JPS60248191A - フオスフイノスリシンの製造方法 - Google Patents
フオスフイノスリシンの製造方法Info
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- JPS60248191A JPS60248191A JP10239084A JP10239084A JPS60248191A JP S60248191 A JPS60248191 A JP S60248191A JP 10239084 A JP10239084 A JP 10239084A JP 10239084 A JP10239084 A JP 10239084A JP S60248191 A JPS60248191 A JP S60248191A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はフォスフイノスリシン(L−2−アミノ−4−
メチルフォスフイノ酪酸)の製造方法に関する。
メチルフォスフイノ酪酸)の製造方法に関する。
本発明によって提供されるフォスフイノスリシンは、下
記のような2−アミノ−4−メチルフォスフイノ酪酸の
構造を有する化合物であシ、その物理化学的性状はHe
1v、 Chlm、 Acta、、 55巻、224頁
、1972年に開示されている。
記のような2−アミノ−4−メチルフォスフイノ酪酸の
構造を有する化合物であシ、その物理化学的性状はHe
1v、 Chlm、 Acta、、 55巻、224頁
、1972年に開示されている。
フォスフイノスリシンは、除草活性を有するフォスフイ
ノスリジルアラニルアラニン(phos−phlnot
hricylalanylalanlno )の活性本
体であわ、グルタミン合成酵素の強力な阻害剤である(
)(elv、 Chin、 Aeta、、55巻、2
24頁、1972年)。そして、フォスフイノスリシン
も強い除草活性を有することが知られている(4?開昭
54−92628 )。
ノスリジルアラニルアラニン(phos−phlnot
hricylalanylalanlno )の活性本
体であわ、グルタミン合成酵素の強力な阻害剤である(
)(elv、 Chin、 Aeta、、55巻、2
24頁、1972年)。そして、フォスフイノスリシン
も強い除草活性を有することが知られている(4?開昭
54−92628 )。
フォスフイノスリシンの製造法としては、すでに化学合
成による方法が知られているが(Hslv。
成による方法が知られているが(Hslv。
Chim、 Aeta、、 55巻、224頁、197
2年および明治製菓研究年報13号、49頁、1973
年)、化学合成では、ラセミ体が得られ活性は半減する
。
2年および明治製菓研究年報13号、49頁、1973
年)、化学合成では、ラセミ体が得られ活性は半減する
。
本発明は、バチルス、ブレビバクテリウム、エシェリヒ
ア、グルコノバクタ−、プロテウス首たはエルビニャ屑
に貫くするある種の微生物が、フォスアラジンを分解し
てフォスフイノスリシンを生産する能力を有するという
知見に基いている。
ア、グルコノバクタ−、プロテウス首たはエルビニャ屑
に貫くするある種の微生物が、フォスアラジンを分解し
てフォスフイノスリシンを生産する能力を有するという
知見に基いている。
本発明の目的はフォスフイノスリシンの新しい製造方法
を提供することである。
を提供することである。
本発明によシ、ノチルス、ブレビバクテリウム、エシェ
リヒア、グルコノバクタ−、フロテラスまたはエルピニ
ャ属に属し、7オスアラシンをフォスフイノスリシンに
変換する能力を有菌 する微生物の培養物または!もしくはこれらの処理物と
フォスアラジンを接触せしめることを特徴とするフォス
フイノスリシンの製造方法が提供される。
リヒア、グルコノバクタ−、フロテラスまたはエルピニ
ャ属に属し、7オスアラシンをフォスフイノスリシンに
変換する能力を有菌 する微生物の培養物または!もしくはこれらの処理物と
フォスアラジンを接触せしめることを特徴とするフォス
フイノスリシンの製造方法が提供される。
本発明により、下記の式
%式%
で示されるアミP結合氷解反応をノ鷹チルス属、プレピ
ノ考りテリウム属、エシェリヒア属、グルコツノでフタ
−属、ゾロテラス属、エルビニャ属尋の細菌 ・ ′ の培養物またはこれ らの生菌体あるいは有機溶剤処理した菌体水性懸濁液等
を用いて行ない、反応液よりL−7オスフイノスリシン
