JPS6054680A - 新規な熱安定性グルコアミラ−ゼおよびその製造法 - Google Patents
新規な熱安定性グルコアミラ−ゼおよびその製造法Info
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- JPS6054680A JPS6054680A JP59164348A JP16434884A JPS6054680A JP S6054680 A JPS6054680 A JP S6054680A JP 59164348 A JP59164348 A JP 59164348A JP 16434884 A JP16434884 A JP 16434884A JP S6054680 A JPS6054680 A JP S6054680A
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- Japan
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- glucoamylase
- enzyme
- maltodextrin
- atcc
- clostridium
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/90—Isomerases (5.)
- C12N9/92—Glucose isomerase (5.3.1.5; 5.3.1.9; 5.3.1.18)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/14—Hydrolases (3)
- C12N9/24—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
- C12N9/2402—Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing O- and S- glycosyl compounds (3.2.1)
- C12N9/2405—Glucanases
- C12N9/2408—Glucanases acting on alpha -1,4-glucosidic bonds
- C12N9/2411—Amylases
- C12N9/2428—Glucan 1,4-alpha-glucosidase (3.2.1.3), i.e. glucoamylase
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- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
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- Y10S435/842—Clostridium
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は澱粉の加水分解に対し有用な新規なグルコアミ
ラーゼ、およ−び嫌気性醗酵でのクロストリジウム(C
lostrtdium)の種(species)の微生
物による該グルコアミラーゼの製造法に関する。
ラーゼ、およ−び嫌気性醗酵でのクロストリジウム(C
lostrtdium)の種(species)の微生
物による該グルコアミラーゼの製造法に関する。
大量ノグルコース含有シラツブがコーンスターチの酵素
的加水分解により製造されている。
的加水分解により製造されている。
これは一般に2段階で実施される。第1段階では、澱粉
は6と7の間のpHでα−アミラーゼ酵素での処理で液
化される。ついで、この液化された澱粉は4と4.5の
間のpHで作用するグルコアミラーゼ酵素により糖化さ
れる。現在、澱粉の糖化に対し用いられる市販されて手
に入れることのできるグルコアミラーゼ酵素はリゾプス
(Rh i zopus)属およびアスペルギルス(A
spergillus’)属の微生物から誘導されてい
る。これらのグルコアミラーゼは、特にpH5以Eの溶
液中では熱安定性を示さ々い。
は6と7の間のpHでα−アミラーゼ酵素での処理で液
化される。ついで、この液化された澱粉は4と4.5の
間のpHで作用するグルコアミラーゼ酵素により糖化さ
れる。現在、澱粉の糖化に対し用いられる市販されて手
に入れることのできるグルコアミラーゼ酵素はリゾプス
(Rh i zopus)属およびアスペルギルス(A
spergillus’)属の微生物から誘導されてい
る。これらのグルコアミラーゼは、特にpH5以Eの溶
液中では熱安定性を示さ々い。
現在用いられているグルコアミラーゼは好気性微生物、
す々わち生長に酸素を要求する微生物により生産される
。嫌気性微生物により生産されるグルコアミラーゼにつ
込ての報告は#丘んの少1.シか々い。Hockenh
ull他[13iochem、 J、 89.102−
106(1945)〕は、嫌気性菌であるクロス) +
1ジウム・アセトブチIIクム(Clostridiu
m acetobutylicum)がグルコアミラー
ゼを生産することを見す出した。
す々わち生長に酸素を要求する微生物により生産される
。嫌気性微生物により生産されるグルコアミラーゼにつ
込ての報告は#丘んの少1.シか々い。Hockenh
ull他[13iochem、 J、 89.102−
106(1945)〕は、嫌気性菌であるクロス) +
1ジウム・アセトブチIIクム(Clostridiu
m acetobutylicum)がグルコアミラー
ゼを生産することを見す出した。
この酵素は4.5で最適TIHを示しだ。後に、Ens
ley他[J、 Gen、 Appl、 Microb
iol、、 21.5l−59(1975))は、この
酵素の製造について研究し、そして培地にゲルコールを
存在させることによってこの酵素が誘導されることを見
す出しだ。
ley他[J、 Gen、 Appl、 Microb
iol、、 21.5l−59(1975))は、この
酵素の製造について研究し、そして培地にゲルコールを
存在させることによってこの酵素が誘導されることを見
す出しだ。
同じ反応混合物において、同時に液化工程と糖化工程を
実施することにより澱粉を加水分解することが望しいこ
とである。このことは、もしも6と7の間のpH値で液
化澱粉を糖化するグルコアミラーゼを手に入れることが
できれば、α−アミラーゼが活性である場合に達成され
ることができる。さらに、反応速度が十分に速くて有用
である温度で糖化反応が行なわれることを可能にするた
めには、グルコアミラーゼはこのpHにおいて十分に熱
安定性でなければならない。
実施することにより澱粉を加水分解することが望しいこ
とである。このことは、もしも6と7の間のpH値で液
化澱粉を糖化するグルコアミラーゼを手に入れることが
できれば、α−アミラーゼが活性である場合に達成され
ることができる。さらに、反応速度が十分に速くて有用
である温度で糖化反応が行なわれることを可能にするた
めには、グルコアミラーゼはこのpHにおいて十分に熱
安定性でなければならない。
本発明者等は、嫌気性醗酵により生産される、E記要求
に応するグルコアミラーゼを発見したのである。
に応するグルコアミラーゼを発見したのである。
本発明によればクロストリジウム8p。
(Clostridium sp、)ATCCNo、
39251 、 ATCCNo、 89252、その変
異株、またはグルコアミラーゼ酵素の製造を暗号づける
遺伝情報をL記りロストリジウムsp、微生物よりとね
込む微生物からなる群より選ばれる微生物から誘導され
たグルコアミラーゼ酵素が提供される。
