JPS5821165A - 血液凝固異常因子の測定方法 - Google Patents
血液凝固異常因子の測定方法Info
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- JPS5821165A JPS5821165A JP11784481A JP11784481A JPS5821165A JP S5821165 A JPS5821165 A JP S5821165A JP 11784481 A JP11784481 A JP 11784481A JP 11784481 A JP11784481 A JP 11784481A JP S5821165 A JPS5821165 A JP S5821165A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は血液試料中の血液凝固異常因子、殊にビメミン
に欠乏に起因する血液凝固異常因子の免疫学的測定方法
及び該方法に使用する新規な免疫学的測定試薬に関する
。
に欠乏に起因する血液凝固異常因子の免疫学的測定方法
及び該方法に使用する新規な免疫学的測定試薬に関する
。
血液の凝固という現象は酵素の連鎖反応であり、血液が
陰性荷電を持つ異物面と接触することにより凝固系の活
性化が開始される。
陰性荷電を持つ異物面と接触することにより凝固系の活
性化が開始される。
まず、非活性型の酵素源が活性化されると、その活性化
酵素はつぎの酵素源に働いてこれを活性型の酵素とし、
下記に示す如き一連の反応を経て、やがてプロトロンビ
ン(凝固筒■因子)がトロンビンに活性化され、これが
最終基質であるフィブリノゲン(第i因子)に作用して
線維素として析出するに至る。
酵素はつぎの酵素源に働いてこれを活性型の酵素とし、
下記に示す如き一連の反応を経て、やがてプロトロンビ
ン(凝固筒■因子)がトロンビンに活性化され、これが
最終基質であるフィブリノゲン(第i因子)に作用して
線維素として析出するに至る。
異物面
↓
第X因子 活性第X因子
グロトロンピン トロンビン
血液凝固に関与する因子には第1から第X[因子迄あり
(第V因子は欠番)、この他番号は付されていな□いが
プレカリクレイン、高分子キニノゲンなどのように明ら
かに凝固に関与する因子も知られている。これらの凝固
因子のうちの一部には階累では々く、カルシウム(第1
V因子)、第V因子、高分子キニノゲンのように凝固促
進の補助因子として作用するものもあるが、第■因子を
除く他の因子はすべてタンパク性のものである。
(第V因子は欠番)、この他番号は付されていな□いが
プレカリクレイン、高分子キニノゲンなどのように明ら
かに凝固に関与する因子も知られている。これらの凝固
因子のうちの一部には階累では々く、カルシウム(第1
V因子)、第V因子、高分子キニノゲンのように凝固促
進の補助因子として作用するものもあるが、第■因子を
除く他の因子はすべてタンパク性のものである。
このうち第■、■、■およびX因子は、そのタンパク構
造中にγ−カルボキシグルタミン酸残基金持ち、この部
位へのカルシウムイオンの結合とリン脂質の存在下で活
性化機転がおこる。これらタンパク質の肝臓における正
常な生成には、ビタミンKが必須であること〃)ら、第
■、■、■およびX因子はとくにビタミンに依存性凝固
因子と呼ばれている。
造中にγ−カルボキシグルタミン酸残基金持ち、この部
位へのカルシウムイオンの結合とリン脂質の存在下で活
性化機転がおこる。これらタンパク質の肝臓における正
常な生成には、ビタミンKが必須であること〃)ら、第
■、■、■およびX因子はとくにビタミンに依存性凝固
因子と呼ばれている。
従って、ビタミンに欠乏状愈またはビタミンに拮抗物質
投与中の患者の肝臓ではこれらビタミンに依存性凝固因
子が正常に生成されず、異常構造のビタミンに依存因子
が生成される。これら異常構造のビタミンに依存因子は
通常″PIVKA″(proteirr 1ndrb
ced by vitamin Kabsence
or antagonist )と総称され、そ
れぞれの起源(凝固系■、■、■及びX因子)に応じて
PIVKA−Ti、■、■及びXと称されてお)、本明
細書に誉いても同様に称する。
投与中の患者の肝臓ではこれらビタミンに依存性凝固因
子が正常に生成されず、異常構造のビタミンに依存因子
が生成される。これら異常構造のビタミンに依存因子は
通常″PIVKA″(proteirr 1ndrb
ced by vitamin Kabsence
or antagonist )と総称され、そ
れぞれの起源(凝固系■、■、■及びX因子)に応じて
PIVKA−Ti、■、■及びXと称されてお)、本明
細書に誉いても同様に称する。
P7VKAはそのタンパク分子構造中にr−力゛ルホキ
シグルタミン酸残基を持たないため、カルシウムイオン
とは結合せず、従って血液凝固が阻讐される。・例えば
、PIVKA−Rからは、カル聾因子)が生成せず、従
って、血液凝固系に重大 5− な影響が生ずる。
シグルタミン酸残基を持たないため、カルシウムイオン
とは結合せず、従って血液凝固が阻讐される。・例えば
、PIVKA−Rからは、カル聾因子)が生成せず、従
って、血液凝固系に重大 5− な影響が生ずる。
正常な血管内では血液は凝固しない。しかし血管が破綻
して出血をおこした場合には、凝固系がIF常に作動し
なければ止血がおこらない。他方、血管内で何らかの原
因によって凝固系の活性化がおこると血栓を生じ、いわ
ゆる播種住血管内凝固症候群(以下”DIC”と略称す
る)のような重大な結果となることも今る。生体が正常
であれば、−たん凝固した血液は生体の防御機構として
の線Mv率溶解現象(線溶)によって溶けるが、異常に
強力な線溶がおこると出血を生じる。このように、凝固
−線溶系は多くの因子−酵素とその阻市物質など〜の複
雑な平衡状態の上で正常な機能を保っているのであるつ
。従ってその一部が破綻すれば血栓あるいは出血という
重大な状態が発生する。特に、ヒトの凝固系に関与する
因子は多く、きわめて複雑で、どの部位に異常が起った
かを適 6− 確に、しかも迅速に把握しないと、適切な予防、治療ま
たは措置ができないことになる。
して出血をおこした場合には、凝固系がIF常に作動し
なければ止血がおこらない。他方、血管内で何らかの原
因によって凝固系の活性化がおこると血栓を生じ、いわ
