JPS5885162A - エンドトキシン測定法 - Google Patents
エンドトキシン測定法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、実際上、従来なし得なかった優れた正確性、
信頼性及び再現性をもって、カブトガニ・アメボサイト
・ライゼート成分を用いて、生体試料中に存在するエン
ドトキシン’e 111定することを可能としたエンド
トキシンの測足法に関する。
信頼性及び再現性をもって、カブトガニ・アメボサイト
・ライゼート成分を用いて、生体試料中に存在するエン
ドトキシン’e 111定することを可能としたエンド
トキシンの測足法に関する。
巣に詳しくり、本発明は1.カブトガニ・アメボサイト
・ライセード成分を用いて生体試料中に存在するエンド
トキシンを創足する方法に於て、骸試料中のカブトガニ
凝固糸#素基質切断活性が検出されなくなる条件下に酸
処理した生体試料を用いることを籍像とする方法に関す
る。
・ライセード成分を用いて生体試料中に存在するエンド
トキシンを創足する方法に於て、骸試料中のカブトガニ
凝固糸#素基質切断活性が検出されなくなる条件下に酸
処理した生体試料を用いることを籍像とする方法に関す
る。
1968年、Lavi%によルカブトガニ・アメボサイ
ト・ライゼート成分いるエンドトキシン(細菌内毒素)
の%異的インビトロ検出法が報告され、そn以来、すA
A/?ス) (LAL −Text)として、医学、薬
学の基礎及び応用分野において簡便且つ迅速なエンドト
キシン測定法として利用され、例えは、米国に於ては、
医療器具や生物製剤のパイロジエンテストに、制約条件
付きではあるが、LAL−Teatの代用が公認される
にまで至っている。
ト・ライゼート成分いるエンドトキシン(細菌内毒素)
の%異的インビトロ検出法が報告され、そn以来、すA
A/?ス) (LAL −Text)として、医学、薬
学の基礎及び応用分野において簡便且つ迅速なエンドト
キシン測定法として利用され、例えは、米国に於ては、
医療器具や生物製剤のパイロジエンテストに、制約条件
付きではあるが、LAL−Teatの代用が公認される
にまで至っている。
このようなエンドトキシンの特異的検出法の出現により
敗血症、肝硬変症などの重篤症状についての病因論的研
究が臨床医学研究者間に於て、近年とくにさかんとなっ
ている。そして、生体試料中のエンドトキシンと疾病症
状との関連性を探究する目的で、生体試料中のエンドト
キシンをLAL−Testによシ測定しようとする試み
が数多く行われてき次。そのような試みに際して、エン
ドトキシンの存在にも拘わらず、カブトガニ・アメボナ
イト・ライゼートのエンドトキシンによるゲル化現象が
阻害されたり、或は又、エンドトキシンが存在しないの
くゲル化現象が生起したシするいわゆる阻害現象や擬陽
性現象がおこるというトラブルのあることが判明してき
た。
敗血症、肝硬変症などの重篤症状についての病因論的研
究が臨床医学研究者間に於て、近年とくにさかんとなっ
ている。そして、生体試料中のエンドトキシンと疾病症
状との関連性を探究する目的で、生体試料中のエンドト
キシンをLAL−Testによシ測定しようとする試み
が数多く行われてき次。そのような試みに際して、エン
ドトキシンの存在にも拘わらず、カブトガニ・アメボナ
イト・ライゼートのエンドトキシンによるゲル化現象が
阻害されたり、或は又、エンドトキシンが存在しないの
くゲル化現象が生起したシするいわゆる阻害現象や擬陽
性現象がおこるというトラブルのあることが判明してき
た。
更に、このようなトラブルには、その原因物質が存在す
るのであろうとの仮説のもとに、生体試なる原因物質を
除去しようという試みもなされたが、その目的が達成さ
れているというiIf価は未だなされていない。それど
ころが、そのような前処理の試みを加えた生体試料を用
いたLAL −Testによる臨床病理学的成績は、敗
血症、膵胆管癌、播穐性血管内凝固症候群、肝硬変症等
の患者血液試料中のエンドトキシンレベルが、臨床症状
や菌培養Ω結果や他のノセラメディカルデータと一致し
ないケースが多く見られ、LAL−Testによる生体
試料中のエンドトキシンの検出の有用性をも疑われつつ
あるのが現状である。
るのであろうとの仮説のもとに、生体試なる原因物質を
除去しようという試みもなされたが、その目的が達成さ
れているというiIf価は未だなされていない。それど
ころが、そのような前処理の試みを加えた生体試料を用
いたLAL −Testによる臨床病理学的成績は、敗
血症、膵胆管癌、播穐性血管内凝固症候群、肝硬変症等
の患者血液試料中のエンドトキシンレベルが、臨床症状
や菌培養Ω結果や他のノセラメディカルデータと一致し
ないケースが多く見られ、LAL−Testによる生体
試料中のエンドトキシンの検出の有用性をも疑われつつ
あるのが現状である。
斯くして、生体試料を用いるLAL−Teatの臨床診
断への適用の可否について、再杖討を要する時期に至っ
ている。更に、近年、カブトガニ・アメポサイト・ライ
ゼートのエンドトキシンによるゲル化現象の発生機構に
ついての生化学的解析が進んだ結果、該ゲル化現象に関
与するエンドトキシンの作用を受ける因子と該ゲル化現
象に於ける酵素系の役割とが明確となり、生化学的解析
の結果からも、従来のLAL−TeptKよる生体試料
中のエンドトキシンの検出測定の妥尚性に多くの疑問が
生ずるに至っている。
断への適用の可否について、再杖討を要する時期に至っ
ている。更に、近年、カブトガニ・アメポサイト・ライ
ゼートのエンドトキシンによるゲル化現象の発生機構に
ついての生化学的解析が進んだ結果、該ゲル化現象に関
与するエンドトキシンの作用を受ける因子と該ゲル化現
象に於ける酵素系の役割とが明確となり、生化学的解析
の結果からも、従来のLAL−TeptKよる生体試料
中のエンドトキシンの検出測定の妥尚性に多くの疑問が
生ずるに至っている。
すなわち、カブトガニ・アメボサイト・ライゼートのエ
ンドトキシンによるゲル化現象の発生機構についての生
化学的解析の結果、カブトガニ・アメボサイト・ライゼ
ートのゲル化機構に、哺乳動物の血*ati糸に類似し
た数種の不活性因子からなる系から構成されており、エ
ンドトキシンに特異的な因子が先ず、エンドトキシン量
に比例して活性化され、次いで段階的に順次不活性因子
(プロ・二ンザイム)が活性因子(エンザイム)K変換
され、最終因子(プロ・クロツテイングエンザイム)を
活性化し、活性化クロツテイングエンザイムが凝固性蛋
白前駆体コアギュロゲンを基質として作用してコアギュ
リン・モノマーとし、この物質が1合してゲル状蛋白と
なることが明らかになツp (S、 Isuanaga
at al Fttba、 Letter。
ンドトキシンによるゲル化現象の発生機構についての生
化学的解析の結果、カブトガニ・アメボサイト・ライゼ
ートのゲル化機構に、哺乳動物の血*ati糸に類似し
た数種の不活性因子からなる系から構成されており、エ
ンドトキシンに特異的な因子が先ず、エンドトキシン量
に比例して活性化され、次いで段階的に順次不活性因子
(プロ・二ンザイム)が活性因子(エンザイム)K変換
され、最終因子(プロ・クロツテイングエンザイム)を
活性化し、活性化クロツテイングエンザイムが凝固性蛋
白前駆体コアギュロゲンを基質として作用してコアギュ
リン・モノマーとし、この物質が1合してゲル状蛋白と
なることが明らかになツp (S、 Isuanaga
at al Fttba、 Letter。
120.217 (1980) 〕e斯<L、て、
!ロクロツテングエンザイムがエンドトキシンにより直
接活性化を受けてクロツテングエンザイムとなり、これ
がコアギュロゲンに作用してゲル化を生ずるという従来
から云われてき次作用eil!橋とは異った機構によっ
て上記ゲル化現象が起こることが解明され友。
!ロクロツテングエンザイムがエンドトキシンにより直
接活性化を受けてクロツテングエンザイムとなり、これ
がコアギュロゲンに作用してゲル化を生ずるという従来
から云われてき次作用eil!橋とは異った機構によっ
て上記ゲル化現象が起こることが解明され友。
更に、カブトガニ・アメボサイト・ライゼートの凝固系
と、哺乳動物の血液凝固糸の対比により、前者における
コアギュロゲンが後者におけるフイプリノゲンに、前者
におけるクロツテングエンザイムが後者におけるXα因
子に1そして前者におけるプロクロツテイングエンザイ
ム活性化酵素が後者におけるトロンビンに、夫々、類似
した性質を有することが判明した。これらの新たに判明
した事実の妥当性は、哺乳動物の血液中に存在する上記
凝固系因子やトリプシンなどの蛋白氷解酵素によっても
、カブトガニ・アメボサイト・ライゼートはゲル化する
ことから確認される。
と、哺乳動物の血液凝固糸の対比により、前者における
コアギュロゲンが後者におけるフイプリノゲンに、前者
におけるクロツテングエンザイムが後者におけるXα因
子に1そして前者におけるプロクロツテイングエンザイ
ム活性化酵素が後者におけるトロンビンに、夫々、類似
