JPS6059213B2 - 改良された酸素放出特性を有する無損傷赤血球を含有する血液 - Google Patents
改良された酸素放出特性を有する無損傷赤血球を含有する血液Info
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-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/48—Preparations in capsules, e.g. of gelatin, of chocolate
- A61K9/50—Microcapsules having a gas, liquid or semi-solid filling; Solid microparticles or pellets surrounded by a distinct coating layer, e.g. coated microspheres, coated drug crystals
- A61K9/5005—Wall or coating material
- A61K9/5063—Compounds of unknown constitution, e.g. material from plants or animals
- A61K9/5068—Cell membranes or bacterial membranes enclosing drugs
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- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
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- A61K35/14—Blood; Artificial blood
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-
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- A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
- A61K9/10—Dispersions; Emulsions
- A61K9/127—Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
-
- A—HUMAN NECESSITIES
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、小さなアロステリック因子、例えばイノシツ
トヘキサリン酸を含有する脂質胞と融合した、優れたα
放出特性を有する赤血球を含有・する血液およびその使
用に関する。
トヘキサリン酸を含有する脂質胞と融合した、優れたα
放出特性を有する赤血球を含有・する血液およびその使
用に関する。
赤血球の主たる機能の1つは分子状酸素を肺から末梢組
織へ輸送することにある。
織へ輸送することにある。
赤血球には、02と可逆的な付加物を形成するヘモグロ
ビン(Hb)が高濃度で含まれている(細胞当たり30
Pg1即ち35.5f/細胞100m1)。α分圧は、
肺では約10077177!Hgであり、酸化されたコ
レステロールから02解離されなければならない毛細管
系では約70wnHgである。生理的条件下では、酸化
されたヘモグロビンの僅か約25%が酸素を放出し、約
75%が静脈血と共に肺にもどる。この様にHb−02
付加物の大部分が02輸送のために利用されていない。
Hbとアロステリック因子の相互作用によつて、毛細管
系において出来る限り高い02分圧を維持しつつ、励−
02付加物からの、生理的に要求される最大02一放出
を達成することができる。
ビン(Hb)が高濃度で含まれている(細胞当たり30
Pg1即ち35.5f/細胞100m1)。α分圧は、
肺では約10077177!Hgであり、酸化されたコ
レステロールから02解離されなければならない毛細管
系では約70wnHgである。生理的条件下では、酸化
されたヘモグロビンの僅か約25%が酸素を放出し、約
75%が静脈血と共に肺にもどる。この様にHb−02
付加物の大部分が02輸送のために利用されていない。
Hbとアロステリック因子の相互作用によつて、毛細管
系において出来る限り高い02分圧を維持しつつ、励−
02付加物からの、生理的に要求される最大02一放出
を達成することができる。
耶のアロステリック特性は、S字状の酸素結合曲線にあ
られれる。
られれる。
その半飽和圧(PO2(112))は02親和性の指標
である。40ないし60%飽和範囲におけるS字状曲線
の傾斜度はHb中の4個の02結合部位の共働性の程度
を示す(ビル係j数〔HlllcOefficienO
:n=2.8−3.2)。
である。40ないし60%飽和範囲におけるS字状曲線
の傾斜度はHb中の4個の02結合部位の共働性の程度
を示す(ビル係j数〔HlllcOefficienO
:n=2.8−3.2)。
ビル係数が増大すると、即ち、S字状結合曲線が急こう
配になる、あるいは、この結合曲線全体が02分圧の高
い方へシフト(移動)すると(いわゆる右シフト)、毛
細管系での02放出が促進され、周囲の組織への酸素の
供給が改善されることになる、赤血球中の2、3−ビス
ホスホグリセレートレベルを高め、そのヘモグロビンと
の結合を高めることによつて、右シフトは実際に達成さ
れる。2、3−ビスホスホグリセレートがI]bに結合
すると02親和性が減少し、02半飽和圧が増大する。
配になる、あるいは、この結合曲線全体が02分圧の高
い方へシフト(移動)すると(いわゆる右シフト)、毛
細管系での02放出が促進され、周囲の組織への酸素の
供給が改善されることになる、赤血球中の2、3−ビス
ホスホグリセレートレベルを高め、そのヘモグロビンと
の結合を高めることによつて、右シフトは実際に達成さ
れる。2、3−ビスホスホグリセレートがI]bに結合
すると02親和性が減少し、02半飽和圧が増大する。
赤血球中の解糖バイパス(副行路)で合成される2、3
−ビスホスホグリセレートは、α欠乏に対する緩慢な適
応のための因子である。2、3−ビスホスホグリセレー
トは、PH7.4において、分離したヘモグロビン(S
trippedhaemO−GiObin)の半飽和圧
を、37℃の場合にはPO2(112)=9.3mHg
から23.7TInHgに、25℃の場合にはPO2(
112)=4.3TfnHgから12.0wmHgに、
それぞれ上昇させる(Imai,K,andYOrle
tani,T.(1975),J.BlOl.Chem
.25OlO93−10980植物組織から単離された
イノシツトヘキサリン酸(フイチン酸:IHP)を分離
したヘモグロビンに結合させると、02親和性が非常に
減少一し、02半飽和圧が高くなる(RuckpauI
,K.etAl.(1971)BlOchim.BlO
phys.Acta236,2ll−221)。
−ビスホスホグリセレートは、α欠乏に対する緩慢な適
応のための因子である。2、3−ビスホスホグリセレー
トは、PH7.4において、分離したヘモグロビン(S
trippedhaemO−GiObin)の半飽和圧
を、37℃の場合にはPO2(112)=9.3mHg
から23.7TInHgに、25℃の場合にはPO2(
112)=4.3TfnHgから12.0wmHgに、
それぞれ上昇させる(Imai,K,andYOrle
tani,T.(1975),J.BlOl.Chem
.25OlO93−10980植物組織から単離された
イノシツトヘキサリン酸(フイチン酸:IHP)を分離
したヘモグロビンに結合させると、02親和性が非常に
減少一し、02半飽和圧が高くなる(RuckpauI
,K.etAl.(1971)BlOchim.BlO
phys.Acta236,2ll−221)。
IHPをヘモグロビンに結合させると、0。半飽和圧は
37℃でP。2(112)=96.4wmHg125℃
でPO2(1ノ2)=48.47077!Hgに、それ
ぞれ上昇する。
37℃でP。2(112)=96.4wmHg125℃
でPO2(1ノ2)=48.47077!Hgに、それ
ぞれ上昇する。
IHPは、2、3−ビスホスホスグリセレートおよびそ
の他のポリスフエートの様に、赤血球膜を浸透すること
ができない。脂質胞は細胞膜の一部を表わす。
の他のポリスフエートの様に、赤血球膜を浸透すること
ができない。脂質胞は細胞膜の一部を表わす。
脂質胞は、細胞原形質膜との融合あるいはエンドシトシ
ス(EndOcytOsis)により細胞内へ浸入する
ことができる(ParahajOpOulOs,D.e
t.al.(1976)Nature252,l63−
165)。この融合は、例えばシナプス伝導、排泄、原
形質膜集合、エンベロープビールスによる感染などの多
くの膜過程において重要な意味を持つている。血球と脂
質胞との融合は、細胞培養において、幻影赤血球を用い
て達成された。MLセル(細胞系一ネズミリンパ腫)を
、コクサツキウイルスA−?に対し高い中和価を有する
IgGを含有している小胞で処理すると、この細胞は、
このウィルスによるその後の感染から保護一される。グ
レゴリアジス(GregOriadis)およびバック
ランド(BuckIand)はインベルターゼ(転化酵
素)を、インベルターゼ欠損マウスマクロファージ(大
食球)に入れるために脂質胞を使用している(Natu
re(1973)235252−253)。しかし、イ
ンビボ実験では、この脂質胞は無差別に全ての細胞に入
つたり、肝臓で素早く分解されるので、明白な成果を得
るには至らなかつた。現在までに、アロステリック因子
またはその他の物質を赤血球に混入させるために脂質胞
を使用したという報告はない。脂質胞は、危険を伴うこ
となく動物に注射し得ることが多くの実験の結果わかつ
ている。分離したHbの構造や機能に及ぼすIHPの影
響については詳細に研究されているが、これまで、無損
傷の(完全な)赤血球中にIFIPを混入させることは
不可能であつたので、無損傷の赤血球中のヘモグロビン
とIHPとの相互作用に関するデータはない。
ス(EndOcytOsis)により細胞内へ浸入する
ことができる(ParahajOpOulOs,D.e
t.al.(1976)Nature252,l63−
