JPS5962529A - 安定な発色剤組成物 - Google Patents
安定な発色剤組成物Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は安定な発色剤組成物に関し、さらに詳しくは過
酸化物質、発色剤、過酸化酵素を用いた酸化発色による
測定系に用いる発色剤の安定化法に関する。
酸化物質、発色剤、過酸化酵素を用いた酸化発色による
測定系に用いる発色剤の安定化法に関する。
過l′N化物質、特に過酸化水素の測定は最近、臨床検
査の分野において重要性を増しつつある。体液成分、例
えばブドウ糖、尿酸、コレステロール、モノアミンはグ
ルコースオキシダーゼ、ウリカーゼ、コレステロールオ
キシダーゼ、モノアミンオキシダーゼとの酵素反応によ
って過酸化水素が生成する。生成した過酸化水素は発色
剤及び過酸化酵素を用いて定量することによって、各々
の体液成分の含爪を知ることができる。
査の分野において重要性を増しつつある。体液成分、例
えばブドウ糖、尿酸、コレステロール、モノアミンはグ
ルコースオキシダーゼ、ウリカーゼ、コレステロールオ
キシダーゼ、モノアミンオキシダーゼとの酵素反応によ
って過酸化水素が生成する。生成した過酸化水素は発色
剤及び過酸化酵素を用いて定量することによって、各々
の体液成分の含爪を知ることができる。
又1過藪化自イ・紫の活性測定はペルオキシダーゼを標
識物質とした酵素免疫測定法において重要性を増しつつ
ある。一般に酵素免疫測定法においてはS標識抗体又は
標識抗原のペルオキシダーゼ活性を測定することにより
、生体生理活性物質あるカルチノ・エンブリオニック・
アンチゲン・免疫グロブリンg(工fx) 、フェリチ
ン、β、−マイクログロブリン等の極微量の血清タンパ
ク質の測定を行なうことができる。
識物質とした酵素免疫測定法において重要性を増しつつ
ある。一般に酵素免疫測定法においてはS標識抗体又は
標識抗原のペルオキシダーゼ活性を測定することにより
、生体生理活性物質あるカルチノ・エンブリオニック・
アンチゲン・免疫グロブリンg(工fx) 、フェリチ
ン、β、−マイクログロブリン等の極微量の血清タンパ
ク質の測定を行なうことができる。
七ころで1過敞化物質、特に過酸化水素の定量法として
は発色剤として、0−ジアニシジンを用いる方法又は4
−アミノアンヂピリンと7エノールを用いる方法等が知
られている(検査と技術’l1rO1,9、/i l
1 、 P−867−871(1981))。しかしな
がら、前者は還元性物質、例えば、アルデヒド類と反応
する性質があるため、その反応が過酸化水素に特異的で
ない欠点を持っている。又、後者は、感度が十分でない
ため、血清等の貴重な試料が多ノlシ必要となる。又、
それがために、測定時に、共存物質の影響を受けやすい
欠点を有していた。
は発色剤として、0−ジアニシジンを用いる方法又は4
−アミノアンヂピリンと7エノールを用いる方法等が知
られている(検査と技術’l1rO1,9、/i l
1 、 P−867−871(1981))。しかしな
がら、前者は還元性物質、例えば、アルデヒド類と反応
する性質があるため、その反応が過酸化水素に特異的で
ない欠点を持っている。又、後者は、感度が十分でない
ため、血清等の貴重な試料が多ノlシ必要となる。又、
それがために、測定時に、共存物質の影響を受けやすい
欠点を有していた。
一方、過酸化酵素の活性測定方法としては1過酸化物質
を基質とし、0−ジアニシジン或はピロif o −ル
オヨびフェニレンジアミン誘導体を発色剤として用いる
方法が知られている。しかしながらSO−ジアニシジン
をもちいる方法は前述のごとく1反応が非特異的である
。又、ピロガロールを使用する測定方法は酵素反応後の
呈色生成物質の生成のしやすいエチル・エーテルを使用
し、抽出操作をくりかえすために、精度が要求される等
の不便さを有する。また、それがために1実用性ニトホ
しい。フェニレンジアミン誘導体・例えば10−フェニ
レンジアミンを使用する測定法は一般に良く使用され)
感度の点では申し分がない。しかし、0−フェニレンジ
アミンは光酸化を受けやすく、不安定で非特異的反応に
よる発色がみられるために取扱いには細心の注意が必要
である。それゆえに、光酸化等の非特異的反応をおさえ
るために、暗所で取扱ったりする必要がある等の不便従
来から発色剤の安定化法としては、遮光する方法、]1
