JPS6054677A - ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法 - Google Patents
ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法Info
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- JPS6054677A JPS6054677A JP16203583A JP16203583A JPS6054677A JP S6054677 A JPS6054677 A JP S6054677A JP 16203583 A JP16203583 A JP 16203583A JP 16203583 A JP16203583 A JP 16203583A JP S6054677 A JPS6054677 A JP S6054677A
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- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
以下本発明の詳細な説明する。
本発明にいうヒ) IFN自発産生細胞とはヒ)M帝血
又は乳ψ児由来のリン/4球をEpatein−Bar
rウィルスでトランス7オームした細胞株、UMCLM
C中ヒト白血球由来細胞株などを含む。
又は乳ψ児由来のリン/4球をEpatein−Bar
rウィルスでトランス7オームした細胞株、UMCLM
C中ヒト白血球由来細胞株などを含む。
これらの細胞を培養する培地としては特に限定されない
が、例えばRPMI 1640培地ダルベツコ変法イー
グル培地、199培地、ノ1ムF12培地などの公知の
培地又はこれらの組み合せ培地に5〜10v/v %の
胎児牛血清や仔牛血清などを添加した培地を使用するこ
とができる。また、大量培養用としてはこれらの血清を
含まない無崩清培地を使用することが望ましく、例えば
ウシ又はヒトアルゾ’l0XIO5/mJ、 36−3
7℃にて加湿した4〜5v/vチの炭酸ガス気流中で培
養する方法が適用できる。
が、例えばRPMI 1640培地ダルベツコ変法イー
グル培地、199培地、ノ1ムF12培地などの公知の
培地又はこれらの組み合せ培地に5〜10v/v %の
胎児牛血清や仔牛血清などを添加した培地を使用するこ
とができる。また、大量培養用としてはこれらの血清を
含まない無崩清培地を使用することが望ましく、例えば
ウシ又はヒトアルゾ’l0XIO5/mJ、 36−3
7℃にて加湿した4〜5v/vチの炭酸ガス気流中で培
養する方法が適用できる。
本発明の培養方法では、−緩衝剤と栄養培地成分を培地
体積と培地浸透圧の増加が可及的少量又は低値となるよ
う添加する。
体積と培地浸透圧の増加が可及的少量又は低値となるよ
う添加する。
本発明者らはUMCLMC中例としてこの増殖停止期に
おける培地成分の消長を鋭意検討した結果、まず培地中
の!ミノ酸はL−アルギニン、L−グルタミン、L−セ
リン、L−アスパラギン及び糖源トシてグルコース、ピ
ルビン酸が消費されることを見出したが、これらを添加
したのみでは大巾な飽和細胞密度の増大は餡められkか
った。一方、細胞増殖停止期では一般的に培地−が細胞
増殖至適範囲以下に低下するが、培地pl(N要用緩衝
剤として知られている重炭酸ナトリウム、HEPES
(N−2−ハイドロオキシエチルピペラジン−N−2こ
れらの成分は濃厚溶液で細胞培養液に補充するのが便利
であるが、添加する総量の最終織度としては声緩衝剤2
.5〜10mM、糖類0.5〜41//i、アミノ酸0
.05〜0.8El/Iが適当である。これらは適宜組
み合せて各々100〜200倍濃度の濃厚溶液とした後
、済過滅菌して使用する。
おける培地成分の消長を鋭意検討した結果、まず培地中
の!ミノ酸はL−アルギニン、L−グルタミン、L−セ
リン、L−アスパラギン及び糖源トシてグルコース、ピ
