PL180871B1 - Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego - Google Patents
Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowegoInfo
- Publication number
- PL180871B1 PL180871B1 PL95319298A PL31929895A PL180871B1 PL 180871 B1 PL180871 B1 PL 180871B1 PL 95319298 A PL95319298 A PL 95319298A PL 31929895 A PL31929895 A PL 31929895A PL 180871 B1 PL180871 B1 PL 180871B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- nitrilase
- methylthio
- ferm
- hydrolysis
- cells
- Prior art date
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
- C12P7/40—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a carboxyl group including Peroxycarboxylic acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P11/00—Preparation of sulfur-containing organic compounds
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
1. Sposób wytwarzania racemicznego kwasu 4-metylotio-2-hydroksymaslowego, zna- mienny tym, ze 4-metylotio-2-hydroksy-butyronitryl poddaje sie hydrolizie za pomoca ni- trylazy wybranej sposród komórek Alcaligenes faecalis ATCC-8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857, lub Gordona terrae FERM- BP-4535. PL PL PL PL PL PL PL
Description
Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksymasłowego poprzez hydrolizę 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu za pomocą nitrylazy jako katalizatora hydrolizy grupy nitrylowej do grupy karboksylowej. W szczególności dotyczy on zastosowania nitrylazy wybranej spośród nitrylaz mikroorganizmów Alcaligenes faecalis złożonych pod numerem ATCC 8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 złożonych pod numerem FERM BP-3857 lub Gordona terrae MA-1 złożonych pod numerem FERM BP-4535.
Nitrylazę Alcaligenes faecalis opisano np. w opisach patentowych europejskich i japońskich opublikowanych pod numerami EP 348 901 i JP 03 224 496, obydwu udzielonych firmie ASAHI. W tych opisach, a zwłaszcza w europejskim, nitrylaza jest użyta do wytwarzania racemicznych kwasów optycznie czynnych wychodząc z nitryli. Korzystne nitryle wyjściowe są podstawione i mają łańcuch alkilowy zawierający korzystnie 1 do 3 atomów węgla lub grupę aromatyczną. Przykład 11 wyżej wspomnianego opisu patentu europejskiego opisuje hydrolizę nitrylu kwasu migdałowego racemicznego przez Alcaligenes faecalis; kwas migdałowy R-(-) otrzymuje się przy nadmiarze enancjomerycznym 91%. Opis patentowy europejski 486 289 i jego odpowiednik amerykański US 5 326 702 firmy NITTO CHEMICAL opisują zastosowanie
180 871
Alcaligenes sp. BC35-2 (FERM nr 11265 lub FERM-BP-3318) do hydrolizy nitrylu kwasu migdałowego w obecności siarczynu; kwas migdałowy otrzymuje się w tym przypadku przy nadmiarze enancjomerycznym około 98%.
Opis patentowy JP 04 341 185 firmy ASAHI opisuje ponadto wytwarzanie i zastosowanie nitrylazy Acaligenes facalis ATCC 8750 do rozwiązania problemów związanych z wytwarzaniem związków optycznie czystych wychodząc z ich racemicznego nitrylu racemicznego. Nitrylaza enancjoselektywna opisana w opisie patentowym japońskim cytowanym powyżej jest zdolna najbardziej korzystnie do hydrolizowania 2-hydroksynitrylu o następującym wzorze ogólnym (I) w kwas 2-hydroksykarboksylowy o następującym wzorze (II)
OH
R-Ć-CN (I) i
H
OH
I
R-C—COOK (||)
H w których R oznacza aryl ewentualnie podstawiony lub grupę heterocykliczną ewentualnie podstawioną. W tym opisie patentowym wskazuje się, że hydroliza nitrylu kwasu migdałowego przez wspomnianą nitrylazę pozwala otrzymać 100% nadmiaru enancjomerycznego kwasu R-(-) migdałowego. W przykładzie 5 wskazano, że wspomniana nitrylaza może być wykorzystana do hydrolizy nitryli alifatycznych takich jak waleronitryl, akrylonitryl, 2-chlorowcopropionitryle i chloroacetonitrile. Nie podano szczegółów odnośnie enancjoselektywności tej hydrolizy nitryli alifatycznych o centrum asymetrii.Ten tekst podaje także, że nitrylaza Alcaligenes faecalis ma optimum aktywności przy pH zawartym między 6.5 i 8.0, a temperatura stosowania wspomnianego enzymu powinna zawsze, według tego odsyłacza, być poniżej 45°C.
