PL180871B1 - Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego - Google Patents

Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego

Info

Publication number
PL180871B1
PL180871B1 PL95319298A PL31929895A PL180871B1 PL 180871 B1 PL180871 B1 PL 180871B1 PL 95319298 A PL95319298 A PL 95319298A PL 31929895 A PL31929895 A PL 31929895A PL 180871 B1 PL180871 B1 PL 180871B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
nitrilase
methylthio
ferm
hydrolysis
cells
Prior art date
Application number
PL95319298A
Other languages
English (en)
Other versions
PL319298A1 (en
Inventor
Olivier Favre-Bulle
Marie-Claude Bontoux
Denis Largeau
André Ariagno
Original Assignee
Rhone Poulenc Nutrition Animal
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from FR9411301A external-priority patent/FR2724931B1/fr
Priority claimed from FR9502615A external-priority patent/FR2731438B1/fr
Application filed by Rhone Poulenc Nutrition Animal filed Critical Rhone Poulenc Nutrition Animal
Publication of PL319298A1 publication Critical patent/PL319298A1/xx
Publication of PL180871B1 publication Critical patent/PL180871B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/40Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P11/00Preparation of sulfur-containing organic compounds

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

1. Sposób wytwarzania racemicznego kwasu 4-metylotio-2-hydroksymaslowego, zna- mienny tym, ze 4-metylotio-2-hydroksy-butyronitryl poddaje sie hydrolizie za pomoca ni- trylazy wybranej sposród komórek Alcaligenes faecalis ATCC-8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857, lub Gordona terrae FERM- BP-4535. PL PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksymasłowego poprzez hydrolizę 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu za pomocą nitrylazy jako katalizatora hydrolizy grupy nitrylowej do grupy karboksylowej. W szczególności dotyczy on zastosowania nitrylazy wybranej spośród nitrylaz mikroorganizmów Alcaligenes faecalis złożonych pod numerem ATCC 8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 złożonych pod numerem FERM BP-3857 lub Gordona terrae MA-1 złożonych pod numerem FERM BP-4535.
Nitrylazę Alcaligenes faecalis opisano np. w opisach patentowych europejskich i japońskich opublikowanych pod numerami EP 348 901 i JP 03 224 496, obydwu udzielonych firmie ASAHI. W tych opisach, a zwłaszcza w europejskim, nitrylaza jest użyta do wytwarzania racemicznych kwasów optycznie czynnych wychodząc z nitryli. Korzystne nitryle wyjściowe są podstawione i mają łańcuch alkilowy zawierający korzystnie 1 do 3 atomów węgla lub grupę aromatyczną. Przykład 11 wyżej wspomnianego opisu patentu europejskiego opisuje hydrolizę nitrylu kwasu migdałowego racemicznego przez Alcaligenes faecalis; kwas migdałowy R-(-) otrzymuje się przy nadmiarze enancjomerycznym 91%. Opis patentowy europejski 486 289 i jego odpowiednik amerykański US 5 326 702 firmy NITTO CHEMICAL opisują zastosowanie
180 871
Alcaligenes sp. BC35-2 (FERM nr 11265 lub FERM-BP-3318) do hydrolizy nitrylu kwasu migdałowego w obecności siarczynu; kwas migdałowy otrzymuje się w tym przypadku przy nadmiarze enancjomerycznym około 98%.
Opis patentowy JP 04 341 185 firmy ASAHI opisuje ponadto wytwarzanie i zastosowanie nitrylazy Acaligenes facalis ATCC 8750 do rozwiązania problemów związanych z wytwarzaniem związków optycznie czystych wychodząc z ich racemicznego nitrylu racemicznego. Nitrylaza enancjoselektywna opisana w opisie patentowym japońskim cytowanym powyżej jest zdolna najbardziej korzystnie do hydrolizowania 2-hydroksynitrylu o następującym wzorze ogólnym (I) w kwas 2-hydroksykarboksylowy o następującym wzorze (II)
OH
R-Ć-CN (I) i
H
OH
I
R-C—COOK (||)