39251 、 ATCCNo、 89252、その変
異株、またはグルコアミラーゼ酵素の製造を暗号づける
遺伝情報をL記りロストリジウムsp、微生物よりとね
込む微生物からなる群より選ばれる微生物から誘導され
たグルコアミラーゼ酵素が提供される。
また、本発明によれば、クロストリジウムSp。
ATCCNo、 89251、ATCCNo、 892
52、その変異株、捷たはグルコアミラーゼ酵素の製造
を暗号づける遺伝情報を上記クロストリジウムSp、微
生物よりとり込む微生物から々る群より微生物を選び、
この選んだ微生物の細胞を栄養培地に培養し、コノ培地
からグルコアミラーゼ酵素を分離することよりなるグル
コアミラーゼの製造法が提供される。
52、その変異株、捷たはグルコアミラーゼ酵素の製造
を暗号づける遺伝情報を上記クロストリジウムSp、微
生物よりとり込む微生物から々る群より微生物を選び、
この選んだ微生物の細胞を栄養培地に培養し、コノ培地
からグルコアミラーゼ酵素を分離することよりなるグル
コアミラーゼの製造法が提供される。
さらに、本発明によれば、マルトデキスリンをグルコー
スに加水分解する方法が提供される。
スに加水分解する方法が提供される。
この方法はマルトデキストリンの水性溶液を、本発明の
グルコアミラーゼ酵素で、3.5〜7.0のpHにおい
て、マルトデキス) +1ンを加水分解してグルコース
にするのに十分な時間処理することよねなる。
グルコアミラーゼ酵素で、3.5〜7.0のpHにおい
て、マルトデキス) +1ンを加水分解してグルコース
にするのに十分な時間処理することよねなる。
本発明のグルコアミラーゼは、ジョーシア大学のLar
s G、 Ljungdahl博士およびその協同研究
者等によめアイスランドのHveragerdiの泥温
泉から分離されたクロストリジウムの2つの新うシー菌
株により生産される。これらの菌株はダラム陽性で、胞
子を形成し、耐熱性で嫌気性の細菌である。Ljung
dahl博士は、これらの菌株に対し、クロストリジウ
ム拳す−モアミロリテイクム(Clostridium
thermoamylolyticum)という名を
与えた。
s G、 Ljungdahl博士およびその協同研究
者等によめアイスランドのHveragerdiの泥温
泉から分離されたクロストリジウムの2つの新うシー菌
株により生産される。これらの菌株はダラム陽性で、胞
子を形成し、耐熱性で嫌気性の細菌である。Ljung
dahl博士は、これらの菌株に対し、クロストリジウ
ム拳す−モアミロリテイクム(Clostridium
thermoamylolyticum)という名を
与えた。
そしてこれらの菌株は、クロストリジウムsp。
ATCCNo、 89251 、およびATCCNo、
89252としてアメリカン・タイプーカルチュア・
コレクション(American Type Cu1t
ure Co11ection)から一般に自由に手に
入れることができる。
89252としてアメリカン・タイプーカルチュア・
コレクション(American Type Cu1t
ure Co11ection)から一般に自由に手に
入れることができる。
本発明のグルコアミラーゼの製造に対し用いられる微生
物は、炭水化物源として可溶性澱粉またはマルトデキス
トリン、酵母エキス、これに加えてビタミン溶液および
ミネラル溶液を含有する培地中で嫌気性条件下に培養さ
れる。醗酵は一般に約pH6と7の間で行々ゎれる。こ
れらの微生物−よね生産されるグルコアミラーゼはα−
アミラーゼと一緒に醗酵培地中に見い出される。このこ
とは、とのグルコアミラーゼが細胞外酵素であることを
示す。
物は、炭水化物源として可溶性澱粉またはマルトデキス
トリン、酵母エキス、これに加えてビタミン溶液および
ミネラル溶液を含有する培地中で嫌気性条件下に培養さ
れる。醗酵は一般に約pH6と7の間で行々ゎれる。こ
れらの微生物−よね生産されるグルコアミラーゼはα−
アミラーゼと一緒に醗酵培地中に見い出される。このこ
とは、とのグルコアミラーゼが細胞外酵素であることを
示す。
醗酵プロスから細胞を除去し、ついで塩化カルシウムで
異物質を沈澱させることによりグルコ了ばラーゼは精製
された。α−アミラーゼとグルコアミラーゼの混合物は
、複合体を形成する粒状澱粉へのα−アミラーゼの吸着
により分離された。和製のグルコアミラーゼのさらにN
製は、硫酸アンモニウムでの沈澱、続いていくつかのク
ロマトグラフィ〜による分離により行なわれた。このM
製された酵素は、ナトリウムドデシルサルフエー) (
SDS)ボリアクルリアミドゲル電気泳動によね測定す
ると、約75000の分子量をもった。
異物質を沈澱させることによりグルコ了ばラーゼは精製
された。α−アミラーゼとグルコアミラーゼの混合物は
、複合体を形成する粒状澱粉へのα−アミラーゼの吸着
により分離された。和製のグルコアミラーゼのさらにN
製は、硫酸アンモニウムでの沈澱、続いていくつかのク
ロマトグラフィ〜による分離により行なわれた。このM
製された酵素は、ナトリウムドデシルサルフエー) (
SDS)ボリアクルリアミドゲル電気泳動によね測定す
ると、約75000の分子量をもった。
以下のグルコアミラーゼ酵素の製造および性質の記載に
おいて、すべて部および%は、特に指示しない限り1重
量部および重量%である。
おいて、すべて部および%は、特に指示しない限り1重
量部および重量%である。
ゲルコアミラー・ゼの検定
検定に対1−で用いられる基質はマルトデキストリン〔
アイオワ州Muscatineのグレイン・プロセスイ
ング・カンバニイ(Grain proceasing
Company)より手に入れることができるマルト
リフ (Maltrin)−1001であ。00.1m
lの酵素溶液が0.6mlの5%マルトデキストリン溶
液、0.1mlの500mM酢酸ナトリウム溶液(pH
5’)に混合され、そして水を加えて全容量が1mlに
された。この混合物は60℃に30分間保温された後、
混合物を沸騰している水浴中K10〜20分間浸漬する
ことにより反応が終了された。つぎに、グルコースがグ
ルコース分析器〔オハイオ州Yellow Sprin
gsのイエロm−スフ11ングス・インストラメント・
カンパニイ(Yellow Springs Inst
rument Company))を使用するグルコー
ス−オキシダーゼ法により測定された。1グルコアミラ
一ゼ単位は検定条件下で1時間に1gのグルコースを生
産するに要する酵素の量と定義される。
アイオワ州Muscatineのグレイン・プロセスイ
ング・カンバニイ(Grain proceasing
Company)より手に入れることができるマルト
リフ (Maltrin)−1001であ。00.1m
lの酵素溶液が0.6mlの5%マルトデキストリン溶
液、0.1mlの500mM酢酸ナトリウム溶液(pH
5’)に混合され、そして水を加えて全容量が1mlに
された。この混合物は60℃に30分間保温された後、
混合物を沸騰している水浴中K10〜20分間浸漬する
ことにより反応が終了された。つぎに、グルコースがグ
ルコース分析器〔オハイオ州Yellow Sprin
gsのイエロm−スフ11ングス・インストラメント・
カンパニイ(Yellow Springs Inst
rument Company))を使用するグルコー
ス−オキシダーゼ法により測定された。1グルコアミラ
一ゼ単位は検定条件下で1時間に1gのグルコースを生
産するに要する酵素の量と定義される。
α−アミラーゼの検定
分析されるべき溶液は0.0025Mの塩化カルシウム
溶液で希釈してmllあたね約0.25単位の活性最終
濃度にする。適当に希釈した酵素溶液の1mlを、0.