Zaskakująco okazało, że gdy wspomniany enzym Alcaligenes faecalis ATCC 8750, został użyty do hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu, przeprowadził tę hydrolizę bez żadnej selektywności z punktu widzenia czystości optycznej. Enzym ten hydrolizuje wspomniany nitryl tworząc mieszaninę racemiczną dwóch kwasów bez żadnej przewagi jednego lub drugiego z izomerów.
Nitrylaza Rhodococcus sp. HT 29-7 złożona pod numerem FERM BP-3857 jest opisana np. w opisach patentowych europejskim i amerykańskim opublikowanych pod numerami, odpowiednio, EP 610 049 i US 5 296 373, w obydwu przypadkach udzielonych firmie NITTO. W tych opisach patentowych, a zwłaszcza w opisie amerykańskim nitrylaza jest użyta do wytworzenia z nitryli racemicznych nośnika grupy fenylowej kwasów optycznie czynnych. Nitryle wyjściowe wszystkie mają ugrupowanie aromatyczne, dotyczy to zasadniczo hydrolizy nitrylu kwasu migdałowego lub jego pochodnych podstawionych w pierścieniu aromatycznym. Przykład 1 opisu patentowego amerykańskiego wspomnianego wyżej opisuje hydrolizę nitrylu kwasu migdałowego racemicznego przez Rhodococcus sp. HT 29-7; kwas migdałowy R-(-) otrzymuje się przy nadmiarze enancjomerycznym 100%. Przykład 2 opisuje hydrolizę podstawionych w pierścieniu pochodnych nitrylu kwasu migdałowego, nadmiar enancjomeryczny pochodnej kwasu migdałowego także wynosi 100%; tak samo jest, gdy przeprowadza się hydrolizę nitryli aldehydu benzoesowego.
Patent europejski 610 049 firmy NITTO CHEMICAL opisuje użycie Rhodococcus sp.. HT 29-7 (FERM BP-3857), Alcaligenes sp. BC35-2 (FERM BP-3318) lub Brevibacterium acetylicum IAM 1790 do hydrolizy α-hydroksynitryli podstawionych w pozycji γ pierścieniem aromatycznym do optycznie czynnego kwasu α-hydroksykarboksylowego podstawionego
180 871 grupą fenylową. Kwasy otrzymane przy użyciu Rhodococcus sp. HT 29-7 wykazują wciąż zmienne nadmiary enancjomeryczne stosownie do wyjściowego nitrylu i obecności lub nieobecności kwasu fosforowego (pH ustalone około 8,2).
Nieoczekiwanie okazało się, że gdy wspomniany enzym Rhodococcus sp. HT 29-7 (FERM BP-331 8), użyty jest do hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu, przeprowadza tę hydrolizę bez żadnej selektywności z punktu widzenia enancjomerycznego. Enzym ten hydrolizuje wspomniany nitryl tworząc mieszaninę racemiczną dwóch kwasów bez żadnej przewagi jednego lub drugiego z izomerów.
Nitrylaza Gordona terrae MA-1 złożona pod numerem FERM BP-4535 jest opisana w opisie patentowym europejskim 0 610 048 w zastosowaniu do hydrolizy nitryli - nośników grupy fenylowej w pozycji y i grupy hydroksylowej w pozycji a do odpowiedniego kwasu optycznie czynnego. Nadmiar enancjomeryczny we wszystkich przykładach zmienia się między 92 i 100%.
Nieoczekiwanie okazało się, że gdy wspomniany enzym Gordona terrae MA-1 złożony pod numerem FERM BP-4535, użyty jest do hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu, przeprowadza tę hydrolizę bez żadnej selektywności z punktu widzenia enancj omerycznego. Enzym ten hydrolizuje wspomniany nitryl tworząc mieszaninę racemicznądwóch kwasów bez żadnej przewagi jednego lub drugiego z izomerów.
Niniejszy wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania racemicznego kwasu 4-metylotio-2-hydroksymasłowego przez hydrolizę racemicznego 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu za pomocą nitrylazy z następujących mikroorganizmów: Alcaligenes faecalis złożony pod numerem ATCC 8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 złożony pod numerem FERM BP-3857 lub Gordona terrae MA-1 złożony pod numerem FERM BP-4535.
