PL166417B1 - Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL - Google Patents
Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PLInfo
- Publication number
- PL166417B1 PL166417B1 PL30094090A PL30094090A PL166417B1 PL 166417 B1 PL166417 B1 PL 166417B1 PL 30094090 A PL30094090 A PL 30094090A PL 30094090 A PL30094090 A PL 30094090A PL 166417 B1 PL166417 B1 PL 166417B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- strain
- thuringiensis
- mutant
- tenebrionis
- thuringiensis subsp
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 47
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 title claims abstract description 9
- 241000193388 Bacillus thuringiensis Species 0.000 claims abstract description 60
- 229940097012 bacillus thuringiensis Drugs 0.000 claims abstract description 27
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 15
- 108700003918 Bacillus Thuringiensis insecticidal crystal Proteins 0.000 claims abstract description 14
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims abstract description 6
- 239000013078 crystal Substances 0.000 claims description 45
- 239000002158 endotoxin Substances 0.000 claims description 45
- 241000193369 Bacillus thuringiensis serovar tenebrionis Species 0.000 claims description 38
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 24
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 24
- 230000028070 sporulation Effects 0.000 claims description 20
- 241000254173 Coleoptera Species 0.000 claims description 14
- 241000607479 Yersinia pestis Species 0.000 claims description 12
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims description 5
- 241000193365 Bacillus thuringiensis serovar israelensis Species 0.000 claims description 4
- 241001147758 Bacillus thuringiensis serovar kurstaki Species 0.000 claims description 4
- 239000013587 production medium Substances 0.000 claims description 4
- 230000000749 insecticidal effect Effects 0.000 claims description 3
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 3
- 241000193363 Bacillus thuringiensis serovar aizawai Species 0.000 claims description 2
- 229920002148 Gellan gum Polymers 0.000 claims description 2
- 125000002467 phosphate group Chemical class [H]OP(=O)(O[H])O[*] 0.000 claims description 2
- 230000001747 exhibiting effect Effects 0.000 claims 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 32
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 31
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 26
- 239000000047 product Substances 0.000 description 13
- 241000193367 Bacillus thuringiensis serovar san diego Species 0.000 description 12
- 241000258916 Leptinotarsa decemlineata Species 0.000 description 11
- 230000000361 pesticidal effect Effects 0.000 description 11
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 9
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 9
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 8
- 239000000575 pesticide Substances 0.000 description 7
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 6
- 238000001493 electron microscopy Methods 0.000 description 6
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 6
- 238000000760 immunoelectrophoresis Methods 0.000 description 6
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000006071 cream Substances 0.000 description 5
- 230000006037 cell lysis Effects 0.000 description 4
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 4
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 4
- 239000002917 insecticide Substances 0.000 description 4
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 4
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 4
- 239000003053 toxin Substances 0.000 description 4
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 description 4
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 description 4
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- 101710151559 Crystal protein Proteins 0.000 description 3
- 241000255925 Diptera Species 0.000 description 3
- 241000238631 Hexapoda Species 0.000 description 3
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 3
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 3
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 3
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 3
- 239000003599 detergent Substances 0.000 description 3
- 239000000945 filler Substances 0.000 description 3
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 3
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 3
- 239000004563 wettable powder Substances 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 2
- 241000255777 Lepidoptera Species 0.000 description 2
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 description 2
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 2
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 2
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 2
- 239000003471 mutagenic agent Substances 0.000 description 2
- 231100000707 mutagenic chemical Toxicity 0.000 description 2
- 230000003505 mutagenic effect Effects 0.000 description 2
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 description 2
- 238000002135 phase contrast microscopy Methods 0.000 description 2
- 230000003389 potentiating effect Effects 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 239000007362 sporulation medium Substances 0.000 description 2
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 2
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 2
- 238000009631 Broth culture Methods 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101100289061 Drosophila melanogaster lili gene Proteins 0.000 description 1
- PLUBXMRUUVWRLT-UHFFFAOYSA-N Ethyl methanesulfonate Chemical compound CCOS(C)(=O)=O PLUBXMRUUVWRLT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 108050001192 Insecticidal delta endotoxin Proteins 0.000 description 1
- 239000007836 KH2PO4 Substances 0.000 description 1
- VZUNGTLZRAYYDE-UHFFFAOYSA-N N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine Chemical compound O=NN(C)C(=N)N[N+]([O-])=O VZUNGTLZRAYYDE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 241000254179 Sitophilus granarius Species 0.000 description 1
- 244000061456 Solanum tuberosum Species 0.000 description 1
- 235000002595 Solanum tuberosum Nutrition 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 241000254109 Tenebrio molitor Species 0.000 description 1
- 241000254107 Tenebrionidae Species 0.000 description 1
- 239000004480 active ingredient Substances 0.000 description 1
- 239000013543 active substance Substances 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 238000005273 aeration Methods 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- 239000012670 alkaline solution Substances 0.000 description 1
- 125000003275 alpha amino acid group Chemical group 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 230000002528 anti-freeze Effects 0.000 description 1
- 230000004888 barrier function Effects 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 235000012216 bentonite Nutrition 0.000 description 1
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 1
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002962 chemical mutagen Substances 0.000 description 1
- 230000001886 ciliary effect Effects 0.000 description 1
- 239000004927 clay Substances 0.000 description 1
- 239000013065 commercial product Substances 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 235000008504 concentrate Nutrition 0.000 description 1
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 description 1
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 1
- 239000003085 diluting agent Substances 0.000 description 1
- ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L dipotassium hydrogen phosphate Chemical compound [K+].[K+].OP([O-])([O-])=O ZPWVASYFFYYZEW-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 229910000396 dipotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019797 dipotassium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000004495 emulsifiable concentrate Substances 0.000 description 1
- 239000000839 emulsion Substances 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 1
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 239000008187 granular material Substances 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 230000007653 larval development Effects 0.000 description 1
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 description 1
- 235000014666 liquid concentrate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 150000007522 mineralic acids Chemical class 0.000 description 1
- 229910000402 monopotassium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019796 monopotassium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000035772 mutation Effects 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 1
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 1
- 239000003002 pH adjusting agent Substances 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 150000003013 phosphoric acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 239000013612 plasmid Substances 0.000 description 1
- GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M potassium dihydrogen phosphate Chemical compound [K+].OP(O)([O-])=O GNSKLFRGEWLPPA-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 235000012015 potatoes Nutrition 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000004621 scanning probe microscopy Methods 0.000 description 1
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 1
- 239000001488 sodium phosphate Substances 0.000 description 1
- 238000005507 spraying Methods 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 238000010254 subcutaneous injection Methods 0.000 description 1
- 239000007929 subcutaneous injection Substances 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K trisodium phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])([O-])=O RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 229910000406 trisodium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000019801 trisodium phosphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000012137 tryptone Substances 0.000 description 1
- 238000010246 ultrastructural analysis Methods 0.000 description 1
- 239000000080 wetting agent Substances 0.000 description 1
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 1
- 229910052727 yttrium Inorganic materials 0.000 description 1
- VWQVUPCCIRVNHF-UHFFFAOYSA-N yttrium atom Chemical compound [Y] VWQVUPCCIRVNHF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
1. Sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis zdolnych do wytworzenia znacznie wiekszych ilosci ( d -endotoksyn niz szczep wyjsciowy, zna- mienny tym, ze szczep wyjsciowy lub mutanta szczepu wyjsciowego hoduje sie w podlozu plynnym, bulion hodowli rozprzestrzenia sie na podlozu odpowiednim do selekcji szczepów niewytwarzajacych zarodniki i/lub wytwarzajacych zarodniki sporadycznie, wybiera sie przez- roczyste kolonie i hoduje sie je w podlozu, które nie uplynnia sie po podgrzaniu, a nastepnie szczepy niewytwarzajace zarodników oddziela sie przez poddawanie kolonii dzialaniu podwyz- szonej temperatury. PL PL PL PL PL PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis, zdolnych do wytwarzania znacznie większych ilości δ-endotoksyn niż szczep wyjściowy.