08Mの酢酸緩衝液(pH6,0)および0.03Mの
塩化カルシウムを含有する1%可溶性澱粉溶液10m1
に添加する。60℃で10分間反応を実施する。反応溶
液1meを、0.02Nの塩酸50rnlを入れた10
0mdの目盛りつきフラスコに注入し、これに0.05
%沃素溶液3m1)を添加した後、水を加えて全容量を
100mdにする。発色する青色を620 nmにおけ
る吸収で測定する。1分間に10mg/澱粉を分解する
に要する酵素の量が1単位と定義される。
溶液で希釈してmllあたね約0.25単位の活性最終
濃度にする。適当に希釈した酵素溶液の1mlを、0.
08Mの酢酸緩衝液(pH6,0)および0.03Mの
塩化カルシウムを含有する1%可溶性澱粉溶液10m1
に添加する。60℃で10分間反応を実施する。反応溶
液1meを、0.02Nの塩酸50rnlを入れた10
0mdの目盛りつきフラスコに注入し、これに0.05
%沃素溶液3m1)を添加した後、水を加えて全容量を
100mdにする。発色する青色を620 nmにおけ
る吸収で測定する。1分間に10mg/澱粉を分解する
に要する酵素の量が1単位と定義される。
IJo 1IJxlυ
上記の式にt−いて、
Do一対照溶液(酵素溶液の代りに水が添加される)の
吸収 Ds−反応溶液の吸収 グルコアミラーゼの製造 細胞外グルコアミラーゼ酵素調製物はクロスト11ジウ
ムsp、’ ATCCNo、 89251およびATC
C,No、 89252の2つの菌株から得られた。
吸収 Ds−反応溶液の吸収 グルコアミラーゼの製造 細胞外グルコアミラーゼ酵素調製物はクロスト11ジウ
ムsp、’ ATCCNo、 89251およびATC
C,No、 89252の2つの菌株から得られた。
培地の調製および試料の培養は、1969年ニューヨー
クのアカデミツク・プレス(Academic Pre
ss)発行、J、 R,Norrisおよびり、 W、
Ribbons編、[微生物学における方法(Met
hods in Microbiology)JVol
、 8B、 p、 117〜132のHungate、
R,E、による「絶対的嫌気性菌の試験管回転培養法
(A Roll Tube Method for C
u1tivation of 5trictAnaer
obes)Jに記載され、またMillerおよびWo
linによりAppl、 Microbiol、1シ9
85(1974)に記載されたような標準の嫌気性菌の
技術を使用することにiり実施された。
クのアカデミツク・プレス(Academic Pre
ss)発行、J、 R,Norrisおよびり、 W、
Ribbons編、[微生物学における方法(Met
hods in Microbiology)JVol
、 8B、 p、 117〜132のHungate、
R,E、による「絶対的嫌気性菌の試験管回転培養法
(A Roll Tube Method for C
u1tivation of 5trictAnaer
obes)Jに記載され、またMillerおよびWo
linによりAppl、 Microbiol、1シ9
85(1974)に記載されたような標準の嫌気性菌の
技術を使用することにiり実施された。
接種物を製造し、そして微生物の保存培養物を維持する
ために用いられる培地は次の組成をもつものであった。
ために用いられる培地は次の組成をもつものであった。
接種用培地
成分 濃度(g/l)
澱粉(リンドナー) 20
KH2PO41,5
NH4C6O,5
Na2HPO4・12H204,2
MgC620,18
酵母エキス 2.0
ビタミン溶液 0.5 ml/l
ミネラル溶液 50 ml/l
L/−tj’スリ/(0,1%) 1 ml/l還元溶
液 40 n、l、/1 ビタミン溶液 ビタミン rng/l ビオチノ 2 葉酸 2 ピリドキシン・HCl 10 リボフラビン 5 チアミンφHC15 ニコチン酸 5 パントテン酸 5 BI2 Q、1 p−アミノ安息香酸 5 チオクト酸 5 還元溶液 成分 量 Na0H(0,2N) 200 mg Na2S” 9H202,5g システィンHCe−■20 2.5g ミネラル溶液 成分 mg/ 100m1 ニトリロトリ酢酸 1500 MgSO4・7H203oo。
液 40 n、l、/1 ビタミン溶液 ビタミン rng/l ビオチノ 2 葉酸 2 ピリドキシン・HCl 10 リボフラビン 5 チアミンφHC15 ニコチン酸 5 パントテン酸 5 BI2 Q、1 p−アミノ安息香酸 5 チオクト酸 5 還元溶液 成分 量 Na0H(0,2N) 200 mg Na2S” 9H202,5g システィンHCe−■20 2.5g ミネラル溶液 成分 mg/ 100m1 ニトリロトリ酢酸 1500 MgSO4・7H203oo。
MnSO4’H2050O
NaC1100゜
FeSO4・7H201o。
C0(NO3)2・6H201o。
CaCl2 100
ZnSO4・7H20100
KAl(So、1)2 10
H3BO31O
Na2MoO4”2H20’ 1O
Na2SeO31
生存可能な細胞は接種用培地で室温において無期限に維
持されることができる。酵素の製造に対し微生物を増殖
するためには、殺菌した接種用培地に細胞が接種され、
嫌気性条件下に56℃でほぼ30時間培養が行なわれた
。これによね迅速に増殖する細胞が生産され、このもの
は醗酵槽に接種するのに用いられた。接種物の容量は醗
酵槽中の増殖培地の容量の1〜5%であった。
持されることができる。酵素の製造に対し微生物を増殖
するためには、殺菌した接種用培地に細胞が接種され、
嫌気性条件下に56℃でほぼ30時間培養が行なわれた
。これによね迅速に増殖する細胞が生産され、このもの
は醗酵槽に接種するのに用いられた。接種物の容量は醗
酵槽中の増殖培地の容量の1〜5%であった。
この培地は次の組成をもつものであった。
増殖培地
g/ 100m1
−7.トリy (Maltrin) 100 a)1プ
ロフロ(PROFLO)b) 5 ブリメツクス(prymex’)” lMgSO4・7
