JPH1096A - 微生物を用いるエリスリトールの製造方法 - Google Patents
微生物を用いるエリスリトールの製造方法Info
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- JPH1096A JPH1096A JP8172806A JP17280696A JPH1096A JP H1096 A JPH1096 A JP H1096A JP 8172806 A JP8172806 A JP 8172806A JP 17280696 A JP17280696 A JP 17280696A JP H1096 A JPH1096 A JP H1096A
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- C12P7/02—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
- C12P7/04—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
- C12P7/18—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic polyhydric
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【目的】 微生物を用いて効率よくエリスリトールを生
産する方法を提供する。 【解決手段】 トリコスポロノイデス・メガチリエンシ
ス（Trichosporonoidesmegachiliensis）に属するエリ
スリトール生産菌、例えばトリコスポロノイデス・メガ
チリエンシスＣＢＳ１９０．９２株、または同 ＣＢＳ
１９１．９２株を高濃度、好ましくは２０〜５０Ｗ／Ｖ
％の糖（ブドウ糖、フルクトース、マルトース、蔗糖
等）を含む培地で培養し、培地中に蓄積されたエリスリ
トールを採取する。 【効果】 トリコスポロノイデス属の菌株であるトリコ
スポロノイデス・メガチリエンシス（Trichosporonoide
s megachiliensis ）を用い、高濃度の糖から多量のエ
リスリトールを安価に生産することができる。
産する方法を提供する。 【解決手段】 トリコスポロノイデス・メガチリエンシ
ス（Trichosporonoidesmegachiliensis）に属するエリ
スリトール生産菌、例えばトリコスポロノイデス・メガ
チリエンシスＣＢＳ１９０．９２株、または同 ＣＢＳ
１９１．９２株を高濃度、好ましくは２０〜５０Ｗ／Ｖ
％の糖（ブドウ糖、フルクトース、マルトース、蔗糖
等）を含む培地で培養し、培地中に蓄積されたエリスリ
トールを採取する。 【効果】 トリコスポロノイデス属の菌株であるトリコ
スポロノイデス・メガチリエンシス（Trichosporonoide
s megachiliensis ）を用い、高濃度の糖から多量のエ
リスリトールを安価に生産することができる。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】本発明は微生物を用いるエリ
スリトールの製造方法に関し、更に詳しくはトリコスポ
ロノイデス・メガチリエンシスに属する菌株を用いるエ
リスリトールの製造方法に関する。
スリトールの製造方法に関し、更に詳しくはトリコスポ
ロノイデス・メガチリエンシスに属する菌株を用いるエ
リスリトールの製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】現在、エリスリトールを生産するために
実用化されている微生物として、モニリエラ・トメント
サ・バール・ポリニス（Moniliella tomentosa var. po
llinisＣＢＳ４６１．６７）とオーレオバシデウム（Au
reobasidium sp. ＳＮ−Ｇ４２ ＦＥＲＭ Ｐ−８９４
０）の２種類が知られている。前者には、糖類の発酵に
よりポリオールを工業的規模で製造する方法等（特公平
６−３０５９１、同６−３０５９２、同６−３０５９
３、同６−３０５９４）一連のポリオールの製造方法が
知られている。また、後者にはエリスリトール生産能を
有する新規微生物及びそれを用いる発酵によるエリスリ
トールの製造方法（特公平４−１１１８９、同４−６３
５）が知られている。
実用化されている微生物として、モニリエラ・トメント
サ・バール・ポリニス（Moniliella tomentosa var. po
