PL159938B1 - Sposób liofilizacji w warunkach sterylnych PL - Google Patents
Sposób liofilizacji w warunkach sterylnych PLInfo
- Publication number
- PL159938B1 PL159938B1 PL1989279609A PL27960989A PL159938B1 PL 159938 B1 PL159938 B1 PL 159938B1 PL 1989279609 A PL1989279609 A PL 1989279609A PL 27960989 A PL27960989 A PL 27960989A PL 159938 B1 PL159938 B1 PL 159938B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- membrane
- container
- dried
- sterile
- drying
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 38
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 title claims abstract description 13
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 31
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 31
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 239000011888 foil Substances 0.000 claims description 13
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 5
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 claims description 4
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 claims description 4
- -1 polytetrafluoroethylene Polymers 0.000 claims description 4
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 claims description 2
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 claims description 2
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 claims description 2
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 claims description 2
- 229920001343 polytetrafluoroethylene Polymers 0.000 claims description 2
- 239000004810 polytetrafluoroethylene Substances 0.000 claims description 2
- 239000003708 ampul Substances 0.000 claims 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 9
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 16
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 4
- 238000009434 installation Methods 0.000 description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 4
- 238000000859 sublimation Methods 0.000 description 4
- 230000008022 sublimation Effects 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 3
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 239000008223 sterile water Substances 0.000 description 2
- 238000003466 welding Methods 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 229920000544 Gore-Tex Polymers 0.000 description 1
- 239000007836 KH2PO4 Substances 0.000 description 1
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 1
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 1
- ATJFFYVFTNAWJD-UHFFFAOYSA-N Tin Chemical compound [Sn] ATJFFYVFTNAWJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000006887 Ullmann reaction Methods 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006161 blood agar Substances 0.000 description 1
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 230000012447 hatching Effects 0.000 description 1
- 239000011261 inert gas Substances 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 description 1
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000004643 material aging Methods 0.000 description 1
- 229940091925 mediplast Drugs 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 239000000825 pharmaceutical preparation Substances 0.000 description 1
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M potassium dihydrogen phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 238000007789 sealing Methods 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 1
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
Classifications
-
- F—MECHANICAL ENGINEERING; LIGHTING; HEATING; WEAPONS; BLASTING
- F26—DRYING
- F26B—DRYING SOLID MATERIALS OR OBJECTS BY REMOVING LIQUID THEREFROM
- F26B5/00—Drying solid materials or objects by processes not involving the application of heat
- F26B5/04—Drying solid materials or objects by processes not involving the application of heat by evaporation or sublimation of moisture under reduced pressure, e.g. in a vacuum
- F26B5/06—Drying solid materials or objects by processes not involving the application of heat by evaporation or sublimation of moisture under reduced pressure, e.g. in a vacuum the process involving freezing
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Mechanical Engineering (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Medical Preparation Storing Or Oral Administration Devices (AREA)
- Drying Of Solid Materials (AREA)
- Freezing, Cooling And Drying Of Foods (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
1. Sposób liofilizacji w warunkach sterylnych, szczególnie biologicznego albo farmaceuty- cznego materialu, znamienny tym, ze do pojemnika którego sciany co najmniej czesciowo stanowi hydrofobowa, porowata, zarodkoszczelna, przepuszczajaca pare wodna membrana, wprowadza sie przeznaczony do suszenia material, pojemnik zamyka sie hermetycznie i nastep- nie material poddaje sie liofilizacji w zamknietym pojemniku w zwyklych warunkach. PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób liofilizacji w sterylnych warunkach, szczególnie biologicznego albo farmaceutycznego materiału.
W przypadku biologicznego i farmaceutycznego materiału często konieczne jest składowanie substancji w całkowicie suchym stanie aż do ich zastosowania. Prawie zawsze takie wrażliwe substancje dostępne są tylko przez liofilizację. Do tego z reguły istnieje konieczność trzymania ich całkowicie wolnych od mikrobiologicznych zarodków, a mianowicie zarówno z powodu rozkładu biologicznych substancji spowodowanego przez mikroby, jak też, aby przeszkodzić możliwym infekcjom przy ich stosowaniu.
