JPS63133982A - 動物細胞増殖用組成物およびそれを用いる動物細胞の増殖方法 - Google Patents
動物細胞増殖用組成物およびそれを用いる動物細胞の増殖方法Info
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- JPS63133982A JPS63133982A JP61279774A JP27977486A JPS63133982A JP S63133982 A JPS63133982 A JP S63133982A JP 61279774 A JP61279774 A JP 61279774A JP 27977486 A JP27977486 A JP 27977486A JP S63133982 A JPS63133982 A JP S63133982A
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
灸泉直Δ秤亜立J
本発明は、動物細胞を増殖するための組成物。
動物細胞の増殖方法および生理活性物質の製造法に関す
る。
る。
従来の技術
動物細胞を大量に効率よく培養する技術は、新しい有用
な生理活性物質の探索や生産に、ざらに遺伝子操作技術
を施した細胞を用いる生理活性物質生産に必須の技術と
して、種々の方向からの研究が進められている。従来動
物細胞の培養には、血清を約IO%程度添加した培地が
主として用いられ、とりわけ牛胎児血清(F CS、)
含有培地が賞用されて来た。
な生理活性物質の探索や生産に、ざらに遺伝子操作技術
を施した細胞を用いる生理活性物質生産に必須の技術と
して、種々の方向からの研究が進められている。従来動
物細胞の培養には、血清を約IO%程度添加した培地が
主として用いられ、とりわけ牛胎児血清(F CS、)
含有培地が賞用されて来た。
発明が解決しようとする問題点
しかしながら、血清は非常に高価であり、かつ原因不明
のロット差があるため、細胞を大量に培養するには問題
が多い。さらに血清には多種類の異種蛋白質が含まれろ
ため、生産される有用物質を培毘液から回収精製する際
にも不都合か生ずる。
のロット差があるため、細胞を大量に培養するには問題
が多い。さらに血清には多種類の異種蛋白質が含まれろ
ため、生産される有用物質を培毘液から回収精製する際
にも不都合か生ずる。
これらの不都合を解消しようとして、血清を含まない培
地(j@血清培地)が種々開発されて来たが、一般に汎
用性が低く、増殖性および生理活性物質生、産性の面で
も血清含有培地に比べると必ずしら十分なしのとはいえ
ない。
地(j@血清培地)が種々開発されて来たが、一般に汎
用性が低く、増殖性および生理活性物質生、産性の面で
も血清含有培地に比べると必ずしら十分なしのとはいえ
ない。
いずれにしても従来知られている培地は、細胞陪従によ
って有用物質を大量に効率よく得るためには必ずしも十
分満足できるものではなかった。
って有用物質を大量に効率よく得るためには必ずしも十
分満足できるものではなかった。
そこで、本発明者らは、ポリエチレングリコールを添加
した動物細胞増殖用組成物により動物細胞を培養すると
、動物細胞が著しく増殖され、またこれにより、産生さ
れる生理活性物質の量が増大されろ旨の発明を行なっj
コ(特願昭61−128112号)。
した動物細胞増殖用組成物により動物細胞を培養すると
、動物細胞が著しく増殖され、またこれにより、産生さ
れる生理活性物質の量が増大されろ旨の発明を行なっj
コ(特願昭61−128112号)。
また、ポリビニールアルコールまたはこれとポリエチレ
ングリコールとを添加した動物細胞増殖用組成物により
動物細胞を培養すると、動物細胞が著しく増殖され、ま
たこれにより、産生される生理活性物質の量か増大され
る旨の発明を行なった(特願昭61−227190号)
。
ングリコールとを添加した動物細胞増殖用組成物により
動物細胞を培養すると、動物細胞が著しく増殖され、ま
たこれにより、産生される生理活性物質の量か増大され
る旨の発明を行なった(特願昭61−227190号)
。
問題点を解決するための手段
本発明者らは、さらに種々研究を重ねたところ、ポリエ
チレングリコールまたは/およびポリビニールアルコー
ルにさらに低密度リポ蛋白質を添加すると、血清無添加
の状態でら動物細胞の増殖か昔しく促進され、またこれ
により、産生されろ生理活性物質の量が増大され、しか
も動物細胞に対する汎用性が高まることを見い出し、こ
れに基づいてさらに研究した結果、本発明を完成した。
チレングリコールまたは/およびポリビニールアルコー
ルにさらに低密度リポ蛋白質を添加すると、血清無添加
の状態でら動物細胞の増殖か昔しく促進され、またこれ
により、産生されろ生理活性物質の量が増大され、しか
も動物細胞に対する汎用性が高まることを見い出し、こ
れに基づいてさらに研究した結果、本発明を完成した。
本発明は、
(1)ポリエチレングリコールまたは/およびポリビニ
ールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有してなる動
物細胞増殖用組成物、 (2)ポリエチレングリコールまたは/およびポリビニ
ールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有してなる動
物細胞増殖用培地で動物細胞を培養することを特徴とす
る動物細胞の増殖方法および(3)ポリエチレングリコ
ールまたは/およびポリビニールアルコールと低密度リ
ポ蛋白質とを含有する動物細胞増殖用培地で、生理活性
物質を産生ずる動物細胞を培養し、培養物中にこれを生
成蓄積せしめ、採取することを特徴とする生理活性物質
の製造法である。
ールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有してなる動
物細胞増殖用組成物、 (2)ポリエチレングリコールまたは/およびポリビニ
ールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有してなる動
物細胞増殖用培地で動物細胞を培養することを特徴とす
る動物細胞の増殖方法および(3)ポリエチレングリコ
ールまたは/およびポリビニールアルコールと低密度リ
ポ蛋白質とを含有する動物細胞増殖用培地で、生理活性
物質を産生ずる動物細胞を培養し、培養物中にこれを生
成蓄積せしめ、採取することを特徴とする生理活性物質
の製造法である。
本明細書においては、ポリエチレングリコール。
ポリビニールアルコールおよび低密度リポ蛋白質をそれ
ぞれPEG、PVAおよびLDLと略記することらある
。
ぞれPEG、PVAおよびLDLと略記することらある
。
本発明の組成物は、基礎培地、ポリエチレングリコール
または/およびポリビニールアルコールと低密度リポ蛋
白質とからなる。
または/およびポリビニールアルコールと低密度リポ蛋