ゆる播種住血管内凝固症候群(以下”DIC”と略称す
る)のような重大な結果となることも今る。生体が正常
であれば、−たん凝固した血液は生体の防御機構として
の線Mv率溶解現象(線溶)によって溶けるが、異常に
強力な線溶がおこると出血を生じる。このように、凝固
−線溶系は多くの因子−酵素とその阻市物質など〜の複
雑な平衡状態の上で正常な機能を保っているのであるつ
。従ってその一部が破綻すれば血栓あるいは出血という
重大な状態が発生する。特に、ヒトの凝固系に関与する
因子は多く、きわめて複雑で、どの部位に異常が起った
かを適 6− 確に、しかも迅速に把握しないと、適切な予防、治療ま
たは措置ができないことになる。
従来から出血の予防と治療には、凝固系に作用するもの
として、全血或は血漿分画製剤の輸注、ビタミンにの投
与などが臨床的に用いられ、この他線箔糸あるいは血小
板系に作用するものなども、その患者の状ゆに応じて使
用されている。逆に、血栓の予防には凝固系あるいは血
小板機能を抑制する薬剤が用いられている。この中で経
口的抗凝血薬として広く用いられているビタミンに拮抗
剤は凝固第■、■、■およびX因子、いわゆるビタミン
に依存因子を低下せしめることによって抗凝血効果を現
わすものである。
として、全血或は血漿分画製剤の輸注、ビタミンにの投
与などが臨床的に用いられ、この他線箔糸あるいは血小
板系に作用するものなども、その患者の状ゆに応じて使
用されている。逆に、血栓の予防には凝固系あるいは血
小板機能を抑制する薬剤が用いられている。この中で経
口的抗凝血薬として広く用いられているビタミンに拮抗
剤は凝固第■、■、■およびX因子、いわゆるビタミン
に依存因子を低下せしめることによって抗凝血効果を現
わすものである。
しかしながら、実際の臨床にあたってのビタミンに拮抗
剤の使用は、ビタミンに依存因子の異常表元進があるが
ために、特に凝固系のこの部位を抑制するために用いる
という確たる診断の上に立つてのものではなく、単に血
栓に対する対照療法的に用いられているに過ぎない。ま
た、ビタミンに拮抗剤は多くの患者に対して著明な効果
はあるにしてもその使用方法はむずかしく、例えば、ビ
タミンに拮抗剤を過剰に投与すると、ビタミンに依存因
子のγ−カルボキシル化が阻害されて異常構造をもった
PIVKAが生成されるため、血液の凝固性が低下して
出血を生じ、反対に投与量が不敏すると、血栓に対する
効果が乏しい。このような場合、血中にPIVKAが存
在するか否か、しかもその量を知ることができれば臨床
上の意義は極めて大きい。しかしながらこれを簡便迅速
に定量する方法は従来なかったのである。そのため、ビ
タミンに拮抗剤を長期にわたって連続投与する場合のそ
の投与量の決定は、ヘパプラスチンテスト(以下”HP
T“と略称する)、トロンボテスト(以下”TT“と略
称する)などにより凝血能を測定しながら、いわゆる試
行錯誤に頼っているのが現状である。
剤の使用は、ビタミンに依存因子の異常表元進があるが
ために、特に凝固系のこの部位を抑制するために用いる
という確たる診断の上に立つてのものではなく、単に血
栓に対する対照療法的に用いられているに過ぎない。ま
た、ビタミンに拮抗剤は多くの患者に対して著明な効果
はあるにしてもその使用方法はむずかしく、例えば、ビ
タミンに拮抗剤を過剰に投与すると、ビタミンに依存因
子のγ−カルボキシル化が阻害されて異常構造をもった
PIVKAが生成されるため、血液の凝固性が低下して
出血を生じ、反対に投与量が不敏すると、血栓に対する
効果が乏しい。このような場合、血中にPIVKAが存
在するか否か、しかもその量を知ることができれば臨床
上の意義は極めて大きい。しかしながらこれを簡便迅速
に定量する方法は従来なかったのである。そのため、ビ
タミンに拮抗剤を長期にわたって連続投与する場合のそ
の投与量の決定は、ヘパプラスチンテスト(以下”HP
T“と略称する)、トロンボテスト(以下”TT“と略
称する)などにより凝血能を測定しながら、いわゆる試
行錯誤に頼っているのが現状である。
すなわち、TTはPIVKAによシ影響を受け、HPT
は影響を受は難いとされていることから、次式によ、す
Inhibition Indegc(7,1,)を
求め、この値が0.3〜1.0の場合PIVKA陽性と
して、間接的にPIVKAの存在を求めてきたのである
。
は影響を受は難いとされていることから、次式によ、す
Inhibition Indegc(7,1,)を
求め、この値が0.3〜1.0の場合PIVKA陽性と
して、間接的にPIVKAの存在を求めてきたのである
。
Inhibition Index (1,1,)=
HPT(勢、)−,11T(%)/l1PT(%)しか
し、この方法で用いられる組織トロンボプラスチンはそ
の種類、力価等によって標準曲線が異なるという問題が
ある上、測定手技が繁雑で時@接的に証明する方法と、
しては二盗元免疫電気泳動法があり、とくにP IVK
A −Il、 (グ5μトビン 9− ビンのP I VKA )の存在を証明することが可能
である。しかし、この方法は定性的なものでしかなく1
.しかも測定手技が繁雑で時間を要し、日常検査には不
適当である。
HPT(勢、)−,11T(%)/l1PT(%)しか
し、この方法で用いられる組織トロンボプラスチンはそ
の種類、力価等によって標準曲線が異なるという問題が
ある上、測定手技が繁雑で時@接的に証明する方法と、
しては二盗元免疫電気泳動法があり、とくにP IVK
A −Il、 (グ5μトビン 9− ビンのP I VKA )の存在を証明することが可能
である。しかし、この方法は定性的なものでしかなく1
.しかも測定手技が繁雑で時間を要し、日常検査には不
適当である。
そこで、本発明者らは、ビタミンに欠乏状態またはビタ
ミンに拮抗剤投与中の患者の血液中のPIVKAを簡便
に、短時間で目つ精確に測定しくはX因子又はその抗体
で感作した免投学的に不活性な
−担体粒子よシなる免疫学的測定試薬を用いる免疫学
的反応に供すれば、血液試料中の血液凝固異常因子、す
なわちP IVKAを簡便且つ迅速に、しかも極めて高
感度で検出することができ、さらに例えばDICのよう
に複数の原因によって起る凝固−線溶系の疾患において
、それがビタミンに依存性であ−l 〇 − るか否かの診断も適確になしうろことを見出し、本発明
を完成するに至った。
ミンに拮抗剤投与中の患者の血液中のPIVKAを簡便
