JPS623800A - アンモニアまたはatpの定量法 - Google Patents
アンモニアまたはatpの定量法Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/008—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions for determining co-enzymes or co-factors, e.g. NAD, ATP
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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- C12Q1/48—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving transferase
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- Chemical & Material Sciences (AREA)
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は酵素法によるアンモニアまたはATPの定量法
に関するものである。
に関するものである。
従来・アンモニアの定量法としては・インドフェノール
法という化学的測定法が主に用いられている。また、酵
素的測定法としては1グルタミン酸脱水素酵素を用いる
方法(例えば特公昭57−21995号参照)が知られ
ている0この方法では、用いられるグルタミン酸脱水素
酵素のアンモニアに対するKm値が大きいため1測定に
多量のグルタミン酸脱水素酵素を必要とする問題を有し
ている。さらに他の酵素的測定法としてはカルバメート
キナーゼを用いる方法(特開昭59−213399号参
照)、またはカルバモイルリン酸合成酵素を用いる方法
(特開昭60−47698号参照)が知られている。
法という化学的測定法が主に用いられている。また、酵
素的測定法としては1グルタミン酸脱水素酵素を用いる
方法(例えば特公昭57−21995号参照)が知られ
ている0この方法では、用いられるグルタミン酸脱水素
酵素のアンモニアに対するKm値が大きいため1測定に
多量のグルタミン酸脱水素酵素を必要とする問題を有し
ている。さらに他の酵素的測定法としてはカルバメート
キナーゼを用いる方法(特開昭59−213399号参
照)、またはカルバモイルリン酸合成酵素を用いる方法
(特開昭60−47698号参照)が知られている。
前者の方法では用いられるカルバメートキナーゼが一般
的に不安定で、透析などの処理により失活すると報告さ
れている。それ故、還元型グルタチオン、2−メルカプ
トエタノールなどのSH基保護剤の存在下で酵素を精製
あるいは保存する必要がある。ところが、これらのSH
基保護剤を含むカルバメートキナーゼ標品を用いて・被
検液中のアンモニアを酸化酵素−ヘルオキシダーゼー水
素供与体色源体反応系を含む系で定量する場合、SH基
保護剤の存在はペルオキシダーゼ水素供与体の発色系を
阻害するので、正確な測定値が得られず負の誤差を与え
ることになる。後者の方法では用いられるカルバモイル
リン酸合成酵素が動物臓器由来のものしか入手できない
ため、酵素の大量かつ安価な供給という点で問題を有し
ている。
的に不安定で、透析などの処理により失活すると報告さ
れている。それ故、還元型グルタチオン、2−メルカプ
トエタノールなどのSH基保護剤の存在下で酵素を精製
あるいは保存する必要がある。ところが、これらのSH
基保護剤を含むカルバメートキナーゼ標品を用いて・被
検液中のアンモニアを酸化酵素−ヘルオキシダーゼー水
素供与体色源体反応系を含む系で定量する場合、SH基
保護剤の存在はペルオキシダーゼ水素供与体の発色系を
阻害するので、正確な測定値が得られず負の誤差を与え
ることになる。後者の方法では用いられるカルバモイル
リン酸合成酵素が動物臓器由来のものしか入手できない
ため、酵素の大量かつ安価な供給という点で問題を有し
ている。
また、ATPの定量法としては、従来ダルコー素を作用
させ、生成したNADPHを340nmで測定する方法
〔メソッヅ・オプ・エンザイマティツク・アナリシス、
第7巻、筒346頁(1985))、またはルシフェリ
ンおよびMg2+の存在下でATEにルシフェラーゼを
作用させ、発生する562nmの光強度よりATPを定
量する方法が知られている〔同第7巻、第357頁(1
985))。
させ、生成したNADPHを340nmで測定する方法
〔メソッヅ・オプ・エンザイマティツク・アナリシス、
第7巻、筒346頁(1985))、またはルシフェリ
ンおよびMg2+の存在下でATEにルシフェラーゼを
