JPH09154590A - エリスリトールの製造方法 - Google Patents
エリスリトールの製造方法Info
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- JPH09154590A JPH09154590A JP26319096A JP26319096A JPH09154590A JP H09154590 A JPH09154590 A JP H09154590A JP 26319096 A JP26319096 A JP 26319096A JP 26319096 A JP26319096 A JP 26319096A JP H09154590 A JPH09154590 A JP H09154590A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】
【解決手段】 イエロビア属、ウスチラゴ属、フィロバ
ヂウム属又はトリゴノプシス属に属する発酵性糖質から
エリスリトールを産生する能力を有する酵母を用い、発
酵性糖質を主炭素源とする培地で培養し、培養物よりエ
リスリトールを採取することより成るエリスリトールの
製造方法。 【効果】 発酵性糖質から高収率で効率良くエリスリト
ールを製造することができる。
ヂウム属又はトリゴノプシス属に属する発酵性糖質から
エリスリトールを産生する能力を有する酵母を用い、発
酵性糖質を主炭素源とする培地で培養し、培養物よりエ
リスリトールを採取することより成るエリスリトールの
製造方法。 【効果】 発酵性糖質から高収率で効率良くエリスリト
ールを製造することができる。
Description
【発明の属する技術分野】本発明はエリスリトールの製
造方法に関し、更に詳しくは、酵母を利用して、発酵法
により工業的に有利にエリスリトールを製造する方法に
関する。
造方法に関し、更に詳しくは、酵母を利用して、発酵法
により工業的に有利にエリスリトールを製造する方法に
関する。
【従来の技術】エリスリトールの製造方法としては、ト
リゴノブシス属、キャンジダ属の酵母をグリセロールを
炭素源とする培地に培養して製造する方法(特公昭47
−41549号公報)、キャンジダ属、トルロプシス
属、ハンゼヌラ属の酵母を炭化水素などを炭素源とする
培地に培養して製造する方法(特公昭51−21072
号公報)が知られている。しかしながら、これらの方法
は、炭素源として使用される原料が実際の工業的生産に
おいて適当でないため、未だ工業化されていない。ま
た、モニリエラ・トメントサ・バール・ポリニス(Mo
niliellatomentosa var. po
llinis)をグルコースなどの糖質を炭素源とする
培地に培養して製造する方法(特公昭60−11029
5号公報など)も知られている。この方法は安価で安全
な原料であるグルコースを使用し、かつ生産性も高いと
いう点ですぐれているが、培養中の発泡が著しく、通常
使用されている消泡剤では役にたたないため、高価なキ
サダンガム(Xanthangum)などを多量に添加
する必要があり工業的生産においては必ずしも有利な方
法とはいえない。
リゴノブシス属、キャンジダ属の酵母をグリセロールを
炭素源とする培地に培養して製造する方法(特公昭47
−41549号公報)、キャンジダ属、トルロプシス
属、ハンゼヌラ属の酵母を炭化水素などを炭素源とする
培地に培養して製造する方法(特公昭51−21072
号公報)が知られている。しかしながら、これらの方法
は、炭素源として使用される原料が実際の工業的生産に
おいて適当でないため、未だ工業化されていない。ま
た、モニリエラ・トメントサ・バール・ポリニス(Mo
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llinis)をグルコースなどの糖質を炭素源とする
培地に培養して製造する方法(特公昭60−11029
5号公報など)も知られている。この方法は安価で安全
な原料であるグルコースを使用し、かつ生産性も高いと
いう点ですぐれているが、培養中の発泡が著しく、通常
使用されている消泡剤では役にたたないため、高価なキ
