試料中の有核細胞のパーセンテージを出発試料に対して増加させることができる。用語「有核細胞を豊富化した試料」は、試料中の有核細胞のパーセンテージが豊富化手順前の母親の血液試料に存在するパーセンテージに対して増加している母親の血液試料から得られる試料を包含する。１の具体例において、妊婦から得た末梢血試料中の有核細胞から無核細胞を分離することにより、有核細胞を豊富化した試料を得る。用語「分離」は、無核細胞よおび有核細胞を互いに単離することを意味する。密度勾配遠心分離により、無核細胞を有核細胞から分離することができる。用語「密度勾配遠心分離」は、細胞混合物、例えば、血液試料の細胞を遠心チューブのごとき容器に入れて遠心分離し、特定の密度の特定の物質を通過させて異なる細胞タイプを含む層を形成させる方法をいう。遠心分離条件下では、細胞は、それらの細胞サイズおよび密度の関数として密度勾配物質中を移動する。それゆえ、密度勾配遠心分離を用いて、細胞サイズおよび密度の相違に基づいて細胞を分離することができる。無核赤血球は有核細胞とは異なるサイズおよび密度を有するので、密度勾配遠心分離により有核細胞から分離されうる。密度勾配遠心分離により無核細胞と有核細胞とを分離するのに適したいくつかの物質が市販されている。これらは、フィコール（Ficoll）（スゥエーデンのウプサラのファルマシア（Pharmacia）社製）、ヒストパーク（Histopaque）(ミズーリ州セントルイスのシグマ（Sigma）社製) 、ニコデンズ（Nycodenz）（ノルウェーのオスロのニコメド・ファーマ（Nycome d Pharma）社製；米国においてギブコＢＲＬ（Gibco BRL）から市販）、ポリモルフプレプ（Polymorphprep）（ノルウェーのオスロのニコメド・ファーマ社製；米国においてギブコＢＲＬから市販）を包含する。適当な遠心速度および時間が製造者により決定されている。一般的には、適当な遠心速度および時間は４００〜５００ｇで室温において２０〜３５分である。遠心分離後、典型的には、材料血液試料は少なくとも３層に分離する。該３層とは、血清および血漿板を含有する上清層；単核細胞層；および無核赤血球えお含有する凝集ペレットである。有核細胞を含み、大部分の無核赤血球を欠く１またはそれ以上の細胞層（例えば、単核細胞層）をグラジエントから取って、有核細胞が豊富化した試料を得る。もう１つの具体例において、無核細胞の選択的溶解により、無核細胞を有核細胞から分離することができる。用語「選択的溶解」は、他の細胞タイプ、例えば、有核細胞に対して１の細胞タイプ、例えば、無核細胞の優先的破壊をいう。有効であることが知られており、慣用的には無核赤血球の溶解に使用される多くの低張バッファーの１つ、例えば、０.１７ＭＨＮ₄Ｃｌ,０.０１ＭＴｒｉｓ, ｐＨ７.３の中で母親の血液試料中の細胞をインキュベーションすることができる（例えば、チイリカイネン（Tiilikainen）ら、トランスプランテイション（T ransplantation）第１７巻、３５５頁（１９７４年）およびマセラ（Macera）ら、リューケミア・リサーチ（Leukemia Research）第１３巻、７２９〜７３４頁（１９８９年）参照）。また、この目的に適するバッファーは市販されている（例えば、ジェントラック（GenTrak）の「ライズ・アンド・フィックス（Lyse an d Fix））。無核細胞の選択的溶解に適した適切なバッファー中でのインキュベーション後、得られる細胞試料は有核細胞を豊富化した試料である。好ましい具体例において、試料中の胎児細胞、例えば、胎児赤血球系前駆細胞を豊富化するために、培養する前に母親の血液試料を取り扱う。末梢血試料中に存在する胎児細胞、例えば、胎児赤血球系前駆細胞の割合を、胎児細胞、例えば、胎児赤血球系前駆細胞が豊富化された試料を作成する豊富化前の末梢血中に存在する胎児細胞、例えば、胎児赤血球系前駆細胞の割合に対して増加させることができる。次いで、胎児細胞が豊富化された試料を培養に用いる。用語「胎児細胞、例えば、赤血球系前駆細胞の割合」は、試料中の全細胞、すなわち、有核細胞および無核細胞の数に対する胎児細胞のパーセンテージをいう。用語「豊富化前.. ....存在する割合に対して増加」は、試料中に存在する有核細胞のパーセンテージが、豊富化処理前の試料中に存在した有核細胞のパーセンテージよりも豊富化処理後において大きいことを意味する。他の細胞タイプ、例えば、無核細胞および他のタイプの有核細胞を試料から除去することにより、および／または特定のタイプの細胞、例えば、赤血球系前駆細胞を無核細胞および他のタイプの有核細胞から分離することにより、他の細胞タイプを含有する末梢血のような試料中の特定のタイプの胎児細胞、例えば赤血球系前駆細胞のパーセンテージを出発試料に対して増加させることができる。用語「胎児細胞、例えば、赤血球系前駆細胞が豊富化された試料」は、胎児細胞、例えば、試料中に存在する赤血球系前駆細胞が豊富化処理前の母親の血液試料中に存在するパーセンテージに対して増加している母親の血液試料由来の試料を包含する。選択された細胞タイプおよび他の細胞タイプの細胞サイズおよび密度の相違に基づく密度勾配遠心分離により、特定のタイプの胎児細胞、例えば、赤血球系前駆細胞を無核細胞、例えば、成熟赤血球および他のタイプの有核細胞、例えば、リンパ球および単核細胞から分離することができる。１の具体例において、「２重密度勾配遠心分離」を行う。用語「２重密度勾配遠心分離」は、細胞混合物、例えば、血液試料の細胞を遠心チューブのごとき容器に入れ、異なる密度の２種またはそれ以上の物質を通して異なる細胞タイプを含む層を形成させるか、あるいは別法として、ある密度の１の物質を通して細胞混合物を遠心分離し、１またはそれ以上の層を取り、取った細胞を第２の物質（好ましくは、第１の物質とは異なる密度である）を通して再遠心分離して異なる細胞タイプを含む層を形成する方法を包含する。１層の密度勾配遠心分離用と記載されたグラジエント物質（例えば、フィコール、ヒストパーク、ニコデンズ、ポリモルフプレプ）を用いて２重密度勾配遠心分離を行うことができる。ポリモルフプレプ（ニコメド；ギブコＢＲＬカタログ番号１００−１９７１）を用いる密度勾配遠心分離により、胎児細胞、例えば赤血球系前駆細胞が豊富化された試料を得ることができる。希釈されていない抗凝集処理された母親の血液試料の全血をグラジエント物質を通して遠心分離して以下の層（チューブの上から下へ）を形成させる：血清および血小板を含む上清層；リンパ球および単球を含む単核細胞層（「バフィーコート（buffycoat）」）；多形核白血球、有核赤血球および赤血球系前駆細胞を含む多形核細胞層；および無核赤血球ペレット。多形核細胞層を取り、胎児赤血球系前駆細胞が豊富化された試料を得ることができる。さらに、ヒストパークを用いる２層密度勾配遠心分離を用いて赤皿球系前駆細胞が豊富化された試料を得ることができる。リン酸緩衝化セイライン中に１：１希釈された母親の血液試料を、ヒストパーク１１１９（密度＝１．１１９）上に重層されたヒストパーク１０７７（密度＝１．０７７ｇ／ｍｌ）からなる２重密度勾配を通して遠心分離して下記の層（チューブの上から下へ）を形成させる：上清層；単核細胞層（「バフィーコート」）；グラジエント１.０７７と１.１１９との界面の赤血球系前駆細胞を含む有核赤血球細胞層；および無核赤血球ペレット。有核赤血球層を取り、赤血球系前駆細胞が豊富化された試料を得ることができる。さらに、実施例１に記載のごとく、ヒストパーク１０７７および１１１９を連続的に用いて胎児細胞、例えば、胎児赤血球系前駆細胞が豊富化された試料を得ることができる。単一または２層密度勾配遠心分離を行う場合、細胞層は常に分離していて同定可能であるとは限らない。それゆえ、数個の異なる細胞層を取り、胎児細胞、例えば赤血球系前駆細胞が正しく選択されたことを確認し、かつ比較目的のために、細胞増殖因子、例えば赤血球系細胞増殖因子、例えばエリスロポエチンを含有する培地で別々に培養してもよい(すなわち、他の細胞層が対照として役立ち得る)。無核細胞および／または他の細胞タイプを母親の血液試料から除去する他の方法、あるいは赤血球系前駆細胞を豊富化させる他の方法を用いて、胎児細胞、例えば、胎児赤血球系前駆細胞が豊富化された試料を得ることもできる。例えば、特定の細胞タイプ上に存在する細胞表面マーカーに特異的な抗体を用いて母親の血液試料中の特定の細胞タイプを除去または豊富化することができる。選択された胎児細胞、例えば胎児赤血球系前駆細胞に特異的な抗体を用いて、例えば、フローサイトメトリー、パンニング（panning）または免疫磁気分離により赤血球系前駆細胞を選択することができる（積極的な細胞の選択）。