JPS6229975A - 粗tPAの精製法 - Google Patents

粗tPAの精製法

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JPS6229975A
JPS6229975A JP60168601A JP16860185A JPS6229975A JP S6229975 A JPS6229975 A JP S6229975A JP 60168601 A JP60168601 A JP 60168601A JP 16860185 A JP16860185 A JP 16860185A JP S6229975 A JPS6229975 A JP S6229975A
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tpa
inhibitor
affinity reagent
erythrina
column
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JP60168601A
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Mitsuyoshi Morii
森井 光義
Masaharu Ooka
大岡 正治
Nobuhiro Kawashima
伸広 川嶋
Noriko Suzuki
則子 鈴木
Toshihiko Suzuki
俊彦 鈴木
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Mitsui Toatsu Chemicals Inc
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Mitsui Toatsu Chemicals Inc
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    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6456Plasminogen activators
    • C12N9/6459Plasminogen activators t-plasminogen activator (3.4.21.68), i.e. tPA
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は5組織プラスミノーゲンアクチベータ−(tP
A)の精製法に関する。
さらに詳しくは、粗製のtPAを特定のtPA 阻害剤
を用いて、  tPAを分離精製して得る方法に関する
組織プラスミノーゲンアクチベータ−(tPA、)とは
、高等動物の組織で産生されるものであって、フィブリ
ンに特有な分解酵素であるプラスミンの前駆物質である
プラスミノーゲンを賦活化させる一種の蛋白質であり、
ウロキナーゼと多くの点で類似し文具なっている物質で
ある。そしてこのものは血栓溶解剤としての用途が大き
く見込まれるのでその製造方法に関して現今各所で研究
が進められている。
tPAを得る方法としては腎細胞培養物から分離して取
得することが嘗て行われていたが大量の取得には適して
いないので、今日では更に大量に分泌する特定の細胞を
培養し分離する研究が行われている。
本発明もその流れの一環として行われたものであって、
牛胎児血清添加培養に基(特定の挟雑物を特定のtPA
阻害剤を用いることによって除去することを要点とする
ものである。
本発明は、特許請求の範囲で特定したように[エリスリ
ナラティシマ及び他のエリスリナ種の種子中に生成し、
かつトリプシン、プラスミン及び+PAの阻害剤である
が、ウロキナーゼには作用しない型の固定化クニノツ型
阻害剤」を使用する。
この阻害剤を粗製のtPAの精製に使用することそれ自
体は、しかし、特開昭59−1.18717号・  に
おいてすでに公知でしかない。
即ち、この先行技術においては、ヒトメラノーマ細胞を