作用させ、発生する562nmの光強度よりATPを定
量する方法が知られている〔同第7巻、第357頁(1
985))。
しかし前者の方法では、ATE 1分子よりNADPH
1分子しか生成しないため感度が低く1また・後者の方
法ではルシフェリンおよヒルシフェラーゼが高価である
という問題を有している。
1分子しか生成しないため感度が低く1また・後者の方
法ではルシフェリンおよヒルシフェラーゼが高価である
という問題を有している。
本発明の目的は1上記現状に鑑み1アンモニアまたはA
TPの高感度で簡便かつ安価な定量法を提供することに
ある。
TPの高感度で簡便かつ安価な定量法を提供することに
ある。
本発明を概説すれば、本発明はアンモニアまたはATP
の定量法に関するものであり、被検液中のアンモニアま
たはATPを定量するに当り、被定量成分ではないもう
一方の物質およびL−グルタミン酸の存在下で被検液に
グルタミン合成酵素を作用させ、生成したADPとキナ
ーゼ基質用リン化合物にキナーゼを作用させて、生成し
たキナーゼ反応生成物を定量することを特徴とする。上
記被定量成分ではないもう一方の物質とは、アンモニア
定量の場合ATPを、またATP定量の場合アンモニア
を表わすものとする。
の定量法に関するものであり、被検液中のアンモニアま
たはATPを定量するに当り、被定量成分ではないもう
一方の物質およびL−グルタミン酸の存在下で被検液に
グルタミン合成酵素を作用させ、生成したADPとキナ
ーゼ基質用リン化合物にキナーゼを作用させて、生成し
たキナーゼ反応生成物を定量することを特徴とする。上
記被定量成分ではないもう一方の物質とは、アンモニア
定量の場合ATPを、またATP定量の場合アンモニア
を表わすものとする。
本発明はサイクリング反応を利用した定量法であり高感
度であること1比色定量が可能であう。と、グルタミン
合成酵素が微生物より安価かつ大量に調整可能であるこ
と、とくにマイクロコツカス属およびブレビバクテリウ
ニ属のグルタミン合成酵素は菌体内タンパク質の2〜3
%にまで達し、また非常に安定である、などの特徴を有
しており、臨床検査分野に新規なアンモニアまたはAT
Pの定量法を提供するものである。
度であること1比色定量が可能であう。と、グルタミン
合成酵素が微生物より安価かつ大量に調整可能であるこ
と、とくにマイクロコツカス属およびブレビバクテリウ
ニ属のグルタミン合成酵素は菌体内タンパク質の2〜3
%にまで達し、また非常に安定である、などの特徴を有
しており、臨床検査分野に新規なアンモニアまたはAT
Pの定量法を提供するものである。
本発明に供される被検液としては、アンモニアまたはA
T]’のいずれか一方を含むものであればよく、アンモ
ニアまたはATPを予め含む被検液や、酵素反応により
生成されたアンモニアまたはATPを含む被検液がある
。酵素反応によりアンモニアを生成する反応には、以下
に例示するものがあるが、それらの酵素活性測定、基質
または生成物の定mを行うことが可能である。
T]’のいずれか一方を含むものであればよく、アンモ
ニアまたはATPを予め含む被検液や、酵素反応により
生成されたアンモニアまたはATPを含む被検液がある
。酵素反応によりアンモニアを生成する反応には、以下
に例示するものがあるが、それらの酵素活性測定、基質
または生成物の定mを行うことが可能である。
1.7スパラギナーゼ(EC!3.5.1.1)L−ア
スパラギン+HIO−+ J、−アスパラギン僧+N
H32、アスパルターゼ(ICO4,3,1,1)L−
アスパラギン酸→ フマール酸十NH。
スパラギン+HIO−+ J、−アスパラギン僧+N
H32、アスパルターゼ(ICO4,3,1,1)L−
アスパラギン酸→ フマール酸十NH。
3、アデニンデアミナーゼ(Mg3.5.4.2)アデ
ニン十HzO→ ヒボキサンチン十NH34、アデノシ
ンデアミナーゼ(to3.5.4.4)アデノシン十H
xO→イノシン十NHs5、アデノシンモノリン酸デア
ミナーゼ(EC3・5・4・6)AMP + Hto
→工MP + ME s6、アデノシンIJ ン酸テ
アミナーゼ(to3.5.4.17)アデノシンリン酸
+H,O→ イノシンリン酸+mHs7、−yミンデヒ
ドaゲナーゼ(KOl、4.99.3)8、アルギニ>
デアミナーゼ(to3.5.3.6)L−アルギニン→
L−シトルリン十NHs9、アミダーゼ(KO3,5,
1,4)モノカルボン酸アミド+J(,0→モノカルボ
ンm+yns10、ω−アミダーゼ(EC3,5,1,
3)2−ケトグルタラミン酸+H,O→ 2−ケトグル
タル酸十NH311、ウレアーゼ(KO3、5、1、5
)尿素十H!O→2 NHz + OO!12、ウレイ
ドスクシナーゼ(B:03.5.1.7)13、グアニ
ンデアミナーゼ(KO3,5,4,3)グアニン+H,
O→キサンチン+NH。
ニン十HzO→ ヒボキサンチン十NH34、アデノシ