別法として、選択された胎児細胞以外の細胞タイプ上に存在するマーカーに特異的な抗体を用いて、例えば、フローサイトメトリー、パンニング（panning）または免疫磁気分離により（消極的な細胞の選択）、あるい補体により媒介される抗体に結合した細胞の溶解により、特定の細胞タイプを母親の血液試料から除去することができる。細胞増殖因子、例えば、赤血球系細胞増殖因子、例えばエリスロポエチンを含有する培地中での、母親の血液試料、有核細胞が豊富化された試料または胎児細胞、例えば赤血球系前駆細胞が豊富化された試料の培養により、好ましくは、胎児細胞のコロニーが得られるが（例えば、末梢血中の材料赤血球系前駆細胞の不足およびエリスロポエチンに対する胎児赤血球系前駆細胞の高感受性のため）、赤血球系細胞または細胞コロニーを形態学的に胎児由来であると同定することはできない。それゆえ、胎児細胞を胎児由来であると同定するために、本発明方法は、さらに、胎児細胞上またはその中の胎児細胞マーカーを検出することからなっていてもよい。用語「胎児細胞マーカー」は、胎児細胞を母親の細胞から識別するのに用いることのできる、胎児細胞上またはその中に存在する細胞表面、細胞質または核の構造もしくは分子を包含する。用語「胎児細胞マーカーを検出」は、胎児細胞マーカーそれ自体の検出または胎児細胞マーカーに結合する別の分子の検出を包含する。例えば、細胞またはその一部を胎児細胞マーカーに対して反応する抗体と接触させることにより、胎児細胞マーカーを胎児細胞上またはその中において検出することができる。抗体を検出可能な物質で標識することができ、あるいは別の分子、例えば、第１の抗体に対して反応する、検出可能な物質で標識された第２の抗体とさらに反応させることができる。適当な検出可能物質は、酵素、補欠分子族、蛍光物質、発光物質および放射性物質を包含する。適当な酵素の例は、セイヨウワサビ・ペルオキシダーゼ、ビオチン、アルカリ性ホスファターゼ、β−ガラクトシダーゼ、またはアセチルコリンエステラーゼを包含し；適当な酵素／補欠分子族複合体の例はストレプトアビジンとビオチンを包含し；適当な蛍光物質の例は、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセインイソチオシアネート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミンフルオレセイン、ダンシルクロリドまたはフィコエリスリンを包含し；発光物質の例はルミノールを包含し；適当な放射性物質の例は、¹² ⁵ Ｉ、¹³¹Ｉ、³⁵Ｓまたは³Ｈを包含する。標準的な免疫組織化学的方法を用い、胎児細胞マーカーに対する抗体を用いて胎児細胞マーカー発現を検出することができる。母親の細胞と比較すると胎児細胞上またはその中に優先的にあるいは専ら発現される蛋白を胎児細胞マーカーとして用いることができ、該蛋白に対する抗体を用いて検出することができる。胎児細胞マーカーとして用いることのできる適当な蛋白は、胎児ヘモグロビンおよび胎児ヒストン蛋白Ｈ⁰１を包含する。胎児ヘモグロビンは細胞質蛋白であるが、胎児Ｈ⁰１は核蛋白である。さらに、胎児赤血球系細胞上またはその中に優先的にあるいは専ら発現される抗原決定基を胎児細胞マーカーとして用いることができる。胎児細胞マーカーとして用いることのできる適当な抗原決定基の例はｉ抗原決定基である。ｉ抗原決定基は、胎児赤血球系細胞上に存在する分枝していない膜炭水化物である。一般的には、成人の赤血球はｉを発現しないが、むしろ分枝炭水化物であるＩ抗原決定基を発現する。胎児細胞マーカーの他の例は、母親の細胞と比較して胎児細胞に独自の核酸配列を包含する。男性の胎児由来の胎児細胞の場合には独自の核酸配列の例はＹ染色体ＤＮＡ、および親の多型性またはＨＬＡ抗原アリールのごとき多型性アリールを含むＤＮＡを包含する。胎児細胞の培養および単離後、本発明方法は、さらに、単離胎児細胞、例えば胎児赤血球系細胞の胎児核酸中の対象核酸配列を検出することからなる。用語「対象核酸配列」は、ＤＮＡ、例えば染色体ＤＮＡ、または染色体ＤＮＡもしくは染色体ＤＮＡから増幅されたものに含まれる特定の遺伝子フラグメント、並びにＲＮＡ、例えばｍＲＮＡもしくは核ＲＮＡを包含する。用語「胎児核酸」は、胎児ＤＮＡおよびＲＮＡ、例えば、胎児染色体ＤＮＡおよび胎児ｍＲＮＡを包含する。胎児細胞を胎児由来であると同定するために（すなわち、胎児核酸は胎児細胞マーカーでありうる）、さらに胎児の性の決定のごとき分析、胎児における遺伝疾患の検出および胎児における染色体異常の検出のために、胎児細胞中の核酸における対象核酸の検出を用いることができる。診断または他の目的のために、本明細書記載のごとく培養され単離された胎児細胞中の胎児核酸を対象核酸の存在に関して分析することができる。細胞中に存在する胎児核酸を検出に利用できるように培養された胎児細胞を処理することができる。例えば、対象核酸を酵素的に増幅することにより、および／または標識核酸プローブを対象核酸配列にハイブリダイズさせることにより、対象核酸配列を利用可能な胎児核酸において検出することができる。対象核酸配列を検出するのに用いる標識プローブは、例えば、標識ＤＮＡプローブ、標識ＲＮＡプローブまたは標識オリゴヌクレオチドであってよい。胎児細胞を煮沸してそれらを溶解することにより胎児ＤＮＡを利用可能とし、それにより、例えば胎児ＤＮＡの増幅の前に胎児ＤＮＡを遊離させることができる。例えば、インシトゥ（in situ）ハイブリダイゼーションの前に胎児赤血球系細胞または赤血球系細胞核を顕微鏡スライドに固定することにより、胎児細胞を固体支持体、例えば、顕微鏡スライドに付着させて胎児核酸を利用可能にすることができる。例えば、対象核酸配列に相補的な標識核酸プローブのインシトゥハイブリダイゼーションにより、胎児細胞またはその一部（例えば、核）における胎児核酸を直接検出することができ、あるいは検出の前にポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）のごとき既知増幅方法を用いて胎児核酸を増幅することができる。胎児ＤＮＡ中の対象ＤＮＡ配列を特異的に増幅するＰＣＲ増幅用プライマーを選択する。胎児赤血球系細胞の胎児核酸中の検出されるべき核酸配列を、本明細書では「対象核酸配列」という。１の具体例において、対象核酸配列はＹ染色体ＤＮＡ配列である。用語「Ｙ染色体ＤＮＡ配列」は、繰り返し配列を含むＹ染色体に独自のヌクレオチド配列を包含する。胎児細胞マーカーの検出および胎児の性の決定の両方にＹ染色体ＤＮＡ配列の決定を用いることができる。もう１つの具体例において、対象核酸配列は疾病を引き起こす変異に関連した遺伝子の配列である。用語「疾病を引き起こす変異に関連した遺伝子の配列」は、疾病を引き起こすかまたは疾病に関連した変異を含む可能性のある遺伝子、あるいは疾病を引き起こすかまたは疾病に関連した変異を含む可能性のある遺伝子に結合した遺伝子の全体または一部を含む核酸配列を包含する。すなわち、検出された遺伝子配列または検出された遺伝子配列に結合した遺伝子配列は、変異が存在する場合には、疾病を引き起こすかまたは疾病に関連した変異を含む可能性がある。かかる配列の検出を用いて、胎児が変異により引き起こされる疾病または変異に関連した疾病を有するかどうかを調べることができる。さらにもう１つの具体例において、対象核酸配列は染色体異常を検出する。用語「染色体異常を検出」は、染色体数の変化、染色体欠失、染色体転移および／または染色体交代を検出しうるヌクレオチド配列を包含する。染色体異常を検出しうる対象核酸配列は、例えば、特定の染色体由来の繰り返し配列のごとき特定の染色体の特異的な核酸配列であってよい。染色体異常の検出について試験される好ましい染色体は、染色体１３、１８、２１、ＸおよびＹを包含する。これらの特定の染色体に関して染色体の三染色体性は最も一般的である。標準的方法により染色体異常の検出に適した核酸プローブの調製を行うことができる。例えば、クリンガー・ケイ（Klinger,K.）ら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス（Am.J.Hum.Genet.）第５１巻、５５〜６５頁（１９９２年）参照。１の具体例において、インシトゥハイブリダイゼーションにより胎児細胞の胎児核酸において対象核酸を検出する。インシトゥハイブリダイゼーションを用いて染色体ＤＮＡを検出し、かつ、細胞質ｍＲＮＡを検出することができる。例えば、リヒター，ピー（Lichter,P.）