H200,5 CaC12”2H200,06 MnC12・2H200,001 KIq2po4. o、ta (NH4)2HPO41 a)アイオワ州のMuscatineのグレイン・プロ
セスイング・カンバニイ(Grain process
ing Cornpany)より手に入れることができ
る10デキストロース・エクイバL77ト澱粉加水分解
物 b)テキサス州のli’ort Worthのトレダー
ス・オイル・ミル・カンパニイ(Traders Oi
l Mill Company)より手に入れることが
できる綿実粉 C)ライスコンシン州のMi 1waukeeの了ムバ
ー壷ラボラトリーズ(Amber I、aborato
ries)より手に入れることができる酵母エキス 培地のpHは、出発菌株がATCCNo; 89251
のときは6に調整された。このpHは、出発菌株がAT
CCNo。
ロフロ(PROFLO)b) 5 ブリメツクス(prymex’)” lMgSO4・7
H200,5 CaC12”2H200,06 MnC12・2H200,001 KIq2po4. o、ta (NH4)2HPO41 a)アイオワ州のMuscatineのグレイン・プロ
セスイング・カンバニイ(Grain process
ing Cornpany)より手に入れることができ
る10デキストロース・エクイバL77ト澱粉加水分解
物 b)テキサス州のli’ort Worthのトレダー
ス・オイル・ミル・カンパニイ(Traders Oi
l Mill Company)より手に入れることが
できる綿実粉 C)ライスコンシン州のMi 1waukeeの了ムバ
ー壷ラボラトリーズ(Amber I、aborato
ries)より手に入れることができる酵母エキス 培地のpHは、出発菌株がATCCNo; 89251
のときは6に調整された。このpHは、出発菌株がAT
CCNo。
89252のときは7に調整された。酵素の製造はIO
Aの培地を用いた14Ilの醗酵槽中で行なわれた。細
胞外グルコアミラーゼの収量は醗酵ブロスのrneあた
わほぼ0.004単位であった。
Aの培地を用いた14Ilの醗酵槽中で行なわれた。細
胞外グルコアミラーゼの収量は醗酵ブロスのrneあた
わほぼ0.004単位であった。
酵素の精製
和製のグルコアミラーゼは次の手順によh精製された。
醗酵ブロスは第1にガラスウールを通【7て濾過され、
ゴム様の不溶性物質が除去された。ついでシャープレス
の連続渦巻型遠心分離器モデル741−24/8R4(
ペンシルバニア州のPh1ladelphiaのシャー
プL/ス@コーポv−ジョン(SharplesCor
p、))で45ボンド圧力で操作することにより濾液か
ら細胞が除去された。清澄な北澄液に、約1.5%W/
Vの最終濃度になるに十分な塩化カルシウムが添加され
、そして混合物は10分間攪拌された。かさばった沈澱
物は濾過によね除去され、廃棄された。ついで、清澄な
琥珀色の濾液は、マサチュセツツ州のDanversの
アミコンロコーポレーション(Anlicon Cor
p、)より手に入れることのできるアミコン中空繊維(
HP−10)#縮機タイプAC2により濃縮された。濃
縮は容量が500m7と1000rr+A’の間になる
まで行々われ、ついでpHを6にするだめに濃厚な水酸
化アンモニウムが添加された。
ゴム様の不溶性物質が除去された。ついでシャープレス
の連続渦巻型遠心分離器モデル741−24/8R4(
ペンシルバニア州のPh1ladelphiaのシャー
プL/ス@コーポv−ジョン(SharplesCor
p、))で45ボンド圧力で操作することにより濾液か
ら細胞が除去された。清澄な北澄液に、約1.5%W/
Vの最終濃度になるに十分な塩化カルシウムが添加され
、そして混合物は10分間攪拌された。かさばった沈澱
物は濾過によね除去され、廃棄された。ついで、清澄な
琥珀色の濾液は、マサチュセツツ州のDanversの
アミコンロコーポレーション(Anlicon Cor
p、)より手に入れることのできるアミコン中空繊維(
HP−10)#縮機タイプAC2により濃縮された。濃
縮は容量が500m7と1000rr+A’の間になる
まで行々われ、ついでpHを6にするだめに濃厚な水酸
化アンモニウムが添加された。
この水酸化アンモニウムの添加は第2の沈澱を形成させ
、この沈澱物は濾過により除去された。
、この沈澱物は濾過により除去された。
混成しグいるα−アミラーゼ酵素は、 50mMの酢酸
す) Itウムおよび5mMのCa++を含有する酢酸
ナト11ウム緩衝液(pH6)で平衡にされた粒状澱粉
と複合体を形成させることにより上記濾液から除去され
た。Igの澱粉が存在するα−アミラーゼ酵素の300
単位ごとに使用された。澱粉と酵素溶液の混合物は室温
で60分間おだやかに攪拌され、ついで固体が真空濾過
により集められた。濾液中のグルコアミラーゼ酵素は、
さらに次の工程によh精製されて均一にされた。
す) Itウムおよび5mMのCa++を含有する酢酸
ナト11ウム緩衝液(pH6)で平衡にされた粒状澱粉
と複合体を形成させることにより上記濾液から除去され
た。Igの澱粉が存在するα−アミラーゼ酵素の300
単位ごとに使用された。澱粉と酵素溶液の混合物は室温
で60分間おだやかに攪拌され、ついで固体が真空濾過
により集められた。濾液中のグルコアミラーゼ酵素は、
さらに次の工程によh精製されて均一にされた。
1、m、液(910m6)に190.2gの硫酸アンモ
ニウムが添加され、そして混合物は室温で1時間攪拌さ
れた。ついで、aoooo x gで20分間遠心分離
され、固体は廃棄された。この上澄液(1040m#)
に331.8gの硫酸アンモニウムが添加された。この
混合物は沈澱が完全に生成するまで攪拌され、ついでグ
ルコアミラーゼを含有する固体がaoooo x gで
2,0分間遠心分離することにより分離された。この固
体を8QOmlの酢酸す) +1ウム緩衝液(50mM
、 pH5,2)に溶解し、同じ緩衝液の24部分に対
し3回、7℃で48時間透析した。
ニウムが添加され、そして混合物は室温で1時間攪拌さ
れた。ついで、aoooo x gで20分間遠心分離