llinisＣＢＳ４６１．６７）とオーレオバシデウム（Au
reobasidium sp. ＳＮ−Ｇ４２ ＦＥＲＭ Ｐ−８９４
０）の２種類が知られている。前者には、糖類の発酵に
よりポリオールを工業的規模で製造する方法等（特公平
６−３０５９１、同６−３０５９２、同６−３０５９
３、同６−３０５９４）一連のポリオールの製造方法が
知られている。また、後者にはエリスリトール生産能を
有する新規微生物及びそれを用いる発酵によるエリスリ
トールの製造方法（特公平４−１１１８９、同４−６３
５）が知られている。
【０００３】一方、トリコスポロノイデス属の微生物に
ついては、その種は不明であるがブラジル国カンピナス
大学のマリナ・Ａ・アオキ氏等による蔗糖及びブドウ糖
からのエリスリトールへの変換の報告（BIOTECHNOLOGY
LETTERS, Volume 15，NO.4，P.383-388, April 1993）
がある。この報告によると、ブドウ糖からエリスリトー
ルへの変換率が４３．０％、蔗糖からエリスリトールへ
の変換率が３７．４％と高いものの、このときの培養液
の糖濃度は１０％（Ｗ／Ｖ）と低く、又、培養日数も６
日間と長いなど工業的規模での製造には問題がある。本
発明で使用されるトリコスポロノイデス・メガチリエン
シス（Trichosporonoides megachiliensis）は、カナダ
国アルバータ大学のＧ．ドグラス・イングリス（ＤＯＵ
ＧＬＡＳ ＩＮＧＬＩＳ）とリン・シグラー（ＬＹＮＮ
Ｅ ＳＩＧＬＥＲ）により１９９２年に新菌種として報
告（Mycologia,Volume 84，No．4，P.555-570，1992）
された菌株である。彼らの報告には新菌種と同定した菌
株の形態学的、生理学的諸性状が記述されている。しか
し、これらの菌株がエリスリトールを生成するとの報告
はない。
ついては、その種は不明であるがブラジル国カンピナス
大学のマリナ・Ａ・アオキ氏等による蔗糖及びブドウ糖
からのエリスリトールへの変換の報告（BIOTECHNOLOGY
LETTERS, Volume 15，NO.4，P.383-388, April 1993）
がある。この報告によると、ブドウ糖からエリスリトー
ルへの変換率が４３．０％、蔗糖からエリスリトールへ
の変換率が３７．４％と高いものの、このときの培養液
の糖濃度は１０％（Ｗ／Ｖ）と低く、又、培養日数も６
日間と長いなど工業的規模での製造には問題がある。本
発明で使用されるトリコスポロノイデス・メガチリエン
シス（Trichosporonoides megachiliensis）は、カナダ
国アルバータ大学のＧ．ドグラス・イングリス（ＤＯＵ
ＧＬＡＳ ＩＮＧＬＩＳ）とリン・シグラー（ＬＹＮＮ
Ｅ ＳＩＧＬＥＲ）により１９９２年に新菌種として報
告（Mycologia,Volume 84，No．4，P.555-570，1992）
された菌株である。彼らの報告には新菌種と同定した菌
株の形態学的、生理学的諸性状が記述されている。しか
し、これらの菌株がエリスリトールを生成するとの報告
はない。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】本発明者等は微生物を
用いるエリスリトールの製造方法について、種々研究を
行った結果、トリコスポロノイデス・メガチリエンシス
がブドウ糖等の糖を効率よく高収率でエリスリトールに
変換することを見いだし本発明を完成するに至った。し
たがって、本発明の目的は、トリコスポロノイデスに属
する微生物を用いて、高濃度（２０〜５０Ｗ／Ｖ％）の
糖からエリスリトールを製造する方法を提供するにあ
る。
用いるエリスリトールの製造方法について、種々研究を
行った結果、トリコスポロノイデス・メガチリエンシス
がブドウ糖等の糖を効率よく高収率でエリスリトールに
変換することを見いだし本発明を完成するに至った。し
たがって、本発明の目的は、トリコスポロノイデスに属
する微生物を用いて、高濃度（２０〜５０Ｗ／Ｖ％）の
糖からエリスリトールを製造する方法を提供するにあ
る。
【０００５】
【課題を解決するための手段】即ち、本発明はトリコス
ポロノイデス・メガチリエンシス（Trichosporonoides
megachiliensis）に属する菌株を高濃度の糖培地で培養
し、培養物からエリスリトールを採取することを特徴と
するエリスリトールの製造方法に関する。
ポロノイデス・メガチリエンシス（Trichosporonoides
megachiliensis）に属する菌株を高濃度の糖培地で培養