iDTAを添加する方法等が用いられるけれども、必ず
しも、効果的で有利な方法とは言えない。さらに、酸化
発色系に還元性物質を添加すると発色反応を妨害するこ
とは公知の事実である(検査と技南VoL9.All、
P−867〜871(’81))。
を基質とし、0−ジアニシジン或はピロif o −ル
オヨびフェニレンジアミン誘導体を発色剤として用いる
方法が知られている。しかしながらSO−ジアニシジン
をもちいる方法は前述のごとく1反応が非特異的である
。又、ピロガロールを使用する測定方法は酵素反応後の
呈色生成物質の生成のしやすいエチル・エーテルを使用
し、抽出操作をくりかえすために、精度が要求される等
の不便さを有する。また、それがために1実用性ニトホ
しい。フェニレンジアミン誘導体・例えば10−フェニ
レンジアミンを使用する測定法は一般に良く使用され)
感度の点では申し分がない。しかし、0−フェニレンジ
アミンは光酸化を受けやすく、不安定で非特異的反応に
よる発色がみられるために取扱いには細心の注意が必要
である。それゆえに、光酸化等の非特異的反応をおさえ
るために、暗所で取扱ったりする必要がある等の不便従
来から発色剤の安定化法としては、遮光する方法、]1
iDTAを添加する方法等が用いられるけれども、必ず
しも、効果的で有利な方法とは言えない。さらに、酸化
発色系に還元性物質を添加すると発色反応を妨害するこ
とは公知の事実である(検査と技南VoL9.All、
P−867〜871(’81))。
本発明者らは水溶液中での酸化反応の検討を進めていく
過程で、酸化度1ノロの豹殊性(例えば酸素ラジカルの
反応性、酸素イオンの反応性、さらには、溶存した分子
状酸素の反応性等)を鋭意検討することにより、o−フ
ェニレンジアミンのiff化発色系において、fl@:
11悶化合物、硫哉ヒドロキシルアミン等の有機系還元
剤が過「我化醇累、例えば、ペルオ・V−シダーゼによ
る酢化反応を阻害しないばかりか、安定な呈色を達成で
きることがわかり本発明を児成した。
過程で、酸化度1ノロの豹殊性(例えば酸素ラジカルの
反応性、酸素イオンの反応性、さらには、溶存した分子
状酸素の反応性等)を鋭意検討することにより、o−フ
ェニレンジアミンのiff化発色系において、fl@:
11悶化合物、硫哉ヒドロキシルアミン等の有機系還元
剤が過「我化醇累、例えば、ペルオ・V−シダーゼによ
る酢化反応を阻害しないばかりか、安定な呈色を達成で
きることがわかり本発明を児成した。
すなわち、本発明はフェニレンジアミンまたはその誘I
J体および有機還元剤を含むことを特徴とする安定な発
色剤組成物である。
J体および有機還元剤を含むことを特徴とする安定な発
色剤組成物である。
有白糸31元剤のうち、蓚酸化合物としては酪酸、t3
よびぞのナトリウム、カリウム、リチウム等のアルカリ
金氏塩、マグネシウム、カルシウム等のアルカリ土類金
属塩、さらにはそれらのアンモニ導体とは、例えば、0
−フェニレンシアミニ・、m−フェニレンジアミン、p
−フェニレンジアミンおよびそれらの硫酸塩、塩酸塩又
は(i& It’d塩1さらに、4−アミノ−N、N−
ジメチルアニリン、4−アミノ−N 、 N−ジエチル
アニリン、4−アミノ−NN−ジプロピルアニリン、4
−アミノトリイジン、4−アミノ−N、N−ジエチル−
m−)ルイジン、4−アミノ−N−エチル−N−β−ヒ
ドロキシエチル−m−)ルイジン等を挙げることができ
る。
よびぞのナトリウム、カリウム、リチウム等のアルカリ
金氏塩、マグネシウム、カルシウム等のアルカリ土類金
属塩、さらにはそれらのアンモニ導体とは、例えば、0
−フェニレンシアミニ・、m−フェニレンジアミン、p
−フェニレンジアミンおよびそれらの硫酸塩、塩酸塩又
は(i& It’d塩1さらに、4−アミノ−N、N−
ジメチルアニリン、4−アミノ−N 、 N−ジエチル
アニリン、4−アミノ−NN−ジプロピルアニリン、4
−アミノトリイジン、4−アミノ−N、N−ジエチル−
m−)ルイジン、4−アミノ−N−エチル−N−β−ヒ
ドロキシエチル−m−)ルイジン等を挙げることができ
る。
過酸化酵素としては例えば、ペルオキシダーゼ、ラクト
ペルオキシダーゼ、チトクロームペルオキシダーゼ等が
ある。
ペルオキシダーゼ、チトクロームペルオキシダーゼ等が
ある。
本発明の発色剤組成物において)有機還元剤は通常0.