Handlowe preparaty Bacillus thuringiensis są szeroko stosowane do biologicznego zwalczania szkodników. Zaletą tego insektycydu jest wysoka selektywność w stosunku do wąskiego zakresu owadów i podatność na rozkład biologiczny.
Handlowe preparaty Bacillus thuringiensis mogą być stosowane do czasu zbiorów bez niekorzystnych efektów.
Bacillus thuringiensis jest aerobową, sporującą bakterią w kształcie walca, wytwarzającą w czasie sporulacji jedną lub więcej inkluzji zwanych ciałami parasporalnymi. Te kryształy składają się z białek o wysokiej masie cząsteczkowej, zwanych δ-endotoksynami. δ-endotoksyny są składnikiem dostępnych w handlu preparatów Bacillus thuringiensis.
Zidentyfikowano wiele szczepów B. thuringiensis, aktywnych w różnych grupach owadzich gospodarzy. Dzielą się one na różne podgatunki w oparciu o ich antygeny rzęskowe. Szczególnie interesujące są Bacillus thuringiensis subspecies kurstaki i subspecies aizawai, stosowane do zwalczania szkodliwych motyli, Bacillus thuringiensis subsoecies israelensis stosowany do zwalczania szkodliwych muchówek, i Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis stosowany do zwalczania chrząszczy.
O pierwszej izolacji bakterii Bacillus thuringiensis toksycznej dla chrząszczy doniesiono w 1983 roku (A. Krieg i inni, Z and Ent., 96, 500-508, opublikowany europejski opis patentowy EP 0 149 162 A2).
Wyizolowana bakteria, oznaczona Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis, została złożona w Niemieckiej Kolekcji Mikroorganizmów pod numerem DSM 2803. Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis wyizolowano w 1982 roku z martwej poczwarki wołka zbożowego, Tenebrio molitor (Tenebrionidae /Wołkowate/, Coleoptera). Szczep wytwarza w każdej komórce jeden kryształ parasporalny, który jest płaski, w kształcie płytki i ma długość krawędzi od około 0,8 pm do 1,5 pm. Należy on do serotypu H8a, 8b i fenotypu C laseczki Bacillus thuringiensis (Krieg i inni, System Appl. Microbiol., 9, 138-141, 1987, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki 4766203, 1988).
Szczep ten jest toksyczny dla kilku larw chrząszczy zjadających liście (Chrysomelidare, Stonkowate), ale nieskuteczny przeciw gąsiennicom motyli, komarom (Diptera) i innym owadom.
Bacillus thuringiensis subspecies tenebrionis jest skuteczny w zwalczaniu larw stonki ziemniaczanej. Po pobraniu kryształu i sporów Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis lub izolowanych kryształów, larwy i niektóre przeobrażone formy dorosłe stonki ziemniaczanej (Leptinotarsa decemlineata) przestają jeść. Stadia larwalne L1-L3 giną w ciągu 1-3 dni (Schnetter i inni, „Fundamenta! and Applied Aspects of invertebrate patholohy“, ed. R. A. Samson i inni, Proceedings of the 4th Int. Colloquium of Invertebrate Pathology, str. 555, 1986).
Ostatnio wykazano, że Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis oprócz toksycznych dla chrząszczy kryształów wytwarza także inne ciała parasporalne, które są wrzecionowate, kuliste lub płytkowate (A. M. Huger i A. Krieg, J. Appl. Ent., 108,490-497,1989). Aktywność tego drugiego kryształu nie jest obecnie znana.
Do zwalczania szkodliwych chrząszczy stosuje się cztery dostępne w handlu preparaty Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis. Są to NOVODOR firmy Novo Nordisk A/S, TRIDENT firmy Sandoz, DiTerra firmy Abbott Laboratories Ins., i Foil firmy Ecogen.
O wyizolowaniu innych, szkodliwych dla chrząszczy, szczepów Bacillus thuringiensis doniesiono w 1986 roku (Hernnszadt i inni, Bio/Technology, t. 4,305-308,1986, opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki 4 764 372,1988). Szczep ten oznaczony „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, M7, został zdeponowany w Northern Regional Research Laboratory, USA pod numerem NRRL-B-15939. Handlowy produkt, oparty na „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, został opracowany przez firmę Mycogen Corp.
Porównawcze badania Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, DSM 2803 i „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, NRRL N-15939, obejmując charakterystykę fenotypową komórek wegetatywnych, charakterystykę toksycznych ciał parasporalnych i analizę zawartego plazmidowego DNA wykazały, że „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ jest identyczny z wcześniej
166 417 wyizolowanym szczepem DSM 2803, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis (Krieg i inni, J. Appl. Ent., 104,417-424,1987). Co więcej, sekwencja nukleotydowa genu, przewidywana sekwencja aminokwasowa aktywnej przeciw chrząszczom δ-endotoksyny Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis i „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ są identyczne.
W takich samych warunkach hodowli „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ wytwarza także wspomniany wyżej drugi typ kryształów. (A. M. Huger i A. Krieg, J. Appl. Ent., 108,490-497, 1989).
Według H. de Berjac i E. Frachon (Enthomophaga, 35(2), 233-240,1990), szczep „san diego“ jest podobny do „tenebrionis“ i nie może być uważany za odrębny podgatunek.
Użyteczność szczepów Bacillus thuringiensis do zwalczania szkodliwych chrząszczy zależy od wydajności i ekonomiki wytwarzania toksyn aktywnych przeciw chrząszczom i od siły działania wytworzonego produktu. Ta z kolei zależy od ilości δ-endotoksyny, która może być wytworzona przez fermentację szczepów Bacillus thuringiensis aktywnych przeciw chrząszczom.