を製造する。
ノ考りテリウム属、エシェリヒア属、グルコツノでフタ
−属、ゾロテラス属、エルビニャ属尋の細菌 ・ ′ の培養物またはこれ らの生菌体あるいは有機溶剤処理した菌体水性懸濁液等
を用いて行ない、反応液よりL−7オスフイノスリシン
を製造する。
本発明の方法によると、活性型(L型)のフォスフイノ
スリシンのみが直接培地中に蓄積されるので、DL分割
の必要はなく、活性型の7オスフイノスリシン製造のた
めの優れた方法である。
スリシンのみが直接培地中に蓄積されるので、DL分割
の必要はなく、活性型の7オスフイノスリシン製造のた
めの優れた方法である。
本発明を次に詳しく説明する。
抗生物質フォスアラジンの構造は次式の通シである。
―
けI、 G)I3
フォスアラジンは、さきに本発明者らが放線菌KA−3
38株(微工研条寄第358号)の培養物から採取し、
その構造が開示されている(#願昭58−141401
号)。
38株(微工研条寄第358号)の培養物から採取し、
その構造が開示されている(#願昭58−141401
号)。
フォスアラジンは分子J1365、融点〉225℃(分
解)の両性物質で、常温において安定であり、水によく
とけ、メタノールにはかなりよくとけるが、他の有機溶
媒には難溶である。フォス アラジンの理化学的性状および製法は前記特願△ 昭58−141401号に開示されている。
解)の両性物質で、常温において安定であり、水によく
とけ、メタノールにはかなりよくとけるが、他の有機溶
媒には難溶である。フォス アラジンの理化学的性状および製法は前記特願△ 昭58−141401号に開示されている。
本発明者らは稚々の微生物について、フォスアラジンを
分解して7オスフイノスリシンを生成する能力について
調べた。その結果を第1表に要約して示す。試験方法は
後記実施例1記載の液体培地101d (120℃、1
5分間滅@)に試験菌株を接種し、無菌−過したフォス
アラジン10〜を添加後、27℃もしくは37℃で24
時間振盪培養した。培養液を遠心分離して菌体な除き、
上澄中に残存する7オスアラシンを微生物検定により測
定して分解率を算出した。ついで、上澄液を強酸性陽イ
オン交換樹脂アンバーライトIR−120(H+) (
米国、ローム・アンP・ハース社製)のカラムに通塔し
てフォスフイノスリシンを吸着させた後、2 N NH
4OHで溶出し、この溶出液をセルロース薄層プレート
にスポットして、ブタノール:酢酸:水(3:1:2)
全溶媒として展開し、フォスフイノスリシンの標品とR
f 値を比較することによりフォスフイノスリシンの生
成を確認した後、デンシトメーターを用いて480nm
でフォスフイノスリシンを定量した。
分解して7オスフイノスリシンを生成する能力について
調べた。その結果を第1表に要約して示す。試験方法は
後記実施例1記載の液体培地101d (120℃、1
5分間滅@)に試験菌株を接種し、無菌−過したフォス
アラジン10〜を添加後、27℃もしくは37℃で24
時間振盪培養した。培養液を遠心分離して菌体な除き、
上澄中に残存する7オスアラシンを微生物検定により測
定して分解率を算出した。ついで、上澄液を強酸性陽イ
オン交換樹脂アンバーライトIR−120(H+) (
米国、ローム・アンP・ハース社製)のカラムに通塔し
てフォスフイノスリシンを吸着させた後、2 N NH
4OHで溶出し、この溶出液をセルロース薄層プレート
にスポットして、ブタノール:酢酸:水(3:1:2)
全溶媒として展開し、フォスフイノスリシンの標品とR
f 値を比較することによりフォスフイノスリシンの生
成を確認した後、デンシトメーターを用いて480nm
でフォスフイノスリシンを定量した。
供 試 菌 株 分解率(鉤 生成率−)ノでチルス・
ズブチリス ATCG 6633 72 60.5エシ
エリヒア・コリ NIHJ 59 10.8プロテウス
・ブルガリス IFO31674912,0エルビニヤ
・アロイデー IAM1068 54,5 51.4(
注)* フォスアラジンの分解率(鋤** フォスフイ
ノスリシンの生成率(p本発明において用いられるフォ
スアラジン分解能を有する微生物は自然界に広く分布し
ている。代表的菌種としては、たとえば細菌として属す
る菌種、その他多くの菌種があげられる。
ズブチリス ATCG 6633 72 60.5エシ
エリヒア・コリ NIHJ 59 10.8プロテウス
・ブルガリス IFO31674912,0エルビニヤ