白質とからなる。
該病礎培地としては、動物細胞の培養に用いることので
きるものであればいずれのものでもよい。
きるものであればいずれのものでもよい。
本発明に用いられる基礎培地としては、たとえば市販さ
れている各種基礎培地[たとえば、イーグルの最小必須
培地(MEMXサイエンス(Science) 130
巻 432頁 1959年)、イーグルの基礎培地(B
MEXプロン−ディンゲス・才ブ・ザ・ソサイエティ・
フォア・エキスペリメンタル・バイオロジー・アンド・
メディスン(Procee−dings of the
5ociety for ExperiIQenta
lBiology and Medicine)89巻
362頁 1965年)、ダルベツコ改変イーグル培
地(DMEXパイロロジ−(VirologY) 8巻
396頁 1959年)、イスコツ改変ダルベツコ培
地(I M D M ) (サ・ジャーナル・オブ・エ
キスペリメンタル・メディスン(The Journa
l of Experimental Medicin
e) 147巻 923頁 1978年)、L−15培
地(アメリカン・ジャーナル中オブψハイノーン(Am
ericanJournal oftlygiene)
78巻 173頁 1963年)。
れている各種基礎培地[たとえば、イーグルの最小必須
培地(MEMXサイエンス(Science) 130
巻 432頁 1959年)、イーグルの基礎培地(B
MEXプロン−ディンゲス・才ブ・ザ・ソサイエティ・
フォア・エキスペリメンタル・バイオロジー・アンド・
メディスン(Procee−dings of the
5ociety for ExperiIQenta
lBiology and Medicine)89巻
362頁 1965年)、ダルベツコ改変イーグル培
地(DMEXパイロロジ−(VirologY) 8巻
396頁 1959年)、イスコツ改変ダルベツコ培
地(I M D M ) (サ・ジャーナル・オブ・エ
キスペリメンタル・メディスン(The Journa
l of Experimental Medicin
e) 147巻 923頁 1978年)、L−15培
地(アメリカン・ジャーナル中オブψハイノーン(Am
ericanJournal oftlygiene)
78巻 173頁 1963年)。
マツコイ5a培地(ブロン−ディンゲス・オブ・ザ・ソ
ザイエティ・フォア・エキスペリメンタル・バイオロジ
ー・アンド・メディスン100巻 115頁 1959
年)、ハムFI2培地(プロン−ディンゲス・オフ・ナ
ショナル・アカデミ−・オフ・サイエンス・ニー・ニス
・ニー(Proceedings ofNationa
l Academy o「5cience、 USA)
53巻2814 1965年)、RPMI 1640
培地(ジャーナル・オフ・ザ・アメリカン・メディカル
・アソシエーション(Journal of the
AmericanMedical As5ociati
on) I 99巻 519頁 1967年)など]あ
るいはこれらを混合した培地が挙げられる。さらに該基
礎培地にそれぞれの細胞の増殖に必須な因子(補助増殖
因子)たとえばホルモン類(たとえばインスリン1トラ
ンスフエリン、ステロイドホルモンなと)1蛋白性増殖
因子[たとえば上皮細胞増殖因子(EGF)、血小板由
来増殖因子(PDGF)、繊維芽細胞増殖因子(FGF
)など]11重金属類たとえば亜セレン酸ナトリウムな
ど)やリン指貫(たとえばエタノールアミン、ホスファ
チジルエタノールアミンなど)を必要により添加した無
血清培地が挙げられる。
ザイエティ・フォア・エキスペリメンタル・バイオロジ
ー・アンド・メディスン100巻 115頁 1959
年)、ハムFI2培地(プロン−ディンゲス・オフ・ナ
ショナル・アカデミ−・オフ・サイエンス・ニー・ニス
・ニー(Proceedings ofNationa
l Academy o「5cience、 USA)
53巻2814 1965年)、RPMI 1640
培地(ジャーナル・オフ・ザ・アメリカン・メディカル
・アソシエーション(Journal of the
AmericanMedical As5ociati
on) I 99巻 519頁 1967年)など]あ
るいはこれらを混合した培地が挙げられる。さらに該基
礎培地にそれぞれの細胞の増殖に必須な因子(補助増殖
因子)たとえばホルモン類(たとえばインスリン1トラ
ンスフエリン、ステロイドホルモンなと)1蛋白性増殖
因子[たとえば上皮細胞増殖因子(EGF)、血小板由
来増殖因子(PDGF)、繊維芽細胞増殖因子(FGF
)など]11重金属類たとえば亜セレン酸ナトリウムな
ど)やリン指貫(たとえばエタノールアミン、ホスファ
チジルエタノールアミンなど)を必要により添加した無
血清培地が挙げられる。
さらに、これらに通常の使用量またはそれ以下の血清代
替物質「たとえばGFS (第2回欠け代産業基盤技
術ノンボノウムーバイオテクノロジー予講集161頁、
1984年)、NU−ンーラム(コラボレーティプリ
サーチ社製)、ンーラムプラス(KCバイオロジカルズ
社製)などコが添加された培地や、通常の使用量以下の
血清[たとえば牛脂加面rl’t (F CS )、新
生子牛血清、子牛血清、ブタ血l?t、ヤギ血/n、ニ
ワトリ血清など]を添加した培地でもよい。また市販の
無血清培地[たとえばハイブリティー1(日本薬品開発
製)、HI3−102(ハナ・メディア社製)、[(L
−1(ベントレット社製)など]を基礎培地として用い
てもよく、市販の基礎培地に学じてアミノ酸などの濃度
を最適化した培地を作成して用いてらよい。
替物質「たとえばGFS (第2回欠け代産業基盤技
術ノンボノウムーバイオテクノロジー予講集161頁、
1984年)、NU−ンーラム(コラボレーティプリ
サーチ社製)、ンーラムプラス(KCバイオロジカルズ
社製)などコが添加された培地や、通常の使用量以下の
血清[たとえば牛脂加面rl’t (F CS )、新
生子牛血清、子牛血清、ブタ血l?t、ヤギ血/n、ニ
ワトリ血清など]を添加した培地でもよい。また市販の
無血清培地[たとえばハイブリティー1(日本薬品開発
製)、HI3−102(ハナ・メディア社製)、[(L
−1(ベントレット社製)など]を基礎培地として用い
てもよく、市販の基礎培地に学じてアミノ酸などの濃度
を最適化した培地を作成して用いてらよい。
本発明で用いられるポリエチレングリコールは、(cl
l!cllto ) n (nは重合度を表す。)の
構造を持つ高重合体であり、重合分子量が約1000以
上のらのが好ましく、なかでも約2,000ないし20
,000のらのが好ましく、さらに約4,000、約6
,000.約20,000のらのか好まし本発明で用い
られるポリエチレングリコールの咄は、使用時の濃度が
約10%(w/v)以下となる債が好ましい。なおここ