1 m M 〜5 M 1好ましくはl m M 〜l
Mでアリ、フェニレンジアミンまたはその誘導体は1
mM〜100mMである。田は4〜9の範囲であること
が好ましい。
1 m M 〜5 M 1好ましくはl m M 〜l
Mでアリ、フェニレンジアミンまたはその誘導体は1
mM〜100mMである。田は4〜9の範囲であること
が好ましい。
本発明の発色剤組成物には、過酸化物質または過酸化酵
素、水又は緩衝液が含まれていてもよい。
素、水又は緩衝液が含まれていてもよい。
さらに必要により他の安定剤、防腐剤等が含まれていて
もよい。
もよい。
本発明の発色剤組成物および過酸化酵素を使用した測定
例としては、例えば、次のようなものがあげられる。過
酸化水素又はペルオキシダーゼの活性を測定するに際し
ては有機還元剤を通常、0.1mλ哩〜5 Mz 好t
、 シ< u 11TI M〜IMとフェニレンジアミ
ン誘導体を1mM〜l OOm M % @む緩衝液及
びペルオキシダーゼを任意の順序に又は1同時に、試料
に添加する。pHは4〜9の範囲の任意のpllである
。2〜60’C,好ましくは2〜40゛Cの反応温度で
暗所又は明所で酵素反応を行なわせると、生成した過酸
化水素量或は存在しているペルオキシダーゼ量に応じて
呈色物質が生成する。
例としては、例えば、次のようなものがあげられる。過
酸化水素又はペルオキシダーゼの活性を測定するに際し
ては有機還元剤を通常、0.1mλ哩〜5 Mz 好t
、 シ< u 11TI M〜IMとフェニレンジアミ
ン誘導体を1mM〜l OOm M % @む緩衝液及
びペルオキシダーゼを任意の順序に又は1同時に、試料
に添加する。pHは4〜9の範囲の任意のpllである
。2〜60’C,好ましくは2〜40゛Cの反応温度で
暗所又は明所で酵素反応を行なわせると、生成した過酸
化水素量或は存在しているペルオキシダーゼ量に応じて
呈色物質が生成する。
生成した呈色物質の吸収極大値の波長における吸光度を
測定する。一方、濃度既知の過酸化水素又はペルオキシ
ダーゼの活性値を同様に反応させて検量線を作成し、こ
の検量線と対比して試料中の過酸化水嵩又はペルオキシ
ダーゼ活性を+11!I定する。
測定する。一方、濃度既知の過酸化水素又はペルオキシ
ダーゼの活性値を同様に反応させて検量線を作成し、こ
の検量線と対比して試料中の過酸化水嵩又はペルオキシ
ダーゼ活性を+11!I定する。
酵素標識抗体又は酵素標識抗原を用いる方法においては
、濃度既知の抗原域又は抗体量を用いて作成した検F?
t (’flと対比して試料中の抗原又は抗体を算出す
ることができる。
、濃度既知の抗原域又は抗体量を用いて作成した検F?