ンデアミナーゼ(to3.5.4.4)アデノシン十H
xO→イノシン十NHs5、アデノシンモノリン酸デア
ミナーゼ(EC3・5・4・6)AMP + Hto
→工MP + ME s6、アデノシンIJ ン酸テ
アミナーゼ(to3.5.4.17)アデノシンリン酸
+H,O→ イノシンリン酸+mHs7、−yミンデヒ
ドaゲナーゼ(KOl、4.99.3)8、アルギニ>
デアミナーゼ(to3.5.3.6)L−アルギニン→
L−シトルリン十NHs9、アミダーゼ(KO3,5,
1,4)モノカルボン酸アミド+J(,0→モノカルボ
ンm+yns10、ω−アミダーゼ(EC3,5,1,
3)2−ケトグルタラミン酸+H,O→ 2−ケトグル
タル酸十NH311、ウレアーゼ(KO3、5、1、5
)尿素十H!O→2 NHz + OO!12、ウレイ
ドスクシナーゼ(B:03.5.1.7)13、グアニ
ンデアミナーゼ(KO3,5,4,3)グアニン+H,
O→キサンチン+NH。
14、グアノシンデアミナーゼ(IO3,5,4,15
)グアノシン+H,O→キサントシン+NH3ニコチン
アミド十H,O→ニコチンm+NHsL−ヒスチジン→
ウロカニン酸十NH。
)グアノシン+H,O→キサントシン+NH3ニコチン
アミド十H,O→ニコチンm+NHsL−ヒスチジン→
ウロカニン酸十NH。
また、酵素反応によりATPを生成する反応としては以
下に例示するものがあるが、それらの。
下に例示するものがあるが、それらの。
酵素活性測定・基質または生成物の定量を行うことが可
能である。
能である。
L−チロシン+ATP −)−tRNA2.7セチルー
OoAシンセターゼ(EO6,2,1,1)AMP−1
−PPi+アセチル−0oAコ ATP+酢酸+OoA
SHAMP+ビロリン酸+AMP 2 ATP+デアミ
ド−NAD+NH。
OoAシンセターゼ(EO6,2,1,1)AMP−1
−PPi+アセチル−0oAコ ATP+酢酸+OoA
SHAMP+ビロリン酸+AMP 2 ATP+デアミ
ド−NAD+NH。
以上これらは例示であり、何ら本発明の対象を限定する
ものではない。
ものではない。
次に、本発明に用いられるグルタミン合成酵素は各種高
等動物の脳や肝臓、マメの種子、大腸菌その他の微生物
に存在するが、大社かつ安価に供給できるという点でマ
イクロコツカス属およびブレビバクテリウム属より選ば
れたグルタミン合成酵素生産菌より取得される酵素(こ
のグルタミン合成酵素については特開昭57−3359
4号参照)を使用するのが有利である0まず・本発明に
使用されるグルタミン合成酵素の各性質を示す。
等動物の脳や肝臓、マメの種子、大腸菌その他の微生物
に存在するが、大社かつ安価に供給できるという点でマ
イクロコツカス属およびブレビバクテリウム属より選ば
れたグルタミン合成酵素生産菌より取得される酵素(こ
のグルタミン合成酵素については特開昭57−3359
4号参照)を使用するのが有利である0まず・本発明に
使用されるグルタミン合成酵素の各性質を示す。
グルタミン合成酵素の酵素化学的および理化学的性質
(1)作 用:
本酵素は下式のようにL−グルタミン酸とアンモニアよ
り、ATPの化学エネルギーを利用してグルタミンを合
成する反応を触媒する。
り、ATPの化学エネルギーを利用してグルタミンを合
成する反応を触媒する。
L−グルタミン酸+アンモニア+ATP →L−グル
タミン+ADP+無機リン酸 (2)基質特異性ニ アミノ基受容体としては、本酵素はL−グルタミン酸に
極めて高い特異性を示す。塩化アンモニウムの代りにヒ
ドロキシルアミンを用いた場合にも、約30%の活性が
認められた。
タミン+ADP+無機リン酸 (2)基質特異性ニ アミノ基受容体としては、本酵素はL−グルタミン酸に
極めて高い特異性を示す。塩化アンモニウムの代りにヒ
ドロキシルアミンを用いた場合にも、約30%の活性が
認められた。
(J至適pHおよびpH安定性:
本酵素の至適pHは7.0〜8.0である。また・本酵
素を50’Cにおいて、それぞれのpklで10分間処
理したとき、pH6,0〜9.0の範囲で安定であるC
[4)至適温度および熱安定性: 本酵素の至適温度は50°C付近にあり、pa7.0に
おいて1それぞれの温度で10分間処理したとき50°
Cまで安定である。
素を50’Cにおいて、それぞれのpklで10分間処
理したとき、pH6,0〜9.0の範囲で安定であるC
[4)至適温度および熱安定性: 本酵素の至適温度は50°C付近にあり、pa7.0に
おいて1それぞれの温度で10分間処理したとき50°
Cまで安定である。
(ω分子社:
本酵素の分子量は沈降平衡法により、偏比容を0475
と仮定したときに約50万である。
と仮定したときに約50万である。
また、5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法では