サダンガム(Xanthangum)などを多量に添加
する必要があり工業的生産においては必ずしも有利な方
法とはいえない。
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、安価
で且つ容易に供給しうる原料から、高収率で安価にエリ
スリトールを製造する方法を提供することにある。
で且つ容易に供給しうる原料から、高収率で安価にエリ
スリトールを製造する方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】本発明者らは、安価な原
料からエリスリトールを製造する方法について研究を重
ねた結果、イエロビア属、ウスチラゴ属、フィロバシヂ
ウム属およびトリゴノプシス属に属する多くの酵母が、
グルコース、フルクトースなどの発酵性糖質から多量に
エリスリトールを生成することを見い出し、本発明を完
成するに至った。すなわち本発明は、イエロビア属、ウ
スチラゴ属、フィロバシヂウム属又はトリゴノプシス属
に属し、発酵性糖質からエリスリトールを産生する能力
を有する微生物を、発酵性糖質を主炭素源とする培地で
培養し、培養物よりエリスリトールを採取することを特
徴とするエリスリトールの製造方法を提供するものであ
る。この発明の好ましい態様によれば、イエロビア属に
属する酵母が、イエロビア・リポリチカである上記記載
の製造方法;ウスチラゴ属に属する酵母が、ウスチラゴ
・クルス−ガリ、ウスチラゴ・シノドンチス、ウスチラ
ゴ・メイデス又はウスチラゴ・ラベンホスチアナである
上記記載の製造方法;フィロバシヂウム属に属する酵母
が、フィロバシヂウム・カプスリゲヌスである上記記載
の製造方法;トリゴノプシス属に属する酵母が、トリゴ
ノプシス・バリアビリスである上記記載の製造方法;発
酵性糖質が、グルコース、フルクトース又はグリセロー
ルである上記記載の製造方法;培地中の発酵性糖質の濃
度が20〜50%の範囲内である上記記載の製造方法;
培養温度が25℃〜35℃の範囲内である上記記載の製
造方法が提供される。
料からエリスリトールを製造する方法について研究を重
ねた結果、イエロビア属、ウスチラゴ属、フィロバシヂ
ウム属およびトリゴノプシス属に属する多くの酵母が、
グルコース、フルクトースなどの発酵性糖質から多量に
エリスリトールを生成することを見い出し、本発明を完
成するに至った。すなわち本発明は、イエロビア属、ウ
スチラゴ属、フィロバシヂウム属又はトリゴノプシス属
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を有する微生物を、発酵性糖質を主炭素源とする培地で
培養し、培養物よりエリスリトールを採取することを特
徴とするエリスリトールの製造方法を提供するものであ
る。この発明の好ましい態様によれば、イエロビア属に
属する酵母が、イエロビア・リポリチカである上記記載
の製造方法;ウスチラゴ属に属する酵母が、ウスチラゴ
・クルス−ガリ、ウスチラゴ・シノドンチス、ウスチラ
ゴ・メイデス又はウスチラゴ・ラベンホスチアナである
上記記載の製造方法;フィロバシヂウム属に属する酵母
が、フィロバシヂウム・カプスリゲヌスである上記記載
の製造方法;トリゴノプシス属に属する酵母が、トリゴ
ノプシス・バリアビリスである上記記載の製造方法;発
酵性糖質が、グルコース、フルクトース又はグリセロー
ルである上記記載の製造方法;培地中の発酵性糖質の濃
度が20〜50%の範囲内である上記記載の製造方法;
培養温度が25℃〜35℃の範囲内である上記記載の製
造方法が提供される。
【発明の実施の形態】以下、本発明の実施の形態につい
て説明する。本発明で用いる酵母としては、イエロビア
属、ウスチラゴ属、フィロバシヂウム属又はトリゴノプ
シス属に属し、発酵性糖質からエリスリトールを産生す
る能力を有するものであれば、いかなる酵母であっても
良い。具体的には、イエロビア属に属する酵母として
は、例えば、イエロビア・リポリチカ(Yarrowi
a lipolytica)等;ウスチラゴ属に属する
酵母としては例えば、ウスチラゴ・クルス−ガリ(Us
tilago crus−galli)、ウスチラゴ・
シノドンチス(Ustilago cynodonti