・アロイデー IAM1068 54,5 51.4(
注)* フォスアラジンの分解率(鋤** フォスフイ
ノスリシンの生成率(p本発明において用いられるフォ
スアラジン分解能を有する微生物は自然界に広く分布し
ている。代表的菌種としては、たとえば細菌として属す
る菌種、その他多くの菌種があげられる。
本発明において用いられるフォスアラジンから7オスフ
イノスリシンを生成する微生物が持っているフォスアラ
ジンのアミP結合分解能力は、その微生物が生産する酵
素に由来するものと推定される。しかし、本発明ではフ
ォスフイノスリシン生成能を有する微生物の処理剤とし
て用いる場合のみならず、無細胞抽出液においてもフォ
スフイノスリシン生成能が認められることから、本発明
で用いる微生物の細胞内または培養物中にフォスアラジ
ンから7オスフイノスリシンを生成する反応に関与する
酵素系が存在することが推定される。
イノスリシンを生成する微生物が持っているフォスアラ
ジンのアミP結合分解能力は、その微生物が生産する酵
素に由来するものと推定される。しかし、本発明ではフ
ォスフイノスリシン生成能を有する微生物の処理剤とし
て用いる場合のみならず、無細胞抽出液においてもフォ
スフイノスリシン生成能が認められることから、本発明
で用いる微生物の細胞内または培養物中にフォスアラジ
ンから7オスフイノスリシンを生成する反応に関与する
酵素系が存在することが推定される。
本発明の方法を実施、するにあたっては、たとえば、ま
ず上記第1表の微生物のなかから選ばれた一つの菌種を
培養する。この場合の培地は状 液体βものが適当で、静置、振盪、通気攪拌のいずれの
培養法によってもよい。また培地は、使用微生物が生育
しうる炭素源、窒素源を含むものを使用する。培養温度
は使用微生物の種類などによって異なるが、通常25〜
37℃で培養すればよい。原料として用いるフォスアラ
ジンは遊離酸または金属塩を微細粉末または水溶液の形
で培養液にそのまま添加することができる。
ず上記第1表の微生物のなかから選ばれた一つの菌種を
培養する。この場合の培地は状 液体βものが適当で、静置、振盪、通気攪拌のいずれの
培養法によってもよい。また培地は、使用微生物が生育
しうる炭素源、窒素源を含むものを使用する。培養温度
は使用微生物の種類などによって異なるが、通常25〜
37℃で培養すればよい。原料として用いるフォスアラ
ジンは遊離酸または金属塩を微細粉末または水溶液の形
で培養液にそのまま添加することができる。
添加時期は微生物の培養前、培養中のいずれでもよい。
あるいは培養物から集菌、分離された生菌体な含む水性
懸濁液に、または菌体破壊液に加えてもよい。処理反応
pHは6〜9の範囲で行なうことができるが、フォスフ
イノスリシンの生成率を高めるためにはpH6,8〜8
.0が好ましい。反応温度は25〜40℃で処理するこ
とができる。
懸濁液に、または菌体破壊液に加えてもよい。処理反応
pHは6〜9の範囲で行なうことができるが、フォスフ
イノスリシンの生成率を高めるためにはpH6,8〜8
.0が好ましい。反応温度は25〜40℃で処理するこ
とができる。
反応終了後、反応液中ttまれるフォスフイノスリシン
は酸性アミノ酸であるので、その抽出、精製にあたって
は、アンバーライトIR−120(米国、ローム・アン
r・ハース社製)、ダウエックス50W(米国、ダウ・
ケミカル社製)尋の陽イオン交換樹脂もしくは、アンバ
ーライ) IRA400、IR−45等の陰イオン交換
樹脂に吸着させ、これを適当な酸、アルカリもしくは塩
溶液を用いて溶出することができる。
は酸性アミノ酸であるので、その抽出、精製にあたって
は、アンバーライトIR−120(米国、ローム・アン
r・ハース社製)、ダウエックス50W(米国、ダウ・
ケミカル社製)尋の陽イオン交換樹脂もしくは、アンバ
ーライ) IRA400、IR−45等の陰イオン交換
樹脂に吸着させ、これを適当な酸、アルカリもしくは塩
溶液を用いて溶出することができる。
実用的は分離精製法の一例を示すと次の通りである。
たとえば、培養f液を強酸性陽イオン交換樹脂アンバー
ライトIR−120(H土製)を充填したカラムを通過
させ、有効成分を吸着させ、これをアンモニア水で溶出
する方法はフォスフイノスリシンの精製法として有効な
手段である。
ライトIR−120(H土製)を充填したカラムを通過
させ、有効成分を吸着させ、これをアンモニア水で溶出
する方法はフォスフイノスリシンの精製法として有効な
手段である。