において、「以下」は「0」を含まないことを示す。ま
た、ポリエチレングリコールの量としては、使用時の濃
度が、より好まシくハ約0.001なイL 10 %(
W/V)、さらに好ましくは約0.01ないし2%U/
v)となる量である。
l!cllto ) n (nは重合度を表す。)の
構造を持つ高重合体であり、重合分子量が約1000以
上のらのが好ましく、なかでも約2,000ないし20
,000のらのが好ましく、さらに約4,000、約6
,000.約20,000のらのか好まし本発明で用い
られるポリエチレングリコールの咄は、使用時の濃度が
約10%(w/v)以下となる債が好ましい。なおここ
において、「以下」は「0」を含まないことを示す。ま
た、ポリエチレングリコールの量としては、使用時の濃
度が、より好まシくハ約0.001なイL 10 %(
W/V)、さらに好ましくは約0.01ないし2%U/
v)となる量である。
また、本発明で用いられるポリビニールアルコールは、
C−C1l、Ctl(Oll) −)n’ (n’は重
合度を表す。)の構造を持つ高重合体であり、平均重合
度が約500ないし2,000のものが好ましく、なか
でも約500のらの、l、500〜1,800のらのが
好ましい。
C−C1l、Ctl(Oll) −)n’ (n’は重
合度を表す。)の構造を持つ高重合体であり、平均重合
度が約500ないし2,000のものが好ましく、なか
でも約500のらの、l、500〜1,800のらのが
好ましい。
本発明で用いられるポリビニールアルコールの量は、使
用時において約0.001ないし10%(W/V)が好
ましく、なかても約0.01ないし3%(W/V)とな
る虫がより好ましい。
用時において約0.001ないし10%(W/V)が好
ましく、なかても約0.01ないし3%(W/V)とな
る虫がより好ましい。
ポリエチレングリコールとポリビニールアルコールは単
独で使用しても良いし、両者を同時に使用しても良い。
独で使用しても良いし、両者を同時に使用しても良い。
両者を同時に使用する場合、その混合比は、PEGを1
とした場合、PVAは約001〜100(重量比)とな
るのが好ましく、なかでら約0.1〜10(重重比)と
なるように混合するのがより好ましい。
とした場合、PVAは約001〜100(重量比)とな
るのが好ましく、なかでら約0.1〜10(重重比)と
なるように混合するのがより好ましい。
本発明で用いられる低密度リポ蛋白質は、動物の血しょ
うから分離される比重1.019ないし1.063、分
子!a(2,2ないし2.3)x ) 06、直径19
〜25nmの粒子を形成するリポ蛋白質で、脂質7糖お
よび蛋白質からなり、生体内では細胞へコレステロール
を供給する役割を荷っている。
うから分離される比重1.019ないし1.063、分
子!a(2,2ないし2.3)x ) 06、直径19
〜25nmの粒子を形成するリポ蛋白質で、脂質7糖お
よび蛋白質からなり、生体内では細胞へコレステロール
を供給する役割を荷っている。
本発明においては、市販のLDL(例、ヒトLDL、ウ
ンLDL等)を用いてもよいし、例えばセル・カルチュ
アー・メソッド・フォー・モルキュラー・アンド・セル
・バイオロジー(CellCuDure Method
s for Mo1ecular and CellB
iology、 八fan R,Li5s、 I
nc、、 New York)J 巻69頁19
84年に記載の方法、以下の参考例に示4一方法なとに
より、動物(例、ウン、ブタ等)の血清から調整したL
DLを用いてもよいが、参考例に示す方法により調整し
たLDLがとりわけ好都合に用いられる。
ンLDL等)を用いてもよいし、例えばセル・カルチュ
アー・メソッド・フォー・モルキュラー・アンド・セル
・バイオロジー(CellCuDure Method
s for Mo1ecular and CellB
iology、 八fan R,Li5s、 I
nc、、 New York)J 巻69頁19
84年に記載の方法、以下の参考例に示4一方法なとに
より、動物(例、ウン、ブタ等)の血清から調整したL
DLを用いてもよいが、参考例に示す方法により調整し
たLDLがとりわけ好都合に用いられる。
本発明で用いられるLDLの虫としては、使用時の濃度
が、約0.Olないし1000μg/dとなるのか好ま
しく、なかでも約0.05ないし500μg/dとなる
のがより好ましく、さらに好ましくは約0.5ないし1
00μg/旙となる量である。なお本明細書において、
LDLの量はLDLが含有する蛋白質量として表す。
が、約0.Olないし1000μg/dとなるのか好ま
しく、なかでも約0.05ないし500μg/dとなる
のがより好ましく、さらに好ましくは約0.5ないし1
00μg/旙となる量である。なお本明細書において、
LDLの量はLDLが含有する蛋白質量として表す。
PEGまたは/およびPVAとLDLとは、あらかじめ
組成物中に混合されていても良いし、培地として使用す
る際に混入しても良い。
組成物中に混合されていても良いし、培地として使用す
る際に混入しても良い。
本発明の動物細胞増殖用組成物は、固体状態のものおよ
び水溶液であるもののいずれでもよい。
び水溶液であるもののいずれでもよい。
固体状態のものは、それをたとえば水に溶解あるいは懸
濁して用いられる。
濁して用いられる。
また、該組成物を動物細胞増殖用の培地として用いろこ
とができるが、培地として用いる場合には、血清を含ま
ない培地としても良く、さらに、通常の使用量以下の血
清を含む培地としても良い。
とができるが、培地として用いる場合には、血清を含ま
ない培地としても良く、さらに、通常の使用量以下の血
清を含む培地としても良い。
ここで、通常の使用量としては、たとえば約lO%(V
/V)が挙げられる。
/V)が挙げられる。
本発明の組成物を培地として用いる場合には、通常の使
用量またはそれ以下の血清代替物を含む培地としてもよ
い。ここで、通常の使用量としては、たとえば、GFS
の場合は約3〜4g/&(蛋白質として)であり、Nt
J−シーラムの場合は約10%(V/V)であり、シー
ラムプラスの場合は約lO%(V/V)である。
用量またはそれ以下の血清代替物を含む培地としてもよ
い。ここで、通常の使用量としては、たとえば、GFS
の場合は約3〜4g/&(蛋白質として)であり、Nt
J−シーラムの場合は約10%(V/V)であり、シー
ラムプラスの場合は約lO%(V/V)である。
本発明方法によって培養される動物細胞としては、特に
限定されない。その例としては、たとえばヒト、マウス
、ラット、ウシ、ハムスターなど゛の口重乳動物由来の
リンパ系細胞(例、正常リンパ球、ミエローマ細胞、B
−リンパ芽球様細胞、Tリンパ性白血病紬胞など)、各
種ハイブリドーマ(例、マウスハイブリドーマ、マウス
・ヒトヘテロハイブリドーマ、ヒトハイブリドーマなど