165)。この融合は、例えばシナプス伝導、排泄、原
形質膜集合、エンベロープビールスによる感染などの多
くの膜過程において重要な意味を持つている。血球と脂
質胞との融合は、細胞培養において、幻影赤血球を用い
て達成された。MLセル(細胞系一ネズミリンパ腫)を
、コクサツキウイルスA−?に対し高い中和価を有する
IgGを含有している小胞で処理すると、この細胞は、
このウィルスによるその後の感染から保護一される。グ
レゴリアジス(GregOriadis)およびバック
ランド(BuckIand)はインベルターゼ(転化酵
素)を、インベルターゼ欠損マウスマクロファージ(大
食球)に入れるために脂質胞を使用している(Natu
re(1973)235252−253)。しかし、イ
ンビボ実験では、この脂質胞は無差別に全ての細胞に入
つたり、肝臓で素早く分解されるので、明白な成果を得
るには至らなかつた。現在までに、アロステリック因子
またはその他の物質を赤血球に混入させるために脂質胞
を使用したという報告はない。脂質胞は、危険を伴うこ
となく動物に注射し得ることが多くの実験の結果わかつ
ている。分離したHbの構造や機能に及ぼすIHPの影
響については詳細に研究されているが、これまで、無損
傷の(完全な)赤血球中にIFIPを混入させることは
不可能であつたので、無損傷の赤血球中のヘモグロビン
とIHPとの相互作用に関するデータはない。
驚くべきことに、赤血球膜と融合し得る流動性を負荷し
た脂質胞を用いて、赤血球中に■Pの如きアロステリッ
ク因子を混入することができることが見い出された。
た脂質胞を用いて、赤血球中に■Pの如きアロステリッ
ク因子を混入することができることが見い出された。
ここでは、その高に結合定数の故に、それは、ヘモグロ
ビン中のその結合部位において、2、3−ビスホスホグ
リセレートに取つて代わる。この条件下において、赤血
球中の怖は、02親和性が非常に低いアロステリック構
造に変わる。02親和性が低くなると、即ち、赤血球中
のヘモグロビンの02半飽和圧が高くなると、かなりα
分圧が高くても結合02を解離する赤血球の能力が増大
し、従つて組織に対する02供給が改善される。
ビン中のその結合部位において、2、3−ビスホスホグ
リセレートに取つて代わる。この条件下において、赤血
球中の怖は、02親和性が非常に低いアロステリック構
造に変わる。02親和性が低くなると、即ち、赤血球中
のヘモグロビンの02半飽和圧が高くなると、かなりα
分圧が高くても結合02を解離する赤血球の能力が増大
し、従つて組織に対する02供給が改善される。
旧Pを混入された、従つて組織に対して優れた02供給
能を有する赤血球は、次の様な場合に使用することがで
きる。
能を有する赤血球は、次の様な場合に使用することがで
きる。
1吸入する空気の02が分圧が低い場合、即ち、標高の
高い山での登山家および02の希薄な大気中での宇宙航
行家。
高い山での登山家および02の希薄な大気中での宇宙航
行家。
202交換表面が減少した場合、即ち、肺気腫における
肺胞の数の減少。
肺胞の数の減少。
3肺において02拡散に対する抵抗が増大した場合、即
ち、肺炎または喘息など。
ち、肺炎または喘息など。
402輸送能の低下、即ち赤血球減少、あるゆるタイプ
の貧血状態、動静脈短絡。
の貧血状態、動静脈短絡。
5血液循環障害、即ち動脈硬化、血栓塞栓症、器管硬塞
、虚血状態。
、虚血状態。
6ヘモグロビンの高い02親和性、即ち、ヘモグロピン
ロビン突然変異、ヘモグロビン鎖におけるN末端アミノ
酸の化学変化、例えば真性糖尿病、赤血球中の酵素欠損
。
ロビン突然変異、ヘモグロビン鎖におけるN末端アミノ
酸の化学変化、例えば真性糖尿病、赤血球中の酵素欠損
。
7改善された酸素供給による解毒過程の促進。
8保存血液の02親和性を減少させるために、即ち、輸
液、ショック状態。
液、ショック状態。
9癌の放射線治療の改善。
赤血球に混入するアロステリック因子としては、既知の
生理的因子、2、3−ビスホスホグリセレートおよびア
デノシン三燐酸よりもヘモグ七ピンに対する親和性の高
いものが使用される。
生理的因子、2、3−ビスホスホグリセレートおよびア
デノシン三燐酸よりもヘモグ七ピンに対する親和性の高
いものが使用される。
特にイノシツトヘキサリン酸がアロステリック因子とし
て好ましい。その他の糖ホスフェート類、例えばイノシ
ツトペンタリン酸、イノシツトテトラリン酸、イノシツ
トトリリン酸、イノシツトジリン酸およびジホスフアチ
ジルイノシツトジリン酸などもアロステリック因子とし
て使用することができる。その他のアロステリック因子
としては、ポリホスフェート類、例えばヌクレオチドト
リリン酸、ヌクレオチドジリン酸、ヌクレオチドモノリ
ン酸、およびアルコールホスフェートエステル類などが
好適である。
て好ましい。その他の糖ホスフェート類、例えばイノシ
ツトペンタリン酸、イノシツトテトラリン酸、イノシツ
トトリリン酸、イノシツトジリン酸およびジホスフアチ
ジルイノシツトジリン酸などもアロステリック因子とし
て使用することができる。その他のアロステリック因子
としては、ポリホスフェート類、例えばヌクレオチドト
リリン酸、ヌクレオチドジリン酸、ヌクレオチドモノリ
ン酸、およびアルコールホスフェートエステル類などが
好適である。
ある種のヘモグロビン突然変異の場合、例えばチューリ
ッヒ(Zurich)ヘモグロビンの場合、ポリカルボ
ン酸類の如き有機アニオンをアロステリック因子として
使用することができる。
ッヒ(Zurich)ヘモグロビンの場合、ポリカルボ
ン酸類の如き有機アニオンをアロステリック因子として
使用することができる。
最後に、ヘキサシアノ鉄酸塩、ホスフェートまたはクロ
ライドの如き無機アニオン類をアロステリック因子とし
て使用することもできる。
ライドの如き無機アニオン類をアロステリック因子とし
て使用することもできる。
脂質胞はホスファチジルコリン/ホスファチジルセリン
/コレステロールの混合物であつて、これらは10〜5
:4〜1:10〜3のモル比で使用される。
/コレステロールの混合物であつて、これらは10〜5
:4〜1:10〜3のモル比で使用される。
特に好適なモル比は8:2:7であるが、9:1:8の
モル比のもの、および8:4:7のモル比のものも好ま
しい。流動担体としては、通常の流動担体、特に、例え
ば等張ビス−トリス緩衝液の如き既知の緩衝化した生理
的担体が使用される。
モル比のもの、および8:4:7のモル比のものも好ま
しい。流動担体としては、通常の流動担体、特に、例え
ば等張ビス−トリス緩衝液の如き既知の緩衝化した生理
的担体が使用される。
脂質胞は、赤血球膜と融合できなければならない。
完全な赤血球にアロステリック因子を混入させることに
より、赤血球のヘモグロビンを、容易に酸素を放出する
アロステリツクコンホメーシヨンの赤血球に変換するこ
とができる。本発明方法により、血液酸素の効率の良い
利用を約束する改良赤血球を調節することができる。
より、赤血球のヘモグロビンを、容易に酸素を放出する
アロステリツクコンホメーシヨンの赤血球に変換するこ
とができる。本発明方法により、血液酸素の効率の良い
利用を約束する改良赤血球を調節することができる。
この改良赤血球は、アロステリック因子を不可逆的に混
入させることによつて得られる。即ち、脂質胞を赤血球
膜と融合させ、この様にして、導入されたアロステリッ
ク因子を赤血球中のヘモグロビンと結合させるのである
。例えばIHPをアロステリック因子として使用する場
合には、まず脂質胞にIHPを付加し、この脂質胞が赤
血球と融合し、゛その後1HPがヘモグロビンを結合す
る。
入させることによつて得られる。即ち、脂質胞を赤血球
膜と融合させ、この様にして、導入されたアロステリッ
ク因子を赤血球中のヘモグロビンと結合させるのである
。例えばIHPをアロステリック因子として使用する場
合には、まず脂質胞にIHPを付加し、この脂質胞が赤
血球と融合し、゛その後1HPがヘモグロビンを結合す
る。
これによつてヘモグロビンのアロ.ステリツクコンホメ
ーシヨンがおこり、その酸素に対する親和性が変化する
。アロステリック因子と脂質胞の結合物を赤血球へ混入
させる操作は体外で行なう。
ーシヨンがおこり、その酸素に対する親和性が変化する
。アロステリック因子と脂質胞の結合物を赤血球へ混入
させる操作は体外で行なう。
この操作中は、赤血球は採取血液から分離し、アロステ
リック因子を伴つた脂質胞を混入させてこれを改良し、
この改良された赤血球を血漿にもどす。
リック因子を伴つた脂質胞を混入させてこれを改良し、
この改良された赤血球を血漿にもどす。
従つて、改良赤血球を含有する血液を保存することがで
きる。改良赤血球は、生理的担体に含ませ、血液循環に
おける輸注や注射に使用することもできるぃ本発明に係
る改良赤血球の特に好ましい調製法を以下に記載する。
きる。改良赤血球は、生理的担体に含ませ、血液循環に
おける輸注や注射に使用することもできるぃ本発明に係
る改良赤血球の特に好ましい調製法を以下に記載する。
a イノシツトヘキサリン酸を等張緩衝液に、溶液が飽
和するまで溶解する。
和するまで溶解する。
b ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリンおよ
びコレステロールのモル比が10〜5:4〜1:10〜
3である脂質胞混合物をaの溶液にノ 懸濁する。
びコレステロールのモル比が10〜5:4〜1:10〜
3である脂質胞混合物をaの溶液にノ 懸濁する。
c全調製懸濁液を超音波処理または注射法で崩壊させる
。
。
d この混合物を遠心分離し、上層の懸濁液を分離する
。
。
この上層懸濁液はイノシツトヘキサリン酸に富んだ小さ
な脂質胞ど遊離のイノシツトヘキサリン酸を含有する。
e遠心分離によつて血漿から分離したヒト赤血球をdの
上層懸濁液に懸濁する。
な脂質胞ど遊離のイノシツトヘキサリン酸を含有する。
e遠心分離によつて血漿から分離したヒト赤血球をdの
上層懸濁液に懸濁する。
f インキユベーシヨンによりこの脂質胞(小胞)は赤
血球と融合する。
血球と融合する。
g改良された完全な赤血球を等張NaCl溶液または等
張緩衝液で洗浄する。
張緩衝液で洗浄する。
こうして遊離のイノシツトヘキサリン酸を定量的に除去
する。次いでこの調製済赤血球を血漿または代用血液に
