JPS626676A - Method of tissue culture for plant of genus coptis - Google Patents
Method of tissue culture for plant of genus coptisInfo
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明はオウレン属植物を組織培養して健胃薬、染料な
どに利用されるベルベリンなどのイソキノリン系アルカ
ロイドを製造する方法に関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Application Field] The present invention relates to a method for producing isoquinoline alkaloids such as berberine, which are used in stomachic medicines, dyes, etc., by tissue culturing plants of the genus Aureus.
イソキノリン系アルカロイドを得る従来の方法としては
、天然で生育したオウレン属植物から抽出等によって該
アルカロイドを直接採取する方法があるが、該方法は植
物の生育等が自然環境や天候に左右されまた該植物の収
集にも時間と手間がかかるため有利な方法とは言えない
。A conventional method for obtaining isoquinoline alkaloids is to directly collect the alkaloids by extraction or the like from naturally grown plants of the genus Orensis. It is not an advantageous method because it takes time and effort to collect plants.
そこでこれに代わる方法として、例えばファイトケミス
トリー(Phytochemistry ) 23@
281〜285頁(1984年)等に記載されているよ
うに、オウレン属植物の組織培養方法によってベルベリ
ン、パルマチン、コプテシン、ヤテオリジンなどのイソ
キノリン系アルカロイドを得る方法が提案されている。Therefore, as an alternative method, for example, phytochemistry 23@
As described in pages 281 to 285 (1984), a method for obtaining isoquinoline alkaloids such as berberine, palmatine, coptesin, and yateorisine by tissue culture of plants of the genus Aureus has been proposed.
しかし、これら従来公知の組織培養方法においては、培
養細胞から生産される目的物のイソキノリン系アルカロ
イドの収量が低いという問題がある。However, these conventional tissue culture methods have a problem in that the yield of the target isoquinoline alkaloid produced from cultured cells is low.
したがってこのような組織培養法によりイソキノリン系
アルカロイドの工業的な生産を目指す場合、さらに生産
性を高めることが重要な課題であった。Therefore, when aiming at industrial production of isoquinoline alkaloids using such tissue culture methods, it has been an important issue to further increase productivity.
このような事情にかんがみ、本発明者らは、オウレン属
植物の組織を効率よく培養してイソキノリン系アルカロ
イドを従来法に比べて多く得る方法について検討した。In view of these circumstances, the present inventors investigated a method for efficiently culturing the tissues of plants of the genus Orensis to obtain more isoquinoline alkaloids than conventional methods.
その結果、本発明者等はオウレン属植物の組織培養にお
いては、組織培養物によるイソキノリン系アルカロイド
の生産性は培地の溶存酸素濃度に大きく影響されること
を見出し、本発明を完成するに到った。すなわち本発明
の方法によれば、オウレン属植物を液体培地を用いて組
織培養するに当たり、該培地の溶存酸素濃度を10ない
し20ppmにしてイソキノリン系アルカロイドを生産
することを特徴とするオウレン属植物の組織培養方法、
が提供される。As a result, the present inventors discovered that the productivity of isoquinoline alkaloids in tissue culture is greatly influenced by the dissolved oxygen concentration of the culture medium in tissue culture of plants of the genus Orientalus, which led to the completion of the present invention. Ta. That is, according to the method of the present invention, isoquinoline alkaloids are produced by culturing the tissue culture of a plant of the genus Auris using a liquid medium with a dissolved oxygen concentration of 10 to 20 ppm. tissue culture methods,
is provided.
本発明の方法において用いられるオウレン属植物として
は、例えばオウレン(Coptis japonica
Makino )、セリバオウレン(C,japoni
ka Makin。Examples of plants of the genus Coptis used in the method of the present invention include Coptis japonica.
Makino), C. japoni
Ka Makin.
var、dussecta Nakai )、キクバオ
ウレン(C。var, dussecta Nakai), C. var.
japonika Makino var、japon
ica )、コセリバオウレン(C,japonika
Makino var、major 5atake
)、バイカオウレンCC,quinquefolia
Miq、 )およびミツバオウレン(C,trifol
ia 5alisb、)等を挙げることができる。本発
明ではこれらの植物の中では特にセリバオウレンを用い
ることが好ましい。japonika Makino var, japon
ica ), C. japonika
Makino var, major 5atake
), Baikaouren CC, quinquefolia
Miq, ) and C. trifol
ia 5alisb, ), etc. In the present invention, among these plants, it is particularly preferable to use Seriba orensis.