H w których R oznacza aryl ewentualnie podstawiony lub grupę heterocykliczną ewentualnie podstawioną. W tym opisie patentowym wskazuje się, że hydroliza nitrylu kwasu migdałowego przez wspomnianą nitrylazę pozwala otrzymać 100% nadmiaru enancjomerycznego kwasu R-(-) migdałowego. W przykładzie 5 wskazano, że wspomniana nitrylaza może być wykorzystana do hydrolizy nitryli alifatycznych takich jak waleronitryl, akrylonitryl, 2-chlorowcopropionitryle i chloroacetonitrile. Nie podano szczegółów odnośnie enancjoselektywności tej hydrolizy nitryli alifatycznych o centrum asymetrii.Ten tekst podaje także, że nitrylaza Alcaligenes faecalis ma optimum aktywności przy pH zawartym między 6.5 i 8.0, a temperatura stosowania wspomnianego enzymu powinna zawsze, według tego odsyłacza, być poniżej 45°C.
Zaskakująco okazało, że gdy wspomniany enzym Alcaligenes faecalis ATCC 8750, został użyty do hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu, przeprowadził tę hydrolizę bez żadnej selektywności z punktu widzenia czystości optycznej. Enzym ten hydrolizuje wspomniany nitryl tworząc mieszaninę racemiczną dwóch kwasów bez żadnej przewagi jednego lub drugiego z izomerów.
Nitrylaza Rhodococcus sp. HT 29-7 złożona pod numerem FERM BP-3857 jest opisana np. w opisach patentowych europejskim i amerykańskim opublikowanych pod numerami, odpowiednio, EP 610 049 i US 5 296 373, w obydwu przypadkach udzielonych firmie NITTO. W tych opisach patentowych, a zwłaszcza w opisie amerykańskim nitrylaza jest użyta do wytworzenia z nitryli racemicznych nośnika grupy fenylowej kwasów optycznie czynnych. Nitryle wyjściowe wszystkie mają ugrupowanie aromatyczne, dotyczy to zasadniczo hydrolizy nitrylu kwasu migdałowego lub jego pochodnych podstawionych w pierścieniu aromatycznym. Przykład 1 opisu patentowego amerykańskiego wspomnianego wyżej opisuje hydrolizę nitrylu kwasu migdałowego racemicznego przez Rhodococcus sp. HT 29-7; kwas migdałowy R-(-) otrzymuje się przy nadmiarze enancjomerycznym 100%. Przykład 2 opisuje hydrolizę podstawionych w pierścieniu pochodnych nitrylu kwasu migdałowego, nadmiar enancjomeryczny pochodnej kwasu migdałowego także wynosi 100%; tak samo jest, gdy przeprowadza się hydrolizę nitryli aldehydu benzoesowego.
Patent europejski 610 049 firmy NITTO CHEMICAL opisuje użycie Rhodococcus sp.. HT 29-7 (FERM BP-3857), Alcaligenes sp. BC35-2 (FERM BP-3318) lub Brevibacterium acetylicum IAM 1790 do hydrolizy α-hydroksynitryli podstawionych w pozycji γ pierścieniem aromatycznym do optycznie czynnego kwasu α-hydroksykarboksylowego podstawionego
180 871 grupą fenylową. Kwasy otrzymane przy użyciu Rhodococcus sp. HT 29-7 wykazują wciąż zmienne nadmiary enancjomeryczne stosownie do wyjściowego nitrylu i obecności lub nieobecności kwasu fosforowego (pH ustalone około 8,2).
Nieoczekiwanie okazało się, że gdy wspomniany enzym Rhodococcus sp. HT 29-7 (FERM BP-331 8), użyty jest do hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu, przeprowadza tę hydrolizę bez żadnej selektywności z punktu widzenia enancjomerycznego. Enzym ten hydrolizuje wspomniany nitryl tworząc mieszaninę racemiczną dwóch kwasów bez żadnej przewagi jednego lub drugiego z izomerów.
Nitrylaza Gordona terrae MA-1 złożona pod numerem FERM BP-4535 jest opisana w opisie patentowym europejskim 0 610 048 w zastosowaniu do hydrolizy nitryli - nośników grupy fenylowej w pozycji y i grupy hydroksylowej w pozycji a do odpowiedniego kwasu optycznie czynnego. Nadmiar enancjomeryczny we wszystkich przykładach zmienia się między 92 i 100%.
Nieoczekiwanie okazało się, że gdy wspomniany enzym Gordona terrae MA-1 złożony pod numerem FERM BP-4535, użyty jest do hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu, przeprowadza tę hydrolizę bez żadnej selektywności z punktu widzenia enancj omerycznego. Enzym ten hydrolizuje wspomniany nitryl tworząc mieszaninę racemicznądwóch kwasów bez żadnej przewagi jednego lub drugiego z izomerów.
Niniejszy wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania racemicznego kwasu 4-metylotio-2-hydroksymasłowego przez hydrolizę racemicznego 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu za pomocą nitrylazy z następujących mikroorganizmów: Alcaligenes faecalis złożony pod numerem ATCC 8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 złożony pod numerem FERM BP-3857 lub Gordona terrae MA-1 złożony pod numerem FERM BP-4535.
