JPS60244286A - 蓚酸オキシダ−ゼの製造法 - Google Patents

蓚酸オキシダ−ゼの製造法

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JPS60244286A
JPS60244286A JP10059484A JP10059484A JPS60244286A JP S60244286 A JPS60244286 A JP S60244286A JP 10059484 A JP10059484 A JP 10059484A JP 10059484 A JP10059484 A JP 10059484A JP S60244286 A JPS60244286 A JP S60244286A
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洋二 三上
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Narimasa Saito
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、蓚酸オキシダーゼの製造法に関する。
従来、蓚酸オキシダーゼとしては、例えば、カビ(mo
ld)(ジェイ、ホウゲット アンドエイ。
メイヤー(J、Houget and A、Mayer
 )、 :! 7プト。
レンド、 (Compt、Rend、) 、 / (S
’ j 、 3 o4LJj(/り27年)、ワイ、ス
ズキアンドジェイ、ディー、ミー ス−(y、 5uz
uki and J、11.Meesue ) 、プラ
ントセル フィシオル、(Plant Ce1l Ph
ysiol、) 、乙。
2l頁(/り乙j年)〕、大麦苗〔ジェイ、チリポガ(
J、Chiriboga ) 、 7チ、バイオケム、
ハイオフイズ、 (Arch、BioChem、 Bi
ophys、)、 / /乙。
617、頁(/りz6年)〕、ホウレンソウビート〔エ
イ、イー、リークアンド ブイ、ニス、バット(A、E
、Leek and V、S、 Butt) 、 ブロ
ク、バイオケム、ジエイ、(Proc、 Bioche
m、 J、) 、 / 、II 。
!r7頁(/’173年)〕、カビ(fungi)(イ
ー 、 ヒー。
バイセイ アンド ブイ、エイチ、チェルデリン(E。
B、 Vaisey and V 、 H、Cheld
eline ) 、 7チ、バイオケム、バイオフイズ
、(Arch、BiOChem 、 Bio −phy
s 、 、りt、gg頁(15i’g/年)〕等由来の
ものが知られているに過ぎない。
そこで本発明者等は、上記とは別に、広く自然界より蓚
酸オキシダーゼを生産し得る微生物の検索を行った結果
、土壌中よシ新たに分離したシュードモナス(Peeu
domon、as)属に属する/菌株が、該酵素を菌体
内に効率よく生産すること等の知見を得、本発明を完成
した。
すなわち、本発明は、シュードモナス属に属し、蓚酸オ
キシダーゼ生産能を有する微生物を培地に培養し、−培
養物よシ該酵素を採取することを特徴とする蓚酸オキシ
ダーゼの製造法である。
以下、本発明を具体的に説明する。
先ず、本発明に使用する菌としては、シュードモナス(
Psθuaomonas )属に属し、蓚酸オキシダー
ゼを生産する微生物であれば、如何なる菌でも良く、ま
た、これらの菌の変種もp〈は変異株でも良い。
そして、その微生物の具体例としては、シュードモナス
、マルトフイリア(Pseudonnonas mal
to−philia) OX −j 41等が挙げられ
る。
上記シュードモナス・マルトフィリアox−!r≠は、
土壌中より新たに検索して得た菌株で、その菌学的性質
は、以下に示すとおシである。
シュードモナス・マルトフイリアox 、5−弘の菌学
的性質 (a)形態顕微鏡的観察(肉汁寒天斜面培地で30℃、
/6時間培養) ■細胞の形及び大きさニー 0.5μm)<7〜2μmの短桿菌である。
■細胞の多形性の有無;認められない。
