JPS61162178A - セルラ−ゼの生産改良法 - Google Patents
セルラ−ゼの生産改良法Info
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- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
本発明は、糸状菌によるセルラーゼの製造方法に関する
ものである。
ものである。
セルラーゼはセルロースをグルコースまたはセロビオー
スなどセロオリゴ糖分まで分解する酵素反応系を触媒す
る酵素群の総称であり、その作用様式により、C1−酵
素、 Cx−酵素とβ−グルカナーゼ、エフソーβ−グ
ルカナーゼ、エンド−β−グルカナーゼとセロビオース
など種々の名称で呼ばれる酵素群から構成されている。
スなどセロオリゴ糖分まで分解する酵素反応系を触媒す
る酵素群の総称であり、その作用様式により、C1−酵
素、 Cx−酵素とβ−グルカナーゼ、エフソーβ−グ
ルカナーゼ、エンド−β−グルカナーゼとセロビオース
など種々の名称で呼ばれる酵素群から構成されている。
近年、セルラーゼはバイオマス資源の有効利用の観点か
ら注目され、セルロースの糖化研究が盛んにおこなわれ
ているが、従来、セルラーゼ生産菌としてよく知られて
いる、トリコデルマ属、アスペルギルス属やペニシリウ
ム属などの微生物はセルラーゼの生産能が十分でないた
め、酵素の生産コストが高く、セルロースからグルコー
スなどの資源を収得するための酵素源として使用するこ
とができなかった。
ら注目され、セルロースの糖化研究が盛んにおこなわれ
ているが、従来、セルラーゼ生産菌としてよく知られて
いる、トリコデルマ属、アスペルギルス属やペニシリウ
ム属などの微生物はセルラーゼの生産能が十分でないた
め、酵素の生産コストが高く、セルロースからグルコー
スなどの資源を収得するための酵素源として使用するこ
とができなかった。
本発明者らは、先に、結晶性セルロースに対する分解力
とグルコースへの転換能力が優れ、且つ熱安定性に優れ
たセルラーゼ・生産菌(アクレモニウム(Acremo
nium)属菌)を新たに分離した。そして本菌の生産
するセルラーゼを工業的に使用すべく、本菌の培養方法
について、鋭意研究を続けてきた結果、レシチンの存在
下で培養すると、セルラーゼの生産量、特に、エンド−
β−グルカナーゼ((カルボキシメチルセルラーゼ(C
MCアーゼ))とβ−グリコシダーゼの生産量が顕著に
増加できることを認めた。本発明は、この知見にもとず
いてなされたものである。
とグルコースへの転換能力が優れ、且つ熱安定性に優れ
たセルラーゼ・生産菌(アクレモニウム(Acremo
nium)属菌)を新たに分離した。そして本菌の生産
するセルラーゼを工業的に使用すべく、本菌の培養方法
について、鋭意研究を続けてきた結果、レシチンの存在
下で培養すると、セルラーゼの生産量、特に、エンド−
β−グルカナーゼ((カルボキシメチルセルラーゼ(C
MCアーゼ))とβ−グリコシダーゼの生産量が顕著に
増加できることを認めた。本発明は、この知見にもとず
いてなされたものである。
従って、本発明の目的は、セルラーゼの生産改良法を提
供することにある。
供することにある。
本発明はセルラーゼ生産能を有する糸状菌を培養して、
セルラーゼを生産するに際し、レシチンの存在下で培養
することを特徴とするセルラーゼの生産方法を提供する
ものである。
セルラーゼを生産するに際し、レシチンの存在下で培養
することを特徴とするセルラーゼの生産方法を提供する
ものである。
以下に本発明の詳細な説明する。
レシチンはホスファチジルコリン(リン脂質)の慣用名
であり、卵黄、血球、大豆などの植物種子、など動植物
界に広く存在してい物質である。
であり、卵黄、血球、大豆などの植物種子、など動植物
界に広く存在してい物質である。
しかし、レシチンは構造が簡単であるため、天然のもの
のみならず1合成品も得られている。
のみならず1合成品も得られている。
本発明で使用されるレシチンとしては、動、植物から採
取されたもののほか、合成品のものも使用することがで
きるが、大豆製のものは、大量。