らヒューマン・ジェネティクス（Hum.Genet. ）第８０巻、２２４〜２３４頁（１９８８年）およびシンガー（Singer）らに付与された米国特許第４,８８８,２７８号参照。インシトゥハイブリダイゼーションを実行する場合、胎児細胞を顕微鏡スライドのごとき固体支持体上で分離して胎児核酸が検出に使用可能になるようにする。実施例３により詳しく記載するように、インシトゥハイブリダイゼーションを用いて、例えば、胎児ＤＮＡ中のＹ染色体特異的配列を検出して胎児の性の決定を行うことができる。実施例５により詳しく記載するように、インシトゥハイブリダイゼーションを用いて、三染色体性のごとき染色体異数性、あるいは染色体転移または欠失を包含する胎児における染色体異常を評価することができる。もう１つの具体例において、対象核酸配列の検出の前に胎児ＤＮＡを酵素的に増幅する。実施例４においてより詳しく記載するように、胎児ＤＮＡをＰＣＲにより増幅することができる。増幅を行う場合、胎児赤血球系細胞を煮沸により溶解することができ、次いで、変性およびアニーリングの適当数（例えば、約２４〜６０）のサイクルで胎児ＤＮＡを増幅することができる。対照試料は、偽陽性増幅をモニターするためのＤＮＡ添加しない試験管を包含する。ＰＣＲ条件を正しく改変して、１種よりも多い胎児遺伝子を同時に増幅することができる。「マルチプレックス（multiplex）」として知られるこの方法は、デュシエンの筋ジストロフィー（Duchenne's Muscular Dystrophy）の診断において６セットのプライマーとともに用いられている（チャンバーレイン，ジェイ・エス（Chamberl ain,J.S.）ら、プレナタル・ダイアグノシス（Prenat.Diagnosis）第９巻、３４９〜３５５頁（１９８９年））。増幅を行う場合、得られた増幅生成物は、対象配列（すなわち、その存在が検出および／または定量されるＤＮＡ）および他のＤＮＡ配列からなる増幅された胎児ＤＮＡを含んでいる。既知方法、例えば、ゲル電気泳動を用いて、増幅された胎児対象ＤＮＡ配列および他のＤＮＡ配列を分離することができる。制限エンドヌクレアーゼでの消化、臭化エチジウム染色アガロースゲルの紫外線による可視化、ＤＮＡ配列決定、または標識ＤＮＡプローブ、例えば特異的オリゴヌクレオチドプローブとのハイブリダイゼーション（サイキ,アール・ケイ（Saiki,R.K.）ら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス第４３巻（補）：Ａ３５（１９８８年））のごとき既知方法を用いて、引き続き増幅ＤＮＡの分析を行うことができる。アリール特異的配列の増幅およびそれに対するハイブリダイゼーションは、増幅された「母親の」試料と「胎児の」試料との間に多型性の相違が存在するかどうかを調べることができ、さらに胎児ＤＮＡにおける父親の多型性の検出に基づいて女性の胎児を同定するために該ハイブリダイゼーションを用いることができる。胎児の常染色体性染色体において父親由来のＤＮＡ配列を同定することができる。したがって、本発明方法を用いて、母親の血液から女性胎児細胞、並びに男性胎児細胞を分離し同定することができる。よって、羊水穿刺のごとき他の方法で現在行われているすべての核酸をベースとした診断手順に本発明方法を用いることができる。増幅後、増幅混合物を核酸フラグメントのサイズに基づいて分離することができ、得られたサイズにより分離された胎児核酸を適当な選択核酸プローブまたはプローブ（対象核酸配列に対して十分に相補的であって、使用条件下で胎児核酸中の対象核酸配列にハイブリダイズする核酸）と接触させることができる。一般的には、核酸プローブを標識する（例えば、放射性物質、蛍光発色団または他の検出可能な物質で）。サイズにより分離された胎児核酸および選択核酸プローブを、相補的核酸配列のハイブリダイゼーションが起こるに適した条件下に十分な時間維持し、胎児核酸／核酸プローブ複合体を生じさせた後、既知方法を用いて該複合体の検出を行う。例えば、プローブが標識されている場合、胎児核酸／標識核酸プローブ複合体を検出および／または定量することができる（例えば、オートラジオグラフィー、蛍光標識の検出により）。標準曲線（すなわち、検出される標識量と存在する核酸の量との間の前以て調べられた関係）との比較によって標識された複合体の量（および胎児核酸の量）を決定することができる。次いで、オートラジオグラフィーのごとき既知方法を用いて胎児ＤＮＡ／標識プローブ複合体を検出する。対象核酸および胎児ＤＮＡに相補的な核酸プローブのハイブリダイゼーションの有無を簡単に調べることができ、対象核酸配列を含む胎児ＤＮＡ量を調べることができる。その結果は、母親の血液試料から得られた胎児ＤＮＡの定性的または定量的評価である。疾病を引き起こす変異を有する可能性のある多くの遺伝子に関して、遺伝子中の疾病を引き起こす変異の存在を示す制限部位の多型性を検出するプローブが利用可能である。対象とする疾病に関連した遺伝子に特異的な核酸プローブを用いる胎児ＤＮＡ中のかかる制限部位の多型性の検出は、胎児ＤＮＡが遺伝子中に変異を有し、それゆえ、胎児が疾病を有することを示す。疾病または症状に関連した胎児核酸の存在を、本発明方法により検出および／または定量することができる。例えば、プローブＳｔ１４（オベール,アイ（Obe rle,I.）ら、ニュー・イングランド・ジャーナル・オブ・メディシン（NewEngl. J.Med.）第３１２巻、６８２〜６８６頁（１９８５年））、４９ａ（グエリン, ピー（Guerin,P.）ら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ（Nucleic Acids Res .）第１６巻、７５５９頁（１９８８年））、ＫＭ−１９（ガスパリーニ,ピー（ Gasparini,P.）ら、プレナタル・ダイアグノシス第９巻、３４９〜３５５頁（１９８９年））、またはデュシエン筋ジストロフィー（ＤＭＤ）遺伝子に関する欠失傾向のエキソン（チャンバーレイン,ジェイ・エスら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ第１６巻、１１１４１〜１１１５６頁（１９８８年））に由来する配列をプローブとして用いる。Ｓｔ１４は、母親のＤＮＡから女性胎児のＤＮＡを識別するのに用いることのできるＸ染色体のロングアームから単離された非常の多型性の配列である。それは因子VIII：Ｃに関する遺伝子の近くにマッピングされ、よって、血友病Ａの出産前診断に用いることができる。ＤＭＤ遺伝子における６種の最も通常に欠失したエキソンに隣接した配列に対応するプライマーであって、ＰＣＲによりうまくＤＭＤの診断に用いられているプライマーを用いることもできる（チャンバーレイン,ジェイ・エスら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ第１６巻、１１１４１〜１１１５６頁（１９８８年））。本発明方法により診断することのできる他の症状は、嚢胞性線維症（ニュートン，シー・アール（Newton,C.R.）ら、ランセット（Lancet）第２巻、１４８１〜１４８３頁（１９８９年））；β−地中海貧血（カイ,エス−ピー（Cai,S-P.）ら、ブラッド（Blood）第７３巻：３７２〜３７４頁（１９８９年）；カイ,エス−ピーら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス（Am.J.Hum.Genet. ）第４５巻：１１２〜１１４頁（１９８９年）；サイキ,アール・ケイ（Saiki,R .K.）ら、ニュー・イングランド・ジャーナル・オブ・メディシン第３１９巻、５３７〜５４１頁（１９８８年））、鎌状細胞貧血（サイキ,アール・ケイら、ニュー・イングランド・ジャーナル・オブ・メディシン第３１９巻、５３７〜５４１頁（１９８８年））、フェニルケトン尿症（ディレラ,アイ・ジー（DiLella,A.G.）ら、ランセット第１巻、４９７〜４９９頁（１９８８年））。それぞれの症状の評価のために本発明方法において使用する適当なプローブ（または複数のプローブ）が利用できる（例えば、ＰＣＴ出願ＷＯ９１／０７６６０参照）。もう１つの具体例において、本発明は、妊婦からの末梢血試料からの中期の胎児赤血球系細胞の単離方法に関する。該方法は、妊婦から末梢血試料を得て、赤血球系細胞増殖因子、例えばエリスロポエチンを含有する培地において末梢血試料中の細胞を培養し、分裂中の細胞が細胞周期を経ることを抑制するかまたは細胞の増殖を同調させる薬剤に培養細胞を曝露し、中期の胎児赤血球系細胞を単離することを包含する。