し、培養物からエリスリトールを採取することを特徴と
するエリスリトールの製造方法に関する。
【０００６】
【発明の実施の形態】以下に、本発明に係るエリスリト
ールの製造方法について述べる。本発明で使用されるト
リコスポロノイデス・メガチリエンシスに属する菌株と
してはトリコスポロノイデス・メガチリエンシス ＣＢ
Ｓ１９０．９２株（ＵＡＭＨ６４９０株）、同ＣＢＳ１
９１．９２株（ＵＡＭＨ６８２２株）の他、カナダ国ア
ルバータ大学のＧ．ドグラス・イングリス等により報告
された菌株である、トリコスポロノイデス・メガチリエ
ンシス ＵＡＭＨ６８２０株、同ＵＡＭＨ６８２１株、
同ＵＡＭＨ６８２３株、及びこれらの菌株を通常の変異
処理方法、例えば、紫外線照射、放射線照射等による物
理的変異方法、あるいはエチルメタンスルホン酸、ニト
ロソグアニジン等の化学的変異剤による化学的変異方法
等で処理することにより得られた変異株を挙げることが
できる。
ールの製造方法について述べる。本発明で使用されるト
リコスポロノイデス・メガチリエンシスに属する菌株と
してはトリコスポロノイデス・メガチリエンシス ＣＢ
Ｓ１９０．９２株（ＵＡＭＨ６４９０株）、同ＣＢＳ１
９１．９２株（ＵＡＭＨ６８２２株）の他、カナダ国ア
ルバータ大学のＧ．ドグラス・イングリス等により報告
された菌株である、トリコスポロノイデス・メガチリエ
ンシス ＵＡＭＨ６８２０株、同ＵＡＭＨ６８２１株、
同ＵＡＭＨ６８２３株、及びこれらの菌株を通常の変異
処理方法、例えば、紫外線照射、放射線照射等による物
理的変異方法、あるいはエチルメタンスルホン酸、ニト
ロソグアニジン等の化学的変異剤による化学的変異方法
等で処理することにより得られた変異株を挙げることが
できる。
【０００７】菌株の培養は炭素源、窒素源、無機塩類等
を含む液体培地を用いて好気的条件下に行われる。炭素
源としてはグルコース、フルクトース、蔗糖、マルトー
ス等の糖類及びこれらの糖類を含む澱粉糖化液、甘藷糖
蜜、甜菜糖蜜等の糖質、好ましくは、グルコース、フル
クトース又は蔗糖が使用される。窒素源としては微生物
により利用可能な窒素化合物、例えば酵母エキス、ペプ
トン、麦芽エキス、コーンスチープリカー、アンモニア
水、アンモニウム塩類、尿素、硝酸塩類等が使用され
る。無機塩としてはリン酸塩、マグネシウム塩、カルシ
ウム塩、カリウム塩、鉄塩、マンガン塩等が適宜使用さ
れる。その他、培養液中の発泡を抑制するため、通常使
用されるシリコーン樹脂等の消泡剤が適宜使用される。
を含む液体培地を用いて好気的条件下に行われる。炭素
源としてはグルコース、フルクトース、蔗糖、マルトー
ス等の糖類及びこれらの糖類を含む澱粉糖化液、甘藷糖
蜜、甜菜糖蜜等の糖質、好ましくは、グルコース、フル
クトース又は蔗糖が使用される。窒素源としては微生物
により利用可能な窒素化合物、例えば酵母エキス、ペプ
トン、麦芽エキス、コーンスチープリカー、アンモニア
水、アンモニウム塩類、尿素、硝酸塩類等が使用され
る。無機塩としてはリン酸塩、マグネシウム塩、カルシ
ウム塩、カリウム塩、鉄塩、マンガン塩等が適宜使用さ
れる。その他、培養液中の発泡を抑制するため、通常使
用されるシリコーン樹脂等の消泡剤が適宜使用される。
【０００８】培養は、培地中の糖濃度を高濃度、好まし
くは２０〜５０Ｗ／Ｖ％、更に好ましくは３０〜４０Ｗ
／Ｖ％に調製した、前記組成からなる液体培地に菌株を
直接植菌するか、又は別に前培養によって得られる種培
養液を接種して、以下の条件、即ち、通常ｐＨ３〜８、
好ましくはｐＨ３〜６、培養温度２４〜４０℃、好まし
くは３５〜３８℃で通常３〜８日間培養することにより
行われる。尚、培養は、培地の栄養源が最大限に利用さ
れ、かつ培養液中のエリスリトールの生成量が最高に達
した時点で培養を終了させることが望ましい。培養液中
に蓄積されたエリスリトールは、常法により培養液から
分離し採取される。例えば、培養液から菌体を濾過ある
いは遠心分離によって除去し、次いで、イオン交換樹脂
処理法、吸着クロマトグラフィー法、溶媒抽出法、濃縮
法、晶析法等の方法を適宜組み合わせることにより行わ
れる。更に、不純物を除去するため、通常用いられる活
性炭脱色処理法、再結晶法等も用いられる。
くは２０〜５０Ｗ／Ｖ％、更に好ましくは３０〜４０Ｗ
／Ｖ％に調製した、前記組成からなる液体培地に菌株を
直接植菌するか、又は別に前培養によって得られる種培
養液を接種して、以下の条件、即ち、通常ｐＨ３〜８、
好ましくはｐＨ３〜６、培養温度２４〜４０℃、好まし
