JPH09512536A - 修飾乳成長因子 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 本発明は、複数の修飾乳成長因子の製造法を提供するものであり、本法は塩基性からほぼ中性の等電点を有する複数の乳成長因子を含む乳製品エキスおよび酸源を用意し、酸源を用いて乳製品エキスを短時間酸性にし、短時間酸性にした乳製品エキスから複数の修飾乳成長因子を単離する工程を含む。また成長促進組成物、細胞培養組成物、および表面の傷、胃腸の傷害、諸疾患あるいは潰瘍の治療用医薬品組成物あるいは獣医学用組成物も提供され、各々は約６．０以上の等電点とおよそ５０００から３０，０００の範囲の分子量を有する複数の修飾乳成長因子を含み、該乳成長因子は短時間の酸性化により修飾される。

Description

【発明の詳細な説明】 修飾乳成長因子 本発明は乳または乳エキス中の成長因子の修飾およびこのような成長因子を乳 または乳製品から抽出する改良法、ならびに細胞培養および医療面での使用法に 関する。 幾つかの医薬、診断用および獣医学用の製品、例えばヒトのワクチン、リンホ カイン、ホルモン、モノクローナル抗体、他の製薬上活性のあるタンパク質製品 、および獣医学用ホルモンを得るために、また研究および開発の目的で、また診 断の目的で動物細胞が培養される。 動物細胞の培養は、それら細胞が正常な状態で、生体内において浸されている 筈の媒質と似せるために処方された塩類、栄養物、脂質前駆物質、核酸前駆物質 、ビタミンおよびアミノ酸を含む限定された等張培地を必要とする。常用される 例として、Eagle's Minimal Essential Medium Dulbecco 改良 Eagle's Minimal Essential Medium（ＤＭＥＭ），Medium １９９，ＲＰＭＩ １６４０培地およ びHam's Ｆ１２ Mediumが挙げられる。しかし、動物細胞はこのような培地では 殆ど増殖せず、血清を同時に添加する必要がある。ウシ胎児血清がしばしば使用 されるのは、これが出生後の動物から得た血清より効果的だからであり、また最 小濃度でしか免疫グロブリンを含まないからである（そうでなけば望ましくない 影響を及ぼすことがありうる）。 ウシ胎児血清の供給量は、妊娠雌牛の屠殺数により制限を受ける。これはまた ロットごとに望ましくない変動があり、毒素を含むこともある。ヒトに使用する ための組換えタンパク質および他の医薬品の究極の生産にこの血清を使うことに ついては特別な関心が取り巻いている。それは血清がヒトに有害なウイルスを含 むこともありそしてウイルスが求める製品を生産する精製プロトコルを通して運 ばれることがあるからである。主にこれらの理由のため、血清の代りに純粋成分 を使用することに向けて多大の努力がなされて来た。このような成分の例は、成 長因子、ホルモン、および細胞付着因子である。都合の悪いことに、培養される 各細胞型の必要条件が異なり、その確立が困難である。ウシ胎児血清を含む培地 で得ることができるのと同等の培養特性あるいは同等の細胞生成物生産量を「無 血清」培地で達成することはしばしば不可能である。 前述したウシ胎児血清の入手量の制約、そのロット毎の変動、結果として生ず る多大のコストならびに「無血清」培地の欠陥のため、細胞培地の潜在的代替品 として他の生物学的流体の発明が促された。下記の選ばれた報文：M.Klagsbrun ，Proc．Natl．Acad．Sci．USA 75，5057(1978)；M.Klagsbrun等、J.Supramol． Struct．１１，３４９（１９７９）；M.Klagsbrun．J.Cell Biol．８４，８０８ （１９８０）；K.S.Strimer等、J.Cell Biol．８８，２９４（１９８１）；A.Se reni等、Cell Biol．Intl，Rep．５，３３９（１９８１）；A.Khar Experientia ３９，５３４（１９８３）；O.Damerdji等、Biotech．Tech．２，２５３（１９ ８８）；O.T.Ramirez 等、Lait ７０，３１３（１９９０）；H.Ichiba等、Biol ．Neonate．６１，４７（１９９２）；R.Pakkanen等、Appl．Microbiol．Biotec hnol．３７，４５１（１９９２）から明らかなように、牛乳およびウシ初乳を用 いる先行技術に若干の進歩が報告された。本明細書中で言及したこれらの刊行物 および他の刊行物は参考のため取り入れてある。 先行技術には米国特許第４，４４０，８６０号明細書（M.Klagsbrun）および 特許公報第５９１６６８７９号明細書も包含される。前者の明細書は、一面にお いて、「乳または初乳およびフイブロネクチン（フイブロネクチンは培養基質上 に前被覆するのがよい）を含む細胞培地を特別にとり上げた細胞増殖促進組成物 および方法」を記載し、後者の特許公報（モリナガ）は「乳または乳成分を含む 細胞インキュベーション用培地」を記載している。