に、短時間で目つ精確に測定しくはX因子又はその抗体
で感作した免投学的に不活性な
−担体粒子よシなる免疫学的測定試薬を用いる免疫学
的反応に供すれば、血液試料中の血液凝固異常因子、す
なわちP IVKAを簡便且つ迅速に、しかも極めて高
感度で検出することができ、さらに例えばDICのよう
に複数の原因によって起る凝固−線溶系の疾患において
、それがビタミンに依存性であ−l 〇 − るか否かの診断も適確になしうろことを見出し、本発明
を完成するに至った。
しかして、本発明に従えば、硫酸バリウム、炭酸バリウ
ム又は水和酸化アルミニウムで予備処理した血液試料を
、血液凝固第■、■、■もしくはX因子又はその抗体で
感作した免疫学的に不活性な担体粒子よりなる免疫学的
測定試薬を用いる免疫学的反応に付し、その反応の結果
から該血液試料中の血液凝固異常因子を定性的又は定量
的に決定することを特徴とする血液試料中の血液凝固異
常因子の測定方法が提供される。
ム又は水和酸化アルミニウムで予備処理した血液試料を
、血液凝固第■、■、■もしくはX因子又はその抗体で
感作した免疫学的に不活性な担体粒子よりなる免疫学的
測定試薬を用いる免疫学的反応に付し、その反応の結果
から該血液試料中の血液凝固異常因子を定性的又は定量
的に決定することを特徴とする血液試料中の血液凝固異
常因子の測定方法が提供される。
本発明の方法の特徴の1つは、検出すべきPIVKA−
n、■、K又はXとそれに対応する血液凝固第■、■、
■又はX因子とが共通の抗原性を有していることに着目
し、PrvxA検出のための抗原−抗体反応用の抗原と
してPIVKAではなく、それに対応する血液凝固因子
を使用する点にある。
n、■、K又はXとそれに対応する血液凝固第■、■、
■又はX因子とが共通の抗原性を有していることに着目
し、PrvxA検出のための抗原−抗体反応用の抗原と
してPIVKAではなく、それに対応する血液凝固因子
を使用する点にある。
下特にことわらない限り・[凝固因子JというJは、ヒ
トの血漿からそれ自体公知の方法により、例えばゲル濾
過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティーク
ロマトグラフィー等の方法を単独で又は組み合せ用いて
分離精製することにより取得することができる[分離精
判法の詳細(lこついては必要あれば、青水、岩永編「
凝固、線溶、キニン」中外医学社、1979参照]。
トの血漿からそれ自体公知の方法により、例えばゲル濾
過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティーク
ロマトグラフィー等の方法を単独で又は組み合せ用いて
分離精製することにより取得することができる[分離精
判法の詳細(lこついては必要あれば、青水、岩永編「
凝固、線溶、キニン」中外医学社、1979参照]。
一方面液凝固第■、■、区又はX因子の抗体(以上時1
/こことわらない限り「抗凝固因子抗体」という)もま
たそれ自体公知の方法によりd脚襲することができ、セ
!えは上記の如くして得た凝固因子K 7’ r:yイ
ンドのアジュバントその他の補助剤を加えたもので、ウ
サギ、モルモット、ヤギ、ヒツジ、などの人間以外の呻
乳動物を免疫し、その抗血清を回収し、該抗血清から通
常の方法に従い、例えば硫安沈殿法による分画によって
抗凝固因子抗体を分離することによシ取得することがで
きる。
/こことわらない限り「抗凝固因子抗体」という)もま
たそれ自体公知の方法によりd脚襲することができ、セ
!えは上記の如くして得た凝固因子K 7’ r:yイ
ンドのアジュバントその他の補助剤を加えたもので、ウ
サギ、モルモット、ヤギ、ヒツジ、などの人間以外の呻
乳動物を免疫し、その抗血清を回収し、該抗血清から通
常の方法に従い、例えば硫安沈殿法による分画によって
抗凝固因子抗体を分離することによシ取得することがで
きる。
またこれらのヒト凝固因子の抗血清は市販されており、
その製品を使用することもできる。
その製品を使用することもできる。
本発明に従い感作すべき凝固因子及び抗凝固因子抗体は
、検出することを希望する試料血液中のPIVKAに対
応するものであり、その純度は厳密に制約されるもので
はないが、一般に凝固因子はディスク電気泳動法により
実質的に単一の像を示す程度の純度のものが好ましく、
また抗凝固因子抗体は一血秦量半抗妻社血漿中の対応す
る凝固因子との抗原−抗体反応において免疫電気泳動法
により実質的に単一の像を示す程度の純度のものが適し
ている。
、検出することを希望する試料血液中のPIVKAに対
応するものであり、その純度は厳密に制約されるもので
はないが、一般に凝固因子はディスク電気泳動法により
実質的に単一の像を示す程度の純度のものが好ましく、
また抗凝固因子抗体は一血秦量半抗妻社血漿中の対応す
る凝固因子との抗原−抗体反応において免疫電気泳動法
により実質的に単一の像を示す程度の純度のものが適し
ている。
また、かかる凝固因子又は抗凝固因子抗体の感−13−
作のために用いられる免疫学的に不活性な担体粒子とし
ては、例えば、ホルマリンなどで固定化した赤血球、高
分子ラテックス、ベントナイト、゛コロジオン、シリカ
、カオリン等4t・従来免疫化学的測定試薬の担体とし
て通常使用されているものはいずれも使用できる。かか
る担体粒子は一般に約001〜約20ミクロン、好まし
くは約0.05〜約10ミクロンの平均粒径を有するこ
とができる。
ては、例えば、ホルマリンなどで固定化した赤血球、高
分子ラテックス、ベントナイト、゛コロジオン、シリカ
、カオリン等4t・従来免疫化学的測定試薬の担体とし
て通常使用されているものはいずれも使用できる。かか
る担体粒子は一般に約001〜約20ミクロン、好まし
くは約0.05〜約10ミクロンの平均粒径を有するこ
とができる。
本発明において「感作」なる語は、凝固因子又は抗凝固
因子抗体を上記した如き担体粒子上に物理的に吸着せし
める場合及び在学的に結合させる場合の両方を包含する
意味で用いるものである。
因子抗体を上記した如き担体粒子上に物理的に吸着せし
める場合及び在学的に結合させる場合の両方を包含する
意味で用いるものである。
かくして、感作は通常の方法によって行なうことができ
、例えば、上記した如き担体粒子に凝固因子又は抗凝固
因子抗体を物理的に吸着させる場合には、感作すべき凝
固因子又は抗凝固因子抗体を最終濃度0.001〜0.