懸濁する。以下に添付の図面について説明する。
する。次いでこの調製済赤血球を血漿または代用血液に
懸濁する。以下に添付の図面について説明する。
第1図4℃で保存した赤血球内ヘモグロビンの、時間経
過による02親和性の増大。
過による02親和性の増大。
0。
半飽和圧PO2(1′2)を、CO2の非存在下、25
℃で測定した。実線はACD中で貯蔵した赤血球(RB
C)、破線は0.154モルのNaClを含有するP7
.4の等張0.1A1ビス−トリス緩衝液て貯蔵した赤
血球である。第2図4℃における、貯蔵時間による赤血
球内ヘモグロビンの02結合曲線の左シフト。
℃で測定した。実線はACD中で貯蔵した赤血球(RB
C)、破線は0.154モルのNaClを含有するP7
.4の等張0.1A1ビス−トリス緩衝液て貯蔵した赤
血球である。第2図4℃における、貯蔵時間による赤血
球内ヘモグロビンの02結合曲線の左シフト。
RBCは4℃で、0.154NaC1を含有するPH7
.4の等張0.10r!4ビス−トリス緩衝液中で貯蔵
した。結合等温線はCO2の非存在下、25℃で測定し
た。実線はポリホスフェートを完全に個濁させたRBC
。破線はポリホスフェート個濁の半減期のRBC(τ1
12=9d)、一点破線は新鮮なm℃。矢印は02分圧
30顛Hgにおけるヘモグロビンの不飽和度を示す。第
3図CO2非存在下での25℃における02結合曲線の
PH依存性。RBCは0.154モルNaClを含有す
るPH7.4の等張0.10Mビス−トリス緩衝液中、
4℃で17日間貯蔵した。破線はPH7.72、実線は
PH7.42、一点破線はPH7.O8O矢印は02分
圧30wtHgにおけるヘモグロビンの不飽和を示す。
第4図CO2の非存在下での、25℃における赤血球内
ヘモグロビンのボーア効果。
.4の等張0.10r!4ビス−トリス緩衝液中で貯蔵
した。結合等温線はCO2の非存在下、25℃で測定し
た。実線はポリホスフェートを完全に個濁させたRBC
。破線はポリホスフェート個濁の半減期のRBC(τ1
12=9d)、一点破線は新鮮なm℃。矢印は02分圧
30顛Hgにおけるヘモグロビンの不飽和度を示す。第
3図CO2非存在下での25℃における02結合曲線の
PH依存性。RBCは0.154モルNaClを含有す
るPH7.4の等張0.10Mビス−トリス緩衝液中、
4℃で17日間貯蔵した。破線はPH7.72、実線は
PH7.42、一点破線はPH7.O8O矢印は02分
圧30wtHgにおけるヘモグロビンの不飽和を示す。
第4図CO2の非存在下での、25℃における赤血球内
ヘモグロビンのボーア効果。
0.154モルのNaClを含有するPH7.4の等張
0.10モルビスートリス緩衝液中、4℃で17日間貯
蔵したm℃。
0.10モルビスートリス緩衝液中、4℃で17日間貯
蔵したm℃。
第5図 赤血球への不可逆性のIHP混入。PH7.6
でV2(後記参照)仲介したIHPの混入前後において
、CO2の非存在下、25℃で赤血球の02半飽和圧を
測定した。m℃は0.154モルNaCIを含有するP
H7.4の等張0.10ビス−トリス緩衝液中、4℃で
貯蔵した。実線(−0−0−0−)はRBCのポリホス
フェート個濁曲線。口←→口はPH7.6でIHP混入
、IHP付加したRBCを4℃で貯蔵。Δ←→ΔはPH
7.6でIHP混入、IHP付加RBCを3rCで貯蔵
。IHP混入は標準条件下で行なつた。図中、線1はそ
の左側がポリホスフェート個濁、右側がIHP混入を示
す。第6図CO2非存在下での25℃におけるIHP付
加赤血球のボーア効果。
でV2(後記参照)仲介したIHPの混入前後において
、CO2の非存在下、25℃で赤血球の02半飽和圧を
測定した。m℃は0.154モルNaCIを含有するP
H7.4の等張0.10ビス−トリス緩衝液中、4℃で
貯蔵した。実線(−0−0−0−)はRBCのポリホス
フェート個濁曲線。口←→口はPH7.6でIHP混入
、IHP付加したRBCを4℃で貯蔵。Δ←→ΔはPH
7.6でIHP混入、IHP付加RBCを3rCで貯蔵
。IHP混入は標準条件下で行なつた。図中、線1はそ
の左側がポリホスフェート個濁、右側がIHP混入を示
す。第6図CO2非存在下での25℃におけるIHP付
加赤血球のボーア効果。
点線はPH7.6における■2一仲介によるIHP混入
。実線はPH7.8におけるV2−仲介によるIHP混
入。m℃は0.154モルのNaClを含有するPH7
.4の等張0.10Mビス−トリス緩衝液中、4℃て貯
蔵。IHP混入は標準条件下で行なつた。第7図02結
合等温線の右シフトに及ぼす小胞組成の影響をCO2の
非存在下、25℃、PH7.6で測定した。
。実線はPH7.8におけるV2−仲介によるIHP混
入。m℃は0.154モルのNaClを含有するPH7
.4の等張0.10Mビス−トリス緩衝液中、4℃て貯
蔵。IHP混入は標準条件下で行なつた。第7図02結
合等温線の右シフトに及ぼす小胞組成の影響をCO2の
非存在下、25℃、PH7.6で測定した。
PH7.6におけるIHPの混入は標準条件下て行ない
、細胞をPH7.6の等張緩衝液に懸濁した。一点破線
は0.154モルのNaClを含有するPH7.4の等
張0.10Mビス−トリス緩衝液中19日間貯蔵したR
BCO破線はVl仲介11(P混入後のRBCO二点破
線は新鮮な円℃。実線はV2仲介1FIP混入後の■℃
。矢印は30TmmHgの02分圧下におけるヘモグロ
ビンの不飽和を示す。第8図3rCにおけるIHP付加
小胞の安定性。
、細胞をPH7.6の等張緩衝液に懸濁した。一点破線
は0.154モルのNaClを含有するPH7.4の等
張0.10Mビス−トリス緩衝液中19日間貯蔵したR
BCO破線はVl仲介11(P混入後のRBCO二点破
線は新鮮な円℃。実線はV2仲介1FIP混入後の■℃
。矢印は30TmmHgの02分圧下におけるヘモグロ
ビンの不飽和を示す。第8図3rCにおけるIHP付加
小胞の安定性。
破線はV2小胞。実線はV(3/I)胞。小胞で仲介さ
れたIHPは、PH7.4で、標準条件下でRBCに混
入された。IHP付加赤血球のPO2(112)はCO
2の非存在下、25゜Cで測定した。第9図14C−コ
レステロールの、小胞から完全赤血球への混入の動力学
。
れたIHPは、PH7.4で、標準条件下でRBCに混
入された。IHP付加赤血球のPO2(112)はCO
2の非存在下、25゜Cで測定した。第9図14C−コ
レステロールの、小胞から完全赤血球への混入の動力学
。
インキユベーシヨンは、0.154モルのNaClを含
有するPH7.4の等張0.1Mビス−トリス緩衝液中
、3rCで行なつた。一×−×−×−は14C−コレス
テロールでラベルしたV2/J)胞。−Δ一Δ一Δ−は
14C−コレステロールでラベルしたV.3/l)胞。
−0−0−0−は14C−コレステロールでラベルした
V1小胞。図中1はTll2=45″を表わす。第10
図14C−コレステロールの、V2小胞から完全赤血球
への動力学。
有するPH7.4の等張0.1Mビス−トリス緩衝液中
、3rCで行なつた。一×−×−×−は14C−コレス
テロールでラベルしたV2/J)胞。−Δ一Δ一Δ−は
14C−コレステロールでラベルしたV.3/l)胞。
−0−0−0−は14C−コレステロールでラベルした
V1小胞。図中1はTll2=45″を表わす。第10
図14C−コレステロールの、V2小胞から完全赤血球
への動力学。
放射活性は、FOlch抽出赤血球脂質中で測定した。
インキユベーシヨン条件下は第9図の場合と同じである
。第11図 脂質胞からの、ヘラ細胞(HeIacel
l)による14C−コレステロール取り込みの動力学。
インキユベーシヨン条件下は第9図の場合と同じである
。第11図 脂質胞からの、ヘラ細胞(HeIacel
l)による14C−コレステロール取り込みの動力学。
PH7.4の燐酸緩衝食塩水中、3rCでイワキユベー
ト。−×−×−は小胞V2、−0−0−は小胞■3。第
12図 小胞からのヘラ細胞による14C−コレステロ
ール取り込みのPH依存性。
ト。−×−×−は小胞V2、−0−0−は小胞■3。第
12図 小胞からのヘラ細胞による14C−コレステロ
ール取り込みのPH依存性。
条件は第11図の場合と同じ。−0−0−は14C−コ
レステロールでラベルした■3小胞。−×−×−は同V
2小胞。第13図1HP付加赤血球の02半飽和圧に及
ぼすインキユベーシヨン媒質のPH影響。
レステロールでラベルした■3小胞。−×−×−は同V
2小胞。第13図1HP付加赤血球の02半飽和圧に及
ぼすインキユベーシヨン媒質のPH影響。
PO2(112)はCO2の非存在下25℃で測定した
。第14図 外部媒質中のIHPの存在下での、PH7
.38における、赤血球へのV2仲介1HP混入の動力
学。
。第14図 外部媒質中のIHPの存在下での、PH7
.38における、赤血球へのV2仲介1HP混入の動力
学。
57目間経過(57日年令)のRBCのインキユベーシ
ヨン5は、標準条件下で行なつた。
ヨン5は、標準条件下で行なつた。
PO2(112)はCO2の非存在下、25℃で測定し
た。1第15図V2仲介1HP混入の半減期に及ぼすイ
ンキユベーシヨン媒質のPHの影響。
た。1第15図V2仲介1HP混入の半減期に及ぼすイ
ンキユベーシヨン媒質のPHの影響。
m℃は外部媒質中のIHPと共に標準条件下でインキユ
ベーシヨンした。PO2(112)はCO2の非存在下
25℃で測定した。・第16図 外部媒質中の1HPの
存在下における、PH7.4での、赤血球によるV2一
仲介1HP取り込みの動力学。
ベーシヨンした。PO2(112)はCO2の非存在下
25℃で測定した。・第16図 外部媒質中の1HPの
存在下における、PH7.4での、赤血球によるV2一
仲介1HP取り込みの動力学。
インキユベーシヨンは標準条件下で行なつた。PO2(
112)はCO2の非存在下、25℃で測定した。)第
17図PH7.4において、V2一仲介■Pの赤血球に
よる取り込み前後の02の結合曲線。
112)はCO2の非存在下、25℃で測定した。)第
17図PH7.4において、V2一仲介■Pの赤血球に
よる取り込み前後の02の結合曲線。
インキユベーシヨンは、PH7.6において、標準条件
下で行なつた。脳の臨界02分圧30Tf0nHgに対
する赤血球による02放出を矢印で示した。25℃にお
いて:実験は41年令の赤血球(5%α放出);破線は
IHP一付加赤血球(47%02放出);3TCにおい