され、固体は廃棄された。この上澄液(1040m#)
に331.8gの硫酸アンモニウムが添加された。この
混合物は沈澱が完全に生成するまで攪拌され、ついでグ
ルコアミラーゼを含有する固体がaoooo x gで
2,0分間遠心分離することにより分離された。この固
体を8QOmlの酢酸す) +1ウム緩衝液(50mM
、 pH5,2)に溶解し、同じ緩衝液の24部分に対
し3回、7℃で48時間透析した。
2、透析した琥珀色の酵素溶液はニュジャージー州のC
11ftonのホワットマン・インコーボレーテ71−
(Whatman Inc、’)から手に入れること
ができるDEAEセルロースグレードDE−52を充填
した2、8X20cmカラムを通過させた。このセルロ
ースカラムは先ず酢酸ナトリウム緩衝液(50mM。
11ftonのホワットマン・インコーボレーテ71−
(Whatman Inc、’)から手に入れること
ができるDEAEセルロースグレードDE−52を充填
した2、8X20cmカラムを通過させた。このセルロ
ースカラムは先ず酢酸ナトリウム緩衝液(50mM。
pH5,2)で平衡にされた。通過した淡黄色のフラク
ションが採集され、そして精製に用いられた。酵素活性
のほぼ85%がこのフラクションに回収された。
ションが採集され、そして精製に用いられた。酵素活性
のほぼ85%がこのフラクションに回収された。
3、 この酵素溶液は、 10100O0カツトのYM
IO膜を備えたアミコン限外濾過セル〔アミコン・コー
ポレーシE 7 (Amjcon Carp)、 Da
nvers、 マサチューセッツ州〕によね約10ml
の容量に濃縮された。この混合物は10000 X g
で10分間遠心分離することによね清澄にされた。つい
で、この上澄液のAが。
IO膜を備えたアミコン限外濾過セル〔アミコン・コー
ポレーシE 7 (Amjcon Carp)、 Da
nvers、 マサチューセッツ州〕によね約10ml
の容量に濃縮された。この混合物は10000 X g
で10分間遠心分離することによね清澄にされた。つい
で、この上澄液のAが。
100mMのNaClを含有する50mMの酢酸ナトリ
ウム緩衝液で予め平衡にされたアクリルアミドアガロー
スゲル、ウルトロゲル(TJltrogel)AcA5
4[LKBグロダクター(Producter)AB、
Brommalスz−デン〕(D 1.6 X 85
cm カラムの上に装填された。このカラムは同じ緩衝
液で12rnl/時間の流量割合で溶出された。3 m
lのフラクションが集められ、そしてグルコアミラーゼ
活性に対するチェックカ行ナワれた。酵素活性を含有す
るフラクションが一緒にされ、上記の上澄液の残部は同
じやり方でウルトロゲル力ラムで分離処理された。
ウム緩衝液で予め平衡にされたアクリルアミドアガロー
スゲル、ウルトロゲル(TJltrogel)AcA5
4[LKBグロダクター(Producter)AB、
Brommalスz−デン〕(D 1.6 X 85
cm カラムの上に装填された。このカラムは同じ緩衝
液で12rnl/時間の流量割合で溶出された。3 m
lのフラクションが集められ、そしてグルコアミラーゼ
活性に対するチェックカ行ナワれた。酵素活性を含有す
るフラクションが一緒にされ、上記の上澄液の残部は同
じやり方でウルトロゲル力ラムで分離処理された。
4、−緒にされた、上記ゲル濾過からのグルコアミラー
ゼ試料は酢酸塩緩衝液(50mM、 pH5)の3容量
で希釈され、そしてニューシャーシー州のC11fto
nのホワットマンΦインコーポレーテット(Whatm
an’Inc、)から手に入れることができるCM−セ
ルロー、x 、 CM−52の2.3 X 20cmカ
ラムに吸着された。酵素は黄色バンドを形成してこのカ
ラムの頂上部分に吸着された。このカラムは200m1
lの酢酸塩緩衝液で洗浄され、っbでこのものはNaC
4の線状勾配(酢酸塩緩衝液中0−0.8MのNaC1
)で溶出された。酵素は0.14MのNaclで溶出サ
レタ。高い酵素活性をもっこのフラクションは一緒にさ
れた。
ゼ試料は酢酸塩緩衝液(50mM、 pH5)の3容量
で希釈され、そしてニューシャーシー州のC11fto
nのホワットマンΦインコーポレーテット(Whatm
an’Inc、)から手に入れることができるCM−セ
ルロー、x 、 CM−52の2.3 X 20cmカ
ラムに吸着された。酵素は黄色バンドを形成してこのカ
ラムの頂上部分に吸着された。このカラムは200m1
lの酢酸塩緩衝液で洗浄され、っbでこのものはNaC
4の線状勾配(酢酸塩緩衝液中0−0.8MのNaC1
)で溶出された。酵素は0.14MのNaclで溶出サ
レタ。高い酵素活性をもっこのフラクションは一緒にさ
れた。
5、工程4からの酵素調製物は、工程3に記載したよう
にしてアミコンの限外濾過セルを用=−c3mlvc濃
縮され、ウルトロゲ# AcA34 ”?’ 再クロマ
トグラフィー処理されて8m1Jのフラクションが集め
られた。蛋白の溶出が280 nmでの吸収により測定
された。4つの蛋白のピークが観察された。グルコアミ
ラーゼ活性に対する分析は、この酵素が第3のピークに
濃縮されていることを示した。
にしてアミコンの限外濾過セルを用=−c3mlvc濃
縮され、ウルトロゲ# AcA34 ”?’ 再クロマ
トグラフィー処理されて8m1Jのフラクションが集め
られた。蛋白の溶出が280 nmでの吸収により測定
された。4つの蛋白のピークが観察された。グルコアミ
ラーゼ活性に対する分析は、この酵素が第3のピークに
濃縮されていることを示した。
6、工程5からの酵素調製物を含有するフラクションは
、7℃でllの酢酸塩緩衝液に対して透析され、48時
間中に2回緩衝液が変更された。この透析された試料は
、予め酢酸塩緩衝液でpH4,6に平衡にされたC’M
−セファデックスA−50(CM−セファデックスはニ
ューシャーシー州のp i scatawayのファー
マシア・ファイン・ケミカルズ(Pharmacia
l;’ine Chemicals)から手に入れるこ
とができる〕の1.6 X 200mカラムでクロマト