培養される細胞の増殖を支え るために乳ホエーの限外濾過液も使用されたことがあり、これはG.Linden等、Fr actions de lait，Procedee d'obtention de ces fractions et milleux de cul turo cellulaires renfemant ces fractionsの欧州特許第Ａ０２１９３７２号明 細書に、またG.Linden等、「乳産業から誘導された製品に基づく動物細胞培地の 補助剤」の特許願第ＷＯ９０／０６３５７号明細書に記載の通りである。 B.Quinque等による特許願第ＷＯ９２／０００１４号明細書「初乳処理法およ び初乳を含む細胞培地」にはヒドロキシアパタイト クロマトグラフィーにより 得られる初乳の活性画分が、またF.J.Ballard等によるオーストラリア特許第６ ４５５８９号明細書「成長促進剤」には陽イオン交換クロマトグラフィーにより 得られる初乳の活性画分が報告されている。先行技術にはまたF.J.Ballard等に よるオーストラリア特許第５９８２０５号明細書「成長因子」およびR.R.Burk等 による欧州特許第０３１３５１５号明細書「乳から生ずるポリペプチド成長因子 」（個々の成長因子を純粋な形で初乳または乳から単離している）も包含される 。 この発展は幾つかの細胞型の増殖を支える組成物の開発へと導いたが、通常は 培地中にウシ胎児血清を含むより一般的に使用される濃度に近いタンパク質濃度 を必要とする。 従って、本発明の一目的は先行技術に関連した欠陥の一つ以上を克服するか少 なくとも緩和することにある。 本発明は複数の修飾乳成長因子の製造法を提供するもので、本法は 塩基性からほぼ中性の等電点を有する複数の乳成長因子、および 酸源 を用意し、 該酸源を用いて乳製品エキスを短時間酸性にし、そして 短時間酸性にした乳製品エキスから複数の修飾乳成長因子を単離する ことからなる。 この単離工程は短時間酸性にした乳製品エキスを、エキスから不活性タンパク 質を除去する精製工程にかけるのがよい。 「短時間の酸性化」とは、重要な意味をもつ程の因子の質低下を避けながら、 因子の成長促進活性を高めるのに十分な時間酸性にすることを意味する。 本発明は更に約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分 子量を有し、短時間の酸性化により修飾した複数の修飾乳成長因子を含み、高度 の成長刺激活性を発揮する成長促進組成物を提供する。 修飾乳成長因子はおよそ６．０から１０．５の等電点を有することが好ましい 。 本明細書中で使用した「乳」という用語はヒトまたは動物由来の乳汁分泌物を 指す。 本明細書中で使用した「修飾乳成長因子」という用語は、それが生じた状態に ある同じ成長因子あるいは乳、乳製品あるいは乳製品エキスから抽出されたとき の同じ成長因子の成長促進活性と比較して高められた成長促進活性を示す乳成長 因子を指す。 本明細書中で使用した「乳製品」という用語は、乳の脂肪および（または）タ ンパク質成分を減らしたヒトまたは動物の乳から得られる誘導体を指す。乳製品 の例として乳ホエー、脱脂乳、チーズホエーおよび酸（カゼイン）ホエーが挙げ られる。乳製品はなるべくチーズホエーがよい。 本明細書中で使用した「乳製品エキス」という用語は、塩および（または）主 要タンパク質成分を減じた乳製品の抽出物（エキス）を指す。乳製品エキスの例 は、乳製品の限外濾液あるいはクロマトグラフィーマトリックスへ吸着させ、そ してそこから溶離された乳製品の限外濾液である。なるべく乳製品エキスは、オ ーストラリア特許第６４５，５８９号明細書記載の方法により陽イオン交換クロ マトグラフィーにかけたチーズホエーがよい。 修飾成長因子は塩基性からほぼ中性の等電点を有する成長因子を含有する乳製 品エキスを酸性にすることにより得るのがよい。なるべくは本発明方法により修 飾された乳成長因子から不活性タンパク質を除去するのがよい。酸性条件下での モレキュラーシーブ クロマトグラフィーあるいは限外濾過を用いると不活性タ ンパク質を除去できる。モレキュラーシーブ クロマトグラフィーが特に好まし いのは、除去しなければ短時間の酸性化後にある種の成長因子と再結合するかも 知れない成長因子結合性タンパク質のような高分子量タンパク質を除去できるか らである。 本明細書中で使用した「高度の成長促進活性」という用語は、それが生じた状 態にあるときの同じ成長因子あるいは乳、乳製品あるいは乳製品エキスから抽出 されたときの同じ成長因子の成長促進活性と比較して、成長因子１単位当りの増 加した細胞増殖量の尺度である。なるべく成長因子１単位当りの細胞増殖は１０ ％だけ、更に好ましくは２５％だけ増加するのがよい。 従って、本発明方法における精製工程は、特に適当な面において、短時間酸性 にした乳製品エキスを、酸性条件下で、なるべくは約３．０以下のｐＨで、行な うクロマトグラフィーあるいは限外濾過法にかける処理を含む。 