)、正常2倍体細胞(例、繊維芽細胞など)、その他の
種々の接骨依存性細胞などを挙げることが出来る。
限定されない。その例としては、たとえばヒト、マウス
、ラット、ウシ、ハムスターなど゛の口重乳動物由来の
リンパ系細胞(例、正常リンパ球、ミエローマ細胞、B
−リンパ芽球様細胞、Tリンパ性白血病紬胞など)、各
種ハイブリドーマ(例、マウスハイブリドーマ、マウス
・ヒトヘテロハイブリドーマ、ヒトハイブリドーマなど
)、正常2倍体細胞(例、繊維芽細胞など)、その他の
種々の接骨依存性細胞などを挙げることが出来る。
より具体的には、ヒトリンパ系細胞としては、Nama
lva(ATCCCRL l 432Xインターナンヨ
ナル・ジャーナル・オフ・キャンサー(Interna
tional Journal of cancer)
12巻 396頁 1973年)、Raji(ATC
CCCL868ランセント(Lancet) 1巻 2
38頁 1964年)、EB−3(ATCCCCL85
0ランセット1巻252頁 1964年)、WI−L2
(キャンサー(Cancer) 22巻 517頁 1
968年)、 Daudf(ATCCCCL213Xキ
ャンサー・リサーチ(Cancer Re5earch
) 28巻 1300頁1968年)、RPMI
8226(ATCCCCL120)(プロノーデインダ
ス・オフ・ザ・ソサイエティ・フォア・エキスペリメン
タル・バイオロジー・アンド・メディスン 125巻
1246頁1967年)、CORP−OEM(ATCC
CCL I l 9Xキヤンサー 18巻 522頁
1965年)、RPMll 788(ATCCCCL
+ 56)(ジャーナル・オフ・ザ・ナショナル・キャ
ンサー・インスティチュート(ユナイティド・ステーブ
XJournal orthe National C
ancer In5titute (United
5tates))43巻 1119頁1969年)、C
RCP−9B(ATCCCCL120)(キャンサー・
リサーチ 27巻 2479頁 1967年)、 Ju
rkat(イムノノエネティクス(Immunogen
etics) 10巻 247頁 1980年)などが
、マウスリンパ系細胞としては、たとえば、MPC−I
I(ATCCCCL120Xザ・ジャーナル・オフ・エ
キスペリメンタル・メディスン131巻 515頁 1
970年)、 MS −1(AT CCTIB!8)(
ユーロピアン・ジャーナル・オフψイムノロジー(Eu
ropean Journal ofImmunolo
gy) 6巻 511頁 1976年)、P3X63A
g8U−1(P3ulXATCCCRL1597)(カ
レント・トピックス・オフ・マイクロバイオロジー・ア
ンド・イムノロジー(CurrentTopics o
f Microbiology and Immun
ology)81巻 1頁 1978年)などが、ハイ
ブリドーマとしては、たとえばマウスハイブリドーマC
EA(第2回次世代産業基盤技術シンポジウム−バイオ
チクノロノー 予稿集 175頁 昭和59年)。
lva(ATCCCRL l 432Xインターナンヨ
ナル・ジャーナル・オフ・キャンサー(Interna
tional Journal of cancer)
12巻 396頁 1973年)、Raji(ATC
CCCL868ランセント(Lancet) 1巻 2
38頁 1964年)、EB−3(ATCCCCL85
0ランセット1巻252頁 1964年)、WI−L2
(キャンサー(Cancer) 22巻 517頁 1
968年)、 Daudf(ATCCCCL213Xキ
ャンサー・リサーチ(Cancer Re5earch
) 28巻 1300頁1968年)、RPMI
8226(ATCCCCL120)(プロノーデインダ
ス・オフ・ザ・ソサイエティ・フォア・エキスペリメン
タル・バイオロジー・アンド・メディスン 125巻
1246頁1967年)、CORP−OEM(ATCC
CCL I l 9Xキヤンサー 18巻 522頁
1965年)、RPMll 788(ATCCCCL
+ 56)(ジャーナル・オフ・ザ・ナショナル・キャ
ンサー・インスティチュート(ユナイティド・ステーブ
XJournal orthe National C
ancer In5titute (United
5tates))43巻 1119頁1969年)、C
RCP−9B(ATCCCCL120)(キャンサー・
リサーチ 27巻 2479頁 1967年)、 Ju
rkat(イムノノエネティクス(Immunogen
etics) 10巻 247頁 1980年)などが
、マウスリンパ系細胞としては、たとえば、MPC−I
I(ATCCCCL120Xザ・ジャーナル・オフ・エ
キスペリメンタル・メディスン131巻 515頁 1
970年)、 MS −1(AT CCTIB!8)(
ユーロピアン・ジャーナル・オフψイムノロジー(Eu
ropean Journal ofImmunolo
gy) 6巻 511頁 1976年)、P3X63A
g8U−1(P3ulXATCCCRL1597)(カ
レント・トピックス・オフ・マイクロバイオロジー・ア
ンド・イムノロジー(CurrentTopics o
f Microbiology and Immun
ology)81巻 1頁 1978年)などが、ハイ
ブリドーマとしては、たとえばマウスハイブリドーマC
EA(第2回次世代産業基盤技術シンポジウム−バイオ
チクノロノー 予稿集 175頁 昭和59年)。
H5−II (同上)、E235163(バイブリド−
7(tlybridoma) 4巻 47頁 1985
年)、マウス・ヒト・ヒトヘテロハイブリドーマN12
−16・63(第2回次阻代産業基盤技術シンポジウム
−バイオテクノロジー 予稿集 175頁 昭和59年
)、およびNl2−16・63から誘導された高産生株
(N12−16・63・49・19.N12−16・6
3・49・19・69など)(第3回次世代産業基盤技
術シンポンラム−バイオチクノロノー 予稿集 155
頁 昭和60年)、■12−22・25(バイオケミカ
ル・アンド・バイオフィンカル・リサーチ・コミュニケ
ーション(Biochemical and Bio
physical ResearchCommani
cation) 129巻 26頁 1985年)、ト
IBIII−43・1(同上)ヒトBハイブリドーマW
471−7.24(IFO50094)などが、接着依
存性細胞としては、たとえばFL(ATCCCCL62
Xプロン−ディンゲス・オフ・ザ・ソサイエティ・フォ
ア・エキスベリメンタル・バイオロジー・アンド・メデ
ィスン 94巻532頁 1957年)、)IeLa(
ATCCCCL2Xキャンザー・リサーチ 12巻 2
64頁 1952年)。
7(tlybridoma) 4巻 47頁 1985
年)、マウス・ヒト・ヒトヘテロハイブリドーマN12