5%(W/V)、好まし−14− くは0,01〜02%(W/V)になるよ゛うに緩衝液
(例えばグリシンNaOH緩衝液)中に溶解し、攪拌し
なから担体(例えばポリスチレンラテックス)を加え、
通常約4〜約60℃、好ましくは約15〜約40℃の温
度で約30〜約180分間さらに攪拌をつづけることに
より、感作を行なうことができる。この場合、検出すべ
き凝固因子及び抗凝固因子抗体に対して免疫学的に不活
性なタンパク質し例えばヒト、ウシ、ヤギ、ヒツジなど
の動物の血清のアルブミンやグロブリンなど〕の緩衝溶
液[通常0.01−0.5%(W/V)一度のものが使
用される]で感作前又は感作後の担体粒子を処理するこ
とができ、これによって非特異的反子抗体と化学的に結
合しうる官能基を表面にもつ担体粒子と感作すべき凝固
因子又は抗凝固因子抗体とを適当な結合剤例えばカルボ
ジイミド、ビスジアゾベンジジン、ゲルタールアルデヒ
ドなどの存在下に反応させる方法が挙げられる。この場
合においでも、上記と同様に不活性なタンパク質を感作
前又は感作後の担体粒子で処理する(化学的に結合せし
める)ことにより非特異的反応を除き高感度の試薬を得
るようにすることができる。
、例えば、上記した如き担体粒子に凝固因子又は抗凝固
因子抗体を物理的に吸着させる場合には、感作すべき凝
固因子又は抗凝固因子抗体を最終濃度0.001〜0.
5%(W/V)、好まし−14− くは0,01〜02%(W/V)になるよ゛うに緩衝液
(例えばグリシンNaOH緩衝液)中に溶解し、攪拌し
なから担体(例えばポリスチレンラテックス)を加え、
通常約4〜約60℃、好ましくは約15〜約40℃の温
度で約30〜約180分間さらに攪拌をつづけることに
より、感作を行なうことができる。この場合、検出すべ
き凝固因子及び抗凝固因子抗体に対して免疫学的に不活
性なタンパク質し例えばヒト、ウシ、ヤギ、ヒツジなど
の動物の血清のアルブミンやグロブリンなど〕の緩衝溶
液[通常0.01−0.5%(W/V)一度のものが使
用される]で感作前又は感作後の担体粒子を処理するこ
とができ、これによって非特異的反子抗体と化学的に結
合しうる官能基を表面にもつ担体粒子と感作すべき凝固
因子又は抗凝固因子抗体とを適当な結合剤例えばカルボ
ジイミド、ビスジアゾベンジジン、ゲルタールアルデヒ
ドなどの存在下に反応させる方法が挙げられる。この場
合においでも、上記と同様に不活性なタンパク質を感作
前又は感作後の担体粒子で処理する(化学的に結合せし
める)ことにより非特異的反応を除き高感度の試薬を得
るようにすることができる。
上記の感作操作において、担体粒子への凝固因子又は抗
凝固因子抗体の感作量及び/又は該不活性タンパク質に
よる処理の程度を適宜調節することにより、常に一定の
感度の免疫学的測定試薬を調製することができる。
凝固因子抗体の感作量及び/又は該不活性タンパク質に
よる処理の程度を適宜調節することにより、常に一定の
感度の免疫学的測定試薬を調製することができる。
上記の如く調典された本発明の測定試薬は、患者から・
採取した血液試料、例えば全面、血漿(クエン酸血暗、
シュウ酸血漿]などの中のPIVKAの免疫学的測定の
ために使用することができ、その測定はそれ自体公知の
抗原−抗体反応、すなわち免疫学的凝集反応又は免疫学
的凝集阻止反応を利用して行なうことができる。
採取した血液試料、例えば全面、血漿(クエン酸血暗、
シュウ酸血漿]などの中のPIVKAの免疫学的測定の
ために使用することができ、その測定はそれ自体公知の
抗原−抗体反応、すなわち免疫学的凝集反応又は免疫学
的凝集阻止反応を利用して行なうことができる。
本発明の方法のもう1つの特徴は、血液試料を予め+!
A酸バリウム、炭酸バリウム又は水利酸化アルミニウム
で吸着処理する点にある。この吸着処理によシ、血液試
料中に存在しうる正常な凝固因子による偽反応を未然に
阻止することができる。
A酸バリウム、炭酸バリウム又は水利酸化アルミニウム
で吸着処理する点にある。この吸着処理によシ、血液試
料中に存在しうる正常な凝固因子による偽反応を未然に
阻止することができる。
硫酸バリウム、炭酸バリウム又は水和酸(ヒアルミニラ
ムによる血液試料の処理は、一般に、硫酸清アルブミン
の如き不活性タンパク質を含をことができる)中に分散
した懸濁液を血液試料に一定量加え、連続的又は間欠的
に一定時間、例えば5〜60分間好ましくは約15分間
振盪した後、該−17− 微粉末を通常の方法例えば遠心分離によって除去するこ
とによって実施することができる。該処理の際の温度は
該血液試料中のタンパク質が著るしく変質することがな
い限り、特に制限されないが、一般には20〜40゛C
の範囲内、殊に37℃前後が好適である。
ムによる血液試料の処理は、一般に、硫酸清アルブミン
の如き不活性タンパク質を含をことができる)中に分散
した懸濁液を血液試料に一定量加え、連続的又は間欠的
に一定時間、例えば5〜60分間好ましくは約15分間
振盪した後、該−17− 微粉末を通常の方法例えば遠心分離によって除去するこ
とによって実施することができる。該処理の際の温度は
該血液試料中のタンパク質が著るしく変質することがな
い限り、特に制限されないが、一般には20〜40゛C
の範囲内、殊に37℃前後が好適である。
上記微粉末の添加量は厳密に制限されるものではなく、
血液試料1良び/又は該微粉末の種類等に応じて広範に
変えることができるが、硫酸バリウムおよび炭酸バリウ
ムを用いる場合は一般には血液試料1a当り+Bθ〜1
000〜、好ましくは−8−′50〜60019の量で
また、水酸化アルミニラかくの如く予備処理された血液
試料は、該予備処理に用いた緩衝溶液で希釈された形で
、そのまま本発明に従う免疫学的凝集又は凝集1111
止反応に−18− 供することができる。
血液試料1良び/又は該微粉末の種類等に応じて広範に
変えることができるが、硫酸バリウムおよび炭酸バリウ
ムを用いる場合は一般には血液試料1a当り+Bθ〜1
000〜、好ましくは−8−′50〜60019の量で
また、水酸化アルミニラかくの如く予備処理された血液
試料は、該予備処理に用いた緩衝溶液で希釈された形で
、そのまま本発明に従う免疫学的凝集又は凝集1111