クロマトグラフィー法はモレキュラーシーブ クロマトグラフィー法がよく、 限外濾過法は調節された細孔限外濾過法がよい。調節された細孔限外濾過は、約 １００ｋＤａ、更に好ましくは約５０ｋＤａ、最も好ましくは約３０ｋＤａより 大きい分子を除外する膜を使用して行なうのがよい。 更に、好ましい一面をあげると、本発明方法は 乳または乳製品の給源、 陽イオン交換樹脂、および 緩衝溶液 を用意し、 乳または乳製品を陽イオン交換樹脂と接触させて乳または乳製品のより塩基性 の成分を樹脂に吸収させ、 陽イオン交換樹脂を緩衝溶液で溶離し、そして 乳製品抽出物を集める という予備工程を更に提供する。 この予備精製工程は本出願者等によるオーストラリア特許第６４５，５８９号 明細書により詳しく記載されている。 乳製品エキスは後に定義されるＧＦＥ−２または同様な成長促進剤を含むのが よい。 なるべくは成長因子を約３．０以下のｐＨまで酸性にするのがよい。更に好ま しくは、２．０から３．０の範囲のｐＨまで因子を酸性にする。約２．５の酸性 化ｐＨが特に好ましい。 酸性化は無機酸、例えばＨＣｌを用いて行なうのがよい。例えば、酸性化は、 乳製品エキスを水に溶解し、強無機酸、例えば５Ｍ ＨＣｌで酸性にし、乾燥す ることにより達成できる。乳製品に対して陽イオン交換クロマトグラフィーを行 なうことにより乳製品エキス中の成長刺激因子を得るのがよい。乳製品エキスは オーストラリア特許願第６４５，５８９号明細書に記載の方法により製造できる 。 上記のように、本発明方法は酸性化を行なった後で不活性タンパク質を除去す るもう一つの工程を含むことができる。 不活性タンパク質の除去は、酸性条件下でモレキュラーシーブ クロマトグラ フィーまたは限外濾過を用いることにより実施できる。前記の通り、モレキュラ ーシーブ クロマトグラフィーが特に好ましいが、それはもし除去しなければ中 和後にある種の成長因子と再結合するかもしれない高分子量タンパク質をこの方 法で除けるからである。 本出願者等の初期のオーストラリア特許願第６４５，５８９号明細書（参照に より本明細書中に取り入れている）に記載の乳製品エキスに関して本発明を更に 詳しく説明することにする。しかし、これは単に例示に過ぎず、本発明の一般性 に対する制限と解釈すべきでない。 本発明方法に使用される乳製品エキスは、これを前以て約ｐＨ３．０以下まで 短時間の酸性化に付してはならない。 血清、乳または他の生物学的流体中に存在する個々の成長因子、例えば表皮成 長因子、インシュリン様成長因子ＩまたはII、酸性または塩基性繊維芽細胞成長 因子、形質転換成長因子アルファーまたはベーター、あるいは血小板由来増殖因 子はすべて５，０００から３０，０００の分子量をもつ小さいタンパク質である 。従って、F.J.Ballard等によるオーストラリア特許第６４５５８９号明細書に 記載の成長促進剤ＧＦＥ−２の、中性ｐＨ付近の条件下でのモレキュラーシーブ クロマトグラフィー後、本質的にすべての細胞成長刺激活性が高分子量領域に 存在するということは意外なことである。特定的に言えば、Ｌ６筋芽細胞、Ｂａ ｌｂ／Ｃ ３Ｔ３繊維芽細胞およびヒトの皮膚繊維芽細胞上の成長促進活性は、 ＧＦＥ−２における最も豊富なタンパク質ラクトペルオキシダーゼ（分子量７８ ，０００を有する）と共に溶出する（図１、点線参照）。 本明細書中で使用した「ＧＦＥ−２または同様な成長促進剤」という用語は、 中性から塩基性の等電点をもつ複数の成長因子が存在し、かつ酸性条件に暴露す ることなく陽イオン交換クロマトグラフィーにより乳成長因子エキスとして単離 された乳製品エキスを意味する。 チーズホエーから抽出されたＧＦＥ−２中の成長促進活性体が本質的にすべて の公知の成長因子よりもはるかに高分子量をもつという予想外の発見は、ＧＦＥ −２の成長効果が未知の因子により誘発されたのか、集合体の形にある公知の因 子により誘発されたのかのいずれかであることを示唆した。本発明はこれら二者 の間を区別するために用いる二つの解決法を説明し、そして乳製品エキスの成長 促進活性を活性化する方法、あるいは高める方法、とりわけＧＦＥ−２あるいは 同様な成長促進剤の成長促進活性を高める方法を提供する。 血漿中のある種の成長因子、例えばインシュリン様成長因子ＩおよびIIは、酸 に対して不安定なサブユニットを含む結合タンパク質複合体中に主として共存す る（R.C.Baxter等、Progress in Growth Factor Research 1，49，1989）。血漿 を短時間酸性にすると、インシュリン様成長因子は高い活性をもつかもしれない 低分子量形として解放される。形質転換成長因子ベーターを高分子量複合体から 解放する同様な方法が知られている（M.B.Sporn等、J.Cell．Biol．105，1039， 1987）。