て:ー点破線は41年令の赤血球(21%02放出);
三点破線はIHP付加赤血球(80%02放出)。
下で行なつた。脳の臨界02分圧30Tf0nHgに対
する赤血球による02放出を矢印で示した。25℃にお
いて:実験は41年令の赤血球(5%α放出);破線は
IHP一付加赤血球(47%02放出);3TCにおい
て:ー点破線は41年令の赤血球(21%02放出);
三点破線はIHP付加赤血球(80%02放出)。
毛管における赤血球内ヘモグロビンの酸素不飽和の程度
は、静脈の02分圧に依存するばかりではなく、特に赤
血球内のヘモグロビンの酸素親和性に依存する。
は、静脈の02分圧に依存するばかりではなく、特に赤
血球内のヘモグロビンの酸素親和性に依存する。
02親和性をコントロールする赤血球内アロステリック
因子はボーアプロトン、CO2および有機リン酸化合物
、特にDPG(2,3ービスホスホグリセレートー天然
アロステリック因子)およびATP(アデノシン三燐酸
)などである。
因子はボーアプロトン、CO2および有機リン酸化合物
、特にDPG(2,3ービスホスホグリセレートー天然
アロステリック因子)およびATP(アデノシン三燐酸
)などである。
貯蔵赤血球中のDPGおよびATPが個濁すると、次第
に酸素親和性が増大する(Balcerzak,S.e
tal.(1972)Ady.Exp.Med.BlO
l.28433−4777)。
に酸素親和性が増大する(Balcerzak,S.e
tal.(1972)Ady.Exp.Med.BlO
l.28433−4777)。
これは、貯蔵時間(赤血球を4℃で貯蔵)に対して、半
飽和における02分圧(25℃て測定)をプロットした
第1図に示されている。02結合等温線は、CO2の非
存在下、一定のPH(7.4)において測定した。
飽和における02分圧(25℃て測定)をプロットした
第1図に示されている。02結合等温線は、CO2の非
存在下、一定のPH(7.4)において測定した。
これは、半飽和圧に及ぼすこれらアロステリック因子の
影響を除外するためてある。漸進性のポリホスフェート
個濁の終点はPO2(112)=4.2m1tHgによ
つて決定され、これは完全にリン酸塩のない(はだかの
)ヘモグロビンの半飽和圧である。出発点、即ち新鮮な
血液のP。2(112)は懸濁媒質の組成に依存する。
影響を除外するためてある。漸進性のポリホスフェート
個濁の終点はPO2(112)=4.2m1tHgによ
つて決定され、これは完全にリン酸塩のない(はだかの
)ヘモグロビンの半飽和圧である。出発点、即ち新鮮な
血液のP。2(112)は懸濁媒質の組成に依存する。
これらのポリホスフェート個濁カーブから、貯蔵赤血球
の新しい機能パラメーター、いわゆる赤血球内ポリホス
フェートの半減期を求める.ことができる。それは、P
H7.4の等張0.1Mビス−トリス緩衝液中では9日
であり、ACD(酸−クエン酸塩−デキストロースニ保
存溶液)安定化溶液中ては12日である。赤血球中のポ
リホスフェートの個濁は02結合.等温線の左シフトを
もたらし、従つて、酸素放出能の減少となる。
の新しい機能パラメーター、いわゆる赤血球内ポリホス
フェートの半減期を求める.ことができる。それは、P
H7.4の等張0.1Mビス−トリス緩衝液中では9日
であり、ACD(酸−クエン酸塩−デキストロースニ保
存溶液)安定化溶液中ては12日である。赤血球中のポ
リホスフェートの個濁は02結合.等温線の左シフトを
もたらし、従つて、酸素放出能の減少となる。
4℃で貯蔵した赤血球の02結合曲線の左シフトおよび
酸素放出能の減少を25℃で測定した結果を第2図に示
す。
酸素放出能の減少を25℃で測定した結果を第2図に示
す。
02分圧30mHgにおいては、新一鮮な赤血球の不飽
和度は11%であるが、ポリホスフェートを半分個濁し
た赤血球の不飽和度は僅かに1%である。
和度は11%であるが、ポリホスフェートを半分個濁し
た赤血球の不飽和度は僅かに1%である。
ポリホスフェート個濁赤血球の02結合曲線の左シフト
は組織への酸素輸送を損なうこととなる。
は組織への酸素輸送を損なうこととなる。
したがつて、貯蔵血液(DPG欠乏)を大量に輸液する
と、筋肉のPHが低下し、血漿中の乳酸レベルが増大し
、輸液症候群として知られている血圧低下をきたす(K
evy,S.V.etal.(1972)Adv.Ex
p.Med.BlOl.2&511−516)。このP
H低下は、第3図に示す様に、部分的にのみこの左シフ
トに反作用的に働く。02分圧30wnHgにおいてP
Hが7.42から7.08にかわると、赤血球(PH7
.4の等張・0.1Mビス−トリス緩衝液中、4℃で1
7日間貯蔵)の酸素不飽和度は1%から5%に増える。
と、筋肉のPHが低下し、血漿中の乳酸レベルが増大し
、輸液症候群として知られている血圧低下をきたす(K
evy,S.V.etal.(1972)Adv.Ex
p.Med.BlOl.2&511−516)。このP
H低下は、第3図に示す様に、部分的にのみこの左シフ
トに反作用的に働く。02分圧30wnHgにおいてP
Hが7.42から7.08にかわると、赤血球(PH7
.4の等張・0.1Mビス−トリス緩衝液中、4℃で1
7日間貯蔵)の酸素不飽和度は1%から5%に増える。
しかし、PH7.46において、新鮮な赤血球において
観察される11%の不飽和度はボーア効果によつてのみ
達成されるのではない(第2図)。等張0.1Mビス−
トリスおよびトリス緩衝液にそれぞれ懸濁した貯蔵赤血
球の02親和性に及ぼすPHの影響(ボーア効果)は、
PH7.Oないし7.8の範囲に関して第4図に示して
ある。4℃で17日間貯蔵した赤血球を用いて、CO2
の非存在下、25℃で、02結合曲線を測定した。
観察される11%の不飽和度はボーア効果によつてのみ
達成されるのではない(第2図)。等張0.1Mビス−
トリスおよびトリス緩衝液にそれぞれ懸濁した貯蔵赤血
球の02親和性に及ぼすPHの影響(ボーア効果)は、
PH7.Oないし7.8の範囲に関して第4図に示して
ある。4℃で17日間貯蔵した赤血球を用いて、CO2
の非存在下、25℃で、02結合曲線を測定した。
これらの古い赤血球は、ヘモグロビンの02親和性にお
けるポリホスフェート効果の半分以上を失つている(第
1図参照)。ボーア効果、−ΔPO2(112)/ΔP
Hは021モル当たり0.53プロトンになる。結合酸
素と共に放出されるボーアプロトンの数は、既に75%
のポリホスフェート効果が失われている場合は少くとも
RBC年令が34日までは一定である。従つて、貯蔵、
即ちポリホスフェートの個濁は赤血球のボーア効果に影
響を及ぼさない。実施例 人血の採集及び貯蔵 若い健康な志願者から100m1の血液をとり、ACD
安定化剤50mtを含む250mL容量のバイオフラス
コ(BiOtest−Serum−■Nstituce
,Frnlnkfurta.Main)に入れる。
けるポリホスフェート効果の半分以上を失つている(第
1図参照)。ボーア効果、−ΔPO2(112)/ΔP
Hは021モル当たり0.53プロトンになる。結合酸
素と共に放出されるボーアプロトンの数は、既に75%
のポリホスフェート効果が失われている場合は少くとも
RBC年令が34日までは一定である。従つて、貯蔵、
即ちポリホスフェートの個濁は赤血球のボーア効果に影
響を及ぼさない。実施例 人血の採集及び貯蔵 若い健康な志願者から100m1の血液をとり、ACD
安定化剤50mtを含む250mL容量のバイオフラス
コ(BiOtest−Serum−■Nstituce
,Frnlnkfurta.Main)に入れる。
この試料を4℃で保存する。ヒト赤血球の採集及び貯蔵
若い発端者から採集した300mtの血液を、凝血を防
ぐためにへバリンまたはクエン酸ナトリウムを入れたプ
ラスチック袋に集める。
ぐためにへバリンまたはクエン酸ナトリウムを入れたプ
ラスチック袋に集める。
この血液を氷浴で冷却し、その後の操作を4℃で行なう
。23500Xgで2紛間遠心分離し、赤血球を血漿か
ら分離する(SOrvaIl,TypeRC−?;RO
tOrSS34;12000r′Pm)。
。23500Xgで2紛間遠心分離し、赤血球を血漿か
ら分離する(SOrvaIl,TypeRC−?;RO
tOrSS34;12000r′Pm)。
集めた赤血球をPH7.4の等張食塩ビス−トリス緩衝
液(0.10モルビスートリス、0.15モルNaCl
)中に懸濁し、遠心分離する。この洗浄操作を3回くり
返す。最後に、集めた赤血球をPH7.4の等張食塩ビ
ス−トリス緩衝液300mtに懸濁し4℃で貯蔵する。
赤血球懸濁液のPH測定及び調整 PH7.4の等張0.1M緩衝液およびACD中で貯蔵
した赤血球を、それぞれ、8000Xgで2分間、室温
で遠心分離する(EppendOrfCentrifu
ge,Hype32OO:12000r′Pm)。
液(0.10モルビスートリス、0.15モルNaCl
)中に懸濁し、遠心分離する。この洗浄操作を3回くり
返す。最後に、集めた赤血球をPH7.4の等張食塩ビ
ス−トリス緩衝液300mtに懸濁し4℃で貯蔵する。
赤血球懸濁液のPH測定及び調整 PH7.4の等張0.1M緩衝液およびACD中で貯蔵
した赤血球を、それぞれ、8000Xgで2分間、室温
で遠心分離する(EppendOrfCentrifu
ge,Hype32OO:12000r′Pm)。
赤血球懸濁液の所望のPHは、緩衝媒質をくり返し交換
することによつて調節する。血液を所望の緩衝液に懸濁
し、再び遠心分離する。この操作を一定のPHになるま
でくり返す。PHは、ガラス電極を用いで、25℃で測
定する(IngOld,Frankfurta,Mai
n,Typ.4O6−M3,a=35Tfn)。PH測
定の正確度は±0.02単位である。IHP付加脂質胞
の調製 IHPをPH7.4の等張ビス−トリス緩衝液(4).
10Mビス−トリス、0.15モルNaCりに、例えば
室温−ないし50℃で、飽和するまで溶解させる。
することによつて調節する。血液を所望の緩衝液に懸濁
し、再び遠心分離する。この操作を一定のPHになるま
でくり返す。PHは、ガラス電極を用いで、25℃で測
定する(IngOld,Frankfurta,Mai
n,Typ.4O6−M3,a=35Tfn)。PH測
定の正確度は±0.02単位である。IHP付加脂質胞
の調製 IHPをPH7.4の等張ビス−トリス緩衝液(4).