くは３５〜３８℃で通常３〜８日間培養することにより
行われる。尚、培養は、培地の栄養源が最大限に利用さ
れ、かつ培養液中のエリスリトールの生成量が最高に達
した時点で培養を終了させることが望ましい。培養液中
に蓄積されたエリスリトールは、常法により培養液から
分離し採取される。例えば、培養液から菌体を濾過ある
いは遠心分離によって除去し、次いで、イオン交換樹脂
処理法、吸着クロマトグラフィー法、溶媒抽出法、濃縮
法、晶析法等の方法を適宜組み合わせることにより行わ
れる。更に、不純物を除去するため、通常用いられる活
性炭脱色処理法、再結晶法等も用いられる。
【０００９】
【実施例】次に、本発明の実施例について具体的に説明
するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものでは
ない。 実施例１（培養温度とエリスリトール収率） トリコスポロノイデス・メガチリエンシス ＣＢＳ１９
０．９２株及び同ＣＢＳ１９１．９２株をそれぞれ酵母
エキス培地（ブドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／
Ｖ％）に植菌し、３５℃、３日間振とう培養した後、予
め、同酵母エキス培地を分注しておいたＬ型培養管に、
培地量の２％になるように接種し、振とう温度勾配培養
装置（アドバンテック東洋株式会社、モデルＴＮ−２１
４８）を用いて、振とう数６０回／分、温度２４．５〜
３９．７℃の範囲で４日間培養した。培養液中のエリス
リトールの対糖収率（消費された糖量に対する生成され
たエリスリトールの収率）は高速液体クロマトグラフで
培養液中のブドウ糖の残量とエリスリトールの生成量を
測定する事で算出した。その結果を表１に示した。
するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものでは
ない。 実施例１（培養温度とエリスリトール収率） トリコスポロノイデス・メガチリエンシス ＣＢＳ１９
０．９２株及び同ＣＢＳ１９１．９２株をそれぞれ酵母
エキス培地（ブドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／
Ｖ％）に植菌し、３５℃、３日間振とう培養した後、予
め、同酵母エキス培地を分注しておいたＬ型培養管に、
培地量の２％になるように接種し、振とう温度勾配培養
装置（アドバンテック東洋株式会社、モデルＴＮ−２１
４８）を用いて、振とう数６０回／分、温度２４．５〜
３９．７℃の範囲で４日間培養した。培養液中のエリス
リトールの対糖収率（消費された糖量に対する生成され
たエリスリトールの収率）は高速液体クロマトグラフで
培養液中のブドウ糖の残量とエリスリトールの生成量を
測定する事で算出した。その結果を表１に示した。
【００１０】
【表１】
【００１１】表１に示したように、ＣＢＳ１９０．９２
株のエリスリトール生産の最適温度範囲は３６．５〜３
８℃であり、このときのエリスリトールの対糖収率は２
８．１〜２９．４％であった。また、菌株ＣＢＳ１９
１．９２株のエリスリトール生産の最適温度範囲は３５
〜３８℃であり、このときのエリスリトールの対糖収率
は２７．８〜２８．８％であった。
株のエリスリトール生産の最適温度範囲は３６．５〜３
８℃であり、このときのエリスリトールの対糖収率は２
８．１〜２９．４％であった。また、菌株ＣＢＳ１９
１．９２株のエリスリトール生産の最適温度範囲は３５
〜３８℃であり、このときのエリスリトールの対糖収率
は２７．８〜２８．８％であった。
【００１２】実施例２（糖の種類の影響） 菌株（ＣＢＳ１９０．９２、ＣＢＳ１９１．９２）を酵
母エキス培地を基本培地として、ブドウ糖を他の糖類
（フルクトース、マルトース、蔗糖）に変えて、それぞ
れ培養した。即ち、菌株をそれぞれ酵母エキス培地（ブ
ドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／Ｖ％）に植菌
し、３５℃、３日間振とう培養して得られた種培養液を
それぞれ、酵母エキス培地を基本にそれぞれの糖を添加
した培地（糖４０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１．３３Ｗ／Ｖ
％）に接種（対培地量２％）し、３７℃、７日間、三角
フラスコによる振とう培養を行った。その結果を表２に
示した。
母エキス培地を基本培地として、ブドウ糖を他の糖類
（フルクトース、マルトース、蔗糖）に変えて、それぞ