このような方法で得られたフォスフイノスリシンの粗物
質は、セルロース、シリカゲル、アルミナ、セファデッ
クス(スエーデン国、ファルマシア・ファイン・ケミカ
ルス社製)およびトヨパール(東洋曹達工業製)等を使
用する公知の方法により、さらに純度を高めることがで
きる。こうして得られたフォスフイノスリシンは、白色
の無定形粉末であり、その理化学的性質および構造式な
らびに生物学的性質は公知である(特開昭48−855
38)。
質は、セルロース、シリカゲル、アルミナ、セファデッ
クス(スエーデン国、ファルマシア・ファイン・ケミカ
ルス社製)およびトヨパール(東洋曹達工業製)等を使
用する公知の方法により、さらに純度を高めることがで
きる。こうして得られたフォスフイノスリシンは、白色
の無定形粉末であり、その理化学的性質および構造式な
らびに生物学的性質は公知である(特開昭48−855
38)。
抗生物質フォスアラジンは、デービスの最小培地上でバ
チルス・ズブチリス(Bacillussubtili
s)に対して強い抗菌活性を示すが、フォスフイノスリ
シンは、はとんど抗菌活性を示さないので、抗生物質フ
ォスアラジンはデービスの最小培地を用い、検定菌とし
て、1チルス・ズブチリスを用いるベーノ々−・ディス
ク法によって定量することができろ。フォスフイノスリ
シンは通常次の方法によって定量される。まず、試料溶
液をアンバーライ) IR−120(H土製)などの強
酸性陽イオン交換樹脂のカラムに通塔して水洗した後、
吸着されたフォスフイノスリシンを2規定のアンモニア
水で溶出する。この溶出液を濃縮した後、展開溶媒とし
てブタノール、酢酸、水(3:1:2)を用いるセルロ
ース薄層クロマトグラフィーに供し、ニンヒt、I I
Jン発色後、薄層クロマトスキャナーを用いて480n
mで定量する。
チルス・ズブチリス(Bacillussubtili
s)に対して強い抗菌活性を示すが、フォスフイノスリ
シンは、はとんど抗菌活性を示さないので、抗生物質フ
ォスアラジンはデービスの最小培地を用い、検定菌とし
て、1チルス・ズブチリスを用いるベーノ々−・ディス
ク法によって定量することができろ。フォスフイノスリ
シンは通常次の方法によって定量される。まず、試料溶
液をアンバーライ) IR−120(H土製)などの強
酸性陽イオン交換樹脂のカラムに通塔して水洗した後、
吸着されたフォスフイノスリシンを2規定のアンモニア
水で溶出する。この溶出液を濃縮した後、展開溶媒とし
てブタノール、酢酸、水(3:1:2)を用いるセルロ
ース薄層クロマトグラフィーに供し、ニンヒt、I I
Jン発色後、薄層クロマトスキャナーを用いて480n
mで定量する。
本発明で製造されたフォスフイノスリシンの融点、比旋
光度、元素分析値、薄層クロマトグラフィーのR,f
値は下記の通りで、標品のフォスフイノスリシンと完全
に一致した。
光度、元素分析値、薄層クロマトグラフィーのR,f
値は下記の通りで、標品のフォスフイノスリシンと完全
に一致した。
融点:210〜215℃
比旋光度:〔α)”N +30°(2規定塩酸中)元素
分析値 理論値(CsH+2N04Pとして):炭素33.15
係、水素6.68%。
分析値 理論値(CsH+2N04Pとして):炭素33.15
係、水素6.68%。
窒素7.73%
実測値:炭素32.85%、水素6.50係。
窒素7.63チ
セルロース薄層クロマトグラフィー(ブタノール:酢酸
:水=3:1:2)のRf 値:0.37 以下に実施例を示す。
:水=3:1:2)のRf 値:0.37 以下に実施例を示す。
実施例1
斜面寒天に培養されたノでチルス・ズブチリスATCC
6633をペプトンx、o%、肉エキス0.5チ、食塩
0.5チ、pH7,0の液体培地104(120℃、1
5分間滅′菌)に接種し、37℃、12時間振どう培養
した(前培養)。この前培養液を同じ組成の液体培地I
JJ(120℃、15分間#C@)に移した後、無菌
濾過したフォスアラジン100■(0,214モル)を
添加した。37℃で24時間振とり培養後P別し、P液
1ノを得た。この培養液中にフォスフイノスリシンが2
3.5■(0,131モル)存在した(変換率60.5
チ)。P液を活性炭で脱色した後、イオン交換樹脂アン
バーライトIR−120(H”)のカラムを通過させる
と、フォスフイノスリシンは樹脂に吸着された。樹脂を
水洗後、2規定アンモニア水で、3離させた。
6633をペプトンx、o%、肉エキス0.5チ、食塩