s)、ウスチラゴ・メイデス(Ustilago ma
ydis)およびウスチラゴ・ラベンホスチアナ(Us
tilago rabenhorstiana)等;フ
ィロバシヂウム属に属する酵母としては、例えば、フィ
ロバシヂウム・カプスリゲヌス(Filobasidi
um capsuligenum)等;トリゴノプシス
属に属する酵母としては、例えば、トリゴノプシス・バ
リアビリス(Trigonopsis variabi
lis)等が好適なものとして挙げられる。上記酵母
は、UV照射、N−メチル−N−ニトロソグアニジン
(NTG)処理、エチルメタンスルホネート(EMS)
処理、亜硝酸処理、アクリジン処理等による変異株、あ
るいは細胞融合もしくは遺伝子組換え法などの遺伝学的
手法により誘導される遺伝子組換え株などのいずれの株
であってもよい。本発明で用いる酵母としてはイエロビ
ア属に属する酵母が特に好ましい。上記酵母は、いずれ
も寄託機関に寄託されている公知の菌株であり、寄託機
関より容易に入手することができる。すなわち、イエロ
ビア・リポリチカは、アメリカン・タイプカルチャー・
コレクション(American Type Cult
ure Collection;ATCC)にATCC
8661として寄託されており、ウスチラゴ・クルス−
ガリ、ウスチラゴ・シノドンチス、ウスチラゴ・メイデ
ス、ウスチラゴ・ラベンホスチアナ、フィロバシヂウム
・カプスリゲヌムおよびトリゴノプシス・バリアビリス
は、財団法人発酵研究所(Institute For
Fermentation,Osaka;IFO)
に、それぞれ、IFO31947、IFO9758、I
FO6907、IFO8995、IFO1119および
IFO0671として寄託されている。これらの酵母を
培養するために使用される培地の主炭素源としては、グ
ルコース、フルクトース、グリセロールなどの発酵性糖
質が利用される。これらの発酵性糖質は、単独でも組み
合わせても使用できる。使用濃度は特に限定されない
が、エリスリトールの生成を阻害しない範囲で可能な限
り高くするのが有利であり、好ましい濃度は20〜50
%(W/V)の範囲内である。窒素源としてはアンモニ
ア塩、尿素、ペプトン、酵母エキス、コーンステープリ
カーなどの各種の有機、無機の窒素化合物が用いられ
る。無機塩としては各種リン酸塩、硫酸塩、マグネシウ
ム、カリウム、マンガン、鉄、亜鉛等の金属塩が用いら
れる。また、ビタミン、ヌクレオチド、アミノ酸などの
酵母の生育を促進する因子を必要に応じて添加する。ま
た、培養中の発泡を抑えるために市販の消泡剤を適量添
加しておくことが望ましい。発酵の初めの培地はpH3
〜7、好ましくはpH3〜4.5に調整する。また、培
養中の温度は25℃〜35℃、好ましくは27℃〜32
℃に調節する。培養に際しては、斜面培養から菌体を直
接培地に接種しても構わないが、液体培地で1日〜4日
間の培養で得られる培養液を接種するほうが望ましい。
また、培養は、通気攪拌、振とうなどによる好気的条件
下で行う。培養時間は主炭素源が消費されるまで行われ
るのが望ましく、通常は3〜8日の間で行われる。な
お、培養液中のエリスリトール生成量はガスクロマトグ
ラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどの方法で測
定することができる。このようにして培養液中に蓄積し
たエリスリトールは常法に従って、培養物より分離・精
製される。具体的には、遠心分離、ろ過等により固形物
を除去した後、活性炭、イオン交換樹脂により脱色、脱
塩し、その溶液から結晶化することによりエリスリトー
ルを分離・精製することができる。
て説明する。本発明で用いる酵母としては、イエロビア
属、ウスチラゴ属、フィロバシヂウム属又はトリゴノプ
シス属に属し、発酵性糖質からエリスリトールを産生す
る能力を有するものであれば、いかなる酵母であっても
良い。具体的には、イエロビア属に属する酵母として
は、例えば、イエロビア・リポリチカ(Yarrowi
a lipolytica)等;ウスチラゴ属に属する
酵母としては例えば、ウスチラゴ・クルス−ガリ(Us