取されたもののほか、合成品のものも使用することがで
きるが、大豆製のものは、大量。
且つ安価に入手することができる。
レシチンは少量の添加で十分効果を示すが、通常0.1
〜1%程度添加すると、無添加の場合に比べ。
〜1%程度添加すると、無添加の場合に比べ。
セルラーゼのうち、特にカルボキシメチルセルラーゼ(
CMCアーゼ)とβ−グルコシダーゼの生産量は20〜
30%程度増加する。
CMCアーゼ)とβ−グルコシダーゼの生産量は20〜
30%程度増加する。
本発明に使用される糸状菌としては、トリコデルマ属、
アスペルギルス属、ペニシリウム属、スボロトリクム属
などのセルラーゼ生産菌の他、本発明者らにより新たに
分離されたアクレモニウム属のセルラーゼ生産菌などを
挙げることができ7゜本発明では例示菌として、アクレ
モニウム・セルロリテイカ宵cremonium ce
lluloliticus)を使用する。本菌は、nR
55p−I、にとして工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。
アスペルギルス属、ペニシリウム属、スボロトリクム属
などのセルラーゼ生産菌の他、本発明者らにより新たに
分離されたアクレモニウム属のセルラーゼ生産菌などを
挙げることができ7゜本発明では例示菌として、アクレ
モニウム・セルロリテイカ宵cremonium ce
lluloliticus)を使用する。本菌は、nR
55p−I、にとして工業技術院微生物工業技術研究所
に寄託されている。
本菌の菌学的性質の概要は下記の通りである。
生育:麦芽エキス寒天上では生育は速く、30℃7日で
直径70■mに達する。集落は最初白色で後にやや黄色
味をおびる。気生菌糸はゆるく盛り上がり羊毛状を呈し
、時に綿状の菌糸束を形成する。
直径70■mに達する。集落は最初白色で後にやや黄色
味をおびる。気生菌糸はゆるく盛り上がり羊毛状を呈し
、時に綿状の菌糸束を形成する。
培養後期には集落裏面は桃褐色ないし赤褐色を呈する。
ツアペック寒天上でもほぼ同様の生育を示すが気生菌糸
の盛り上がりはより少い。生育pH範囲は3.5〜6.
0で最適PI(は4付近、生育温度範囲は15°C〜4
3℃で、最適生育温度は30℃付近である。
の盛り上がりはより少い。生育pH範囲は3.5〜6.
0で最適PI(は4付近、生育温度範囲は15°C〜4
3℃で、最適生育温度は30℃付近である。
形態:菌糸の直径は0.5〜2.5μ■、無色で菌糸に
は隔壁が認められる。また、菌糸表面は滑面である。
は隔壁が認められる。また、菌糸表面は滑面である。
分生子:分生子形成能は非常に不安定でツアペック寒天
および麦芽エキス寒天借地による継代倍養により容易に
消失した。分離時におけるIl!察では、分生子柄は気
生菌糸側面より突出し、無色である。
および麦芽エキス寒天借地による継代倍養により容易に
消失した。分離時におけるIl!察では、分生子柄は気
生菌糸側面より突出し、無色である。
分生子は亜球形(2,5〜5X2〜4.5μm)で滑面
、無色で連鎖は非常にゆるく分散しやすい。
、無色で連鎖は非常にゆるく分散しやすい。
以上の菌学的性質について、11.Gam5のrcep
halosporium art、ige Sch
immelpilgeJ p84、G、 Fishe
r(1971年)及びC,H,Dickinson、
Mycol。
halosporium art、ige Sch
immelpilgeJ p84、G、 Fishe
r(1971年)及びC,H,Dickinson、
Mycol。
と同定した。
本菌は、FERM Bl)−1,8<とじて、工業技術
院微生物工業技術研究所に寄託されている。
院微生物工業技術研究所に寄託されている。
本菌の生産するセルラーゼは下記の酵素的性質を有して
いる。
いる。
(A)アビセラーゼの酵素的性質
(1)作用
セルロース末、アビセル、脱脂綿など結晶性の高い不溶
性セルロースに対し作用してグルコース、セロビオース
等の還元糖を生成する。
性セルロースに対し作用してグルコース、セロビオース
等の還元糖を生成する。
(2)作用pH及び最適作用pH
本酵素の作用pH範囲は2〜8.最適作用pHは約4.
