JPS6054677A - ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法 - Google Patents

ヒトインタ−フェロン産生細胞の培養方法

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JPS6054677A
JPS6054677A JP16203583A JP16203583A JPS6054677A JP S6054677 A JPS6054677 A JP S6054677A JP 16203583 A JP16203583 A JP 16203583A JP 16203583 A JP16203583 A JP 16203583A JP S6054677 A JPS6054677 A JP S6054677A
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cells
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culture
cell
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JP16203583A
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Yoshiki Minamoto
源 良樹
Akira Okano
明 岡野
Koji Mitsuki
光木 浩司
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National Institute of Advanced Industrial Science and Technology AIST
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Agency of Industrial Science and Technology
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 以下本発明の詳細な説明する。
本発明にいうヒ) IFN自発産生細胞とはヒ)M帝血
又は乳ψ児由来のリン/4球をEpatein−Bar
rウィルスでトランス7オームした細胞株、UMCLM
C中ヒト白血球由来細胞株などを含む。
これらの細胞を培養する培地としては特に限定されない
が、例えばRPMI 1640培地ダルベツコ変法イー
グル培地、199培地、ノ1ムF12培地などの公知の
培地又はこれらの組み合せ培地に5〜10v/v %の
胎児牛血清や仔牛血清などを添加した培地を使用するこ
とができる。また、大量培養用としてはこれらの血清を
含まない無崩清培地を使用することが望ましく、例えば
ウシ又はヒトアルゾ’l0XIO5/mJ、 36−3
7℃にて加湿した4〜5v/vチの炭酸ガス気流中で培
養する方法が適用できる。
本発明の培養方法では、−緩衝剤と栄養培地成分を培地
体積と培地浸透圧の増加が可及的少量又は低値となるよ
う添加する。
本発明者らはUMCLMC中例としてこの増殖停止期に
おける培地成分の消長を鋭意検討した結果、まず培地中
の!ミノ酸はL−アルギニン、L−グルタミン、L−セ
リン、L−アスパラギン及び糖源トシてグルコース、ピ
ルビン酸が消費されることを見出したが、これらを添加
したのみでは大巾な飽和細胞密度の増大は餡められkか
った。一方、細胞増殖停止期では一般的に培地−が細胞
増殖至適範囲以下に低下するが、培地pl(N要用緩衝
剤として知られている重炭酸ナトリウム、HEPES 
(N−2−ハイドロオキシエチルピペラジン−N−2こ
れらの成分は濃厚溶液で細胞培養液に補充するのが便利
であるが、添加する総量の最終織度としては声緩衝剤2
.5〜10mM、糖類0.5〜41//i、アミノ酸0
.05〜0.8El/Iが適当である。これらは適宜組
み合せて各々100〜200倍濃度の濃厚溶液とした後
、済過滅菌して使用する。
培養液に添加する濃厚液量は添加時の細胞密度、−の変
動によって異なるが培養液全容量の1150〜1/20
0が適している。
細胞の増殖段階は与えられた培養条件のもとでは、通常
、増殖準備期、対数増殖期、増殖停止期、死滅期に区別
されるが、本発明で示した培地成分を補充添加する時期
は細胞培養対数増殖期の後半から停止期直前までが適し
ており、その他の時期に添加しても大巾な細胞密度増大
線認められない(実施例4)。
らすことができ、工業的にIFNを産生させ精製する際
に有効な手段を与える。
本発明によシ例えばヒ)IFNを自発産生ずるUMCL
細胞を用いる場合には、この分野で通常用いられている
培養方法では細胞飽和密度が2.OX 10’7fnl
であシ、その培養土清中のIFNは2〜3X10’単位
/ mlであるのに対し、本発明方法によれば特別な培
養装置や血清等の高価な培地成分を用いなくとも細胞飽
和密度で約2倍、IFN産生で約5倍の増大を達成する
ことができる。しかもその細胞は再使用して培養し、I
FNi生を行わせ得るので、指数関数的に増大したIF
Nを得ることができ、大量のIFN f:得るのに非常
に有利となる。
また、本発明によれば、経費のかかる無閉的培地の調製
、管理の節減のみならず、大量の培養槽や細胞を回収す
る遠心分離装置の使用(ロ)数を減ずStomatit
is Virus)を用いる細胞変性抑制法により測定
した。
実施例1 ダルベツコ変法イーグル培地(日永製薬0@製)に表1
に示す成分を加えて調製したRITC57−1培地10
0mA!に、屓帯血すンノ臂球由来でRITC57−!
培地にて継代培養したUMCL細胞を初発細胞密度2X
 105/mlとなるよう2基のペルコ社ガラス・スピ
ンナー・ジャーに張シ込み、37℃、スピンナー回転数
10 Or、pom、にて、加湿した5 v/v%炭酸
ガス含有空気中で培養した。その−基はそのまま培養し
、他の一基では培養4日目、に表2に示した培地成分及
び−緩衝剤、濾過滅藺液をl ml添加し、さらに4日
間培養しそれぞれの培養日に少lをサンプリングし細胞
密度とIFN濃度を測定した。
第1図にそれらの結果を示す。図中黒丸は生細胞密度、
白丸はIFN産生量を示し、実線は培養4L−アスパラ
ギン 56 グルコース 1000 マンノース 500 グルタチオン 1.0 グトレツシン2塩酸塩 0.1 ヒポキサンチン 4 NaHCO34211/’7 グルコース 100 ピルビン酸ナトリウム 10 L−アルギニ7 10 L−セリン 5 L−アスパラギン 5 実施例2 実施例1と同様にRITC57−1培地20m1f用い
ファルコン社y培sフラスコ(3024)にてUMCL
細胞を初発細胞密度5X105/atで培養した。培養
4日目に嚢3に示すPH緩衝剤及びL−アルギニン10
0ダ/i、L−セリ;y 50 lIv/7. L−ア
スパラギン50?ダ/、l、グルコース11/Z 、ピ
ルビン酸ナトリウムo1y7iの最終濃度の100倍濃
度液を0.22μmのヂ過滅菌後、各フラスコに0.2
d添加した。培養を7日目まで継続し、細胞密度を測定
した結果が表3である。−緩衝剤又はアミノ酸、糖単独
の添加では無効であるのに対し、併用補添することによ
υ生細胞密度の増大が得られる。
表 3 2.5 15.2 24.1 5 16.1 27.8 10 14.8 25.0 20 10.1 24.7 β−グリセロリン削り一トリウム 2.5 17.2 20.4 5 、 16.1 25.8 10 15.2 24.2 20 11.6 20.3 実施例3 実施例2と同様に培養したUMCL NI胞の培養4日
目に各々の添加最終濃度をNaHCo、 5mM 、グ
ルコース11//1.ビルヒン酸ナトリウA O,11
/J 、 L−7スAラキン50my/Z、t −*リ
ン50mg/i1.L−グルタミン400キ/!、L−
ア゛ルギニン100キ/!ンの組み合せが著効を示した
実施例4 実施例3と同様にUMCL細胞を初発細胞密度4×10
57m1で培養し、第3図に示す培養日に実施例3と同
様にNaHCO3+グルコースピルビン酸す) IJウ
ム、L−アルギニン、L−セリン、L−7スノfライン
を添加し、細胞密度を測定した。
図中の黒丸は添加なし、白丸は添加ありの場合を示す。
これらの結果よシ明らかなように培養初期にこれらの培
地成分を添加しても無効であるのに対して増殖停止期直
前に添加すれば著効を示した0
【図面の簡単な説明】
第1図は培養日数と細胞密度及びrrN一度との関係を
示すグラフである。 縦軸は細胞密度(X105Calls/ML)、 IF
N濃度(X105UNIT8/ML )を示し、横軸は
添加物を示す・黒丸は細胞密度、自律はIFN 濃度を
示す。 第3図は培養開始n日後(nは0≦n≦5の整数)に培
地栄養成分等を培地に添加した場合の培養日数と細11
W、 m度との関係を示すグラフでおる。 縦軸は細胞密度(xlo5cgtL8/ML) 、横軸
は培養日数(日)を示す。 黒丸は栄養成分等を培地に添加しない場合、白丸は添カ
ロした場合を示す。 特許出願人 工業技術院長 第1図 01234 5678 02468 02468 02468 02 4158