tilago crus−galli)、ウスチラゴ・
シノドンチス(Ustilago cynodonti
s)、ウスチラゴ・メイデス(Ustilago ma
ydis)およびウスチラゴ・ラベンホスチアナ(Us
tilago rabenhorstiana)等;フ
ィロバシヂウム属に属する酵母としては、例えば、フィ
ロバシヂウム・カプスリゲヌス(Filobasidi
um capsuligenum)等;トリゴノプシス
属に属する酵母としては、例えば、トリゴノプシス・バ
リアビリス(Trigonopsis variabi
lis)等が好適なものとして挙げられる。上記酵母
は、UV照射、N−メチル−N−ニトロソグアニジン
(NTG)処理、エチルメタンスルホネート(EMS)
処理、亜硝酸処理、アクリジン処理等による変異株、あ
るいは細胞融合もしくは遺伝子組換え法などの遺伝学的
手法により誘導される遺伝子組換え株などのいずれの株
であってもよい。本発明で用いる酵母としてはイエロビ
ア属に属する酵母が特に好ましい。上記酵母は、いずれ
も寄託機関に寄託されている公知の菌株であり、寄託機
関より容易に入手することができる。すなわち、イエロ
ビア・リポリチカは、アメリカン・タイプカルチャー・
コレクション(American Type Cult
ure Collection;ATCC)にATCC
8661として寄託されており、ウスチラゴ・クルス−
ガリ、ウスチラゴ・シノドンチス、ウスチラゴ・メイデ
ス、ウスチラゴ・ラベンホスチアナ、フィロバシヂウム
・カプスリゲヌムおよびトリゴノプシス・バリアビリス
は、財団法人発酵研究所(Institute For
Fermentation,Osaka;IFO)
に、それぞれ、IFO31947、IFO9758、I
FO6907、IFO8995、IFO1119および
IFO0671として寄託されている。これらの酵母を
培養するために使用される培地の主炭素源としては、グ
ルコース、フルクトース、グリセロールなどの発酵性糖
質が利用される。これらの発酵性糖質は、単独でも組み
合わせても使用できる。使用濃度は特に限定されない
が、エリスリトールの生成を阻害しない範囲で可能な限
り高くするのが有利であり、好ましい濃度は20〜50
%(W/V)の範囲内である。窒素源としてはアンモニ
ア塩、尿素、ペプトン、酵母エキス、コーンステープリ
カーなどの各種の有機、無機の窒素化合物が用いられ
る。無機塩としては各種リン酸塩、硫酸塩、マグネシウ
ム、カリウム、マンガン、鉄、亜鉛等の金属塩が用いら
れる。また、ビタミン、ヌクレオチド、アミノ酸などの
酵母の生育を促進する因子を必要に応じて添加する。ま
た、培養中の発泡を抑えるために市販の消泡剤を適量添
加しておくことが望ましい。発酵の初めの培地はpH3
〜7、好ましくはpH3〜4.5に調整する。また、培
養中の温度は25℃〜35℃、好ましくは27℃〜32
℃に調節する。培養に際しては、斜面培養から菌体を直
接培地に接種しても構わないが、液体培地で1日〜4日
間の培養で得られる培養液を接種するほうが望ましい。
また、培養は、通気攪拌、振とうなどによる好気的条件
下で行う。培養時間は主炭素源が消費されるまで行われ
るのが望ましく、通常は3〜8日の間で行われる。な
お、培養液中のエリスリトール生成量はガスクロマトグ
ラフィー、高速液体クロマトグラフィーなどの方法で測
定することができる。このようにして培養液中に蓄積し
たエリスリトールは常法に従って、培養物より分離・精
製される。具体的には、遠心分離、ろ過等により固形物
を除去した後、活性炭、イオン交換樹脂により脱色、脱
塩し、その溶液から結晶化することによりエリスリトー
ルを分離・精製することができる。
【実施例】以下に、実施例により本発明を更に具体的に
述べるが、本発明はその要旨を越えない限り、以下に記
載する方法に限定されるものではない。 実施例1 グルコース20%(W/V)、酵母エキス1%を含む培
地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコにい
れ、120℃、20分間滅菌したものに、イエロビア・
リポリチカATCC8661株を植菌し、27℃で7日