分裂中の細胞が細胞周期を経ることを抑制するかまたは細胞の増殖を同調させる薬剤は当該分野において知られており、コルセミド、コルヒチンおよびビンブラスチン塩を包含する。細胞の増殖を同調させる薬剤は当該分野において知られており、ブロモデオキシウリジン、フルオロデオキシウリジンおよび臭化エチジウムを包含する。細胞培養後、標準的方法により中期のスプレッドを調製することができ、さらなる分析に使用することができる（実施例２参照）。もう１つの具体例において、本発明は、経産妊婦からの末梢血試料中の現在の妊娠に由来する胎児細胞の優先的単離方法を提供する。該方法は、経産妊婦から末梢血試料を得て、赤血球系細胞増殖因子、例えば、エリスロポエチンを含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し、次いで、胎児赤血球系細胞を単離して現在の妊娠に由来する胎児細胞を単離することからなる。用語「経産妊婦」は、その現在の妊娠のほかに１回またはそれ以上の妊娠をした妊婦いう。この方法は、赤血球系前駆細胞の短い寿命に基づいている（ベック,ダブリュ・エス（Beck, W.S.）、ヘマトロジー（Hematology）、第５版、ＭＩＴプレス（MIT Press）：マサチューセッツ州ケンブリッジ（１９９１年）参照）。赤血球系前駆細胞の寿命赤血球系前駆細胞の寿命は約３カ月であるので、経産妊婦の末梢血試料から得た培養胎児赤血球系細胞は、以前の胎児由来ではなく現在の胎児由来であろう。このことは、母親の血液試料中に存在しうる別の長寿命の胎児細胞タイプの単離に優る、胎児赤血球系細胞を単離することの利点である。例えば、胎児リンパ球も母親の末梢血中に存在するが、末梢血中でリンパ球は数年程度生存しうる（シュローダー（Schroder）ら、トランスプランテイション（Transplantation）第１７巻、３４６頁（１９７４年）；チャランフィ（Ciaranfi）ら、シュバイツァーリッシェ・メディツィニッシェ・ボッヘンシュリフト（Schweizerische Medizin ische Wochenschrift）第１０７巻、１３４〜１３８頁（１９７７年））。よって、経産妊婦の母親の血液試料中に検出された胎児リンパ球は、現在の胎児由来または以前の胎児由来のいずれかであり、性別の同定および／または現在の胎児の診断を困難なものにする。さらに本発明を下記実施例により説明するが、下記実施例は限定的なものと解してはならない。本願全体にわたり引用されているすべての参考文献および公表された特許ならびに特許出願の内容を、参照により本明細書に記載されているものとみなす。実施例１：妊婦から得た末梢血試料由来の赤血球系前駆細胞の培養この実施例において、妊婦から得た末梢血試料由来の赤血球系前駆細胞を培養した。まず、末梢血試料を密度勾配遠心分離（単層または２層）に供して末梢血中に豊富にある無核赤血球細胞の大部分を除去し、さらに試料中の母親に由来する多くの有核細胞タイプを除去しつつ、培養段階に先立って赤血球系前駆細胞を豊富化させた。これにより、もとの末梢血試料中に存在するよりもはるかに少ない全細胞数での培養が可能となった。妊娠ソノグラム（超音波）および遺伝学的羊水穿刺を行うというインフォームド・コンセントを行って妊婦から静脈穿刺により母親の末梢血試料を得た。各場合において、羊水穿刺を行う前に母親の血液試料を得た。抗凝集剤としてアシッド・シトレート・デキストロース（Acid Citrate Dextrose）溶液Ａ（ＡＣＤ− Ａ）の入った２本のバクテイナー（Vacutainer）チューブに分注された１８ｍｌの全末梢血を、各妊婦から得た。試料を得た翌日に速達便により母親の末梢血試料を得た。数回転倒させて試料の混合を確実にし、３つの試料それぞれから５ｍｌの希釈されていない血液を得て、後で説明するポリモルフプレプ（Polymo rphprep）グラジエントの上部に重層した。同体積のリン酸緩衝化セイラインで残りの血液を希釈し、希釈血液のうち５ｍｌをフィコール−パーク（Ficoll-Paq ue）グラジエント、ヒストパーク（Histopaque）２層グラジエント、およびニコデンズ（Nicodenz）２層グラジエントの上部に重層した。密度勾配に沿った赤血球系前駆細胞および有核赤血球の典型的な相対的分配を説明するダイヤグラムを図１に示す。フィコール−バークグラジエント１５ｍｌの円錐形遠心チューブ中のフィコール−プラーク（１.０７７ｇ／ｍｌ；スウェーデン、ウプサラ（Uppsala）のファルマシア（Pharmacia）製）３. ５ｍｌに５ｍｌの希釈末梢血を重層した。卓上遠心機でチューブを室温で４００ｘｇで３０分遠心した。血漿とフィコール−パークとの界面のバフィーコート（ buffy coat）層（Ｆ１という）を抜き取り、濯ぎ、次いで、下記のごとく培養した。ヒストパーク２層グラジエント１５ｍｌのチューブ中のヒストパーク１.１１９ｇ／ｍｌ（シグマ・ケミカル（Sigma Chemical）社製）２ｍｌにヒストパーク１.０７７ｇ／ｍｌ（シグマケミカル社製）１.５ｍｌを注意深く重層した。次いで、希釈血液５ｍｌをヒストパークの上部に重層した。卓上遠心機でチューブを室温で４００ｘｇで３０分遠心した。パスツールピペットを用いて、血漿と１.０７７ｇ／ｍｌグラジエントとの界面のバフィーコート（Ｈ１という）を集めた。有核赤血球を含有する可能性が最も高いと考えられる領域を集めるために、１.０７７／１.１１９界面から下方の赤血球ペレットまでの全１.１１９層（Ｈ２という）をパスツールピペットで吸引した。これら２つの細胞フラクションをきれいな試験管に入れ、濯ぎ、次いで、下記のごとく培養した。ポリモルフプレプグラジエント１５ｍｌのチューブ中のポリモルフプレプ１.１１３ｇ／ｍｌ（ニコメドギブコ（NycomedGibco BRL）社製）３.５ｍｌに希釈されていない全血を重層した。卓上遠心機でチューブを室温で５００ｘｇで３０分遠心した。全血試料中の赤血球がポリモルフプレプ媒体と接触したので、それらはデキストラン５００により凝集し、遠心力下でグラジエント中に沈降した。このグラジエント媒体は、高浸透圧環境に入ると赤血球が水分を失う傾向を利用することにより、２種の細胞集団を分離するように設計されている。予想どおり、母親の試料は２つの明確に異なるバンドをポリモルフプレプ上に示した。それぞれの血液試料から得た血漿／ポリモルフプレプ界面のバフィーコート（Ｐ１という）をパスツールピペットで吸引し、きれいな試験管に移した。次いで、理論的には有核赤血球および赤血球系前駆細胞を含有している多形核細胞層（Ｐ２という）を別のきれいな試験管に移した。同体積の蒸留水中０.４５％ＮａＣｌを添加して正しい浸透圧に対して細胞を回復させた。リン酸緩衝化セイラインで細胞を希釈して１２ｍｌとし、下記のごとく培養した。ニコデンズ２層グラジエントニコデンズ（ギブコ／ＢＲＬ）を粉末状態で得て、２７.６ｇのニコデンズ粉末を、蒸留水中の５ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ,ｐＨ７.５、３ｍＭＫＣｌ、および０.３ｍＭＥＤＴＡからなる緩衝化媒体中で全体積１００ｍｌにまで復元させた。この２７.６％溶液（密度１.１５０ｇ／ｍｌ）をオートクレーブにより滅菌した。０.７５ｇのＮａＣｌを１００ｍｌの上記緩衝化媒体中に混合することにより等張ＮａＣｌ希釈物（密度１.００３ｇ／ｍｌ）を作成した。ＮａＣｌ希釈物を０.２２μｍフィルターで滅菌した。２７.６％ニコデンズ溶液およびＮａＣｌ希釈物を３：２および１：１の割合で希釈して、それぞれ密度１.０９０ｇ／ｍｌおよび１.０７５ｇ／ｍｌの２種の溶液を得た。１５ｍｌチューブ中の２ｍｌのニコデンズ１.０９０ｇ／ｍｌに１.５ｍｌのニコデンズ１.０７５ｇ／ｍｌを注意深く重層した。次いで、リン酸緩衝化セイライン中に１：１希釈された血液５ｍｌをニコデンズ１.０７５ｇ／ｍｌの上部に注意深く重層した。卓上遠心機でチューブを室温で１５００ｘｇで３０分遠心した。このグラジエントの組み合わせにより、他のグラジエントによるものよりもずっと拡散した細胞バンドが得られた。細胞層は多数の単核赤血球が混入していた。パスツールピペットを用いて、血漿と１.０７５ｇ／ｍｌグラジエントとの界面の細胞層（Ｎ１という）を集めた。１.０９０層の大部分（Ｎ２という）をパスツールピペットで集めた。非常に多くの細胞がこの層に存在していたので、それら全部を用いることはなかった。これらの細胞フラクションをきれいな試験管に入れた。培地の調製使用基本培地は、イスカブの改変ダルベッコ培地（Iscove's Modified Dulbec co's Medium）（ＩＭＤＭ；シグマ・ケミカル社製）中の１.