0.5チ、pH7,0の液体培地104(120℃、1
5分間滅′菌)に接種し、37℃、12時間振どう培養
した(前培養)。この前培養液を同じ組成の液体培地I
JJ(120℃、15分間#C@)に移した後、無菌
濾過したフォスアラジン100■(0,214モル)を
添加した。37℃で24時間振とり培養後P別し、P液
1ノを得た。この培養液中にフォスフイノスリシンが2
3.5■(0,131モル)存在した(変換率60.5
チ)。P液を活性炭で脱色した後、イオン交換樹脂アン
バーライトIR−120(H”)のカラムを通過させる
と、フォスフイノスリシンは樹脂に吸着された。樹脂を
水洗後、2規定アンモニア水で、3離させた。
溶離液を濃縮後、調製用セルロース薄層クロマトグラフ
ィー(メルク社製)を行なった。展開液は、ブタノール
:酢酸:水e=3:]:2を使用した。フォスフイノス
リシン部分をかき取シ、50%メタノール水溶液で溶出
し、溶出液を減圧を行ない、フォスフイノスリシン15
■ヲ得た。
ィー(メルク社製)を行なった。展開液は、ブタノール
:酢酸:水e=3:]:2を使用した。フォスフイノス
リシン部分をかき取シ、50%メタノール水溶液で溶出
し、溶出液を減圧を行ない、フォスフイノスリシン15
■ヲ得た。
実施例2
100m1の栄賽培地〔肉エキス1%、ペプト10.5
チ、食塩0.5チ(pH7,0))を入れた500WL
l容坂ロフラスコ(120℃、15分間滅菌)に、バチ
ルス・ズブチリスATCC6633株の胞子懸濁液を2
.0チ植菌し、37℃で18時間振とう培養し種菌液を
得た。この種菌液をスビジゼ/(5pizizen)培
地〔硫安0.2チ、リン酸二カリウム1.4%、リン酸
−カリウム0.6%、クエン酸ナトリウム0.1%、硫
酸マグネシウム7水塩0.02チ、グルコース0.5%
(pH7,0> 、1201 (120℃、15分間滅
菌)を入れた301ジャーファーメンタ−に2.0チ接
種し、37℃で24時間通気攪拌培養を行ない、54I
の湿菌体を得た。
チ、食塩0.5チ(pH7,0))を入れた500WL
l容坂ロフラスコ(120℃、15分間滅菌)に、バチ
ルス・ズブチリスATCC6633株の胞子懸濁液を2
.0チ植菌し、37℃で18時間振とう培養し種菌液を
得た。この種菌液をスビジゼ/(5pizizen)培
地〔硫安0.2チ、リン酸二カリウム1.4%、リン酸
−カリウム0.6%、クエン酸ナトリウム0.1%、硫
酸マグネシウム7水塩0.02チ、グルコース0.5%
(pH7,0> 、1201 (120℃、15分間滅
菌)を入れた301ジャーファーメンタ−に2.0チ接
種し、37℃で24時間通気攪拌培養を行ない、54I
の湿菌体を得た。
2回水洗した後、2倍量の石英砂を加え、菌体な破砕後
、50ミリモルの塩化イミダゾール、0.2ミリモルの
EDTAおよび1.0ミリモルの2−メルカゾトエタノ
ールを含む緩衝液(pH7゜0)を菌体の7倍量加えた
。さらに、4℃、27000×1で30分間遠心し、上
清(無細胞抽出液)を得た。この上清100Mに7オス
アラシン100■を添加し、37℃で48時間反応させ
た。この反応液中には、41.6■のフォスフイノスリ
シンが存在した(変換率85゜2%)。
、50ミリモルの塩化イミダゾール、0.2ミリモルの
EDTAおよび1.0ミリモルの2−メルカゾトエタノ
ールを含む緩衝液(pH7゜0)を菌体の7倍量加えた
。さらに、4℃、27000×1で30分間遠心し、上
清(無細胞抽出液)を得た。この上清100Mに7オス
アラシン100■を添加し、37℃で48時間反応させ
た。この反応液中には、41.6■のフォスフイノスリ
シンが存在した(変換率85゜2%)。
実施例1と同様の方法によりフォスフイノスリシンを単
離し、30rn9を得た。
離し、30rn9を得た。
参考例1
放線菌KA−338株(微工研条寄第358号)をグル
コース0.1%、でん粉2.4 % 、ペプトン0.3
%、肉エキス0.3%、酵母エキス0.5%、CaC0
a 0.4 %、pH7の液体培地11に接種し、27
℃、48時間通気攪拌培養し、これを種母とした。
コース0.1%、でん粉2.4 % 、ペプトン0.3
%、肉エキス0.3%、酵母エキス0.5%、CaC0
a 0.4 %、pH7の液体培地11に接種し、27
℃、48時間通気攪拌培養し、これを種母とした。
トマトペースト4.0%、グルコース0.2%、オート
ミール1.5%、CoGノ2(工水塩)50μV1、
pH6,0の液体培地701に前記種母を接種し、27