本出願者は、チーズホエーのような乳製品中の成長因子が乳製品エキス 、例えばＧＦＥ−２、をつくるために要求される陽イオン交換クロマトグラフィ ー工程を通じて複合体に留まるならば、短時間の酸性化がこれら因子を解放し、 そのため培養された細胞の増殖を刺激する乳エキスの能力の増大につながること をここに発見した。このことは、ＣＨＯ−Ｋ１細胞の増殖がＧＦＥ−２そのもの よりも短時間酸性にしたＧＦＥ−２によってはるかに低いタンパク質濃度で、し かも大幅に刺激されるという、例２に示した実験で確認される。 従って、特に適当な具体例においては、高度の成長刺激活性を示し、かつおよ そ６．０以上の等電点とおよそ５０００から３０，０００の範囲の分子量をもち 、短時間の酸性化によって修飾された複数の修飾乳製品成長因子が提供される。 なるべく複数の修飾乳製品因子は修飾されたＧＦＥ−２あるいは同様な成長促 進剤がよい。 短時間の酸性化はＣＨＯ−Ｋ１細胞に高度の成長促進活性をもたらすが、ＧＦ Ｅ−２の全タンパク質濃度はこのような方法によって著しく減少することはない 。酸性にした成長促進エキスのタンパク質含量は、成長促進活性を不活性タンパ ク質の大部分から分離する酸性条件下でのモレキュラーシーブ クロマトグラフ ィーにより実質的に減らすことができる。図３、図４および図５の例は、Supero se １２ ＨＲ １０／３０^TM（pharmacia）およびMatrex Cellufine ＧＣＬ １０００^TM（Amicon）モレキュラーシーブ カラム充填材を用いているが、こ れら は例示に過ぎず、従ってこの技術に精通した当業者は他のモレキュラーシーブ カラム充填材を用いても同様な分離を行なえることを認識する筈である。 本発明のこの具体例においては、幾つかの細胞系に対する成長促進活性が低分 子量領域に移され、ＧＦＥ−２の外来タンパク質の大部分から分けられる（図３ 参照）。図３の例で集めた個々の画分を、そうしないで図４の例のように単一分 子量プールとして集めれば、得られたプールは未分画ＧＦＥ−２によって得られ るよりも実質的に低いタンパク質濃度で成長促進活性を発揮する（図５参照）。 本発明の更に一つの方向として、酸性にした成長促進エキスのタンパク質濃度 をモレキュラーシーブ クロマトグラフィーの代りに調節された細孔限外濾過に よって減らすことができる。これを、例えば１００ｋＤａの公称寸法をカットオ フをもつ限外濾過膜を使用して酸性条件下で行なうと、図６で実証するように、 成長促進活性を浸透液に移すことができる。更にまた、成長促進活性は未分画Ｇ ＦＥ−２より実質的に低いタンパク質濃度で生ずる。１００ｋＤａ膜によるこの 使用例は単に例示に過ぎず、従って当業者は成長因子の浸透液フラクション中へ の通過は許すが、約３０，０００より大きい分子量をもつタンパク質の透過は遅 らせる他の膜を使用しても同様な分離が得られることを認識する筈である。 本発明の更に一つの面は 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し、 短時間の酸性化により修飾した複数の修飾乳成長因子を含み高度の成長刺激活性 を示す有効量の成長促進組成物、および 培地 を含む細胞培養組成物を提供するものである。 なるべく複数の修飾乳成長因子は、修飾されたＧＦＥ−２あるいは同様な成長 促進剤であるのがよい。 更に好ましくは、培地は実質的に無タンパク質培地であり、そして（または） ウシ胎児血清を含むのがよい。 本発明はまたヒトまたは動物の細胞を培養する方法も提供するものであり、本 法は 動物細胞の給源、および 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し短 時間の酸性化により修飾された複数の修飾乳成長因子を含み、高められた成長刺 激活性を発揮する有効量の成長促進組成物を含む細胞培養組成物、および 培地 を用意し、そして 細胞を細胞培養組成物中で所定の細胞濃度を達成するのに十分な時間と十分な 温度で培養する ことからなる。 約３５℃から４０℃の範囲の温度で約１日から５日の期間細胞を培養するのが よい。 乳製品の短時間の酸性化または酸性化に続き酸性条件下で低分子量画分を得る ための分離のいずれかを包含する本発明方法は、培地中細胞の増殖に限定されな い用途に向けられる生成物をつくるためにも適用できる。これと関連する特定の 例は、更に組織化された構造物、例えば火傷を負った個人に後で移植するための 、あるいは露出した傷を覆うための皮膚を培養する方法である。 本発明はまた表面の傷の治療用の医薬品組成物あるいは獣医学用組成物も提供 するのであって、本組成物は 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し短 時間の酸性化により修飾された複数の修飾乳成長因子、および 製薬上あるいは獣医学上容認しうる希釈剤、担体あるいは付形薬を含む。 なるべくは本組成物は抗生物質、防腐剤、他の成長促進物質、およびそれらの 混合物から選ばれる有効量の少なくとも１種の活性成分を更に含むことが好まし い。 