１％メチルセルロース（４０００センチポアズ；シグマ・ケミカル社製）、３０％ウシ胎児血清（シグマ・ケミカル社製）、０.１ｍＭ２−メルカプトエタノール（シグマ・ケミカル社製）、および１％ウシ・血清アルブミン（ＢＳＡ，フラクションＶ；シグマ・ケミカル社製）からなっていた。培養物に２ユニット／ｍｌのエリスロポエチン（シグマ・ケミカル社製）を補足して赤血球系細胞の増殖および成熟を促進した。ＩＭＤＭ中３.２％メチルセルロース溶液を調製するために、６.４ｇのメチルセルロースを、１９０ｍｌの滅菌済みＩＭＤＭを含有する１リットルのオートクレーブ瓶中に秤量した。スターラーバーを瓶に入れたまま溶液をオートクレーブした。オートクレーブ後、メチルセルロースは堅いピンク色の栓を瓶中に形成した。メチルセルロースが壊れてスラリーになるまで瓶を激しく振盪した。室温まで冷却するとメチルセルロースは溶液に戻った。１０ｇのＢＳＡを秤量し、スターラープレート上の小型ビーカー中の約６０ｍｌの蒸留水にゆっくりと添加することにより最終濃度１０％でｐＨ７.６のＢＳＡを調製した。一方、１０ｇのＮａＨＣＯ₃を蒸留水中に溶解し、定容フラスコ中で最終体積を１００ｍｌとし、０.２２μｍフィルターでフィルター滅菌することにより１０％ＮａＨＣＯ₃を調製した。ｐＨメーターで連続的に監視しながらＢＳＡ溶液を１０％ＮａＨＣＯ₃でｐＨ７.６に合わせた。この溶液を定容フラスコ中に注ぎ、蒸留水で１００ｍｌとし、０.４５μｍフィルターで、次いで、０.２２μｍフィルターでフィルター滅菌した。毒物フード内で１０μｌの２−メルカプトエタノールを１ｍｌのＩＭＤＭに添加した。滅菌組織培養フード内で、この溶液０.７５ｍｌを４９.５ｍｌのＩＭＤＭＤに添加し、混合し、０.２２μｍフィルターでフィルター滅菌した。オートクレーブされた瓶の３.２％メチルセルロース／ＩＭＤＭに、ペニシラン−ストレプトマイシン抗生物質（５０００ユニット／ｍｌ、５０００μｇ／ｍｌ；ギブコ／ＢＲＬ）５ｍｌ、Ｌ−グルタミン（２００ｍＭ；ギブコ／ＢＲＬ）５ｍｌ、滅菌熱失活ウシ・胎児血清（シグマ・ケミカル社製）１８０ｍｌ、１０％ＢＳＡ（ｐＨ７.６）６０ｍｌ、および濾過済みエタノール／ＩＭＤＭ４０ｍｌを添加した。瓶内容物を完全に混合し、培地を１５ｍｌ試験管中に２.３ｍｌずつ分注した。必要になるまで試験管を−２０℃で凍結保存した。細胞のプレーティングおよび培養２層ヒストパークグエアジエント（１.１１９ｇ／ｍｌ上に１.０７７ｇ／ｍｌ）またはポリモルフプレプグラジエントで密度勾配遠心により全血試料を分離した後、所望細胞フラクションをリン酸緩衝化セイラインで２回すすぎ、ＩＭＤＭで１回すすぎ、ＩＭＤＭ中に再懸濁して全体積０.５ｍｌとした。この細胞懸濁液０.５ｍｌを、３０ユニット／ｍｌエリスロポエチン０.２ｍｌ（最終濃度２ユニット／ｍｌとなる）とともに１５ｍｌ円錐形遠心チューブ中のメチルセルロース培地２.３ｍｌに添加した。チューブを激しくボルテックス撹拌して成分の完全混合を確実にし、同時に、コロニー形成と紛らわしいすべての細胞クラスターを破壊した。最終生成物は濃密粘性シロップであった。細胞含有培地１.５ｍｌを、１００ｍｍファルコン（F alcon）プラスチックディッシュ（ベクトン・ディクソン（Becton Dickson）社製、ニュージャージー州リンカーンパーク）中のカバーのある２個の３５ｍｍファルコンプラスチック組織培養ディッシュ（ベクトン・ディクソン）のそれぞれに入れた。カバーのない第３の３５ｍｍファルコンディッシュを該１００ｍｍファルコンディッシュ中に置き、２ｍｌの滅菌蒸留水で部分的に満たして湿度を提供した。１００ｍｌファルコンディッシュにカバーをして、ディッシュ全体を、５％ＣＯ₂を満たした３７℃のインキュベーションに移した。より成熟したＣＦＵ−Ｅ前駆細胞は１５０個までの細胞からなるはっきりとしたコロニーを４日以内に形成し、８日目までには培養物中の実質的にすべてのこれらの成熟細胞は目に見えるヘモグロビンを含有していた。ＢＦＵ−Ｅが高レベルの分化を達成するまではエリスロポエチン受容体は発現されないので、ＢＦＵ−Ｅは培養物中においてすぐには増殖を開始しなかった。培養８〜１０日目までには、大型の分散したＢＦＵ−Ｅコロニーが見え、１４日目までにはこれらのコロニーは強力にヘモグロビン化した。ＣＦＵ−ＥおよびＢＦＵ−Ｅコロニーの典型例を、それぞれ図２および３に示す（図示したコロニーは胎児肝臓から単離された）。表１は、妊婦からの血液試料の各細胞フラクションを培養することにより得られたＢＦＵ−ＥならびにＣＦＵ−Ｅコロニーの数をまとめる。フィコール−プラーク（Ｆ）、２層・ヒストバーク（Ｈ）、ポリモルフプレプ（Ｐ）、およびニコデンズ（Ｎ）密度勾配を用いて試料を分画した。培養物をぼんやりとさせる多数の赤血球の存在のため、フラクションＮ２からの細胞を観察し、あるいは計数することはできなかった。実施例２：培養赤血球系細胞コロニーの単離および中期スプレッドの調製この実施例において、実施例１記載のごとく培養された赤血球系細胞コロニーを単離し、さらなる分析のために顕微鏡スライド上に赤血球系細胞の中期スプレッドを調製するために用いた。スライド調製ラジェンドラ（Rajendra）ら（ヒューマン・ジェネティクス（Human Genetics ）（１９８０年）第５５巻：３６３〜３６６頁）およびデューブ（Dube）ら（キャンサー・ジェネティクス・アンド・サイトジェネティクス（Cancer Genetics and Cytogenetics）（１９８１年）第４巻：１５７〜１６８頁）の基本的方法により、赤血球系細胞コロニーをテフロン裏打ちされたガラス製スライド（セルーライン・アソシエイション・インコーポレイテッド（Cel-Line Assoc.Inc.）,ニューフィールド（Newfield）,ＮＩ）上に直接集めた。通常は、これらの赤血球系細胞は非付着性であるので、まずスライドを０.１％ポリ−Ｌ−リジンで被覆してスライドへの細胞付着を誘導し、収集工程において損失がないようにした。ポリ−Ｌ−リジン処理のために、１００ｍｇのポリ−Ｌ−リジン（シグマ・ケミカル社製）を１０ｍｌの蒸留水に溶解して１％ストック溶液を調製した。それぞれ１ｍｌを使用するまで凍結保存した。０.１％ワーキング溶液を調製するために、１％ストック溶液１００μｌを９００μｌの蒸留水で希釈した。１滴のワーキング溶液を各スライドの５ｍｍの部位にそれぞれ置いた。スライドを横しにて覆いをせずに加湿チャンバー（湿度を提供するための湿ったペーパータオルおよびスライドをペーパータオルに接触させないでおくためのラックを有する密閉プラシチック箱）に入れ、３７℃で２時間インキュベーションした。インキュベーション後、スライドを個々にビーカー中の蒸留水ですすぎ、室温で風乾した。被覆されたスライドを使用準備ができるまで−２０℃で凍結保存した。コロニーの収穫増殖のピークが早いので、ＣＦＵ−Ｅコロニー由来の細胞は２〜６日目に最もよく収集された。この時期を過ぎると、核が突出しているかまたは濃密、緻密になっており、分析がさらに困難となった。非常な均質化が起こる前の増殖状態の１０日目において、あるいは多数の非分裂性有核赤血球が所望の場合にはその後に、ＢＦＵ−Ｅ由来の細胞を収集することができた。コロニーを、ポリ−Ｌ−リジン被覆スライド上の５ｍｍの部位（スライド１枚あたり４〜６個の部位）にコロニーを集めた。多数のコロニーが培養物中に生じ、１つの部位あたり３個またはそれ以上の小さなコロニーが時々得られる場合を除き、コロニーを１個だけ各部位に置いた。試料間の細胞増殖の相違のため、１試料あたり収集されたコロニー総数は３個ないし３１４個の範囲となった。倒立顕微鏡下でコロニーを同定し、４μｌにセットされた、１０μｌチップを装備したギルソン（Gilson）ピペットマン（レイニン・インストルメント（Rain in Instrument）社製、マサチューセッツ州ウォーバーン（Woburn））で培地から取り出した。ポリ−Ｌ−リジンスライド上の０.１μｇ／ｍｌコルセミド（ギブコ／ＢＲＬ）を含有する１５μｌのＩＭＤＭ液滴中にピペッティングにより１０〜２０回出し入れすることにより各コロニーを分散させた。スライドを加湿チャンバー中に横にして置き、３７℃で１５分インキュベーションし、次いで、２０μｌの０.０７５ＭＫＣｌ低張溶液を各液滴中に静かに浸透させた。加湿箱中で３７℃でさらに１５分インキュベーション後、３０％３：１メタノール：氷酢酸固定液／７０％０.０７５ＭＫＣｌからなる溶液４０μｌを各部位に静かに添加した。スライドを室温で５〜１０分インキュベーションし、次いで、スライドに付着した細胞をかき乱すことなく過剰の液体を横に取りのけた。