止反応に−18− 供することができる。
例えば、免疫学的凝集反応においては、スライ作した担
体粒子よりなる測定試薬とを相互に接触せしめる。もし
血液試料中にPIVKAが存在すれば凝集反応が起り、
肉眼的に観察することができる。血液試料の希釈倍率を
増やし、凝集反応が確認できる双最大希釈倍率を求める
ことにより、血液試料中のPIVKA#度を決定するこ
とができる。
体粒子よりなる測定試薬とを相互に接触せしめる。もし
血液試料中にPIVKAが存在すれば凝集反応が起り、
肉眼的に観察することができる。血液試料の希釈倍率を
増やし、凝集反応が確認できる双最大希釈倍率を求める
ことにより、血液試料中のPIVKA#度を決定するこ
とができる。
また、免疫学的凝集阻止反応においては、上記と同様、
スライドガラス板上又は小試験管中に、一定の希釈倍率
に希釈した血液試料と検出すべきPIVKAに対応する
抗凝固因子抗体とを直下し、混和した後、本発明による
該抗凝固因子に対応する凝固因子を感作した担体粒子よ
り成る測定試薬を加えて接触せしめ、その際に凝集像が
現われるか否かを判定する(核布釈血液試料中にある一
定濃度以一ヒでPIVKAが存在すれば凝集1(目市像
が観察される)ことにより上記と同様にして血液試料中
のPIVKA#度を決定することができる。
スライドガラス板上又は小試験管中に、一定の希釈倍率
に希釈した血液試料と検出すべきPIVKAに対応する
抗凝固因子抗体とを直下し、混和した後、本発明による
該抗凝固因子に対応する凝固因子を感作した担体粒子よ
り成る測定試薬を加えて接触せしめ、その際に凝集像が
現われるか否かを判定する(核布釈血液試料中にある一
定濃度以一ヒでPIVKAが存在すれば凝集1(目市像
が観察される)ことにより上記と同様にして血液試料中
のPIVKA#度を決定することができる。
上記のように本発明の方法によれば、血液試料の希釈液
と試薬と金力口え、スライドガラス板上又は小試験管中
の凝集像を肉眼的に観察するという極めて簡便な操作だ
けで、迅速に血液試料中のPIVK’、Aを測定するこ
とができ、臨床学的には患者のベッドサイドで極めて手
軽に数分間でPIVKAの定量を行なうことが可能とな
る。本発明におけるかかる効果は前述した従来の測定法
からは全く予想外のことであり、PIVKA測定分野に
画期的な発展を□、もたらすものである。
と試薬と金力口え、スライドガラス板上又は小試験管中
の凝集像を肉眼的に観察するという極めて簡便な操作だ
けで、迅速に血液試料中のPIVK’、Aを測定するこ
とができ、臨床学的には患者のベッドサイドで極めて手
軽に数分間でPIVKAの定量を行なうことが可能とな
る。本発明におけるかかる効果は前述した従来の測定法
からは全く予想外のことであり、PIVKA測定分野に
画期的な発展を□、もたらすものである。
次に実施例により本発明をさらに説明する。
実施列1
(α)プロトロンビンの製造
ヒトクエン酸血漿から、BttnαrOuBらの方法(
Thromboa、 Diathes、 h、ae
morrん、 30 。
Thromboa、 Diathes、 h、ae
morrん、 30 。
42511973))、即ちクエン酸ノくリウムへの吸
着、浴出、Dowew 5 oW−X−8によるバリウ
ムの除去、rsgphadez G 100ゲルp過、
ハイドロオキシアパタイト、′DEAE−8ephad
exA 50カラムクロマトグラフイーによって精製分
離した。
着、浴出、Dowew 5 oW−X−8によるバリウ
ムの除去、rsgphadez G 100ゲルp過、
ハイドロオキシアパタイト、′DEAE−8ephad
exA 50カラムクロマトグラフイーによって精製分
離した。
(b) 抗プロトロンビン抗体の製造上記(α)テ得
たプロトロンビンl−を生理食塩液1m1.に溶解し1
.同量のコンプリ=l・・フロイント・アジュバントで
乳化し、家兎の定論および皮下に注射した。この注射を
3週間間隔で行ない、抗体価の上昇を確認拶全採抑を行
なった。
たプロトロンビンl−を生理食塩液1m1.に溶解し1
.同量のコンプリ=l・・フロイント・アジュバントで
乳化し、家兎の定論および皮下に注射した。この注射を
3週間間隔で行ない、抗体価の上昇を確認拶全採抑を行
なった。
得られた血液を・室温で40分間放置したのち。
−21−
室温、3.00 Orpm で30分間遠心分離して
血清を分離した。この抗血清40+dに同相゛の0.9
チNαC’l會有1/20OA/リン酸緩衝液(pH?
、2)を加え徴拌したのち、飽和M’t N?アンモニ
ウムによる塩析で抗プロトロンビン抗体を製(造した。
血清を分離した。この抗血清40+dに同相゛の0.9
チNαC’l會有1/20OA/リン酸緩衝液(pH?
、2)を加え徴拌したのち、飽和M’t N?アンモニ
ウムによる塩析で抗プロトロンビン抗体を製(造した。
(C) 抗プロトロンビン抗体感作ポリスチレンラテ
ックスの製造 上4i−(b)で製造した抗グロトロンビン抗体10智
を5 ’meの0.24 AIグリシン緩衝液(p−H
9,61に溶解し、これに2%IW/V)ポリスチレン
ラテックス懸濁液(平均粒径:0.109μ)5ゴを加
えて混合し、室温で2時間攪拌した。この後、遠心分離
して?8だ沈殿を0.3 q6ウシ而清アルブミンIB
8.4)を含むグリシン緩衝液1Orneに懸濁させ、
抗プpトロンビン抗体感作ポリスチレンラテックスを得
た。
ックスの製造 上4i−(b)で製造した抗グロトロンビン抗体10智
を5 ’meの0.24 AIグリシン緩衝液(p−H
9,61に溶解し、これに2%IW/V)ポリスチレン
ラテックス懸濁液(平均粒径:0.109μ)5ゴを加
えて混合し、室温で2時間攪拌した。この後、遠心分離
して?8だ沈殿を0.3 q6ウシ而清アルブミンIB
8.4)を含むグリシン緩衝液1Orneに懸濁させ、
抗プpトロンビン抗体感作ポリスチレンラテックスを得
た。
(d) 凝與反応
−22−
健常者の血漿を0.24 Mグリシン緩衝液(pH9,
6)で100,200,400および800倍に希釈し
、各希釈血漿を2滴(約100μt)反応スライド板上
に滴下し、、?:t1に上言1(C)で製造した抗グロ
トロンビ゛ン抗体感作ポリスチレンラテックスを1滴ず