10Mビス−トリス、0.15モルNaCりに、例えば
室温−ないし50℃で、飽和するまで溶解させる。
ホスファチジルコリン(PC)、ホスファチジルセリン
(PS)、コレステロール(CH)からなる脂質混合物
(モル比;PC:PS:CH=8:2:7、表1参照)
をこの溶液に懸濁し、約50℃で、窒素気流下で4紛間
超音波処理する。小胞調製における温度は、緩衝液の氷
点およびポリホスフェートの熱安定性によつてのみ制限
される。この超音波処理は、テタン侵入探触子(Tit
andipprObellOKHz)を有する超音粉砕
機(SchOller,Typel25,Frankf
urta,Main)を用いで行なう。超音波処理は、
好ましくは100W/cl以上のエネルギーで効果的に
行なうことができる。超音波処理の後、小胞懸濁液を、
25℃で、超遠心分離機(Beckmann,TypL
5−65,R0t0r60)を用いて100000×v
で1時間遠心分離する。上澄液は、直径が500Aある
いはそれ以下である小脂質胞を含有している。この小胞
が形成される時、その小胞は脂質が懸濁しているその溶
液を包含する。ホスファチジルセリンは牛の脳から(K
Och上Ight,GB)、ホスファチジルコリンは卵
横から(LipidSpecialties,BOs;
0n,USA)のものである。コレステロールおよびイ
ノシツトヘキサリン酸のナトリウム塩はそれぞれMer
ck(Darmstadt)およびSigma(Mur
lchen)製のものである。全ての脂質はカラムクロ
マトグラフィーによつて精製し、その純度を薄層クロマ
トグラフィーによつて検査した。1nm01/eの脂質
から二重層(Bilayer)の脂質胞(小胞、d≦5
00A)が2×1011得られる。
(PS)、コレステロール(CH)からなる脂質混合物
(モル比;PC:PS:CH=8:2:7、表1参照)
をこの溶液に懸濁し、約50℃で、窒素気流下で4紛間
超音波処理する。小胞調製における温度は、緩衝液の氷
点およびポリホスフェートの熱安定性によつてのみ制限
される。この超音波処理は、テタン侵入探触子(Tit
andipprObellOKHz)を有する超音粉砕
機(SchOller,Typel25,Frankf
urta,Main)を用いで行なう。超音波処理は、
好ましくは100W/cl以上のエネルギーで効果的に
行なうことができる。超音波処理の後、小胞懸濁液を、
25℃で、超遠心分離機(Beckmann,TypL
5−65,R0t0r60)を用いて100000×v
で1時間遠心分離する。上澄液は、直径が500Aある
いはそれ以下である小脂質胞を含有している。この小胞
が形成される時、その小胞は脂質が懸濁しているその溶
液を包含する。ホスファチジルセリンは牛の脳から(K
Och上Ight,GB)、ホスファチジルコリンは卵
横から(LipidSpecialties,BOs;
0n,USA)のものである。コレステロールおよびイ
ノシツトヘキサリン酸のナトリウム塩はそれぞれMer
ck(Darmstadt)およびSigma(Mur
lchen)製のものである。全ての脂質はカラムクロ
マトグラフィーによつて精製し、その純度を薄層クロマ
トグラフィーによつて検査した。1nm01/eの脂質
から二重層(Bilayer)の脂質胞(小胞、d≦5
00A)が2×1011得られる。
2×1011の脂質胞と1Cfの赤血球をインキュベー
トするが、後記する様にそれ以外の比率でもよい。
トするが、後記する様にそれ以外の比率でもよい。
ヒト赤血球へのイノシツトヘキサリン酸の混入インビト
ロ実験用として、200μeの赤血球懸濁液を室温で、
8000Xyで2分間遠心分離する(EppendOr
fCentr′Ifuge,Type32OO,l2O
OOrpm)。
ロ実験用として、200μeの赤血球懸濁液を室温で、
8000Xyで2分間遠心分離する(EppendOr
fCentr′Ifuge,Type32OO,l2O
OOrpm)。
要すれば、集めた血球を洗浄し、上記した如く所望のP
Hに調節し、次いで所望のPHの“等張0.1M緩衝液
200μeに懸濁する。これに同量の所望のPHの脂質
胞懸濁液を加える。この赤血球を1時間、37℃でイン
キュベートする。赤血球は、一定のPHになるまで、等
張0.1M緩衝液でくり返し洗浄する。上澄液につき、
もはや遊離のIHPが検出されなくなるまでCa2+に
よつて沈降テストを行なう。PH範囲7ないし8で効力
があり、赤血球の構造的、形態学的および機能的統合性
に影響を与えない緩衝液であれば、いかなるものであつ
ても使用することができる。702結合曲線の測定 02結合曲線は、迅速分散技術により、25℃で測定し
た(Sick,H.andGersOnde,K.(1
969),Arlalyt.BlOchem.3236
2−376;′Sick,H.andGersOnde
,K.(1972),47,46−56)。
Hに調節し、次いで所望のPHの“等張0.1M緩衝液
200μeに懸濁する。これに同量の所望のPHの脂質
胞懸濁液を加える。この赤血球を1時間、37℃でイン
キュベートする。赤血球は、一定のPHになるまで、等
張0.1M緩衝液でくり返し洗浄する。上澄液につき、
もはや遊離のIHPが検出されなくなるまでCa2+に
よつて沈降テストを行なう。PH範囲7ないし8で効力
があり、赤血球の構造的、形態学的および機能的統合性
に影響を与えない緩衝液であれば、いかなるものであつ
ても使用することができる。702結合曲線の測定 02結合曲線は、迅速分散技術により、25℃で測定し
た(Sick,H.andGersOnde,K.(1
969),Arlalyt.BlOchem.3236
2−376;′Sick,H.andGersOnde
,K.(1972),47,46−56)。
結果小胞と融合した後の貯蔵したヒト赤血球のボーア効
果PH7.4の等張緩衝媒質中、4℃で40日間貯蔵さ
れた、そして部分的にポリホスフェートが個濁したヒト
赤血球の02半飽和圧、それと共に(n=2.8)ボー
ア効果は、37℃で1時間、PH7.6の等張緩衝液中
で小胞V2とインキユベーシヨンした後は、顕著な変化
をしなかつた。
果PH7.4の等張緩衝媒質中、4℃で40日間貯蔵さ
れた、そして部分的にポリホスフェートが個濁したヒト
赤血球の02半飽和圧、それと共に(n=2.8)ボー
ア効果は、37℃で1時間、PH7.6の等張緩衝液中
で小胞V2とインキユベーシヨンした後は、顕著な変化
をしなかつた。
さらに、赤血球を他の脂質組成を有する小胞(V1およ
びV3)と共にインキュベートした場合も、赤血球内へ
ヘモグロビンの02結合パラメーターに影響を与えなか
つた。小胞で仲介されて(V2)イノシツトヘキサリン
酸を混入された後の、貯蔵されたヒト赤血球のボーア効
実現在までに知られている最も強力なヘモグロビンのア
ロステリック因子であるIHPは、02結合曲線の右シ
フトで示される様に、ヘモグロビンの02曲線親和性を
減少する。
びV3)と共にインキュベートした場合も、赤血球内へ
ヘモグロビンの02結合パラメーターに影響を与えなか
つた。小胞で仲介されて(V2)イノシツトヘキサリン
酸を混入された後の、貯蔵されたヒト赤血球のボーア効
実現在までに知られている最も強力なヘモグロビンのア
ロステリック因子であるIHPは、02結合曲線の右シ
フトで示される様に、ヘモグロビンの02曲線親和性を
減少する。
18を合成することができないヒト赤血球は、この因子
を含有している脂質胞と融合する間に、このポリホスフ
ェートを付加され得る。
を含有している脂質胞と融合する間に、このポリホスフ
ェートを付加され得る。
本発明において、例示的に記載されているIHPの混入
についての実験は、基本的には、全てのアロステリック
因子、例えば糖ポリホスフェート、例えばイノシツトペ
ンタリン酸、イノシツトテトラリン酸、イノシツトトリ
リン酸、イノシツトジリン酸、およびジホスフアテジル
イノシツトジリン酸、さらにポリホスフェート、例えば
ヌクレオチドトI八ジ、およびモノホスフェート、アル
コールポリホスフェートエステル類などについても同じ
様に適用し得る。赤血球膜を通過し得る、因子としての
特性をもつた無機アニオン類(ヘキサシアノ鉄酸塩(■
)、ポリホスフェートおよびクロリド)も使用すること
ができる。.突然変異を示すヘモグロビンの特殊な場合
には、ポリカルボン酸の如き有機アニオンがアロステリ
ック因子として使用し得る。ポリカルボン酸の例として
は、マレイン酸がチューリッヒヘモグロビンの場合に使
用し得る。PH7.4の等張緩衝媒質中、4℃で25日
間貯蔵したヒト赤血球(PO2(112)=6.0T1
0!THy)を、PH7.6に調節し(PO2(112
)=4.5薗Hf)、次いて、1HP付加V2小胞と共
に、0.19モルのIHPを含有しているPH7.6の
等張0.1モルトリス緩衝液中、3rCで1時間インキ
ュベートする。
についての実験は、基本的には、全てのアロステリック
因子、例えば糖ポリホスフェート、例えばイノシツトペ
ンタリン酸、イノシツトテトラリン酸、イノシツトトリ
リン酸、イノシツトジリン酸、およびジホスフアテジル
イノシツトジリン酸、さらにポリホスフェート、例えば
ヌクレオチドトI八ジ、およびモノホスフェート、アル
コールポリホスフェートエステル類などについても同じ
様に適用し得る。赤血球膜を通過し得る、因子としての
特性をもつた無機アニオン類(ヘキサシアノ鉄酸塩(■
)、ポリホスフェートおよびクロリド)も使用すること
ができる。.突然変異を示すヘモグロビンの特殊な場合
には、ポリカルボン酸の如き有機アニオンがアロステリ
ック因子として使用し得る。ポリカルボン酸の例として
は、マレイン酸がチューリッヒヘモグロビンの場合に使
用し得る。PH7.4の等張緩衝媒質中、4℃で25日
間貯蔵したヒト赤血球(PO2(112)=6.0T1
0!THy)を、PH7.6に調節し(PO2(112
)=4.5薗Hf)、次いて、1HP付加V2小胞と共
に、0.19モルのIHPを含有しているPH7.6の
等張0.1モルトリス緩衝液中、3rCで1時間インキ
ュベートする。
赤血球にIHPが混入した後、0拌飽和圧は急激に上昇
して3.2倍となり(PO2(112)=14.3?H
y)、新鮮な赤血球の価を超える(PO2(112)=
10.55TfIItHfであつて、これの1.4倍)
。次いでこの■P付加した赤血球をPH7.6の等張緩
衝媒質中、4℃で6日間蔵する。この場合、半飽和圧は
一定であつた。4℃でさらに4日間貯蔵した後、IHP
付加赤血球を7PH7.28に変えると、PO2(11
2)は再び32.1mHyに増加した。
して3.2倍となり(PO2(112)=14.3?H
y)、新鮮な赤血球の価を超える(PO2(112)=
10.55TfIItHfであつて、これの1.4倍)
。次いでこの■P付加した赤血球をPH7.6の等張緩
衝媒質中、4℃で6日間蔵する。この場合、半飽和圧は
一定であつた。4℃でさらに4日間貯蔵した後、IHP
付加赤血球を7PH7.28に変えると、PO2(11
2)は再び32.1mHyに増加した。
他の実験では、4℃で36日間貯蔵した洗浄赤血球をP
H7.6に調節し、上記と同様にして1HPを混入させ
た。PO2(112)は14.『Hyに増大した。IH
P付加細胞を37℃で2日間貯蔵し・た。これらのIH
P付加血球を3γCで2日貯蔵した後も02親和性の変
化は観察されなかつた。4℃で貯蔵する間に生理的なポ
リホスフェートが半分個濁する正常の赤血球とは異なり
、IHP付加赤血球は、一定のPO2(112)値を示
す(第5図参b照)ことからもわかる様に、少くとも9
日間はIHPを加水分解しないと思われる。
H7.6に調節し、上記と同様にして1HPを混入させ
た。PO2(112)は14.『Hyに増大した。IH
P付加細胞を37℃で2日間貯蔵し・た。これらのIH
P付加血球を3γCで2日貯蔵した後も02親和性の変
化は観察されなかつた。4℃で貯蔵する間に生理的なポ
リホスフェートが半分個濁する正常の赤血球とは異なり
、IHP付加赤血球は、一定のPO2(112)値を示
す(第5図参b照)ことからもわかる様に、少くとも9
日間はIHPを加水分解しないと思われる。
従つて、この様に処理された赤血球は、実質的に長期間
貯蔵することができる。このほか、IHP付加赤血球は
、非処理血球より大きなボーア効果を示す(第6図)。
貯蔵することができる。このほか、IHP付加赤血球は
、非処理血球より大きなボーア効果を示す(第6図)。
遊離1HPの存在下、PH7.6でIHP付加V2小胞
とインキュベートし、それぞれの等張0.1M緩衝液て
洗浄することによつて所望のPHに調節した赤血球の、
CO2非存在下におけるボーア効果は、021モル当た
り、−ΔPO2(112)/ΔPH=1.20プロトン