t (’flと対比して試料中の抗原又は抗体を算出す
ることができる。
本発明では呈色反応は暗所においても、さらには明所に
おいても取扱うことができ、非特異的反応を11(小眼
におさえて、感度よく測定することが誘導体および還元
剤のほかに必要により過酸化酵素が含まれるが1さらに
、緩衝液、標準液等、通常使用される試薬を註むことが
できるO本発明の発色剤組成物は有機還元剤を含むこと
により、光に対する安定性が改良され、非特異的反応を
おさえることが可能となる。
おいても取扱うことができ、非特異的反応を11(小眼
におさえて、感度よく測定することが誘導体および還元
剤のほかに必要により過酸化酵素が含まれるが1さらに
、緩衝液、標準液等、通常使用される試薬を註むことが
できるO本発明の発色剤組成物は有機還元剤を含むこと
により、光に対する安定性が改良され、非特異的反応を
おさえることが可能となる。
さらに本発明の発色剤組成物を用いて、過酸化酵素およ
び過酸化水素を測定するに当り、有機還元剤は#ト素反
応を阻害しない特徴を有する。
び過酸化水素を測定するに当り、有機還元剤は#ト素反
応を阻害しない特徴を有する。
また本発明の発色剤組成物は呈色後の経時変化において
も優れる。
も優れる。
次に、本発明を実施例によりさらに、具体的に説明する
が、本発明はこれらにより限定されるものではない。
が、本発明はこれらにより限定されるものではない。
実施例1 非特異的反応の検討
O−フェニレンジアミン・2塩lり塩を0.02%の過
酸化水素を含むりん酸−クエン#J更緩衝液(pj!、
7)に、0.3%になるように溶解した。さらに、各種
添加剤を加え、児全溶解後、試験管(12my+φ×後
、492nmでの吸光度を測定し、非特異的反に+を評
価した。
酸化水素を含むりん酸−クエン#J更緩衝液(pj!、
7)に、0.3%になるように溶解した。さらに、各種
添加剤を加え、児全溶解後、試験管(12my+φ×後
、492nmでの吸光度を測定し、非特異的反に+を評
価した。
その結果を表−1に示す。
表−1より、明らかなように1無添加に比欲しテfiF
付化合物、アスコルビン酸、ヒドロキシル・アミン・硫
酸塩、グルコース等の還元性物質が非特異内反J心をお
さえることがわかった。
付化合物、アスコルビン酸、ヒドロキシル・アミン・硫
酸塩、グルコース等の還元性物質が非特異内反J心をお
さえることがわかった。
実細例2 各桶、1青元性物質添加系におけるペルオキ
シダーゼによる酵素反応の検討 0−フェニレンジアミン・2塩酔塩を0.02%の過酸
化水素を含むリン酸−クエン酸緩衝液(p145゜7)
に003%になるように溶解した。さらに、各柚濃度の
3−λ元性物質を加え完全溶解後、試FA管(12nφ
×7゜s cM)に0゜5−ずつ分注し、発色液を作成
した。次に、ペルオキシダーゼを。。15mU/ガlに
なるように0゜1%B%SA水溶液で溶解し、酵素溶液
とした。この酵素溶液を上記にて準1i# ’L、、た
発色液に50μlft加え、室温にて30分聞、明所で
反応した。反応終了後、X−N・硫酸を2−添加し1反
応停止後、492nmでの吸光度を測定し、各4i(>
’4元性物質共存下における酵素反応の阻害作用を検討
した。
シダーゼによる酵素反応の検討 0−フェニレンジアミン・2塩酔塩を0.02%の過酸
化水素を含むリン酸−クエン酸緩衝液(p145゜7)
に003%になるように溶解した。さらに、各柚濃度の
3−λ元性物質を加え完全溶解後、試FA管(12nφ
×7゜s cM)に0゜5−ずつ分注し、発色液を作成
した。次に、ペルオキシダーゼを。。15mU/ガlに
なるように0゜1%B%SA水溶液で溶解し、酵素溶液
とした。この酵素溶液を上記にて準1i# ’L、、た
発色液に50μlft加え、室温にて30分聞、明所で