した性質を有することが判明した。これらの新たに判明
した事実の妥当性は、哺乳動物の血液中に存在する上記
凝固系因子やトリプシンなどの蛋白氷解酵素によっても
、カブトガニ・アメボサイト・ライゼートはゲル化する
ことから確認される。
又更に、生体試料にエンドトキシン調製品(例えば、大
腸菌からのエンドトキシンE、aoliQHB B11
Difco 社製品)をね加し、LAL−’1mm
gを用いて、該生体試料中のエンドトキシンを検出し、
その検出度から該試料中のエンドトキシンmを確認する
方法が採石されているが、血液試料を用いて該方法を行
つt場合、添加したエンドトキシンkに見合った検出レ
ベルが畑誌されず。
腸菌からのエンドトキシンE、aoliQHB B11
Difco 社製品)をね加し、LAL−’1mm
gを用いて、該生体試料中のエンドトキシンを検出し、
その検出度から該試料中のエンドトキシンmを確認する
方法が採石されているが、血液試料を用いて該方法を行
つt場合、添加したエンドトキシンkに見合った検出レ
ベルが畑誌されず。
LAL−Teat Kよるゲル化が阻害されることが判
明している。
明している。
上述のように、疵米のLAL−Testによる生体試料
中のエンドトキシンの検出測定の妥当性には多くの疑問
が生ずるに至っており、生体試料を用いるLAL−Te
atの臨床診断への適用の可否もしくは意義について再
検討を要する時期に至っているのが実情であり、生体試
料中のエンドトキシンの測定に際して、し試料中に存在
するカブトガニ・アメボサイト・ライゼー)&分による
凝固系に関与する因子を適確に除去しなければ、LAL
−Testによって、正確に且つ信頼性及びMl性をも
って、エンドトキシンを検出測定することができないの
は勿論のこと、測定の意味さえも全く失われるであろう
ことは明らかである。
中のエンドトキシンの検出測定の妥当性には多くの疑問
が生ずるに至っており、生体試料を用いるLAL−Te
atの臨床診断への適用の可否もしくは意義について再
検討を要する時期に至っているのが実情であり、生体試
料中のエンドトキシンの測定に際して、し試料中に存在
するカブトガニ・アメボサイト・ライゼー)&分による
凝固系に関与する因子を適確に除去しなければ、LAL
−Testによって、正確に且つ信頼性及びMl性をも
って、エンドトキシンを検出測定することができないの
は勿論のこと、測定の意味さえも全く失われるであろう
ことは明らかである。
本y明者等は、1iJ−出1人の先に開発したカブトガ
ニ・アメボサイト・ライゼート利用の0成基質を用いる
エンドトキシンの高感度検出定量方法(特開昭54−1
5797号;米国特許第418&264号;西ドイツ国
特許公告公報DE2’140323号)を利用して、従
来、LAL −Testに際して、生体試料前処理法と
して公知の一1■処理法についてW=細々検討を行つ九
。
ニ・アメボサイト・ライゼート利用の0成基質を用いる
エンドトキシンの高感度検出定量方法(特開昭54−1
5797号;米国特許第418&264号;西ドイツ国
特許公告公報DE2’140323号)を利用して、従
来、LAL −Testに際して、生体試料前処理法と
して公知の一1■処理法についてW=細々検討を行つ九
。
その結果、ぜ来、血液前処理法として評価されてき次ク
ロロホルム処理法(J、Latin、 at allJ
、L6b、C11s、 bled1? 5.903(1
9〕O))、酸性化法[P、B、Ra1nfald a
t al HPros。
ロロホルム処理法(J、Latin、 at allJ
、L6b、C11s、 bled1? 5.903(1
9〕O))、酸性化法[P、B、Ra1nfald a
t al HPros。
See−ag、Bial、 Mad、137,334(
1971)、加熱法(A1.S、 Cooparata
ak、 Lamest111111丁t (1975)
)により前処理した血液試料を用いて、エンドトキシン
を正確に且つ信頼性をもって検出測定することは、!!
!際上、不可能であるという重大な事実を発見し次。
1971)、加熱法(A1.S、 Cooparata
ak、 Lamest111111丁t (1975)
)により前処理した血液試料を用いて、エンドトキシン
を正確に且つ信頼性をもって検出測定することは、!!
!際上、不可能であるという重大な事実を発見し次。
更に研究を進めた結果、後にEzttmplam に
於て実験的に詳しく示すとおシ血液試料にエンドトキシ
ンの既知量を添加し、上記従来法により前処理し光検体
試料中のエンドトキシン検出レベルを、上記合成基質法
による定量により検討し九結果、クロロホルム処理法、
酸性化法のいずれの場合にも、薄液試料中に存在するカ
ブトガニ・アメポサイト・ライゼート成分の凝固系に作
用する妨害因子が残存し、エンドトキシンの真の存在量
を、正確に且つ信頼性をもつ工検出測定することは不可
能であることがわかった。又、上記加熱法の場合には、
血液試料中の妨害酵素活性を完全に失活さセることかで
きる力ζこの試料を用い次エンドトキシン検出しベル扛
、該試料のat類や希釈度の差異により、対照に比して
ys〜3倍というような大巾な数値変動を示し、エンド
トキシンの真の存在量な信頼度よく検出測定できないこ
とがわかった。
於て実験的に詳しく示すとおシ血液試料にエンドトキシ
ンの既知量を添加し、上記従来法により前処理し光検体
試料中のエンドトキシン検出レベルを、上記合成基質法
による定量により検討し九結果、クロロホルム処理法、
酸性化法のいずれの場合にも、薄液試料中に存在するカ
ブトガニ・アメポサイト・ライゼート成分の凝固系に作
用する妨害因子が残存し、エンドトキシンの真の存在量
を、正確に且つ信頼性をもつ工検出測定することは不可
能であることがわかった。又、上記加熱法の場合には、
血液試料中の妨害酵素活性を完全に失活さセることかで
きる力ζこの試料を用い次エンドトキシン検出しベル扛
、該試料のat類や希釈度の差異により、対照に比して
ys〜3倍というような大巾な数値変動を示し、エンド
トキシンの真の存在量な信頼度よく検出測定できないこ
とがわかった。
本発明省等は、従来慣用されてきた前処理した血液試料
を用い次エンドトキシン検出測定における上述の如き技
術的トラブルを克服し得る新しい匈処理手段七gjF3
発することによって正抛に且つ伯軸性をもって、且つ又
、優れた再現性をもって、生体試料中に存在するエンド
トキシンをカブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分
を用いて測定する方法を提供すべく更に研究を行ってき
た。
を用い次エンドトキシン検出測定における上述の如き技
術的トラブルを克服し得る新しい匈処理手段七gjF3
発することによって正抛に且つ伯軸性をもって、且つ又
、優れた再現性をもって、生体試料中に存在するエンド
トキシンをカブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分
を用いて測定する方法を提供すべく更に研究を行ってき
た。
その結果、生体試料t−1#試料中にカブトガニ凝固系
酵素基質切断活性が検出されなくなる条件下で酸処理し
た試料を用いることによって、正確に且つ優れた信頼性
をもって、再現性良く、皺試料中に存在する真のエンド
トキシンtを、カブトガニ・アメボサイト・ライゼート
成分を用いて検出測定できることを発見した。更に、こ
の方法は実際の臨床的応用においても充分な評価をうけ
られる優れ次男法であることがわかった。
酵素基質切断活性が検出されなくなる条件下で酸処理し
た試料を用いることによって、正確に且つ優れた信頼性
をもって、再現性良く、皺試料中に存在する真のエンド
トキシンtを、カブトガニ・アメボサイト・ライゼート
成分を用いて検出測定できることを発見した。更に、こ
の方法は実際の臨床的応用においても充分な評価をうけ
られる優れ次男法であることがわかった。
斯くして、本発明者等の研究によれば、前述したように
、従来LAL−Teatの臨床診断への適用の有用性が
疑問視されていた多くのトラブルが一挙に解決でき、そ
れ自体公知の凝固法(ゲル化法)或は合成基質法などに
より、カブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分を用
いて生体試料中に存在するエンドトキシン管検出測定し
て、医薬。
、従来LAL−Teatの臨床診断への適用の有用性が
疑問視されていた多くのトラブルが一挙に解決でき、そ
れ自体公知の凝固法(ゲル化法)或は合成基質法などに
より、カブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分を用
いて生体試料中に存在するエンドトキシン管検出測定し
て、医薬。
医学の基礎及び臨床診断を含む応用分野に大きく貢献す
ることが可能となることがわかった。
ることが可能となることがわかった。
従って、本発明の目的は顕著に改善され次エンドトキシ
ンの測定方法を提供するKある。
ンの測定方法を提供するKある。