グラフィー処理された。このカラムは100mA’の酢
酸塩緩衝液で洗浄され、そして酵素は0.5MのNaC
lを含有する緩衝液200m1で溶出された。グルコア
ミラーゼは鋭利なピークにお込て溶出された。酵素含有
溶液の蛋白含量は、標準として牛の血清アルブミンを用
いるLowry他の方法[J、 Biol。
、7℃でllの酢酸塩緩衝液に対して透析され、48時
間中に2回緩衝液が変更された。この透析された試料は
、予め酢酸塩緩衝液でpH4,6に平衡にされたC’M
−セファデックスA−50(CM−セファデックスはニ
ューシャーシー州のp i scatawayのファー
マシア・ファイン・ケミカルズ(Pharmacia
l;’ine Chemicals)から手に入れるこ
とができる〕の1.6 X 200mカラムでクロマト
グラフィー処理された。このカラムは100mA’の酢
酸塩緩衝液で洗浄され、そして酵素は0.5MのNaC
lを含有する緩衝液200m1で溶出された。グルコア
ミラーゼは鋭利なピークにお込て溶出された。酵素含有
溶液の蛋白含量は、標準として牛の血清アルブミンを用
いるLowry他の方法[J、 Biol。
Chem −= 工h265−275(1951)〕に
よね測定された。
よね測定された。
精製工程の要約は第1表に示すとおりである。
この工程により酵素は320倍に精製され、1.6単位
/mg蛋白の特別な活性をもつ精製試料が得られた。
/mg蛋白の特別な活性をもつ精製試料が得られた。
等電点クロマトグラフィーは、とのグルコアミラーゼは
pH5,6に等電点をもつことを示した。
pH5,6に等電点をもつことを示した。
第1表
ATCCNo、 89251からのグルコアミラーゼの
精製限外濾過 910 0.0496 0.0077
89.8澱粉親和性 910 0.0454 0.00
75 82.285−80(X(NH4)2SO482
50,11000,027071,2DE−52力5
ム490 0.0620 0.0802 60.5ウル
トロゲルAcA34 174 0.1880 0.04
18 47.8℃M−52カラム81 0.1648
0.1555 26.6ウルトロゲルAcA 54 3
0 0.8133 0.78L3 18.7℃M−−1
=7アデツクス24.8 0.2100 1.628
10.4酵素の分子量 精製したグルコアミラーゼは、SDSの存在ニおいても
また不存在におりても、ポリアクリルアミドゲル電気泳
動させたときに単一の蛋白バンドとしての移動により均
一であることが決定された。この酵素の分子量は、La
emmli、 Nature 227680−685(
1970)に記載の方法により5DS−ポリアクリル了
ミドゲル電気泳動によh 75000であると測定され
た。これは、アスペルギルス・ニガー(Aspergi
llus niger’)菌から誘導されたグルコアミ
ラゼに対し報告された分子量100000(1972年
ニューヨークのアカデミツク・プレス(Acadern
ic press)発行、y、Ginsburg編メン
ヅ・イン・エンチモロジー(Methods in E
nzymology)Vol、 28. T)、 91
1−914のP、azur。
精製限外濾過 910 0.0496 0.0077
89.8澱粉親和性 910 0.0454 0.00
75 82.285−80(X(NH4)2SO482
50,11000,027071,2DE−52力5
ム490 0.0620 0.0802 60.5ウル
トロゲルAcA34 174 0.1880 0.04
18 47.8℃M−52カラム81 0.1648
0.1555 26.6ウルトロゲルAcA 54 3
0 0.8133 0.78L3 18.7℃M−−1
=7アデツクス24.8 0.2100 1.628
10.4酵素の分子量 精製したグルコアミラーゼは、SDSの存在ニおいても
また不存在におりても、ポリアクリルアミドゲル電気泳
動させたときに単一の蛋白バンドとしての移動により均
一であることが決定された。この酵素の分子量は、La
emmli、 Nature 227680−685(
1970)に記載の方法により5DS−ポリアクリル了
ミドゲル電気泳動によh 75000であると測定され
た。これは、アスペルギルス・ニガー(Aspergi
llus niger’)菌から誘導されたグルコアミ
ラゼに対し報告された分子量100000(1972年
ニューヨークのアカデミツク・プレス(Acadern
ic press)発行、y、Ginsburg編メン
ヅ・イン・エンチモロジー(Methods in E
nzymology)Vol、 28. T)、 91
1−914のP、azur。
J、 H,の“グルコアミラーゼの分析“〕およびアス
ペルギルスeオリゼー(Aspergillus or
yzae)からのダルコア々゛ラーゼに対し与えられた
分子量87000 (5aha他。
ペルギルスeオリゼー(Aspergillus or
yzae)からのダルコア々゛ラーゼに対し与えられた
分子量87000 (5aha他。
S tarch、」b307−314(1979))よ
ねやや小さい。
ねやや小さい。
酵素の熱安定性
精製したグルコアミラーゼの熱安定性が2つの他の知ら
れているグルコアミラーゼの熱安定性と比較された。精
製した酵素は12μg/mllの蛋白濃度を与えるため
に酢酸ナトリウム緩衝液(100mM、所望のpH)で
希釈された。この酵素溶液は70℃に保持された。適当
な時間の間隔で(通常5分、10分、20分、30分、
60分、および120分)、小びんは取り出され、直接
秀浴中で冷却された。残存する酵素活性が標準漏示方法
を用いてpH5および60℃で測定された。酵素の半減
−期が回帰線によね計算された。結果は第■表に示され
るが、この結果は、本発明の酵素が、タラロミセス争デ
ュポンティ(Talaromyces duponti
)bよびアスペルギルス・ニガー(Aspergill
us niger’)により生産されるグルコアミラー
ゼよりも701:および1)H5または6においてすぐ