約6万〜6,5万であることから、本酵素は同一のサブ
ユニット8個からなる8量体である。
約6万〜6,5万であることから、本酵素は同一のサブ
ユニット8個からなる8量体である。
(6)阻 害:
各種代謝産物による百害を検討したところ・アミノ酸類
ではグリシン、L−トリプトファン、D−スレオニン等
で若干の医書が見られる程度であるが、ヌクレオチド、
ヌクレオシド類による阻害は大きく、アデノシン、 A
MP。
ではグリシン、L−トリプトファン、D−スレオニン等
で若干の医書が見られる程度であるが、ヌクレオチド、
ヌクレオシド類による阻害は大きく、アデノシン、 A
MP。
ADPなどによって活性は強く■害される。
(′r)金属イオンの影響:
酵素反応には金属イオンとしてMg 1+を要求しSM
n”十でも34%の活性がある〇(8) Km値: 各、基質に対するKm値を求めたところ、L−グルタミ
ン酸に対して7.9 x 10−”M%塩化アンモニウ
ムに対して5.0 x 10−”M、 ATPに対して
1.2 X 10−’Mであった。
n”十でも34%の活性がある〇(8) Km値: 各、基質に対するKm値を求めたところ、L−グルタミ
ン酸に対して7.9 x 10−”M%塩化アンモニウ
ムに対して5.0 x 10−”M、 ATPに対して
1.2 X 10−’Mであった。
(9)酵素活性測定法:
酵素活性の測定は次のようにして求めた。
soomMグルタミン酸ナトリツナトリウム溶液0mi
x250mM塩化アンモニウム溶液0.1ffiA!、
75mM ATP溶液0.1 ml s 300 mM
Mg01g溶液0.1尼、1Mイミダゾール−塩酸緩
裡液(pH7,0)Q、 l ml 、水0.4 rn
lおよび適当に希釈した酵素液Q、 l mi 、反応
液fl 1. Oratで37°C,10分間反応させ
、生成する無機リン酸をフイスヶーサバロウの方法で測
定する方法、および生成するグルタミンをペーパークロ
マトダラフィーで分離し、ニンヒドリン発色法で測定す
る方法により求めた◇グルタミン合成活性の1単位は上
記反応系で1分間に1μMの無機リン酸あるいはグルタ
ミンを生成する酵素量として表示した。
x250mM塩化アンモニウム溶液0.1ffiA!、
75mM ATP溶液0.1 ml s 300 mM
Mg01g溶液0.1尼、1Mイミダゾール−塩酸緩
裡液(pH7,0)Q、 l ml 、水0.4 rn
lおよび適当に希釈した酵素液Q、 l mi 、反応
液fl 1. Oratで37°C,10分間反応させ
、生成する無機リン酸をフイスヶーサバロウの方法で測
定する方法、および生成するグルタミンをペーパークロ
マトダラフィーで分離し、ニンヒドリン発色法で測定す
る方法により求めた◇グルタミン合成活性の1単位は上
記反応系で1分間に1μMの無機リン酸あるいはグルタ
ミンを生成する酵素量として表示した。
なお、グルタミン合成酵素の製造方法については特開昭
57−33594号に記載されている。
57−33594号に記載されている。
アンモニアおよびATPの定量法
本発明者らは、被検液中のアンモニアまたはATPの定
量方法について鋭意検討を重ねた結果・グルタミン合成
酵素を用いることにより高感度で簡便かつ安価なアンモ
ニアまたはATPの定量法を見出した。被検液中のアン
モニアはL−グルタミン酸とATPの存在下、グルタミ
ン合成酵素の作用により、L−グルタミン、ADPおよ
び無機リン酸を生成し、また被検液中のATPはL−ダ
ルタミン酸とアンモニアの存在下、本酵素作用により1
L−グルタミン、ADPおよび無機リン%を生成する。
量方法について鋭意検討を重ねた結果・グルタミン合成
酵素を用いることにより高感度で簡便かつ安価なアンモ
ニアまたはATPの定量法を見出した。被検液中のアン
モニアはL−グルタミン酸とATPの存在下、グルタミ
ン合成酵素の作用により、L−グルタミン、ADPおよ
び無機リン酸を生成し、また被検液中のATPはL−ダ
ルタミン酸とアンモニアの存在下、本酵素作用により1
L−グルタミン、ADPおよび無機リン%を生成する。
酵素反応により生成したADPにキナーゼ基質用リン化
合物の存在下、キナーゼを作用させるとキナーゼ反応生
成物とATPが生成され、サイクリング反応が進行しA
TPが増幅される。この反応の一例としてピルビン酸キ
ナーゼによるADPとホスホエノールピルビン酸からA
TPとピルビン酸を生成する反応が挙げられる。生成し
たピルビン酸の定量には公知の方法を用いることができ
る。例えばピルビン酸にNADHと乳酸脱水素酵素を作
用させ、NADHの340nmの吸光度の減少より定量
するが、またはピルビン酸オキシダーゼを作用させ消費
される酸素を酸素電極で測定するか、生成する過酸化水
素をペルオキシダーゼ系による呈色反応、例えば4−ア
ミノアンチピリン−フェノール−ペルオキシダーゼ法を