本発明の上記目的及び更に多くの他の目的ならびに利点
は、以下の記載から一層明らかとなるであろう。
は、以下の記載から一層明らかとなるであろう。
カブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分を用いて、
凝固法或は合成基質を用いて生体試料中に存在するエン
ドトキシンを検出測定する方法それ自体は、よく知られ
ており、例えば、丹羽光「臨床検査」、23,343〜
348 (1979)、“リムルステス)Kよる内毒
素微量定量”;Bactgrial Endotoxi
ns Text /BiologiealTests、
U 5PXX、 < 85 > 1米国特許第418
&264号(%開開54−15797号1西ドイツ特
許公告DE214032S号)などに詳細に記載されて
おり、本発明方法の実施に利用できる。
凝固法或は合成基質を用いて生体試料中に存在するエン
ドトキシンを検出測定する方法それ自体は、よく知られ
ており、例えば、丹羽光「臨床検査」、23,343〜
348 (1979)、“リムルステス)Kよる内毒
素微量定量”;Bactgrial Endotoxi
ns Text /BiologiealTests、
U 5PXX、 < 85 > 1米国特許第418
&264号(%開開54−15797号1西ドイツ特
許公告DE214032S号)などに詳細に記載されて
おり、本発明方法の実施に利用できる。
本発明方法においては、カブトガニ・アメボサイト・ラ
イゼート成分を用いて、上記の如きそれ自体公知の方法
で生体試料中に存在するエンドトキシンを検出測定する
に際して、鋏生体試料を該試料中にカブトガニ凝固系酵
素基質切断活性が検出されなくなる条件下で酸処理する
。
イゼート成分を用いて、上記の如きそれ自体公知の方法
で生体試料中に存在するエンドトキシンを検出測定する
に際して、鋏生体試料を該試料中にカブトガニ凝固系酵
素基質切断活性が検出されなくなる条件下で酸処理する
。
既述の従来公知の酸性化法に於ては、1−の血漿をα1
−の25チ氷酢酸(19N 、 p HL 2 )管用
いて、pH40で処理され、引き続いて中和される。こ
の酸性化法によっては、後に実験的に示すとお)、カブ
トガニ凝固系酵素基質切断活性が検出され、真のエンド
トキシン量の測定に影譬を与える因子が存在することを
示す。従って、この酸性化法によって処理された生体試
料を用いて真のエンドトキシン量を測定することはでき
ない。
−の25チ氷酢酸(19N 、 p HL 2 )管用
いて、pH40で処理され、引き続いて中和される。こ
の酸性化法によっては、後に実験的に示すとお)、カブ
トガニ凝固系酵素基質切断活性が検出され、真のエンド
トキシン量の測定に影譬を与える因子が存在することを
示す。従って、この酸性化法によって処理された生体試
料を用いて真のエンドトキシン量を測定することはでき
ない。
本発明方法において、生体試料を、該試料中のカブトガ
ニ凝固系酵素基質切断活性が検出されなくなる条件下に
酸処理するに際して、好ましくは、5C pKa 値が3以下の酸を用いて、pus以下の条件
下で処理するのがよい。
ニ凝固系酵素基質切断活性が検出されなくなる条件下に
酸処理するに際して、好ましくは、5C pKa 値が3以下の酸を用いて、pus以下の条件
下で処理するのがよい。
このような酸処理に用いる酸の例としては、モノ−、ジ
ー、トリーク・ル酢酸の如き、に、25C値が3以下の
9酸や塩素酸、臭木酸の如きハロゲン酸、過塩素酸の如
き過ハロゲン酸、塩酸、硫酸、5C 硝酸などの如きpKa 値が1以下の強酸を例示す
ることができる。
ー、トリーク・ル酢酸の如き、に、25C値が3以下の
9酸や塩素酸、臭木酸の如きハロゲン酸、過塩素酸の如
き過ハロゲン酸、塩酸、硫酸、5C 硝酸などの如きpKa 値が1以下の強酸を例示す
ることができる。
本発明においてに、生体試料中に存在し得る蛋白amや
細胞顆粒が有するカブトガニ・アメボサイト・ライゼー
トによる測定に影41を与える因子が失活するような酸
化作用乃至変性作用をこれら火線成分に及はし、これら
を不溶性沈殿物として測定系外に除去し得るような酸処
理が行われる。
細胞顆粒が有するカブトガニ・アメボサイト・ライゼー
トによる測定に影41を与える因子が失活するような酸
化作用乃至変性作用をこれら火線成分に及はし、これら
を不溶性沈殿物として測定系外に除去し得るような酸処
理が行われる。
このために、生体試料中のカブトガニ凝固系酵素基質切
断活性が検出されなくなる条件下に酸処理が行われる。
断活性が検出されなくなる条件下に酸処理が行われる。
利用する酸の種類、濃度、処理条件などを適宜に選択す
ることによ・うて、生体試料中のカブトガニ凝固系酵素
基質切断活性が検出されなく表る処理が可能となること
が発見され友。
ることによ・うて、生体試料中のカブトガニ凝固系酵素
基質切断活性が検出されなく表る処理が可能となること
が発見され友。
生体に1中にカブトガニ凝固系酵素基質切断活性が検出
されなくなる条件は、使用する甑にりいて、予め実験的
に容易に設定することができる。
されなくなる条件は、使用する甑にりいて、予め実験的
に容易に設定することができる。
上記予備実験は、例えば以下のようにして行うことがで
きる。試料のアミダーゼ活性を、あらかじめ合成基質B
ee−Lm%−Gly−Arg−PNAを用いて測定し
、次いで、骸試料を使用する過轟なllを用いてpH3
以下の条件下で温度、時間条件を選択して処理し、生じ
た沈殿を遠沈除去した注、上清の、Hを塩基を用いて中
和し再度合成基質を用いて処理ずみ試料中にアきダーゼ
活性がlN認出来なくなる条件の範囲を設定する。
きる。試料のアミダーゼ活性を、あらかじめ合成基質B
ee−Lm%−Gly−Arg−PNAを用いて測定し
、次いで、骸試料を使用する過轟なllを用いてpH3
以下の条件下で温度、時間条件を選択して処理し、生じ
た沈殿を遠沈除去した注、上清の、Hを塩基を用いて中
和し再度合成基質を用いて処理ずみ試料中にアきダーゼ
活性がlN認出来なくなる条件の範囲を設定する。
本発明方法によれば、例えば上述のようにして予め設定
された条件に従って、前記例示の如き酸を用いて酸処理
を行い、処理系中に沈殿してくる資性失活沈殿物を1例
えは、濾紙P別、遠心分離の如き手段で処理系から除去
したのち、糸のpHを中性条件に戻した生体試料を用い
て、それ自体公知の手法を利用して該生体試料中のエン
ドトキシンをカブトガニ・アメボサイト・ライゼート成
分管用いて測定することができる。
された条件に従って、前記例示の如き酸を用いて酸処理
を行い、処理系中に沈殿してくる資性失活沈殿物を1例
えは、濾紙P別、遠心分離の如き手段で処理系から除去
したのち、糸のpHを中性条件に戻した生体試料を用い
て、それ自体公知の手法を利用して該生体試料中のエン
ドトキシンをカブトガニ・アメボサイト・ライゼート成
分管用いて測定することができる。
従来法で処理され九生体試料を用いた場合とは異なって
、本発明方法に従って酸処理された生体試料を用いるこ
とによって、生体試料中の阻害原因物質や擬陽性原因物
質の影響から解放されて、正確に且つ優れた信頼性をも
って、再現性喪く、生体試料中に存在する真のエンドト
キシン量を、カブトガニ・アメボサイト・ライゼート成
分を用いて検出測定することができる。
、本発明方法に従って酸処理された生体試料を用いるこ
とによって、生体試料中の阻害原因物質や擬陽性原因物
質の影響から解放されて、正確に且つ優れた信頼性をも
って、再現性喪く、生体試料中に存在する真のエンドト
キシン量を、カブトガニ・アメボサイト・ライゼート成
分を用いて検出測定することができる。
本発明で利用する生体試料としては、例−1えば、血漿
、血清、血液画分であるアルブミン、グープリンなどの
試料、腹水、関節液、尿などの循積液や体内外の浸出排
泄液の如きエンドトキシンが1着されやすい蛋白質や細
胞軸粒を含む生体試料管例示することができる。
、血清、血液画分であるアルブミン、グープリンなどの
試料、腹水、関節液、尿などの循積液や体内外の浸出排
泄液の如きエンドトキシンが1着されやすい蛋白質や細
胞軸粒を含む生体試料管例示することができる。
本発明方法によれは、病気の種類、生体試料の種類など
に影響されることなしに、生体試料中のエンドトキシン
を優れた正確さ、高い信頼性をもって再現性よく且つ迅
速に検出測定することが可能となる。
に影響されることなしに、生体試料中のエンドトキシン
を優れた正確さ、高い信頼性をもって再現性よく且つ迅
速に検出測定することが可能となる。
本発明方法は、広い範囲のエンドトキシン血症患者の生
体試料中のエンドトキシンの検出及び#j定に利用する
ことができ、このような患者症例としては、例えば、以
下の如き症状を例示することかで色る。
体試料中のエンドトキシンの検出及び#j定に利用する
ことができ、このような患者症例としては、例えば、以
下の如き症状を例示することかで色る。
菌血症、腹膜炎、髄膜炎、尿路感染症、術後感染症の如
きダラム陰性細菌の感染により発症した疾病、肝炎、肝