れた安定性をもっことを示す。本発明の酵素はpH6b
よび7o℃で3時間以上の半減期をもつ。
れているグルコアミラーゼの熱安定性と比較された。精
製した酵素は12μg/mllの蛋白濃度を与えるため
に酢酸ナトリウム緩衝液(100mM、所望のpH)で
希釈された。この酵素溶液は70℃に保持された。適当
な時間の間隔で(通常5分、10分、20分、30分、
60分、および120分)、小びんは取り出され、直接
秀浴中で冷却された。残存する酵素活性が標準漏示方法
を用いてpH5および60℃で測定された。酵素の半減
−期が回帰線によね計算された。結果は第■表に示され
るが、この結果は、本発明の酵素が、タラロミセス争デ
ュポンティ(Talaromyces duponti
)bよびアスペルギルス・ニガー(Aspergill
us niger’)により生産されるグルコアミラー
ゼよりも701:および1)H5または6においてすぐ
れた安定性をもっことを示す。本発明の酵素はpH6b
よび7o℃で3時間以上の半減期をもつ。
第■表
70℃でのグルコアミラーゼの熱安定性本発明のグルコ
アミラーゼ (568215(注)a)米国特許第42
47637号b)ニューヨーク州ニューヨーク2 Pe
nn Plazaのザ・エンザイム・デイベロブメント
・コーポレーション(the Enzyme Deve
lopment Co、rp、 )から手に入れること
のできる市販の酵素 グルコアミラーゼ酵素活性が、次の組成:クエン酸塩(
pH8,5)、酢酸塩(pH4〜6)、耶PES (p
H6,5〜7,5)およびトリス−酢酸塩(pHs〜8
.5)の100mM緩衝液を用いて基質のpHが3.5
〜8.5に変えられた以外は、標準の方法によね分析さ
れた。下記に示す種々のpHにおける相対活性は、この
酵素がpH5,0において最高活性をもつことを示す。
アミラーゼ (568215(注)a)米国特許第42
47637号b)ニューヨーク州ニューヨーク2 Pe
nn Plazaのザ・エンザイム・デイベロブメント
・コーポレーション(the Enzyme Deve
lopment Co、rp、 )から手に入れること
のできる市販の酵素 グルコアミラーゼ酵素活性が、次の組成:クエン酸塩(
pH8,5)、酢酸塩(pH4〜6)、耶PES (p
H6,5〜7,5)およびトリス−酢酸塩(pHs〜8
.5)の100mM緩衝液を用いて基質のpHが3.5
〜8.5に変えられた以外は、標準の方法によね分析さ
れた。下記に示す種々のpHにおける相対活性は、この
酵素がpH5,0において最高活性をもつことを示す。
pH最高活性の%
3.5 flt5
4、OTa
4.587
5.0 100
5.5 96
6.0 98
6.5 86
7.0 75
7.5 10
8.05
8.52
酵素に対する最適温度
精製した酵素に関する反応温度の影響が、棟々の温度に
おけるグルコアミラーゼ活性に対する標準の(pH5”
l検定を行なうことによ!2測定された。このpHで、
酵素の作用に対する最適温度は70〜75℃であった。
おけるグルコアミラーゼ活性に対する標準の(pH5”
l検定を行なうことによ!2測定された。このpHで、
酵素の作用に対する最適温度は70〜75℃であった。
酵素の基質特異性
この酵素はマルトデキストリンおよび可溶性澱粉を加水
分解する。この酵素はまたマル) −スを加水分解する
が、加水分解の割合はマルトデキストリンの加水分解の
割合の半分より小であった。この酵素はグルコース単位
間に主として1.、6− 結合を含むロイコノストック
・メーセンテaイデス(L、rneseteroide
s)からのデキストランを加水分解しなかった。
分解する。この酵素はまたマル) −スを加水分解する
が、加水分解の割合はマルトデキストリンの加水分解の
割合の半分より小であった。この酵素はグルコース単位
間に主として1.、6− 結合を含むロイコノストック
・メーセンテaイデス(L、rneseteroide
s)からのデキストランを加水分解しなかった。
ヒ記した試験は、本発明により6と7の間のpH値で澱
粉を加水分解するグルコアミラーゼ酵素が本発明により
提供されることを示す。さらに、このグルコアミラーゼ
はこのpH範囲において十分に熱安定性であわ、反応速
度が十分に速くて有用である温度で澱粉を加水分解する
のに用することを可能にする。
粉を加水分解するグルコアミラーゼ酵素が本発明により
提供されることを示す。さらに、このグルコアミラーゼ
はこのpH範囲において十分に熱安定性であわ、反応速
度が十分に速くて有用である温度で澱粉を加水分解する
のに用することを可能にする。
本発明については、その特別な具体例を用いて記載した
が、さらに酵素および澱粉の加水分解の業界の専問家達
にとって明白であるような改良、適用、または変化が可
能であることは理解されるべきである。
が、さらに酵素および澱粉の加水分解の業界の専問家達
にとって明白であるような改良、適用、または変化が可
能であることは理解されるべきである。
代理人 江 崎 光 好
代理人 江 崎 光 史
第1頁の続き
■Int、CI、’ 識別記号 。
@発明者 ショージョン・エング
庁内整理番号
アメリカ合衆国、イリノイ州、ダウナーズ・グローブ、
ウィントロツブ・ウェイ、7300−6
ウィントロツブ・ウェイ、7300−6
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1) 5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によ
り測定したとき約75000±3000の分子量をもち
、pH6および70℃で8時間より大きい半減期をもち
、約5.0のpHで最高グルコアミラーゼ活性をもち、
pH5で約70〜75℃の温度で最高グルコアミラーゼ
活性をもつ、クロストリジウム・サーモアミロリティク
ム(Clostridium thermoamylo
l兎um+微生物から誘導されたグルコアミラーゼ酵素
。 (2) りoxトリジウJA sp、 (Cloatr
idium sp、)ATCCNo。 39251 、 ATCCNo、 89252、その変