5に認められた。
5に認められた。
(3)安定pH
クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間放置
したときの安定pH範囲は約3.5〜約6であった。
したときの安定pH範囲は約3.5〜約6であった。
(4)作用温度範囲及び最適作用温度
本酵素は約90℃までの高温に作用するが、1%アビセ
ル、0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で10分
間反応させたときの最適作用温度は約65℃に認められ
た。
ル、0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で10分
間反応させたときの最適作用温度は約65℃に認められ
た。
(5)熱安定性
本酵素を0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で、
各温度で10分間加熱処理した゛結果、本酵素は約60
℃までの温度ではほとんど失活せず、65℃、10分間
の加熱で約50%、そして70℃、10分間の加熱で約
80%失活した。
各温度で10分間加熱処理した゛結果、本酵素は約60
℃までの温度ではほとんど失活せず、65℃、10分間
の加熱で約50%、そして70℃、10分間の加熱で約
80%失活した。
(6)阻害剤
各種重金属イオンのうちで1+mM以上の水銀イオンお
よび銅イオンにより強く阻害される。また、SH阻害剤
であるパラクロルマーキュリ−ベンゾエイトによっても
1■Nで約80%の阻害を受ける。
よび銅イオンにより強く阻害される。また、SH阻害剤
であるパラクロルマーキュリ−ベンゾエイトによっても
1■Nで約80%の阻害を受ける。
(7)精製法
本酵素は培養濾液からホロファイバー(アミコンHI
−P5)により脱塩濃縮してのち、DEAE−セファロ
ース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィー
(NaCQ O→IMグラジェント)と同カラムによる
再グロマトグラフィー(Na(10→0.6M)により
1番畔精製することができる。
−P5)により脱塩濃縮してのち、DEAE−セファロ
ース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィー
(NaCQ O→IMグラジェント)と同カラムによる
再グロマトグラフィー(Na(10→0.6M)により
1番畔精製することができる。
(8)分子量
Bio−gel(A 0.5m)カラムによるゲル濾過
法により測定した分子量は約140,000であった。
法により測定した分子量は約140,000であった。
(9)活性測定法
0.1M酢酸緩衝液に0.5%濃度のアビセル懸濁物(
pH4,5)0.5mΩに適量の酵素液を加え、蒸留水
で全量1.0mQとし、50℃で反応を行った。そして
生成する還元糖はソモギー・ネルソン法により測定した
。
pH4,5)0.5mΩに適量の酵素液を加え、蒸留水
で全量1.0mQとし、50℃で反応を行った。そして
生成する還元糖はソモギー・ネルソン法により測定した
。
この条件で、1分間に1μmolのグルコースに相かす
る還元力を生成する酵素量を1単位とした6−IIB)
CMCアーゼの酵素的性質 (1)CMCアーゼの多成分性 CMCアーゼはディスク電気泳動的に少くとも4成分に
分離され、それぞれは分子量と等電点により区別される
。CMCアーゼIは分子量約160,000で等電点5
.08、以下同様に■は約160,000.4.95.
mは約120 、000.4.60、■は約120
、000.4.48であり、これらアイソザイムの複合
物よりCMCアーゼは成っている。
る還元力を生成する酵素量を1単位とした6−IIB)
CMCアーゼの酵素的性質 (1)CMCアーゼの多成分性 CMCアーゼはディスク電気泳動的に少くとも4成分に
分離され、それぞれは分子量と等電点により区別される
。CMCアーゼIは分子量約160,000で等電点5
.08、以下同様に■は約160,000.4.95.
mは約120 、000.4.60、■は約120
、000.4.48であり、これらアイソザイムの複合
物よりCMCアーゼは成っている。
(2)カルボキシメチルセルロース(CMC)等の可溶
性セルロース誘導体に作用し、これをグルコース及びセ
ロビオース等に分解する成分(CMCアーゼ■および■
)とグルコースを極くわずかしか生成せずゼロビオース
以上のセロオリゴ糖に分解する作用を持つ成分(CMC
アーゼ■、■)が存在する。
性セルロース誘導体に作用し、これをグルコース及びセ
ロビオース等に分解する成分(CMCアーゼ■および■
)とグルコースを極くわずかしか生成せずゼロビオース
以上のセロオリゴ糖に分解する作用を持つ成分(CMC
アーゼ■、■)が存在する。
(3)作用pH及び最適作用pH
CMCアーゼ複合体の作用pH範囲は、はぼ2〜8にわ
たり最適作用PHは約4.5に認められた。
たり最適作用PHは約4.5に認められた。
(4)安定pH
クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間放置
したときのCMCアーゼ複合体の安定pH範囲は13.