硬変等の肝疾患の原因として網内系不全が予測される疾
病、胆道系に生ずる急性化膿性胆管炎、胆嚢炎総胆道管
結石症等と腸内細菌群の因果関係予測、腸閉塞症、潰瘍
性大腸炎、膵炎DIC(播種性血管向凝固症候群)、癌
、糖尿病、腎炎等の末期の網内系機能不全の判定に用い
られる。
きダラム陰性細菌の感染により発症した疾病、肝炎、肝
硬変等の肝疾患の原因として網内系不全が予測される疾
病、胆道系に生ずる急性化膿性胆管炎、胆嚢炎総胆道管
結石症等と腸内細菌群の因果関係予測、腸閉塞症、潰瘍
性大腸炎、膵炎DIC(播種性血管向凝固症候群)、癌
、糖尿病、腎炎等の末期の網内系機能不全の判定に用い
られる。
以下、比較例と共に実施例により、本発明方法の数例に
ついて更に詳しく例示する。
ついて更に詳しく例示する。
tll 生体試料の採取、調製ニー
健常人或は患者の体液(血漿、血清、腹水、関節液、髄
液、尿)を細菌やエンドトキシンの汚染を伴わないよう
に充分注意して採取する。
液、尿)を細菌やエンドトキシンの汚染を伴わないよう
に充分注意して採取する。
例えば、血漿は、ヒトの前腕肘静脈から真空採血管(ベ
ノジエクトチューブ:テルモ(株)li品、日本)を用
いて、各種抗凝固剤(ヘパリン、クエン酸ナトリウム、
EDTA−2・ナトリウム岬)を収容した試験管に採取
し、遠心下(1500〜1800rjs、10分間)に
血球と血漿に分離し、血小板を含む画分を採取して血漿
試料(PRP)とした、又、血清は、ヒ゛トの肘静脈か
ら採取した静脈血を清浄なガラス製スピッツ試験管に採
取し、室温に30分間靜装して凝固を生じさせ、生じた
血餅を、2,500〜3.00 Orpm、 10分の
条件で遠心し、上澄液を別の試験管に分取して血清試料
とし友。
ノジエクトチューブ:テルモ(株)li品、日本)を用
いて、各種抗凝固剤(ヘパリン、クエン酸ナトリウム、
EDTA−2・ナトリウム岬)を収容した試験管に採取
し、遠心下(1500〜1800rjs、10分間)に
血球と血漿に分離し、血小板を含む画分を採取して血漿
試料(PRP)とした、又、血清は、ヒ゛トの肘静脈か
ら採取した静脈血を清浄なガラス製スピッツ試験管に採
取し、室温に30分間靜装して凝固を生じさせ、生じた
血餅を、2,500〜3.00 Orpm、 10分の
条件で遠心し、上澄液を別の試験管に分取して血清試料
とし友。
腹水、関節液、髄液は、局部穿刺によシ採取し次分泌参
出液を用いた。
出液を用いた。
(21エンドトキシンの測定ニー
特開昭44−15797 (米国時1↑隷+4.18
へ264号:西ドイツ国特計公普公@DE274032
3号)に基いて商品化され九エンドトキシン砿振定普試
薬・臂イロデツク(PYRODIC商品名:生化学工業
株式会社、日本、製品)を用いて、合成基質法によるL
AL−Testにより行った。
へ264号:西ドイツ国特計公普公@DE274032
3号)に基いて商品化され九エンドトキシン砿振定普試
薬・臂イロデツク(PYRODIC商品名:生化学工業
株式会社、日本、製品)を用いて、合成基質法によるL
AL−Testにより行った。
大腸菌からのエンドトキシンE、coli O,、、B
4に換算しfc値で示した。
4に換算しfc値で示した。
(3) カブトガニ凝固系酵素基質切断活性及びその
測定ニー カブトガニ凝固系酵素基質切断活性(以下、アミダーゼ
活性と略称することがある)は、カブトガニ・アメボサ
イト・ライゼート非存在下に、カブトガニ・アメボサイ
ト・ライゼート中に存在する凝固蛋白コアギュロゲンの
切断部分構造をモデルとして調製されたペプチド性合成
基質BoC−Lax−Gly−Arg−PNA(生化学
工業株式会社、日本、製品)に対する基質切断活性を示
す、上記(2)エンドトキシンの測定に準じて測定しt
遊離PNA(バラニトロアニリン)f&tを対応するエ
ンドトキシンE、 coli O,、、B4 ii
K換算し次値で示した。
測定ニー カブトガニ凝固系酵素基質切断活性(以下、アミダーゼ
活性と略称することがある)は、カブトガニ・アメボサ
イト・ライゼート非存在下に、カブトガニ・アメボサイ
ト・ライゼート中に存在する凝固蛋白コアギュロゲンの
切断部分構造をモデルとして調製されたペプチド性合成
基質BoC−Lax−Gly−Arg−PNA(生化学
工業株式会社、日本、製品)に対する基質切断活性を示
す、上記(2)エンドトキシンの測定に準じて測定しt
遊離PNA(バラニトロアニリン)f&tを対応するエ
ンドトキシンE、 coli O,、、B4 ii
K換算し次値で示した。
(4)生体試料の処理ニー
(4−1)本発明例〔過塩素@ (PCA)処ai法〕
前記(1)の生体試料α1mlに、5囁過塩素酸水溶液
を終濃度が1.5−となるように添加し、3フCで20
分間インキュベートした。形成さrL+沈殿物を、36
00 ryn、15分の条件で遠心し、上澄液を採取し
てこれをα2NのNaOH水浴液を用いてpHeLs〜
&Oの中性附近に中和し、酸処理生体試料を得友。
前記(1)の生体試料α1mlに、5囁過塩素酸水溶液
を終濃度が1.5−となるように添加し、3フCで20
分間インキュベートした。形成さrL+沈殿物を、36
00 ryn、15分の条件で遠心し、上澄液を採取し
てこれをα2NのNaOH水浴液を用いてpHeLs〜
&Oの中性附近に中和し、酸処理生体試料を得友。
(4−2)本発明例〔トリクロル酢酸(7’CA)処理
法〕 前記(1)の生体試料α1−に、5嘔トリクロル酢酸水
溶液を同量添加し、45Cで10分間インキュベートし
た。形成された沈殿物を、300Gデgm、15分の条
件で遠心し、上澄液を採取してこれを(LINのNaO
H水浴液を用いてphis〜&Oの中性附近に中和し、
酸処理生体試料を得た。
法〕 前記(1)の生体試料α1−に、5嘔トリクロル酢酸水
溶液を同量添加し、45Cで10分間インキュベートし
た。形成された沈殿物を、300Gデgm、15分の条
件で遠心し、上澄液を採取してこれを(LINのNaO
H水浴液を用いてphis〜&Oの中性附近に中和し、
酸処理生体試料を得た。
(4−3)本発明例〔硝酸CIfNOs )処理法〕前
記(11の生体試料へ1−に、3%HNO,水溶液の同
量を添加し、40Cで10分間インキュベートした。形
成され友沈殿物を、3000rヤ愼、15分の条件で遠
心し、上澄液を採取してこれを0.2NのNαOH水溶
液を用いてp H6,5〜8.0の中性附近に中和し、
酸処理生体試料を得た。
記(11の生体試料へ1−に、3%HNO,水溶液の同
量を添加し、40Cで10分間インキュベートした。形
成され友沈殿物を、3000rヤ愼、15分の条件で遠
心し、上澄液を採取してこれを0.2NのNαOH水溶
液を用いてp H6,5〜8.0の中性附近に中和し、
酸処理生体試料を得た。
(4−4)比較例〔クロロホルム処理法〕J、 Lab
、 C1tn、 Mad、、 75 90 B (19
7G)に記載されたところに従って、前記(1)の生体
試料(ヘノ々リン血漿)4容に対し、クロロホルムl容
を加え、25Cで60分間はけしく振盪攪拌したのち、
1.10Ofで10分間、遠心すると、三層に分離する
。この中間層を分取して、クロロホルム処理生体試料と
する。
、 C1tn、 Mad、、 75 90 B (19
7G)に記載されたところに従って、前記(1)の生体
試料(ヘノ々リン血漿)4容に対し、クロロホルムl容
を加え、25Cで60分間はけしく振盪攪拌したのち、
1.10Ofで10分間、遠心すると、三層に分離する
。この中間層を分取して、クロロホルム処理生体試料と
する。
(4−5)比較例〔酸性化処理法、〕
Proe0goC,ezlp、 Biol、 Mad、
、 13 ’r 。
、 13 ’r 。
334 (1971)に記載されたところに従って。
前記(1)の生体試料0.1 yxlに、25%氷酢@
(zsN%pH2,2)0.1d!添加1.−(系t2
) p Hを10±alK低下させ、続いて50チ(W
/V>無水二塩基性燐酸カリ緩衝液(s o % K、
HPOいjlBs、4)のa2*l添加t、−’c血漿
(1)pH1′&2キ0、1に戻して酸性化処理生体試
料を11友。
(zsN%pH2,2)0.1d!添加1.−(系t2
) p Hを10±alK低下させ、続いて50チ(W
/V>無水二塩基性燐酸カリ緩衝液(s o % K、
HPOいjlBs、4)のa2*l添加t、−’c血漿
(1)pH1′&2キ0、1に戻して酸性化処理生体試
料を11友。
(4−6)比較例〔加熱処理法〕
Lamest 11 !!? 2 (111丁4)に記
載されたとζろに従って、前記(1)の生体試料(血漿
)をパイロジエンフリーの滅菌蒸留水を用いて3倍に希
釈し、toocxo分間加熱して加熱処理生体試料を得
た。
載されたとζろに従って、前記(1)の生体試料(血漿
)をパイロジエンフリーの滅菌蒸留水を用いて3倍に希
釈し、toocxo分間加熱して加熱処理生体試料を得
た。
(4−7)比較例〔アルカリ処理法〕
前記(1)の生体試料armに、a ! A/ ONa
OH水溶液a!−を添加して、3マCで10分間インキ
エベートしたのち、a意N HCI 水溶液4L!