Liofilizacja biologicznych i farmaceutycznych substancji jest na ogół znana (patrz także Ullmanns Enzyklopadie der Technischen Chemie, 3 wydanie, tom I, str. 556 i dalsze). Przy tym, aby uniknąć kontaminacji wysuszonego materiału zarodkami i innymi zanieczyszczeniami, potrzebne są kosztowne aparaturowe i technologiczne zabiegi.
Przy suszeniu preparatów farmaceutycznych w ampułkach albo buteleczkach postępuje się na przykład w ten sposób, że buteleczki, które zawierają zamrożony materiał, zaopatruje się w filtr bakteryjny i materiał w buteleczkach suszy się w pierwszym etapie suszenia tak dalece, że kończy się sublimacja zamrożonego rozpuszczalnika.
Następnie w drugim etapie suszenia, tak zwanym dosuszaniu albo suszeniu końcowym, z materiału odciąga się pozostałą resztkę wilgoci. Ze względu na to, że ten drugi etap suszenia przeprowadza się przeważnie w oddzielnej aparaturze, ampułki albo fiołki muszą być pobrane z pierwszego suszenia i przeniesione do drugiej aparatury suszącej dalej w wrażliwym na kontaminację procesie. W tym celu usuwa się filtr bakteryjny i zastępuje go przez kapturek aluminiowy zaopatrzony w diafragmę gumową i wydrążoną igłę. Zależnie od rodzaju suszonego materiału suszenie końcowe trwa kilka dni i po nim suszarnię wypełnia się gazem obojętnym z lekkim nadciśnieniem i otwór diafragmy zamyka jak najbardziej paroszczelnie za pomocą masy zalewowej.
Ze względu na to, że szybkość sublimacji w tego rodzaju liofilizacji jest tylko połowę tak duża, jak szybkość sublimacji otwartego, rozprzestrzenionego materiału, liofilizację biologicznego i farmaceutycznego materiału przeprowadza się także na płytach w sterylnych warunkach. Przy tym zostaje sterylizowany najpierw roztwór przeznaczonego do suszenia materiału, na przykład drogą filtracji przez filtr sterylny, następnie w sterylnych warunkach wylewa się go na płyty i liofilizuje znanymi metodami.
Sposób ten jednak wymaga, aby cała instalacja liofilizacyjna nadawała się do sterylizacji. Do tego wymagane jest także utrzymanie otoczenia instalacji suszącej wolne od zarodków. Po suszeniu konieczne jest, aby materiał z samej instalacji suszącej albo jej otoczenia usunąć sposobami mechanicznymi z płyt w sterylnych warukach i również sterylnie napełnić nim pojemniki magazynowe. Sposób ten wymaga kosztownej instalacji i sterylnego pomieszczenia oraz szczególnie starannej pracy z przeznaczonym do suszenia względnie już wysuszonym materiałem aż do jego użytkowego konfekcjonowania.
A zatem celem wynalazku jest przezwyciężenie wyżej wykazanych niedogodności i opracowanie prostego sposobu, za pomocą którego bez wyżej podanych kosztownych wymagań sterylizacji instalacji suszącej oraz jej otoczenia można uzyskać sterylny, liofilizowany materiał.
Ten cel uzyskano według wynalazku w ten sposób, że przeznaczony do suszenia materiał wprowadza się w sterylnych warunkach do zarodkoszczelnie dającego się zamknąć pojemnika, którego ograniczające powierzchnie ścian co najmniej częściowo wykonane są z zarodkoszczelnej, porowatej, przepuszczającej parę wodną, hydrofobowej membrany, że pojemnik zamyka się zarodkoszczelnie i hermetycznie, szczególnie zakleja albo zaspawa i materiał wprost w zamkniętym pojemniku liofilizuje się w zwykłych warunkach.
Wynalazek polega na niespodziewanym rozpoznaniu, że wbrew oczekiwaniom membrana stosowana w sposobie według wynalazku tylko w małym zakresie przeszkadza przepływowi od suszonego materiału do kondensatora strumienia pary powstającego przez sublimację cząsteczek rozpuszczalnika, szczególnie cząsteczek wody. Zatem niespodziewanie liofilizacja materiału, który zamknięty jest membraną, przebiega prawie tak samo szybko, jak liofilizacja takiego samego materiału otwartego, nieopakowanego.