本発明で使用される液体培地は、無機成分および炭素源
を必須成分とし、これに植物ホルモン類、ビタミン類を
添加し、更に必要に応じてアミノ酸類を添加した培地で
ある。The liquid medium used in the present invention is a medium containing inorganic components and a carbon source as essential components, to which are added plant hormones and vitamins, and further added with amino acids as necessary.
該培地の無機成分としては、窒素、リン、カリウム、ナ
、トリウム、カルシウム、マグネシウム、イオウ、鉄、
マンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、ヨウ素、
コバルト等の元素を含む無機塩を挙げることができ、具
体的には硝酸カリウム、硝酸ナトリウム、硝酸アンモニ
ウム、塩化アンモニウム、塩化カリウム、塩化カルシウ
ム、リン酸l水素カリウム、リン酸2水素ナトリウム、
硫酸マグネシウム、塩化マグネシウム、硫酸ナトリウム
、硫酸第1鉄、硫酸第2鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、モ
リブデン酸ナトリウム、三酸化モリブデン、ヨウ化カリ
ウム、硫酸亜鉛、ホウ酸、塩化コバルト等の化合物を例
示できる。Inorganic components of the medium include nitrogen, phosphorus, potassium, sodium, thorium, calcium, magnesium, sulfur, iron,
Manganese, zinc, boron, molybdenum, chlorine, iodine,
Examples include inorganic salts containing elements such as cobalt, specifically potassium nitrate, sodium nitrate, ammonium nitrate, ammonium chloride, potassium chloride, calcium chloride, potassium l-hydrogen phosphate, sodium dihydrogen phosphate,
Examples of compounds include magnesium sulfate, magnesium chloride, sodium sulfate, ferrous sulfate, ferric sulfate, manganese sulfate, copper sulfate, sodium molybdate, molybdenum trioxide, potassium iodide, zinc sulfate, boric acid, and cobalt chloride. can.
該培地の炭素原としては、ショ糖等の炭水化物とその誘
導体、脂肪酸等の有機酸およびエタノール等の1級アル
コールなどを例示できる。Examples of carbon sources for the medium include carbohydrates such as sucrose and their derivatives, organic acids such as fatty acids, and primary alcohols such as ethanol.
該培地の植物ホルモン類としては、例えば、ナフタレン
酢酸(NAA) 、インドール酢酸(IAA)、p−ク
ロロフェノキシ酢酸、2,4−ジクロロフェノキシ酢酸
(2,4−D) 、インドール酪M (IBM)および
このらの誘導体等のオーキシン類およびベンジルアデニ
ン(BA) 、カイネチン、ゼアチンのサイトカイニン
類を例示できる。本発明ではサイトカイニン類は通常は
培地に添加しないことが望ましいが、必要に応じて添加
する場合にはサイトカイニン類は濃度が通常10 M
(0,02■/l)以下の低濃度で使用することが好
ましい。Examples of plant hormones in the medium include naphthaleneacetic acid (NAA), indoleacetic acid (IAA), p-chlorophenoxyacetic acid, 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D), and indolebutyric acid (IBM). Examples include auxins such as and derivatives thereof, and cytokinins such as benzyladenine (BA), kinetin, and zeatin. In the present invention, it is usually desirable not to add cytokinins to the culture medium, but when added as necessary, the concentration of cytokinins is usually 10 M.
It is preferable to use it at a low concentration of (0.02 ■/l) or less.
該培地のビタミン類としては、ビオチン、チアミン(ビ
タミンB、)、ピリドキシン(ビタミンB6)、ピリド
キサール、ピリドキサミン、パントテン酸カルシウム、
アスコルビン酸(ビタミンC)、イノシトール、ニコチ
ン酸、ニコチン酸アミドおよびリボブラビン(ビタミン
B2)などを例示できる。The vitamins in the medium include biotin, thiamine (vitamin B), pyridoxine (vitamin B6), pyridoxal, pyridoxamine, calcium pantothenate,
Examples include ascorbic acid (vitamin C), inositol, nicotinic acid, nicotinamide, and ribobravin (vitamin B2).