5〜約6であった。
したときのCMCアーゼ複合体の安定pH範囲は13.
5〜約6であった。
(5)作用温度範囲及び最適作用温度
このCMCアーゼ複合体は約90℃までの高温に作珀す
るが、1%CMC10,05M酢酸緩衝液(pH4,5
)の下で10分間反応させたときの最適作用温度は約6
5℃に認められた。
るが、1%CMC10,05M酢酸緩衝液(pH4,5
)の下で10分間反応させたときの最適作用温度は約6
5℃に認められた。
(6)熱安定性
本酵素を0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で、
各温度で10分間加熱処理した結果、本酵素は約60℃
までの温度ではほとんど失活せず、65℃、10分間の
加熱で約40%、そして70℃、10分間の加熱で約7
0%失活した。
各温度で10分間加熱処理した結果、本酵素は約60℃
までの温度ではほとんど失活せず、65℃、10分間の
加熱で約40%、そして70℃、10分間の加熱で約7
0%失活した。
(7)阻害剤
各種金属イオンのうちで1mM以上の水銀イオンおよび
銅イオンにより強く阻害される。
銅イオンにより強く阻害される。
(8)精製法
本酵素は培養濾液からホロファイバー(アミコJHI−
ps)により脱塩濃縮してのち、 DEAR−セファ1
@−ス(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィ
ー(1aCQ O→IMグラジェント)と同カラムによ
る再グロマトグラフィー及びクロマトフォーカスシング
により各成分に精製できる。
ps)により脱塩濃縮してのち、 DEAR−セファ1
@−ス(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィ
ー(1aCQ O→IMグラジェント)と同カラムによ
る再グロマトグラフィー及びクロマトフォーカスシング
により各成分に精製できる。
(9)活性測定法
0.1M酢酸緩衝液に溶解させた1%CMC溶液(pH
4,5)0.5+sQに、適量の酵素液を加え、蒸留水
で全量1.0+*Ωとし、50℃で反応を行った。そし
て、生成する還元糖はソモギー・ネルソン法により測定
した。
4,5)0.5+sQに、適量の酵素液を加え、蒸留水
で全量1.0+*Ωとし、50℃で反応を行った。そし
て、生成する還元糖はソモギー・ネルソン法により測定
した。
この条件で、1分間に1μmolのグルコースに相当す
る還元力を生成する酵素量を1単位とした6(C) β
−グルコシダーゼの酵素的性質(1)作用 サリシン、セロビオース、セロトリオース、セロテトラ
オース、セロペンタオース、セロヘキサオースのような
セロオリゴ糖に作用して、これをグルコースに分解する
。また1本酵素はアビセルのような高分子セルロースに
も作用するがCMCやHEC(ヒドロキシエチルセルロ
ース)にはほとんど作用しない。サリシン、セロビオー
ス、セロトリ/fi4−ス、セロテトラオース、セロペ
ンタオース及びセロヘキサオースに対するKm値は、そ
れぞれ、3JO12,26,1,■9.0.82,0.
52ソLテ0.51mM’t”アラた。
る還元力を生成する酵素量を1単位とした6(C) β
−グルコシダーゼの酵素的性質(1)作用 サリシン、セロビオース、セロトリオース、セロテトラ
オース、セロペンタオース、セロヘキサオースのような
セロオリゴ糖に作用して、これをグルコースに分解する
。また1本酵素はアビセルのような高分子セルロースに
も作用するがCMCやHEC(ヒドロキシエチルセルロ
ース)にはほとんど作用しない。サリシン、セロビオー
ス、セロトリ/fi4−ス、セロテトラオース、セロペ
ンタオース及びセロヘキサオースに対するKm値は、そ
れぞれ、3JO12,26,1,■9.0.82,0.