間振とう培養した。培養液中のエリスリトール濃度を高
速液体クロマトグラフィーで測定した結果、その濃度は
92g/Lであった。これは対グルコース収率46%で
あった。培養液を遠心分離して固形物をろ別し、活性炭
により脱色した。この清澄液を強酸性陽イオン交換樹脂
(ダイヤイオン SKIB H型)および弱塩基性陰イ
オン交換樹脂(ダイヤイオン WA30 OH型)を用
いて脱塩を行った。この液を50℃で減圧濃縮し、エリ
スリトール60%まで濃縮し、冷暗所に放置することに
より結晶を得た。この結晶は融点121℃で甘味を有し
ていた。分子式はC 4H10O4であり、液体クロマトグラ
フィーの保持時間、赤外線吸収スペクトルが標準物質と
一致し、エリスリトールと同定された。 実施例2 酵母エキス1.0%、グルコース20%を含む培地50
mlを500mlの三角フラスコに入れ、120℃で2
0分間滅菌し、これにイエロビア・リポリチカATCC
8661株を植菌し、27℃で4日間振とう培養した。
この培養物を10%の割合で上記の培地に植菌して同様
に培養し、下記のとおり、各濃度のグルコースを含む培
地に植菌して培養した。すなわち、酵母エキス1.0%
およびグルコース20〜60%を含む培地を50mlず
つ500mlの三角フラスコに入れ、前記の如く植菌
し、7日間振とう培養した。培養終了後、培養液中のエ
リスリトール濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定
した。その結果、各グルコース濃度におけるエリスリト
ールの産生量は次のとおりであった。 グルコース濃度(%) エリスリトール産生量(g/L) 20 72.6 30 98.6 40 73.6 50 57.2 60 3.7 実施例3 フルクトース20%(W/V)、および、酵母エキス1
%を含む培地50mlを、綿栓した500mlの三角フ
ラスコにいれ、120℃、20分間滅菌したものに、イ
エロビア・リポリチカATCC8661株を植菌し27
℃で7日間振とう培養した。培養液中のエリスリトール
濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定した結果、そ
の濃度は53.4g/Lであった。 実施例4 グリセロール20%(W/V)、酵母エキス1%を含む
培地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコにい
れ、120℃、20分間滅菌したものに、イエロビア・
リポリチカATCC8661株を植菌し27℃で7日間
振とう培養した。培養液中のエリスリトール濃度を高速
液体クロマトグラフィーで測定した結果、その濃度は4
3.2g/Lであった。 実施例5 グルコース30%、酵母エキス1%を含む培地50ml
ずつ6本の綿栓した500mlの三角フラスコに入れ、
120℃、20分間滅菌したものに、イエロビア・リポ
リチカATCC8661株を植菌し27℃で4日間振と
う培養した。グルコース30%、酵母エキス1%を含む
培地17Lを30Lの培養槽に入れ、500ppmの消
泡剤CA330(日本油脂株式会社製)を添加し、12
0℃、20分間滅菌したものに前培養物を植菌し、27
℃で4日間培養した。この培養液1.7Lを無菌的にと
り、グルコース40%(W/V)、酵母エキス2%、塩
酸チアミン0.1%を含み、pH4.0に調整した培地
17Lを30Lの培養槽にいれ、500ppmの消泡剤
CA330を添加し、120℃、20分間滅菌したもの
に植菌し、27℃で培養した。培養開始96時間後にグ
ルコースが完全に消費され、そのときのエリスリトール
の濃度は205.5g/Lであった。また培養中に著し
い発泡は見られなかった。 実施例6 グルコース20%(W/V)、酵母エキス1%を含む培
地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコにい
れ、120℃、20分間滅菌したものに、ウスチラゴ・
シノドンチスIFO9758株を植菌し、27℃で7日
間振とう培養した。培養液中のエリスリトール濃度を高
速液体クロマトグラフィーで測定した結果、その濃度は
103g/Lであった。これは対グルコース収率51.