Zgodnie ze sposobem według wynalazku, mikroorganizm może być użyty takim jaki jest lub jako immobilizowany na podłożach dobrze znanych specjaliście z dziedziny techniki. Skądinąd informacja genetyczna kodująca enzym może być przeniesiona z mikroorganizmu macierzystego (takiego jak A. faecalis ATCC8750) do mikroorganizmu takiego jak Bacillus subtilis.
Odmiana sposobu wynalazku polega na użyciu w odpowiedniej ilości, w miejsce mikroorganizmu, jego enzymu wolnego lub immobilizowanego, całkowicie lub częściowo oczyszczonego. Zastosowanie 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrilu umożliwia wytworzenie hydroksyanalogu racemicznej metioniny. Ta technologia wytwarzania pochodnych metioniny pozwala na uniknięcie tworzenia w znacznych ilościach mineralnych produktów wtórnych, których odpady stwazają coraz więcej problemów z powodu ograniczeń dotyczących ochrony środowiska. Enzymy te w ramach niniejszego wynalazku wykazują aktywność nitrylazy w obszarze pH między 4 i 11 i optimum aktywności przy pH między 5 i 9. Ich optymalna temperatura stosowania jest zawarta między 30 i 60°C, zwłaszcza między 30 i 50°C. Korzystnie pracuje się przy stężeniu nitrylu w roztworze wyjściowym zawartym między 10 mmoli i 400 mmoli na litr, a zwłaszcza między 50 i 200 mmoli na litr. Stężenie soli amonowej otrzymanego kwasu ma mały wpływ na aktywność enzymu, gdy jest mniejsze od 2 moli na litr ijest ono korzystnie zawarte między 0,1 i 1,5 moli na litr. Wynalazek będzie pełniej opisany za pomocą następujących przykładów, które nie powinny być uważane jako ograniczenie wynalazku.
Przykład 1
Mikroorganizm Alcaligenes faecalis ATCC 8750 hodowano w następującym ośrodku:
Octan amonu 10 g/l
Ekstrakt drożdży 5 g/l
Pepton 5 g/l
K2HPO4 5 g/l
MgSO4 -7H2O 0,:2 g/l
FeSO4 YH2O 30 mg/l
NaCl 1 g/l
Benzonitryl 0,5 g/l pH 7,:2
180 871
Hodowlę prowadzono w 30°C w kolbach Erlenmeyera (2 litry) zawierających 600 ml ośrodka. Całość mieszano (150 obr/min) przez 30 h. Osad komórkowy odzyskano, przemyto roztworem NaCl 9 g/l, a następnie wymrożono.
Warunki wykonania hydrolizy butyronitrylu:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 50 mM
Komórki 5 mg/ml
Bufor fosforanowy 200 mM
Temperatura 30°C
Czas trwania 4 h
Badanie kinetyki hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrilu pokazuje wytwarzanie liniowe 2,8 pmoli hydroksyanalogu metioniny na 1 h i na 1 mg suszonych komórek. Nadmiar enancjomeryczny utworzonego kwasu zmierzono za pomocą chromatografii cieczowej, wynosi on 0% dla wydajności kwasu 80%.
Przykład 2
Oceniono trwałość enzymu badając kinetykę produkcji hydroksyanalogu metioniny przez 180 h przy użyciu wolnych komórek.
Warunki wykonania były następujące:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 100 mM
Komórki 10 rng/rm.
Bufor fosforanowy 300 mM 5 ml
Temperatura 25 °C
Nitryl dodano sekwencyjnie (100 mmoli) po zużyciu nitrylu. Tworzenie odpowiedniego kwasu podano w tabeli.
| Czas | Utworzony kwas (mmole/litr) | Aktywność (gmole/h mg susz. komórek) |
| 0 | 0 | 0 |
| 2 h | 39 | 1,7 |
| 17 h | 230 | 1,3 |
| 24 h | 312 | 1,7 |
| 47 h | 466 | 1,2 |
| 70 h | 556 | 0,4 |
| 172 h | 860 | 0,6 |
| 180 h | 940 | 0,6 |
Aktywność początkowa wynosi 2 pmole/h.mg komórek suszonych. Przykład ten dowodzi trwałości enzymu pomimo obecności silnych stężeń kwasu (0,9 mol hydroksyanalogu metioniny).
Przykład 3
Trwałość enzymu w funkcji ilości substratu i ilości utworzonego kwasu także zmierzono w następujących warunkach.