B. thuringiensis stosuje się od wielu lat do produkcji insektycydów, i chociaż korzystnie byłoby otrzymać mutanta B. thuringiensis wytwarzającego większą ilość δ-endotoksyny, jak dotąd nie otrzymano takiego mutanta. Mutant wytwarzający większą ilość ó-endotoksyny zapewniałby większą wydajność i zwiększyłby ekonomikę produkcji toksyn B. thuringiensis, co pozwoliłoby na wytwarzanie preparatów B. thuringiensis o większej sile działania przy tych samych kosztach. To z kolei byłoby korzystne dla użytkownika, bo umożliwiałoby zmniejszanie objętości składowanych pestycydów, stosowanych na danym obszarze. Ponadto użytkownik stosowałby mniej pojemników, co miałoby wpływ na środowisko.
Dotychczas nie opisano wytwarzania δ-endotoksyny Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis przez mutację.
Jednym z problemów związanych z zastosowaniem B. thuringiensis subsp. tenebrionis do zwalczania larw chrząszczy jest stosunkowo mała skuteczność preparatów, co wymaga podawania stosunkowo dużych dawek preparatu na traktowane obszary, takich jak 5 do 10 litrów/ha w porównaniu do 1 do 2 litrów/ha innych preparatów B. thuringiensis i innych insektycydów.
Istnieje więc zapotrzebowanie na produkty o zwiększonej sile działania. Jedną z dróg rozwiązania problemu jest wytwarzanie stężonych preparatów. Jednakże powiększa to koszty produkcji w stosunku do oszczędności uzyskanych na przechowywaniu i transporcie.
Znacznie lepszym rozwiązaniem jest wyselekcjonowanie wariantu lub mutanta szczepu B. thuringiensis, zdolnego do wytwarzenia większej ilości δ-endotoksyny na komórkę.
Przedmiotem wynalazku jest sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu B. thuringiensis zdolnych do wytwarzania znacząco większych ilości toksyny niż szczep wyjściowy.
Wynalazek obejmuje sposób selekcji wariantu lub mutanta szczepu B. thuringiensis, wytwarzającego większe ilości toksyny, należącego do podgatunku tenebrionis. Taki wariant lub mutant stosuje się do sporządzania pestycydów zawierających jako substancję aktywną δ-endotoksyny wytwarzane przez mutanta lub wariant szczepu B. thuringiensis, wyselekcjonowanych sposobem według wynalazku, służących do zwalczania szkodników przez podawanie takiego środka szkodnikobójczego na obszarach występowania szkodników, podatnych na działanie δ-endotoksyn.
Sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis zdolnych do wytwarzania znacznie większych ilości δ-endotoksyn niż szczep wyjściowy według wynalazku charakteryzuje się tym, że szczep wyjściowy lub mutanta szczepu wyjściowego hoduje się w podłożu płynnym, bulion hodowli rozprzestrzenia się na podłożu odpowiednim do selekcji szczepów niewytwarzających zarodników i/lub wytwarzających zarodniki sporadycznie, wybiera się przezroczyste kolonie i hoduje się je w podłożu, które nie upłynnia się po podgrzaniu, a następnie szczepy niewytwarzające zarodników oddziela się przez poddawanie kolonii działaniu podwyższonej temperatury.
W celu szczegółowego opisania wynalazku, mutant szczepu B. thuringiensis subsp. tenebrionis wytwarzający wysokie ilości ó-endotoksyny zdeponowano dla celów postępowania patentowego w
166 417
Deutsche Sammulung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH, Mascheroderweg 16, D-3300, Braunschweig, RFN w dacie wskazaną niżej. DSM, będąca depozytariuszem międzynarodowym na mocy Traktatu Budapesztańskiego, zapewnia ciągłość depozytu w zgodzie z regułą 9 tego traktatu.
Data depozytu: 10 sierpnia 1989
Znak deponenta: NB 176-1
Oznaczenie DSM: DSM 5480
Mutant DSM 5480 otrzymano przez mutację Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, szczep DSM 5526, który zdeponowano na mocy Traktatu Budapesztańskiego, jak wykazano niżej:
Data depozytu: 14 września 1989
Znak deponenta: NB 125
Oznaczenie DSM: DSM 5526
Przedmiotem wynalazku jak wspomniano poprzednio, jest sposób selekcji wariantu lub mutanta spontanicznego szczepu Bacillus thuringiensis, wytwarzającego duże ilości aktywnej δ-endotoksyny w porównaniu do szczepu wyjściowego.
W tym kontekście, określenie „duża ilość“ korzystnie oznacza ilość co najmniej dwa razy większą lub jeszcze większą.
Mutanty, poddawane selekcjonowaniu sposobem według wynalazku, uzyksuje się przez traktowanie szczepu wyjściowego mutagenem. Jako mutagen stosuje się każdy odpowiedni chemiczny mutagen, taki jak N-metylo-N'-nitro-N-nitrozoguanidyna lub ester etylowy kwasu metanosulfonowego, albo szczep wyjściowy poddaje się działaniu pormieniowania elektromagnetycznego, takiego jak promieniowanie y, X, lub UV.
Korzystnie, wyselekcjonowane kolonie hoduje się w normalnej pożywce hodowlanej i poddaje się końcowej selekcji w celu znalezienia mutanta wytwarzającego większą ilość δ-endotoksyny.
Odpowiednią pożywkę modyfikuje się pożywką do sporulacji zawierającą fosforan (pożywka NSMP) tak jak opisał Johnson i współpracownicy „Spores VI“, ed. P. Gerhardt i wsp., str. 248-254, 1975.
Według wynalazku jako odpowiednią pożywkę stosuje się pożywkę NSMP wzbogaconą MgCl' oraz Gelrite firmy Kelco. W innej postaci wynalazku, w celu wytworzenia mutanta wytwarzającego δ-endotoksyny, szczep wyjściowy hoduje się w pożywce płynnej i selekcjonuje się spontaniczne mutanty po dodaniu kultur bulionowych do podłoża agarowego, odpowiedniego do selekcji mutantów niesporujących lub sporadycznie wytwarzających zarodniki.
Inny sposób szukania mutanta wytwarzającego dużo δ-endotoksyny obejmuje stosowanie bezpośrednio dużej ilości mutantów, przy użyciu odwirowania lub innych sposobów izolowania odpowiednich dla dużych ilości.
Korzystnie, jako szczep wyjściowy stosuje się szczep wybrany z grupy obejmującej B. thuringiensis subsp. kurstaki, B. thuringiensis subsp. aizawai, B. thuringiensis subsp. israelensis i B. thuringiensis subsp. tenebrionis.
Korzystnie, wybiera się mutanta lub wariant Bacillus thuringiensis zdolnego do wytwarzania dużych, w porównaniu ze szczepem wyjściowym ilości owadobójczych δ-endotoksyn, zwłaszcza dwa razy większej ilości lub więcej, owadobójczych δ-endotoksyn, w porównaniu ze szczepem wyjściowym. Szczególnie korzystnie wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis należący do patotypu C. B. thuringiensis.