反応した。反応終了後、X−N・硫酸を2−添加し1反
応停止後、492nmでの吸光度を測定し、各4i(>
’4元性物質共存下における酵素反応の阻害作用を検討
した。
その結果を表−2に示す。
表−2より明らかなように、蓚酸化合物は酵素反応糸に
添加してい′Cも、全< #素反応を阻害しないことが
オフかった。アスコルビン酸等は濃度に大きく依存する
けれども、低濃度の添加域では若干の発色がみられるも
のの、酵素反応を著しく阻害した。
添加してい′Cも、全< #素反応を阻害しないことが
オフかった。アスコルビン酸等は濃度に大きく依存する
けれども、低濃度の添加域では若干の発色がみられるも
のの、酵素反応を著しく阻害した。
Δ11I定例1 インスリン分析試験
実晦例−1、−2、の結果を利用して、サンドイッチ法
刊工Aによりインスリンを分析した。
刊工Aによりインスリンを分析した。
■ インスリン測定用不浴化試桑の製造抗ブタインスリ
ン抗血清(モルモット)より45%飽和硫安にて分画後
、DICAE−セファロースカラムにて精製し、抗体画
分を得た。この抗体画分を0.01 Mリン酸緩衝液(
p+(ニア、2 : 0,15M NaO!含有)を用
い、濃度が1−当り1■となるように希釈した溶Kf、
50 mtに、十分洗浄した粗面化ポリスチレンボール
400個を浸漬し、室温で8時間III’ JET し
た。その後、ポリスチレンボールを浸漬液より分離し、
牛血清アルブミンを1%含有する0、OL Mリン酸4
1 eel液(14: 7.2 i 0.15M Na
p/含有)を用いて3回洗浄した後、同一緩衝、夜中に
保存した。
ン抗血清(モルモット)より45%飽和硫安にて分画後
、DICAE−セファロースカラムにて精製し、抗体画
分を得た。この抗体画分を0.01 Mリン酸緩衝液(
p+(ニア、2 : 0,15M NaO!含有)を用
い、濃度が1−当り1■となるように希釈した溶Kf、
50 mtに、十分洗浄した粗面化ポリスチレンボール
400個を浸漬し、室温で8時間III’ JET し
た。その後、ポリスチレンボールを浸漬液より分離し、
牛血清アルブミンを1%含有する0、OL Mリン酸4
1 eel液(14: 7.2 i 0.15M Na
p/含有)を用いて3回洗浄した後、同一緩衝、夜中に
保存した。
■ ペルオキシダーゼ標識抗体の調製
酵素としてloqのペルオキシダーゼ(西洋ワサビ由来
)を使用し、過よう素酸架橋法によって51の抗ブタイ
ンスリン抗体にペルオキシダーゼを結合させ、セファデ
ックスG−200によるゲルp過によって精製後、コロ
ジオンバッグで濃縮し、ペルオキシダーゼ標識抗体とし
た。抗体へのペルオキシダーゼの結合方法はP1ナヵネ
等:ザ・ジャーナル・オフ・ヒストケミストリー。アン
ド・サイトケミストリー、第22巻、第12号1P−1
084〜1091 (1974年)に記載されている
。得られたペルオキシダーゼ標識抗体は使用直前に1%
牛血清アルブミンを含有する0、01 Mリン目■1液
(p+I : 7.2 i 0.15 M NaCJ!
含有)で2000倍附近まで希釈し使用した。
)を使用し、過よう素酸架橋法によって51の抗ブタイ
ンスリン抗体にペルオキシダーゼを結合させ、セファデ
ックスG−200によるゲルp過によって精製後、コロ
ジオンバッグで濃縮し、ペルオキシダーゼ標識抗体とし
た。抗体へのペルオキシダーゼの結合方法はP1ナヵネ
等:ザ・ジャーナル・オフ・ヒストケミストリー。アン
ド・サイトケミストリー、第22巻、第12号1P−1
084〜1091 (1974年)に記載されている
。得られたペルオキシダーゼ標識抗体は使用直前に1%
牛血清アルブミンを含有する0、01 Mリン目■1液
(p+I : 7.2 i 0.15 M NaCJ!