Claims (1)

  1. 【特許請求の範囲】 増殖停止期直前に声緩衝剤と消費された培地栄養成分の
    凝厚液を培養液に補充添加することを特徴とするヒトイ
    ンターフェロン自発産生細胞の培認められている。 しかしながら、IFNをそれらの予防あるいは治療に用
    いる際にはIFNには種特異性が高いことから、ヒト細
    胞又はヒ)IFN遺伝子を発現する微生物が産生ずる大
    量のヒトIFNが必要である。 これまでのIFN生産方法としては成人新鮮血よ少分離
    した白血球を用いる方法や、ヒト由来の繊維芽細胞や、
    白血球、リンパ由来のりンノヤ系細胞などを培養する方
    法、並びにこれらのIFN遺伝子を発現する微生物を用
    い本方法などが知られているO しかしながらこれらの方法で大量のIFNを得る際には
    IFN誘起剤としてのウィルスや微生物由来の異種高分
    子の微量混入の問題があシ、精製工程が煩雑になる。 一方、と) IFN自発産生細胞株培養によって例えば
    、スピン・フィルターとよばれる回転攪1 繊維膜や平面膜の片側で細胞を培養し、他方に新鮮培地
    を循環させて低分子培地成分を補添し、老廃物を除去す
    る方法(特開昭55−131386)などである。 しかしながらこれらの方法で大量の細胞を培養するには
    特殊の装置やその制御方法の開発が必要であシ、かつ高
    価な胎児牛崩清を多量含む新鮮な培地を連続又は断続的
    に交換することが必要なため多大なランニングコストが
    かかるという大きな問題点を持っている。 本発明者らは、通常の培養装置を用いて細胞密度を増大
    させる方法及び細胞を培養した古い培養液を交換させる
    ことなく効率よく高単位のIFNを産生させる方法を鋭
    意検討し、細胞増殖停止期において、細胞によって消費
    される栄養成分の解析に基き、細胞増殖の停止期又はそ
    の直前に培養液′李″量の交換培地を使用することなく
    単に消費される栄養成分を少量添加するのみで、細胞飽
    和密度を増大させ、IFN産生景を増大させる方法に関
    するものである。
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