該培地のアミノ酸類としては、例えばグリシン、アラニ
ン、グルタミン酸、システィン、フェニルアラニンおよ
びリジンなどを例示できる。Examples of amino acids in the medium include glycine, alanine, glutamic acid, cysteine, phenylalanine, and lysine.
本発明の前記培地は、通常は、前記無機成分を約0.1
μMないし約100mM、前記炭素源を約1 g/zな
いし約100 g / l、前記植物ホルモン類を約0
.1rng/ lないし約100mg/ l、前記ビタ
ミン類を約0.1mg/j!ないし約150mg/ I
tおよび前記アミノ酸類を0ないし約1000mg/
1含ませて使用することが望ましい。The medium of the present invention usually contains about 0.1 of the inorganic components.
μM to about 100 mM, about 1 g/z to about 100 g/l of the carbon source, and about 0 g/z of the plant hormones.
.. 1rng/l to about 100mg/l, and about 0.1mg/j of the above vitamins! or about 150mg/I
t and the above amino acids at 0 to about 1000 mg/
It is desirable to use it with 1.
本発明のオウレン属植物の組織培養に用いられる前記培
地として具体的には、従来から知られている植物の組織
培養に用いられている培地、例えば、ムラシゲ・スクー
グ(’62 ) (Murashige &Skoo
g 〕の培地、リンスマイヤー・スクーグ(RM−19
65) (Lins+++aier & Skoog
)の培地、ホワイト(”63 ) (White )
の培地、ガンボルグ(Gamborg )のB−5培地
、三井のM−9培地、エッチ・ニッチの培地CN1ts
ch &N1tsch)等に前記した炭素源および植
物ホルモンを添加し、更に必要に応じて前記したビタミ
ン類、アミノ酸類を添加して調製される培地を例示でき
るが、本発明ではこの中でも特にニッチ・ニッチ、リン
スマイヤー・スクーグ又はムラ゛シゲ・スクーグの培地
を用いて調製される培地が好ましい。なお、上記した従
来公知の培地の組成に関しては、例えば、行内、中高、
古谷著の「新植物組織培養J P386〜P391、朝
食書店、1979年に記載されている。Specifically, the medium used for the tissue culture of plants of the genus Aureus of the present invention may be a conventionally known culture medium used for tissue culture of plants, such as Murashige & Skoo ('62).
g] culture medium, Linsmeyer-Skoog (RM-19
65) (Lins+++aier & Skoog
) medium, white ("63) (White)
, Gamborg's B-5 medium, Mitsui's M-9 medium, Hetch Niche's medium CN1ts
An example is a culture medium prepared by adding the above-mentioned carbon sources and plant hormones to the culture medium (ch & N1tsch), and further adding the above-mentioned vitamins and amino acids as necessary. , Linsmeyer-Skoog, or Murashige-Skoog's medium is preferred. In addition, regarding the composition of the above-mentioned conventionally known culture medium, for example,
It is described in "New Plant Tissue Culture JP P386-P391," written by Furuya, Shokusho Shoten, 1979.
本発明では前記した液体培地を用いてオウレン属植物の
組織培養を行い、イソキノリン系アルカロイドが生産さ
れるが、この場合、本発明では培地の溶存酸素濃度が通
常10ないし20ppm 、好ましくは10ないし15
ppmとなるようにして組織培養が行われる。溶存酸素
濃度が通常10ppmよりも低い場合および通常20p
pmよりも高い場合にはオウレン属の培養細胞によるイ
ンキノリン系アルカロイドの生産量が低下するので好ま
しくない。培地の溶存酸素濃度を本発明で行われる前記
濃度範囲にする方法としては以下に示す方法を例示でき
る。In the present invention, isoquinoline alkaloids are produced by culturing tissues of plants of the genus Aureus using the liquid medium described above. In this case, in the present invention, the dissolved oxygen concentration of the medium is usually 10 to 20 ppm, preferably 10 to 15
Tissue culture is performed in such a way that ppm. When dissolved oxygen concentration is usually lower than 10ppm and usually 20p
If it is higher than pm, it is not preferable because the production amount of inquinoline alkaloids by cultured cells of the genus Aureus decreases. Examples of methods for bringing the dissolved oxygen concentration of the culture medium within the above-mentioned concentration range according to the present invention include the following methods.