含有)で2000倍附近まで希釈し使用した。
■ インスリンの測定方法
試験背(12PIlφ×7.5α)に緩衝液−■(0゜
5%牛血清アルプミ\ン含有0.01 M !Jン酢緩
筒液く田: 7,2 ; 0.15 M NaO!含有
> ) o、a−およびWHOのナンバー66/304
を基準にして作成した標準インスリン溶液(5〜320
μu/m/)o。1 vlを添加し1よく混合してから
測定例−1の■の項で作成した不溶化試薬1個を入れ、
37’cで1時間、加温した。加温終了後、試験管内の
反応液を吸引除去し、緩衝液−工の1−を加えて洗浄し
た。この操作を3回繰りかえした後、測定例−1の■の
項で得たペルオキシダーゼ標識抗体250μノを加え、
37°Cで2時間、加温した。加温終了後、前記と同様
に反応液を吸引除去し、3回洗浄後、実晧例1で示した
発色液にボールのみを移し、各の色素を492mmで測
定した。
5%牛血清アルプミ\ン含有0.01 M !Jン酢緩
筒液く田: 7,2 ; 0.15 M NaO!含有
> ) o、a−およびWHOのナンバー66/304
を基準にして作成した標準インスリン溶液(5〜320
μu/m/)o。1 vlを添加し1よく混合してから
測定例−1の■の項で作成した不溶化試薬1個を入れ、
37’cで1時間、加温した。加温終了後、試験管内の
反応液を吸引除去し、緩衝液−工の1−を加えて洗浄し
た。この操作を3回繰りかえした後、測定例−1の■の
項で得たペルオキシダーゼ標識抗体250μノを加え、
37°Cで2時間、加温した。加温終了後、前記と同様
に反応液を吸引除去し、3回洗浄後、実晧例1で示した
発色液にボールのみを移し、各の色素を492mmで測
定した。
■ 酵素反応条件を変えた時の検量線の液化の検討
■の測定方法に従って、インスリン標準品を測定し、検
量線を作成した。なお、発色液には30mMの蓚酸ナト
リウムを添加した場合と添加しない場合について酵素反
応を行なった。又、酵素反応は室温、明所、1時間およ
び4°C,1夜放置で行ない、前者の結果は第1図に、
後者の結果は第2図に示している。これらの図より明ら
かなように、インスリン低濃度側において、感度が大幅
に改良されると共に、非特異的反応がおさえられている
ことがわかる。
量線を作成した。なお、発色液には30mMの蓚酸ナト
リウムを添加した場合と添加しない場合について酵素反
応を行なった。又、酵素反応は室温、明所、1時間およ
び4°C,1夜放置で行ない、前者の結果は第1図に、
後者の結果は第2図に示している。これらの図より明ら
かなように、インスリン低濃度側において、感度が大幅
に改良されると共に、非特異的反応がおさえられている
ことがわかる。
■ 呈色後の経時変化についての検討
■の測定方法に従って、インスリン標準品を測定した。
なお、呈色安定性は各槙還元性物質の添加の有無によっ
て、呈色安定性はどのように変化するか検討し、その結
果を表−3に示した。又、反応停止直後の吸光度(49
znm)を100とした時の経時変化によって示してい
る。
て、呈色安定性はどのように変化するか検討し、その結
果を表−3に示した。又、反応停止直後の吸光度(49
znm)を100とした時の経時変化によって示してい
る。
表−3呈色後の経時変化の検討
表−3より明らかなように、還元性物質、特に蓚酸化合
物がe1γ−素反応糸に添加していても、呈色安定性は
そこなわれないことがわかった。
物がe1γ−素反応糸に添加していても、呈色安定性は
そこなわれないことがわかった。
測定例−219に分析試験
実旌例−1、−2、の結果を利用して、サンドイッチ法
E工Aにより工fEを分析した。
E工Aにより工fEを分析した。
■ 1FK測定用不溶化試薬の製造
抗ヒトエIH抗血清(うさぎ)より、45%飽和硫安に
て分画後、DIGAE−セファロースカラムにて精製し
、抗体画分を得た。以下、工f]IG測定用不溶化試蘂
のM造は測定例−1のインスリン測定用不溶化試某の製
造と同一の方法で実肺した。
て分画後、DIGAE−セファロースカラムにて精製し
、抗体画分を得た。以下、工f]IG測定用不溶化試蘂
のM造は測定例−1のインスリン測定用不溶化試某の製
造と同一の方法で実肺した。
■ ペルオキシダーゼ標識抗体の94製測定f11のペ
ルオキシダーゼ標識抗体の調製法に準じて合成した。又
、使用法に関しても同一方法に従った。
ルオキシダーゼ標識抗体の調製法に準じて合成した。又
、使用法に関しても同一方法に従った。