となる。
とインキュベートし、それぞれの等張0.1M緩衝液て
洗浄することによつて所望のPHに調節した赤血球の、
CO2非存在下におけるボーア効果は、021モル当た
り、−ΔPO2(112)/ΔPH=1.20プロトン
となる。
IHP付加赤血球のボーアプロトン放出は正常の新鮮な
赤血球の3倍大きい。従つて、IHP付加血球は組織に
おいてより効果的に酸素を放出し、肺に於いてより効果
的に酸素を摂取する。PH7.8においては、遊離1H
Pの存在下でのIHP付加V2小胞によるIHl)混入
はもつと効果的である。IHP付加血球のPHを7.4
に変えると、理論的に期待されるPO2(112)=3
5Tfr!NH′への増大が観察される(第6図参照)
。一方、PH7.8ては、混入後、ボーア効果は小さく
なる様に思われる(021モル当たり、−ΔPO2(1
12)/ΔPH=0.9プロトン)。ヒト赤血球による
イノシツトヘキサリン酸摂取に及ぼす小胞組成の影響ヒ
ト赤血球により摂取されたIHPの量は、02結合曲線
の右シフトの大きさとして測定される。
赤血球の3倍大きい。従つて、IHP付加血球は組織に
おいてより効果的に酸素を放出し、肺に於いてより効果
的に酸素を摂取する。PH7.8においては、遊離1H
Pの存在下でのIHP付加V2小胞によるIHl)混入
はもつと効果的である。IHP付加血球のPHを7.4
に変えると、理論的に期待されるPO2(112)=3
5Tfr!NH′への増大が観察される(第6図参照)
。一方、PH7.8ては、混入後、ボーア効果は小さく
なる様に思われる(021モル当たり、−ΔPO2(1
12)/ΔPH=0.9プロトン)。ヒト赤血球による
イノシツトヘキサリン酸摂取に及ぼす小胞組成の影響ヒ
ト赤血球により摂取されたIHPの量は、02結合曲線
の右シフトの大きさとして測定される。
即ち、標準条件下で測定された02半飽和圧は、混入効
率の1つの指標である。このIHP摂取効率は、小胞の
脂質組成に著しく依存している。第7図には、V1およ
びV2をPH7.6でインキュベートした後の、02結
合曲線の右シフトが例示されている。■2小胞は最も大
きな右シフトを示し、3−Hyにおおける不飽和度は1
4%である。19日年令の赤血球はこの02圧では不飽
和度は零,であり、新鮮な赤血球では不飽和度は5%で
ある。V2小胞によりIHPを混入したものは、30w
r1nHyにおける、正常な赤血球の02放出にくらべ
約3倍改善されている。V2とV3/J)胞は、同じだ
けの赤血球によるIHP摂取を促すので、02結合曲線
の右シフトは同じである。IHPを含有するV1、V2
およびV3小胞の外部媒質中にLHPが存在しなくても
、その混入の半減期(Tll2)に関してはかわりはな
く、3紛である。
率の1つの指標である。このIHP摂取効率は、小胞の
脂質組成に著しく依存している。第7図には、V1およ
びV2をPH7.6でインキュベートした後の、02結
合曲線の右シフトが例示されている。■2小胞は最も大
きな右シフトを示し、3−Hyにおおける不飽和度は1
4%である。19日年令の赤血球はこの02圧では不飽
和度は零,であり、新鮮な赤血球では不飽和度は5%で
ある。V2小胞によりIHPを混入したものは、30w
r1nHyにおける、正常な赤血球の02放出にくらべ
約3倍改善されている。V2とV3/J)胞は、同じだ
けの赤血球によるIHP摂取を促すので、02結合曲線
の右シフトは同じである。IHPを含有するV1、V2
およびV3小胞の外部媒質中にLHPが存在しなくても
、その混入の半減期(Tll2)に関してはかわりはな
く、3紛である。
V1およびV3は、透析したIHP付加V2小胞に一つ
いて測定したIHP効果の半分以下である。これは、V
IおよびV3の安定性が低いことを示している。第8図
には、■2と■3の安定性の違いが示してある。■2の
安定性の半減期は3日であり、V3のそれは、1.5日
である。小胞の血球への混入14C−コレステロールま
たは14C−ホスファチジルコリンでラベルした小胞V
1、V2および■3を用いて、脂質胞の完全赤血球への
混入を行なつた。
いて測定したIHP効果の半分以下である。これは、V
IおよびV3の安定性が低いことを示している。第8図
には、■2と■3の安定性の違いが示してある。■2の
安定性の半減期は3日であり、V3のそれは、1.5日
である。小胞の血球への混入14C−コレステロールま
たは14C−ホスファチジルコリンでラベルした小胞V
1、V2および■3を用いて、脂質胞の完全赤血球への
混入を行なつた。
これを、培養ヘラ細胞への同じ小胞の混入と比較した。
放射活性を、完全赤血球(可溶化とルマツク(Luma
c)試薬一式を用いた漂白による)及び全脂質ホルヒ(
FOIch)抽出物について測定した。混入は4時間を
要して行なつた。結果を第9図及び第10図に示す。第
9図は完全赤血球を用いた場合の小胞V1、V2および
■3についての結果を示す。インキユベーシヨン媒質は
、PH7.4の等張0.1Mビス−トリス緩衝液中10
m1のIlIP付加小胞と10m1(7)RBCを含有
している。1012へ40、60、901120、18
0および24紛後に試料を採取し、カウントした。混入
の半減期は、V2小胞(これはまたRBCにおいても最
高の放射活性レベルを示す)については4紛、Vlおよ
び■2については35分であつた。RBC中に見い出さ
れる放射活性が必ずしも小胞の混入を意味するものでは
ないことに注意しなければならない。何故なら、小胞と
赤血球の間でコレステロールが交換することはよく知ら
れているからである。(BlOj,B,anpZllv
ersmit,D.(1977)BiOchemist
ryl6,3943−3948)。m℃脂質抽出物にお
いて、V2小胞を用いた場合Rll2は3紛であること
がわかつた(第10図参照)。■2およびV別)胞をヘ
ラ細胞に混入する場合も同じパターンが得られる(第1
1図)。ヘラ細胞と小胞とのインキユベーシヨンは前記
と同じ条件下で行なつた。別の実験では、ヘラ細胞を、
7ないし8の種々のPH値において、等張緩衝液中14
C−コレステロール含有小胞と共にインキュベートした
。第12図は、血球による、ラベルした脂質の取り込み
は、PHを7ないし8の間で変化させてもほとんど影響
されないことを示している。放射性物質でラベルした小
胞とインキュベートした時の赤血球による放射活性の取
り込みの半減期は、.透析したIHP付加小胞とインキ
ュベートした赤血球によるIHP摂取の半減期と同じで
である(第16図)。
放射活性を、完全赤血球(可溶化とルマツク(Luma
c)試薬一式を用いた漂白による)及び全脂質ホルヒ(
FOIch)抽出物について測定した。混入は4時間を
要して行なつた。結果を第9図及び第10図に示す。第
9図は完全赤血球を用いた場合の小胞V1、V2および
■3についての結果を示す。インキユベーシヨン媒質は
、PH7.4の等張0.1Mビス−トリス緩衝液中10
m1のIlIP付加小胞と10m1(7)RBCを含有
している。1012へ40、60、901120、18
0および24紛後に試料を採取し、カウントした。混入
の半減期は、V2小胞(これはまたRBCにおいても最
高の放射活性レベルを示す)については4紛、Vlおよ
び■2については35分であつた。RBC中に見い出さ
れる放射活性が必ずしも小胞の混入を意味するものでは
ないことに注意しなければならない。何故なら、小胞と
赤血球の間でコレステロールが交換することはよく知ら
れているからである。(BlOj,B,anpZllv
ersmit,D.(1977)BiOchemist
ryl6,3943−3948)。m℃脂質抽出物にお
いて、V2小胞を用いた場合Rll2は3紛であること
がわかつた(第10図参照)。■2およびV別)胞をヘ
ラ細胞に混入する場合も同じパターンが得られる(第1
1図)。ヘラ細胞と小胞とのインキユベーシヨンは前記
と同じ条件下で行なつた。別の実験では、ヘラ細胞を、
7ないし8の種々のPH値において、等張緩衝液中14
C−コレステロール含有小胞と共にインキュベートした
。第12図は、血球による、ラベルした脂質の取り込み
は、PHを7ないし8の間で変化させてもほとんど影響
されないことを示している。放射性物質でラベルした小
胞とインキュベートした時の赤血球による放射活性の取
り込みの半減期は、.透析したIHP付加小胞とインキ
ュベートした赤血球によるIHP摂取の半減期と同じで
である(第16図)。
これは、本発明者らが血球と小胞との間の脂質交換ばか
りではなく小胞と血球との融合を測定したというもう1
つの証拠である。赤血球脂質抽出物の薄層クロマトグラ
フから、m℃膜脂質が小胞脂質に富んでいることがわか
つた。貯蔵ヒト赤血球による■2仲介1HP摂取の見か
けの最適PH洗浄された赤血球によるIHP摂取はイン
キユベーシヨン媒質のPHに依存する。
りではなく小胞と血球との融合を測定したというもう1
つの証拠である。赤血球脂質抽出物の薄層クロマトグラ
フから、m℃膜脂質が小胞脂質に富んでいることがわか
つた。貯蔵ヒト赤血球による■2仲介1HP摂取の見か
けの最適PH洗浄された赤血球によるIHP摂取はイン
キユベーシヨン媒質のPHに依存する。
IF[P付加赤血球のPO2(112)をインキユベー
シヨン媒質のDPHに対してプロットすると、IHP混
入の見かけの最適PHはPH7.4ないし7.5の範囲
にあることがわかる・(第13図)。PH7.5以上で
のPO2(112)の減少は、第6図におけるボーア効
果曲線に相当し、ヘモグロビンに対するIHP一親和性
の減少と関連している。PH7.似下でのPO2(11
2)の著しい減少はIHP混入が制限されることを示し
ており、従つて、結合1HPにより完全に改質されたヘ
モグロビンに期待された理論的PO2(112)は観察
されない。第6図に示す様に、PH7.8でインキュベ
ートした後、緩衝媒質のPHを7.4にかえると、赤I
Rl球内ヘモグロビンのPO2(1′2)は25℃で3
0ないし40wnHyに増加する。
シヨン媒質のDPHに対してプロットすると、IHP混
入の見かけの最適PHはPH7.4ないし7.5の範囲
にあることがわかる・(第13図)。PH7.5以上で
のPO2(112)の減少は、第6図におけるボーア効
果曲線に相当し、ヘモグロビンに対するIHP一親和性
の減少と関連している。PH7.似下でのPO2(11
2)の著しい減少はIHP混入が制限されることを示し
ており、従つて、結合1HPにより完全に改質されたヘ
モグロビンに期待された理論的PO2(112)は観察
されない。第6図に示す様に、PH7.8でインキュベ
ートした後、緩衝媒質のPHを7.4にかえると、赤I
Rl球内ヘモグロビンのPO2(1′2)は25℃で3
0ないし40wnHyに増加する。
PH7.8でインキュベートし、別のPH値に緩衝する
と、全PH領域に於いてP。2(112)の増大が見ら
れる。
と、全PH領域に於いてP。2(112)の増大が見ら
れる。
この結果から、赤血球へのIHPの混入は低PH値にお
いても有効であるが、7.4より高いPH値の方がより
有効であると結論することができる。貯蔵ヒト赤血球に
よるIHP摂取の動力学第14図は、PH7.35にお
いて、0.19Mn1p溶液中でIHP付加V2小胞と
インキュベートした後の赤血球の02親和性の、時間依
存性減少を示す。
いても有効であるが、7.4より高いPH値の方がより
有効であると結論することができる。貯蔵ヒト赤血球に
よるIHP摂取の動力学第14図は、PH7.35にお
いて、0.19Mn1p溶液中でIHP付加V2小胞と
インキュベートした後の赤血球の02親和性の、時間依
存性減少を示す。
PO2(112)の増大は4分後に半極大値に達する。
P。2(112)の増加として測定される。
P。2(112)の増加として測定される。
IHP混入速度はインキユベーシヨン媒質のPHに依存
する。第15図には、IHP混入の半減期がPHに対し
てプロットしてある。IHP摂取は低PH(PH7.3
)では遅く、PHが高い(PH7.7)と早い。高いP
Hにおける短い混入の半減期は赤血球へ混入したIHP
の量が多いことに相当する(第6図及び第13図参照)
。111P混入の速度は外部媒質中の遊離■即の存在に
著しい影響を受ける。
する。第15図には、IHP混入の半減期がPHに対し
てプロットしてある。IHP摂取は低PH(PH7.3
)では遅く、PHが高い(PH7.7)と早い。高いP
Hにおける短い混入の半減期は赤血球へ混入したIHP
の量が多いことに相当する(第6図及び第13図参照)
。111P混入の速度は外部媒質中の遊離■即の存在に
著しい影響を受ける。
小胞懸濁液を透析したり、ゲルp過することにより遊離
のIHPを除去すると、IHP混入の半減期はPH7.