ルビン酸が消費されることを見出したが、これらを添加
したのみでは大巾な飽和細胞密度の増大は餡められkか
った。一方、細胞増殖停止期では一般的に培地−が細胞
増殖至適範囲以下に低下するが、培地pl(N要用緩衝
剤として知られている重炭酸ナトリウム、HEPES
(N−2−ハイドロオキシエチルピペラジン−N−2こ
れらの成分は濃厚溶液で細胞培養液に補充するのが便利
であるが、添加する総量の最終織度としては声緩衝剤2
.5〜10mM、糖類0.5〜41//i、アミノ酸0
.05〜0.8El/Iが適当である。これらは適宜組
み合せて各々100〜200倍濃度の濃厚溶液とした後
、済過滅菌して使用する。
培養液に添加する濃厚液量は添加時の細胞密度、−の変
動によって異なるが培養液全容量の1150〜1/20
0が適している。
動によって異なるが培養液全容量の1150〜1/20
0が適している。
細胞の増殖段階は与えられた培養条件のもとでは、通常
、増殖準備期、対数増殖期、増殖停止期、死滅期に区別
されるが、本発明で示した培地成分を補充添加する時期
は細胞培養対数増殖期の後半から停止期直前までが適し
ており、その他の時期に添加しても大巾な細胞密度増大
線認められない(実施例4)。
、増殖準備期、対数増殖期、増殖停止期、死滅期に区別
されるが、本発明で示した培地成分を補充添加する時期
は細胞培養対数増殖期の後半から停止期直前までが適し
ており、その他の時期に添加しても大巾な細胞密度増大
線認められない(実施例4)。
らすことができ、工業的にIFNを産生させ精製する際
に有効な手段を与える。
に有効な手段を与える。
本発明によシ例えばヒ)IFNを自発産生ずるUMCL
細胞を用いる場合には、この分野で通常用いられている
培養方法では細胞飽和密度が2.OX 10’7fnl
であシ、その培養土清中のIFNは2〜3X10’単位
/ mlであるのに対し、本発明方法によれば特別な培
養装置や血清等の高価な培地成分を用いなくとも細胞飽
和密度で約2倍、IFN産生で約5倍の増大を達成する
ことができる。しかもその細胞は再使用して培養し、I
FNi生を行わせ得るので、指数関数的に増大したIF
Nを得ることができ、大量のIFN f:得るのに非常
に有利となる。
細胞を用いる場合には、この分野で通常用いられている
培養方法では細胞飽和密度が2.OX 10’7fnl
であシ、その培養土清中のIFNは2〜3X10’単位
/ mlであるのに対し、本発明方法によれば特別な培
養装置や血清等の高価な培地成分を用いなくとも細胞飽
和密度で約2倍、IFN産生で約5倍の増大を達成する
ことができる。しかもその細胞は再使用して培養し、I
FNi生を行わせ得るので、指数関数的に増大したIF
Nを得ることができ、大量のIFN f:得るのに非常
に有利となる。
また、本発明によれば、経費のかかる無閉的培地の調製
、管理の節減のみならず、大量の培養槽や細胞を回収す
る遠心分離装置の使用(ロ)数を減ずStomatit
is Virus)を用いる細胞変性抑制法により測定
した。
、管理の節減のみならず、大量の培養槽や細胞を回収す
る遠心分離装置の使用(ロ)数を減ずStomatit
is Virus)を用いる細胞変性抑制法により測定
した。
実施例1
ダルベツコ変法イーグル培地(日永製薬0@製)に表1
に示す成分を加えて調製したRITC57−1培地10
0mA!に、屓帯血すンノ臂球由来でRITC57−!
培地にて継代培養したUMCL細胞を初発細胞密度2X
105/mlとなるよう2基のペルコ社ガラス・スピ
ンナー・ジャーに張シ込み、37℃、スピンナー回転数
10 Or、pom、にて、加湿した5 v/v%炭酸
ガス含有空気中で培養した。その−基はそのまま培養し
、他の一基では培養4日目、に表2に示した培地成分及
び−緩衝剤、濾過滅藺液をl ml添加し、さらに4日
間培養しそれぞれの培養日に少lをサンプリングし細胞
密度とIFN濃度を測定した。
に示す成分を加えて調製したRITC57−1培地10
0mA!に、屓帯血すンノ臂球由来でRITC57−!