Zgodnie ze sposobem według wynalazku, mikroorganizm może być użyty takim jaki jest lub jako immobilizowany na podłożach dobrze znanych specjaliście z dziedziny techniki. Skądinąd informacja genetyczna kodująca enzym może być przeniesiona z mikroorganizmu macierzystego (takiego jak A. faecalis ATCC8750) do mikroorganizmu takiego jak Bacillus subtilis.
Odmiana sposobu wynalazku polega na użyciu w odpowiedniej ilości, w miejsce mikroorganizmu, jego enzymu wolnego lub immobilizowanego, całkowicie lub częściowo oczyszczonego. Zastosowanie 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrilu umożliwia wytworzenie hydroksyanalogu racemicznej metioniny. Ta technologia wytwarzania pochodnych metioniny pozwala na uniknięcie tworzenia w znacznych ilościach mineralnych produktów wtórnych, których odpady stwazają coraz więcej problemów z powodu ograniczeń dotyczących ochrony środowiska. Enzymy te w ramach niniejszego wynalazku wykazują aktywność nitrylazy w obszarze pH między 4 i 11 i optimum aktywności przy pH między 5 i 9. Ich optymalna temperatura stosowania jest zawarta między 30 i 60°C, zwłaszcza między 30 i 50°C. Korzystnie pracuje się przy stężeniu nitrylu w roztworze wyjściowym zawartym między 10 mmoli i 400 mmoli na litr, a zwłaszcza między 50 i 200 mmoli na litr. Stężenie soli amonowej otrzymanego kwasu ma mały wpływ na aktywność enzymu, gdy jest mniejsze od 2 moli na litr ijest ono korzystnie zawarte między 0,1 i 1,5 moli na litr. Wynalazek będzie pełniej opisany za pomocą następujących przykładów, które nie powinny być uważane jako ograniczenie wynalazku.
Przykład 1
Mikroorganizm Alcaligenes faecalis ATCC 8750 hodowano w następującym ośrodku:
Octan amonu 10 g/l
Ekstrakt drożdży 5 g/l
Pepton 5 g/l
K2HPO4 5 g/l
MgSO4 -7H2O 0,:2 g/l
FeSO4 YH2O 30 mg/l
NaCl 1 g/l
Benzonitryl 0,5 g/l pH 7,:2
180 871
Hodowlę prowadzono w 30°C w kolbach Erlenmeyera (2 litry) zawierających 600 ml ośrodka. Całość mieszano (150 obr/min) przez 30 h. Osad komórkowy odzyskano, przemyto roztworem NaCl 9 g/l, a następnie wymrożono.
Warunki wykonania hydrolizy butyronitrylu:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 50 mM
Komórki 5 mg/ml
Bufor fosforanowy 200 mM
Temperatura 30°C
Czas trwania 4 h
Badanie kinetyki hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrilu pokazuje wytwarzanie liniowe 2,8 pmoli hydroksyanalogu metioniny na 1 h i na 1 mg suszonych komórek. Nadmiar enancjomeryczny utworzonego kwasu zmierzono za pomocą chromatografii cieczowej, wynosi on 0% dla wydajności kwasu 80%.
Przykład 2
Oceniono trwałość enzymu badając kinetykę produkcji hydroksyanalogu metioniny przez 180 h przy użyciu wolnych komórek.
Warunki wykonania były następujące:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 100 mM
Komórki 10 rng/rm.
Bufor fosforanowy 300 mM 5 ml
Temperatura 25 °C
Nitryl dodano sekwencyjnie (100 mmoli) po zużyciu nitrylu. Tworzenie odpowiedniego kwasu podano w tabeli.
Czas Utworzony kwas (mmole/litr) Aktywność (gmole/h mg susz. komórek)
0 0 0
2 h 39 1,7
17 h 230 1,3
24 h 312 1,7
47 h 466 1,2
70 h 556 0,4
172 h 860 0,6
180 h 940 0,6
Aktywność początkowa wynosi 2 pmole/h.mg komórek suszonych. Przykład ten dowodzi trwałości enzymu pomimo obecności silnych stężeń kwasu (0,9 mol hydroksyanalogu metioniny).
Przykład 3
Trwałość enzymu w funkcji ilości substratu i ilości utworzonego kwasu także zmierzono w następujących warunkach.
Trwałość enzymu w funkcji ilości substratu:
Nitryl por. tabela wyników
Komórki 10 mg/ml
Bufor fosforanowy 300 mM, pH 7,0 5 ml
Temperatura 25 °C
Czas trwania 1 h
180 871
Stężenie nitrylu (mM) Aktywność (gmoli/h. mg komórek susz.)
50 2
100 2
150 2
200 2
500 0
Trwałość enzymu w funkcji ilości utworzonego kwasu
Warunki wykonania:
Nitryl 50 mM
Komórki 2,5 mg/ml
Bufor fosforanowy 100 mM pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
Czas trwania 2 h
Stężenie kwasu (mM) Aktywność (gmoli/h. mg komórek susz.)
0 3,2
100 4,5
200 3,8
300 4,1
400 4
500 4
600 3,4
700 2,8
Przykład 4
Oczyszczanie nitrylazy
Komórki Alcaligenes faecalis hodowano 24 h w 30°C w ośrodku opisanym w przykładzie 1.