5%であった。発酵液を遠心分離して固形物をろ別し、
活性炭により脱色した。この清澄液を強酸性陽イオン交
換樹脂(ダイヤイオン SKIB H型)および弱塩基
性陰イオン交換樹脂(ダイヤイオン WA30 OH
型)を用いて脱塩を行った。この液を50℃で減圧濃縮
し、エリスリトール60%まで濃縮し、冷暗所に放置す
ることにより結晶を得た。この結晶は融点121℃で甘
味を有していた。分子式はC4H10O4であり、液体クロ
マトグラフィーの保持時間、赤外線吸収スペクトルが標
準物質と一致し、エリスリトールと同定された。 実施例7 グルコース20%(W/V)、酵母エキス1%を含む培
地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコに入
れ、120℃、20分間滅菌したものに、ウスチラゴ・
メイデスIFO6907株、ウスチラゴ・ラベンホスチ
アナIFO8995株、ウスチラゴ・クルス−ガリIF
O31947株、フィロバシヂウム・カプスリゲヌムI
FO1119株、トリゴノプシス・バリアビリスIFO
0671株をそれぞれ植菌し、27℃で7日間振とう培
養した。培養終了後、培養液中のエリスリトール濃度を
高速液体クロマトグラフィーで測定した。その結果、各
菌株のエリスリトールの産生量は次の通りであった。菌 株 エリスリトール産生量(g/L) IFO6907 28.0g/L IFO8895 33.3g/L IFO31947 3.7g/L IFO1119 21.9g/L IFO0631 15.1g/L 実施例8 酵母エキス1.0%、グルコース20%を含む培地50
mlを500mlの三角フラスコに入れ、120℃で2
0分間滅菌し、これにイエロビア・リポリチカATCC
8661株を植菌し、27℃で4日間振とう培養した。
この培養物を10%の割合で上記の培地に植菌して同様
に培養し、下記のとおり、各濃度のグルコースを含む培
地に植菌して培養した。すなわち、酵母エキス1.0%
およびグルコース10〜60%を含む培地を50mlず
つ500mlの三角フラスコに入れ、前記の如く植菌
し、7日間振とう培養した。培養終了後、培養液中のエ
リスリトール濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定
した。その結果、各グルコース濃度におけるエリスリト
ールの産生量は次のとおりであった。 グルコース濃度(%) エリスリトール産生量(g/L) 10 0 20 60.6 30 77.9 40 92.7 50 37.2 60 2.3 実施例9 酵母エキス1.0%、グルコース20%を含む培地50
mlを500mlの三角フラスコに入れ、120℃で2
0分間滅菌し、これにイエロビア・リポリチカATCC
8661株を植菌し、27℃で4日間振とう培養した。
酵母エキス1.0%、グルコース40%、500ppm
の消泡剤CA330を含む培地500mlを1Lの培養
槽に入れ、120℃で20分間滅菌したものに前培養物
を植菌し、20〜37℃の間で温度を変えてそれぞれ9
6時間培養した。培養終了後、培養液中のエリスリトー
ル濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定した。その
結果、各温度におけるエリスリトールの産生量は次のと
おりであった。温度(℃) エリスリトール産生量(g/L) 20 30.0 25 61.4 30 75.4 32 88.8 35 47.4 37 0
述べるが、本発明はその要旨を越えない限り、以下に記
載する方法に限定されるものではない。 実施例1 グルコース20%(W/V)、酵母エキス1%を含む培
地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコにい
れ、120℃、20分間滅菌したものに、イエロビア・
リポリチカATCC8661株を植菌し、27℃で7日
間振とう培養した。培養液中のエリスリトール濃度を高
速液体クロマトグラフィーで測定した結果、その濃度は
92g/Lであった。これは対グルコース収率46%で
あった。培養液を遠心分離して固形物をろ別し、活性炭
により脱色した。この清澄液を強酸性陽イオン交換樹脂
(ダイヤイオン SKIB H型)および弱塩基性陰イ
オン交換樹脂(ダイヤイオン WA30 OH型)を用
いて脱塩を行った。この液を50℃で減圧濃縮し、エリ
スリトール60%まで濃縮し、冷暗所に放置することに
より結晶を得た。この結晶は融点121℃で甘味を有し
ていた。分子式はC 4H10O4であり、液体クロマトグラ
フィーの保持時間、赤外線吸収スペクトルが標準物質と
一致し、エリスリトールと同定された。 実施例2 酵母エキス1.0%、グルコース20%を含む培地50
mlを500mlの三角フラスコに入れ、120℃で2
0分間滅菌し、これにイエロビア・リポリチカATCC
8661株を植菌し、27℃で4日間振とう培養した。
この培養物を10%の割合で上記の培地に植菌して同様
に培養し、下記のとおり、各濃度のグルコースを含む培
地に植菌して培養した。すなわち、酵母エキス1.0%
およびグルコース20〜60%を含む培地を50mlず