■ 工l’Hの測定方法
試験管(12門φ×7゜5σ)に緩衝液−工(0゜5%
牛血清アルブミン含有0.01 Mリン酸緩衝液〈排I
7゜2 j O,15M Na0l含有>)0.5−お
よびWHOのナンバー:’757502を基準にして作
成した標準工fE溶液(12,5〜1600U/ff1
J 20μlと添加し、よく混合してから測定例−2
の0項で作成した不溶化試薬1個を入れ、37 ’Cで
1時間、加温する。加温終了後、試験管内の反応液を吸
引除去し、緩衝液−・工の1stを加えて洗浄する。こ
の操作を3回繰りかえした後、測定例−2の■の項で得
′たペルオキシダーゼ標識抗体250 It lを加え
、37°Cで2時間、加温する。以下、測定例−1の■
)項、インスリンの測定方法に準じて行ない1赤かつ色
の色素を492 n mで測定した。
牛血清アルブミン含有0.01 Mリン酸緩衝液〈排I
7゜2 j O,15M Na0l含有>)0.5−お
よびWHOのナンバー:’757502を基準にして作
成した標準工fE溶液(12,5〜1600U/ff1
J 20μlと添加し、よく混合してから測定例−2
の0項で作成した不溶化試薬1個を入れ、37 ’Cで
1時間、加温する。加温終了後、試験管内の反応液を吸
引除去し、緩衝液−・工の1stを加えて洗浄する。こ
の操作を3回繰りかえした後、測定例−2の■の項で得
′たペルオキシダーゼ標識抗体250 It lを加え
、37°Cで2時間、加温する。以下、測定例−1の■
)項、インスリンの測定方法に準じて行ない1赤かつ色
の色素を492 n mで測定した。
■ 酵素反応条件?変えた時の検量線の変化の細別
■の1XIll定方法に従って、工fE標準品を測定し
、検量線を作成した。なお、発色液には1. OOIl
l Mの7m rqtアンモニウムを添加した場合と添
加しない場合について酵素反応を行なった。又、酵素反
応は室温、明所、1時間、および4°C1夜放置で行な
い、+iiJ者の結果は第3図に、後者の結果は第4図
に示している。これらの図より明らかなように、工I/
B低濃度側において感度が大幅に改良されると共に、非
特異的反応がおさえられることがわかる。
、検量線を作成した。なお、発色液には1. OOIl
l Mの7m rqtアンモニウムを添加した場合と添
加しない場合について酵素反応を行なった。又、酵素反
応は室温、明所、1時間、および4°C1夜放置で行な
い、+iiJ者の結果は第3図に、後者の結果は第4図
に示している。これらの図より明らかなように、工I/
B低濃度側において感度が大幅に改良されると共に、非
特異的反応がおさえられることがわかる。
測定例−3過酸化水素の定量
0.3%0−フェニレンジアミン・2塩散塩及び60
m Mのth+ンナトリウムを含むリン0ツ緩衝液(p
l(5゜0)500μlに、20U/l+lのペルオキ
シダーゼ水溶液を50μ!加え、さらに過酸化水素溶液
(濃度二〇、10.20 mV / w=l ) 25
1t 1を加え、37°C130分間酵素反応終了後、
IN硫1i2−1/で反応停止後、492mmでの吸光
度を測定し、検量線を作成した。なお、蓚酸す) IJ
ウムを含まない上記緩舗液を対照として測定した。
m Mのth+ンナトリウムを含むリン0ツ緩衝液(p
l(5゜0)500μlに、20U/l+lのペルオキ
シダーゼ水溶液を50μ!加え、さらに過酸化水素溶液
(濃度二〇、10.20 mV / w=l ) 25
1t 1を加え、37°C130分間酵素反応終了後、
IN硫1i2−1/で反応停止後、492mmでの吸光
度を測定し、検量線を作成した。なお、蓚酸す) IJ
ウムを含まない上記緩舗液を対照として測定した。
その結果は第5図に示している。この図より明らかなよ
うに、非特異的反応がおさえられ、感度においても改良
されていることがわかる。
うに、非特異的反応がおさえられ、感度においても改良
されていることがわかる。
第1 図1d O−3%の0−フェニレンジアミン、2
塩酸塩を含む発色液に30譚Mの蓚1投ナトリウムを添
加し、室温、明所、1時間の酵素反応をすることによっ
て、得られたインスリンの検量線であ第2図は第1図と
発色液を同一にして、酵素反応条件を4℃、1夜行なっ
たものである。 第3図1d 0.3%0−フェニレンジアミン。2塩酸
塩を含む発色液に1100IIの蓚酸アンモニウムを添
加し、室温、明所、1時間の酵素反応をすることによっ