れ培養した。即ち、菌株をそれぞれ酵母エキス培地（ブ
ドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／Ｖ％）に植菌
し、３５℃、３日間振とう培養して得られた種培養液を
それぞれ、酵母エキス培地を基本にそれぞれの糖を添加
した培地（糖４０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１．３３Ｗ／Ｖ
％）に接種（対培地量２％）し、３７℃、７日間、三角
フラスコによる振とう培養を行った。その結果を表２に
示した。
【００１３】
【表２】
【００１４】表２に示したように、本発明ではフルクト
ース又は蔗糖を培地の炭素源としたときはブドウ糖と同
様にエリスリトールの生成量が高いことが分かる。
ース又は蔗糖を培地の炭素源としたときはブドウ糖と同
様にエリスリトールの生成量が高いことが分かる。
【００１５】実施例３（ｐＨの影響） トリコスポロノイデス・メガチリエンシス ＣＢＳ１９
０．９２株及び同ＣＢＳ１９１．９２株をそれぞれ培養
し培地ｐＨの検討を行った。即ち、両菌株をそれぞれ酵
母エキス培地（ブドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ
／Ｖ％）に植菌し、３５℃、３日間振とう培養した。続
いてそれぞれの菌株を、塩酸及び苛性ソーダを用いて培
地のｐＨを２．５，３．０，４．０，５．０，６．０，
８．０，１０．０に調整した培地（糖４０Ｗ／Ｖ％、酵
母エキス１．３３Ｗ／Ｖ％）に接種（対培地量１．０
％）し、培養中の培地のｐＨを初めのｐＨに保持し、３
７℃、５日間、三角フラスコによる振とう培養を行っ
た。その結果を表３に示した。
０．９２株及び同ＣＢＳ１９１．９２株をそれぞれ培養
し培地ｐＨの検討を行った。即ち、両菌株をそれぞれ酵
母エキス培地（ブドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ
／Ｖ％）に植菌し、３５℃、３日間振とう培養した。続
いてそれぞれの菌株を、塩酸及び苛性ソーダを用いて培
地のｐＨを２．５，３．０，４．０，５．０，６．０，
８．０，１０．０に調整した培地（糖４０Ｗ／Ｖ％、酵
母エキス１．３３Ｗ／Ｖ％）に接種（対培地量１．０
％）し、培養中の培地のｐＨを初めのｐＨに保持し、３
７℃、５日間、三角フラスコによる振とう培養を行っ
た。その結果を表３に示した。
【００１６】
【表３】
【００１７】表３に示したように本発明ではｐＨ３．０
から８．０まで幅広い範囲でエリスリトールを安定して
製造できることが分かる。
から８．０まで幅広い範囲でエリスリトールを安定して
製造できることが分かる。
【００１８】実施例４（糖濃度と培養時間） トリコスポロノイデス・メガチリエンシス ＣＢＳ１９
０．９２株及び同ＣＢＳ１９１．９２株をそれぞれ酵母
エキス培地（ブドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／
Ｖ％）に植菌し、３５℃、３日間振とう培養した。続い
て得られた種培養液を、糖濃度を１０、２０、３０、４
０、５０、６０Ｗ／Ｖ％に調製した培地に接種（対培地
量２．０％）し、３７℃で、それぞれ、エリスリトール
の最高収率（対糖収率）が得られる迄三角フラスコによ
る振とう培養を行った。その結果を表４に示した。
０．９２株及び同ＣＢＳ１９１．９２株をそれぞれ酵母
エキス培地（ブドウ糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／
Ｖ％）に植菌し、３５℃、３日間振とう培養した。続い
て得られた種培養液を、糖濃度を１０、２０、３０、４
０、５０、６０Ｗ／Ｖ％に調製した培地に接種（対培地
量２．０％）し、３７℃で、それぞれ、エリスリトール
の最高収率（対糖収率）が得られる迄三角フラスコによ
る振とう培養を行った。その結果を表４に示した。
【００１９】
【表４】
【００２０】表４に示したように、ブドウ糖の糖濃度１
０Ｗ／Ｖ％ではＣＢＳ１９０．９２株及びＣＢＳ１９
１．９２株共に培養日数は２日間と短時間で終了した。
この時のエリスリトールの対糖収率はそれぞれ、３６．
７％と３７．０％であった。また、糖濃度４０Ｗ／Ｖ％
においてはＣＢＳ１９０．９２株の培養日数は６日間で
この時のエリスリトールの対糖収率は２７．３％であっ
た。又、ＣＢＳ１９１．９２株の培養日数は６日間でこ
の時のエリスリトールの対糖収率は２６．１％であっ
た。
０Ｗ／Ｖ％ではＣＢＳ１９０．９２株及びＣＢＳ１９