Trwałość enzymu w funkcji ilości substratu:
Nitryl por. tabela wyników
Komórki 10 mg/ml
Bufor fosforanowy 300 mM, pH 7,0 5 ml
Temperatura 25 °C
Czas trwania 1 h
180 871
| Stężenie nitrylu (mM) | Aktywność (gmoli/h. mg komórek susz.) |
| 50 | 2 |
| 100 | 2 |
| 150 | 2 |
| 200 | 2 |
| 500 | 0 |
Trwałość enzymu w funkcji ilości utworzonego kwasu
Warunki wykonania:
Nitryl 50 mM
Komórki 2,5 mg/ml
Bufor fosforanowy 100 mM pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
Czas trwania 2 h
| Stężenie kwasu (mM) | Aktywność (gmoli/h. mg komórek susz.) |
| 0 | 3,2 |
| 100 | 4,5 |
| 200 | 3,8 |
| 300 | 4,1 |
| 400 | 4 |
| 500 | 4 |
| 600 | 3,4 |
| 700 | 2,8 |
Przykład 4
Oczyszczanie nitrylazy
Komórki Alcaligenes faecalis hodowano 24 h w 30°C w ośrodku opisanym w przykładzie 1.
Po odwirowaniu hodowli osad wprowadzono do buforu pH 7,5 (25 mM trisHCl, 10% (wag./obj.) gliceryny). Na zawiesinę komórkową podziałano ultradźwiękami, a następnie odwirowano, by otrzymać ekstrakt nieoczyszczony. Na ekstrakt nieoczyszczony podziałano siarczanem amonu aż do 30% nasycenia. Otrzymany osad ponownie przeprowadzono w stan zawiesiny w buforze pH 7,5, a następnie dializowano przy użyciu 2 litrów tego samego buforu przez noc.
Otrzymany roztwór wprowadzono na kolumnę anionowymienną. Q Sepharose Fast Flow HR 26/10® wstępnie zrównoważoną buforem pH 7,5. Frakcję aktywną wymyto przy użyciu gradientu 0 do 1 M NaCl.
Frakcje aktywne wprowadzono na kolumnę anionowymierniąMono Q HR 5/5® wstępnie zrównoważoną buforem pH 7,5. Nitrylazę wymyto za pomocą gradientu 0 do 1M NaCl. Na koniec, frakcje aktywne połączono, następnie dodano do nich 1M siarczanu amonu. Roztwór ten wprowadzono na kolumnę z oddziaływaniami hydrofobowymi „Phenyl sepharose” HR 5/5® wstępnie zrównoważoną buforem pH 7,5 z dodatkiem 1 M (NH4LSO4. Frakcję aktywną wymyto przy użyciu gradientu 1 do 0 M siarczanu amonu.
Ciężar cząsteczkowy proteiny oznaczono przez filtrację żelową. Wynosi on około 260 kDa. Na żelu SDS-PAGE, zaobserwowano pojedyncze pasmo o 43 kDa (czystość 95%). Kinetyka hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrilu do hydroksyanalogu metioniny przy użyciu nitrylazy A. faecalis jest liniowa.
180 871
| Czas (h) | Aktywność (pmol/h. mg prot.) | RR (%) |
| 0 | 0 | 1 |
| 0,5 | 150 | 3 |
| 1 | 171 | 5 |
| 21,5 | 150 | 68 |
| 24,8 | 150 | 77 |
| 29 | 150 | 87 |
Przykład 5. Wpływ pH Warunki wykonania:
Nitryl
Proteina
Bufor octanowy 100 mM, Bufor fosforanowy 100 mM, Bufor TRIS-HCl 100 mM, Bufor boranowy 100 mM, Temperatura
Czas trwania mM 50 pg/ml pH 4 do 5 pH 6 do 7, 1 ml pH 8 do 9 pH 10 do 11
30°C 1 do 2 h
| pH | Aktywność (pmol/h. mg proteiny) |
| 4 | 0 |
| 5 | 42 |
| 6 | 232 |
| 7 | 272 |
| 8 | 405 |
| 9 | 412 |
| 10 | 158 |
| 11 | 0 |
Przykład 6. Wpływ temperatury
Warunki wykonania:
Nitryl 50 mM
Proteina 50 pg/ml
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0
Temperatury zmienne 4°C do 60°C
Czas trwania 1 h
Optymalną temperaturą działania enzymu jest 50°C.
| Temperatura (°C) | Aktywność (pmol/h.mg proteiny) |
| 4 | 45 |
| 10 | 67 |
| 20 | 140 |
| 30 | 272 |
| 40 | 419 |
| 50 | 570 |
| 60 | 333 |
180 871
Przykład porównawczy z nitrylem kwasu migdałowego. Warunki wykonania:
Nitryl kwasu migdałowego 7 mM
Proteina 5 pg/ml
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
| Czas (min) | Aktywność (pmol/h.mg prot.) | ee |
| 15 | 1000 | 1 |
| 60 | 1030 | 1 |
Oczyszczona nitrylaza jest zatem enancjoselektywna w przypadku nitrylu kwasu migdałowego lecz nie w przypadku 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu.