すなわち通常圓ないしN”Cで組織培養が行われる液体
培地において、該培地に接触する酸素含有ガと培地を適
宜の方法によって接触させることにより、培地の溶存酸
素濃度を前記範囲にすることができる。この場合の酸素
含有ガスとしては具体的にはチッ素等の不活性成分を含
んだ種々の酸素濃度を有するガスや純酸素ガスを例示で
きる。酸素含有ガスとして空気を大気圧以下で培地と接
触させる方法は従来のズボイシア属植物の組織培養にお
いて採用された方法であって、この方法では培地の溶存
酸素濃度は培養温度によっても多少異なるが通常8pp
m程度と低いためイソキノリン系アルカロイドの生産量
は少ないので好ましくない。本発明では必要に応じて酸
素含有ガスとして空気を用いることも出来、この場合に
は該ガスを加圧することによって系内の全圧を高くして
ガス中の酸素分圧を前記範囲にすることによって、培地
の溶存酸素濃度を本発明の範囲にすることができる。In other words, in a liquid medium in which tissue culture is normally carried out at a temperature of 1/2 to 1/2 C, the dissolved oxygen concentration of the medium can be brought into the above range by bringing the medium into contact with oxygen-containing moths that come into contact with the medium by an appropriate method. Specific examples of the oxygen-containing gas in this case include gases containing inert components such as nitrogen and having various oxygen concentrations, and pure oxygen gas.As the oxygen-containing gas, air is used as a culture medium at below atmospheric pressure. The contacting method is the method used in conventional tissue culture of Zboisia plants, and in this method, the dissolved oxygen concentration in the medium varies somewhat depending on the culture temperature, but is usually 8 pp.
Since it is as low as about m, the production amount of isoquinoline alkaloids is small, which is not preferable. In the present invention, air can be used as the oxygen-containing gas if necessary, and in this case, the total pressure in the system is increased by pressurizing the gas to bring the oxygen partial pressure in the gas into the above range. Accordingly, the dissolved oxygen concentration of the medium can be kept within the range of the present invention.
大気圧下で組織培養を行う場合には純酸素ガスを使用し
ても培地の溶存酸素濃度は通常40ppm程度しか高ま
らないため、更に酸素濃度を高めたい場合には通常知ら
れている適宜方法によって加圧した系で組織培養を行う
方法が採用される。要するに本発明では、状況に応じて
酸素含有ガス中の酸素分圧を適宜選ぶことによって培地
の溶存酸素濃度を前記範囲にして培養が行われる。When performing tissue culture under atmospheric pressure, the dissolved oxygen concentration in the medium usually increases by only about 40 ppm even if pure oxygen gas is used, so if you want to further increase the oxygen concentration, use any commonly known appropriate method. A method of culturing tissue in a pressurized system is adopted. In short, in the present invention, culture is carried out with the dissolved oxygen concentration in the culture medium within the above range by appropriately selecting the oxygen partial pressure in the oxygen-containing gas depending on the situation.
本発明では酸素含有ガスと培地を接触させる方法として
は特にどのような方法を用いなければならないというこ
とは無く、通常知られているどのような方法でも採用で
きる。そして該接触方法として具体的には、例えば液体
培地中に置かれた多数の孔を有するガス分散器を介して
培地中に酸素含有ガスを放出させる通気培養方法、ある
いはシリコン、テフロン等の特殊な材料から作られた酸
素透過性の膜からできた任意形状のガス送入部を培地と
接触させてこの膜を介して培地中に酸素を供給する方法
などを例示できる。酸素透過性の膜を用いる方法では、
通気培養のときのような激しい気泡の発生も無いので培
養物に好ましくない外力をかけないようにすることがで
きるので一層好ましい。In the present invention, it is not necessary to use any particular method for bringing the oxygen-containing gas into contact with the culture medium, and any commonly known method can be employed. Specifically, the contact method includes, for example, an aerated culture method in which oxygen-containing gas is released into the medium through a gas disperser with many holes placed in the liquid medium, or a special method such as silicone, Teflon, etc. Examples include a method in which a gas inlet of an arbitrary shape made of an oxygen-permeable membrane made of a material is brought into contact with the culture medium, and oxygen is supplied into the culture medium through this membrane. In the method using an oxygen permeable membrane,
This method is more preferable because there is no generation of intense air bubbles as is the case with aerated culture, so it is possible to avoid applying undesirable external forces to the culture.