１．９２株共に培養日数は２日間と短時間で終了した。
この時のエリスリトールの対糖収率はそれぞれ、３６．
７％と３７．０％であった。また、糖濃度４０Ｗ／Ｖ％
においてはＣＢＳ１９０．９２株の培養日数は６日間で
この時のエリスリトールの対糖収率は２７．３％であっ
た。又、ＣＢＳ１９１．９２株の培養日数は６日間でこ
の時のエリスリトールの対糖収率は２６．１％であっ
た。
【００２１】実施例５ 菌株（ＣＢＳ１９０．９２）を酵母エキス培地（ブドウ
糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／Ｖ％）に植菌し、３
７℃で３日間振とう培養した。次いで、得られた培養液
を、前述の酵母エキス培地に植菌（対培地量２．０％）
し、ミニジャファーメンター（エイブル株式会社：モデ
ルＤＰＣー２）で３７℃、撹拌数４５０回／分で５日間
培養した。培養終了時のエリスリトールの対糖収率は３
５．１％であった。
糖３０Ｗ／Ｖ％、酵母エキス１Ｗ／Ｖ％）に植菌し、３
７℃で３日間振とう培養した。次いで、得られた培養液
を、前述の酵母エキス培地に植菌（対培地量２．０％）
し、ミニジャファーメンター（エイブル株式会社：モデ
ルＤＰＣー２）で３７℃、撹拌数４５０回／分で５日間
培養した。培養終了時のエリスリトールの対糖収率は３
５．１％であった。
【００２２】実施例６ 実施例４の糖濃度３０Ｗ／Ｖ％の培地で培養した培養液
の一部を用いて、エリスリトールの結晶を得て物質の確
認を行った。即ち、培養液から菌体を濾去し上澄液を得
た。次いで、この上澄液を活性炭による脱色及びイオン
交換樹脂（ＳＫ−１Ｂ（三菱化学）：ＰＡ−４０８（三
菱化学））による脱塩をし、得られた溶出液を糖濃度５
０％以上に濃縮した後、ゆっくりと冷却しながら結晶を
得た。更に、この結晶を水から再結晶して結晶を得た。
本物質の赤外線吸収スペクトル、融点及び核磁気共鳴ス
ペクトルをエリスリトールの標準品と比較したところ一
致する事から本物質はエリスリトールである事を確認し
た。
の一部を用いて、エリスリトールの結晶を得て物質の確
認を行った。即ち、培養液から菌体を濾去し上澄液を得
た。次いで、この上澄液を活性炭による脱色及びイオン
交換樹脂（ＳＫ−１Ｂ（三菱化学）：ＰＡ−４０８（三
菱化学））による脱塩をし、得られた溶出液を糖濃度５
０％以上に濃縮した後、ゆっくりと冷却しながら結晶を
得た。更に、この結晶を水から再結晶して結晶を得た。
本物質の赤外線吸収スペクトル、融点及び核磁気共鳴ス
ペクトルをエリスリトールの標準品と比較したところ一
致する事から本物質はエリスリトールである事を確認し
た。
【００２３】
【発明の効果】トリコスポロノイデス・メガチリエンシ
スに属する菌株を用いると、同属の公知菌株（前記文献
に記載の菌株）と比べてエリスリトール生産の培養時間
を大巾に短縮する（文献では糖濃度１０％の場合、培養
日数が６日間であるのに対して、本発明では２日間で培
養が終了する）ことができ、しかも両者の収率はほぼ同
程度であるため、本発明はエリスリトールを生産する上
で非常に有利な方法である。更に、本発明では、糖濃度
３０Ｗ／Ｖ％と高濃度の培地を用いた場合も、５日間で
培養が終了し、エリスリトールの収率（対糖収率）が約
３５％と比較的高いため、エリスリトールを生産する上
で極めて有利である。
スに属する菌株を用いると、同属の公知菌株（前記文献
に記載の菌株）と比べてエリスリトール生産の培養時間
を大巾に短縮する（文献では糖濃度１０％の場合、培養
日数が６日間であるのに対して、本発明では２日間で培
養が終了する）ことができ、しかも両者の収率はほぼ同
程度であるため、本発明はエリスリトールを生産する上
で非常に有利な方法である。更に、本発明では、糖濃度
３０Ｗ／Ｖ％と高濃度の培地を用いた場合も、５日間で
培養が終了し、エリスリトールの収率（対糖収率）が約
３５％と比較的高いため、エリスリトールを生産する上
で極めて有利である。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 Ｃ１２Ｒ 1:645）
Claims (2)
- 【請求項１】トリコスポロノイデス・メガチリエンシス
（Trichosporonoides megachiliensis ）に属する菌株
を高濃度の糖培地で培養し、培地中に蓄積されたエリス
リトールを採取することを特徴とする、エリスリトール
の製造方法。 - 【請求項２】高濃度の糖培地が糖濃度２０〜５０Ｗ／Ｖ