W przypadku stosowanych w sposobie według wynalazku membran chodzi o hydrofobowe membrany, które zawierają pory, które z jednej strony są przepuszczalne dla pary wodnej, a z drugiej strony jednak są tak małe, że nie mogą przez nie przechodzić mikroorganizmy.
Takie pory mają przeważnie wielkość ©0,5μιη, szczególnie ©0,2μιη. Zgodnie z wynalazkiem stosuje się przeważnie membrany, które także jeszcze w mokrym stanie są odporne na rozerwanie w danych warunkach procesu. Wprawdzie sposób według wynalazku można przeprowadzać z mniej stabilnymi membranami, o ile są one wzmocnione materiałem nośnym albo nie są nadmiernie obciążone mechanicznie.
Wybrany każdorazowo w sposobie według wynalazku udział membrany w powierzchni ścian stosowanego pojemnika zależy od każdorazowo wybranych warunków oraz czasu trwania suszenia i może go łatwo znaleźć specjalista drogą prostych wypróbowań. W wyróżniającej się postaci wykonania wynalazku cała powierzchnia ścian wykonana jest z folii membranowej, w dalszej korzystnej postaci wykonania mniej więcej do połowy. Sposób według wynalazku można niespodziewanie przeprowadzać korzystnie także jeszcze wówczas, gdy powierzchnia ścian wykonana jest z folii membranowej także tylko do 10%. Szczególnie nadają się półprzepuszczalne papiery z celulozy i zwykłych pochodnych celulozy, jak octanu celulozy. W sposobie według wynalazku przeważnie znajdują zastosowanie także membrany z folii związków polimerycznych, jak folie politetrafluoroetylenowc albo polipropylenowe. Całkiem szczególnie jako przepuszczalne dla pary wodnej membrany nadają się także folie ze sterylizowanego papieru według DIN 58 953.
W dalszych wyróżniających się postaciach wykonania wynalazku stosuje się membranę Goretex i podobne albo także znajdujące się w handlu giętkie rury foliowe, jakie rozprowadzane są przez firmę Yihuri OY, Wipack, Finlandia, pod nazwą „Mediplast.
159 938
Zasadniczo można stosować każdą membranę foliową niezależnie od jej składników, o ile spełnia ona podane w normie DIN 58 953 wymagania odnośnie zarodkoszczelności, przepuszczalności powietrza, a szczególnie trwałości.
W wyróżniającej się postaci wykonania sposób według wynalazku przeprowadza się przy zastosowaniu torby lub rury giętkiej, która przeważnie składa się z dwu ścian połączonych ze sobą na ich krawędziach szczelnie i hermetycznie, z których jedna ściana wykonana jest ze szczelnego wobec cieczy materiału, a druga utworzona jest z membrany. Membrana jest przeważnie zespawana albo sklejona z naczyniem. Jako naczynia nadają się w sposobie według wynalazku szczególnie wanny.
W dalszej korzystnej postaci wykonania wanna wykonana jest ze szczelnego wobec cieczy tworzywa i ma przeważnie grubość ściany 0,5 do 1 mm.
Najkorzystniejsze warunki suszenia, jak ciśnienie, temperatura oraz ilość, są zależne od każdorazowo suszonego materiału, grubości membrany oraz wielkości i liczby jej porów, i drogą zwykłych i prostych wypróbować muszą być oznaczone dla każdorazowego materiału i opakowania.
Poniżej wynalazek objaśniony jest bliżej za pomocą kilku przykładów wykonania.
Przykład I. Badanie zarodkoszczelności membrany przeprowadzono według DIN 58 953 w ten sposób, że mikroorganizmy w kroplach wody naniesiono na próbki i po wyschnięciu kropel wody badano, czy mikroorganizmy przeszły na dolną stronę próbek.
Przeznaczoną do badania folię membranową pocięto na kwadraty o długości krawędzi około 50 mm. Próbki sterylizowano i wysuszono. Każdą próbkę sterylizowanej membrany stroną, która przy stosowaniu może być kontaminowana, położono do góry na sterylizowane podłoże i zaszczepiono 5 kroplami po 0,1 ml (odpowiednio 106 do 107 zarodków).