10%熱不活性(56℃、30分間)胎児牛血清(Fe
2)を含むR,PMI (’R,osswel l P
arkMemorial Tnstitute )培地
1640組織培養培培養性着単一層として成長させ、培
養物を一度洗い、血清を含まない媒体で被覆し、24時
間後。
媒体を集め収穫液をエリスリナラティシマ及び他のエリ
スリナ種の種子中に生成しかつトリプシン。
プラスミン及びtPAの阻害剤であるが、ウロキナーゼ
には作用しない型の固定化クニッツ型阻害剤を含んでな
る親和試薬に適用している。
この方法では、  tPA産生細胞の育成段階ではFe
2を使用するが、  tPAを分泌させる段階では細胞
を−は洗浄してFe2を除去して行なっているので、本
発明で問題とした特有の挟雑物の問題がなかった。
この点で本発明は、この先行技術と構成が類似している
けれど、先行技術では存在しなかった新たな技術的課題
を解決しているものであって、その故にそれに基いては
容易にはなし得ないものである。
本発明者らは、I>C810係を含むR,PMTI64
0培養培地を用いたメラノーマ細胞培養液中に含まれる
tPAの様態を、SDSポリアクリルアミド電気泳動後
のザイモグラフィーで調べ、胎児牛血清無添加の場合の
培養液と比較した。
それによると、血清添加培養培地中には分子量7万ダル
トンtPA以外に抗ヒ)tPA抗体に反応する分子量1
1万±2万ダルトンのバンドが確認される。このバンド
は血清無添加の培養培地でもわずかに観察される事があ
るが血清添加培養培地中ではその量が相当に増加する。
この現象はメラノーマ細胞の培養のみならず。
ヒト正常組織由来細胞及び遺伝子組換え技法を用いヒト
tPA遺伝子を組み込んだ細胞の培養でも見られる。す
なわちこのものはtPAと培養培地中に存在するFe2
の存在に基く結合蛋白の複合体と考えられる。このもの
は異種蛋白とtPAの複合体であるので精製tPA標品
中にこれが混入すると患者に免疫原となると思われる。
このtPA複合体は水溶液中に存在しても固定化された
阻害剤には吸着されないのでtPAがこのtPA複合体
により汚染されている場合にも本発明の方法によれば親
和試薬を使用でき、このtPA複合体は非吸着不純物と
ともに除かれる。
本発明のもう1つの要旨は、遺伝子組換え技法を用いt
PA遺伝子を組み込んだ細胞を培養し、tPAを生産さ
せる際に懸念されるその宿主細胞由来のtPA汚染物の
問題も解決されることである。
すなわち宿主細胞としてヒト以外の細胞を選んだ場合そ
の細胞が固有にtPAを生成している場合。
その固有のtPAが患者に免疫反応を誘引することが考
えられる。
驚くべき事に、本発明に用いる特定の阻害剤を含んでな
る親和試薬はヒト細胞由来tPAと宿主細胞由来tPA
を本発明者らが考案した方法により分離回収できるので
ある。
この点も、前記の先行技術においては存在しなかった問
題点であった。即ち、先行技術においては単にメラノー
マ細胞から分泌されるtPA−を取扱っていたからであ
る。
即ち組換え体tPA及び宿主細胞由来tPAを含む水性
媒体を親和試薬層へ通過させる際約0.5〜3.0モル
/l(例えば1.0〜2.0モル/1.好ましくは1.
5モル/l)の食塩水溶液を用いて行なう。この場合中
性付近のp Hが好ましく、安定化量の適当な界面活性
剤(例えば0.1チのTweenまたはTritonx
−100)を存在させる。この条件で組換え体tPAは
親和試薬層に吸着されるが。
宿主細胞由来tPAは吸着されない。
rPAの脱着は公知の方法(特開昭59−118717
号公報)が使用できる。
以上1本発明はエリスリナラティ77及び他のエリスリ
ナ種の種子中に生成し、かつトリプシン。
プラスミン及びt’PAの阻害剤であるが、ウロキナー
ゼに作用1〜ない型の固定化クニッツ型阻害剤を含んで
なる親和試薬の粗製tPAの精製法への応用でル)るが
、この新しい技術、によって2つの不純物質。
2、 りまり抗ヒ1−tpA抗体と反応し、11万」−1万ダ
ルトンの分子量をもつ物質と遺伝子組換え技法を用い+
PAを生成させる際に問題となる宿主細胞由来i I’