−16・63(第2回次阻代産業基盤技術シンポジウム
−バイオテクノロジー 予稿集 175頁 昭和59年
)、およびNl2−16・63から誘導された高産生株
(N12−16・63・49・19.N12−16・6
3・49・19・69など)(第3回次世代産業基盤技
術シンポンラム−バイオチクノロノー 予稿集 155
頁 昭和60年)、■12−22・25(バイオケミカ
ル・アンド・バイオフィンカル・リサーチ・コミュニケ
ーション(Biochemical and Bio
physical ResearchCommani
cation) 129巻 26頁 1985年)、ト
IBIII−43・1(同上)ヒトBハイブリドーマW
471−7.24(IFO50094)などが、接着依
存性細胞としては、たとえばFL(ATCCCCL62
Xプロン−ディンゲス・オフ・ザ・ソサイエティ・フォ
ア・エキスベリメンタル・バイオロジー・アンド・メデ
ィスン 94巻532頁 1957年)、)IeLa(
ATCCCCL2Xキャンザー・リサーチ 12巻 2
64頁 1952年)。
〜Vish(ATCCCCL 25Xエキスペリメンタ
ル・セル・リサーチ(IExperimental
Ce1lResearch )23巻 14頁 196
1年)、CHO−Kl(A’I’CCCCL61)(ザ
・ジャーナル・オフ・エキスベリメンタル・メディスン
108巻 945頁 1958年)、L細胞(ATC
CCCLl)(ジャーナル・オフ・ナショナル・キャン
サー・インスヂチュート・ニー・ニス・ニー 9巻22
9頁 1948年)などがそれぞれ挙げられる。
ル・セル・リサーチ(IExperimental
Ce1lResearch )23巻 14頁 196
1年)、CHO−Kl(A’I’CCCCL61)(ザ
・ジャーナル・オフ・エキスベリメンタル・メディスン
108巻 945頁 1958年)、L細胞(ATC
CCCLl)(ジャーナル・オフ・ナショナル・キャン
サー・インスヂチュート・ニー・ニス・ニー 9巻22
9頁 1948年)などがそれぞれ挙げられる。
上3己ヒトBハイブリドーマW47+−7,24は日本
特願昭61−227191号に記載の方法で得られ、昭
和61年8月20日から財団法人発酵研究所(IFO)
にIFO50094として寄託されている。
特願昭61−227191号に記載の方法で得られ、昭
和61年8月20日から財団法人発酵研究所(IFO)
にIFO50094として寄託されている。
本発明の生理活性物質の製造法において用いられる生理
活性物質を生産する動物細胞としては、たとえば、マウ
スモノクローナル抗体を産生するCEA、ll5−II
、E235163など、ヒトモノクローナル抗体を産生
ずるN12−16・63お上びその変異株、+12−2
2・25.HBI−43・1W471−7.24などか
、白血球インフタ ーフェロンを産生するN amalva細胞、インター
ロイキン−2を産生するJ urkat細胞、遺伝子組
換え細胞(マウス>IL−213−3細胞、ヒトPL−
1L385−6細胞、ハムスターC−IL485−14
細胞(特開昭61−63282号公報参場合には、マル
チウェルプレート。培養フラスコ。
活性物質を生産する動物細胞としては、たとえば、マウ
スモノクローナル抗体を産生するCEA、ll5−II
、E235163など、ヒトモノクローナル抗体を産生
ずるN12−16・63お上びその変異株、+12−2
2・25.HBI−43・1W471−7.24などか
、白血球インフタ ーフェロンを産生するN amalva細胞、インター
ロイキン−2を産生するJ urkat細胞、遺伝子組
換え細胞(マウス>IL−213−3細胞、ヒトPL−
1L385−6細胞、ハムスターC−IL485−14
細胞(特開昭61−63282号公報参場合には、マル
チウェルプレート。培養フラスコ。
スピナーフラスコ、ジャーファーメンタ−、ファーメン
タ−などが用いられ、さらにホローファイバー培荏装置
、セラミックマトリックスを用いた培養装置さらにマイ
クロカプセル培養法などが適宜採用される。接着依存性
細胞の場合には、マルチウェルプレート1培養フラスコ
、ローラーボトル。
タ−などが用いられ、さらにホローファイバー培荏装置
、セラミックマトリックスを用いた培養装置さらにマイ
クロカプセル培養法などが適宜採用される。接着依存性
細胞の場合には、マルチウェルプレート1培養フラスコ
、ローラーボトル。
マイクロキャリアー培養法、十ローフアイバー培養法、
セラミックマトリックス培養法などが用いられる。
セラミックマトリックス培養法などが用いられる。
本発明の培養は、用いられる動物細胞の培養に適した条
件が採用される。一般的には、培養温度約37℃前後で
、pH約6.5ないし7.5て°、数日ないし3か月培
養される。たとえば、本発明の培地に通常0.1ないし
5×105個/mlの細胞を播種し、マルチウェルプレ
ートやフラスコの場合には約37°C,5%炭酸ガス培
養器(炭酸ガス濃度5%の培8.器)中でp t−i約
65ないし75て約1゜ないし20日間培培養れる。ジ
ャーファーメンタ−やファーメンタ−などでは通気攪拌
培養が行わ続的に交換することにより生理活性物質の生
産性を向上させることができろ。連続層流培養の場合に
は1ないし数ケ月(約3か月)ら続ける場合がある。ま
た、必要により通気される。
件が採用される。一般的には、培養温度約37℃前後で
、pH約6.5ないし7.5て°、数日ないし3か月培
養される。たとえば、本発明の培地に通常0.1ないし
5×105個/mlの細胞を播種し、マルチウェルプレ
ートやフラスコの場合には約37°C,5%炭酸ガス培
養器(炭酸ガス濃度5%の培8.器)中でp t−i約
65ないし75て約1゜ないし20日間培培養れる。ジ
ャーファーメンタ−やファーメンタ−などでは通気攪拌
培養が行わ続的に交換することにより生理活性物質の生
産性を向上させることができろ。連続層流培養の場合に
は1ないし数ケ月(約3か月)ら続ける場合がある。ま
た、必要により通気される。
培徨液から細胞を採取するには、たとえば、浮遊細Il
江の場合は、培養液を直接遠心分離機やろ過機にかけて
集める。接着依存性細胞の場合にはたとえば、0 、1
mg/mlのEDTAおよび1.25mg/mlのト
リプシンを添加して、37°C,Iないし2分反応させ
て細胞を分散させたのち、遠心分離またはろ過によって
集める。
江の場合は、培養液を直接遠心分離機やろ過機にかけて
集める。接着依存性細胞の場合にはたとえば、0 、1
mg/mlのEDTAおよび1.25mg/mlのト
リプシンを添加して、37°C,Iないし2分反応させ
て細胞を分散させたのち、遠心分離またはろ過によって
集める。
細胞培養によって生産される生理活性物質は、その物質
が培養液中に蓄積される場合、ろ過または遠心分離によ
って上澄液を得、これから採取されろ。また細胞内に蓄