52ソLテ0.51mM’t”アラた。
(2)作用PH及び最適作用PH
本酵素の作用pH範囲は2〜8.最適作用pHは約4.
5に認められた。
5に認められた。
(3)安定PH
クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間放置
したときの安定pH範囲は約3.5〜約5であった。
したときの安定pH範囲は約3.5〜約5であった。
(4)作用温度範囲及び最適作用温度
本酵素は約90℃までの高温に作用するが、1%サリシ
ン、0.05M酢酸緩衝液(PH4,5)の下で10分
間反応させたときの最適作用温度は約65°Cに認めら
れた。
ン、0.05M酢酸緩衝液(PH4,5)の下で10分
間反応させたときの最適作用温度は約65°Cに認めら
れた。
(5)熱安定性
0.05M酢酸緩衝液(pH4、5)の下で、各温度で
10分間(加熱処理した結果1本酵素は約65℃までの
高温ではほとんど失活せず、70℃、10分間の加熱で
約41)℃失活し、そして80℃、10分間の加熱で9
0%以上失活した。
10分間(加熱処理した結果1本酵素は約65℃までの
高温ではほとんど失活せず、70℃、10分間の加熱で
約41)℃失活し、そして80℃、10分間の加熱で9
0%以上失活した。
(6)阻害剤
コース−δ−ラクトンは基質に対して拮抗阻害剤として
作用する。
作用する。
(7)精製法
本酵素は培養濾液からホロファイバー(アミコン旧−P
5)により脱塩濃縮したのた、DEAE−セファロース
(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィー(N
aCΩ0→IMグラジェント)セクロマトフォーカシン
グ(pH6→4)とBio−gel(A 0.5m)に
よるゲル濾過により、電気泳動的に均一まで精製するこ
とができる。
5)により脱塩濃縮したのた、DEAE−セファロース
(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィー(N
aCΩ0→IMグラジェント)セクロマトフォーカシン
グ(pH6→4)とBio−gel(A 0.5m)に
よるゲル濾過により、電気泳動的に均一まで精製するこ
とができる。
(8)分子量
Bio−gel(A O,5+s)を用いるゲル濾過法
により測定した分子量は約240,000であった。
により測定した分子量は約240,000であった。
(9)活性測定法
0.1M酢酸緩衝液に溶解させた2%サリシン溶液’p
H4,5)0.5m (lに適量の酵素液を加え、蒸留
水で余量1.OmQとし、50℃で反応を行った。そし
て生成するグルコースをソモギー・ネルラン法により佃
定した。
H4,5)0.5m (lに適量の酵素液を加え、蒸留
水で余量1.OmQとし、50℃で反応を行った。そし
て生成するグルコースをソモギー・ネルラン法により佃
定した。
この条件で、1分間にlμ1dolのグルコースに相当
する還元力を生成する酵素量を1単位とした。
する還元力を生成する酵素量を1単位とした。
セルラーゼ生産菌の培養は、炭素源として、セルロース
、アビセル、綿のような純セルロース、または、バガス
、小麦瓢のようなセルロース含有物が使用され、窒素源
として、硝酸塩、アンモニウム塩、尿素のような無機窒
素またはペプトン、酵母エキス、肉エキス、大豆粕のよ
うな有機窒素源のいずれか単独または併用し、これに補
足する培地原料として、マンガン、亜鉛などの金属塩な
どが添加された培地で行われるが、この培地に対し、レ
シチンを0.1〜1%程度添加する。培養は固体培養ま
たは液体培養のいずれでもよいが通常、π)40℃、2
〜15日間好気的に培養される。
、アビセル、綿のような純セルロース、または、バガス
、小麦瓢のようなセルロース含有物が使用され、窒素源
として、硝酸塩、アンモニウム塩、尿素のような無機窒
素またはペプトン、酵母エキス、肉エキス、大豆粕のよ
うな有機窒素源のいずれか単独または併用し、これに補
足する培地原料として、マンガン、亜鉛などの金属塩な
どが添加された培地で行われるが、この培地に対し、レ
シチンを0.1〜1%程度添加する。培養は固体培養ま
たは液体培養のいずれでもよいが通常、π)40℃、2
〜15日間好気的に培養される。
寸ルラーゼは菌体外に生産される酵素であるの、−液体
培養の場合、培養後、濾過した上澄液に751で、また
、固体培養の場合は、培養後、水または適当な塩類溶液
で抽出した酵素液について、硫安または硫酸ナトリウム
などで沈澱させるか、あるいはアセトン、アルコールの
ような有機溶媒を添加してセルラーゼを沈澱させ、分離
、乾燥して酵素粉末をうろことができる。
培養の場合、培養後、濾過した上澄液に751で、また