4において301ij′に増大6−る(第16図)。I
HP付加赤血球におけるATPレベル 赤血球のアデノシントリホスフェート (ATP)含量は、赤血球保存及び完全機能の観点から
非常に重要である。
のIHPを除去すると、IHP混入の半減期はPH7.
4において301ij′に増大6−る(第16図)。I
HP付加赤血球におけるATPレベル 赤血球のアデノシントリホスフェート (ATP)含量は、赤血球保存及び完全機能の観点から
非常に重要である。
既に記載した条件下で、空のV2小胞及びIHP付加V
2小胞を混入した赤血.球についてATPレベルを測定
した。測定は全て、PH7.4の等張0.1Mビス−ト
リス緩衝液中で行なつた。ATP濃度はルシフエリンー
ルシフエラーゼ系を用いて測定した。1個のATP分子
が使用されると1個のプロトンが生成するので、この反
応は非常に効率が良い。
2小胞を混入した赤血.球についてATPレベルを測定
した。測定は全て、PH7.4の等張0.1Mビス−ト
リス緩衝液中で行なつた。ATP濃度はルシフエリンー
ルシフエラーゼ系を用いて測定した。1個のATP分子
が使用されると1個のプロトンが生成するので、この反
応は非常に効率が良い。
空の小胞を混入してもIHP付加小胞を混入しても赤血
球中のATPレベルには影響がない。上記データは1週
間年令のm℃についてのものである。IHPを混入した
後もRBC中のATPレ)ベルが変化しなあいというこ
とは、RBCCの生存能力、機能および形成性が変化し
ないことを示している。赤血球にIHP付加小胞を融合
することによる02放出効果IHP混入後の02結合曲
線の右シフトを第17図に示す。
球中のATPレベルには影響がない。上記データは1週
間年令のm℃についてのものである。IHPを混入した
後もRBC中のATPレ)ベルが変化しなあいというこ
とは、RBCCの生存能力、機能および形成性が変化し
ないことを示している。赤血球にIHP付加小胞を融合
することによる02放出効果IHP混入後の02結合曲
線の右シフトを第17図に示す。
41EI年令の赤血球を、IHP付加V2/l)胞と共
にPH7.4の等張ビス−トリス緩衝液に懸濁して融合
させると、02半飽和圧は7顛Hyから28顛Hgに増
大する。
にPH7.4の等張ビス−トリス緩衝液に懸濁して融合
させると、02半飽和圧は7顛Hyから28顛Hgに増
大する。
これは、正常ではあるが年令の古い赤血球は、30w1
Hf1(:1)02分圧下で、25℃で95%まで02
付加されらるが、IHP付加赤血球は同じ条件下で、僅
か53%の酸化ヘモグ七ピンを含有する。IHP付加小
胞と赤血球との融合の後、赤血球中の約60%のヘモグ
ロビンがIHPと結合した。PH7.4において、IH
P付加赤血球については、生理的条件(3TC)下にお
いて、02半飽和圧は607177!Hgと計算される
。脳における307mHyの臨界02分圧において、小
胞処理した赤血球からは80%のヘモグロビンが結合0
2を放出する。一方、正常の末処理赤血球は、同じ条件
下で僅か20ないし25%の酸素を放出する。赤血球の
実際的な親和性は、脂質胞■即濃度を変えたり、血中の
処理赤血球対末処理赤血球の比率を変えることにより、
これら2つの限界値内で変化させることができる。この
結果は、赤血球にIHPを混入する為に提案された本発
明方法は、完全赤血球におけるヘモグロビンの02親和
耐を永続的に、有意に、そして調節可能に低下させるこ
とを示している。
Hf1(:1)02分圧下で、25℃で95%まで02
付加されらるが、IHP付加赤血球は同じ条件下で、僅
か53%の酸化ヘモグ七ピンを含有する。IHP付加小
胞と赤血球との融合の後、赤血球中の約60%のヘモグ
ロビンがIHPと結合した。PH7.4において、IH
P付加赤血球については、生理的条件(3TC)下にお
いて、02半飽和圧は607177!Hgと計算される
。脳における307mHyの臨界02分圧において、小
胞処理した赤血球からは80%のヘモグロビンが結合0
2を放出する。一方、正常の末処理赤血球は、同じ条件
下で僅か20ないし25%の酸素を放出する。赤血球の
実際的な親和性は、脂質胞■即濃度を変えたり、血中の
処理赤血球対末処理赤血球の比率を変えることにより、
これら2つの限界値内で変化させることができる。この
結果は、赤血球にIHPを混入する為に提案された本発
明方法は、完全赤血球におけるヘモグロビンの02親和
耐を永続的に、有意に、そして調節可能に低下させるこ
とを示している。
この様にIHP付加された赤血球は、既に記述した状況
下における組織への02供給を調節するのに極めて好適
である。ラット及び犬の高所適用 血液量14m1(PO2(112)=PH7.4および
25℃におおいて14.0TsnHy)の体重200y
のラットを02分圧を減少させた室内に入れた。
下における組織への02供給を調節するのに極めて好適
である。ラット及び犬の高所適用 血液量14m1(PO2(112)=PH7.4および
25℃におおいて14.0TsnHy)の体重200y
のラットを02分圧を減少させた室内に入れた。
13200瓦の高度に相当する酸素分圧(112−Hy
)下では、四肢の筋肉における02不足の為、ラットが
転倒した。
)下では、四肢の筋肉における02不足の為、ラットが
転倒した。
室内の02圧を急いで正常値に戻すとラットは正常に振
舞つた。この動物から血液1m1採取し、赤血球を分離
し、前記の方法でIHPを付加した。IHP付加した赤
血球を血漿に再懸濁し(PO2(1ノ2)=PH7.4
、25℃において28.0wInHy)、このラットに
輸液した。この様にして02分圧を下げた後は、このラ
ットは、100w!NHV(約高度14200mに相当
する)て転倒する。従つて、この処理により、高度の最
高限度が8%増したことになる。この高所適用実験を、
同一ラットを用いて24Vi1間後にもう一度行つた所
、同じ結果を得た。別の実験として、血液量630m1
(PO2(112)=PH7.4、25℃に於いて10
.8wnHf1)の、体重9kgの犬をα分圧を減少さ
せた室内に入れた。
舞つた。この動物から血液1m1採取し、赤血球を分離
し、前記の方法でIHPを付加した。IHP付加した赤
血球を血漿に再懸濁し(PO2(1ノ2)=PH7.4
、25℃において28.0wInHy)、このラットに
輸液した。この様にして02分圧を下げた後は、このラ
ットは、100w!NHV(約高度14200mに相当
する)て転倒する。従つて、この処理により、高度の最
高限度が8%増したことになる。この高所適用実験を、
同一ラットを用いて24Vi1間後にもう一度行つた所
、同じ結果を得た。別の実験として、血液量630m1
(PO2(112)=PH7.4、25℃に於いて10
.8wnHf1)の、体重9kgの犬をα分圧を減少さ
せた室内に入れた。
02分圧1407077!Hy(高度12200m1こ
相当)において犬は転倒した。次いで、急いで室内の0
2圧を正常値に戻すと犬は正常な行動を示した。この犬
から血液100を採取し、赤血球を分離し、前記の方法
でIHPを付加した。IHP付加した赤血球を血清((
PO2(112)=PH7.4、25℃で15.071
77!Hg)に再懸濁し、この犬に輸液した。02分圧
を減少させた後は、この犬は1107077!Hg(約
13800m.の高度に相当)で転倒した。
相当)において犬は転倒した。次いで、急いで室内の0
2圧を正常値に戻すと犬は正常な行動を示した。この犬
から血液100を採取し、赤血球を分離し、前記の方法
でIHPを付加した。IHP付加した赤血球を血清((
PO2(112)=PH7.4、25℃で15.071
77!Hg)に再懸濁し、この犬に輸液した。02分圧
を減少させた後は、この犬は1107077!Hg(約
13800m.の高度に相当)で転倒した。
従つて、この処置により、高度限度は+13%増加した
。この高度限度は5日間変化しなかつた。上記実験に用
いた動物は、実験後4ヵ月(ラット)、1ヵ月(犬)経
つた最後の観察時に於いて生存しており、元気であつた
。
。この高度限度は5日間変化しなかつた。上記実験に用
いた動物は、実験後4ヵ月(ラット)、1ヵ月(犬)経
つた最後の観察時に於いて生存しており、元気であつた
。
親和性の高い突然変異ヘモグロビンを有するヒト赤血球
未知の構造(HbMainz)を有する、02親和性の
高い突然変異ヘモグロビンを持つた1吐の女性から採血
した。
未知の構造(HbMainz)を有する、02親和性の
高い突然変異ヘモグロビンを持つた1吐の女性から採血
した。
この新鮮な赤血球のP。2(112)は、PH7.4、
25℃において7.5TWLHVであつた。
25℃において7.5TWLHVであつた。
即ち組織への酸素供給は50%に減じている。組織での
酸素不足のため、6週間毎に輸血を行なつている。前記
の方法でこの赤血球にIHPを付加した所、PO2(1
12)は18.7TW&Hfに増加した。このことは、
この患者の血液の高い02親和性は、本発明方法により
、新鮮な赤血球の正常値より高い値にまで、減少させる
ことができることを示しており、この値は全血交換の酸
素供給量の23%増加に相当する。図面の簡単な説明第
1図は赤血球内ヘモグロビンの、時間経過による02親
和性の増大を示すグラフ、第2図は貯蔵時間経過による
赤血球内ヘモグロビンのα結合曲線の左シフトを示すグ
ラフ、第3図は02結合曲線のPH依存性を示すグラフ
、第4図は赤血球内ヘモグロビンのボーア効果を示すグ
ラフ、第5図はIHP混入前後の02半飽和圧の変化を
示すグラフ、第6図はIHP付加赤血球のボーア効果を
示すグラフ、第7図は02結合温線の右シフトに及ぼす
小胞組成の影響を示すグラフ、第8図はIHP付”加小
胞の安定性を示すグラフ、第9図は14C−コレステロ
ールの、小胞から赤血球への混入の動力学を示すグラフ
、第10図は14C−コレステロールの、V2小胞から
赤血球への混入の動力学を示すグラフ、第11図は脂質
胞からの、ヘラ細胞に,よる14C−コレステロール取
り込みの動力学を示すグラフ、第12図は小胞からの、
ヘラ細胞による14C−ーコレステロール取り込みのP
H依存性を示すグラフ、第13図はIHP付加赤血球の
O拌飽和圧に及ぼすインキユベーシヨン媒質のPHの影
響フを示すグラフ、第14図は外部媒質中のIHPの存
在下での、赤血球へのV2仲介1HP混入の動力学を示
すグラフ、第15図は■2仲介11(P混入の半減期に
及ぼすインキユベーシヨン媒質のPHの影響を示すグラ
フ、第16図は外部媒質中のIHPの存在下5における
、赤血球によるV2仲介1HP取り込みの動力学を示す
グラフ、第17図はV2仲介1HPの赤血球による取り
込み前後の02結合曲線を示すグラフである。
酸素不足のため、6週間毎に輸血を行なつている。前記
の方法でこの赤血球にIHPを付加した所、PO2(1
12)は18.7TW&Hfに増加した。このことは、
この患者の血液の高い02親和性は、本発明方法により
、新鮮な赤血球の正常値より高い値にまで、減少させる
ことができることを示しており、この値は全血交換の酸
素供給量の23%増加に相当する。図面の簡単な説明第
1図は赤血球内ヘモグロビンの、時間経過による02親
和性の増大を示すグラフ、第2図は貯蔵時間経過による
赤血球内ヘモグロビンのα結合曲線の左シフトを示すグ
ラフ、第3図は02結合曲線のPH依存性を示すグラフ
、第4図は赤血球内ヘモグロビンのボーア効果を示すグ
ラフ、第5図はIHP混入前後の02半飽和圧の変化を
示すグラフ、第6図はIHP付加赤血球のボーア効果を
示すグラフ、第7図は02結合温線の右シフトに及ぼす
小胞組成の影響を示すグラフ、第8図はIHP付”加小
胞の安定性を示すグラフ、第9図は14C−コレステロ
ールの、小胞から赤血球への混入の動力学を示すグラフ
、第10図は14C−コレステロールの、V2小胞から
赤血球への混入の動力学を示すグラフ、第11図は脂質
胞からの、ヘラ細胞に,よる14C−コレステロール取
り込みの動力学を示すグラフ、第12図は小胞からの、
ヘラ細胞による14C−ーコレステロール取り込みのP
H依存性を示すグラフ、第13図はIHP付加赤血球の
O拌飽和圧に及ぼすインキユベーシヨン媒質のPHの影
響フを示すグラフ、第14図は外部媒質中のIHPの存
在下での、赤血球へのV2仲介1HP混入の動力学を示
すグラフ、第15図は■2仲介11(P混入の半減期に
及ぼすインキユベーシヨン媒質のPHの影響を示すグラ
フ、第16図は外部媒質中のIHPの存在下5における
、赤血球によるV2仲介1HP取り込みの動力学を示す
グラフ、第17図はV2仲介1HPの赤血球による取り
込み前後の02結合曲線を示すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 アロステリック因子を等張緩衝溶液に飽和するまで
溶解させ、この溶液に、ホスファチジルコリン、ホスフ
ァチジルセリンおよびコレステロールからなり該ホスフ
ァチジルコリン、ホスファチジルセリンおよびコレステ
ロールのモル比が10〜5:4〜1:10〜3である脂
質混合物を懸濁させ、この懸濁液を超音波処理し、次い
で遠心分離してアロステリック因子に富む脂質胞を含有
する上澄み液を分離し、この上澄み液に、血漿から分離
した赤血球を懸濁し、この懸濁液をインキュベートし、
得られた改良赤血球から遊離のアロステリック因子を除
去した後、該赤血球を懸濁または代用血液に懸濁させる
ことによつて得られるアロステリック因子が赤血球中の
ヘモグロビンと結合した改良された酸素放出特性を有す