従って、本発明はヒトを含めて動物の表面の傷の治療法を提供するものであり 、本法は 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し短 時間の酸性化により修飾された複数の修飾乳成長因子、および 製薬上あるいは獣医学上容認しうる希釈剤、担体または付形薬 を含む有効量の医薬品組成物あるいは獣医学用組成物を治療すべき患者へ投与す ることからなる。 なるべく本組成物は抗生物質、防腐剤、他の成長促進物質、麻酔薬、およびそ れらの混合物から選ばれる有効量の少なくとも１種の活性成分を更に含むことが 好ましい。 本医薬品組成物あるいは獣医学用組成物は胃腸の損傷、疾患または潰瘍の治療 に適合させることができる。従って、本発明は胃腸の損傷、疾患または漬瘍の治 療用医薬品組成物あるいは獣医学用組成物を提供するものであり、本組成物は 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し短 時間の酸性化により修飾された複数の修飾乳成長因子、および 製薬上あるいは獣医学上容認しうる希釈剤、担体または付形薬 を含む。 なるべくは本組成物は抗生物質、防腐剤、他の成長促進物質、麻酔剤、および それらの混合物から選ばれる有効量の少なくとも１種の活性成分を更に含むこと が好ましい。 本発明はヒトまたは動物治療対象の治療法を更に提供するものであり、前記方 法は本発明に係る有効量の成長促進組成物を投与することからなる。 本発明の一つの応用は、高度の成長促進活性が傷の修復を早めることができる 表面の傷へ直接添加できる製品をつくることである。 例 ここで本発明を下記の例に関して更に詳細に説明することにする。しかし下記 の説明は例示に過ぎないのであって、如何なる場合にも前述した本発明の一般性 の限定と見做すべきでないことは理解されるに違いない。図の説明 図１：例１記載の乳製品エキスＧＦＥ−２をリン酸塩緩衝食塩水に溶かし、同じ 緩衝液で平衡化したSuperose １２ ＨＲ１０／３０^TM（Pharmacia）カラム上 でクロマトグラフィーを行なった。２８０ｎｍにおける吸光度によりタンパク質 を測定した（点線）。各フラクションの成長促進活性を３細胞系［Ｌ６ 筋芽細 胞（図１Ａ）、Ｂａｌｂ／Ｃ ３Ｔ３（図１Ｂ）、ＳＦ １９７２（図１Ｃ）］ において、１０％ウシ胎児血清を成長因子の標準 源としたとき（●）到達した成長の百分率として測定した。 図２：例１記載の乳製品エキスＧＦＥ−２（●）および例２におけるように調製 された短時間酸性化乳製品エキスＧＦＥ−２（○）によるＣＨＯ−Ｋ１細胞の成 長促進活性。成長因子の標準源としてウシ胎児血清（ＦＢＳ）を示す（■）。 図３：例１記載の乳製品エキスＧＦＥ−２を、例３記載のように酸性にし、モレ キュラーシーブ クロマトグラフィーにかけた。タンパク質は２８０ｎｍにおけ るその吸光度により示される（点線）。乾燥し、再構成されたフラクションの成 長促進活性を３細胞系［Ｌ６ 筋芽細胞（図３Ａ）、Ｂａｌｂ／Ｃ ３Ｔ３（図 ３Ｂ）、ＳＦ １９７２（図３Ｃ）］において、１０％ウシ胎児血清を成長因子 の標準源としたとき（●）到達した成長の百分率として測定した。 図４：例４記載の酸性条件下、Matrex Cellufine ＧＣＬ １０００^TM（Amicon ）上での酸性化ＧＦＥ−２のクロマトグラフィーによる修飾乳成長因子の大規模 調製。低分子量プール（ＬＭＷ．プール）を集め乾燥してその後の成長促進活性 の検定に供した。 図５：例１記載のように調製したＧＦＥ−２（●）および例４記載のように調製 したＬＭＷ−プールの、３細胞系［Ｌ６ 筋芽細胞（図５Ａ）、ヒト内皮細胞（ 図５Ｂ）、ＳＦ ３１６９（図５Ｃ）］に対する成長促進活性。ウシ胎児血清（ ＦＢＳ）を成長因子の標準源として示す（■）。 図６：例１記載のように調製したＧＦＥ−２（●）および１００ｋＤａ膜（Sart orius）を通しての限外濾過により得られた酸性化ＧＦＥ−２の浸透物（●）の 、３細胞系［Ｌ６ 筋芽細胞（図６Ａ）、Ｂａｌｂ／Ｃ ３Ｔ３（図６Ｂ）、Ｓ Ｆ １９６７（図６Ｃ）に対する成長促進活性。活性は１０％ウシ胎児血清を成 長因子の標準源としたとき到達する活性と比較して表示する。例 １ 中性ｐＨ条件下ホエーエキスのモレキュラーシーブ クロマトグラフィーは主と して高分子量領域の細胞成長促進活性を実証する ＧＦＥ−２はF.J.Ballard等のオーストラリア特許第６４５５８９号明細書に 記載のように調製した。この方法は低温殺菌したホエーから固形物を除去するミ クロ濾過、ｐＨ６．５の５０ｍＭクエン酸ナトリウム緩衝液で平衡化したＳ−Se pharose Fast Flow Ｓ^TM 陽イオン交換樹脂（Pharmacia）カラムへの成長促進物 質の吸着、未吸着物質を除去するための同緩衝液によるカラムの洗浄、０．４Ｍ ＮａＣｌを１０ｍＭクエン酸ナトリウム（ｐＨ６．５）に添加した溶液による ＧＦＥ−２の溶離、水に対する透析濾過（diafiltration）、限外濾過による濃 縮および凍結乾燥を含む。 