培地にて継代培養したUMCL細胞を初発細胞密度2X
105/mlとなるよう2基のペルコ社ガラス・スピ
ンナー・ジャーに張シ込み、37℃、スピンナー回転数
10 Or、pom、にて、加湿した5 v/v%炭酸
ガス含有空気中で培養した。その−基はそのまま培養し
、他の一基では培養4日目、に表2に示した培地成分及
び−緩衝剤、濾過滅藺液をl ml添加し、さらに4日
間培養しそれぞれの培養日に少lをサンプリングし細胞
密度とIFN濃度を測定した。
第1図にそれらの結果を示す。図中黒丸は生細胞密度、
白丸はIFN産生量を示し、実線は培養4L−アスパラ
ギン 56 グルコース 1000 マンノース 500 グルタチオン 1.0 グトレツシン2塩酸塩 0.1 ヒポキサンチン 4 NaHCO34211/’7 グルコース 100 ピルビン酸ナトリウム 10 L−アルギニ7 10 L−セリン 5 L−アスパラギン 5 実施例2 実施例1と同様にRITC57−1培地20m1f用い
ファルコン社y培sフラスコ(3024)にてUMCL
細胞を初発細胞密度5X105/atで培養した。培養
4日目に嚢3に示すPH緩衝剤及びL−アルギニン10
0ダ/i、L−セリ;y 50 lIv/7. L−ア
スパラギン50?ダ/、l、グルコース11/Z 、ピ
ルビン酸ナトリウムo1y7iの最終濃度の100倍濃
度液を0.22μmのヂ過滅菌後、各フラスコに0.2
d添加した。培養を7日目まで継続し、細胞密度を測定
した結果が表3である。−緩衝剤又はアミノ酸、糖単独
の添加では無効であるのに対し、併用補添することによ
υ生細胞密度の増大が得られる。
白丸はIFN産生量を示し、実線は培養4L−アスパラ
ギン 56 グルコース 1000 マンノース 500 グルタチオン 1.0 グトレツシン2塩酸塩 0.1 ヒポキサンチン 4 NaHCO34211/’7 グルコース 100 ピルビン酸ナトリウム 10 L−アルギニ7 10 L−セリン 5 L−アスパラギン 5 実施例2 実施例1と同様にRITC57−1培地20m1f用い
ファルコン社y培sフラスコ(3024)にてUMCL
細胞を初発細胞密度5X105/atで培養した。培養
4日目に嚢3に示すPH緩衝剤及びL−アルギニン10
0ダ/i、L−セリ;y 50 lIv/7. L−ア
スパラギン50?ダ/、l、グルコース11/Z 、ピ
ルビン酸ナトリウムo1y7iの最終濃度の100倍濃
度液を0.22μmのヂ過滅菌後、各フラスコに0.2
d添加した。培養を7日目まで継続し、細胞密度を測定
した結果が表3である。−緩衝剤又はアミノ酸、糖単独
の添加では無効であるのに対し、併用補添することによ
υ生細胞密度の増大が得られる。
表 3
2.5 15.2 24.1
5 16.1 27.8
10 14.8 25.0
20 10.1 24.7
β−グリセロリン削り一トリウム
2.5 17.2 20.4
5 、 16.1 25.8
10 15.2 24.2
20 11.6 20.3
実施例3
実施例2と同様に培養したUMCL NI胞の培養4日
目に各々の添加最終濃度をNaHCo、 5mM 、グ
ルコース11//1.ビルヒン酸ナトリウA O,11
/J 、 L−7スAラキン50my/Z、t −*リ
ン50mg/i1.L−グルタミン400キ/!、L−
ア゛ルギニン100キ/!ンの組み合せが著効を示した
。
目に各々の添加最終濃度をNaHCo、 5mM 、グ
ルコース11//1.ビルヒン酸ナトリウA O,11
/J 、 L−7スAラキン50my/Z、t −*リ
ン50mg/i1.L−グルタミン400キ/!、L−
ア゛ルギニン100キ/!ンの組み合せが著効を示した
。
実施例4
実施例3と同様にUMCL細胞を初発細胞密度4×10
57m1で培養し、第3図に示す培養日に実施例3と同
様にNaHCO3+グルコースピルビン酸す) IJウ
ム、L−アルギニン、L−セリン、L−7スノfライン
を添加し、細胞密度を測定した。
57m1で培養し、第3図に示す培養日に実施例3と同
様にNaHCO3+グルコースピルビン酸す) IJウ
ム、L−アルギニン、L−セリン、L−7スノfライン
を添加し、細胞密度を測定した。
図中の黒丸は添加なし、白丸は添加ありの場合を示す。
これらの結果よシ明らかなように培養初期にこれらの培
地成分を添加しても無効であるのに対して増殖停止期直
前に添加すれば著効を示した0
地成分を添加しても無効であるのに対して増殖停止期直
前に添加すれば著効を示した0
第1図は培養日数と細胞密度及びrrN一度との関係を
示すグラフである。 縦軸は細胞密度(X105Calls/ML)、 IF
N濃度(X105UNIT8/ML )を示し、横軸は
添加物を示す・黒丸は細胞密度、自律はIFN 濃度を
示す。 第3図は培養開始n日後(nは0≦n≦5の整数)に培
地栄養成分等を培地に添加した場合の培養日数と細11
W、 m度との関係を示すグラフでおる。 縦軸は細胞密度(xlo5cgtL8/ML) 、横軸
は培養日数(日)を示す。 黒丸は栄養成分等を培地に添加しない場合、白丸は添カ
ロした場合を示す。 特許出願人 工業技術院長 第1図 01234 5678 02468 02468 02468 02 4158
示すグラフである。 縦軸は細胞密度(X105Calls/ML)、 IF
N濃度(X105UNIT8/ML )を示し、横軸は
添加物を示す・黒丸は細胞密度、自律はIFN 濃度を
示す。 第3図は培養開始n日後(nは0≦n≦5の整数)に培