Aの分離、除去が可能となった。
抗ヒ)tPA抗体に反応し、11万士千万の分子量をも
つ物質はもちろん固定化抗ヒ)tPA抗体を含んでなる
親和試薬を用いても除去されず、ゲル口過法を用いても
、+’PAの樹脂に対ずろ反応性が樹脂の分離能力に影
響を及ぼし、完全に分離できない。
宿主細胞由来+PAは分子量がヒ)tPAと同じである
ので、これを分離、除去するには本発明法以外には、こ
れを識別するモノクローナル抗体を含んでなる親和試薬
を用いるしかないと思われる。
このモノクローナル抗体を作製するには時間と手間がか
かり実用性に乏しい。
本発明は tPAが実用化される際に生じろ。
これら難解な問題を容易な方法で一挙に解決できた点で
意義は大きい。
本発明で用いられたt’PA精製の為の親和試薬は、そ
の特異性の面でtPA のみならずトリプシン、プラス
ミンと反応しこれらを阻害する。このことはtPA生産
細胞培養培地がトリプシ7.プラスミンで汚染されてい
る場合、tPA精製の障害になる。しかしながら、予め
トリプシン、プラスミンは阻害するがtPAは阻害しな
い型の阻害剤1例えば大豆から誘導されたトリプノン阻
害剤。
α−2−プラスミンインヒビタ−又はアプロチニンを培
養培地中に添加するとトリプシン及びプラスミンがこれ
ら阻害剤と複合体を形成し1本発明使用の親和試薬と反
応しなくなり、容易に除去される。
以上記述した通り1本発明のエリスリナラティツマ及び
他のエリスリナ種の種子に生成し、かつトリプゾノ、プ
ラスミン及びtPAの阻害剤であるがウロキナーゼに作
用しない型の固定化クニノツ型阻害剤を含んでなる親和
試薬は、抗ヒトtPAモノクローナル抗体を使用したt
PA精製法と比較してその使用法を改良することにより
1反応の特毀性、tPA に対する吸着能力、使用時の
安定性及び実用性の面で優れていることが確認された。
実施例1 親和試薬の調製: 本発明で阻害剤として用いた親和試薬は以下のようにし
て調製した: エリスリナラティツマ種子をJoubertらの方法に
従って採集し、加工した。種子をすりつぶし。
脱脂し、0.5モル/1NaC1水溶液により10℃で
一夜抽出した。抽出物を遠心分離し、目的物を硫酸アン
モニウム沈殿により上澄みから回収し。
続いてセファテックスG50.DEA−セルロースおよ
びDEA−セファローズのクロマトグラフィーにかけた
。最終精製物は、0.1φドデシル硫酸ナトリウム(S
DS)含有15係ポリアクリルアミドゲルの電気泳動に
付した場合、みかけ分子量22 、000ドルトンの単
一バンドとして移動した。
精製物(26m9)を市販臭化シアン活性化アガロース
5 mlに通常方法で結合させた(調製物の使用方法も
教示するPharmaciaにより市販されているセフ
ァローズ4 )。R相試[ハ、 NaCl004 モ#
 / l 、 0,1 % Tr i tonX−10
0(当該技術において普通使用される市販界面活性剤)
および0.02%ナトリウムアジド安定剤を含むpI−
17,4のリン酸緩衝液に対して平衡化させた。この親
和試薬を使い捨てプラスチックシリンジの円筒から造ら
れた5mlのカラムに充填した。
実施例2 ボウズ(Bowe s )メラノーマ細胞培養液〔10
チ熱不活性(56℃、30分間)胎児牛血清及び20 
KTU/lのアプロチニンを含む〕21をTwe en
s o (0,02%)で安定化後、親和カラムに適用
した。
流出液を集め、プラスミノーゲソ依存フィブリン溶解活
性を測定した。
カラムに適用された活性の約10係が確認された。
この画分をSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動後の
ザイモグラフィーで調べると、プラスミノ一ゲンアクチ
ベーターとして11万士働万ダルトン及び7万ダルトン
の二種類が確認された。
全培養液をカラムに通温させた後、  l 、OMNa
CI及び0.2係Tween  80を含む20倍カラ
ム容量+7) 0.I MNT−141(CO3pH7
,5緩衝液でカラムを洗った。この方法により、カラム