このＧＦＥ−２をｐＨ７．４のDulbeccoリン酸塩緩衝食塩水（ＰＢＳ）に溶か し、０．２２μｍフィルターに通過させ、２００μｌを同じ緩衝液で平衡化した Superose １２ ＨＲ１０／３０^TM（pharmacia）カラムに適用し、０．３ｍｌ ／分でクロマトグラフィーを行なった。１００μβの１０ｍｇウシ血清アルブミ ン／ｍｌを含む管に０．９ｍｌフラクションを集めた。 本例は各フラクションの活性試験に細胞系Ｌ６（ラット筋芽細胞）、Ｂａｌｂ ／Ｃ ３Ｔ３（マウス繊維芽細胞）およびＳＦ １９７２（ヒト二倍体皮膚繊維 芽細胞）を使用した。 各細胞系を９６−穴組織培養プレート上で、１０％ウシ胎児血清（Ｌ６筋芽細 胞に対して５％）を含むDulbecco-Modified Eagle's Mineral Essential Medium （ＤＭＥＭ）中で継代培養した。細胞付着を確実にするため５％ＣＯ₂、３７℃ 、加湿したインキュベーター中に一晩置いた。一貫して滅菌技術を用いた。プレ ートをＤＭＥＭ中で十分よく洗浄して残留血清およびホエー分あるいは指示濃度 で添加されたウシ胎児血清（ＦＢＳ）を除去した。各ウエルの全体積は３７℃、 ＣＯ₂５％、１００％湿度において０．１ｍｌであった。 更に２日の後、プレートを洗浄し、固定し、自動化されたメチレンブルー法（ M.H.Oliver等、J.Cell Sci．92，513，1989）を用いて細胞数を定量した。成長 は、１０％ウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ中で細胞増殖により起こる吸光度増加と 比較した吸光度単位の増加百分率として表わした（図１）。 本例は、３細胞系のすべてにおいて、ウシ胎児血清およびカラムから得られた 幾つかの画分２０μｌずつが成長を刺激することを示している。最も活性のある フラクションは、２８０ｎｍにおける吸光度により示されるように（図１、点線 ）、カラムから溶離された主要タンパク質領域と一致した。図１の活性は１０％ ウシ胎児血清を用いたとき得られた成長増加と比較した成長増加百分率として表 わす。例 ２ 短時間の酸性化はＣＨＯ−Ｋ１細胞の成長促進活性を高める 例１記載のように調製したＧＦＥ−２の５０ｍｇ試料を水２ｍｌに溶かし、５ Ｍ ＨＣｌでｐＨ１．６まで酸性にし、０．５Ｍ ＮａＯＨでｐＨ２．５に調節 し、真空で乾燥した。乾燥した材料を、ウシ血清アルブミン１０ｍｇを含むHam' s Ｆ１２細胞培地１ｍｌに溶かし、同培地で連続的に希釈した。同じ初濃度のＧ ＦＥ−２の試料およびウシ胎児血清を、ウシ血清アルブミンを含むHam's Ｆ１２ 培地で同様に希釈した。 例１記載のように試験溶液を成長促進活性について評価するが、ただし細胞は ＣＨＯ−Ｋ１とし、培地はＤＭＥＭの代りにHam's Ｆ１２とした。 本例はＧＦＥ−２が中程度の成長効果を生ずるのに対し、低い全タンパク質濃 度においてはるかに大きい成長が短時間酸性にした調製物により達成されること を示している。例 ３ 酸性条件下でモレキュラーシーブ クロマトグラフィーを行なうと、ホエーエキ スの成長促進活性は低分子量領域に移る ＧＦＥ−２を例１記載のように調製した。０．１５Ｍ ＮａＣｌを含む１Ｍ酢 酸に２５ｍｇ部分を溶かし、０．２２μｍフィルターに通過させ、２００μｌを 例１と同じSuperose １２ ＨＲ１０／３０カラムに適用するが、ただし０．１ ５Ｍ ＮａＣｌを含む１Ｍ酢酸でカラムを平衡化した。クロマトグラフィーおよ び試料の採集は例１記載の通りであるが、ただし溶離緩衝液は０．１５Ｍ Ｎａ Ｃｌを含む１Ｍ酢酸とした。フラクションを真空下で乾燥し、ＤＭＥＭに溶かし 、その成長促進活性を例１記載と同様に評価した。結果を点線で示したタンパク 質吸光度プロフィルと共に図３に示す。 この実験は、ＧＦＥ−２の酸性化とそれに続くモレキュラーシーブ クロマト グラフィーにより、Ｌ６筋芽細胞、Ｂａｌｂ／Ｃ ３Ｔ３およびＳＦ １９７２ 細胞に成長促進活性が得られたが、その活性はタンパク質吸光度ピークより遅れ た溶離液に、従って低分子量領域に、移動することを示した。例 ４ 酸性条件下でホエーエキスのモレキュラーシーブ クロマトグラフィー後に得ら れた低分子量フラクションプールが細胞成長を支える比活性を高めた ＧＦＥ−２を例１記載と同様に調製した。０．２Ｍ ＮａＣｌを含む１０ｍＭ ＨＣｌ ２５０ｍｌに１０ｇ部分を溶かし、ｐＨをＮａＯＨで２．５に調節し た。この溶液を用いて２ｌのCellufine ＧＣＬ １０００^TM（Amicon）カラムを 平衡化した。溶解したＧＦＥ−２ １２５ｍｌをカラムに適用し、同じ溶液を用 いて６．８ｍｌ／分で溶離した。２８０ｎｍにおける吸光度が０．４以下に落ち たときから６７５ｍｌを集めた（図４）。このプールを０．１Ｍ重炭酸アンモニ ウムに対して透析濾過し、凍結乾燥して３８５ｍｇの生成物を得た。 