培地の溶存酸素濃度を測定する方法としては例えば以下
に示すような方法がある。−−■1−−−ガルパニック
セル型の酸素
電極を用いて溶存酸素濃度に比例して発生する電流を測
定し、所定の溶存酸素濃度に対応する電流以上になると
自動的に供給酸素量を減じ、かつ該電流値以下の場合、
自動的に供給量を増加せしめることによって境地の溶存
酸素濃度を所定の値に維持する方法である。Examples of methods for measuring the dissolved oxygen concentration of a culture medium include the following methods. −−■1−−−Measure the current generated in proportion to the dissolved oxygen concentration using a galpanic cell type oxygen electrode, and automatically reduce the amount of oxygen supplied when the current exceeds a predetermined dissolved oxygen concentration. If the current value decreases and is less than the current value,
This method maintains the dissolved oxygen concentration at a predetermined value by automatically increasing the supply amount.
本発明で実施される組織培養においては、培養槽あるい
は培養装置については特にどのようなものを用いなけれ
ばならないということはな(、前記した本発明の要件を
満足できるものであればどのようなものでも使用出来る
。本発明では培地を、必要に応じて培養槽自体の振とう
、旋回あるいは攪拌羽根等の手段によって攪拌しても良
いし、又静置しても良い。あるいは又本出願人が特願昭
59−262099号によって提案した液体散布の方法
、すなわち液体培地を培養物の上方からシャワー状に散
布するようにして培養する方法を採用することもできる
。この場合には液体培地を培養器とは別の所で酸素含有
ガスと接触させて培地の溶存酸素濃度を前記範囲に調整
してからこの液体培地を培養器に導入し、リサイクル使
用する方法を例示できる。In the tissue culture carried out in accordance with the present invention, there is no particular need to use a culture tank or a culture device (any device may be used as long as it satisfies the requirements of the present invention described above). In the present invention, the culture medium may be agitated by means such as shaking, swirling, or stirring blades of the culture tank itself, as necessary, or may be allowed to stand still.Alternatively, the present applicant It is also possible to adopt the method of liquid spraying proposed in Japanese Patent Application No. 59-262099, that is, the method of culturing by spraying a liquid medium from above the culture in a shower-like manner.In this case, the liquid medium is An example of a method is to bring the culture medium into contact with an oxygen-containing gas at a location other than the culture vessel to adjust the dissolved oxygen concentration of the culture medium to the above range, and then introduce this liquid culture medium into the culture vessel and reuse it.
本発明では前記方法によってオウレン属植物が組織培養
されてイソキノリン系アルカロイドが生産される。この
場合のイソキノリン系アルカロイドとして具体的にはベ
ルベリン、パルマチン、コプテシン、ヤテオリジン等で
あってこの中ではベルベリンが好ましい。In the present invention, isoquinoline alkaloids are produced by tissue culturing plants of the genus Aureus by the method described above. Specific examples of the isoquinoline alkaloid in this case include berberine, palmatine, coptesin, and yateorisine, among which berberine is preferred.
以下、本発明の組織培養の具体的方法について示す。The specific method of tissue culture of the present invention will be described below.
先ず、オウレン属に属する植物の植物体、例えば、根、
生長点、葉、茎、果実、種子等から採取された組織片を
、例えば、新植物組織培養(朝食書店1979版)、2
1頁に記載されている寒天で固めた、リンスマイヤース
クーグの培地(RM−1965)上に置床して、10〜
35℃で7〜30日間程度培養することによって該組織
片の一部をカルス化させる。First, the plant body of a plant belonging to the genus Orensis, such as roots,
Tissue pieces collected from growing points, leaves, stems, fruits, seeds, etc., are subjected to, for example, New Plant Tissue Culture (Breakfast Shoten 1979 Edition), 2
Place the plate on Rinsmeyer Skoog's medium (RM-1965) hardened with agar described on page 1,
A part of the tissue piece is formed into a callus by culturing at 35° C. for about 7 to 30 days.