スライドを乾燥する前に、新鮮な３：１メタノール：氷酢酸固定液をパスツールピペットから各スライドに滴下し、濡れたスライドに風を当てて細胞のスプレッディング（spreading）およびをフラットニング（flattening）を容易ならしめた。スライドを風乾後、スライドをオプチステインII−Ａ（Optistain IIA）（ガム・レッド（Gam Red）社製、カリフォルニア州カピストラノ（Capistrano））中に５分間浸漬し、次いで、３：１メタノール：氷酢酸固定液中に１０分間浸漬した。スライドをエタノールシリーズで脱水するか、または即座にさらなる分析に使用するか、あるいは研究できるようになるまで−２０℃で凍結保存した。このようにして調製した顕微鏡スライド上の赤血球系細胞を、核酸プローブに対する細胞のハイブリダイゼーション、ライト（Wright's）染色、バンディング（ banding）または保存に用いることができる。細胞含有溶液にコルセミドを添加しないことにより、同じやり方で、中期段階で停止していない赤血球系細胞を顕微鏡スライド上に調製した。実施例３：インシトゥ（in situ）ハイブリダイゼーションによる培養赤血球系細胞中の胎児ＤＮＡの検出この実施例において、蛍光インシトゥハイブリダイゼーション（ＦＩＳＨ）を用いて、培養され単離さた赤血球系前駆細胞中の胎児ＤＮＡを検出した。赤血球系細胞由来のＤＮＡのハイブリダイゼーションを、Ｙ染色体特異的プローブおよびＸ染色体特異的プローブの両方を用いて行った。２つのプローブを異なる蛍光マーカーで標識し、異なる色によりそれらを識別できるようにした。赤血球系細胞由来のＤＮＡにおけるＹ特異的配列は胎児由来でなければならないので、このプローブの赤血球系細胞由来のＤＮＡへのハイブリダイゼーションは胎児起源の細胞のインジケーターとして用いられる。蛍光インシトゥハイブリダイゼーション赤血球系前駆細胞を実施例１のごとく培養し、実施例２のごとくコロニーを単離し、顕微鏡スライド上に置いた。Ｘ染色体のセントロメア周辺の繰り返し配列を含むコスミド由来のＸ染色体特異的プローブおよび反復配列を含むコスミドｐＤＰ９７由来のＹ特異的プローブを用いてＦＩＳＨを行った。該プローブは、クリンガー（Klinger）ら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス（Am.J.Hum.Genet.）第５１巻、５５〜６５頁（１９９２年）においてさらに詳細に記載されている。Ｘ特異的プローブをビオチンで標識したが、Ｙ特異的プローブをジゴキシゲニンで標識した。ビオチン化Ｘ染色体プローブを２. ５ｎｇ／μｌの濃度で使用し、ジゴキシゲニン標識Ｙ染色体プローブを５ｎｇ／ μｌの濃度で使用した。用いたハイブリダイゼーション、洗浄、および検出のプロトコールは、クリンガーら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス第５１巻、５５〜６５頁（１９９２年）の変法であり、以下のごとし。ハイブリダイゼーション直前に、７０％−８０％−９０％−１００％エタノールシリーズ（１分浸漬、次いで、１分風乾）によりスライドを脱水した。８μｇ／μｌの超音波処理したサケ・精子ＤＮＡ（シグマ・ケミカル社製）および２μｇ／μｌのヒト・Ｃｏｔ−１ＤＮＡ（ギブコ／ＢＲＬ）を含有する５０％ホルムアミド／１０％デキストラン硫酸／６ＸＳＳＣ（標準クエン酸ナトリウム）中にＸおよびＹ両染色体に対するプローブＤＮＡを懸濁した。２．５μｌのプローブカクテル液滴をスライドの５ｍｍの部位に添加し、ガラスカバースリップをかぶせた。カバースリップをスライドに密封固定しなかった。スライドを８０℃のスライドウォーマー上に５〜６分置くことにより、スライドガラス上のプローブおよび標的核ＤＮＡを同時に変性させた。スライドを加湿箱中、３７℃で一晩インキュベーションした。翌日、カバースリップを取り、スライドを、４２℃において５０％ホルムアミド／２ＸＳＳＣ（ｐＨ７.０）で１０分間、１回洗浄し、６０℃において０.１ＸＳＳＣで１０分間、１回洗浄した。４２℃において、３％ＢＳＡ／４ＸＳＳＣ／０.１％ツイン２０(ポリオキシエチレン−ソルビタンモノラウレート；シグマ・ケミカル社製）中、５分間のブロッキング工程後、μｇ／ｍｌの抗ジゴキシゲニンフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）抗体（ジゴキシゲニンを認識し、緑色蛍光を発する）（ベーリンガー・マンハイム（Boehringer Mannhei m）社製、インディアナ州（ＩＮ）、インディアナポリス(Indianapolis)）および２μｇ／ｍｌのＣｙ−３ストレプトアビジン（ビオチン標識プローブに強固に結合し、赤色蛍光を発する）（ジャクソン・イムノリサーチ・ラボラトリーズ・インコーポレイテッド（Jackson ImmunoResearch Labs,Inc.）、ペンシルベニア州ウェスト・グローブ（West Grove））を含有する１％ＢＳＡ／４ＸＳＳＣ中、３７℃で１５分インキュベーションすることによりスライド上の核にハイブリダイゼーションした標識プローブを検出した。次いで、スライドを、４２℃において、４ＸＳＳＣ／０.１％ツイン−２０で１０分間、１回洗浄して除去しなければ偽のシグナルバックグラウンドを生じる過剰の未結合フルオロクロームを除去した。２.３３％ＤＡＢＣＯアンチフェード（１,４−ジアザビシクロ［２.２.２］オクタン；シグマ・ケミカル社製）、１００ｍＭＴｒｉｓｐＨ８.０、および０.１μｇ／ｍｌＤＡＰＩ（４,６−ジアミノ−２−フェニル−インドール；シグマ・ケミカル社製）を含有する、スライド上の９０％グリセロールの薄層の上にカバースリップを置いた。フルオロクロームであるＤＡＰＩは、インタクトなＤＮＡの小さな溝のＡＴ豊富領域に結合した場合、紫外光下で青色蛍光を発し、それゆえ、核対比染色剤として有用である（シュバイツァー（Schweizer）、アムブローズ（Ambrose）およびアンドルル（Andrle）、１９７８年）。適当な蛍光フィルター（オメガ・オプチカル・インコーポレイテッド（Omega Optical In c.）、ブラットルボロ（Brattleboro）、ＶＴ）を装備したツァイス・アキシオプラン（Zeiss Axioplan）エピ蛍光顕微鏡（カール・ツァイス,インコーポレイテッド（Carl Zeiss,Inc.））で４０倍および１００倍の油浸レンズを用いてスライドを観察した。ＤＡＰＩ蛍光に使用するフィルターは３６５ｎｍ励起フィルター、４１０ｎｍ二色フィルター、および４２０ＬＰｎｍエミッションフィルターであり；ＦＩＴＣ用には、４８５／２０ｎｍ励起フィルター、５１０ｎｍ二色フィルター、および５２０〜５６０ｎｍエミッションフィルターを用い；Ｃｙ −３蛍光用には、５１５〜５６０ｎｍ励起フィルター、５８０ｎｍ二色フィルター、および５９０ＬＰｎｍエミッションフィルターを用いた。コダック・ゴールド４００フィルムを用い、１００倍油浸対物レンズ、顕微鏡に直接固定された３５ｍｍカメラを用いてハイブリダイゼーションした核を写真にとった。母親の血液試料の分析全部で３７個の末梢血試料を、同意を得た妊婦から、妊娠１０５／７ないし２２週の間において採取した。２層ヒストパーク１.０７７／１.１１９ｇ／ｍｌ密度勾配（２１個の試料）またはポリモルフプレプグラジエント（１４個の試料）のいずれかを用いて細胞を全血から分画した。２つの試料（試料１１および１２）を、２層ヒストパーク、ポリモルフプレプ、フィコールーパークおよび２層ニコデンズグラジエントで分画した。分画された細胞を実施例１記載のごとくエリスロポエチンとともに培養した。大部分の場合、Ｈ１またはＰ１およびＨ２またはＰ２細胞フラクションを培養した。ＣＦＵ−Ｅ形態のコロニーがＨ２またはＰ２フラクションから収集されたが、時々、Ｈ１またはＰ１フラクションからも収集された。コロニーを上記のごとくＦＩＳＨにより分析した。細胞遺伝学的分析により決定される胎児の実際の核型を最終欄に示す（４６,ＸＹ＝男性、４６, ＸＸ＝女性）。結果を表２にまとめる。超音波および／または細胞遺伝学的分析により胎児が男性であると証明された妊婦からの２１個の培養試料のうち（一方が男性でもう一方が女性である双生児である試料１７を含む）、７個の試料においてＦＩＳＨによりＸＹコロニーが同定され、男性検出率は３３.３％となった。１つの試料あたりのＸＹコロニー数は１ないし８個であった（これらの場合については、分析されたコロニー総数の２.１％ないし３３.３％）。細胞遺伝学的分析により実際に女性の胎児を有している１６人の妊婦からは（一方が男性でもう一方が女性である双生児である試料１７を含まず）、ＸＹコロニーは検出されず、偽陽性率は０％であった。