Próbki składowano w temperaturze pokojowej 20 do 25°C przy wilgotności względnej powietrza wynoszącej 40 do 60%. Krople w ciągu 6 godzin muszą całkowicie wyschnąć. Każdą próbkę położono zaszczepioną powierzchnią do góry na powierzchni płyty agaru z krwią (1,5% agaru), tak że cała powierzchnia folii była w kontakcie z agarem. Po 5 do 6 sekundach usunięto papier. Płyty poddano wylęganiu przez 16 do 25 godzin w temperaturze 37°C.
Jeżeli potraktowane takimi próbkami foliowymi płyty agarowe nie wykazują żadnego wzrostu, oznacza to, że folia jest wystarczająco zarodkoszczelna. Dalsze dane o badaniu zarodkoszczelności membran, szczególnie wytwarzaniu zawiesin testowych zarodków, można przyjąć z 6 części normy DIN 58 953.
Przykład II. Wytworzono roztwór odżywczy, który składał się z 10 g peptonu, 5 g glukozy, 5g NaCl, 0,084 g KH2PO4, 0,187 g Na2HPO4X2H2O i apyrogennej wody do 1,01 wartość pH ustawiono na 7,0. Następnie sterylizowano go do końca w zamkniętej przekłutej butelce.
W celu pobrania sterylnego, przeznaczonego do liofilizacji roztworu odżywczego sporządzono sterylną torbę przezroczystą, składającą się z przezroczystej folii i odpowiedniego papieru. Ponadto z handlowej przezroczystej sterylnej folii torebkowej firmy Wipak Medical, typ SteriKing R 47, która znajduje się w postaci elastycznej rury, to znaczy dwustronnie spawanej, poza tym otwartej, na rolce (szerokości rolki 400 mm), odcina się kawałek o długości 800 mm. Ta giętka rura z obydwu otwartych stron została przyspawana do torby za pomocą znajdującego się w handlu przyrządu do folii.
Następnie torbę tę sterylizowano w autoklawie z programem filtracyjnym przy temperaturze 123°C i ciśnieniu pary 2 X 105Pa, sterylną torbę z przezroczystą folią na dole, dla lepszego operowania nią położono w niesterylnej wannie blaszanej (blacha VA, wymiary: długość 800 mm, szerokość 400 mm, wysokość 30 mm) i w boksie z laminarnym przepływem w sterylnych warunkach otwarto przez odcięcie narożnika wydezynfekowanymi nożycami. Przez ten otwór o około 30 mm między folią i papierem wlano 1,51 sterylnego roztworu odżywczego ptzez sterylną rurę wsuniętą w otwór. Tak wypełnioną torbę jeszcze w boksie z laminarnym przepływem w sterylnych warunkach zamknięto przez spawanie narożnika za pomocą znajdującego się w handlu przyrządu do spawania folii.
Cały układ (blaszaną wannę, torbę i sterylny roztwór odżywczy) umieszczono na płycie oziębionej wstępnie do temperatury -45°C znajdującego się w handlu, nie dającego się sterylizować urządzenia do liofilizacji firmy Edwards + Kniese o całkowitej powierzchni stanowiska 1,5 m
159 938 i roztwór zamrożono. Po całkowitym zamrożeniu roztworu w niesterylnych warunkach liofilizowano przy ciśnieniu 13,33 Pa i temperaturze płyty 22°C i produkt przy 0,13 Pa również w niesterylnych warunkach, suszono do końca. Całkowity czas suszenia wynosił około 72 godziny.
Tak otrzymany, jako jasnobrunatny proszek zanjdujący się w przezroczystej, sterylizowanej torbie, liofilizowany materiał łącznie z torbą przeniesiono do boksu z laminarnym przepływem i rozpuszczono w 1,51 sterylnej wody. W tym celu przewidziane na stronie papierowej miejsca do nałucia wydezynfekowano alkoholem, za pomocą sterylnej igły i odpowiedniej sterylnej strzykawki dodano do troby łącznie 1,51 sterylnej wody, rozpuszczono wysuszony materiał i roztwór przeprowadzono do sterylnej butelki. Roztwór ten poddano wylęganiu przez 4 dni w temperaturze 37°C i następnie w roztworze tym ustalono liczbę zarodków według metody filtru membranowego.