Po odwirowaniu hodowli osad wprowadzono do buforu pH 7,5 (25 mM trisHCl, 10% (wag./obj.) gliceryny). Na zawiesinę komórkową podziałano ultradźwiękami, a następnie odwirowano, by otrzymać ekstrakt nieoczyszczony. Na ekstrakt nieoczyszczony podziałano siarczanem amonu aż do 30% nasycenia. Otrzymany osad ponownie przeprowadzono w stan zawiesiny w buforze pH 7,5, a następnie dializowano przy użyciu 2 litrów tego samego buforu przez noc.
Otrzymany roztwór wprowadzono na kolumnę anionowymienną. Q Sepharose Fast Flow HR 26/10® wstępnie zrównoważoną buforem pH 7,5. Frakcję aktywną wymyto przy użyciu gradientu 0 do 1 M NaCl.
Frakcje aktywne wprowadzono na kolumnę anionowymierniąMono Q HR 5/5® wstępnie zrównoważoną buforem pH 7,5. Nitrylazę wymyto za pomocą gradientu 0 do 1M NaCl. Na koniec, frakcje aktywne połączono, następnie dodano do nich 1M siarczanu amonu. Roztwór ten wprowadzono na kolumnę z oddziaływaniami hydrofobowymi „Phenyl sepharose” HR 5/5® wstępnie zrównoważoną buforem pH 7,5 z dodatkiem 1 M (NH4LSO4. Frakcję aktywną wymyto przy użyciu gradientu 1 do 0 M siarczanu amonu.
Ciężar cząsteczkowy proteiny oznaczono przez filtrację żelową. Wynosi on około 260 kDa. Na żelu SDS-PAGE, zaobserwowano pojedyncze pasmo o 43 kDa (czystość 95%). Kinetyka hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrilu do hydroksyanalogu metioniny przy użyciu nitrylazy A. faecalis jest liniowa.
180 871
Czas (h) Aktywność (pmol/h. mg prot.) RR (%)
0 0 1
0,5 150 3
1 171 5
21,5 150 68
24,8 150 77
29 150 87
Przykład 5. Wpływ pH Warunki wykonania:
Nitryl
Proteina
Bufor octanowy 100 mM, Bufor fosforanowy 100 mM, Bufor TRIS-HCl 100 mM, Bufor boranowy 100 mM, Temperatura
Czas trwania mM 50 pg/ml pH 4 do 5 pH 6 do 7, 1 ml pH 8 do 9 pH 10 do 11
30°C 1 do 2 h
pH Aktywność (pmol/h. mg proteiny)
4 0
5 42
6 232
7 272
8 405
9 412
10 158
11 0
Przykład 6. Wpływ temperatury
Warunki wykonania:
Nitryl 50 mM
Proteina 50 pg/ml
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0
Temperatury zmienne 4°C do 60°C
Czas trwania 1 h
Optymalną temperaturą działania enzymu jest 50°C.
Temperatura (°C) Aktywność (pmol/h.mg proteiny)
4 45
10 67
20 140
30 272
40 419
50 570
60 333
180 871
Przykład porównawczy z nitrylem kwasu migdałowego. Warunki wykonania:
Nitryl kwasu migdałowego 7 mM
Proteina 5 pg/ml
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
Czas (min) Aktywność (pmol/h.mg prot.) ee
15 1000 1
60 1030 1
Oczyszczona nitrylaza jest zatem enancjoselektywna w przypadku nitrylu kwasu migdałowego lecz nie w przypadku 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu.
Przykład 7. Hydroliza 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu przez Rhodococcus HT 29-7 FERM BP-3857
Mikroorganizm Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857 hodowano w następującym ośrodku:
Gliceryna
Ekstrakt drożdży (DIFCO) KH2PO4
Na2HPO4 · 12H2O Na2SO4 MgCl2 CaCl2
MnSO4 •HjO FeSO4 -7H2O ZnSO4 •7H2O Benzonitryl •6H2O •2H2O g// g// g//
4,4 g/l 2,8 g/l 0,85 g/l 0,05 g/l 0,033 g/l 0,013 g/l 0,005 g/l 0,5 g/l
100 mM 15 ml pH 7,5
Hodowlę prowadzono w 30°C w kolbach Erlenmeyera (2 litry) zawierających 600 ml ośrodka. Całość mieszano (150 obr/min) przez 140 h. Osad komórkowy odzyskano, przemyto roztworem NaCl (9 g/l), a następnie wymrożono.
Wpływ pH na hydrolizę.
Warunki wykonania:
4-metylotio-0-hydroksybutyromtryl
Gęstość optyczna przy 660 nm pH 4 do 5 pH 6,0 do 7,0 pH 8,0 do 9,0 pH 10,0 do 11,0
Bufor octanowy 100 mM, Bufor fosforanowy 100 mM, Bufor TRIS-HCl 100 mM, Bufor boranowy 100 mM, Temperatura
Czas trwania
30°C
10h
pH Wydajność kwasu
1 2
4 0%
5 100%
6 100%
7 100%
180 871 ciąg dalszy tabeli
1 2
8 100%
9 100%
10 20%
11 0%
Przykład 8. Wpływ stężenia substratu
Trwałość enzymu w funkcji ilości substratu także zmierzono w następujących warunkach:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl por. tabela wyników
Gęstość optyczna przy 660 nm 20
Bufor fosforanowy 30θ mM pH, 7,0 5 ml
Temperatura 30°C
Czas trwania 2 h
Stężenie nitrylu (mM) Wydajność kwasu
50 90%
100 44%
200 22%
300 10%
400 0%
500 0%
Przykład 9. Trwałość enzymu w funkcji ilości utworzonego kwasu