Szczególnie korzystnie, wybierając wspomniane wyżej mutanty lub warianty, wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis wykazującego działanie przeciwko tym samym szkodnikom co δ-endotoksyny wytwarzane przez wyjściowy B. thuringiensis, takim jak łuskoskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. kurstaki i/lub subsp. aizawai), dwuskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. israelensis) lub chrząszcze (mutanty B. thuringiensis subsp. tenebrionis).
Korzystnie także, wybiera się B. thuringiensis należący do podgatunku tenebrionis, wytwarzający δ-endotoksyny działającą przeciwko chrząszczom, a zwłaszcza mutanta lub B. thuringiensis tenebrionis zdolnego do wytwarzania δ-endotoksyny w ilości ponad 3-krotnie większej w porównaniu ze szczepem DSM 2803.
Szczególnie korzystnie, wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis, zdolnego do wytwarzania parasporalnych kryształów o średniej długości krawędzi co najmniej
166 417 dwukrotnie większej niż średnia długość krawędzi kryształu parasporalnego wytwarzanego przez szczep wyjściowy, zwłaszcza zdolnego do wytwarzania kryształu parasporalnego o średniej długości krawędzi wynoszącej 2pm lub więcej.
Według wynalazku, korzystnie wybiera się również mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis, wykazującego częstotliwość sporulacji 10 do 100 lub nawet 10e razy niższą niż częstotliwość sporulacji szczepu wyjściowego bądź szczepu DSM 2803.
W szczególnej postaci wynalazku wybiera się zdeponowanego mutanta szczepu B. thuringiensis subsp. tenebrionis DSM 5480. Ten wybrany mutant wykazuje więcej niż dwukrotny wzrost wytwarzania δ-endotoksyny w porównaniu ze szczepem wyjściowym (DSM 5526). Mikroskopia kontrastowo-fazowa, skaningowa i prześwietleniowa mikroskopia elektronowa tego mutanta wykazała, że wysoka produktywność wynika ze zmian regulacji wytwarzania δ-endotoksyny w stosunku do sporulacji, co powoduje wytwarzanie kryształów białka ponad pięć razy więszych, niż kryształy wytwarzane przez znane, aktywne przeciw chrząszczom szczepy Bacillus thuringiensis. Dzięki zastosowaniu sposobu według wynalazku usunięto bliską korelację pomiędzy wytwarzaniem kryształów i sporulacją. Mutant wyselekcjonowany sposobem według wynalazku wytwarza duże ilości δ-endotoksyny przed sporulacją.
Mutanty lub warianty spontaniczne szczepów B. thuringiensis, wyselekcjonowane sposobem według wynalazku, są zdolne do wytwarzania produktów szkodnikobójczych, zwłaszcza owadobójczych, wchodzących w skład środków szkodnikobójczych.
Sposób wytwarzania tych produktów polega na tym, że mutanta B. thuringiensis hoduje się w odpowiedniej pożywce zawierającej źródło węgla, azotu i inne składniki, znane fachowcom, w ciągu odpowiedniego okresu czasu, po którym odzyskuje się δ-endotoksyny.
δ-endotoksynę wytworzoną w podany wyżej sposób stosuje się w środkach pestycydowych jako składnik aktywny, samą lub w połączeniu z innymi produktami czynnymi biologicznie, a także z dopuszczalnymi w rolnictwie rozcieńczalnikami lub nośnikami. Środki takie mają postać kompozycji i preparatów pestycydowych, które zawierają δ-endotoksyny wytwarzane przez B. thuringiensis wyselekcjonowane sposobem według wynalazku, w mieszaninie z dopuszczalnymi w rolnictwie rozpuszczalnikami lub nośnikami.
Mogą to być kompozycje i preparaty pestycydowe zawierające δ-endotoksyny wytwarzane przez B. thuringiensis, których skład pestycydowy w formie ciekłej ma moc przynajmniej 15 OOOBTTU/g odpowiadające przynajmniej 3% wagowych szkodliwego dla chrząszczy białka krystalicznego lub których skład pestycydowy w formie suchej ma moc przynajmniej 50 OOOBTTU/g, odpowiadającą przynajmniej 10%o wagowych szkodliwego dla chrząszczy białka krystalicznego.
Kompozycje pestycydowe wytworzone z DSM 5480 mają przynajmniej dwa razy większą moc, niż kompozycja pestycydowa wytworzona z DSM 2803 lub z innych, aktywnych przeciw chrząszczom szczepów Btt.
Kompozycje takie stosuje się w postaciach znanych fachowcom, na przykład w postaci zawiesiny, emulsji wodnych, pyłów, pyłów dyspergujących, koncentratów emulgujących lub granulek. Ponadto stosuje się je w postaci odpowiedniej do bezpośredniego użycia, lub jako koncentrat pierwotnej kompozycji, który wymaga rozpuszczenia w odpowiedniej ilości wody lub w innym rozpuszczalniku przed podaniem.
Stężenie owadobójczo aktywnej δ-endotoksyny B. thuringiensis w takich kompozycjach szkodnikobójczych, stosowanej osobno lub w połączeniu z innym pestycydem, i podawanej na rośliny, korzystnie wynosi od około 0,5 do około 25% wagowych szczególnie od 1 do 15% wagowych.
Te kompozycje pestycydowe stosuje się do zwalczania szkodników, nanosząc je na obszary zaatakowane przez te szkodniki. W szczególnym przypadku, kompozycje te stosuje się do zwalczania szkodników takich jak motyle, muchówki i chrząszcze, szczególnie chrząszcze, takie jak stonka ziemniaczana.
Szkodniki zwalcza się, stosując ciekłą kompozycję pestycydową w dawce 2,8 litra/ha, lub 0,56 kg/ha suchej kompozycji pestycydo wej.
166 417
Ί
Aktywny preparat B. thuringiensis lub kompozycję zawierającą ten preparat podaje się bezpośrednio na rośliny, na przykład przez rozpylanie cieczy lub pyłów w czasie, kiedy szkodniki zaczynają pojawiać się na roślinach. Korzystnie rozpyla się ciecz. Ogólnie ważne jest skuteczne niszczenie szkodników we wczesnych stadiach rozwoju larwalnego, ponieważ w tym okresie rośliny są narażone na największe uszkodzenia.
Przykładl. Wyizolowano mutanta B. thuringiensis subsp. tenebrionis wytwarzającego dwa razy więcej δ-endotoksyny. Mikroskopia kontrastowo-fazowa, skaningowa i prześwietleniowa mikroskopia elektronowa tego mutanta wykazała, że wysoka produktywność wynika ze zmian regulacji wytwarzania δ-endotoksyny w stosunku do sporulacji, co powoduje wytwarzanie kryształów białka ponad pięć razy większych niż kryształy wytwarzane przez znane, aktywne przeciw chrząszczom szczepy B. thuringiensis. Bliską korelację pomiędzy wytwarzaniem kryształów, sporulację usunięto w wyniku czego, mutant wytwarza duże ilości δ-endotoksyny przed sporulacją. Wytwarzanie wysokowydajnego mutanta.