このようにして得られるオウレン属植物のカルスを、通
常知られている方法によって継代培養すると、カルスの
生育速度が漸次高まる。次にこのカルスを増殖に適した
液体培地、例えば、新植物組織培養(利金書店1979
年版)、21頁に記載されているリンスマイヤースクー
グの液体培地に移して更に増殖させると培養細胞の生育
速度は更に高められ安定化した培養細胞が得られる。本
発明の方法では、このようにして得られる安定化した培
養細胞を本発明の前記液体培地に添加して更に培養が行
われる。When the callus of a plant of the genus Orenia thus obtained is subcultured by a commonly known method, the growth rate of the callus gradually increases. Next, this callus is grown in a liquid medium suitable for propagation, such as New Plant Tissue Culture (Rikin Shoten 1979).
If the cells are transferred to the Linsmeyer-Skoog liquid medium described in 2010, p. 21 and further grown, the growth rate of the cultured cells will be further increased and stabilized cultured cells will be obtained. In the method of the present invention, the thus obtained stabilized cultured cells are added to the liquid medium of the present invention and further cultured.
本発明の組織培養における培養温度としては、通常は、
約10ないし約35℃、この中でも特に約23ないし約
28℃が好適であり、該温度を約10℃未満にすると培
養細胞の増殖速度は小さく、また該温度を35℃以上に
したときも同様に培養細胞の増殖速度は小さくなる。本
発明の組織培養を行うに当たっでは、光は必ずしも必要
ではないが、光の照射はベルベリン等のイソキノリン系
アルカロイドの生成を妨げない。The culture temperature in the tissue culture of the present invention is usually as follows:
About 10 to about 35°C, especially about 23 to about 28°C is preferred; when the temperature is less than about 10°C, the growth rate of cultured cells is low, and the same is true when the temperature is raised to 35°C or higher. The growth rate of cultured cells decreases. Although light is not necessarily required for the tissue culture of the present invention, irradiation with light does not inhibit the production of isoquinoline alkaloids such as berberine.
本発明の方法においては、培養終了後に培養細胞をデカ
ンテーションあるいは濾過等の方法によって液体培地か
ら分離し、次に該培養細胞から目的とするベルベリン等
のイソキノリン系のアルカロイドを従来から知られてい
る天然品のオウレンオウバク等に通用されている抽出等
の方法によって分離することができる。このようにして
得られる該アルカロイドは必要に応じて再結晶等の方法
によって純度を高めることができる。In the method of the present invention, after the culture is completed, the cultured cells are separated from the liquid medium by a method such as decantation or filtration, and then the target isoquinoline alkaloid such as berberine is extracted from the cultured cells using conventionally known methods. It can be separated by methods such as extraction, which are commonly used for natural products such as Oriental apricot. The purity of the alkaloid thus obtained can be increased by a method such as recrystallization, if necessary.
本発明のオウレン属植物の組織培養方法によれば従来法
に比べてベルベリン等のイソキノリン系アルカロイドを
多く生産することができる。According to the tissue culture method for plants belonging to the genus Aureus of the present invention, more isoquinoline alkaloids such as berberine can be produced than in conventional methods.
以下、本発明の方法を実施例によって更に具体的に説明
する。Hereinafter, the method of the present invention will be explained in more detail with reference to Examples.
実施例1
セリバオウレン(Coptis japonica M
akin。Example 1 Coptis japonica M
akin.
Var、dissecta Nakat )の葉を70
%エタノール溶液および次亜塩素酸ソーダ水溶?&(有
効塩素量0.5%)で殺菌した後に、ショ糖3%、ナフ
タレン酢酸10−’M、ベンジルアデニン10 Mを
含有する無菌のリンスマイヤー・スクーグの液体培地(
組成を第1表に示す)を寒天で固めた固体培地(寒天1
重量%)上に置床して25°C暗所で培養してセリバオ
ウレンのカルスを得た。次に、このセリバオウレンのカ
ルスを上記と同様の条件でリンスマイヤー・スクーグの
液体培地で14日毎に植えつぎ、ロータリーシェーカー
で旋回環#(振幅25+u、1100rp ) シてセ
リバオウレンの培養細胞の生育速度を速め、安定化した
セリバオウレン培養細胞を得た。Var, dissecta Nakat) leaves 70
% ethanol solution and sodium hypochlorite aqueous solution? After sterilization with & (0.5% available chlorine), a sterile Linsmeyer-Skoog liquid medium containing 3% sucrose, 10 M naphthalene acetate, and 10 M benzyladenine (
Solid medium (composition shown in Table 1) solidified with agar (Agar 1
% by weight) and cultured at 25° C. in the dark to obtain a callus of Seriba aurifolia. Next, this callus of Seriba orensis was planted every 14 days in a Linsmeyer-Skoog liquid medium under the same conditions as above, and the growth rate of the cultured cells of Seriba orensis was determined by rotating it in a rotary shaker using a rotating ring # (amplitude 25+u, 1100 rp). Accelerated and stabilized cultured cells of Seriba ouren were obtained.