用いた場合500nmで定量することかできる。
合物の存在下、キナーゼを作用させるとキナーゼ反応生
成物とATPが生成され、サイクリング反応が進行しA
TPが増幅される。この反応の一例としてピルビン酸キ
ナーゼによるADPとホスホエノールピルビン酸からA
TPとピルビン酸を生成する反応が挙げられる。生成し
たピルビン酸の定量には公知の方法を用いることができ
る。例えばピルビン酸にNADHと乳酸脱水素酵素を作
用させ、NADHの340nmの吸光度の減少より定量
するが、またはピルビン酸オキシダーゼを作用させ消費
される酸素を酸素電極で測定するか、生成する過酸化水
素をペルオキシダーゼ系による呈色反応、例えば4−ア
ミノアンチピリン−フェノール−ペルオキシダーゼ法を
用いた場合500nmで定量することかできる。
反応に用いられる緩衝液は特に限定されず、リン酸緩衝
液、イミダゾール緩衝液、トリス緩衝液、グリシルグリ
シン緩衝液などが好適であり・pH6〜9S好ましくは
pH7の緩衝液が用pbられるOグルタミン合成酵素は
通常0.2〜2Q単位、好ましくは1〜5単位・キナー
ゼ・例えハヒルビン増キナーゼは、1〜1Q0単位、好
ましくは5単位以上用いられる。また・L−グルタミン
酸濃度は1〜5QmM、好ましくは5〜l QmMs
ATPやキナーゼ基質用リン化合物1例えばホスホエノ
ールピルビン酸およびNADHは少なくとも被検液中の
アンモニアまたはATPのモル量以上用いればよい。反
応温度は20〜400C1反応時間は1〜20分間で反
応は行なわれる。
液、イミダゾール緩衝液、トリス緩衝液、グリシルグリ
シン緩衝液などが好適であり・pH6〜9S好ましくは
pH7の緩衝液が用pbられるOグルタミン合成酵素は
通常0.2〜2Q単位、好ましくは1〜5単位・キナー
ゼ・例えハヒルビン増キナーゼは、1〜1Q0単位、好
ましくは5単位以上用いられる。また・L−グルタミン
酸濃度は1〜5QmM、好ましくは5〜l QmMs
ATPやキナーゼ基質用リン化合物1例えばホスホエノ
ールピルビン酸およびNADHは少なくとも被検液中の
アンモニアまたはATPのモル量以上用いればよい。反
応温度は20〜400C1反応時間は1〜20分間で反
応は行なわれる。
以下に本発明を、実施例をもって説明するが、本発明が
以下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。
以下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。
実施例 1
アンモニアの定量 (ピルビン酸キナーゼ−乳酸脱水素
酵素反応系) 1 M イミダゾール−塩酸緩衝液(pH,7,0)
0.3m150mML−グルタミン酸ナトリウム
Q、l mi3 Q mM ATE
Q、1mt3QmM
ホスホエノールピルビン酸 011d
7.5 mM NADHQ、1m1 1.5M MgO1x
0.1工!2.7M KOI
0.1m130単位7mb
グルタミン合成酵素(合成活性) 0.11
rLl水
1.3 ml上記混合溶液3.0罰に1.2,3.4お
よび5mMの塩化アンモニウム溶液0.1 miをそれ
ぞれ添加し、37℃で5分間反応した。第1図に示すよ
うに添加した塩化アンモニウム量と340nmの吸光度
の減少量には良好な直線関係が得られた。
酵素反応系) 1 M イミダゾール−塩酸緩衝液(pH,7,0)
0.3m150mML−グルタミン酸ナトリウム
Q、l mi3 Q mM ATE
Q、1mt3QmM
ホスホエノールピルビン酸 011d
7.5 mM NADHQ、1m1 1.5M MgO1x
0.1工!2.7M KOI
0.1m130単位7mb
グルタミン合成酵素(合成活性) 0.11
rLl水
1.3 ml上記混合溶液3.0罰に1.2,3.4お
よび5mMの塩化アンモニウム溶液0.1 miをそれ
ぞれ添加し、37℃で5分間反応した。第1図に示すよ
うに添加した塩化アンモニウム量と340nmの吸光度
の減少量には良好な直線関係が得られた。
実施例 2
反応糸)
1 M イミダゾール−塩酸むQ菌液(pH7,0)
0.3m/150mM L−グルタミン酸ナトリ
ウム Q、 l m113 Q mM A
TP 0.1m
130 mM ホスホエノールピルビン酸0.112
4.6mM 4−7ミノアンチビリン
Q、 l m1420mM フェノール
0.1 rILtl、5 M
MgO1z Q、
1mA2.7M KOI
O,1mA6mM チアミンピロホスフ
ェート 0.1 mAlmM XFA
D 0.1rrl
A30単wmt グルタミン合成酵素(合成活性)、
Q、1mj水
1.4成上記混合溶液3. Onle;に
1,2,3.4および5mMの塩化アンモニウム溶液Q
、 l mlをそれぞれ添加し、37°Cで5分間反応
した。@2図に示すように添加した塩化アンモニウム量