■運動性の有無二/〜′数本の極鞭毛を有し、運動性を
有する。
■胞子の有無:形成せず。
■ダラム染色性:陰性。
■抗酸性:陰性。
(b)各培地における生育状態 ■肉汁寒天平板培養:温度30℃、≠g待時間静置培養
により、黄色のコロニー。拡散性色素は生産しない。
■肉汁寒天斜面培養:■肉汁寒天平板培養の記載に同じ
■肉汁液体培養:生育良好。
■肉汁ゼラチン穿刺培養:ゼラチンは、液化されない。
■リドマスミルク:変化は、認められない。
(C)生理的性質 ■硝酸塩の還元:還元しない。
■脱窒反応:陰性。
■MRテスト:陰性。
■vpテスト:陰性。
■インドールの生成:陰性。
■硫化水素の生成:陰性。
■デンプンの加水分解:陰性。
■クエン酸の利用:クリステンセン(Chris −t
eneen)培地では、利用するが、コーザー(Kos
θr)培地では、生育不良のため利用性は、不明である
■無機窒素の利用:アンモニア及び硝酸塩は、共に僅か
に利用する。
[相]色素の生成:陰性。
■ウレアーゼ:陰性。
■オキシダーゼ:陰性。
0カタラーゼ:陽性。“ ■生育の範囲: 至適温度:、20〜37℃ 至適pH:j〜り [相]酸素に対する態度:好気性。
[株]O−Fテスト:酸化性。
O糖類から酸及びガスの生成 酸の生成ガスの生成 (IIL−アラビノース + − (2)D−キシロース + − (3)D−グルコース 十 − (4) D−マンノース 十 − (5)D−フラクトース 十 − (6)D−ガラクトース + − (7)麦芽糖 十 − (8)シ ヨ 糖 十 − (9)乳 糖 −− (10)トレハロース + − (11)D−ソルビット − − (12D−マンニット + − (131イノジツト − − α4グリセリン 十 − (19デンプン −− (d)その他の性質 ■リパーゼ:陰性。
■栄養要求性:メチオニン。
上記シュードモナス・マルトフィリアox−jllの菌
類学的諸性質をパージエイズ・マニュアル・オプ・デイ
ターミネイティブ・バクテリオロジー(Bergey’
s Manual Of Determinative
 Bacterio −1ogy )第r版(/り7≠
年)記載の分類と対比すると、本菌は、ダラム染色が陰
性、好気性の無胞子桿菌で鞭毛を有して運動性があシ、
かつカタラーゼ陽性等であることよシ、シュードモナス
属に属するものと認められ、また、コロニーが黄色に着
色すること、生育因子としてメチオニンを要求すること
及びオキシダーゼ陰性等であることよりシュードモナス
・マルトフイリイアに属するものと分類された。
しかしながら、その分離源及びゼラチンの氷解能等にお
いて、従来のシュードモナス・マルトフイラに属する菌
株とは異なシ、シュードモナス・マルトフイラに属する
新菌株であると判断され、本新菌株を、シュードモナス
・マルトフイリアOX−よ≠と命名した。
なお、上記シュードモナス・マルトフイリアOx−よ≠
は、工業技術院微生物工業技術研究所に微工研菌寄第7
6O1号(°FERM P−7tO/)として寄託され
ている。
次に、本発明に於ける蓚酸オキシダーゼ生産に使用され
る培地としては、窒素源、炭素源、無機物、ビタミン等
よシ選択されたものを適量含有する培地であれば、合成
もしくは天然培地等如何なるものでも使用可能である。
上記窒素源としては、例えば、酵母エキス、ペプトン、
肉エキス、大豆、アミノ酸、硫酸アンモニウム、硝酸カ
リウム等のものが挙げられ、炭素源としては、例えば、
グルコース、ショ糖、キシロース等の糖質、蓚酸等の有
機酸等が挙げられる。
また、無機物としては、例えば、リン酸カリウム、リン
酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第1鉄、塩化ナ
トリウム等が用いられる。
本発明に用いられる菌の培養は、固体培養法でもよいが
、通常液体培養法を採用するのが有利であシ、具体的に
は、振盪培養、攪拌培養、通気培養等により好気的に培
養を行なう。
培養温度は、例えば、通常、2タル36℃、好ましくは
30℃で、培養時のpHは!−♂、好ましくはpHよ!