、固体培養の場合は、培養後、水または適当な塩類溶液
で抽出した酵素液について、硫安または硫酸ナトリウム
などで沈澱させるか、あるいはアセトン、アルコールの
ような有機溶媒を添加してセルラーゼを沈澱させ、分離
、乾燥して酵素粉末をうろことができる。
次に、実施例により本発明の詳細な説明する。
実施例1
セルロース4%、K2HPO41,2%、バクトペプト
ン1%、ZnS044H201X 10−3 %、KN
O30,6%、MnSO44H201XIO−” %、
尿素0.2%、CuSO4・5H201XIO−3%、
KCQ O,16%、MgSO4・7H200,12
%からなる培地(pH4,0)および、これに大豆製レ
シチン0.5%添加した培地、各20m Qを200+
a 0種し、30℃で12日間好気的に培養した。培養
後、遠心分離して得た上澄液について生産された、セル
ラーゼのアビセラーゼ、カルボキシメチルセルラーゼ(
CMCアーゼ)及びβ−グルコシダーゼ活性を測定した
。結果は第1表に示す通りであった。
ン1%、ZnS044H201X 10−3 %、KN
O30,6%、MnSO44H201XIO−” %、
尿素0.2%、CuSO4・5H201XIO−3%、
KCQ O,16%、MgSO4・7H200,12
%からなる培地(pH4,0)および、これに大豆製レ
シチン0.5%添加した培地、各20m Qを200+
a 0種し、30℃で12日間好気的に培養した。培養
後、遠心分離して得た上澄液について生産された、セル
ラーゼのアビセラーゼ、カルボキシメチルセルラーゼ(
CMCアーゼ)及びβ−グルコシダーゼ活性を測定した
。結果は第1表に示す通りであった。
第1表
〔効 果〕
表から明らかなように、レシチンを添加して培養すると
、無添加の場合に比べ、アビセラーゼ、CMCアーゼ及
びβ−グルコシダーゼの生産量が、いずれも増加し、特
に、CMCアーゼとβ−グルコシダーゼの生産に対し、
顕著な効果を示した。
、無添加の場合に比べ、アビセラーゼ、CMCアーゼ及
びβ−グルコシダーゼの生産量が、いずれも増加し、特
に、CMCアーゼとβ−グルコシダーゼの生産に対し、
顕著な効果を示した。
Claims (1)
- (1)セルーゼ生産能を有する糸状菌を培養して、セル
ラーゼを生産するに際し、レシチンの存在下で培養する
ことを特徴とするセルラーゼの生産改良法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58285A JPS61162178A (ja) | 1985-01-07 | 1985-01-07 | セルラ−ゼの生産改良法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58285A JPS61162178A (ja) | 1985-01-07 | 1985-01-07 | セルラ−ゼの生産改良法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS61162178A true JPS61162178A (ja) | 1986-07-22 |
| JPH0112475B2 JPH0112475B2 (ja) | 1989-03-01 |
Family
ID=11477706
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58285A Granted JPS61162178A (ja) | 1985-01-07 | 1985-01-07 | セルラ−ゼの生産改良法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS61162178A (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2016111952A (ja) * | 2014-12-12 | 2016-06-23 | 本田技研工業株式会社 | 耐熱性β−グルコシダーゼ |
-
1985
- 1985-01-07 JP JP58285A patent/JPS61162178A/ja active Granted
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2016111952A (ja) * | 2014-12-12 | 2016-06-23 | 本田技研工業株式会社 | 耐熱性β−グルコシダーゼ |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0112475B2 (ja) | 1989-03-01 |
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