Zarodniki szczepu DSM 5526 B. thuringiensis subsp. tenebrionis napromieniowano promieniowaniem y dawką 7 kGy. Napromieniowane zarodniki wysiano na płytki agarowe z podłożem NSMP (zmodyfikowana pożywka do sporulacji zawierająca fosforan, jak opisał Johnson i wsp. w „Spores VI“, ed. P. Gerhardt, wsp., str. 248-254,1975), które jest odpowiednie do selekcji bakterii niesporujących lub sporujących sporadycznie.
Płytki agarowe z NSMP inkubowano w temperaturze 30°C w ciągu 2-3 dni. Półprzezroczyste kolonie przesiano na podłoże NSMP gelrite (NSMP wzbogacone MgCU (0,57 g/l) i Gerlite, Kelco (20 g/l)).
Płytki agarowe z NSMP gerlite inkubowano w temperaturze 90°C w ciągu 1 godziny, a następnie w ciągu 1-2 dni w temperaturze 30°C.
Selekcjonowano mutanty dobrze rosnące na płytkach NSMP gerlite. W ten sposób odrzucono wszystkie niesporujące kolonie, które nie rosną po ogrzaniu.
Wyselekcconowane mutanty hodowano na wytrząsarce w butelkach zawierających pożywkę dostępną w handlu. Ilość wytworzonej δ-endotoksyny określono metodą immunologiczną opisaną poniżej.
Selekcjonowano tylko mutanty wytwarzające ilości δ-endotoksyny znacząco większe niż szczep wyjściowy.
Cechy morfologiczne wyselekcjonowanych mutantów na podłożu stałym i płynnym określono przy pomocy mikroskopii kontrastowo-fazowej (X 2500) i skaningowej i prześwietleniowej mikroskopii elektronowej. Liczono liczbę zarodników i kryształów i określono wielkość kryształów białkowych.
Jeden z otrzymanych mutantów (DSM 5480) został wybrany ze względu na swoją zdolność do wytwarzania δ-endotoksyny.
Ilość δ-endotoksyny wytwarzanej przez mutanta DSM 5480 jest porównywalna z DSM 2803 oryginalnie wyizolowanego Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, szczep DSM 5526 stosowanego do wytwarzania NOVODOR, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis, szczep NB 178, wyizolowany z produktu Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis TRIDENT firmy Sandoz, Bacillus thuringiensis tenebrionis TRIDENT z roku 1989, szczep NB 198, firmy Sandoz Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis wyizolowany w 1990 roku z produktu TRIDENT, „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, szczep NRRL-B-15939 i szczep NB 197 wyizolowany w 1990 roku z produktu M-ONE „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“ firmy Mycogen. Jak pokazano w tabeli 1 w przykładzie II, mutanty wyselekcjonowane sposobem według wynalazku wytwarzają 2-3,5 razy więcej δ-endotoksyny niż aktywny przeciw chrząszczom, dostępny obecnie szczep Bacillus thuringiensis.
Przykład II. W tym przykładzie porównano ilość δ-endotoksyny wytwarzanej przez mutanta DSM 5480, Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis z ilością wytwarzaną przez Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis szczep DSM 2803 (oryginalnie wyizolowany Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis), DSM 5526 (szczep produkcyjny Novo-Nordisk), NB 178 i NB 198 (szczepy produkcyjne Sandoz), Bacillus thuringiensis subsp. san diego, szczep NRRL-B 15939 i NB 197
166 417 (szczepy produkcyjne Mycogen) w podłożu w temperaturze 30°C na skosach agarowych z kompozycji następujących składników, wyrażonych w gramach na litr wody destylowanej:
Pepton, Difco 5 g/iitr
Ekstrakt mięsny, Difco 3 g/litr Agar, Difco 10 g/iitr pH 7,0 ml zawiesiny komórek każdego szczepu przeniesiono do 100 ml pożywki produkcyjnej w 500 ml kolbie Erlenmeyera z przegrodzonym dnem. Pożywka produkcyjna zawierała następujące składniki: (wyrażone w gramach na litr wody):
mąka sojowa 50 g/litr hydrolizat skrobiowy 40 g/iitr KH2PO4 l,77g/lirr
K2HPO4 4,53g/itrr pH 7,0
Zaszczepione kolby inkubowano w temperaturze 30°C na wytrząsarce (250 obr/min). Po 96 godzinach inkubacji immunologicznie określono ilość wytworzonej δ-endotoksyny.
Ilość wytworzonej δ-endotoksyny określono metodą immunoelektroforezy rakietkowej (RIE) i testu immunofotometrycznego (PIA) przy użyciu przeciwciał powstałych przeciwko oczyszczonym kryształom białkowego Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis.
Odważono 400 mg bulionu z każdej hodowli i dodano 7 ml buforu fosforanu trójsodowego (0,125 M, pH 12). Zawiesinę wytrząsano w ciągu 1 godziny w celu rozpuszczenia kryształów białkowych δ-endotoksyny.
Próbki wirowano w ciągu 15 minut z szybkością 3.500 obrotów/minutę, supernatant testowano metodą RIA w obecności surowicy odpornościowej powstałej przeciwko oczyszczonym kryształom białkowym B. thuringiensis subsp. tenebrionis. Ilość δ-endotoksyny określano w stosunku do standardu o znanej zawartości kryształów białkowych.
Określano także stężenie kryształów białkowych metodą immunofotometryczną. Kryształy białkowe rozpuszczono w roztworze alkalicznym. Rozpuszczone białka wytrącono przeciwciałami. Szybkość reakcji określono turbidometrycznie. Ilość δ-endotoksyny określono w stosunku do wzorca o znanej zawartości kryształów białkowych.
Antygeny krystaliczne do produkcji przeciwciał stosowanych w tych testach otrzymano z kryształów wyizolowanych z B. thuringiensis subsp. tenebrionis.
Poliklonalne przeciwciała powstały po nastrzykiwaniu podskórnym co dwa tygodnie królików dawką 0,25 mg antygenu krystalicznego.
Otrzymane wyniki pokazano w tabelach 1a i 1b. Wydajność δ-endotoksyny wyrażono w BTTU/g (jednostek na gram pożywki bulionowej, określoną metodą immunoforezy rakietkowej RIE, lub metodą immunofotometryczną, PIA). Wartość dla czystych kryształów białkowych B. thuringiensis subsp. tenebrionis wynosi 500 000 BTTU/g. Wartości w tabeli la stanowią wartości średnie z 6-7 niezależnych fermentacji, a w tabeli 1b z 3 niezależnych fermentacji.