Warunki wykonania:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 100 nMI
Gęstość optyczna przy 660 nm 15
Bufor fosforanowy l00 mM pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
Czas trwania 6 h
Stężenie kwasu (mM) Wydajność kwasu
0 100%
200 100%
400 100%
600 100%
800 100%
1000 100%
Przykład 10
Nadmiar enancjomeryczny
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl Gęstość optyczna przy 660 nm Bufor fosforanowy 100 mM Temperatura
140 mM -4 pH 7,0 1 ml
20°C
180 871
Czas inkubacji Wydajność kwasu Czystość optyczna
2 h 15% 0
6 h 50% 0
24 h 100% 0
Badanie kinetyki hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu wykazuje liniowe wytwarzanie hydroksyanalogu metioniny na h i na mg komórek suszonych. Nadmiar enancjomeryczny utworzonego kwasu zmierzono za pomocą chromatografii cieczowej; wynosi on 0% przy wydajności kwasu zmieniającej się od 15% do 100%.
Przykład 11. Wpływ temperatury
Warunki wykonania:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 100 mM
Gęstość optyczna przy 660 nm 15
Bufor fosforanowy 100 mM pH 7,0 1 ml
Temperatura patrz tabela
Czas trwania 6 h
T(°C) Wydajność kwasu
10 70%
20 100%
30 100%
40 100%
50 31%
60 15%
Przykład 12. Hydroliza 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu
Warunki wykonania:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 23 mM
Gęstość optyczna przy 660 nm 15
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
Czas (h) Wydajność kwasu Nadmiar enancjomeryczny
0,5 40% b.d.
1 51% 0,12
2 62% b.d.
5 78% 0,15
Przykład 13
Warunki hodowli użyte w przypadku Gordona terrae MA-1 (FERM BP-4535) były następujące:
Gliceryna 10 g/l
Ekstrakt drożdży 0,4 g/l
K2HPO4 6,8 g/l
Na^PO4 · 12H2O 7,1 g/l
Na2SO4 2,8 g/l
180 871
MgCl2 -6H2O
CaCl2 -2HO
MnSO4 · H2O
FeCl3
ZnSO4
Benzonitryl pH
0,4 g/l mg/l mg/ml
0,6 mg/l
0,3 mg/l
0,5 g/l
7,2
Aktywność enzymu
Hodowane komórki przemyto, a następnie użyto w obecności hydroksymetylotiobutyronitrylu dla dozowania aktywności.
Warunki wykonania:
[nitryl] = 23 mM [komórki] = 6,8 g/l Bufor fosforanowy pH 7,0; 35°C
Figura 3: Hydroliza cyjanohydryny AMTP przez Gordona terrae MA-1
Kinetyka hydrolizy hydroksymetylotiobutyronitrylu jest liniowa. Początkową szybkość oceniono jako 13 mmol/h.g CS
Przykład 14. Wpływ stężenia cyjanohydryny AMTP na aktywność nitrylazy. Określono wpływ stężenia początkowego hydroksymetylotiobutyronitrylu na aktywność nitrylazy; wyniki podano w poniższej tabeli.
Warunki wykonania:
[komórki] = 5,1 g/l
Bufor fosforanowy 100 mM pH 7,0 35°C
Kinetykę zbadano po 0,5, 1, 2 i 3 h.
Stężenie nitrylu (mM) Aktywność (mmol/h. g CS)
50 14
100 13
200 15
300 0
400 0
Aż do 200 mM, aktywność mało się zmieniała ze stężeniem substratu.
180 871
Przykład 15. Wpływ stężenia hydroksyanalogu metioniny na aktywność nitrylazy W próbie tej zbadano wpływ stężenia hydroksy-4-metylotio-2-butanokarboksylanu amonu na aktywność nitrylazy.
Warunki wykonania:
[komórki] = 5 g/l [nitryl] = 100 mM
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0 35°C
Stężenie karboksylanu amonu zmieniało się między 0 i 1,5 M.
Stężenie kwasu Aktywność
(mol/l) (pmol/h.mg CS)
0 9,4
0,5 14
1 19
1,5 15
Stężenie hydroksy-4-metylotio-2-butanokarboksylanu amonu nie zmienia wcale aktywności początkowej szczepu Gordona terrae HT29-7.
Przykład 16. Wpływ pH i temperatury Warunki wykonania:
[nitryl] = 100 mM [komórki] = 7,5 g/l
Bufor octanowy 100 mM, pH 4 do 5
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 6 5o 7 Bufor Tris-HCT 100 mM, pH 8do 9
Bufor boranowy 100 mM, pH 10 do 11; 3
30°C; badanie kinetyki po 1, 2, 4 i 6 h.
pH Aktywność (mmol/h. g CS)
4 0,6
5 2,5
6 7,8
7 9,6
8 15,3
9 18
10 5,7
11 11
Optymalne pH w naszych warunkach wykonania odpowiada w przybliżeniu 8-9. Wpływ temperatury na aktywność nitrylazy Gordona terrae MA-1.
Warunki wykonania:
[nitryl] = 100 mM [komórki] = 7,5 g/l
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0
Badanie kinetyki po 1 h.
180 871
T(°C) Aktywność (mmol/h. g CS)
10 0,6
20 2,3
30 3,2
40 3,4
50 3,5
60 1,9
Temperatura optymalna wynosi około 40-50°C.
180 871
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 70 egz. Cena 4,00 zł.