−を加えてjH亀5−tOの中性附近に中和し、アルカ
リ処曹生体試料を得た。
OH水溶液a!−を添加して、3マCで10分間インキ
エベートしたのち、a意N HCI 水溶液4L!
−を加えてjH亀5−tOの中性附近に中和し、アルカ
リ処曹生体試料を得た。
実施例1及び比較例1〜4
前記(4の(4−1)〜(4−31)K記載した本発明
例の酸処理生体試料、前記(4−4)〜(4−?)K記
載した比較例処理生体試料及び無処理の前記(1)の生
体試料の夫々について、前記(3)K従って、アミダー
ゼ活性を測定した。その結果は、下掲第1表のとおりで
あった。
例の酸処理生体試料、前記(4−4)〜(4−?)K記
載した比較例処理生体試料及び無処理の前記(1)の生
体試料の夫々について、前記(3)K従って、アミダー
ゼ活性を測定した。その結果は、下掲第1表のとおりで
あった。
(記号)(エンド) * シンE、 Co11 O,、
、B4換算値/−生体試料) −7409g> ± 30〜70 v(J +7ON170jg (1丁O〜700 pg 骨 7001g< 上掲第1表のsq*に示されているように、本発明方法
に従って酸処理さnた生体試料及び比較試料中、加熱処
理ならびにアルカリ処理された生体試料では、試料中の
アミダーゼ活性の残存は認められず、消失していること
がわかる。しかしながら、比較試料中、クロロホルム処
理ならびに酸性化処理された生体試料においては、対照
試料(無処理)よりアミダーゼ活性が大となった9*は
アンダーゼ活性は実質的に消失せず、カブトガ=に同系
酵素基質切断活性が留保されており、生体試料中の真の
エンドトキシン黛を正確に測定することは不可能である
ことがわかる。
、B4換算値/−生体試料) −7409g> ± 30〜70 v(J +7ON170jg (1丁O〜700 pg 骨 7001g< 上掲第1表のsq*に示されているように、本発明方法
に従って酸処理さnた生体試料及び比較試料中、加熱処
理ならびにアルカリ処理された生体試料では、試料中の
アミダーゼ活性の残存は認められず、消失していること
がわかる。しかしながら、比較試料中、クロロホルム処
理ならびに酸性化処理された生体試料においては、対照
試料(無処理)よりアミダーゼ活性が大となった9*は
アンダーゼ活性は実質的に消失せず、カブトガ=に同系
酵素基質切断活性が留保されており、生体試料中の真の
エンドトキシン黛を正確に測定することは不可能である
ことがわかる。
尚、第1表に於て、対照試料(無処理)に示されている
ように、他の生体試料とは異?て髄液には、通常、アミ
ダーゼ活性は見られない、しかし試料採取時や患者症状
によって、血液の混入などの原因でアミダーゼ活性の認
められる場合がある。
ように、他の生体試料とは異?て髄液には、通常、アミ
ダーゼ活性は見られない、しかし試料採取時や患者症状
によって、血液の混入などの原因でアミダーゼ活性の認
められる場合がある。
上記実験の結果、生体試料中のアミダーゼ活性が完全に
消失していることのわかった試料について、以下の実施
例2及び比較例5.6のテストを行つ次。
消失していることのわかった試料について、以下の実施
例2及び比較例5.6のテストを行つ次。
実施例2及び比較例5.6
前記実施例1及び比較例1〜4で得られた結果に基いて
、生体試料中のアミダーゼ活性を完全に消失せしめるこ
とのわがりt本発明酸処理及び比較のための加熱処理な
らびにアルカリ処理を採用後掲第2衣に示し几生体試料
に、予めシぜめられ次既知量のエンドトキシンを添加し
た後、実姉例1及び比較例1.2と同様に処理し几試料
群、及びこれら生体試料を同様に処理した体、予め定め
られた既知量のエンドトキシンを離別し次試料群につい
て、前記(21に1載の方法で、該エンドトキシン置を
測定し、添加し7た既知量のエンドトキシン菫に対する
検出測定され次エンドトキシンMv割合(チ)で樵出軍
を示す。
、生体試料中のアミダーゼ活性を完全に消失せしめるこ
とのわがりt本発明酸処理及び比較のための加熱処理な
らびにアルカリ処理を採用後掲第2衣に示し几生体試料
に、予めシぜめられ次既知量のエンドトキシンを添加し
た後、実姉例1及び比較例1.2と同様に処理し几試料
群、及びこれら生体試料を同様に処理した体、予め定め
られた既知量のエンドトキシンを離別し次試料群につい
て、前記(21に1載の方法で、該エンドトキシン置を
測定し、添加し7た既知量のエンドトキシン菫に対する
検出測定され次エンドトキシンMv割合(チ)で樵出軍
を示す。
テストの結果を下掲第2表に示した。尚、第2表には、
本発明酸処理生体試料約Nd(4−1)〜(4−3)中
、PCA処理試料についてのデーターを代表例として示
したが、他の本発明試料についても、はぼ同様な結果が
得られ友。
本発明酸処理生体試料約Nd(4−1)〜(4−3)中
、PCA処理試料についてのデーターを代表例として示
したが、他の本発明試料についても、はぼ同様な結果が
得られ友。
又、表中、 (×3)、 (×6)、 (XS)Vi、
夫々、 (測定時における)試料の希釈倍率を示す。
夫々、 (測定時における)試料の希釈倍率を示す。
上掲第2表に明らかなとおり、前記mINに示したテス
トに於て生体試料中のアミダーゼ活性の消失が飴められ
た加熱処理試料又はアルカリ処理試料を用いた測定結果
は、添加したエンドトキシンの量と相関関係を全く示さ
ずに、添加したエンドトキシンのほんの一部しか検出さ
れまかったり或は又数倍の検出率を示し次すすること、
更に試料の希釈の度合によって検出率が大巾に変化する
ことがわかる。斯して、これら比較例の手法で処理され
た生体試料を用いて、試料中の真のエンドトキシンの量
を正確に且つ信頼性をもって再現性よく検出測定するこ
とはできないことがわかる。
トに於て生体試料中のアミダーゼ活性の消失が飴められ
た加熱処理試料又はアルカリ処理試料を用いた測定結果
は、添加したエンドトキシンの量と相関関係を全く示さ
ずに、添加したエンドトキシンのほんの一部しか検出さ
れまかったり或は又数倍の検出率を示し次すすること、
更に試料の希釈の度合によって検出率が大巾に変化する
ことがわかる。斯して、これら比較例の手法で処理され
た生体試料を用いて、試料中の真のエンドトキシンの量
を正確に且つ信頼性をもって再現性よく検出測定するこ
とはできないことがわかる。
これに対して、本発明の酸処理生体試料を用いた場合に
は、生体試料の種類、エンドトキシンの添加時が処理の
前の場合と後の場合との相違、希釈の度合などに、拘わ
りなしに、#91100%の検出率で、正確に且つ信頼
性をもって再現性よ〈検出測定することが可能となるこ
とがわかる。
は、生体試料の種類、エンドトキシンの添加時が処理の
前の場合と後の場合との相違、希釈の度合などに、拘わ
りなしに、#91100%の検出率で、正確に且つ信頼
性をもって再現性よ〈検出測定することが可能となるこ
とがわかる。
更に1上記実施例2及び比較例5.6に於けると同様に
して、血漿及び血清を生体試料として処理した後、夫々
の試料中に残存する蛋白を、Lowry法(Q、 H,
Lowry、 at (11$ J、Bial。
して、血漿及び血清を生体試料として処理した後、夫々
の試料中に残存する蛋白を、Lowry法(Q、 H,
Lowry、 at (11$ J、Bial。
Ckg惟1. 193.265 (1951))によ
シ定量した、結果を下掲第3表に示した。尚、表中の数
値の単位は■蛋白/d試料であり、数値は3回の実験の
平均値で示しである。血漿の欄の下段は使用した抗凝固
剤を示す。
シ定量した、結果を下掲第3表に示した。尚、表中の数
値の単位は■蛋白/d試料であり、数値は3回の実験の
平均値で示しである。血漿の欄の下段は使用した抗凝固
剤を示す。
第3表
上掲第3衣の実販結来に示されているように、未処理(
対照)試料中の蛋白が、比較処理例の加熱処理及びアル
カリ処理では、はとんど除去されていないのに対し、本
発明の酸処理を行つfc場合には< 2 ”I / d
オーダーの極めて倣門にまで充分な除蛋白効果が達成さ
れていることがわかる。
対照)試料中の蛋白が、比較処理例の加熱処理及びアル
カリ処理では、はとんど除去されていないのに対し、本
発明の酸処理を行つfc場合には< 2 ”I / d
オーダーの極めて倣門にまで充分な除蛋白効果が達成さ
れていることがわかる。
周知のように、血中成分がカブトガニ凝固系酵素と交差
反応をすることや一般的な蛋白の保護効果などからみて
、測定しようとするエンドトキシンに実質的な失活作用
を及ぼすことなしに充分な除蛋白効果を達成することは
、測定の正確性、信頼性、再現性などの点から極めて望
ましいことである。そして、上掲第3表及び前掲第2表
の実験結果から、本発明方法によれば、このよう表希望
が有利に達成されることが理解できる。
反応をすることや一般的な蛋白の保護効果などからみて
、測定しようとするエンドトキシンに実質的な失活作用
を及ぼすことなしに充分な除蛋白効果を達成することは
、測定の正確性、信頼性、再現性などの点から極めて望
ましいことである。そして、上掲第3表及び前掲第2表
の実験結果から、本発明方法によれば、このよう表希望
が有利に達成されることが理解できる。
実施例3
生体試料中に存在する測定しようとするエンドトキシン
に対して吸着能を有する蛋白質類や細胞顆粒の如き妨害