℃、72時間通気攪拌培養した。培養液をpH6,0に
調整後、シャープレス型遠心機で遠心分離し、培養上澄
を得た。この上澄液を弱塩基性陰イオン交換樹脂ダイヤ
イオンWA−301:OH−) (三菱化成工業製)を
充填したカラム(1,41)に通過させ有効成分を吸着
させた。
ミール1.5%、CoGノ2(工水塩)50μV1、
pH6,0の液体培地701に前記種母を接種し、27
℃、72時間通気攪拌培養した。培養液をpH6,0に
調整後、シャープレス型遠心機で遠心分離し、培養上澄
を得た。この上澄液を弱塩基性陰イオン交換樹脂ダイヤ
イオンWA−301:OH−) (三菱化成工業製)を
充填したカラム(1,41)に通過させ有効成分を吸着
させた。
引き続き水洗後0.5 N塩酸で溶出し、各5001に
分画し、分画No、3〜10を集めた。ついで活性炭を
充填したカラム(直径5 eX 31.503 )を通
過させ有効成分を吸着させた。引き続きカラムを水洗後
、30チアセトン水溶液で溶出させた。各201の分画
に分け、フラクションNo、15〜55を集め、ついで
強酸性陽イオン交換樹脂アン/々−ライトIR−120
B (米国、ローム・アンP・ハース社製)を充填した
カラム(F+QBX27い)に通過させ、有効成分を吸
着させた。引き続きカラムを水洗後、0.5Nアンモニ
ア水で溶出させた。・各20−の分画に分け、7ラクシ
ヨンNo、 98〜152を集め、減圧下濃縮後、エタ
ノール(200ml )を加え沈殿を生じさせた。上澄
を集め、減圧濃縮後、アセトン20倍量を加え、フォス
アラジン1.44 IIを得た。
分画し、分画No、3〜10を集めた。ついで活性炭を
充填したカラム(直径5 eX 31.503 )を通
過させ有効成分を吸着させた。引き続きカラムを水洗後
、30チアセトン水溶液で溶出させた。各201の分画
に分け、フラクションNo、15〜55を集め、ついで
強酸性陽イオン交換樹脂アン/々−ライトIR−120
B (米国、ローム・アンP・ハース社製)を充填した
カラム(F+QBX27い)に通過させ、有効成分を吸
着させた。引き続きカラムを水洗後、0.5Nアンモニ
ア水で溶出させた。・各20−の分画に分け、7ラクシ
ヨンNo、 98〜152を集め、減圧下濃縮後、エタ
ノール(200ml )を加え沈殿を生じさせた。上澄
を集め、減圧濃縮後、アセトン20倍量を加え、フォス
アラジン1.44 IIを得た。
このものを水に溶解させ、I N NaOHで中和させ
た。減圧乾固し、フォスアラジン(ナトリウム塩) 、
1.5 gを得た。
た。減圧乾固し、フォスアラジン(ナトリウム塩) 、
1.5 gを得た。
参考例2
フォスアラジン365■(1ミリモル)?J>Itの水
に溶解させ、I N NaOH水溶液1 iJ (1ミ
リモル)を添加した後、減圧乾固し、フォスアラジンナ
トリウム塩379 +119を得た。同様にフォスアラ
ジン3651n9の水溶液に対し、I N NaOH水
溶液211Llを添加し、減圧乾固し、フォスアラジン
ナトリウム塩411■を得た。また同様の方法によl)
I N NaOH水溶液にかえ、I N KO)(ハ ■を得た。また同様にNJLOHにかえ、インゾロピル
アミン1ミリモル、およびn−ブチルアミン1ミリモル
を用いて、それぞれフォスアラジンモノイソゾロピルア
ミン塩および7オスアラシンモノーn−ブチルアミン塩
1ミリモルヲ得た。
に溶解させ、I N NaOH水溶液1 iJ (1ミ
リモル)を添加した後、減圧乾固し、フォスアラジンナ
トリウム塩379 +119を得た。同様にフォスアラ
ジン3651n9の水溶液に対し、I N NaOH水
溶液211Llを添加し、減圧乾固し、フォスアラジン
ナトリウム塩411■を得た。また同様の方法によl)
I N NaOH水溶液にかえ、I N KO)(ハ ■を得た。また同様にNJLOHにかえ、インゾロピル
アミン1ミリモル、およびn−ブチルアミン1ミリモル
を用いて、それぞれフォスアラジンモノイソゾロピルア
ミン塩および7オスアラシンモノーn−ブチルアミン塩
1ミリモルヲ得た。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 バチルス、ブレビバクテリウム、エシェリヒア、グルコ
ツノセクター、プロテウスまたはエルビニャ属に属し、
フォスアラジンをフォスフイノスリシンに変換する能力
を有する微生物の培萌 スアラシンを接触せしめることを特徴とするフォスフイ