つ滴下する。両者全混合し、スライド板をゆるやかに揺
動し、2分後に肉眼で凝集像の有p、J:を観察し、た
とこる400倍希釈血漿迄明瞭な凝+jL像を1めた。
6)で100,200,400および800倍に希釈し
、各希釈血漿を2滴(約100μt)反応スライド板上
に滴下し、、?:t1に上言1(C)で製造した抗グロ
トロンビ゛ン抗体感作ポリスチレンラテックスを1滴ず
つ滴下する。両者全混合し、スライド板をゆるやかに揺
動し、2分後に肉眼で凝集像の有p、J:を観察し、た
とこる400倍希釈血漿迄明瞭な凝+jL像を1めた。
プロトロンビンの健常者血漿中の漉変は約80〜/lで
あること、およびプロトロンビンの純品にiJする猾卵
反応から、抗プロトロンビン抗体感作うテックス試%M
の感電はプロトロンビンに対して0.2μ? /meで
あった。
あること、およびプロトロンビンの純品にiJする猾卵
反応から、抗プロトロンビン抗体感作うテックス試%M
の感電はプロトロンビンに対して0.2μ? /meで
あった。
挾施例2
(α)プロトロンビン感作ラテツクスのlFi&造実か
ζ例1 ((1)で製造したプロトロンビン4■を0、
24 Mグリシン緩衝液(pH9,6)5ゴに溶解し、
2%ポリスチレンラテックス1tffl径0.500μ
)5ゴを加えて室温で1時間攪拌した。攪拌後4C,1
0,00Orpmで20分間遠心分l1mを行い得られ
た沈殿物を上記緩衝液10−で洗浄した。
ζ例1 ((1)で製造したプロトロンビン4■を0、
24 Mグリシン緩衝液(pH9,6)5ゴに溶解し、
2%ポリスチレンラテックス1tffl径0.500μ
)5ゴを加えて室温で1時間攪拌した。攪拌後4C,1
0,00Orpmで20分間遠心分l1mを行い得られ
た沈殿物を上記緩衝液10−で洗浄した。
再度遠心分離後、沈殿物をO,flql、BSA含有グ
リシン緩衝液lロゴに懸濁させ、プルトロンビン感作ポ
リスチレンラテックスを製造した。
リシン緩衝液lロゴに懸濁させ、プルトロンビン感作ポ
リスチレンラテックスを製造した。
(6) 凝集阻止反応
健常者の血漿を0.24 Mグリシン緩衝液(pH9,
6)で100.200.400および800倍に希釈し
、各希釈液の1滴(約50μt) f反応スライド板上
に滴下し、これに実施例1 (b)で製造した抗プロト
ロンビン抗体を400倍に希釈した液ft1滴ずつ滴下
し;′□混会合後上記口))で製造したプロトロンビン
感作ポリスチレンラテックス懸濁液ずつ滴下した。この
三者を均一に混合し、スライド板をゆるやかに揺動し、
2分後肉眼で凝集1オ、凝集阻止像を観察したところ、
400倍希釈血漿迄明瞭な凝集阻止反応示した。本ラテ
ックス試薬の測定感電はプロ)oンビンに対して62μ
f/ldであった。
6)で100.200.400および800倍に希釈し
、各希釈液の1滴(約50μt) f反応スライド板上
に滴下し、これに実施例1 (b)で製造した抗プロト
ロンビン抗体を400倍に希釈した液ft1滴ずつ滴下
し;′□混会合後上記口))で製造したプロトロンビン
感作ポリスチレンラテックス懸濁液ずつ滴下した。この
三者を均一に混合し、スライド板をゆるやかに揺動し、
2分後肉眼で凝集1オ、凝集阻止像を観察したところ、
400倍希釈血漿迄明瞭な凝集阻止反応示した。本ラテ
ックス試薬の測定感電はプロ)oンビンに対して62μ
f/ldであった。
実施例3
抗■因子抗体感作ポリスチレンラテックスの製造ヘキス
ト社製抗■因子抗血清から硫酸アンモニウム塩析によっ
て製造した抗■因子抗体10■を、5−の0.24 M
グリシン緩衝液(pH9,6)に溶解し、これに2%(
W/V )ポリスチレンラテックス懸濁液(平均粒径:
0.340μ)5mlを加えて混合し、室温で3時間
攪拌した。この後遠心分離して得た沈殿をαaiEsA
含有グリシン緩衝液10mに懸濁させ、抗■因子抗体感
作ボリスチレンラテックスケ得た。測定感度は0.1μ
b〜であった。
ト社製抗■因子抗血清から硫酸アンモニウム塩析によっ
て製造した抗■因子抗体10■を、5−の0.24 M
グリシン緩衝液(pH9,6)に溶解し、これに2%(
W/V )ポリスチレンラテックス懸濁液(平均粒径:
0.340μ)5mlを加えて混合し、室温で3時間
攪拌した。この後遠心分離して得た沈殿をαaiEsA
含有グリシン緩衝液10mに懸濁させ、抗■因子抗体感
作ボリスチレンラテックスケ得た。測定感度は0.1μ
b〜であった。
−25一
実施例4
抗■因子抗体感作ポリスチレンラテックスの製造ヘキス
ト社製抗■因子抗血清から硫−9アンモニウム塩析によ
って製造した抗■因子抗体lO〜を、5 mlの0.2
4Mグリシン緩衝液(pH9,63に鹸解し、こねに2
%tw/v+ポリスチレンラテックス懸濁液(平均粒径
: 0.220μ)5ゴを加えて混合し、室温で2時間
攪拌した。この後、遠心分離して得た沈殿を0.34B
SAを含むグリシン緩衝液10sljに懸濁させ、抗■
因子抗体感作ポリスチレンラテックス分得た。測定感度
は0.4μ′t/ mlであった。
ト社製抗■因子抗血清から硫−9アンモニウム塩析によ
って製造した抗■因子抗体lO〜を、5 mlの0.2
4Mグリシン緩衝液(pH9,63に鹸解し、こねに2
%tw/v+ポリスチレンラテックス懸濁液(平均粒径
: 0.220μ)5ゴを加えて混合し、室温で2時間
攪拌した。この後、遠心分離して得た沈殿を0.34B
SAを含むグリシン緩衝液10sljに懸濁させ、抗■
因子抗体感作ポリスチレンラテックス分得た。測定感度
は0.4μ′t/ mlであった。
失施例5
抗X因子抗体感作yh uスチレンラテックスの製造D
iaeipi6らの方法(Bioohemtstrll
L 6.69g+197713によってヒト血漿か
らn製した第X因子を実施例1 (b)の方法に従って
家兎に−26− 免疫して得た抗X因子抗体5■を、5dの0.24Mグ
リシン緩衝液ip&9.63に溶解し、これに2%(W
/V )ポリスチレンラテックス懸濁液(平均粒径:
0.109μ35m1を加えて混合し、37Cで60分
攪攪した。この後、遠心分離して得た沈殿fO13%B
SA含有グリシン緩衝液1〇−に懸濁させ、抗X因子抗
体感作ポリスチレンラテックス号得た。測定感度は0.