地栄養成分等を培地に添加した場合の培養日数と細11
W、 m度との関係を示すグラフでおる。 縦軸は細胞密度(xlo5cgtL8/ML) 、横軸
は培養日数(日)を示す。 黒丸は栄養成分等を培地に添加しない場合、白丸は添カ
ロした場合を示す。 特許出願人 工業技術院長 第1図 01234 5678 02468 02468 02468 02 4158
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 増殖停止期直前に声緩衝剤と消費された培地栄養成分の
凝厚液を培養液に補充添加することを特徴とするヒトイ
ンターフェロン自発産生細胞の培認められている。 しかしながら、IFNをそれらの予防あるいは治療に用
いる際にはIFNには種特異性が高いことから、ヒト細
胞又はヒ)IFN遺伝子を発現する微生物が産生ずる大
量のヒトIFNが必要である。 これまでのIFN生産方法としては成人新鮮血よ少分離
した白血球を用いる方法や、ヒト由来の繊維芽細胞や、
白血球、リンパ由来のりンノヤ系細胞などを培養する方
法、並びにこれらのIFN遺伝子を発現する微生物を用
い本方法などが知られているO しかしながらこれらの方法で大量のIFNを得る際には
IFN誘起剤としてのウィルスや微生物由来の異種高分
子の微量混入の問題があシ、精製工程が煩雑になる。 一方、と) IFN自発産生細胞株培養によって例えば
、スピン・フィルターとよばれる回転攪1 繊維膜や平面膜の片側で細胞を培養し、他方に新鮮培地
を循環させて低分子培地成分を補添し、老廃物を除去す
る方法(特開昭55−131386)などである。 しかしながらこれらの方法で大量の細胞を培養するには
特殊の装置やその制御方法の開発が必要であシ、かつ高
価な胎児牛崩清を多量含む新鮮な培地を連続又は断続的
に交換することが必要なため多大なランニングコストが
かかるという大きな問題点を持っている。 本発明者らは、通常の培養装置を用いて細胞密度を増大
させる方法及び細胞を培養した古い培養液を交換させる
ことなく効率よく高単位のIFNを産生させる方法を鋭
意検討し、細胞増殖停止期において、細胞によって消費
される栄養成分の解析に基き、細胞増殖の停止期又はそ
の直前に培養液′李″量の交換培地を使用することなく
単に消費される栄養成分を少量添加するのみで、細胞飽
和密度を増大させ、IFN産生景を増大させる方法に関
するものである。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16203583A JPS6054677A (ja) | 1983-09-05 | 1983-09-05 | ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP16203583A JPS6054677A (ja) | 1983-09-05 | 1983-09-05 | ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6054677A true JPS6054677A (ja) | 1985-03-29 |
| JPS6233877B2 JPS6233877B2 (ja) | 1987-07-23 |
Family
ID=15746838
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP16203583A Granted JPS6054677A (ja) | 1983-09-05 | 1983-09-05 | ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6054677A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS62503146A (ja) * | 1985-06-28 | 1987-12-17 | セルテツク リミテツド | 動物細胞培養 |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AR118308A1 (es) | 2019-03-29 | 2021-09-29 | National Institutes For Quantum And Radiological Science And Tech | Dispositivo de recuperación de iones metálicos, sistema de recuperación de metales y método de recuperación de iones metálicos |
-
1983
- 1983-09-05 JP JP16203583A patent/JPS6054677A/ja active Granted
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS62503146A (ja) * | 1985-06-28 | 1987-12-17 | セルテツク リミテツド | 動物細胞培養 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPS6233877B2 (ja) | 1987-07-23 |
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