Claims (12)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób wytwarzania racemicznego kwasu 4-metylotio-2-hydroksymasłowego, znamienny tym, że 4-metylotio-2-hydroksy-butyronitryl poddaje się hydrolizie za pomocą nitrylazy wybranej spośród komórek Alcaligenes faecalis ATCC-8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857, lub Gordona terrae FERM- BP-4535.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pH ośrodka jest zawarte między 4 i 11, korzystnie między 5 i 9.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że temperatura hydrolizy jest zawarta między 40°C i 60°C, korzystnie między 30°C i 50°C.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stężenie 2-hydroksy-4-metylotiobutyronitrylu w roztworze wyjściowym jest zawarte między 10 i 400 mmoli, korzystnie między 50 i 200 mmoli na litr.
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stężenie kwasu 2-hydroksy-4-metylotiomasłowego w roztworze jest zawarte między 10 i 2000 mmoli na litr, korzystnie między 100 i 1500 mmoli na litr.
  6. 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się nitrylazę pochodzącą z komórek Alcaligenes faecalis ATCC-8750.
  7. 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się nitrylazę pochodzącą z komórek Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857.
  8. 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się nitrylazę pochodzącą z komórek Gordona terrae FERM BP-4535.
  9. 9. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że stosuje pH ośrodka zawarte między 7 i 11, korzystnie między 7 i 9.
  10. 10. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że stosuje pH ośrodka zawarte między 5 i 9.
  11. 11. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że temperatura hydrolizy jest zawarta między 40°C i 60°C.
  12. 12. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że temperatura hydrolizy jest zawarta między 30°C i 50°C.
PL95319298A 1994-09-22 1995-09-19 Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego PL180871B1 (pl)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9411301A FR2724931B1 (fr) 1994-09-22 1994-09-22 Hydrolyse enzymatique des 4-methylthiobutyronitrile
FR9502615A FR2731438B1 (fr) 1995-03-07 1995-03-07 Hydrolise enzymatique des 4-methylthiobutyronitriles
PCT/FR1995/001196 WO1996009403A1 (fr) 1994-09-22 1995-09-19 Hydrolyse enzymatique des 4-methylthiobutyronitrile