Tabela 1a
Wytwarzanie δ-endotoksyny przez szczepy Bacillus thuringiensis subsp. tenebrionis na wytrząsarce
| Szczep _ | Ilość δ-endotoksyny (BTTU/g) | |
| RIE | PIA | |
| DSM 2803 | 676 | 12931 |
| NRRL-B 15939 | 747 | 1126 |
| NB 178 | 986 | 1728 |
| DSM 5526 | 1097 | 1860 |
| DSM 5480 | 2382 | 4169 |
166 417
Tabela 1b
Wytwarzanie δ-endotoksyny przez szczepy Bacillus thuringiensis subsp. tenebnoms na wytrząsarce
| Szczep | Ilość δ-endataksyny, RIE (BTTU/g) |
| NB 197 | 1103 |
| NB 198 | 1237 |
| DSM 5480 | 2867 |
Z tabel la i 1b wynika, że szczep DSM 5480 wytwarza ponad trzy razy więcej δ-endotoksyny niż wyjściowy szczep B. thuringiensis subsp. tenebrionis DSM 2803: „Bacillus thuringiensis subsp. san diego“, szczep NRRL-B 15939 i ponad dwa razy więcej niż szczepy stosowane obecnie do przemysłowej produkcji preparatów Bacillus thurmgiersis subsp. tenebrioms.
Mikroskopia kontrartowo-fazowa i skaningowa o raz prześwietleniowa mikroskopia elektronowa mutanta DSM 5480 Bacillus thuringiersis subsp. tenebrianis wykazała, że wytwarzane przez niego kryształy białkowe są dużo większe niż odpowiednie kryształy białkowe wytwarzane przez Bacillus thuringiensis subsp. tenebrioms szczepy DSM 2803, DSM 5526, NB 178, NB 198 i „Bacillus thuringiensis subsp. san diego, szczepy NRRL-B 15939 i NB 197.
Pożywkę bulionową mutanta DSM 5480, Bacillus thuringiensis subsp. terebrianis poddano testowi na aktywność przeciw larwom stonki ziemniaczanej. Zwiększona ilość ó-endotoksyny wytwarzanej przez mutanta DSM 5480 określona metodami immunologicznymi znalazła odbicie w aktywności biologicznej przeciw larwom stonki ziemniaczanej.
Przykład III. W tym przykładzie porównano sporulację i wytwarzanie kryształów parasporalnych przez B. thuringiensis subsp. tenebrioms, szczepy DSM 2803, DSM 5526, DSM 178, DSM 198, mutant DSM 5480 i „B. thuringiensis subsp. san diego, szczepy NRRL-B 15393 i NB 197 w podłożu stałym i płynnym.
Każdy szczep hodowano 2 dni w temperaturze 30°C na płytkach agarowych o następującym składzie wyrażonym w gramach na litr destylowanej wody:
Pepton, Difco 5 g/litr
Ekstrakt mięsny, Difco 3 g/litr Agar, Oifco 20 g/lili· pH 7,0
Każdy szczep hodowano także na pożywce płynnej. Wszystkie szczepy hodowano w ciągu 17 godzin w temperaturze 30°C na skosach agarowych. 5 ml zawiesiny komórek każdego szczepu przeniesiono do 500 ml kolb Erlenmeyera z przegrodzonym dnem, zawierających 100 ml pożywki.
Pożywka składała się z następujących składników w podanych niżej ilościach: (wyrażonych w gramach na litr wody):
Pożywka płynna Ekstrakt drożdżowy 5 g/ldi
Trypton 5 g/litr
Glukoza 1 g/litr
KH2PO4 0,8 g/llir pH 7,0
Zaszczepione kolby ^Lubowano w temperaturze 30°C na wytrząsarce (250 obrotów/minutę) w ciągu 96 godzin.
Morfologię szczepów na podłożu stałym i płynnym badano codziennie metodą mikroskopii kontrastowo-fazowej (X 2500). Liczbę przetrwalników i kryształów liczono oraz określano wielkość kryształów parasporalnych. Kilka wyselekcjonowanych próbek badano także metodą skaningowej i prześwietleniowej mikroskopii elektrono wej.
Wszystkie szczepy B. thurirgiersis subsp. tenebrioms, szczepy DSM 2803, DSM 5526, NB 178 i NB 198, „B. thuringiersis subsp. san diego, szczepy NRRL-B 15939 i NB 197 przetrwalnikują dobrze w obu pożywkach. Przed lizą komórek każda komórka zawierała przetwarzalnik i kryształ parasporalny. Kryształ miał długość od 0,4 do 0,9-1,1 ym, do czasu lizy komórki. Średnia długość wynosiła 0,6-0,7//m.
166 417
Mutant DSM5480 wytwarzał tylko niewiele przetrwalników (<106 przetrwalników/ml) w podłożu stałym i podłożu płynnym. Przed lizą komórek większość komórek zawierała długi kryształ białkowy, ale nie zawierała przetrwalników. Wielkość kryształów białkowych wynosiła od 0,4-0,7/um do 5,0 (Jm, średnia długość wynosiła 2,2-2,3//m.
Ultrastrukturalna analiza komórek z tych podłóż metodą prześwietleniowej mikroskopii elektronowej wykazała, że sporulacja mutanta rozpoczynała się, ale nie była całkowita do czasu lizy komórki. Sporulacja w różnych komórkach osiągała różne stadium. W komórkach, w których sporulacja osiągnęła zaledwie II etap (tworzenie przesłony presporalnej), kryształ białkowy wypełniał wnętrze komórki.
W pożywce produkcyjnej (Przykład II) mutant wytwarzał większą liczbę sporów (107-108 sporów/ml). W tym podłożu częstość sporulacji mutanta była 10-100 razy niższa niż w przypadku szczepu wyjściowego.
Tak więc mutant zachowuje zdolność do wytwarzania normalnych przetrwalników, jednakże zależy ona w dużej mierze od podłoża.
Wielkość kryształów białkowych wytwarzanych przez poszczególne szczepy pokazano w tabelach 2a i 2b.
Tabela 2a
Wielkość kryształów białkowych wytwarzanych przez aktywne przeciw chrząszczom dostępne obecnie szczepy B. thuringiensis
| Szczep | Długość kryształu białkowego (μη) | ||
| Minimum | Maksimum | S'rednia | |
| DSM2803 | 0,4 | 0,9 | 0,7 |
| NRRL-B 15939 | 0,4 | 0,9 | 0,7 |
| NB 178 | 0,5 | 0,9 | 0,7 |
| DSM5526 | 0,4 | 0,9 | 0,7 |
| DSM5480 | 0,7 | 5,0 | 2,3 |
Tabela 2b
Wielkość kryształów białkowych wytworzonych przez aktywne przeciw chrząszczom dostępne obecnie szczepy B. thuringiensis
Długość kryształu białkowego (μη)
| Minimum | Maksimum | S'rednia | |
| NB 197 | 0,4 | 0,7 | 0,6 |
| NB 198 | 0,4 | 1,1 | 0,7 |
| DSM5480 | 0,4 | 4,2 | 2,0 |
Z tabel 2a i 2b wynika, że mutant 5480 wytwarza dużo większe kryształy białkowe niż wszystkie znane obecnie szczepy B. thuringiensis aktywne przeciw chrząszczom.