Przykład 7. Hydroliza 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu przez Rhodococcus HT 29-7 FERM BP-3857
Mikroorganizm Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857 hodowano w następującym ośrodku:
Gliceryna
Ekstrakt drożdży (DIFCO) KH2PO4
Na2HPO4 · 12H2O Na2SO4 MgCl2 CaCl2
MnSO4 •HjO FeSO4 -7H2O ZnSO4 •7H2O Benzonitryl •6H2O •2H2O g// g// g//
4,4 g/l 2,8 g/l 0,85 g/l 0,05 g/l 0,033 g/l 0,013 g/l 0,005 g/l 0,5 g/l
100 mM 15 ml pH 7,5
Hodowlę prowadzono w 30°C w kolbach Erlenmeyera (2 litry) zawierających 600 ml ośrodka. Całość mieszano (150 obr/min) przez 140 h. Osad komórkowy odzyskano, przemyto roztworem NaCl (9 g/l), a następnie wymrożono.
Wpływ pH na hydrolizę.
Warunki wykonania:
4-metylotio-0-hydroksybutyromtryl
Gęstość optyczna przy 660 nm pH 4 do 5 pH 6,0 do 7,0 pH 8,0 do 9,0 pH 10,0 do 11,0
Bufor octanowy 100 mM, Bufor fosforanowy 100 mM, Bufor TRIS-HCl 100 mM, Bufor boranowy 100 mM, Temperatura
Czas trwania
30°C
10h
| pH | Wydajność kwasu |
| 1 | 2 |
| 4 | 0% |
| 5 | 100% |
| 6 | 100% |
| 7 | 100% |
180 871 ciąg dalszy tabeli
| 1 | 2 |
| 8 | 100% |
| 9 | 100% |
| 10 | 20% |
| 11 | 0% |
Przykład 8. Wpływ stężenia substratu
Trwałość enzymu w funkcji ilości substratu także zmierzono w następujących warunkach:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl por. tabela wyników
Gęstość optyczna przy 660 nm 20
Bufor fosforanowy 30θ mM pH, 7,0 5 ml
Temperatura 30°C
Czas trwania 2 h
| Stężenie nitrylu (mM) | Wydajność kwasu |
| 50 | 90% |
| 100 | 44% |
| 200 | 22% |
| 300 | 10% |
| 400 | 0% |
| 500 | 0% |
Przykład 9. Trwałość enzymu w funkcji ilości utworzonego kwasu
Warunki wykonania:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 100 nMI
Gęstość optyczna przy 660 nm 15
Bufor fosforanowy l00 mM pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
Czas trwania 6 h
| Stężenie kwasu (mM) | Wydajność kwasu |
| 0 | 100% |
| 200 | 100% |
| 400 | 100% |
| 600 | 100% |
| 800 | 100% |
| 1000 | 100% |
Przykład 10
Nadmiar enancjomeryczny
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl Gęstość optyczna przy 660 nm Bufor fosforanowy 100 mM Temperatura
140 mM -4 pH 7,0 1 ml
20°C
180 871
| Czas inkubacji | Wydajność kwasu | Czystość optyczna |
| 2 h | 15% | 0 |
| 6 h | 50% | 0 |
| 24 h | 100% | 0 |
Badanie kinetyki hydrolizy 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu wykazuje liniowe wytwarzanie hydroksyanalogu metioniny na h i na mg komórek suszonych. Nadmiar enancjomeryczny utworzonego kwasu zmierzono za pomocą chromatografii cieczowej; wynosi on 0% przy wydajności kwasu zmieniającej się od 15% do 100%.