2μf/atであった。
iaeipi6らの方法(Bioohemtstrll
L 6.69g+197713によってヒト血漿か
らn製した第X因子を実施例1 (b)の方法に従って
家兎に−26− 免疫して得た抗X因子抗体5■を、5dの0.24Mグ
リシン緩衝液ip&9.63に溶解し、これに2%(W
/V )ポリスチレンラテックス懸濁液(平均粒径:
0.109μ35m1を加えて混合し、37Cで60分
攪攪した。この後、遠心分離して得た沈殿fO13%B
SA含有グリシン緩衝液1〇−に懸濁させ、抗X因子抗
体感作ポリスチレンラテックス号得た。測定感度は0.
2μf/atであった。
実施例6
(α)抗プロトロンビン抗体感作面球の製造常法により
ホルマリン固定したヒツジ赤血球4%af8液(リン#
緩衝液、pH7,4)に等量の0、01 %タンニン#
溶液を加えて56Cで30分反応させ1次いでリン酸緩
衝液で赤血球を洗浄後。
ホルマリン固定したヒツジ赤血球4%af8液(リン#
緩衝液、pH7,4)に等量の0、01 %タンニン#
溶液を加えて56Cで30分反応させ1次いでリン酸緩
衝液で赤血球を洗浄後。
8チ懸濁液とした。ついで前記実施例1(b)で製造し
た抗プロトロンビン抗体の0.1チ溶液を加え、56C
で2時間反応させた。反応終了後、リン酸緩衝液にて血
球を遠心洗浄し、0.2frBSA’lt含むリンaM
衝液にて3チ血球a度の懸濁液とした。
た抗プロトロンビン抗体の0.1チ溶液を加え、56C
で2時間反応させた。反応終了後、リン酸緩衝液にて血
球を遠心洗浄し、0.2frBSA’lt含むリンaM
衝液にて3チ血球a度の懸濁液とした。
(6) 血球凝集反応
健常省の血漿を0.24 Mグリシン緩衝液(pH9,
6)で50.100,200,300.400および5
00倍に希釈し、各希釈液300μノずつを小試験管に
入れ、上記(a)で製造した抗プロトロンビン抗体感作
血球の懸濁液50μtを加え混和したのち強く振盪し、
ミラー付スタンドに2時間静置し、管底像KJ−1凝集
像を判定したところ。
6)で50.100,200,300.400および5
00倍に希釈し、各希釈液300μノずつを小試験管に
入れ、上記(a)で製造した抗プロトロンビン抗体感作
血球の懸濁液50μtを加え混和したのち強く振盪し、
ミラー付スタンドに2時間静置し、管底像KJ−1凝集
像を判定したところ。
400倍希釈崩漿迄凝集像を示し、測定感度は0、2μ
t/−であった。
t/−であった。
実施例7
血漿中のPIVKAの測定(臨床的応用)(a) 試
験方法 0.2%ウシ血清了ルプミン(BSA)を含む生理食塩
液に懸濁した硫酸バリウム(100η/−)。
験方法 0.2%ウシ血清了ルプミン(BSA)を含む生理食塩
液に懸濁した硫酸バリウム(100η/−)。
炭酸バリウム+ 100nq/me)又は水酸化アルミ
ニウムゲル+ 0.1 % )のM濁液100μtにク
エン酸又はシュウ酸添加被検血漿25μtを加え、37
Cで2分毎に15分間混和し、次いで0.2%BSA含
有生理食塩液375μtを加えて混和した後、3000
rpm で5分間遠心分離した。この上清は原血漿が
20倍に希釈されたものである。
ニウムゲル+ 0.1 % )のM濁液100μtにク
エン酸又はシュウ酸添加被検血漿25μtを加え、37
Cで2分毎に15分間混和し、次いで0.2%BSA含
有生理食塩液375μtを加えて混和した後、3000
rpm で5分間遠心分離した。この上清は原血漿が
20倍に希釈されたものである。
さらに必要に応じてこれをo2%BsA含有生理食塩液
で希釈した検液を2滴(約iooμt)反応スライド板
上に滴下し、これに抗プロトロンビン抗体感作ポリスチ
レンラテックスを1滴ずつ滴下し、スライド板をゆるや
かに揺動し、2分後に凝集の有無を観察した。0.2μ
t/d、以上のブqトロンビンに相当するPIVKAx
が存在すれば凝集が起るので、凝集が認められた最高希
釈倍数に0.2を乗じて被検血漿中のPIVKAuの蛍
を算出した。なお1表中本願発明方法によるPIVK−
29− An測定値を0と表現しであるのけ、PIVKAUの鼠
が本試薬による測定感度未満であったことを示すもので
ある。
で希釈した検液を2滴(約iooμt)反応スライド板
上に滴下し、これに抗プロトロンビン抗体感作ポリスチ
レンラテックスを1滴ずつ滴下し、スライド板をゆるや
かに揺動し、2分後に凝集の有無を観察した。0.2μ
t/d、以上のブqトロンビンに相当するPIVKAx
が存在すれば凝集が起るので、凝集が認められた最高希
釈倍数に0.2を乗じて被検血漿中のPIVKAuの蛍
を算出した。なお1表中本願発明方法によるPIVK−
29− An測定値を0と表現しであるのけ、PIVKAUの鼠
が本試薬による測定感度未満であったことを示すもので
ある。
(b)が”験結果
(イ)新生児(生後8−7日)
衣I
VKAt定
音信μm−
100,0647,0−
20−0,1644,0−
30−1,046,0−
40030,0−
500,0935,0−
600,3351,0−
700,0451,0−
800,0937,5−
900,1649,2−
1000,30310−
110−0,05410−
1240,2832,0+
134 0.06 320 +148
0.76 35.0
+−30− Inhibition Index−HP7’(%)−
TT@)/HPT((転) HPT:ヘパプラステンテスト、TT;トロンボテスト
、DDIEP二二次元電気泳動法によるPIVKAl存
在の有無 11PTは健康成人を100とした場合、新生児におい
ては表の如く低値を示し、凝固活性の低下が められる
。Inhibition IndexからはJ166.
10および14の症例においてPIVKAの存在が疑わ
れたが1本願方法により測定した結果、扁6および10
にけ異常がな(、InhibitionIndljZ
では発見できなかったJi12.13ケ含めて3し1
1が4〜8μ2/−のPIVKAの存在を示し、この結
果けDDIEPによる定性的所見と一致した。従って4
12〜14の3例はビタミンに依存因子の異常が疑われ
、ビタミンに療法の7j象となった症例である。
0.76 35.0
+−30− Inhibition Index−HP7’(%)−
TT@)/HPT((転) HPT:ヘパプラステンテスト、TT;トロンボテスト
、DDIEP二二次元電気泳動法によるPIVKAl存
在の有無 11PTは健康成人を100とした場合、新生児におい
ては表の如く低値を示し、凝固活性の低下が められる
。Inhibition IndexからはJ166.