積される物質の場合には、ろ過または遠心分離によって
得た細胞を物理的方法(例、超音波、フレンチプレス、
ダイノミルなど)または化学的方法(例、塩酸グアニジ
ン等)にて処理し、生産物を抽出したのち、上澄液を得
る。
が培養液中に蓄積される場合、ろ過または遠心分離によ
って上澄液を得、これから採取されろ。また細胞内に蓄
積される物質の場合には、ろ過または遠心分離によって
得た細胞を物理的方法(例、超音波、フレンチプレス、
ダイノミルなど)または化学的方法(例、塩酸グアニジ
ン等)にて処理し、生産物を抽出したのち、上澄液を得
る。
上記上澄液から生理活性物質を分離、精製するなどの溶
解度を利用する方法、透析法、限外ろ適法。
解度を利用する方法、透析法、限外ろ適法。
ゲルろ適法、5DS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動
法などの主として分子量の差を利用する方法フイオン交
換クロマトグラフィーなどの荷電の差を利用する方法、
アフィニティクロマトグラフイーなどの特異的親和性を
利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの
疎水性の差を利用する方法1等電点電気泳動などの等重
点の差を利用する方法などが適用される。
法などの主として分子量の差を利用する方法フイオン交
換クロマトグラフィーなどの荷電の差を利用する方法、
アフィニティクロマトグラフイーなどの特異的親和性を
利用する方法、逆相高速液体クロマトグラフィーなどの
疎水性の差を利用する方法1等電点電気泳動などの等重
点の差を利用する方法などが適用される。
本発明の方法に従って増殖させた動物細胞は、たとえば
これにウィルスを感染させてワクチンの製造に利用した
り、各種リンフ才力イン類(例、インターフェロン類、
インターロイキン−2なと)。
これにウィルスを感染させてワクチンの製造に利用した
り、各種リンフ才力イン類(例、インターフェロン類、
インターロイキン−2なと)。
各種増殖因子類(例、上皮細胞増殖因子、繊維芽細胞増
殖因子など)、各種ホルモン類(例、ヒト成長ホルモン
、インスリンなど)、各種酵素類(例、ウロキナーゼ、
組織プラスミノーゲン活性化因子など)や各種モノクロ
ーナル抗体(例、マウスモノクローナル抗体、ヒトモノ
クローナル抗体なと)などの生理活性物質の生産にpH
用される。また遺伝子操作によって特定の遺伝子を導入
した細胞を用いろことにより該物質を効率よく生産“さ
せることができる。また本発明の方法に従って増殖し、
集めた細胞を直接に、人工皮膚や人工器官(例、膵臓べ
る。
殖因子など)、各種ホルモン類(例、ヒト成長ホルモン
、インスリンなど)、各種酵素類(例、ウロキナーゼ、
組織プラスミノーゲン活性化因子など)や各種モノクロ
ーナル抗体(例、マウスモノクローナル抗体、ヒトモノ
クローナル抗体なと)などの生理活性物質の生産にpH
用される。また遺伝子操作によって特定の遺伝子を導入
した細胞を用いろことにより該物質を効率よく生産“さ
せることができる。また本発明の方法に従って増殖し、
集めた細胞を直接に、人工皮膚や人工器官(例、膵臓べ
る。
本発明方法において、生理活性物質を生産する動物細胞
を培養した場合には、該細胞が効率良く増殖されるので
、生理活性物質を効率良く生産することができ、工業生
産上有利である。
を培養した場合には、該細胞が効率良く増殖されるので
、生理活性物質を効率良く生産することができ、工業生
産上有利である。
実施例
以下に参考例および実施例を挙げて本発明を更に具体的
に説明する。PEGおよびPVAの添加%はW/V%を
表す。また、LDLの添加量はLDLが含有する蛋白質
量として表している。なお、実施例で用いたヒトLDL
は、シグマ社製の市販のLDLであり、ブタLDLは参
考例1に示す方法で製造されたものである。
に説明する。PEGおよびPVAの添加%はW/V%を
表す。また、LDLの添加量はLDLが含有する蛋白質
量として表している。なお、実施例で用いたヒトLDL
は、シグマ社製の市販のLDLであり、ブタLDLは参
考例1に示す方法で製造されたものである。
参考例1
ブタ血清IQを5mMEDTAとIMNaCCを添加し
たl0mMトリス・塩酸緩衝液(pH7、2)に対して
透析したのち、同じ緩衝液で平衡化したシバクロン・ブ
ルー1”3G−A(バイオランド社製)カラム(2,5
cmφx18cm)へ通液した。同じ緩衝液で十分洗滌
したのち、この緩衝液に0.5MNa5CNを添加した
溶出液300h、nで溶出した。
たl0mMトリス・塩酸緩衝液(pH7、2)に対して
透析したのち、同じ緩衝液で平衡化したシバクロン・ブ
ルー1”3G−A(バイオランド社製)カラム(2,5
cmφx18cm)へ通液した。同じ緩衝液で十分洗滌
したのち、この緩衝液に0.5MNa5CNを添加した
溶出液300h、nで溶出した。
活性画分を集め、低比重液(0,15MNaCQ、d−
1,006)を添加して比重をd=1.019に調整し
たのち、35000 rpmで30時間遠心分離した。
1,006)を添加して比重をd=1.019に調整し
たのち、35000 rpmで30時間遠心分離した。
底部層約100Mlを集めて、これに高比重液(d=1
.346.NaC& 153.0gとKBr354、
Ogとを水に溶かしてIcとしたもの)を添加して比重
をd=1.069に調整したのち、超遠心分離機(35
000rpm、30分、4℃)にかけて、LDL層(最
上層)約10滅(蛋白質として約10.6mgのLDL
を含む)を得た。
.346.NaC& 153.0gとKBr354、
Ogとを水に溶かしてIcとしたもの)を添加して比重
をd=1.069に調整したのち、超遠心分離機(35
000rpm、30分、4℃)にかけて、LDL層(最
上層)約10滅(蛋白質として約10.6mgのLDL
を含む)を得た。
実施例1
IMDM、ハムF12およびL−15培地を1゜1.2
の比率で混合した培地に、2 mg/Qインスリン、
2 mg#! トランスフェリン、2 X f O−e
Mエタノールアミン、2.5X l 0−8M亜セレン
酸ナトリウム(4つを合せてITESと称する。)を添
加し、これにPEG20,000(平均分子量20,0
00)を0.1%添加した培地と、無添加の培地とを用
色し、それぞれ24穴マルチウエルプレートへ1ml宛
分注した。この各穴へ、第1図に示す各種濃度のヒトL
DL(シグマ社製)を添加したのち、マウス・ヒト−ヒ
トへテロハイブリドーマN12−16・63・49・1
9妹の細胞をlXl0’個/轍になるように播種し、5
%炭酸ガス培養器中で37°C,3日間培養後、コール
タ−カウンターにて細胞数を測定した。結果を第1図に
示す。
の比率で混合した培地に、2 mg/Qインスリン、
2 mg#! トランスフェリン、2 X f O−e
Mエタノールアミン、2.5X l 0−8M亜セレン