と500nmの吸光度の増加量には良好な直線関係が得
られた〇 実施例 3 ATPの定量 1 M イミダゾール−塩酸緩衝液(pH7,0)
0.3m115QmML−グルタミン酸ナトリウム
0.1 ml 50 mM 塩化アンモニ
ウム Q、 l mi13 Q m
M ホスホエノールピルビン酸 Q、 l
mi7.5mM NADH041m1j 1.5 M Mg011
0.1m12.7M KOI
o、xmt30単V′mt
グルタミン合成酵素(合成活性) o、 1
mi水 1
.3ml上記混合溶液3. Q mlに0.25 、0
.50.0.75およびl、QmMのATP溶液0.1
蛯をそれぞれ添加。
0.3m/150mM L−グルタミン酸ナトリ
ウム Q、 l m113 Q mM A
TP 0.1m
130 mM ホスホエノールピルビン酸0.112
4.6mM 4−7ミノアンチビリン
Q、 l m1420mM フェノール
0.1 rILtl、5 M
MgO1z Q、
1mA2.7M KOI
O,1mA6mM チアミンピロホスフ
ェート 0.1 mAlmM XFA
D 0.1rrl
A30単wmt グルタミン合成酵素(合成活性)、
Q、1mj水
1.4成上記混合溶液3. Onle;に
1,2,3.4および5mMの塩化アンモニウム溶液Q
、 l mlをそれぞれ添加し、37°Cで5分間反応
した。@2図に示すように添加した塩化アンモニウム量
と500nmの吸光度の増加量には良好な直線関係が得
られた〇 実施例 3 ATPの定量 1 M イミダゾール−塩酸緩衝液(pH7,0)
0.3m115QmML−グルタミン酸ナトリウム
0.1 ml 50 mM 塩化アンモニ
ウム Q、 l mi13 Q m
M ホスホエノールピルビン酸 Q、 l
mi7.5mM NADH041m1j 1.5 M Mg011
0.1m12.7M KOI
o、xmt30単V′mt
グルタミン合成酵素(合成活性) o、 1
mi水 1
.3ml上記混合溶液3. Q mlに0.25 、0
.50.0.75およびl、QmMのATP溶液0.1
蛯をそれぞれ添加。
し、37°Cで反応させ、3分後と5分後のNADlK
の減少の差を測定した。第3図に示すようにATPの添
加量とNADHの減少量には良好な直線関係が得られた
。
の減少の差を測定した。第3図に示すようにATPの添
加量とNADHの減少量には良好な直線関係が得られた
。
参考例
グルタミン合成酵素とグルタミン酸脱水素酵素を用いて
アンモニアを定量する場合の反応速度の比較 本発明で使用されるグルタミン合成酵素と酵母由来の従
来のグルタミン酸脱水素酵素を用いて、低濃度のアンモ
ニアを定量する場合、どちらか速やかに終点に達するか
比較試験を行なった。グルタミン合成酵素を用いる場合
の混合溶液組成は45単位/rnl(合成活性)のグル
タ・ミン介成酵素溶液Q、 l miを用いる以外は実
施例1と同様で、またグルタミン酸脱水素酵素を用いる
場合の混合溶液組成は300mMト’Jスー塩酸緩衝液
(pH8,0) 1.0m1s 225mM 2−
’r )グルタA/藤溶液0.1 mε、5 mM
NADPH溶液01づ、300mM塩化アンモニウム溶
液Q、 l mt・45単位/ meグルタミン酸脱水
素酵素溶液Q、l mAおよび水1.5 miである0
上記両混合溶液3. Q rnbに0.5゜10および
2. Q mMの塩化アンモニウム溶液50μlをそれ
ぞれ添加し、37°Cで反応させNADHの減少に基づ
<340nmの吸光度を経時的に測定した。第4図に示
すようにグルタミン合成酵素を用いた場合(A)・いず
れのアンモニア濃度でも釣3分間で反応が終了するのに
対し、グルタミン酸脱水素酵素を用いた場合(B)には
、6〜7分経過時でいずれのアンモニア濃度においても
反応は終了していなかった。
アンモニアを定量する場合の反応速度の比較 本発明で使用されるグルタミン合成酵素と酵母由来の従
来のグルタミン酸脱水素酵素を用いて、低濃度のアンモ
ニアを定量する場合、どちらか速やかに終点に達するか
比較試験を行なった。グルタミン合成酵素を用いる場合
の混合溶液組成は45単位/rnl(合成活性)のグル
タ・ミン介成酵素溶液Q、 l miを用いる以外は実
施例1と同様で、またグルタミン酸脱水素酵素を用いる
場合の混合溶液組成は300mMト’Jスー塩酸緩衝液
(pH8,0) 1.0m1s 225mM 2−
’r )グルタA/藤溶液0.1 mε、5 mM
NADPH溶液01づ、300mM塩化アンモニウム溶
液Q、 l mt・45単位/ meグルタミン酸脱水
素酵素溶液Q、l mAおよび水1.5 miである0
上記両混合溶液3. Q rnbに0.5゜10および
2. Q mMの塩化アンモニウム溶液50μlをそれ
ぞれ添加し、37°Cで反応させNADHの減少に基づ
<340nmの吸光度を経時的に測定した。第4図に示