つ500mlの三角フラスコに入れ、前記の如く植菌
し、7日間振とう培養した。培養終了後、培養液中のエ
リスリトール濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定
した。その結果、各グルコース濃度におけるエリスリト
ールの産生量は次のとおりであった。 グルコース濃度(%) エリスリトール産生量(g/L) 20 72.6 30 98.6 40 73.6 50 57.2 60 3.7 実施例3 フルクトース20%(W/V)、および、酵母エキス1
%を含む培地50mlを、綿栓した500mlの三角フ
ラスコにいれ、120℃、20分間滅菌したものに、イ
エロビア・リポリチカATCC8661株を植菌し27
℃で7日間振とう培養した。培養液中のエリスリトール
濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定した結果、そ
の濃度は53.4g/Lであった。 実施例4 グリセロール20%(W/V)、酵母エキス1%を含む
培地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコにい
れ、120℃、20分間滅菌したものに、イエロビア・
リポリチカATCC8661株を植菌し27℃で7日間
振とう培養した。培養液中のエリスリトール濃度を高速
液体クロマトグラフィーで測定した結果、その濃度は4
3.2g/Lであった。 実施例5 グルコース30%、酵母エキス1%を含む培地50ml
ずつ6本の綿栓した500mlの三角フラスコに入れ、
120℃、20分間滅菌したものに、イエロビア・リポ
リチカATCC8661株を植菌し27℃で4日間振と
う培養した。グルコース30%、酵母エキス1%を含む
培地17Lを30Lの培養槽に入れ、500ppmの消
泡剤CA330(日本油脂株式会社製)を添加し、12
0℃、20分間滅菌したものに前培養物を植菌し、27
℃で4日間培養した。この培養液1.7Lを無菌的にと
り、グルコース40%(W/V)、酵母エキス2%、塩
酸チアミン0.1%を含み、pH4.0に調整した培地
17Lを30Lの培養槽にいれ、500ppmの消泡剤
CA330を添加し、120℃、20分間滅菌したもの
に植菌し、27℃で培養した。培養開始96時間後にグ
ルコースが完全に消費され、そのときのエリスリトール
の濃度は205.5g/Lであった。また培養中に著し
い発泡は見られなかった。 実施例6 グルコース20%(W/V)、酵母エキス1%を含む培
地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコにい
れ、120℃、20分間滅菌したものに、ウスチラゴ・
シノドンチスIFO9758株を植菌し、27℃で7日
間振とう培養した。培養液中のエリスリトール濃度を高
速液体クロマトグラフィーで測定した結果、その濃度は
103g/Lであった。これは対グルコース収率51.
5%であった。発酵液を遠心分離して固形物をろ別し、
活性炭により脱色した。この清澄液を強酸性陽イオン交
換樹脂(ダイヤイオン SKIB H型)および弱塩基
性陰イオン交換樹脂(ダイヤイオン WA30 OH
型)を用いて脱塩を行った。この液を50℃で減圧濃縮
し、エリスリトール60%まで濃縮し、冷暗所に放置す
ることにより結晶を得た。この結晶は融点121℃で甘
味を有していた。分子式はC4H10O4であり、液体クロ
マトグラフィーの保持時間、赤外線吸収スペクトルが標
準物質と一致し、エリスリトールと同定された。 実施例7 グルコース20%(W/V)、酵母エキス1%を含む培
地50mlを綿栓した500mlの三角フラスコに入
れ、120℃、20分間滅菌したものに、ウスチラゴ・
メイデスIFO6907株、ウスチラゴ・ラベンホスチ
アナIFO8995株、ウスチラゴ・クルス−ガリIF
O31947株、フィロバシヂウム・カプスリゲヌムI
FO1119株、トリゴノプシス・バリアビリスIFO
0671株をそれぞれ植菌し、27℃で7日間振とう培
養した。培養終了後、培養液中のエリスリトール濃度を
高速液体クロマトグラフィーで測定した。その結果、各
菌株のエリスリトールの産生量は次の通りであった。菌 株 エリスリトール産生量(g/L) IFO6907 28.0g/L IFO8895 33.3g/L IFO31947 3.7g/L IFO1119 21.9g/L IFO0631 15.1g/L 実施例8 酵母エキス1.0%、グルコース20%を含む培地50
mlを500mlの三角フラスコに入れ、120℃で2
0分間滅菌し、これにイエロビア・リポリチカATCC
8661株を植菌し、27℃で4日間振とう培養した。
この培養物を10%の割合で上記の培地に植菌して同様
に培養し、下記のとおり、各濃度のグルコースを含む培
地に植菌して培養した。すなわち、酵母エキス1.0%
およびグルコース10〜60%を含む培地を50mlず
つ500mlの三角フラスコに入れ、前記の如く植菌
し、7日間振とう培養した。培養終了後、培養液中のエ
リスリトール濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定