Okazało się, że przez liofilizację nie zawleczono żadnych zarodków.
Zakład Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz. Cena 10 000 zł
Claims (10)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób liofilizacji w warunkach sterylnych, szczególnie biologicznego albo farmaceutycznego materiału, znamienny tym, że do pojemnika którego ściany co najmniej częściowo stanowi hydrofobowa, porowata, zarodkoszczelna, przepuszczająca parę wodną membrana, wprowadza się przeznaczony do suszenia materiał, pojemnik zamyka się hermetycznie i następnie materiał poddaje się liofilizacji w zamkniętym pojemniku w zwykłych warunkach.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się membranę, której pory posiadają wielkość ¢0),5 μτη.
- 3. Sposób według zastrz. 1, albo 2, znamienny tym, że stosuje się membranę, której pory posiadają wielkość ¢0,,2ym.
- 4. Sposób według zastrz. 1, albo 2, albo 3, znamienny tym, że jako membranę stosuje się folię o właściwościach według DIN 58953.
- 5. Sposób według jednego z zastrz. 1 do 4, znamienny tym, że stosuje się membranę z półprzepuszczalnego papieru przeważnie z celulozy i pochodnych celulozy.
- 6. Sposób według zastrz. 5, znamienny tym, że stosuje się membranę z octanu celulozy.
- 7. Sposób według zastrz. 1 do 4, znamienny tym, że jako membranę stosuje się folię z polimerycznego związku, przeważnie z politetrafluoroetylenu albo polipropylenu.
- 8. Sposób według zastrz. 1 do 7, znamienny tym, że jako pojemnik stosuje się giętką rurę albo torbę, która przeważnie posiada nieprzepuszczalną dla wody ścianę, która połączona jest hermetycznie z dalszą ścianą utworzoną przez membranę.
- 9. Sposób według zastrz. 1 do 7, znamienny tym, że jako pojemnik stosuje się butelkę, ampułkę albo fiolkę, które zamknięte są membraną.
- 10. Sposób według zastrz. 1 do 7, znamienny tym, że jako pojemnik stosuje się wannę, która połączona jest hermetycznie z membraną jako osłoną.* -* *
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE3817906A DE3817906A1 (de) | 1988-05-26 | 1988-05-26 | Verfahren und behaeltnis zum gefriertrocknen unter sterilen bedingungen |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL279609A1 PL279609A1 (en) | 1990-01-22 |
| PL159938B1 true PL159938B1 (pl) | 1993-01-29 |
Family
ID=6355171
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL1989279609A PL159938B1 (pl) | 1988-05-26 | 1989-05-24 | Sposób liofilizacji w warunkach sterylnych PL |
Country Status (13)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0343596B1 (pl) |
| JP (1) | JPH0229256A (pl) |
| AT (1) | ATE73226T1 (pl) |
| CA (1) | CA1337974C (pl) |
| DD (1) | DD283864A5 (pl) |
| DE (2) | DE3817906A1 (pl) |
| DK (1) | DK173643B1 (pl) |
| ES (1) | ES2030556T3 (pl) |
| FI (1) | FI91442C (pl) |
| GR (1) | GR3004584T3 (pl) |
| HU (1) | HU204126B (pl) |
| IE (1) | IE61012B1 (pl) |
| PL (1) | PL159938B1 (pl) |
Families Citing this family (21)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| IL90188A0 (en) * | 1988-05-18 | 1989-12-15 | Cryopharm Corp | Process and medium for the lyophilization of erythrocytes |
| US5045446A (en) * | 1988-08-26 | 1991-09-03 | Cryopharm Corporation | Lyophilization of cells |
| US5257983A (en) * | 1991-04-12 | 1993-11-02 | Cryopharm Corporation | Blood bag for lyophilization |