分析した３７人の妊婦の妊娠期間は１０５／７週ないし２２週の範囲であった。１０５／７週の試料１は、分析した男性の胎児を有する最も初期の妊娠であり、１２０個のコロニーのうち４個において男性細胞を示した。試料から男性コロニーが培養された最もおそい妊娠期間は１７週であった（試料１８）。表３は、血液試料が得られた妊娠期間（週）を、培養コロニーが得られたグラジエントフラクション、収集前に細胞が培養された期間（日）、およびＦＩＳＨにより男性細胞を示した収集コロニーの総数とそのパーセント値と関連づける。実施例４：培養赤血球系前駆細胞における遺伝子配列を増幅するためのポリメラーゼ連鎖反応の使用この実施例において、母親の末梢血由来の培養胎児赤血球系前駆細胞中に存在するＹ特異的ＤＮＡ配列を増幅するために、ポリメラーゼ連鎖反応を用いた。１０⁶コピーの標的遺伝子配列を作る能力のあるポリメラーゼ連鎖反応、あるいはＰＣＲを用いて、培養赤血球系前駆細胞中に存在する遺伝子配列を増幅する。胎児の性別の決定のために、Ｙ染色体上に存在する繰り返し配列に特異的なＰＣＲプライマーを用いる。まれに存在する男性胎児細胞から、より強力な増幅シグナルを生じるという理由で、繰り返し配列を選択する。プローブＹ４１１（マサチューセッツ州ボストンのチルドレンズ・ホスピタル（Children's Hospital）のウルリヒ・ミュラー（Ulrich Muller）博士により提供された）によって包含されるＹ染色体の短アームの領域にハイブリダイゼーションするプライマーを使用する。Ｙ４１１はＹ１５６（ミュラー,ユー（Muller,U.）ら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ（Nucleic Acids Res.）、第１４巻、１３２５〜１３２９頁（１９８６年））と同一であり、１０〜６０回反復されており、サザンブロットにおいて絶対的にＹ特異的である。Ｙ染色体特異的プローブＹ４１１を用いて検出可能な２２２塩基対（ｂｐ）の配列を増幅するために設計された２つのＹ４１１領域特異的プライマー、プライマー４１１−０１および４１１−０３を用いる。該プライマー配列は、ビアンキ,ディー・ダブリュ(Bianchi,D.W.)ら、プロシーディングス・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシズ・ユーエスエイ、第８７巻、３２７９〜３２８３頁（１９９０年）に記載されている。他の適当なプライマーは、バハテル,エス（Wachtel,S.）ら、ヒューマン・リプロダクション（Hum.Reprod.）、第６巻、１４４６〜１４６９頁（１９９１年）に記載されている。細胞試料中の検出可能なＤＮＡの最小量を決定するために、一連の標準化実験を行う。男性および女性の個体からのＤＮＡを１０倍希釈で調製し（１ｐｇ〜１ｍｇ）、反応バッファーを包含する標準的試薬を用い、パーキン−エルマーＤＮＡサーマルサイクラー（Perkin-Elmer DNA Thermal Cycler）によるジーンアンプキット（GeneAmpkit）（パーキン−エルマー・シタスのカタログ番号Ｎ８０１−００５５）において増幅する。測定値を得て、男性ＤＮＡについての試料のエアロゾルコンタミネーションを防止する。滅菌条件下で、手袋をはめて、交換可能ピペットを用いてすべてのＰＣＲを行った。すべての試薬を滅菌的方法で調製し、ＰＣＲ前に、標的配列中の１の消化部位を有する制限エンドヌクレアーゼとともに一晩インキュベーションする。これらの予防措置は、ＤＮＡを用いずにすべての試薬を用いて対照実験を行った場合に、偽陽性増幅の有意な減少および実質的な不存在を提供する。増幅サイクル数は１８ないし３０の間で変更される。各増幅サイクルは、９４℃１分、６０℃２分、次いで、７２℃３分からなり、最後のサイクルにおいては１０分の鎖伸長を伴う。増幅されたＤＮＡ試料をアガロースゲル電気泳動し、ナイロンフィルターに移し、次いで、³²Ｐ標識Ｙ４１１プローブとハイブリダイゼーションさせる。実施例１のごとく赤血球系前駆細胞を培養し、単離する。増幅の前に、細胞を煮沸により溶解し、それにより赤血球系細胞ＤＮＡが増幅に使用可能となる。細胞が男性の妊娠胎児に由来することのデモンストレーションとして、プローブＹ４１１中の２２２ｂｐの配列に関して赤血球系細胞ＤＮＡを増幅する。使用した上記条件は、最小１００ｐｇの胎児ＤＮＡ、または１５個の細胞の等価物を検出することを可能にする。ＰＣＲに使用するサイクル数を増加させることにより感度限界を改善することができる。さらに偽陽性増幅を減少させ、アガロースゲル上で単一細胞レベルでの胎児ＤＮＡの検出を可能にするためには、Ｙ染色体の長アームに特異的な配列の単一コピーに由来するプライマー、ＰＹ４９ａ（グエリン,ピー（Guerin,P.）ら、ヌクレイック・アシッズ・リサーチ、第１６巻、７７５９頁（１９８８年））を用いてＰＣＲを行う。実施例５：母親の血液由来の培養赤血球系前駆細胞における染色体異常の検出この実施例において、母親の血液由来の培養胎児赤血球系前駆細胞について、染色体特異的プローブのセットを用いるインシトゥハイブリダイゼーションを行って胎児細胞中の染色体異常を検出する。ノイズに対する良好なシグナル比および蛍光シグナルの良好な空間的変化を提供する特定の染色体に対するＤＮＡプローブのセットをインシトゥハイブリダイゼーションに用いる。特別なプローブのセットを、しばしばライブボーン（liveborn）異数体として見られる５個の染色体（染色体１３、１８、２１、Ｘ、およびＹ）用に開発した。染色体１用プローブを対照として使用する。プローブの構築において、一般的方法は、多くの遺伝学的ならびに物理学的方法によって所望染色体にマッピングされる出発クローンを同定し、次いで、そのクローンを用いて、さらにハイブリダイゼーションプローブとして用いられる合致コスミド「整列群」を同定することである。染色体２１用プローブセットは、８０ｋｂの重複していないＤＮＡを含む３つのコスミド整列群である。染色体１８用プローブセットは、１０９ｋｂの重複していないＤＮＡを含む３つのコスミド整列群である。染色体１３用プローブセットは、約９７ｋｂの重複していないＤＮＡを含む３つのコスミド整列群である。Ｘ染色体用プローブはセントロメア周辺の繰り返し配列を含むコスミドである。Ｙ染色体用プローブはｐＤＰ９７であり、反復配列のクローンである（ｐＵＣ−１３のＥｃｏＲＩ部位中にサブクローン化されたコスミドＹ９７由来の５.３ｋｂのＥｃｏＲＩＹフラグメント）。すべてのプローブは、クリンガーら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス、第５１巻、５５〜６５頁（１９９２年）にさらに詳細に記載されている。胎児における染色体異常を診断するために、実施例１に記載のごとく赤血球系前駆細胞を母親の血液から得て培養し、上記のごとき染色体特異的プローブを用いてインシトゥハイブリダイゼーションを行うことにより染色体異常を評価する。インシトゥハイブリダイゼーションを、抑圧条件下（クレマー（Cremer）ら、ヒューマン・ジェネティクス（Human Genet.）、第８０巻、３２５〜２４６頁（１９８８年）；リヒター（Lichter）ら、ヒューマン・ジェネティクス、第８０巻、２２４〜２３４頁）にて、実施例３およびクリンガーら、アメリカン・ジャーナル・オブ・ヒューマン・ジェネティクス、第５１巻、５５〜６５頁（１９９２年）に記載のごとく行う。高コピー数の繰り返し配列のハイブリダイゼーションを、全ゲノムヒト・ＤＮＡの包含により抑圧し、染色体特異性を中期スプレッドへのハイブリダイゼーションにより証明する。プローブをビオチン− ＵＴＰで標識し、抑圧条件下でハイブリダイゼーションさせ、次いで、結合したストレプトアビジン−ＦＩＴＣにより特異的ハイブリダイゼーションを検出し、それは顕微鏡分析においてＦＩＴＣイメージ中の単一「小点」として示される。別法として、複数のプローブを用いてインシトゥハイブリダイゼーションを行う場合には、個々のプローブを別個に標識してそれらが蛍光により識別されるようにすることもできる。例えば、１のプローブをビオチン−ＵＴＰで標識し、もう１つのプローブをジゴキシゲニン−ＵＴＰで標識することができる。前者のプローブをＣｙ−３ストレプトアビジンで検出し、後者のプローブを抗ジゴキシゲニン−ＦＩＴＣで検出することができる。プローブは、容易に識別され計数される間期細胞において鋭敏かつ厳密な蛍光シグナルを生じる。