した。その結果、各グルコース濃度におけるエリスリト
ールの産生量は次のとおりであった。 グルコース濃度(%) エリスリトール産生量(g/L) 10 0 20 60.6 30 77.9 40 92.7 50 37.2 60 2.3 実施例9 酵母エキス1.0%、グルコース20%を含む培地50
mlを500mlの三角フラスコに入れ、120℃で2
0分間滅菌し、これにイエロビア・リポリチカATCC
8661株を植菌し、27℃で4日間振とう培養した。
酵母エキス1.0%、グルコース40%、500ppm
の消泡剤CA330を含む培地500mlを1Lの培養
槽に入れ、120℃で20分間滅菌したものに前培養物
を植菌し、20〜37℃の間で温度を変えてそれぞれ9
6時間培養した。培養終了後、培養液中のエリスリトー
ル濃度を高速液体クロマトグラフィーで測定した。その
結果、各温度におけるエリスリトールの産生量は次のと
おりであった。温度(℃) エリスリトール産生量(g/L) 20 30.0 25 61.4 30 75.4 32 88.8 35 47.4 37 0
【発明の効果】本発明の方法によれば、グルコース等の
安価な発酵性糖質から高収率で効率良くエリスリトール
を製造することができる。
安価な発酵性糖質から高収率で効率良くエリスリトール
を製造することができる。
Claims (9)
- 【請求項1】 イエロビア属、ウスチラゴ属、フィロバ
シヂウム属又はトリゴノプシス属に属する発酵性糖質か
らエリスリトールを産生する能力を有する酵母を、発酵
性糖質を主炭素源とする培地で培養し、培養物よりエリ
スリトールを採取することを特徴とするエリスリトール
の製造方法。 - 【請求項2】 酵母がイエロビア属に属する酵母である
ことを特徴とする請求項1に記載の製造方法。 - 【請求項3】 イエロビア属に属する酵母が、イエロビ
ア・リポリチカである請求項1または2に記載の製造方
法。 - 【請求項4】 ウスチラゴ属に属する酵母が、ウスチラ
ゴ・クルス−ガリ、ウスチラゴ・シノドンチス、ウスチ
ラゴ・メイデス又はウスチラゴ・ラベンホスチアナであ
る請求項1に記載の製造方法。 - 【請求項5】 フィロバシヂウム属に属する酵母が、フ
ィロバシヂウム・カプスリゲヌスである請求項1に記載
の製造方法。 - 【請求項6】 トリゴノプシス属に属する酵母が、トリ
ゴノプシス・バリアビリスである請求項1に記載の製造
方法。 - 【請求項7】 発酵性糖質が、グルコース、フルクトー
ス又はグリセロールである請求項1または2に記載の製
造方法。 - 【請求項8】 培地中の発酵性糖質の濃度が20〜50
%の範囲内である請求項1または2に記載の製造方法。 - 【請求項9】 培養温度が25℃〜35℃の範囲内であ
る請求項1または2に記載の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP26319096A JPH09154590A (ja) | 1995-10-04 | 1996-10-03 | エリスリトールの製造方法 |
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP25766495 | 1995-10-04 | ||
| JP7-257664 | 1995-10-04 | ||
| JP26319096A JPH09154590A (ja) | 1995-10-04 | 1996-10-03 | エリスリトールの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH09154590A true JPH09154590A (ja) | 1997-06-17 |
Family
ID=26543331
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP26319096A Pending JPH09154590A (ja) | 1995-10-04 | 1996-10-03 | エリスリトールの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH09154590A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114032264A (zh) * | 2021-09-01 | 2022-02-11 | 康彤(上海)生物研发有限公司 | 一种同时生产阿洛酮糖和赤藓糖醇的方法 |
| CN114181268A (zh) * | 2021-12-26 | 2022-03-15 | 浙江华康药业股份有限公司 | 一种木糖母液联产赤藓糖醇和阿拉伯糖的方法 |
| KR20220032485A (ko) * | 2020-09-07 | 2022-03-15 | 주식회사 이지바이오 | 에리스리톨을 함유하는 사료 첨가제 조성물 |
-
1996
- 1996-10-03 JP JP26319096A patent/JPH09154590A/ja active Pending
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