低分子量プール（ＬＭＷプール）およびＧＦＥ−２を例１記載のように溶解し 、該例と同様に細胞成長を測定したが、ただし試験した細胞系はＬ６筋芽細胞、 ＳＦ ３１６９ヒト皮膚繊維芽細胞およびヒト内皮細胞［E.Jaffe等、J.Clin．I nuest．５２，２７４５（１９７３）記載のようにして得た］とした。 この実験は、より低濃度のＬＭＷプールの方がＧＦＥ−２で得られたよりも成 長を刺激することを示す。この比活性増加は、図５に示したように、ヒト皮膚繊 維芽細胞およびヒト内皮細胞について特に明白であった。例 ５ 酸性条件下で調節された細孔限外濾過を行なうとホエーエキスの成長促進活性が 透過液中に移る ＧＦＥ−２を例１記載のように調製した。ＧＦＥ−２ ４０ｇを４０ｌの１０ ｍＭクエン酸三ナトリウムに懸濁し、０．１Ｍ ＨＣｌを用いてｐＨ２．５に調 節した。酸性にしたタンパク質溶液を４℃で一晩放置し、次に大きい細孔限外濾 過膜（Sartorius，０．７ｍ²、ポリスルホン、細胞寸法１００ｋＤａカットオフ ）に対し５ｌまで濃縮した。ｐＨ２．５の１５０ｍＭ ＮａＣｌ／ＨＣｌ溶液１ ００ｌを用いてこの濃縮液を広く（２０：１）透析濾過した。この濃縮／透析 濾過サイクルから集められた透過液（約１３０ｌ）を０．１Ｍ ＮａＯＨでｐＨ ７．０に調節し、らせん巻きした単一の１．８ｍ²ポリスルホン膜（細孔寸法３ ｋＤａカットオフ）を具えたAmicon限外濾過装置に移した。この装置で透過液を １０ｌに濃縮し、５０ｌの１５０ｍＭ ＮＨ₄ＨＣＯ₃を用いて透析濾過し（５： １）、次に最終体積２５０ｍｌまで更に濃縮した。濃縮された透過液を凍結乾燥 し、約１．８ｇの粉末を得た。 乾燥透過物およびＧＦＥ−２を水に溶かし、その成長促進活性を例１記載のよ うに評価した。結果を図６に示す。 この実験は、酸性にしたホエーエキスの限外濾過により得た透過物がＬ６筋芽 細胞、Ｂａｌｂ／Ｃ ３Ｔ３およびＳＦ １９６７細胞、ヒト皮膚繊維芽細胞系 （例１、例３および例４で用いたＳＦ １９７２およびＳＦ ３１６９細胞に類 似）の増殖を支えることを示す。更にまた、３細胞系すべての成長促進活性は、 ＧＦＥ−２で観察されたより実質的に低いタンパク質濃度で現れる。 最後に、本明細書中に概説された本発明の主旨から離れることなく種々な他の 修正および（または）変更をなしうることは理解される筈である。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ， ＤＫ，ＥＳ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，Ｍ Ｃ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ， ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＫＥ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ)， ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，Ｃ Ｈ，ＣＮ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ， ＫＺ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，Ｍ Ｎ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＴ， ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者 ロジャーズ，メリー − ルイーズ オーストラリア国 5006 サウス オース トラリア，ノース アデレイド，ジョージ ストリート 17 (72)発明者 フランシス，ジェフリー レオナード オーストラリア国 5076 サウス オース トラリア，アセルストーン，ジョイリーン コート ９ (72)発明者 リジェスター，ジェフリー オーウェン オーストラリア国 3156 ビクトリア，フ ァーントリー ガリー，バンフィールド コート １ (72)発明者 スミサーズ，ジェフリー ウェルスフォー ド オーストラリア国 3192 ビクトリア，チ ェルテンハム，ローナ ストリート 63 (72)発明者 バラード，フランシス ジョン オーストラリア国 5068 サウス オース トラリア，ケンシントン，ブリッジ スト リート 52エイ