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL319298A1 PL319298A1 (en) 1997-08-04
PL180871B1 true PL180871B1 (pl) 2001-04-30

Family

ID=26231416

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL95319298A PL180871B1 (pl) 1994-09-22 1995-09-19 Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego

Country Status (21)

Country Link
US (1) US5814497A (pl)
EP (1) EP0782629B1 (pl)
JP (1) JPH10507631A (pl)
KR (1) KR100398595B1 (pl)
CN (1) CN1077599C (pl)
AT (1) ATE174059T1 (pl)
AU (1) AU699625B2 (pl)
BR (1) BR9509176A (pl)
CA (1) CA2200100A1 (pl)
CZ (1) CZ84497A3 (pl)
DE (1) DE69506430T2 (pl)
DK (1) DK0782629T3 (pl)
ES (1) ES2126313T3 (pl)
FI (1) FI971198A0 (pl)
HU (1) HU220860B1 (pl)
NZ (1) NZ292559A (pl)
PL (1) PL180871B1 (pl)
RU (1) RU2144959C1 (pl)
SK (1) SK281956B6 (pl)
UA (1) UA48953C2 (pl)
WO (1) WO1996009403A1 (pl)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE69737696T2 (de) * 1996-02-29 2008-01-10 Nippon Soda Co. Ltd. Prozess für die herstellung von alpha-hydroxysäuren mit hilfe eines mikroorganismus und eines neuen mikroorganismus.
FR2755143B1 (fr) * 1996-10-25 1998-11-27 Rhone Poulenc Nutrition Animal Procede de preparation de l'acide 2-hydroxy-4-methylthio-butyrique par utilisation d'une nitrilase
JPH10179183A (ja) * 1996-12-20 1998-07-07 Daicel Chem Ind Ltd カルボン酸の製造方法
US5866379A (en) * 1997-01-28 1999-02-02 Novus International Enzymatic conversion of α-hydroxynitriles to the corresponding .alpha.
US6037155A (en) * 1997-02-27 2000-03-14 Nippon Soda Co., Ltd. Process for preparing α-hydroxy acids using microorganism and novel microorganism
FR2787121B1 (fr) * 1998-12-11 2003-09-12 Aventis Cropscience Sa Nouvelle methode d'isolement et de selection de genes codant pour des enzymes, et milieu de culture approprie
WO2002052027A1 (en) * 2000-12-22 2002-07-04 Nippon Soda Co., Ltd. Process for producing substance by using microbial catalyst
RU2177034C1 (ru) * 2001-04-03 2001-12-20 Закрытое акционерное общество "Биоамид" Штамм бактерий alcaligenes denitrificans-продуцент нитрилазы
AU2004215238B2 (en) * 2003-02-27 2009-08-27 Basf Aktiengesellschaft Modified nitrilases and their use in methods for the production of carboxylic acids
DE10316110A1 (de) 2003-04-09 2004-10-28 Degussa Ag Verfahren zur Herstellung von 2-Hydroxy-4-methylthio-buttersäure Ammoniumsalz
CN102911975A (zh) * 2012-09-12 2013-02-06 浙江工业大学 重组腈水解酶制备2-氨基-4-甲硫基丁酸的方法
CN115806902B (zh) * 2022-09-01 2025-06-27 中国医学科学院医药生物技术研究所 解纤维戈登氏菌及其应用