Z uzyskanych danych wynika, że w szczepie zmutowanym, zmieniła się regulacja produkcji δ-endotoksyny w stosunku do sporulacji.
Mutant wydaje się wytwarzać krystaliczne białko zanim rozwinie spory, dając w ten sposób komórkom dłuższy czas na wytwarzanie ó-endotoksyny i w rezultacie komórki produkują dużo więcej krystalicznego białka zanim nastąpi liza, niż w szczepie wyjściowym.
W zależności od dostępnych składników odżywczych i rozmiarów kryształów białkowych w komórkach do czasu sporulacji, przed lizą komórek rozwijają się normalne spory.
Przykład IV. W tym przykładzie zastosowano bardzo wydajnego mutanta Btt DSM5480 do wytwarzania produktu o dużej mocy działania do zwalczania larw stonki zmieniaczanej.
Szczep DSM5480 fermentowano w produkcyjnym podłożu fermentacyjnym opisanym w przykładzie II, z napowietrzaniem i wstrząsaniem w produkcyjnym tanku fermentacyjnym. Po 96 godzinach pożywkę odzyskano przez odwirowanie na wirówce o działaniu ciągłym.
Stężony krem, który zawierał aktywne białko krystaliczne, stabilizowano przez dodanie środków konserwujących i doprowadzono pH do 5,0.
Jedną część stężonego kremu suszono rozpyłowo, a następnie zastosowano do wytwarzania zwilżalnego proszku. Resztę stężonego kremu zastosowano bezpośrednio do wytwarzania dwóch wodnych płynnych koncentratów.
166 417 11
Zwilżalny proszek miał skład podany w tabeli 3 (skład dwóch preparatów PC podano w tabeli 4).
Tabela 3
Skład zwilzalnego proszku NOYODOR
| Składnik | % wagowy |
| wysuszony rozpyłowo, | |
| stężony krem B tt | 40 |
| detergenty | 9 |
| środek zapobiegający zlepianiu | 1 |
| obojętny wypełniacz | 50 |
Tabela 4
Skład preparatu PC NOYODOR
| Składnik | NOVODOR FC1 % wagagy | NOVODORFC2 ^wagowy |
| stężony krem B tt | 80,00 | 55,00 |
| konserwanty | 4,00 | 4,00 |
| środki przeciw zamarzaniu | 9,10 | 19,00 |
| detergenty | 2,50 | 2,50 |
| regulator pH | 2,85 | 2,85 |
| woda | 1,55 | 16,55 |
| 100,00 | 100,00 |
Dla wartości 500 000 BTT U/g czystego krystalicznego białka zawartość aktywnego białka krystalicznego wynosiła:
% krystalicznego białka Btt
NOVODORWP — 70,8KBITU/g 14,18
NOVODOR FC1 — 24,7 KBTTU/g 4,94
NOVODOR FC2 — 14,2 KBTTU/g 2,84
Detergenty wybrano z dużej grupy pomocniczych środków rozpraszających i środków zwilżających zwykle stosowanych do produkcji rolniczych pestycydów. Jako środek zapobiegający zlepianiu zastosowano krzemionkę hydrofitową, a jako obojętny wypełniacz zastosowano zwykle stosowane obojętne wypełniacze takie jak bentonity, sole nieorganiczne lub materiały ilaste.
Konserwanty do FC wybrano z grupy konserwantów do żywności i kosmetyków. Jako regulator pH zastosowano kwas nieorganiczny.
PrzykładV. Prowadzono próby polowe w celu udowodnienia działania biologicznego wysoko wydajnego mutanta Btt DSM 5480 w stosunku do głównego docelowego szkodnika larwy stonki ziemniaczanej. Porównano dwa handlowe produkty Trident i M-one. Obiektem uprawnym były ziemniaki.
Obiekt uprawny opryskano 3 razy: 20 lipca, 27 lipca i 3 sierpnia (druga generacja larw). Zastosowano produkty i dawki, jak w tabeli 5.
Tabela 5
Moc działania % krystalicznego
Objętość produktu/ha KBTTU/g białka w w preparacie
| NOVODOR FC2 | 2,8 litra | 14,2 | 2,84 |
| 4,2 litra | 14,2 | 2,84 | |
| 7,0 litra | 14,2 | 2,84 | |
| 8,4 litra | 14,2 | 2,84 | |
| TRIDENT | 11,2 litra | 5,5 | 1,10 |
| M-one | 5,6 litra | 8,9 | 1,78 |
Średni procent zwalczenia larw CPS w porównaniu ze zwalczeniem larw nie poddanych działaniu preparatu przedstawiono w tabeli 6. Napór stonki ziemniaczanej na terenie nie traktowanym preparatami był bardzo duży: 370 larw na 20 roślin w dniu 1 sierpnia i 904 larwy na 20 roślin w dniu 8 sierpnia.
166 417
Tabela 6 % zwalczania sierpnia 8 sierpnia
| NOVODOR FC2 | 2,8 litra | 9n | 99 |
| NOVODOR FC2 | 4,2 litra | 95 | 100 |
| NOVODOR FC2 | 7,0 litra | 98 | 99 |
| NOVODOR FC2 | 8,4 litra | 100 | 100 |
| TRIDENT | 11,2 litra | 94 | 98 |
| M-one | 5,6 litra | 98 | 98 |
Wyniki te jasno dowodzą, że produkty otrzymane z wysoko wydajnego mutanta DSM 5480 są skuteczne do zwalczania larw stonki ziemniaczanej na polach. Krystaliczne białko wyprodukowane przez wysokowydajny szczep jest całkowicie aktywne i w ilości 4,2 litra FC NOVODORu daje równie dobre rezultaty jak Trident w objętości 11,2 litra i jak M-one w objętości 5,6 litra.
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz.
Cena 1,00 zł.
Claims (15)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób selekcji wariantów lub mutantów spontanicznych szczepu Bacillus thuringiensis zdolnych do wytworzenia znacznie większych ilości δ-endotoksyn niż szczep wyjściowy, znamienny tym, że szczep wyjściowy lub mutanta szczepu wyjściowego hoduje się w podłożu płynnym, bulion hodowli rozprzestrzenia się na podłożu odpowiednim do selekcji szczepów niewytwarzających zarodniki i/lub wytwarzających zarodniki sporadycznie, wybiera się przezroczyste kolonie i hoduje się je w podłożu, które nie upłynnia się po podgrzaniu, a następnie szczepy niewytwarzające zarodników oddziela się przez poddawanie kolonii działaniu podwyższonej temperatury.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wyselekcjonowane kolonie hoduje się w normalnym podłożu produkcyjnym i przeprowadza się końcową selekcję szczepu zdolnego do zwiększonej produkcji δ-endotoksyny.