因子を、エンドトキシンに不都合な失活作用を及ばずこ
となしに、分解乃至変性除去できることが、本発明方法
における酸処理の最も重要な特色である。
に対して吸着能を有する蛋白質類や細胞顆粒の如き妨害
因子を、エンドトキシンに不都合な失活作用を及ばずこ
となしに、分解乃至変性除去できることが、本発明方法
における酸処理の最も重要な特色である。
本発明方法における上記特色の優れた作用効果を示す几
めに1本発明のPCA処理、TCA処理、HNO,処理
の場合を例に、これら処理を行った血漿試料(PRP:
前記(11参照)、並びに生理食塩液中の添加エンドト
キシン(E、 colt O…B、)の検出率及び該処
理血漿試料(P RP)中の残存アミダーゼ活性を測定
した結果を後掲第4表に示す、測定は以下のようにして
行った。
めに1本発明のPCA処理、TCA処理、HNO,処理
の場合を例に、これら処理を行った血漿試料(PRP:
前記(11参照)、並びに生理食塩液中の添加エンドト
キシン(E、 colt O…B、)の検出率及び該処
理血漿試料(P RP)中の残存アミダーゼ活性を測定
した結果を後掲第4表に示す、測定は以下のようにして
行った。
健常血漿αlWtに、血漿l−当す1000 pgにな
るようにエンドトキシン溶液を添加したのち、5qlb
’PcA水溶液、6%TCA水溶液及び3%HNO,水
溶液を、夫々、添加し2て、各試料の終濃度が、O囁(
対照:添加せず)、0.5%、1%、Lt61.2.0
%、15%、5%及び10チとなるようKvI4製し元
、これら試料を37Cで10分間インキュベートし、次
いで3000 rpm、 15分の条件下に遠心処理し
て、上澄液5O−100ptを採取し、α1〜α2Nの
NaOH水溶液を用いてpH7゜5となるように中和し
て、これ會被検試料液とした。エンドトキシンの測定は
、前記(2)に記載の方法に従って、合成基質として前
記(3)K記載したペプチド性合成基質を用いて行つ几
。
るようにエンドトキシン溶液を添加したのち、5qlb
’PcA水溶液、6%TCA水溶液及び3%HNO,水
溶液を、夫々、添加し2て、各試料の終濃度が、O囁(
対照:添加せず)、0.5%、1%、Lt61.2.0
%、15%、5%及び10チとなるようKvI4製し元
、これら試料を37Cで10分間インキュベートし、次
いで3000 rpm、 15分の条件下に遠心処理し
て、上澄液5O−100ptを採取し、α1〜α2Nの
NaOH水溶液を用いてpH7゜5となるように中和し
て、これ會被検試料液とした。エンドトキシンの測定は
、前記(2)に記載の方法に従って、合成基質として前
記(3)K記載したペプチド性合成基質を用いて行つ几
。
更に、対照とレズ、血漿試料の代りに生理食塩水(注射
用)を用いて同様なテストを行い、その測定値管100
として、検出率(%)を算出した。
用)を用いて同様なテストを行い、その測定値管100
として、検出率(%)を算出した。
又、健常者の血漿試料(PRP)に、前記エンドトキシ
ン溶液の代りに、生理食塩水を6加したのち、前記同様
に、PCA処理、TCA処理及びBNO,処理した試料
群について、上記と同様にして、残存アミダーゼ活性を
測定し次。
ン溶液の代りに、生理食塩水を6加したのち、前記同様
に、PCA処理、TCA処理及びBNO,処理した試料
群について、上記と同様にして、残存アミダーゼ活性を
測定し次。
上掲第4表の結果に一例を示したように、酸処理剤の種
類によって、成る濃度以上になると、血漿試料又は生理
食塩水中でのエンドトキシンそれ自体の分解と予諭され
る検出率の低下が見られるが、本発明方法によれば、撤
処理剤の種類及び/又は処理条件などを予め実験的に適
宜に返択設定する仁とKよって、アミダーゼ活性の影響
の無視し得る条件下で、生体試料中のエンドトキシンの
真の値を、正確に且つ高度な信頼性管もって再現性良く
、検出測定できることが容易に理解できよう。
類によって、成る濃度以上になると、血漿試料又は生理
食塩水中でのエンドトキシンそれ自体の分解と予諭され
る検出率の低下が見られるが、本発明方法によれば、撤
処理剤の種類及び/又は処理条件などを予め実験的に適
宜に返択設定する仁とKよって、アミダーゼ活性の影響
の無視し得る条件下で、生体試料中のエンドトキシンの
真の値を、正確に且つ高度な信頼性管もって再現性良く
、検出測定できることが容易に理解できよう。
以下、災に臨床データーによシ、本発明方法実施の数例
について説明する。
について説明する。
実施例4
匍常人及びエントドキシ血症患者から、前記(1)K記
載の手法で採取し元血漿試料(PRP)を用い、本発明
方法に従ってPCA処理した酸処理P記載のペプチド性
合成基質を用いて、これら処理血檗試料中のエンドトキ
シンの実IIIを行った。
載の手法で採取し元血漿試料(PRP)を用い、本発明
方法に従ってPCA処理した酸処理P記載のペプチド性
合成基質を用いて、これら処理血檗試料中のエンドトキ
シンの実IIIを行った。
その結果を、添付第1図に示した。第1図の例に示され
ているように、鍵常人(πormal :図中A)K於
ては、エンドトキシンは0〜αO[す/―の間に集って
分布していることがわかる。これに対して、エンドトキ
シン血症患者群【図中、B#i肝炎(heWatiti
s)患者、Cは肝硬変(1owerairrkoa4m
)患者、Dは感染症(aajass)患者、Eは悪性島
瘍itl&ailtgna*t tamer)患者。
ているように、鍵常人(πormal :図中A)K於
ては、エンドトキシンは0〜αO[す/―の間に集って
分布していることがわかる。これに対して、エンドトキ
シン血症患者群【図中、B#i肝炎(heWatiti
s)患者、Cは肝硬変(1owerairrkoa4m
)患者、Dは感染症(aajass)患者、Eは悪性島
瘍itl&ailtgna*t tamer)患者。
Fは白血病←i%&#惰Sa)患者〕に於ては、エンド
トキシンはO〜[す/−の広い範囲にわたって。
トキシンはO〜[す/−の広い範囲にわたって。
夫々、異なつ九分布様式で分布しており、健常人とは明
瞭に区別できる分布状11t−示してお91本発明方法
によって、エンドトキシンを正確に且つ高度な信頼性を
もって再現性良く検出測定できる事実と相俟って、本発
明方法が、診断上、きわめて有力な手段として注目すべ
き手法を提供するものである仁とが理解できょう。
瞭に区別できる分布状11t−示してお91本発明方法
によって、エンドトキシンを正確に且つ高度な信頼性を
もって再現性良く検出測定できる事実と相俟って、本発
明方法が、診断上、きわめて有力な手段として注目すべ
き手法を提供するものである仁とが理解できょう。
実施例5
T、 K、敗血症(made t ozamia )患
者(389)の血漿試料、U、B、肝硬変症(ltva
r airrhoaia)患者(6)a)の血清試料1
M、 S、尿路感染症患者(439)の尿試料、S、
O,膵胆管癌患者(54&)の腹水試料について、前実
施例4と同様にしてエンドトキシン検出測定を行ない、
エンドトキシンの111Mされたこれら生体試料に検出
測定され九エンドトキシン蓋と同量のエンドトキシンE
、CoHO,、、B4を、添加して、エンドトキシンの
検出測定を行った。
者(389)の血漿試料、U、B、肝硬変症(ltva
r airrhoaia)患者(6)a)の血清試料1
M、 S、尿路感染症患者(439)の尿試料、S、
O,膵胆管癌患者(54&)の腹水試料について、前実
施例4と同様にしてエンドトキシン検出測定を行ない、
エンドトキシンの111Mされたこれら生体試料に検出
測定され九エンドトキシン蓋と同量のエンドトキシンE
、CoHO,、、B4を、添加して、エンドトキシンの
検出測定を行った。
上記生体試料の夫々について、各々、PCA処理%TC
A処理、HNO,処理した酸処理試料群を作成し、上記
エンドトキシン溶液を、各試料について最初の検出測定
テストで測定されたエントド中シン量の2倍の濃度とな
るように、これら各試料に添加したのち、前実施例艦と
同様にして、エンドトキシンを測定した。上記処理を、
エンドトキシン溶液の添加後に行った試料群にりいても
、同様なテストを行った。
A処理、HNO,処理した酸処理試料群を作成し、上記
エンドトキシン溶液を、各試料について最初の検出測定
テストで測定されたエントド中シン量の2倍の濃度とな
るように、これら各試料に添加したのち、前実施例艦と
同様にして、エンドトキシンを測定した。上記処理を、
エンドトキシン溶液の添加後に行った試料群にりいても
、同様なテストを行った。
その結果を、後掲表5〜表8に示し友。これら表に示し
几結果から明らかなように、病気及び生体試料の種類の
如何に拘わらずに、添加したエンドトキシンのほぼ10
0%が回収され、更に、この結果は、生体試料6酸処理
前にエンドトキシンを添加しても、酸処理後に添加して
も同様であることがわかる。このことは、本発明方法に
従って酸処理した場合には、添加エンドトキシンが、な
んらの失活変性も生ずることがなく、史に、絵加したエ
ンドトキシンと被検液との間の相互作用による検出阻害
や増感などの不都合な非特異的現象も伴わずに、添加し
九エンドトキシンがほぼ理論量で回収できることを意味
し、本発明方法による測定結果の優れた正確さ及び高度
な信頼性ならびに再現性を一層明らかにするものである
。