異株、またはグルコアミラーゼ酵素の製造を暗号づける
遺伝情報を上記クロストリジウムSp、微生物よりとり
込む微生物からなる群より選ばれる微生物から誘導され
たグルコアミラーゼ酵素。 (8) 5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によ
り測定したとき約75000十5oonの分子量をもっ
ことを特徴とする特許請求の範囲第2項記載の酵素。 (4)pH6および70℃で3時間よね大きい半減期を
もつことを特徴とする特許請求の範囲第2項記載の酵素
。 (5)約5,0のpHで最高グルコアミラーゼ活性をも
つことを特徴とする特許請求の範囲第2項記載の酵素。 (6) pH5で約70〜75℃の温度で最高グルコア
ミラーゼ活性を起つことを特徴とする特許請求の範囲第
2項記載の酵素。 (7)クロストリジウム・サーモアミロリティクム(C
lostridium thermoamylolyt
icum)の菌株の細胞を栄養培地に培養し、っ−でこ
の培地からグルコアミラーゼ酵素を分離することよりな
る、5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動により測
定したとき約75000±Boooの分子量をもち、p
H6および70℃で3時間より大きい半減期をもち、約
5.0のpHで最高グルコアミラーゼ活性をもち、・T
)H5で約70〜75℃の温度で最高グルコアミラーゼ
活性をもつグルコアミラーゼ酵素の製造法。 (8) りoス) IIジfy ム8p、 (Clos
tridium sp、)ATCCNo。 89251%ATCCNo、 89252、その変異株
、またはグルコアミラーゼ酵素の製造を暗号づける遺伝
情報を上記クロストリジウムSp、微生物よりとね込む
微生物から々る群より微生物を選び、この選んだ微生物
の細胞を栄養培地に培養し、ついでこの培地からグルコ
アミラーゼ酵素を分離するこ・とよhなるグルコアミラ
ーゼの製造法。 (9)マルトデキス) l]ンの水性溶液を、特許請求
の範囲第1項記載のグルコアミラーゼ酵素で、3.5〜
7.0のpHにおいて、マルトデキストリンを加水分解
してグルコースにするのに十分り時間処理することより
なるマルトデキストリンをグルコースに加水分解する方
法。 (10)加水分解が約り5℃〜約80℃の範囲の温度で
、約4.0〜約6.5のpHで行々われる特許請求の範
囲第9項記載の方法。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US524070 | 1983-08-17 | ||
| US06/524,070 US4536477A (en) | 1983-08-17 | 1983-08-17 | Thermostable glucoamylase and method for its production |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS6054680A true JPS6054680A (ja) | 1985-03-29 |
Family
ID=24087640
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP59164348A Pending JPS6054680A (ja) | 1983-08-17 | 1984-08-07 | 新規な熱安定性グルコアミラ−ゼおよびその製造法 |
Country Status (17)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4536477A (ja) |
| EP (1) | EP0135138A3 (ja) |
| JP (1) | JPS6054680A (ja) |
| KR (1) | KR850001528A (ja) |
| AU (1) | AU575844B2 (ja) |
| CA (1) | CA1221326A (ja) |
| DK (1) | DK393284A (ja) |
| ES (2) | ES8506086A1 (ja) |
| FI (1) | FI842916L (ja) |
| GB (1) | GB2145094B (ja) |
| IN (1) | IN160378B (ja) |
| MY (1) | MY101212A (ja) |
| NZ (1) | NZ208420A (ja) |
| PH (1) | PH20176A (ja) |
| SG (1) | SG78187G (ja) |
| YU (1) | YU139984A (ja) |
| ZA (1) | ZA845184B (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS6342695A (ja) * | 1986-08-08 | 1988-02-23 | Hitachi Ltd | 糖の製造方法 |
Families Citing this family (130)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| PH23920A (en) * | 1983-12-20 | 1990-01-23 | Cetus Corp | Glucoamylase cdna |
| US4628031A (en) * | 1984-09-18 | 1986-12-09 | Michigan Biotechnology Institute | Thermostable starch converting enzymes |
| US4622299A (en) * | 1984-11-16 | 1986-11-11 | Grain Processing Corporation | Production of high D.E. syrups |
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