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2623345B2 (ja) * 1988-06-27 1997-06-25 旭化成工業株式会社 光学活性なα―置換有機酸の製造方法
JP3009421B2 (ja) * 1990-02-28 2000-02-14 秀明 山田 有機酸の生物学的製造法
JPH0440899A (ja) * 1990-06-08 1992-02-12 Nitto Chem Ind Co Ltd α―ヒドロキシ―4―メチルチオブチルアミドの生物学的製造法
JPH0440898A (ja) * 1990-06-08 1992-02-12 Nitto Chem Ind Co Ltd α―ヒドロキシ―4―メチルチオ酪酸の生物学的製造法
CA2103932A1 (en) * 1992-11-05 1994-05-06 Ramesh N. Patel Stereoselective reduction of ketones
JP3218133B2 (ja) * 1993-02-03 2001-10-15 三菱レイヨン株式会社 フェニル基を有する光学活性α−ヒドロキシカルボン酸の製造法
JP2720140B2 (ja) * 1993-02-03 1998-02-25 日東化学工業株式会社 フェニル基を有する光学活性α−ヒドロキシカルボン酸の製造法

Also Published As

Publication number Publication date
DE69506430T2 (de) 1999-05-20
RU2144959C1 (ru) 2000-01-27
CN1077599C (zh) 2002-01-09
FI971198A7 (fi) 1997-03-21
DK0782629T3 (da) 1999-08-16
US5814497A (en) 1998-09-29
AU699625B2 (en) 1998-12-10
EP0782629A1 (fr) 1997-07-09
FI971198L (fi) 1997-03-21
CN1158640A (zh) 1997-09-03
DE69506430D1 (de) 1999-01-14
AU3476495A (en) 1996-04-09
UA48953C2 (uk) 2002-09-16
SK37697A3 (en) 1997-10-08
BR9509176A (pt) 1997-12-23
NZ292559A (en) 1998-03-25
EP0782629B1 (fr) 1998-12-02
JPH10507631A (ja) 1998-07-28
HU220860B1 (en) 2002-06-29
ATE174059T1 (de) 1998-12-15
PL319298A1 (en) 1997-08-04
CA2200100A1 (fr) 1996-03-28
FI971198A0 (fi) 1997-03-21
WO1996009403A1 (fr) 1996-03-28
KR100398595B1 (ko) 2004-03-20
CZ84497A3 (en) 1997-06-11
KR970706401A (ko) 1997-11-03
ES2126313T3 (es) 1999-03-16
HUT77079A (hu) 1998-03-02
SK281956B6 (sk) 2001-09-11

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0188316B1 (en) Process for the preparation of amides using microorganisms
US5283182A (en) Preparation of immobilized hydantoinase stabilized with divalent metal ions
PL180871B1 (pl) Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego
US5179014A (en) Process for the preparation of amides using microorganisms
CA2432190A1 (en) Improved process for converting nitriles to carboxylic acids using nitrilase
CA1217158A (en) Enzymatic synthesis of l-serine
JP3409353B2 (ja) アミド化合物の製造方法および使用される微生物
AU2003225548A1 (en) Method for producing 2-hydroxyisobutyric acid and methacrylic acid from acetone cyanohydrin
CA1173768A (en) Adenylate kinase and process for the production thereof
CA1298800C (en) Immobilized enzyme preparation and its use
JP4941990B2 (ja) Nε−アシル−L−リジン特異的アミノアシラーゼ
US6455730B1 (en) Preparation of dicarboxylic acid monoesters from cyanocarboxylic acid esters
US7198926B2 (en) Preparation of (E)- and (Z)-2-methyl-2-butenoic acids
JPS633599B2 (pl)
MXPA97002153A (en) Enzymatic hydrolysis of 4-methyltiobutironitri
JPH04341185A (ja) 新規ニトリラーゼ
JP4884863B2 (ja) ニトリラーゼおよびニトリラーゼを用いるカルボン酸の製造方法
JPH0279996A (ja) 光学活性2―アリールオキシまたは2―アリールチオ飽和鎖状カルボン酸の製法
JPH04144697A (ja) 光学活性カルボン酸、ニトリル、アミドの製造方法
JPH0889267A (ja) S−(+)−マンデルアミドおよびその誘導体の製造法
JP2001314197A (ja) 光学活性なヒドロキシアルキル−α−アミノカルボン酸の製造方法
JPH1180103A (ja) β−カルバモイルイソ酪酸類及びその製造方法
JP2000270856A (ja) 新規なアミノアルコール脱水素酵素、その製造方法および用途

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20050919