| AU7356094A (en) * | 1994-04-04 | 1995-10-23 | W.L. Gore & Associates, Inc. | Improved method for minimizing contamination of freeze-dried products |
| JPH10503993A (ja) * | 1994-08-19 | 1998-04-14 | ダブリュ.エル.ゴア アンド アソシエイツ,インコーポレイティド | 凍結乾燥用のベント式バイアルと凍結乾燥された生産品の汚染を最少限にする方法 |
| FR2740108B1 (fr) * | 1995-08-22 | 1998-03-27 | Lab Francais Du Fractionnement | Emballage etanche pour sechage, notamment lyophilisation, et procede de sechage, notamment de lyophilisation, a l'aide d'un tel emballage |
| FR2738057B1 (fr) * | 1995-08-22 | 1997-11-07 | Lab Francais Du Fractionnement | Emballage etanche pour sechage, notamment lyophilisation, et procede de sechage, notamment de lyophilisation, a l'aide d'un tel emballage |
| ATE283346T1 (de) | 1995-09-22 | 2004-12-15 | Us Gov Health & Human Serv | Gefäss zur trocknung von biologischer proben, verfahren zur herstellung desselben und verfahren zu seinem gebrauch |
| US5596814A (en) * | 1995-11-06 | 1997-01-28 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Vented vial stopper for processing freeze-dried products |
| AT1399U1 (de) | 1995-11-29 | 1997-04-25 | Immuno Ag | Verfahren und einrichtung zum lyophilisieren |
| DE19751031A1 (de) | 1997-11-19 | 1999-06-24 | Ingo Dipl Ing Heschel | Verfahren zur Herstellung poröser Strukturen |
| US6312648B1 (en) | 1998-01-12 | 2001-11-06 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Applicator system |
| DE19815993C2 (de) * | 1998-04-09 | 2003-03-06 | Schott Glas | Behälter zur Gefriertrocknung und Aufbewahrung medizinischer Produkte |
| EP1958618A1 (de) * | 2007-02-15 | 2008-08-20 | Octapharma AG | Verfahren zur Gefriertrocknung mit optimierter Rekonstitution von Biopolymeren |
| JP2010124931A (ja) * | 2008-11-26 | 2010-06-10 | Kanae Co Ltd | 凍結乾燥製剤の包装体の製造方法 |
| EP2386399B8 (de) * | 2010-04-23 | 2015-08-05 | MC Beteiligungs-GmbH | Verfahren zum Einbringen von Löchern in eine wasserdichte Beschichtung und Grundkörper mit solcher Beschichtung |
| WO2015162273A1 (en) | 2014-04-25 | 2015-10-29 | Merck Sharp & Dohme Bv | A method to dry multiple individual frozen bodies and a system for applying this method |
| JP7110360B2 (ja) | 2017-10-09 | 2022-08-01 | テルモ ビーシーティー バイオテクノロジーズ,エルエルシー | 凍結乾燥方法 |
| JP2019090596A (ja) * | 2017-11-10 | 2019-06-13 | エイブル株式会社 | 凍結乾燥生成物の製造方法、及び、凍結乾燥用袋、並びに、凍結乾燥装置 |
| CN113597532B (zh) | 2019-03-14 | 2023-02-17 | 泰尔茂比司特生物技术有限公司 | 冻干容器填充固定装置、系统及使用方法 |
| DE102023118662B3 (de) * | 2023-07-13 | 2024-07-11 | Jürgen Kögel | Gefriertrocknungsbehälter |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| BE620147A (pl) * | 1961-07-17 | |||
| NL283895A (pl) * | 1961-11-28 | |||
| GB1154320A (en) * | 1965-09-24 | 1969-06-04 | Unilever Ltd | Freeze Drying |
| FR2284842A1 (fr) * | 1974-09-11 | 1976-04-09 | Nestle Sa | Perfectionnement apporte la lyophilisation des produits solides, liquides ou pateux |
| JPS60168464A (ja) * | 1983-11-18 | 1985-08-31 | 新技術事業団 | 血液保存方法及びその保存用容器 |
| JPS6136942A (ja) * | 1984-07-28 | 1986-02-21 | Sony Corp | 電子部品装置 |
-
1988
- 1988-05-26 DE DE3817906A patent/DE3817906A1/de not_active Withdrawn
-
1989
- 1989-05-11 IE IE154189A patent/IE61012B1/en not_active IP Right Cessation
- 1989-05-19 CA CA000600212A patent/CA1337974C/en not_active Expired - Lifetime