几結果から明らかなように、病気及び生体試料の種類の
如何に拘わらずに、添加したエンドトキシンのほぼ10
0%が回収され、更に、この結果は、生体試料6酸処理
前にエンドトキシンを添加しても、酸処理後に添加して
も同様であることがわかる。このことは、本発明方法に
従って酸処理した場合には、添加エンドトキシンが、な
んらの失活変性も生ずることがなく、史に、絵加したエ
ンドトキシンと被検液との間の相互作用による検出阻害
や増感などの不都合な非特異的現象も伴わずに、添加し
九エンドトキシンがほぼ理論量で回収できることを意味
し、本発明方法による測定結果の優れた正確さ及び高度
な信頼性ならびに再現性を一層明らかにするものである
。
添付第1図は、実施例4に@:[L、たエンドトキンン
測定の結果を示す図面である。 外1名 ng/ml 第1図 手続補正書 昭和58年2月14日 特許庁黄官 若 杉 和 夫 殿1、事件の表示 鴫41昭56−182190+5 2、発明の名称 エンドトキシン側メE法 3、補正をする渚 事件との関係 特許出願人 住所 米水if)中火16日本輌本町二丁目九1才地
八4、代 理 人〒107 (1)明細誓第7頁9行に−rOosJとあるを。 「01 l IJ と訂正する。 (2)明M4@9負7行に、 「P、 B、 Re
tinfaLd」とあるを。 j R,B、 Na1nhoLd J と訂正する。 (3) 明細誓嘱9頁8行に、 「BiaL、」と
あるを。 f BioL、J と訂正する。 (4)明#tU誉第9頁10行に、 1−(1)Jと
あるを、r (<) J と訂正する。 (5)明細書第13自11行に「酸処理する。」とある
慄に、 rすなわち、該生体試料中のエンドトキシン非依存性酵
素活性(hydroLytie activity o
fandatorin−independent gv
sgyrrus)が検出されなくなるように酸処理する
。」 と加入する。 (6)明細誓甲20貞7行及び第21頁4行に。 夫々−rOmJとあるを。 rol 11 J と訂正する。 (7)明m’dFM 2 s真下から4有に% uα
ncmt1 1272(1974)Jとめるを。 rLancmt(i)12T2C1975)Jと訂正す
る。 (8)明#l@xa1負lO行に、「示す。」とある恢
に。 r更に1表中には前記(4−5)比較例〔酸性化処理〕
で得た生体試料についても同様に行った蛋白定鷲の結果
を示した。」 と加入する。 (9)明細薔第32頁の第3衣中、PCA処理(本発明
)の各個に、夫々、「〈2」とあるを。 「〈l」 と訂正する。 α1 明細4第32負の第3表のアルカリ処理(比較)
の下に表の各−に対応して、以下のとおりリロ入する。 」 α力 明it第32頁下から4行に、「及びアルカリ処
理」とあるを。 「、アルカリ処理及び散性化処理」 と訂正する。 CI邊 明細4第32負末行に、「く2岬/1」とある
を。 と訂正する。 ell 明a3誉第33自下から6行に、「存在する
」とある後に。 r LAL −Te5t阻害因子及びアミダーゼ活性。 さらに」 と加入する。 ノ a4 明細1#第34貞2〜5行に、「本発明の・・
◆(E、 cadi、 Ol、、B4)とあるを。 r A * e o l s ()l 1 i B*
自由米エントドキシンを添加した血漿サンプルを本発明
のPCA処理。 TCA@埋、#VO,処理に賦した場合を例に。 これら酸処理を行った血漿試料(PRP を前記(1)
参照)、並びに生理食塩液中にE、 coLioll
lB、白米のエンドトキシンを添加したのち。 上記各々の酸処理を行った三つのコントロール試料につ
いて、添加したエンドトキシン」aS 明sin第3
4貝11?x[、[s%PCA水浴液、5襲TCA水浴
故及び3%jとあるを。 r P CA7に浴Q、 T CA水1e液及U Jと
訂正する。 DI 4311.、it14g35jj2行に、rp
B7.sJ とhる紮、 rpH6,5〜8.OJ と訂正する。 aり 明細着側36貝の第4病を以下のとおり訂正する
。 (III 明71+I11誓素39貞下から5行に「
O□、」とあるを。 0111J と訂正する。 α罎 明細4ft第45負の衣の衾に、行を改めて。 以下のとおり刀目人する。 r 以上に詳しく述べたとおり1本発明によれば生体試
料たとえば体液やそのaoil製物中のエンドトキシン
を優れた正確性、1d籾性及び再現性をもって慣用測定
することができる。したがって。 本兜明方法の実施に利用できるエンドトキシン測定用具
として1例えばpKα25°0イ^が3以下の瞭(α)
とカブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分(b)と
の組み合わせもしくはこの組み合わせを含むエンドトキ
シン測定用キットを例示することができる。すなわち1
本発明方法の実施に利用できる測定用キットとして、被
験試料の酸処理用のpKa25′C愼が3以下の醒(a
)を収容した容器及びカブトガニ・アメがサイト・ライ
ゼート成分(b)を収容した容器の組み合わせもしくは
この組み合わせを含む測定用キットが提供できる。 このような胛]定用キットけ、さらにエンドトキシン測
定用合成基爾、中和用アルカリ、稀釈用もしくけ溶解用
の緩衝液、カップリング試薬、酵素反応停止剤、蒸留水
その他の補釈用液などの如き、測定に利用する各種の剤
を収容した容器を、適宜、史に組み合せたキットの形態
とすることができる。」
測定の結果を示す図面である。 外1名 ng/ml 第1図 手続補正書 昭和58年2月14日 特許庁黄官 若 杉 和 夫 殿1、事件の表示 鴫41昭56−182190+5 2、発明の名称 エンドトキシン側メE法 3、補正をする渚 事件との関係 特許出願人 住所 米水if)中火16日本輌本町二丁目九1才地
八4、代 理 人〒107 (1)明細誓第7頁9行に−rOosJとあるを。 「01 l IJ と訂正する。 (2)明M4@9負7行に、 「P、 B、 Re
tinfaLd」とあるを。 j R,B、 Na1nhoLd J と訂正する。 (3) 明細誓嘱9頁8行に、 「BiaL、」と
あるを。 f BioL、J と訂正する。 (4)明#tU誉第9頁10行に、 1−(1)Jと
あるを、r (<) J と訂正する。 (5)明細書第13自11行に「酸処理する。」とある
慄に、 rすなわち、該生体試料中のエンドトキシン非依存性酵
素活性(hydroLytie activity o
fandatorin−independent gv
sgyrrus)が検出されなくなるように酸処理する
。」 と加入する。 (6)明細誓甲20貞7行及び第21頁4行に。 夫々−rOmJとあるを。 rol 11 J と訂正する。 (7)明m’dFM 2 s真下から4有に% uα
ncmt1 1272(1974)Jとめるを。 rLancmt(i)12T2C1975)Jと訂正す
る。 (8)明#l@xa1負lO行に、「示す。」とある恢
に。 r更に1表中には前記(4−5)比較例〔酸性化処理〕
で得た生体試料についても同様に行った蛋白定鷲の結果
を示した。」 と加入する。 (9)明細薔第32頁の第3衣中、PCA処理(本発明
)の各個に、夫々、「〈2」とあるを。 「〈l」 と訂正する。 α1 明細4第32負の第3表のアルカリ処理(比較)
の下に表の各−に対応して、以下のとおりリロ入する。 」 α力 明it第32頁下から4行に、「及びアルカリ処
理」とあるを。 「、アルカリ処理及び散性化処理」 と訂正する。 CI邊 明細4第32負末行に、「く2岬/1」とある
を。 と訂正する。 ell 明a3誉第33自下から6行に、「存在する
」とある後に。 r LAL −Te5t阻害因子及びアミダーゼ活性。 さらに」 と加入する。 ノ a4 明細1#第34貞2〜5行に、「本発明の・・
◆(E、 cadi、 Ol、、B4)とあるを。 r A * e o l s ()l 1 i B*
自由米エントドキシンを添加した血漿サンプルを本発明
のPCA処理。 TCA@埋、#VO,処理に賦した場合を例に。 これら酸処理を行った血漿試料(PRP を前記(1)
参照)、並びに生理食塩液中にE、 coLioll
lB、白米のエンドトキシンを添加したのち。 上記各々の酸処理を行った三つのコントロール試料につ
いて、添加したエンドトキシン」aS 明sin第3
4貝11?x[、[s%PCA水浴液、5襲TCA水浴
故及び3%jとあるを。 r P CA7に浴Q、 T CA水1e液及U Jと
訂正する。 DI 4311.、it14g35jj2行に、rp
B7.sJ とhる紮、 rpH6,5〜8.OJ と訂正する。 aり 明細着側36貝の第4病を以下のとおり訂正する
。 (III 明71+I11誓素39貞下から5行に「
O□、」とあるを。 0111J と訂正する。 α罎 明細4ft第45負の衣の衾に、行を改めて。 以下のとおり刀目人する。 r 以上に詳しく述べたとおり1本発明によれば生体試
料たとえば体液やそのaoil製物中のエンドトキシン
を優れた正確性、1d籾性及び再現性をもって慣用測定
することができる。したがって。 本兜明方法の実施に利用できるエンドトキシン測定用具
として1例えばpKα25°0イ^が3以下の瞭(α)
とカブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分(b)と