である。
このような培養条件下に、培養時間は、培養形態によっ
ても異なるが、例えば、2≠〜り乙時間程度培養するこ
とにより培養物中に本酵素が生成蓄積する。
培養終了後、培養物よシ蓚酸オキシダーゼを採取するに
は、通常の酵素採取手段を用いて得ることができる。
しかし、本酵素は、菌体内に存在する酵素であるため、
培養終了後培養物に例えば、トリトンX−700等の界
面活性剤もしくはトルエン等を添加し、例えば、2≠時
間程度振盪もしくは放置し、自己消化を行なわせること
により蓚酸オキシダーゼを菌体外に排出させることが出
来る。
また、培養物よシ、例えば、濾過遠心分離等の操作によ
シ菌体を分離したのち、菌体より本酵素を採取するのが
好ましく、−この場合、菌体をそのま\用いることもで
きるが、超音波破壊機、フレンチプレス、ダイノミル等
の種々の破壊手段を用いて菌体を破壊する方法、リゾチ
ームの如き細胞壁溶解酵素を用いて菌体細胞壁を溶解す
る方法、摩耗剤を用いて菌体をすりつぶす方法あるいは
浸透圧ショックを適用する方法を用いる。
このようにして上記菌体もしくはこれを破壊したもの、
あるいは細胞壁を溶解したものより、例えば、濾過、遠
心分離等の適当な処理操作によシ固形物を除去して菌体
抽出液を得るか、又は水、緩衝液もしくは適当な溶剤で
抽出し、これをそのま\粗酵素として得るか、あるいは
また該抽出液に必要によシプロタミン硫酸、ポリエチレ
ンイミン等を添加して除核酸を行なうか、更に凍結乾燥
法、アルコール沈澱法、アセトン沈澱法等を適宜選択し
て実施す、ることによシ粗酵素粉末を得る。
上記粗酵素液もしくは粗酵素粉末よシ更に精製酵素標品
を得るには、例えば、セファデックスG−200等を用
いるゲル濾過法、イオン交換体、ハイドロキシアパタイ
ト等を用いる吸着溶出法、ショ糖密度勾配遠心法等の沈
降法、アフイニテイクロマト法、分子ふるい膜もしくは
中空糸膜等を用いる分画法等を適宜選択し、組み合わせ
て実施することにより、精製された本酵素標品を得るこ
とができる。
また、長時間の培養を行って自己消化させた場合の培養
濾液についても、同様に処理することによシ本酵素を得
ることが出来る。
以上の如くして得られた本酵素の理化学的性質を示すと
、以下のとおりである。
(1)作 用 酸素の存在下で、蓚酸を酸化し、2分子の二酸化炭素と
7分子の過酸化水素を生成する。
本酵素 ↓ (C00H)2+ 02 →2 CO24−Hz 02
(2)基質特異性 蓚酸に対しては、基質特異性が極めて高く、”またグリ
オキシル酸に僅かに作用する。
(3)至適pH及び安定pH 第1図に示すとお9.、’Q、/Mクエン酸緩衝液中で
の至適pHは、蓚酸ではよ0であった。
また、安定pHの範囲は、4’l−〜7であった。
なお、該範囲は、各pH・の緩衝液(pH2,0〜b、
では、0./’Mクエン酸緩衝液、また、pH6,θ〜
9.5においては、0.1Mリン酸カリウム緩衝液を夫
々使用。)中、温度2j℃で2日間保存したのち酵素活
性を測定してめたものである。
(4)力価の測定法 Mリン酸カリウム緩衝液(pHj:O) 0.3rtt
l、M蓚酸カリウムo、i罰、o、oozcsのt−ア
ミノアンチピリン、0.02%のフェノール又はN、N
−ジメチルアニリン、パーオキシダーゼ≠単位及び本酵
素液!Oμt(適当量に希釈もしくは濃縮する。)を添
加し総量を3−としたものを、温度37℃で20分間反
応させたのち、生成する色素の可視部吸収(jJ−[n
m)を測定し、予め測定した既知過酸化水素量の吸光度
値よシ過酸化水素の生成量を算出し、酵素単位を得た。
その他酸素電極を用いて酸素の吸収を測定する方法も必
要によシ使用した。
なお、酵素活性/単位は、温度37℃で7分間に/マイ
クロモルの過酸化水素を生成する酵素量である。
(5)作用適温の範囲 第2図に示すとおシ、作用適温の範囲は、3!〜jO℃
であシ、該温度範囲は、各温度の蓚酸を基質とした反応
液に本酵素を添加し、10分間作用させた際の酵素活性
を測定してめたものである。
(6) 1) H、温度などによる失活の条件第3図に
示すとおり、温度乙O℃から失活していき、温度70℃
ではほとんど失活する。
なお、該条件は、各温度の0. / M リン酸カリウ
ム緩衝液CpH70)中において、本酵素を70分間処
理した際の残存する酵素活性を測定してめた嘱のである
’palAsよシ酸性側では失活し、一方、pH’70
よジアルカリ性側でも失活する。
(7)阻害、活性化及び安定化 夫々/mMのHg 、Pb 1CHaCOO−及びC1
−の含有溶液C0,0!;Mクエン酸緩衝液、pH左O
)中温度30℃で/θ分間反応したのちの酵素活性は、
無処理を/ 0.0としたとき夫々り、23.2り及び
≠/であった。
(8)精製方法 本酵素の分離、精製は、常法によシ行なうことができ、
例えば、硫安による分画沈澱、DEAFi−セルロース
による吸着溶出、バイオゲルA −QJmによるゲル濾
過等の精製手段を適宜組み合わせて用いることができる