すようにグルタミン合成酵素を用いた場合(A)・いず
れのアンモニア濃度でも釣3分間で反応が終了するのに
対し、グルタミン酸脱水素酵素を用いた場合(B)には
、6〜7分経過時でいずれのアンモニア濃度においても
反応は終了していなかった。
以上詳細に説明したように、本発明の定量法によればア
ンモニアまたはATPを高感度かつ持具的に定量するこ
とができる。また本発明に用いるグルタミン合成酵素は
微生物より安価に調製することが可能であり臨床検査試
桑として優れた効果を有する。
ンモニアまたはATPを高感度かつ持具的に定量するこ
とができる。また本発明に用いるグルタミン合成酵素は
微生物より安価に調製することが可能であり臨床検査試
桑として優れた効果を有する。
第1図は本発明の定1号方法の実施例1における検1線
をアンモニア量と340nmの吸光度差との関係で示し
たグラフである。第2図は本発明の定量方法の実施例2
における検量線をアンモニア量と500nmの吸光度差
との関係で示したグラフである。第3図は本発明の定量
方法の実施例3における検量線をATP渣と340nm
の吸光度差との関係で示したグラフである。そして、第
4図は本発明に使用されるグルタミン合成酵素(A)と
従来のグルタミン酸脱水素酵素(B)をそれぞれ用いて
、アンモニアを定量する場合の反応速度を反応時間(分
)と340nmの吸光度差との関係で示したグーラフで
ある。
をアンモニア量と340nmの吸光度差との関係で示し
たグラフである。第2図は本発明の定量方法の実施例2
における検量線をアンモニア量と500nmの吸光度差
との関係で示したグラフである。第3図は本発明の定量
方法の実施例3における検量線をATP渣と340nm
の吸光度差との関係で示したグラフである。そして、第
4図は本発明に使用されるグルタミン合成酵素(A)と
従来のグルタミン酸脱水素酵素(B)をそれぞれ用いて
、アンモニアを定量する場合の反応速度を反応時間(分
)と340nmの吸光度差との関係で示したグーラフで
ある。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、被検液中のアンモニアまたはATPを定量するに当
り、被定量成分ではないもう一方の物質およびL−グル
タミン酸の存在下で被検液にグルタミン、合成酵素を作
用させ、生成したADPとキナーゼ基質用リン化合物に
キナーゼを作用させて、生成したキナーゼ反応生成物を
定量することを特徴とするアンモニアまたはATPの定
量法。 2、被検液中に、グルタミン合成酵素、キナーゼおよび
基質用リン化合物を同時に存在させる特許請求の範囲第
1項記載のアンモニアまたはATPの定量法。
Priority Applications (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14124185A JPS623800A (ja) | 1985-06-27 | 1985-06-27 | アンモニアまたはatpの定量法 |
| DE19863621448 DE3621448A1 (de) | 1985-06-27 | 1986-06-26 | Verfahren zur bestimmung von ammoniak (oder atp) |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP14124185A JPS623800A (ja) | 1985-06-27 | 1985-06-27 | アンモニアまたはatpの定量法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS623800A true JPS623800A (ja) | 1987-01-09 |
Family
ID=15287374
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP14124185A Pending JPS623800A (ja) | 1985-06-27 | 1985-06-27 | アンモニアまたはatpの定量法 |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS623800A (ja) |
| DE (1) | DE3621448A1 (ja) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH03293467A (ja) * | 1990-04-10 | 1991-12-25 | Toto Ltd | 窯業製品表面模様の形成方法 |
| KR100433683B1 (ko) * | 2001-06-18 | 2004-05-31 | 한국과학기술연구원 | 글루타민 신쎄이즈의 미세분석방법 |