胎児赤血球系細胞由来のＤＮＡに対する染色体特異的プローブのハイブリダイゼーションを、正常細胞由来のＤＮＡに対する同じプローブのハイブリダイゼーション（正常対照）と比較することにより、染色体異常の診断を行う。例えば、母親の細胞を正常対照として使用することができる。別法として、前以て確立された正常対照を比較のために使用することもできる。胎児赤血球系細胞における特定の染色体、例えば、通常には染色体２１、１８または１３についての３つの蛍光シグナルを正常対照の同じ染色体についてのわずか２つの蛍光シグナルと比較することにより、ありふれた染色体異常である三染色体性（特定染色体の３つ（２つではなく）のコピーが細胞中に存在する）を診断することができる。十分な数のハイブリダイゼーションした細胞を試験して、細胞１個あたりに存在する蛍光シグナル数について統計学的に有意な測定を行う。均等物もはや日常的実験を行うことなく、当業者は、本明細書記載の発明の特別な具体例に対する多くの均等物を認識するであろうし、あるいは確認することができよう。かかる均等物は下記請求の範囲に包含されると思われる。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者クリンガー，キャサリン・ダブリューアメリカ合衆国01776マサチューセッツ州サッドベリー、ボーディッチ・ロード54 番

Claims

【特許請求の範囲】１．妊婦から得た末梢血試料中の胎児細胞の胎児ＤＮＡにおける対象核酸配列を検出する方法であって、妊婦から末梢血試料を得て；細胞増殖因子を含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し；培地から胎児細胞を単離し；次いで、培地から単離された胎児細胞の胎児ＤＮＡにおける対象核酸配列を検出することからなる方法。２．細胞増殖因子が造血細胞増殖因子である請求項１の方法。３．細胞増殖因子が赤血球系細胞増殖因子である請求項１の方法。４．妊婦から得た末梢血試料中の胎児赤血球系細胞の胎児ＤＮＡにおける対象核酸配列を検出する方法であって、妊婦から末梢血試料を得て；エリスロポエチンを含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し；培地から胎児赤血球系細胞を単離し；次いで、培地から単離された胎児赤血球系細胞の胎児ＤＮＡにおける対象核酸配列を検出することからなる方法。５．対象核酸配列がＹ染色体ＤＮＡ配列である請求項４の方法。６．対象核酸配列が、疾病を引き起こす変異に関連した遺伝子の配列である請求項４の方法。７．対象核酸配列が染色体異常を検出するものである請求項４の方法。８．妊婦から得た末梢血試料から胎児細胞を単離する方法であって、妊婦から末梢血試料を得て；細胞増殖因子を含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し；次いで、培地から胎児細胞を単離することからなる方法。９．細胞増殖因子が造血細胞増殖因子である請求項８の方法。１０．細胞増殖因子が赤血球系細胞増殖因子である請求項８の方法。１１．妊婦から得た末梢血試料から胎児赤血球系細胞を単離する方法であって、妊婦から末梢血試料を得て；エリスロポエチンを含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し；次いで、培地から胎児赤血球系細胞を単離することからなる方法。１２．妊婦から得た末梢血試料中に存在する有核細胞の割合が、有核細胞に富む試料の培養の前に、有核細胞に富む試料を得る豊富化以前の末梢血試料中に存在する有核細胞の割合と比較すると増加させられている請求項１１の方法。１３．有核細胞に富む試料を得る末梢血試料中の有核細胞から無核細胞を分離することにより有核細胞に富む試料が得られる請求項１２の方法。１４．密度勾配遠心分離により無核細胞が有核細胞から分離される請求項１３の方法。１５．フィコールを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項１４の方法。１６．ヒストパークを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項１４の方法。１７．ニコデンズを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項１４の方法。１８．ポリモルフプレプを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項１４の方法。１９．無核細胞の選択的溶解により無核細胞が有核細胞から分離される請求項１３の方法。２０．妊婦から得た末梢血試料中に存在する赤血球系前駆細胞の割合が、赤血球系前駆細胞に富む試料の培養前に、赤血球系前駆細胞に富む試料を得る豊富化前の末梢血試料中に存在する赤血球系前駆細胞の割合と比較すると増加させられている請求項１１の方法。２１．赤血球系前駆細胞に富む試料を得る末梢血試料中の無核細胞および他の有核細胞から赤血球系前駆細胞を分離することにより赤血球系前駆細胞に富む試料が得られる請求項２０の方法。２２．密度勾配遠心分離により、末梢血試料中の無核細胞および他の有核細胞から赤血球系前駆細胞が分離される請求項２１の方法。２３．２層密度勾配を用いて密度勾配遠心分離を行う請求項２２の方法。２４．フィコールを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項２２の方法。２５．ヒストパークを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項２２の方法。２６．ニコデンズを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項２２の方法。２７．ポリモルフプレプを用いて密度勾配遠心分離を行う請求項２２の方法。２８．培地が半固体マトリックス材料を含有している請求項１１の方法。２９．半固体マトリックス材料が、該半固体マトリックス材料へ細胞を付着させるものである請求項２８の方法。３０．半固体材料がメチルセルロースである請求項２９の方法。３１．半固体材料が寒天ゲルまたは血漿クロットである請求項２９の方法。３２．さらに、胎児赤血球系細胞上または胎児赤血球系細胞中の胎児細胞マーカーを検出してそれらを胎児由来であると同定することからなる請求項１１の方法。３３．胎児細胞マーカーが胎児ヘモグロビンである請求項３２の方法。３４．胎児細胞マーカーが胎児ヒストン蛋白Ｈ１⁰である請求項３２の方法。３５．胎児細胞マーカーが胎児抗原決定基である請求項３２の方法。３６．胎児抗原決定基が抗原決定基ｉである請求項３５の方法。３７．１個またはそれ以上の胎児赤血球系細胞のコロニーを培地からピックアップすることにより胎児赤血球系細胞が培地から単離される請求項１１の方法。３８．１個またはそれ以上の赤血球系細胞のコロニーを培地から顕微鏡スライドへと移すことにより、胎児赤血球系細胞がさらに単離される請求項３７の方法。３９．さらに、単離された胎児赤血球系細胞の胎児核酸中の対象核酸配列を検出することからなる請求項１１の方法。４０．対象核酸配列がＹ染色体ＤＮＡ配列である請求項３９の方法。４１．対象核酸配列が、疾病を引き起こす変異に関連した遺伝子の配列である請求項３９の方法。４２．対象核酸配列が染色体異常を検出するものである請求項３９の方法。４３．妊婦から得た末梢血試料から中期の胎児赤血球系細胞を単離する方法であって、妊婦から末梢血試料を得て；エリスロポエチンを含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し；分裂中の細胞が細胞周期を経ることを阻害するかまたは細胞の増殖を同調させる薬剤に細胞を曝露し；次いで、中期の胎児細胞を単離することからなる方法。４４．分裂中の細胞が細胞周期を経ることを阻害する薬剤がコルセミドである請求項４３の方法。４５．分裂中の細胞が細胞周期を経ることを阻害する薬剤がコルヒチンである請求項４３の方法。４６．分裂中の細胞が細胞周期を経ることを阻害する薬剤がビンブラスチン塩である請求項４３の方法。４７．細胞の増殖を同調させる薬剤がブロモデオキシウリジンまたはフルオロデオキシウリジンである請求項４３の方法。４８．細胞の増殖を同調させる薬剤が臭化エチジウムである請求項４３の方法。４９．経産妊婦からの末梢血試料における現在の妊娠に由来する胎児細胞を優先的に単離する方法であって、経産妊婦から末梢血試料を得て；エリスロポエチン含有する培地中で末梢血試料中の細胞を培養し；次いで、胎児赤血球系細胞を単離して現在の妊娠に由来する胎児細胞を優先的に単離することからなる方法。