(9)分子量 0.7%SDSを含有する!チポリアクリルアミド電気
泳動によシ測定した結果、37000であった。
(XO)アクリルアミドディスクゲル電気泳動第4図に
示すとおシ、ポアサイズ7j%のアクリルアミドゲル(
pI!4t)を用いて常法によジアクリルアミドディス
クゲル電気泳動を行なった結果、単一なバンドであるこ
とが確認された。
Uυ等電点 ディスクゲル焦点電気泳動法にょシ測定した結果、lA
7であった。
以上の如く本発明によれば、従来シュードモナス属の細
菌としては、生産することが未公知で、かつまた、従来
蓚酸オキシダーゼの存在の知られているカビ、大麦苗等
に比較して、極めて短時間のうちに効率よく本酵素を得
ることが出来るので、本発明は、産業上極めて有意義で
ある。
そしてまた、本酵素は、体液、飲食物等蓚酸含有物中の
蓚酸の定量用酵素として極めて有用なものである。
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明する。
実施例 リン酸/カリウム0. /%、リン酸2カリウム0./
チ、硫酸マグネシウム0.2/%、硫酸第1鉄0.00
 /チ、酵母エキス/チ及びシヨ糖/チを夫々含有する
溶液10m1(pHj:j)を三角フラスコ(容量:/
 j 0rttl )に分注したのち、これを、常法に
よ多温度/20℃で5分間加熱滅菌して培地を得、該培
地にシュードモナス・マルトフイリア○X−J−≠(F
KRMP−7乙O/)を接種し、温度30℃で22時間
振盪培養して培養物を得た。
次いで、上記培地組成の他に、更に、蓚酸カリウム0.
2 j %及びグリシン0.3%を添加した溶液2tf
ミニジヤーフアーメンタ−(容量:2t)に分注したの
ち、これを常法によ多温度/2θ℃で70分間加熱滅菌
して培地を得、これに、上述の如くして得た培養物〆O
mlを接種し、温度30℃で72時間回転攪拌培養して
培養物を得た。
このようにして得た培養物に、トリトンx−io。
(和光紬薬■製)を0.2%となる如く添加したものを
、温度2!℃で20時、間装置したのち、更にこれに、
10%ポリエチレンイミン溶液(pH7O)ljrrt
l及び硫酸アンモニウム!≠1添加し、不溶物を濾別し
て粗酵素液を得た。
次いで、該粗酵素液を、0.0/M’)ン酸緩衝液(p
H70)で3倍に希釈したものを、該リン酸緩衝液(’
pH’7:O)で平衡化したーDEAE−セルロースカ
ラム(3,j r、m X 30 crn )に入れ、
酵素を吸着させたのち、0.07Mリン酸緩衝液CpH
7,0)C0,2tM硫酸アンモニウム含有。)を使用
して、吸着された酵素を溶出し、活性画分を得た。
そして、該活性画分を、硫酸アンモニウム!θ〜zO%
飽和で分画し、0.0/M’)ン酸緩衝液(pH70’
)を用いて3倍に希釈した液を、0.0/)A’)ン酸
緩衝液(1)H7(1))で平衡化したDEAE−セフ
ァロースCL、、4Bカラムに通し、酵素を吸着させた
のち、0.0/Mリン酸緩衝液(0,/ 4 M硫酸ア
ンモニウム含有。)を用い、吸着された酵素を溶出し、
得られた活性区分をコロジオンバックを用いて濃縮した
のち、更に、バイオゲルA 、 Q、 j m(2,j
crn×/ j Ocm)を使用してゲル濾過を行ない
、精製された蓚酸オキシダーゼ標品ysrrq(収率/
3.2%、比活性lA♂単位/■蛋白質)を得た。
【図面の簡単な説明】
第1図は、本酵素の至適pH1第2図は、作用°適温の
範囲、第3図は、温度による失活の条件、第4図は、ア
クリルアミドディスクゲル電気泳動を夫々示す図である
。 特許出願人 財団法人野田産業科学研究所輩1回 H 笈力図 温 )f、C°Cノ

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)シュードモナス属に属し、蓚酸オキシダーゼ生産
    能を有する微生物を培地に培養し、培養物よシ該酵素を
    採取することを特徴とする蓚酸オキシダーゼの製造法。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5271844A (en) * 1992-09-11 1993-12-21 Alcan International Limited Processes for the alkaline biodegradation of organic impurities
US9439862B2 (en) 2000-05-10 2016-09-13 Novartis Ag Phospholipid-based powders for drug delivery
CN107254453A (zh) * 2014-12-22 2017-10-17 武汉康复得生物科技股份有限公司 一种在生理pH条件下有活力的草酸氧化酶及其应用

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