10および14の症例においてPIVKAの存在が疑わ
れたが1本願方法により測定した結果、扁6および10
にけ異常がな(、InhibitionIndljZ
では発見できなかったJi12.13ケ含めて3し1
1が4〜8μ2/−のPIVKAの存在を示し、この結
果けDDIEPによる定性的所見と一致した。従って4
12〜14の3例はビタミンに依存因子の異常が疑われ
、ビタミンに療法の7j象となった症例である。
(ロ) ビタミンに欠乏症患者
表2
132 1.0 0 +
28−0.19 34.8 +
3 32 1.0 0 +4 3
2 −0.16 12.7 +s 16
−0.34 323 +6 16 −0
.55 35.5 +732 1.0 1 十 8 32 0.65 14.0 + 9 16 0.42 6LO+ 91りdの症し0のうち、A2.4.5.6の患者は、
凝固異常が認められるにもかかわらず、従来のInhi
bition IndexからけPIVKAは隘駐と判
断されていたが、本願方法によシ全例高蒙度のPIVK
Aの存在がii+ト明され、この結果けDDIEPの結
果と一致し、治療方針が明確となった。
2 −0.16 12.7 +s 16
−0.34 323 +6 16 −0
.55 35.5 +732 1.0 1 十 8 32 0.65 14.0 + 9 16 0.42 6LO+ 91りdの症し0のうち、A2.4.5.6の患者は、
凝固異常が認められるにもかかわらず、従来のInhi
bition IndexからけPIVKAは隘駐と判
断されていたが、本願方法によシ全例高蒙度のPIVK
Aの存在がii+ト明され、この結果けDDIEPの結
果と一致し、治療方針が明確となった。
(ハ)ビタミンに拮抗剤投与中の患者
表3
μ?鷹
116 0.40 44.0 十
2 32 1.0 0 +3
8 0.28 3
ZO+4 8 0.37 86.0 + 5 2 0.24
38.0 +6 B 0.27 6
3.0 + 7 0 0.37 57.0 −−3
3− A、 7の症例けInhibition Inttex
がらけP I VKAの看在が幾われたが1本願方
法及びD l) I EPによってはPIVI(Aの存
在が証明されず、この結果から治療方針が明確になった
例である。
8 0.28 3
ZO+4 8 0.37 86.0 + 5 2 0.24
38.0 +6 B 0.27 6
3.0 + 7 0 0.37 57.0 −−3
3− A、 7の症例けInhibition Inttex
がらけP I VKAの看在が幾われたが1本願方
法及びD l) I EPによってはPIVI(Aの存
在が証明されず、この結果から治療方針が明確になった
例である。
に)DIC患者
表4
扁 本発明方法 Inhibition IiP
’l’ DDIによるPI Index
4 EPVKAy定 j
PIt値 VKA)
μf/at 1 0 0.47 35.8 −2
0 −0.11 31.4 −3 0
0.28 33.2 −4 0
0.15 39.1−5 0 0.0
2 45.1 −6 0 −0、O?
37.4 −7 0 0.13 3
8.0 −8 0 0.39 26.
9 −9 0 0.08 44.2
−10 0 0.16 47.3 −11
0 −0.13 30、〇 −1200,
4534,1− 1300,0929,7− 140−0,3031,4− 150−0,2531,4− −34− 全ド1」明らかな凝固異常を示し、Inhi /J i
t 1onIndex からPIVKAの存在が疑
われた例もあるが、本1方法により金側PIVKAの存
在は否定され、ビタミンに依存8:凝固因子の異常以外
の原因で凝固異常が起ったことを示し、異なった治療が
行なわれた。
’l’ DDIによるPI Index
4 EPVKAy定 j
PIt値 VKA)
μf/at 1 0 0.47 35.8 −2
0 −0.11 31.4 −3 0
0.28 33.2 −4 0
0.15 39.1−5 0 0.0
2 45.1 −6 0 −0、O?
37.4 −7 0 0.13 3
8.0 −8 0 0.39 26.
9 −9 0 0.08 44.2
−10 0 0.16 47.3 −11
0 −0.13 30、〇 −1200,
4534,1− 1300,0929,7− 140−0,3031,4− 150−0,2531,4− −34− 全ド1」明らかな凝固異常を示し、Inhi /J i
t 1onIndex からPIVKAの存在が疑
われた例もあるが、本1方法により金側PIVKAの存
在は否定され、ビタミンに依存8:凝固因子の異常以外
の原因で凝固異常が起ったことを示し、異なった治療が
行なわれた。
−35−
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 硫酸バリウム、炭酸バリウム又は水利酸化アルミ
ニウムで予備処理した血液試料を、血液凝固筒■、■、
■%しくはX因子又はその抗体で感作した免疫学的に不
活性な担体粒子よりなる免疫学的測定試薬を用いる免疫
学的反応に付し、その反応の結果から該血液試料中の血
液凝固異常因子を定性的又は定量的に決定することを特
徴とする血液試料中の血液凝固異常因子の測定方法。 2、 血液凝同第■、■、■もしくはX因子又はその抗
体で感作した免疫学的に不活性な担体粒子よりなること
を特徴とする血液凝固異常因子の免疫学的測定試薬。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11784481A JPS5821165A (ja) | 1981-07-29 | 1981-07-29 | 血液凝固異常因子の測定方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP11784481A JPS5821165A (ja) | 1981-07-29 | 1981-07-29 | 血液凝固異常因子の測定方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5821165A true JPS5821165A (ja) | 1983-02-07 |
| JPS6257219B2 JPS6257219B2 (ja) | 1987-11-30 |
Family
ID=14721664
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP11784481A Granted JPS5821165A (ja) | 1981-07-29 | 1981-07-29 | 血液凝固異常因子の測定方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5821165A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59192961A (ja) * | 1983-04-15 | 1984-11-01 | Green Cross Corp:The | 血液凝固第「じ」因子測定用試薬 |
| EP0645630A3 (en) * | 1993-05-07 | 1997-04-16 | Eisai Co Ltd | Method for determining the presence of a pivka and reagent therefor. |
| JP2008533496A (ja) * | 2005-03-21 | 2008-08-21 | ホルスティ,ユハ | プロトロンビン時間を決定する方法 |
-
1981
- 1981-07-29 JP JP11784481A patent/JPS5821165A/ja active Granted
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS59192961A (ja) * | 1983-04-15 | 1984-11-01 | Green Cross Corp:The | 血液凝固第「じ」因子測定用試薬 |
| EP0645630A3 (en) * | 1993-05-07 | 1997-04-16 | Eisai Co Ltd | Method for determining the presence of a pivka and reagent therefor. |
| JP2008533496A (ja) * | 2005-03-21 | 2008-08-21 | ホルスティ,ユハ | プロトロンビン時間を決定する方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6257219B2 (ja) | 1987-11-30 |
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