酸ナトリウム(4つを合せてITESと称する。)を添
加し、これにPEG20,000(平均分子量20,0
00)を0.1%添加した培地と、無添加の培地とを用
色し、それぞれ24穴マルチウエルプレートへ1ml宛
分注した。この各穴へ、第1図に示す各種濃度のヒトL
DL(シグマ社製)を添加したのち、マウス・ヒト−ヒ
トへテロハイブリドーマN12−16・63・49・1
9妹の細胞をlXl0’個/轍になるように播種し、5
%炭酸ガス培養器中で37°C,3日間培養後、コール
タ−カウンターにて細胞数を測定した。結果を第1図に
示す。
第1図において、−〇−はヒトLDLのみを添加した場
合、−・−はヒトLDLと0.1%PEG20.000
とを同時に添加した場合の細胞数を示す。
合、−・−はヒトLDLと0.1%PEG20.000
とを同時に添加した場合の細胞数を示す。
第1図から明らかなように、0,1%PEGと至適濃度
(3,12ないし25μg/滅)のヒトLDLとを添加
すると、0.1%PEGのみあるいは至適濃度のヒトL
DLのみを添加した場合に比べて、細胞増殖は著しく促
進された。
(3,12ないし25μg/滅)のヒトLDLとを添加
すると、0.1%PEGのみあるいは至適濃度のヒトL
DLのみを添加した場合に比べて、細胞増殖は著しく促
進された。
実施例2
実施例1におけるヒトLDLの代りに、参考例に従って
調整したブタLDLを各種濃度添加し、実施例1と同一
条件下で実施して細胞数を測定した。結果は第2図に示
す。第2図において、−〇−はブタLDLのみを添加し
た場合、−・−はブタLDLと0.1%PEG20,0
00とを同時に添加した場合の細胞数を示す。
調整したブタLDLを各種濃度添加し、実施例1と同一
条件下で実施して細胞数を測定した。結果は第2図に示
す。第2図において、−〇−はブタLDLのみを添加し
た場合、−・−はブタLDLと0.1%PEG20,0
00とを同時に添加した場合の細胞数を示す。
べて、細胞増殖は著しく促進された。
第1図、第2図を比較すると、参考例1に示す方法によ
り調整したブタLDLは、市販のヒトLDL(ノグマ社
製)に比べて、PEGとの相乗効果が大きく、かつ広い
濃度域で安定した増殖を示すことが明らかである。
り調整したブタLDLは、市販のヒトLDL(ノグマ社
製)に比べて、PEGとの相乗効果が大きく、かつ広い
濃度域で安定した増殖を示すことが明らかである。
実施例3
実施例1と同じ基礎培地にITESを添加した培地(1
)、更にこれに01%PEG20,000を添加した培
地(2)、培地(1)に0.1%PVA(平均重合度5
00)を添加した培地(3)、培地(1)に0.05%
PEG20,000と0.05%P V A C平均重
合度500)とを添加した培地(4)、およびその各々
に参考例に従って調製したブタLDL I Oμg/寸
を添加した培地(5)ないしく8)をJ′T1.意し、
これらを24穴マルチウエルプレートへty宛分注した
。これに表1に示す各種細胞をlXIO3個/轍の割合
で播種し、37℃、5%炭酸ガス培養器中で3日間培養
したのち、コールターカウン表1の結果から、PEGま
たは/およびPVAとLDLとを添加すると、各種細胞
に対して幅広く細胞増殖を示すことが明らかである。
)、更にこれに01%PEG20,000を添加した培
地(2)、培地(1)に0.1%PVA(平均重合度5
00)を添加した培地(3)、培地(1)に0.05%
PEG20,000と0.05%P V A C平均重
合度500)とを添加した培地(4)、およびその各々
に参考例に従って調製したブタLDL I Oμg/寸
を添加した培地(5)ないしく8)をJ′T1.意し、
これらを24穴マルチウエルプレートへty宛分注した
。これに表1に示す各種細胞をlXIO3個/轍の割合
で播種し、37℃、5%炭酸ガス培養器中で3日間培養
したのち、コールターカウン表1の結果から、PEGま
たは/およびPVAとLDLとを添加すると、各種細胞
に対して幅広く細胞増殖を示すことが明らかである。
実施例4
実施例1と同じ基礎培地にITESを添加した培地(1
)、更ニコれi、:0. I %PEG 20,000
を添加しfこ培地(2)、培地(1)に0.1%PVA
(平均重合度500)を添加した培地(3)、培地(1
)に0.05%PEG20.000と0.05%PVA
(平均重合度500)とを添加した培地(4)、および
その各々に参考例に従って調製したヒトLDL I O
μg/旋を添加した培地(5)ないしく8)を用意し、
これらを24穴マルチウエルプレートへ1M/、宛分注
した。これに表2に示す各種細胞をlXIO3個/顧の
割合で播種し、37°C,5%炭酸ガス培養器中で3日
間培養したのち、コールタ−カウンターで細胞数を計数
し、表2の結果を得た。
)、更ニコれi、:0. I %PEG 20,000
を添加しfこ培地(2)、培地(1)に0.1%PVA
(平均重合度500)を添加した培地(3)、培地(1
)に0.05%PEG20.000と0.05%PVA
(平均重合度500)とを添加した培地(4)、および
その各々に参考例に従って調製したヒトLDL I O
μg/旋を添加した培地(5)ないしく8)を用意し、
これらを24穴マルチウエルプレートへ1M/、宛分注
した。これに表2に示す各種細胞をlXIO3個/顧の
割合で播種し、37°C,5%炭酸ガス培養器中で3日
間培養したのち、コールタ−カウンターで細胞数を計数
し、表2の結果を得た。
表2の結果から、PEGまたは/およびPVAとLDL
とを添加すると、各種細胞に対して幅広培地(1)、培
地(1)にIOμg/MlヒトLDLを添加した培地(
2)、培地(1)に0.1%PEC;20,000とl
Oμg/dヒトLDLとを添加した培地(3)を用意し
、これらをそれぞれl00dスピナーフラスコへ仕込み
、これにマウス・ヒト−ヒトヘテロハイブリドーマN+
2−16・63・49・19・69株をlXl0’個/
威になるように添加し、回転数25rpm、37℃にて
6日間培養し、細胞数および抗体産生量を測定した。結
果を表3に示す。
とを添加すると、各種細胞に対して幅広培地(1)、培
地(1)にIOμg/MlヒトLDLを添加した培地(
2)、培地(1)に0.1%PEC;20,000とl
Oμg/dヒトLDLとを添加した培地(3)を用意し
、これらをそれぞれl00dスピナーフラスコへ仕込み
、これにマウス・ヒト−ヒトヘテロハイブリドーマN+
2−16・63・49・19・69株をlXl0’個/
威になるように添加し、回転数25rpm、37℃にて
6日間培養し、細胞数および抗体産生量を測定した。結
果を表3に示す。
表3 マウス・ヒト−ヒトヘテロハイプリドーマ七
新液(pl−I 7 、5 )に対して透析し、生じる
沈澱を集め、5mMEDTAと0.5MNaC1とを添
加した50mM)リス・塩酸緩衝液(pH8,0)3.