％である請求項１記載のエリスリトールの製造方法。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8172806A JPH1096A (ja) | 1996-06-13 | 1996-06-13 | 微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
| EP97922064A EP0935002A4 (en) | 1996-06-13 | 1997-05-15 | METHOD FOR PRODUCING ERYTHRITOL USING MICROORGANISMS |
| US09/194,890 US6110715A (en) | 1996-06-13 | 1997-05-15 | Method for producing erythritol using a microorganism |
| PCT/JP1997/001640 WO1997047760A1 (en) | 1996-06-13 | 1997-05-15 | Process for producing erythritol by using microorganism |
| IDP972042A ID19157A (id) | 1996-06-13 | 1997-06-13 | Suatu metoda untuk memproduksi eritritol dengan suatu penggunaan jasad renik-jasad renik |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP8172806A JPH1096A (ja) | 1996-06-13 | 1996-06-13 | 微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH1096A true JPH1096A (ja) | 1998-01-06 |
Family
ID=15948726
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP8172806A Pending JPH1096A (ja) | 1996-06-13 | 1996-06-13 | 微生物を用いるエリスリトールの製造方法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6110715A (ja) |
| EP (1) | EP0935002A4 (ja) |
| JP (1) | JPH1096A (ja) |
| ID (1) | ID19157A (ja) |
| WO (1) | WO1997047760A1 (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6960458B2 (en) | 2001-01-09 | 2005-11-01 | Director Of National Food Research Institute, Ministry Of Agriculture, Forestry And Fisheries | Erythrose reductase, its cDNA and cell which the cDNA express |
| JP2015500661A (ja) * | 2011-12-22 | 2015-01-08 | ザイレコ，インコーポレイテッド | バイオマスからの糖およびアルコールの生成 |
| US11281205B2 (en) | 2008-02-12 | 2022-03-22 | Drone-Control, Llc | Radio controlled aircraft, remote controller and methods for use therewith |
| WO2022215619A1 (ja) | 2021-04-07 | 2022-10-13 | 株式会社林原 | Ｇｌｐ－１分泌促進用組成物 |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU1693000A (en) * | 1999-12-10 | 2001-06-18 | Biongene Co. Ltd. | A fermentation process for preparing erythritol using mother liquor produced from purification process of palatinose |