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．複数の修飾乳成長因子の製造法において、 塩基性ないしほぼ中性の等電点を有する複数の乳成長因子を含む乳製品エキス および酸源を用意し、 酸源を用いて該乳製品エキスを短時間酸性にし、 短時間酸性にした乳製品エキスから複数の修飾乳成長因子を単離する 工程を含む上記方法。 ２．乳製品エキスをおよそ３．０またはそれより下のｐＨに短時間酸性にする 、請求項１記載の方法。 ３．単離工程は、短時間酸性にした乳製品エキスを酸性条件下で精製工程にか けて不活性タンパク質を除去する処理を含む、請求項２記載の方法。 ４．精製工程は、短時間酸性にした乳製品エキスをモレキュラーシーブ クロ マトグラフィー法にかける処理を含む、請求項３記載の方法。 ５．精製工程は、約３０ｋＤａより大きい分子を除外する膜を使用する調節さ れた細孔限外濾過法を含む、請求項３記載の方法。 ６．乳製品エキスはチーズホエーエキスである、請求項１記載の方法。 ７．乳または乳製品の給源、 陽イオン交換樹脂、および 緩衝剤溶液 を用意し、 該乳または乳製品を陽イオン交換樹脂と接触させて乳または乳製品のより塩基 性の成分を樹脂上に吸収させ、 陽イオン交換樹脂を緩衝剤溶液で溶離し、そして 乳製品エキスを集める ことにより乳製品エキスを得る予備工程を含む、請求項１記載の方法。 ８．乳製品エキスはＧＦＥ−２あるいは同様な成長促進剤を含む、請求項７記 載の方法。 ９．高度の成長刺激活性を示しかつ約６．０以上の等電点と約５０００から３ ０，０００の範囲の分子量を有し、乳成長因子を短時間の酸性化により修飾した 複数の修飾乳成長因子。 10．修飾ＧＦＥ−２あるいは同様な成長促進剤である、請求項９記載の複数の 修飾乳成長因子。 11．請求項１から請求項８のいずれか１に記載の方法により製造された、請求 項９記載の複数の修飾乳成長因子。 12．高度の成長剌激活性を示す成長促進組成物において、約６．０以上の等電 点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し、乳成長因子を短時間の 酸性化により修飾した複数の修飾乳成長因子を含む上記組成物。 13．複数の修飾乳成長因子は修飾ＧＦＥ−２あるいは同様な成長促進剤である 、請求項１２記載の成長促進組成物。 14．請求項１から請求項８のいずれか１項に記載の方法により製造された複数 の修飾乳成長因子を含む、請求項１２記載のの成長促進組成物。 15．高度の成長剌激活性を発揮し、約６．０以上の等電点と約５０００から３ ０，０００の範囲の分子量を有し、短時間の酸性化により修飾された複数の修飾 乳成長因子を含有する有効量の成長促進組成物および培地を含む細胞培養組成物 。 16．複数の修飾乳成長因子は修飾ＧＦＥ−２あるいは同様な成長促進剤である 、請求項１５記載の細胞培養組成物。 17．請求項１から請求項８のいずれか１項に記載の方法により製造された複数 の修飾乳成長因子を含む、請求項１５記載の細胞培養組成物。 18．培地は実質的に無タンパク質培地である、請求項１５記載の細胞培養組成 物。 19．培地はウシ胎児血清を含む、請求項１５記載の細胞培養組成物。 20．ヒトあるいは動物の細胞を培養する方法において、動物細胞源、および 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有する 複数の修飾乳成長因子を含み、該乳成長因子は短時間の酸性化により修飾された ものであり、そして高度の成長剌激活性を発揮する有効量の成長促進組成物を含 む細胞培養組成物、および 培地 を用意し、そして 細胞を前記細胞培養組成物中で、予定の細胞濃度に到達するのに十分な時間、 十分な温度で培養する 工程を含む上記方法。 21．表面の傷の治療用医薬品組成物あるいは獣医学用組成物において、 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し、 短時間の酸性化により修飾した複数の修飾乳成長因子、および 製薬上または獣医学上容認しうる希釈剤、担体または付形薬 を含有してなる上記組成物。 22．胃腸の損傷、諸疾患あるいは潰瘍の治療用医薬品組成物あるいは獣医学用 組成物において、 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し、 短時間の酸性化により修飾した複数の修飾乳成長因子、および 製薬上あるいは獣医学上容認しうる希釈剤、担体または付形薬 を含有してなる上記組成物。 23．ヒトを含めて動物の表面の傷の治療法において、治療すべき患者へ、 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し、 短時間の酸性化により修飾された複数の修飾乳成長因子、および 製薬上あるいは獣医学上容認しうる希釈剤、担体または付形薬 を含有してなる有効量の医薬品組成物あるいは獣医学用組成物を投与することか らなる上記方法。 24．胃腸の損傷、諸疾患または潰瘍の治療法において、治療すべき患者へ、 約６．０以上の等電点と約５０００から３０，０００の範囲の分子量を有し、 短時間の酸性化により修飾された複数の修飾乳成長因子、および 製薬上あるいは獣医学上容認しうる希釈剤、担体または付形薬 を含有してなる有効量の医薬品組成物あるいは獣医学用組成物を投与することか らなる上記方法。 25．例１から例６のいずれか一つに関して実質的に説明された複数の修飾乳成 長因子。