2ノ通に溶解させたのち、同じ緩衝液で平衡化したセフ
ァクリルS−300ゲルカラム(約100yu)にかけ
、活性画分を集めたところ、約13mgの抗破傷風トキ
ソイドヒトIgMが得られた。
沈澱を集め、5mMEDTAと0.5MNaC1とを添
加した50mM)リス・塩酸緩衝液(pH8,0)3.
2ノ通に溶解させたのち、同じ緩衝液で平衡化したセフ
ァクリルS−300ゲルカラム(約100yu)にかけ
、活性画分を集めたところ、約13mgの抗破傷風トキ
ソイドヒトIgMが得られた。
参考例2
実施例1と同じ基礎培地にITESを添加した培地、さ
らにこれに025%PEG20,000を添加しfこ培
地を用意し、これを24穴マルチウエルプレートへlり
宛それぞれ分注した。これらに、それぞれ〜V47+−
7.24細胞(rFo 50094)をlXIO3個
/滅の割合で播種し、37°C,5%炭酸ガス培養器中
で5日間培養したのちコールター力ウノターで細胞数を
計数し、表4の結果を得た。
らにこれに025%PEG20,000を添加しfこ培
地を用意し、これを24穴マルチウエルプレートへlり
宛それぞれ分注した。これらに、それぞれ〜V47+−
7.24細胞(rFo 50094)をlXIO3個
/滅の割合で播種し、37°C,5%炭酸ガス培養器中
で5日間培養したのちコールター力ウノターで細胞数を
計数し、表4の結果を得た。
表4
細 胞 無添加 PEG20,000添加胃
471−7.24 8.3x to’
7.4x 105の状態でも、広範囲の動物
細胞に対して細胞増殖作用を示すので、該組成物による
培地を用いると動物細胞を大量に効率良く増殖させるこ
とができる。また、生理活性物質を生産する動物細胞を
培養すると、該細胞が大量に効率良く増殖されるので、
生理活性物質を効率よく生産させることができる。
471−7.24 8.3x to’
7.4x 105の状態でも、広範囲の動物
細胞に対して細胞増殖作用を示すので、該組成物による
培地を用いると動物細胞を大量に効率良く増殖させるこ
とができる。また、生理活性物質を生産する動物細胞を
培養すると、該細胞が大量に効率良く増殖されるので、
生理活性物質を効率よく生産させることができる。
第1図は、実施例1で得られた各種農度ヒH。
DLの添加効果を示す。
第2図は、実施例2で得られた各種濃度ブタLDLの添
加効果を示す。
加効果を示す。
Claims (8)
- (1)、ポリエチレングリコールまたは/およびポリビ
ニールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有してなる
動物細胞増殖用組成物。 - (2)、固体状態にある特許請求の範囲第1項記載の組
成物。 - (3)、水溶液である特許請求の範囲第1項記載の組成
物。 - (4)、血清を含まない特許請求の範囲第3項記載の組
成物。 - (5)、ポリエチレングリコールまたは/およびポリビ
ニールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有してなる
動物細胞増殖用培地で動物細胞を培養することを特徴と
する動物細胞の増殖方法。 - (6)、動物細胞増殖用培地が血清を含まない培地であ
る特許請求の範囲第5項記載の増殖方法。 - (7)、ポリエチレングリコールまたは/およびポリビ
ニールアルコールと低密度リポ蛋白質とを含有する動物
細胞増殖用培地で、生理活性物質を産生する動物細胞を
培養し、培養物中にこれを生成蓄積せしめ、採取するこ
とを特徴とする生理活性物質の製造法。 - (8)、動物細胞増殖用培地が血清を含まない培地であ
る特許請求の範囲第7項記載の製造法。
Priority Applications (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61279774A JPH0732705B2 (ja) | 1986-11-26 | 1986-11-26 | 動物細胞増殖用組成物およびそれを用いる動物細胞の増殖方法 |
| EP19870304919 EP0248656B1 (en) | 1986-06-04 | 1987-06-03 | Composition for cell cultivation and use thereof |
| DE8787304919T DE3785086T2 (de) | 1986-06-04 | 1987-06-03 | Zubereitung fuer zellkultur und ihre verwendung. |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP61279774A JPH0732705B2 (ja) | 1986-11-26 | 1986-11-26 | 動物細胞増殖用組成物およびそれを用いる動物細胞の増殖方法 |
Related Child Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP6271895A Division JP2500384B2 (ja) | 1994-09-30 | 1994-09-30 | 生理活性物質の製造法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS63133982A true JPS63133982A (ja) | 1988-06-06 |
| JPH0732705B2 JPH0732705B2 (ja) | 1995-04-12 |
Family
ID=17615727
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP61279774A Expired - Lifetime JPH0732705B2 (ja) | 1986-06-04 | 1986-11-26 | 動物細胞増殖用組成物およびそれを用いる動物細胞の増殖方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0732705B2 (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002104978A (ja) * | 2000-09-25 | 2002-04-10 | Fujirebio Inc | パルボウイルスの除去方法及び精製方法 |
| JP2007190666A (ja) * | 2005-12-22 | 2007-08-02 | Kts:Kk | トルク伝達工具 |
-
1986
- 1986-11-26 JP JP61279774A patent/JPH0732705B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002104978A (ja) * | 2000-09-25 | 2002-04-10 | Fujirebio Inc | パルボウイルスの除去方法及び精製方法 |
| JP2007190666A (ja) * | 2005-12-22 | 2007-08-02 | Kts:Kk | トルク伝達工具 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JPH0732705B2 (ja) | 1995-04-12 |
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|---|---|---|---|
| EXPY | Cancellation because of completion of term |