ノスリシンの製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10239084A JPS60248191A (ja) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | フオスフイノスリシンの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP10239084A JPS60248191A (ja) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | フオスフイノスリシンの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60248191A true JPS60248191A (ja) | 1985-12-07 |
Family
ID=14326119
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP10239084A Pending JPS60248191A (ja) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | フオスフイノスリシンの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60248191A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5756346A (en) * | 1989-02-06 | 1998-05-26 | Hoechst Aktiengesellschaft | Process for the enzymatic resolution of 2-amino-4-methyl-phosphinobutyric acid derivatives |
| WO2003093454A1 (fr) * | 2002-04-30 | 2003-11-13 | Gaoming Jinkuizi Plant Nutriment Co.,Ltd. | Preparation microbienne traitant les residus alcooliques, son procede d'obtention, et procede de fermentation associe |
-
1984
- 1984-05-21 JP JP10239084A patent/JPS60248191A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5756346A (en) * | 1989-02-06 | 1998-05-26 | Hoechst Aktiengesellschaft | Process for the enzymatic resolution of 2-amino-4-methyl-phosphinobutyric acid derivatives |
| US5756800A (en) * | 1989-02-06 | 1998-05-26 | Hoechst Aktiengesellschaft | Process for the enzymatic resolution of 2-amino-4-methyl-phosphinobutyric acid derivatives |
| US5879930A (en) * | 1989-02-06 | 1999-03-09 | Hoechst Aktiengesellschaft | Process for the enzymatic resolution of 2-amino-4-methyl-phosphinobutyric acid derivatives |
| WO2003093454A1 (fr) * | 2002-04-30 | 2003-11-13 | Gaoming Jinkuizi Plant Nutriment Co.,Ltd. | Preparation microbienne traitant les residus alcooliques, son procede d'obtention, et procede de fermentation associe |
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