に適用された活性の約3係が検出され、ザイモグラフ上
で11万±を万及び7万ダルトンのバンドがプラスミノ
ーゲンアクチベーターとして確認された。
吸着した蛋白質は、 0.1 MNaCIを含む0.1
グリ7ン塩酸pTI 3.5緩衝液を用いて溶出された
この方法により残りのプラスミノーゲン依存フィブリン
溶解活性剤は溶出し、鋭いピークとして見られ、このピ
ークは蛋白質のピークに一致する。
この分画はカラムに適用された活性の80−85係を示
し、分子量7万ダルトノの蛋白質の単一バンドである。
実施例3 人胎児包皮細胞培養液〔10チ熱不活性(56℃、30
分間)胎児牛血清及び20 KTU/l 7 フロチニ
ンを角む〕21をTween 80 (0,(’12%
)で安定化後、親和カラムに適用した。
流出液を集め、プラスミノーゲン依存フィブリン溶解活
性を測定した。カラムに適用された活性の約45係が確
認された。
この両分をSDSポリアクリルアミドゲル電気泳動後の
ザイモグラフィーで調べると、プラスミノーゲンアクチ
ベータ−として10万ダルトン付近に2−3本、5〜7
万ダルトン付近に2−3本。
3万5千ダルトン付近に1本バンドが確認された。
全培養液をカラムに通過させた後、  1 、OM N
aCl及び3.2% Twee口80口金020倍カラ
ム容量の0、I M NH4I−ICO3,pH7,5
緩衝液でカラムを洗った。
この方法によりカラムに適用された活性の約5係が検出
され、ザイモグラフ上で上記と同じバンドが確認された
吸着した蛋白質は、 0.1. MNaClを含む0.
1Mグリシン塩酸pH3,5緩衝液を用いて溶出された
この方法により、残りのプラスミノーゲン依存フィブリ
ン溶解活性剤は溶出し、鋭いピークとして見られ、この
ピークは蛋白質のピークに一致す、る。この分画はカラ
ムに適用された活性の40−50係を示し1分子量7万
ダルトンの単一なバンドである。
実施例4 マウス線維芽細胞(C127細胞)は遺伝子組換え技法
を用いたtPAの生産を行なう際の宿主細胞として使用
が可能である。この野生株の培養液〔2%熱不活性(5
6℃、30分間)胎児牛血清を含む〕31をTween
80(0,02% )で安定化後、親和カラムに適用し
た。
流出液を集め、プラスミノーゲン依存フィブリン溶解活
性を測定した。tPAは検出されなかった。
全培養液をカラムに通過させた後、 1.5 M Na
Cl及び0.2%Tween8Qを含む20倍カラム容
量の0.1 MNH4HCO3pH7,5緩衝液でカラ
ムを洗った。この方法によりカラムに適用された活性の
ほぼ100チが検出され、SDSポリアクリルアミドゲ
ル電気泳動後のザイモグラフイーにおいて分子量7万ダ
ルトンのtPAが検出された。
この後、通常使用されるヒト由来tPAの溶出条件でt
PAは検出されず、又0.2%Tween8Qを含む1
0倍カラム容量の4 M NH4SCN溶液でカラムを
洗浄したがこの方法によりtPAは溶出しなかった。こ
の点によりC127由来tPAの親和試薬への結合強度
がヒ)tPA と異なることが確認された。
特許出願人 三井東圧化学株式会社 手  続  補  正  書 昭和60年8月121E

Claims (1)

    【特許請求の範囲】
  1. 抗ヒトtPA抗体と反応し、かつ11万±2万ダルトン
    の分子量をもつ蛋白を不純物として含む粗tPAを、エ
    リスリナラティシマ及び他のエリスリナ種の種子中に生
    成し、かつトリプシン、プラスミン及びtPAの阻害剤
    であるが、ウロキナーゼには作用しない型の固定化クニ
    ッツ型阻害剤を含んで成る親和試薬と密接に接触させ、
    これにより選択的にtPAを取得することを特徴とする
    粗tPAの精製法。
JP60168601A 1985-08-01 1985-08-01 粗tPAの精製法 Pending JPS6229975A (ja)

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