| EP3315611A1 (en) | 2016-10-25 | 2018-05-02 | ARKRAY, Inc. | Quantification method for ammonia, quantification reagent kit, test piece, and ammonia quantification device |
| JP2018068278A (ja) * | 2016-10-25 | 2018-05-10 | アークレイ株式会社 | アンモニアの定量方法、定量試薬キット、試験片及びアンモニアの定量装置 |
| EP3441478A1 (en) | 2017-08-10 | 2019-02-13 | ARKRAY, Inc. | Improved glutamine synthetase reaction and method for quantifying ammonia utilizing the same |
| CN113075139A (zh) * | 2021-03-29 | 2021-07-06 | 迪瑞医疗科技股份有限公司 | 一种稳定的双试剂血氨测定试剂盒 |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE2834704A1 (de) * | 1978-08-08 | 1980-02-21 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur quantitativen enzymatischen bestimmung von adp |
-
1985
- 1985-06-27 JP JP14124185A patent/JPS623800A/ja active Pending
-
1986
- 1986-06-26 DE DE19863621448 patent/DE3621448A1/de not_active Withdrawn
Cited By (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH03293467A (ja) * | 1990-04-10 | 1991-12-25 | Toto Ltd | 窯業製品表面模様の形成方法 |
| KR100433683B1 (ko) * | 2001-06-18 | 2004-05-31 | 한국과학기술연구원 | 글루타민 신쎄이즈의 미세분석방법 |
| EP3315611A1 (en) | 2016-10-25 | 2018-05-02 | ARKRAY, Inc. | Quantification method for ammonia, quantification reagent kit, test piece, and ammonia quantification device |
| JP2018068278A (ja) * | 2016-10-25 | 2018-05-10 | アークレイ株式会社 | アンモニアの定量方法、定量試薬キット、試験片及びアンモニアの定量装置 |
| US10731200B2 (en) | 2016-10-25 | 2020-08-04 | Arkray, Inc. | Quantification method for ammonia, quantification reagent kit, test piece, and ammonia quantification device |
| EP3441478A1 (en) | 2017-08-10 | 2019-02-13 | ARKRAY, Inc. | Improved glutamine synthetase reaction and method for quantifying ammonia utilizing the same |
| US11162123B2 (en) | 2017-08-10 | 2021-11-02 | Arkray, Inc. | Glutamine synthetase reaction and method for quantifying ammonia utilizing the same |
| CN113075139A (zh) * | 2021-03-29 | 2021-07-06 | 迪瑞医疗科技股份有限公司 | 一种稳定的双试剂血氨测定试剂盒 |
| CN113075139B (zh) * | 2021-03-29 | 2022-10-11 | 迪瑞医疗科技股份有限公司 | 一种稳定的双试剂血氨测定试剂盒 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE3621448A1 (de) | 1987-01-08 |
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