て得られた工IKの検量線である。 第4図は第3図と発色液を同一にして、酵素反1+に、
条件を4°c、1夜行なったものである。さらに為第5
図は発色剤として、60ff1Mのイテ酸ナトリウムを
含イ1する0−フェニレンジアミン・2塩酸塩を使用し
、酵素としてペルオキシダーゼを用いた両眼化水素定量
用の検量線である。なお、発色剤にイ61良ナトリウム
を含まないものを対照として測定した。 第1〜5図において、■印は蓚酸ナトリウムを添加した
発色液を使用した場合、O印は、無添加発色液を使用し
た場合を示す。 特許出願人 東洋紡績株式会社
塩酸塩を含む発色液に30譚Mの蓚1投ナトリウムを添
加し、室温、明所、1時間の酵素反応をすることによっ
て、得られたインスリンの検量線であ第2図は第1図と
発色液を同一にして、酵素反応条件を4℃、1夜行なっ
たものである。 第3図1d 0.3%0−フェニレンジアミン。2塩酸
塩を含む発色液に1100IIの蓚酸アンモニウムを添
加し、室温、明所、1時間の酵素反応をすることによっ
て得られた工IKの検量線である。 第4図は第3図と発色液を同一にして、酵素反1+に、
条件を4°c、1夜行なったものである。さらに為第5
図は発色剤として、60ff1Mのイテ酸ナトリウムを
含イ1する0−フェニレンジアミン・2塩酸塩を使用し
、酵素としてペルオキシダーゼを用いた両眼化水素定量
用の検量線である。なお、発色剤にイ61良ナトリウム
を含まないものを対照として測定した。 第1〜5図において、■印は蓚酸ナトリウムを添加した
発色液を使用した場合、O印は、無添加発色液を使用し
た場合を示す。 特許出願人 東洋紡績株式会社
Claims (1)
- (1) フェニレンジアミンまたはその誘導体および
有機還元剤を営むことを特徴とする安定な発色ンモニウ
ムJμであることを特徴とする特許請求の11iα囲第
1項記載の安定な発色剤組成物。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14512382A JPS5962529A (ja) | 1982-08-20 | 1982-08-20 | 安定な発色剤組成物 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14512382A JPS5962529A (ja) | 1982-08-20 | 1982-08-20 | 安定な発色剤組成物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5962529A true JPS5962529A (ja) | 1984-04-10 |
| JPH0248237B2 JPH0248237B2 (ja) | 1990-10-24 |
Family
ID=15377926
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14512382A Granted JPS5962529A (ja) | 1982-08-20 | 1982-08-20 | 安定な発色剤組成物 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS5962529A (ja) |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5331133A (en) * | 1976-09-03 | 1978-03-24 | Fuji Photo Film Co Ltd | Color photographic developing agent |
-
1982
- 1982-08-20 JP JP14512382A patent/JPS5962529A/ja active Granted
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS5331133A (en) * | 1976-09-03 | 1978-03-24 | Fuji Photo Film Co Ltd | Color photographic developing agent |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0248237B2 (ja) | 1990-10-24 |
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