の組み合わせもしくはこの組み合わせを含むエンドトキ
シン測定用キットを例示することができる。すなわち1
本発明方法の実施に利用できる測定用キットとして、被
験試料の酸処理用のpKa25′C愼が3以下の醒(a
)を収容した容器及びカブトガニ・アメがサイト・ライ
ゼート成分(b)を収容した容器の組み合わせもしくは
この組み合わせを含む測定用キットが提供できる。 このような胛]定用キットけ、さらにエンドトキシン測
定用合成基爾、中和用アルカリ、稀釈用もしくけ溶解用
の緩衝液、カップリング試薬、酵素反応停止剤、蒸留水
その他の補釈用液などの如き、測定に利用する各種の剤
を収容した容器を、適宜、史に組み合せたキットの形態
とすることができる。」
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、 カブトガニ・アメボサイト・ライゼート成分を用
いて生体試料中に存在するエンドトキシン管測定する方
法に於て、該試料中のカブトガニ凝固系酵素基質切断活
性が検出されなくなる条件下に酸処理した生体試料を用
いることを特徴とする方法。 2 該酸処理が、pKa”=%”2:値が3以下の酸を
用いてpf13以下の条件下に行われる特許請求の範囲
第1項tfd載の方法。
Priority Applications (5)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56182190A JPS5885162A (ja) | 1981-11-16 | 1981-11-16 | エンドトキシン測定法 |
| US06/441,810 US4495294A (en) | 1981-11-16 | 1982-11-15 | Method for determining bacterial endotoxin and kit therefor |
| CA000415533A CA1201048A (en) | 1981-11-16 | 1982-11-15 | Method for determining bacterial endotoxin and kit therefor |
| EP82110589A EP0080649B1 (en) | 1981-11-16 | 1982-11-16 | Method for determining bacterial endotoxin and kit therefor |
| DE8282110589T DE3265283D1 (en) | 1981-11-16 | 1982-11-16 | Method for determining bacterial endotoxin and kit therefor |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP56182190A JPS5885162A (ja) | 1981-11-16 | 1981-11-16 | エンドトキシン測定法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5885162A true JPS5885162A (ja) | 1983-05-21 |
| JPS6355671B2 JPS6355671B2 (ja) | 1988-11-04 |
Family
ID=16113904
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP56182190A Granted JPS5885162A (ja) | 1981-11-16 | 1981-11-16 | エンドトキシン測定法 |
Country Status (5)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4495294A (ja) |
| EP (1) | EP0080649B1 (ja) |
| JP (1) | JPS5885162A (ja) |
| CA (1) | CA1201048A (ja) |
| DE (1) | DE3265283D1 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2005062056A1 (ja) * | 2003-12-22 | 2005-07-07 | Seikagaku Corporation | リポアラビノマンナンの測定方法とその応用 |
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| US4717658A (en) * | 1985-12-03 | 1988-01-05 | Miles Inc. | Gram negative bacteria screening method with horseshoe crab amebocyte lysate (LAL) |
| DK255887D0 (da) * | 1987-05-20 | 1987-05-20 | Claus Koch | Immunoassay |
| GB8727796D0 (en) * | 1987-11-27 | 1987-12-31 | Radiometer Corporate Developme | Urine assay process and kit |
| US5082782A (en) * | 1988-12-27 | 1992-01-21 | Worcester Polytechnic Institute | Production of horseshoe crab amebocytes in vitro |
| SE8904188D0 (sv) * | 1989-12-12 | 1989-12-12 | Kabivitrum Ab | Chromogenic substrate |
| JP2944721B2 (ja) * | 1990-08-22 | 1999-09-06 | 生化学工業株式会社 | エンドトキシンの測定剤 |
| JP2957251B2 (ja) * | 1990-09-28 | 1999-10-04 | 生化学工業株式会社 | エンドトキシンの測定法 |
| EP0549102B1 (en) * | 1991-12-25 | 1996-07-03 | Maruha Corporation | Beta-glucans detection reagents and methods of detecting beta-glucans |
| JP2737514B2 (ja) * | 1992-01-24 | 1998-04-08 | 和光純薬工業株式会社 | エンドトキシン測定用試料の前処理方法 |
| JP3524120B2 (ja) * | 1992-05-08 | 2004-05-10 | 生化学工業株式会社 | 前処理剤、前処理方法、前処理された試料による測定法、測定用キット及び試料の判定方法 |
| JP3242733B2 (ja) * | 1993-02-26 | 2001-12-25 | 生化学工業株式会社 | エンドトキシン特異的測定剤 |
| JP3781771B2 (ja) * | 1993-06-29 | 2006-05-31 | 生化学工業株式会社 | 新規ポリペプチド及びそれをコードするdna |
| EP0837330B1 (en) | 1996-10-21 | 2005-08-24 | Seikagaku Corporation | Method for measuring Endotoxin |
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| DE102004025780B4 (de) * | 2004-05-26 | 2008-04-03 | Stief, Thomas, Dr.med. | Verfahren zur Anti-Limulus-Faktoren-unabhängigen Bestimmung der Lipopolysaccharid- und/oder Lipid-A- und/oder Glukan-Reaktivität, dafür geeignetes Testsystem sowie dessen Verwendung |
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| US8921063B2 (en) | 2011-02-28 | 2014-12-30 | BioDtech, Inc. | Enhancing endotoxin detection |
| JP6432083B2 (ja) * | 2012-12-28 | 2018-12-05 | 生化学工業株式会社 | リムルス試験に付されるアンチトロンビンiii用の前処理剤及び前処理方法 |
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| US4116635A (en) * | 1977-03-14 | 1978-09-26 | Jaeger Mark A | General purpose in vitro anticoagulant |
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