溶存酸素濃度計と酸素含有ガス通気管を備えた通気攪拌
培養槽(内容積2りにCu2+濃度を1μMに変更した
無菌の上記液体培地1.51および上記カルス15g新
鮮重量を入れ、溶存酸素濃度が10ppmになるように
酸素含有ガスの通気量を調節しなから25°C暗所で2
週間培養した。得られたカルスを乾燥した後の重量は1
7.9 g (11,9g /β)であった。乳鉢を用
いて乾燥カルスを破砕した後に90%メタノールでイソ
キノリン系アルカロイドを抽出した。品抽出液を高速液
体クロマトグラフィーを用いてベルベリン、パルマチン
、コプテシン、ヤテオリジン等のイソキノリン系アルカ
ロイドを分析したところ、乾燥カルス重量あたりの該イ
ソキノリン系アルカロイドの合計量は12.7重量%で
あった。このうちベルベリンは8.1重量%第 1
表
なお、アルカロイドの分析には山田らの方法(Phyt
ochemistry、 23281 (1984)
)に従って以下の条件を用いた。An aerated agitation culture tank equipped with a dissolved oxygen concentration meter and an oxygen-containing gas ventilation pipe (inner volume 2 was filled with 1.51 liters of the above sterile liquid medium with the Cu2+ concentration changed to 1 μM and 15 g fresh weight of the above callus, and the dissolved oxygen concentration Adjust the amount of oxygen-containing gas aeration so that
Cultured for a week. The weight of the obtained callus after drying is 1
It was 7.9 g (11.9 g/β). After crushing the dried callus using a mortar, isoquinoline alkaloids were extracted with 90% methanol. When the product extract was analyzed for isoquinoline alkaloids such as berberine, palmatine, coptesin, and yateorigin using high performance liquid chromatography, the total amount of the isoquinoline alkaloids per dry callus weight was 12.7% by weight. Of these, berberine accounts for 8.1% by weight.
In addition, the method of Yamada et al. (Phyt
ochemistry, 23281 (1984)
), the following conditions were used.
カラム :μmボンダパックCIB、3Qcm X3.
9mm熔 媒 :オクタンスルホン酸ナトリウム5mM
と酢酸1%を含む水−アセトニトリ
ル(13ニア)
測定波長: 254nm
実施例2〜5、比較例1〜2Column: μm bonder pack CIB, 3Qcm X3.
9mm melting medium: Sodium octanesulfonate 5mM
and water containing 1% acetic acid - acetonitrile (13nia) Measurement wavelength: 254 nm Examples 2-5, Comparative Examples 1-2
Claims (1)
に当たり、該培地の溶存酸素濃度を10ないし20pp
mにしてイソキノリン系アルカロイドを生産することを
特徴とするオウレン属植物の組織培養方法。(1) When tissue culturing plants of the genus Orensis using a liquid medium, the dissolved oxygen concentration of the medium should be 10 to 20 pp.
1. A tissue culture method for a plant of the genus Orensis, characterized in that it produces an isoquinoline alkaloid as m.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60143883A JPH0746987B2 (en) | 1985-07-02 | 1985-07-02 | Method for tissue culture of Orchid plant |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP60143883A JPH0746987B2 (en) | 1985-07-02 | 1985-07-02 | Method for tissue culture of Orchid plant |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS626676A true JPS626676A (en) | 1987-01-13 |
| JPH0746987B2 JPH0746987B2 (en) | 1995-05-24 |
Family
ID=15349237
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP60143883A Expired - Lifetime JPH0746987B2 (en) | 1985-07-02 | 1985-07-02 | Method for tissue culture of Orchid plant |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0746987B2 (en) |
-
1985
- 1985-07-02 JP JP60143883A patent/JPH0746987B2/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0746987B2 (en) | 1995-05-24 |
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