- 1989-05-23 DE DE8989109246T patent/DE58900902D1/de not_active Expired - Lifetime
- 1989-05-23 EP EP89109246A patent/EP0343596B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1989-05-23 AT AT89109246T patent/ATE73226T1/de not_active IP Right Cessation
- 1989-05-23 ES ES198989109246T patent/ES2030556T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1989-05-24 PL PL1989279609A patent/PL159938B1/pl unknown
- 1989-05-24 DK DK198902525A patent/DK173643B1/da not_active IP Right Cessation
- 1989-05-24 DD DD89328870A patent/DD283864A5/de not_active IP Right Cessation
- 1989-05-25 HU HU892683A patent/HU204126B/hu unknown
- 1989-05-25 FI FI892563A patent/FI91442C/fi not_active IP Right Cessation
- 1989-05-26 JP JP1131693A patent/JPH0229256A/ja active Granted
-
1992
- 1992-05-13 GR GR920400224T patent/GR3004584T3/el unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE58900902D1 (de) | 1992-04-09 |
| ATE73226T1 (de) | 1992-03-15 |
| JPH0229256A (ja) | 1990-01-31 |
| FI91442C (fi) | 1994-06-27 |
| JPH0450830B2 (pl) | 1992-08-17 |
| GR3004584T3 (pl) | 1993-04-28 |
| PL279609A1 (en) | 1990-01-22 |
| FI91442B (fi) | 1994-03-15 |
| DK252589A (da) | 1989-11-27 |
| DD283864A5 (de) | 1990-10-24 |
| IE61012B1 (en) | 1994-09-07 |
| DK173643B1 (da) | 2001-05-14 |
| FI892563A0 (fi) | 1989-05-25 |
| DK252589D0 (da) | 1989-05-24 |
| DE3817906A1 (de) | 1989-11-30 |
| EP0343596B1 (de) | 1992-03-04 |
| HU204126B (en) | 1991-11-28 |
| EP0343596A2 (de) | 1989-11-29 |
| CA1337974C (en) | 1996-01-23 |
| HUT52617A (en) | 1990-07-28 |
| ES2030556T3 (es) | 1992-11-01 |
| FI892563L (fi) | 1989-11-27 |
| EP0343596A3 (en) | 1990-02-28 |
| IE891541L (en) | 1989-11-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US5309649A (en) | Process and container for freeze drying under sterile conditions | |
| PL159938B1 (pl) | Sposób liofilizacji w warunkach sterylnych PL | |
| JPS62228147A (ja) | 殺菌工程用生物学的インジケ−タ | |
| US5863496A (en) | Sterile packaging | |
| JPH11506786A (ja) | 人工生体器官の貯蔵および運搬のための装置および方法 | |
| WO2012106506A2 (en) | Medical instrument sterilization system and method | |
| EP1291588B2 (en) | Use of an apparatus for augmenting humidity | |
| WO2006013360A1 (en) | Freeze-drying apparatus | |
| AU2006274329B9 (en) | Vapour-sterilisable blood separating device | |
| AU764170B2 (en) | Drying and/or dry process preservation method using semi-permeable membrane | |
| US10517973B2 (en) | Method for the sterilization of chromatographic material and chromatographic material sterilized according to said method | |
| JP5592080B2 (ja) | 細胞培養方法、細胞培養システム | |
| JP2005295825A (ja) | 袋状湿度供給容器 | |
| Pande | Development and Manufacturing of Injectable (Parenteral) Drug Products | |
| RU2123353C1 (ru) | Биологический индикатор раздельного типа | |
| JP3129610U (ja) | 袋状湿度供給容器 | |
| JPH03671A (ja) | 高圧蒸気滅菌用包装容器 | |
| Ford | Sterile pharmaceutical products | |
| Vogt et al. | Use of plastic bags to maintain a humidified atmosphere for animal cell cultures | |
| JPH0420281A (ja) | 組織培養容器 | |
| JPS60198157A (ja) | 滅菌及び無菌的保存方法 | |
| JP2022526806A (ja) | 再生される組織マトリックスを包装する方法 | |
| JP4392909B2 (ja) | 分離膜および濾過モジュールの保存方法 | |
| Kayser | Chemical sterilization with special reference to ethylene oxide | |
| JPH0649493B2 (ja) | 包装滅菌方法 |