| KR100434518B1 (ko) * | 2002-03-20 | 2004-06-05 | 주식회사 바이오앤진 | 신균주 슈도지마 츄쿠밴시스에 의한 에리스리톨의 발효제조방법 |
| US8679782B2 (en) | 2009-06-15 | 2014-03-25 | Massachusetts Institute Of Technology | Production of triacylglycerides, fatty acids, and their derivatives |
| EP2436772A1 (en) * | 2010-09-30 | 2012-04-04 | Annikki GmbH | Method for the production of erythritol |
Family Cites Families (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR970007200B1 (ko) * | 1993-06-07 | 1997-05-07 | 제일제당 주식회사 | 에리스리톨의 제조방법 |
| JP3845912B2 (ja) * | 1995-10-04 | 2006-11-15 | 三菱化学株式会社 | エリスリトールの製造方法 |
| DE69720379T2 (de) * | 1996-12-02 | 2004-02-12 | Mitsubishi Chemical Corp. | Verfahren zur Herstellung von Erythritol |
-
1996
- 1996-06-13 JP JP8172806A patent/JPH1096A/ja active Pending
-
1997
- 1997-05-15 US US09/194,890 patent/US6110715A/en not_active Expired - Lifetime
- 1997-05-15 EP EP97922064A patent/EP0935002A4/en not_active Withdrawn
- 1997-05-15 WO PCT/JP1997/001640 patent/WO1997047760A1/ja not_active Ceased
- 1997-06-13 ID IDP972042A patent/ID19157A/id unknown
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6960458B2 (en) | 2001-01-09 | 2005-11-01 | Director Of National Food Research Institute, Ministry Of Agriculture, Forestry And Fisheries | Erythrose reductase, its cDNA and cell which the cDNA express |
| US11281205B2 (en) | 2008-02-12 | 2022-03-22 | Drone-Control, Llc | Radio controlled aircraft, remote controller and methods for use therewith |
| JP2015500661A (ja) * | 2011-12-22 | 2015-01-08 | ザイレコ，インコーポレイテッド | バイオマスからの糖およびアルコールの生成 |
| WO2022215619A1 (ja) | 2021-04-07 | 2022-10-13 | 株式会社林原 | Ｇｌｐ－１分泌促進用組成物 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| WO1997047760A1 (en) | 1997-12-18 |
| EP0935002A4 (en) | 2002-01-02 |
| US6110715A (en) | 2000-08-29 |
| ID19157A (id) | 1998-06-18 |
| EP0935002A1 (en) | 1999-08-11 |
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Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20040119 |