る無損傷赤球を含有する血液。 2 アロステリック因子がイノシツトヘキサリン酸であ
る第1項記載の血液。 3 ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び
コレステロールのモル比が8:2:7である第1項記載
の血液。 4 ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び
コレステロールのモル比が9:1:8である第1項記載
の血液。 5 ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び
コレステロールのモル比が8:4:7である第1項記載
の血液。 6 アロステリック因子を等張緩衝溶液に飽和するまで
溶解させ、この溶液に、ホスファチジルコリン、、ホス
ファチジルセリンおよびコレステロールからなり該ホス
ファチジルコリン、ホスファチジルセリンおよびコレス
テロールのモル比が10〜5:4〜1:10〜3である
脂質混合物を懸濁させ、この懸濁液を超音波処理し、次
いで遠心分離してアロステリック因子に富む脂質胞を含
有する上澄み液を分離し、この上澄み液に、血漿から分
離した赤血球を懸濁し、この懸濁液をインキユベートし
、得られた改良赤血球から遊離のアロステリック因子を
除去した後、該赤血球を血漿または代用血液に懸濁させ
ることによつて得られるアロステリック因子が赤血球中
のヘモグロビンと結合した改良された酸素放出特性を有
する無損傷赤血球を含有する血液をヒト以外の温血動物
に輸血することからなる、動物組織への酸素供給を改善
する方法。 7 ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び
コレステロールのモル比が8:2:7である第6項記載
の方法。 8 ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び
コレステロールのモル比が9:1:8である第6項記載
の方法。 9 ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン及び
コレステロールのモル比が8:4:7である第6項記載
の方法。 10 アロステリック因子がイノシツトヘキサリン酸、
イノシツトペンタリン酸、イノシツトテナラリン酸、イ
ノシツトトリリン酸、イノシツトジリン酸またはジホス
ファチジルジリン酸などからなる群から選ばれる糖ホス
エートである第6項記載の方法。 11 アロステリック因子がイノシツトヘキサリン酸で
ある第10項記載の方法。 12 アロステリック因子がヌクレオチドトリホスエー
ト、ヌクレオチドジホスフェート、ヌクレオチドモノホ
スフェートまたはアルコールホスフェートエステルなど
からなる群から選ばれるポリホスフェートである第6項
記載の方法。 13 アロステリック因子がポリカルボン酸の如き有機
アニオンである第6項記載の方法。 14 アロステリック因子がヘキサシアノ鉄酸塩、ホス
フェートまたはクロリドなどからなる群から選ばれる無
機アニオンである第6項記載の方法。
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE19772740053 DE2740053A1 (de) | 1977-09-06 | 1977-09-06 | Verwendung von allosterischen effektoren mit hilfe von lipidvesikeln ueber eine irreversible inkorporierung zwecks verbesserter o tief 2 -entladung des haemoglobins in erythrozyten |
| DE2740053.9 | 1977-09-06 | ||
| DE2820603.3 | 1978-05-11 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS5726621A JPS5726621A (en) | 1982-02-12 |
| JPS6059213B2 true JPS6059213B2 (ja) | 1985-12-24 |
Family
ID=6018226
Family Applications (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9072881A Granted JPS5726620A (en) | 1977-09-06 | 1981-06-10 | Lipid vesicles containing allosteric factor |
| JP56090729A Expired JPS6059213B2 (ja) | 1977-09-06 | 1981-06-10 | 改良された酸素放出特性を有する無損傷赤血球を含有する血液 |
Family Applications Before (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9072881A Granted JPS5726620A (en) | 1977-09-06 | 1981-06-10 | Lipid vesicles containing allosteric factor |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (2) | US4321259A (ja) |
| JP (2) | JPS5726620A (ja) |
| DE (1) | DE2740053A1 (ja) |
| ZA (1) | ZA785026B (ja) |
Families Citing this family (58)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2529463B1 (fr) * | 1982-07-05 | 1986-01-10 | Centre Nat Rech Scient | Procede et dispositif pour l'encapsulation dans les erythrocytes d'au moins une substance a activite biologique, notamment des effecteurs allosteriques de l'hemoglobine et erythrocytes ainsi obtenus |
| US4478824A (en) * | 1983-08-08 | 1984-10-23 | Franco Robert S | Method for altering red blood cell function and survival |
| GB8328917D0 (en) * | 1983-10-28 | 1983-11-30 | Fisons Plc | Blood substitute |
| JPS60101129A (ja) * | 1983-11-07 | 1985-06-05 | Fujikura Ltd | 難燃性架橋組成物 |
| US4738952A (en) * | 1984-04-27 | 1988-04-19 | Synthetic Blood Corporation | Substitute for human blood and a method of making the same |
| US4853370A (en) * | 1984-04-27 | 1989-08-01 | Synthetic Blood Corporation | Substitute for human blood and a method of making the same |
| US5128332A (en) * | 1984-10-23 | 1992-07-07 | Perstorp Ab | Method of treating cardiovascular diseases using inositoltrisphosphate |
| SE465951B (sv) * | 1984-10-23 | 1991-11-25 | Perstorp Ab | Isomer av inositoltrifosfat foeretraedesvis i saltform foer anvaendning som terapeutiskt eller profylaktiskt medel samt kompositioner daerav |
| JPS62285943A (ja) * | 1986-06-05 | 1987-12-11 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 難燃性オレフイン系樹脂組成物 |
| JPS62181353A (ja) * | 1986-01-20 | 1987-08-08 | Sumitomo Bakelite Co Ltd | 難燃性樹脂組成物 |
| US5057507A (en) * | 1986-04-16 | 1991-10-15 | Perstorp Ab | Method of alleviating bone damage with inositoltriphosphate |
| US5449759A (en) * | 1987-05-16 | 1995-09-12 | Somatogen, Inc. | Hemoglobins with intersubunit desulfide bonds |
| JPS6461426A (en) * | 1987-08-31 | 1989-03-08 | Terumo Corp | Artificial erythrocyte |
| US5071598A (en) * | 1987-12-03 | 1991-12-10 | California Institute Of Technology | Cryoprotective reagent |
| US5041429A (en) * | 1988-06-01 | 1991-08-20 | Sanwa Kagaku Kenkyusho Co., Ltd. | Cell activators, circulatory ameliorators and edible compositions |
| US6172039B1 (en) | 1990-04-16 | 2001-01-09 | Apex Bioscience, Inc. | Expression of recombinant hemoglobin and hemoglobin variants in yeast |
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| US5260287A (en) * | 1992-05-11 | 1993-11-09 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Polyphosphorylated organic compounds: compositions useful in protecting biological tissues |
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| KR960700740A (ko) * | 1993-03-23 | 1996-02-24 | 라차아드 엘 콘 | 세포내 생물학적 활성 물질의 캡슐화 방법 및 장치(method and apparatus for encapsulation of biologic ally-active substances in cells) |
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| US5612310A (en) * | 1993-05-24 | 1997-03-18 | Duke University | Methods for improving therapeutic effectiveness of agents for the treatment of solid tumors and other disorders |
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| US5631219A (en) * | 1994-03-08 | 1997-05-20 | Somatogen, Inc. | Method of stimulating hematopoiesis with hemoglobin |
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| US5720921A (en) * | 1995-03-10 | 1998-02-24 | Entremed, Inc. | Flow electroporation chamber and method |
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| WO1997026572A1 (en) * | 1996-01-16 | 1997-07-24 | Corning Incorporated | Athermal optical device |
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