- 3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jako podłoże stosuje się zmodyfikowane podłoże odżywcze do sporulacji, zawierające fosforan.
- 4. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jako podłoże stosuje się podłoże z dodatkiem MgCl2 i Gelrite, Kelco.
- 5. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że jako szczep wyjściowy stosuje się szczep wybrany z grupy obejmującej B. thuringiensis subsp. kurstaki, B. thuringiensis subsp. aizawai, B. thuringiensis subsp. israelensis i B. thuringiensis subsp. tenebrionis.
- 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant Bacillus thuringiensis zdolnego do wytwarzania dużych w porównaniu ze szczepem wyjściowym ilości owadobójczych β-endotoksyn.
- 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis zdolnego do wytwarzania dwa razy większej ilości, lub więcej, owadobójczych δ-endotoksyn w porównaniu ze szczepem wyjściowym.
- 8. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis należący do patotypu C B. thuringiensis.
- 9. Sposób według zastrz. 6 albo 7, albo 8, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis wykazującego działanie przeciwko tym samym szkodnikom co δ-endotoksyny wytwarzane przez wyjściowy B. thuringiensis, takim jak łuskoskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. kurstaki i/lub subsp. aizawai), dwuskrzydłe (mutanty B. thuringiensis subsp. israelensis) lub chrząszcze (mutanty B. thuringiensis subsp. tenebrionis).
- 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że wybiera się B. thuringiensis należący do podgatunku tenebrionis wytwarzający δ-endotoksynę działającą przeciwko chrząszczom.
- 11. Sposób według zastrz. 10, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis tenebrionis zdolnego do wytwarzania δ-endotoksyny w ilości ponad 3-krotnie większej w porównaniu ze szczepem DSM2803.
- 12. Sposób według zastrz. 10 albo 11, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis zdolnego do wytwarzania parasporalnych kryształów o średniej długości krawędzi co najmniej dwukrotnie większej niż średnia długość krawędzi kryształu parasporalnego o średniej długości krawędzi wynoszącej 2 gm lub więcej.
- 14. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że wybiera się mutanta lub wariant B. thuringiensis subsp. tenebrionis, wykazującego częstotliwość sporulacji 10 do 100 lub nawet 10e razy niższą, niż częstotliwość sporulacji szczepu wyjściowego.
- 15. Sposób według zastrz. 14, znamienny tym, że wybiera się mutanta B. thuringiensis subsp. tenebrionis wykazującego częstotliwość sporulacji 10 do 100 lub nawet 10e razy niższą niż częstość sporulacji szczepu DSM 2803.
- 16. Sposób według zastrz. 12, znamienny tym, że wybiera się zdeponowanego mutanta B. thuringiensis subsp. tenebrionis DSM 5480.* * *166 417
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DK580589A DK580589D0 (da) | 1989-11-17 | 1989-11-17 | Mutant |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL166417B1 true PL166417B1 (pl) | 1995-05-31 |
Family
ID=8145376
Family Applications (3)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL30094090A PL166417B1 (pl) | 1989-11-17 | 1990-11-16 | Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL |
| PL30093990A PL166433B1 (pl) | 1989-11-17 | 1990-11-16 | Sposób wytwarzania owadobójczego produktu wytwarzanego przez B. thuringlensis PL PL PL PL PL PL |
| PL28780690A PL166479B1 (pl) | 1989-11-17 | 1990-11-16 | Srodek owadobójczy PL PL PL PL PL PL |
Family Applications After (2)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL30093990A PL166433B1 (pl) | 1989-11-17 | 1990-11-16 | Sposób wytwarzania owadobójczego produktu wytwarzanego przez B. thuringlensis PL PL PL PL PL PL |
| PL28780690A PL166479B1 (pl) | 1989-11-17 | 1990-11-16 | Srodek owadobójczy PL PL PL PL PL PL |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| DK (1) | DK580589D0 (pl) |
| PL (3) | PL166417B1 (pl) |
-
1989
- 1989-11-17 DK DK580589A patent/DK580589D0/da not_active Application Discontinuation
-
1990
- 1990-11-16 PL PL30094090A patent/PL166417B1/pl unknown
- 1990-11-16 PL PL30093990A patent/PL166433B1/pl unknown
- 1990-11-16 PL PL28780690A patent/PL166479B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DK580589D0 (da) | 1989-11-17 |
| PL287806A1 (en) | 1991-12-16 |
| PL166433B1 (pl) | 1995-05-31 |
| PL166479B1 (pl) | 1995-05-31 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0585215B1 (en) | Mutants or variants of bacillus thuringiensis producing high yields of delta endotoxin | |
| US4797279A (en) | Insecticidal hybrid bacteria from b.t. kurstaki and b.t. tenebrionis | |
| EP0602064B1 (en) | Novel microorganism and insecticide | |
| US5208017A (en) | Biologically active Bacillus thuringiensis isolates | |
| JP2571842B2 (ja) | 新規なバチルス・スリンギエンシス菌株、それらの分離方法および関連する組成物 | |
| EP0178151A2 (en) | Preparation of strains of bacillus thuringiensis having an improved activity against certain lepidopterous pests and novel strain produced thereby | |
| EP0202739A1 (en) | Novel micro-organism and its use for controlling pests | |
| US5211946A (en) | Bacillus thuringiensis isolates for controlling acarides | |
| US5279962A (en) | Mutants or variants of Bacillus thuringiensis producing high yields of delta endotoxin | |
| JP3017799B2 (ja) | バシラススリンギエンシス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ Ｔｈｕｒｉｎｇｉｅｎｓｉｓ）の新株、その製造法及び、昆虫の制御ならびに昆虫の攻撃からの植物の保護におけるその利用 | |
| JPH0515364A (ja) | 新規なバシラス菌株及び害虫防除剤 | |
| PL166417B1 (pl) | Sposób selekcji wariantów lub mutantów spon t a nicznych szczepy Baciiius thuringiensis PL PL PL PL PL PL | |
| EP0309145A1 (en) | Bacteriophage-resistant strain of Bacillus Thuringiensis Var. San Diego | |
| HRP920198A2 (en) | Mutants or variants of bacillus thuringiensis producing high yields of delta toxin | |
| CZ562990A3 (cs) | Mutant mikroorganismu Bacillus thuringiensis deponovaný jako subsp. tenebrionis DSM 5480, způsob jeho přípravy a pesticidní prostředek, který ho obsahuje | |
| Jayaraman et al. | Active against Lepidopteran Agricultural Pests, by the Use of Continuous Culture Studies | |
| IL86242A (en) | Transconjugant bacillus thuringiensis strains, insecticidal compositions containing them and method for their use |