Przykład 11. Wpływ temperatury
Warunki wykonania:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 100 mM
Gęstość optyczna przy 660 nm 15
Bufor fosforanowy 100 mM pH 7,0 1 ml
Temperatura patrz tabela
Czas trwania 6 h
| T(°C) | Wydajność kwasu |
| 10 | 70% |
| 20 | 100% |
| 30 | 100% |
| 40 | 100% |
| 50 | 31% |
| 60 | 15% |
Przykład 12. Hydroliza 4-metylotio-2-hydroksybutyronitrylu
Warunki wykonania:
4-metylotio-2-hydroksybutyronitryl 23 mM
Gęstość optyczna przy 660 nm 15
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0 1 ml
Temperatura 30°C
| Czas (h) | Wydajność kwasu | Nadmiar enancjomeryczny |
| 0,5 | 40% | b.d. |
| 1 | 51% | 0,12 |
| 2 | 62% | b.d. |
| 5 | 78% | 0,15 |
Przykład 13
Warunki hodowli użyte w przypadku Gordona terrae MA-1 (FERM BP-4535) były następujące:
| Gliceryna | 10 g/l |
| Ekstrakt drożdży | 0,4 g/l |
| K2HPO4 | 6,8 g/l |
| Na^PO4 · 12H2O | 7,1 g/l |
| Na2SO4 | 2,8 g/l |
180 871
MgCl2 -6H2O
CaCl2 -2HO
MnSO4 · H2O
FeCl3
ZnSO4
Benzonitryl pH
0,4 g/l mg/l mg/ml
0,6 mg/l
0,3 mg/l
0,5 g/l
7,2
Aktywność enzymu
Hodowane komórki przemyto, a następnie użyto w obecności hydroksymetylotiobutyronitrylu dla dozowania aktywności.
Warunki wykonania:
[nitryl] = 23 mM [komórki] = 6,8 g/l Bufor fosforanowy pH 7,0; 35°C
Figura 3: Hydroliza cyjanohydryny AMTP przez Gordona terrae MA-1
Kinetyka hydrolizy hydroksymetylotiobutyronitrylu jest liniowa. Początkową szybkość oceniono jako 13 mmol/h.g CS
Przykład 14. Wpływ stężenia cyjanohydryny AMTP na aktywność nitrylazy. Określono wpływ stężenia początkowego hydroksymetylotiobutyronitrylu na aktywność nitrylazy; wyniki podano w poniższej tabeli.
Warunki wykonania:
[komórki] = 5,1 g/l
Bufor fosforanowy 100 mM pH 7,0 35°C
Kinetykę zbadano po 0,5, 1, 2 i 3 h.
| Stężenie nitrylu (mM) | Aktywność (mmol/h. g CS) |
| 50 | 14 |
| 100 | 13 |
| 200 | 15 |
| 300 | 0 |
| 400 | 0 |
Aż do 200 mM, aktywność mało się zmieniała ze stężeniem substratu.
180 871
Przykład 15. Wpływ stężenia hydroksyanalogu metioniny na aktywność nitrylazy W próbie tej zbadano wpływ stężenia hydroksy-4-metylotio-2-butanokarboksylanu amonu na aktywność nitrylazy.
Warunki wykonania:
[komórki] = 5 g/l [nitryl] = 100 mM
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0 35°C
Stężenie karboksylanu amonu zmieniało się między 0 i 1,5 M.
| Stężenie kwasu | Aktywność |
| (mol/l) | (pmol/h.mg CS) |
| 0 | 9,4 |
| 0,5 | 14 |
| 1 | 19 |
| 1,5 | 15 |
Stężenie hydroksy-4-metylotio-2-butanokarboksylanu amonu nie zmienia wcale aktywności początkowej szczepu Gordona terrae HT29-7.
Przykład 16. Wpływ pH i temperatury Warunki wykonania:
[nitryl] = 100 mM [komórki] = 7,5 g/l
Bufor octanowy 100 mM, pH 4 do 5
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 6 5o 7 Bufor Tris-HCT 100 mM, pH 8do 9
Bufor boranowy 100 mM, pH 10 do 11; 3
30°C; badanie kinetyki po 1, 2, 4 i 6 h.
| pH | Aktywność (mmol/h. g CS) |
| 4 | 0,6 |
| 5 | 2,5 |
| 6 | 7,8 |
| 7 | 9,6 |
| 8 | 15,3 |
| 9 | 18 |
| 10 | 5,7 |
| 11 | 11 |
Optymalne pH w naszych warunkach wykonania odpowiada w przybliżeniu 8-9. Wpływ temperatury na aktywność nitrylazy Gordona terrae MA-1.
Warunki wykonania:
[nitryl] = 100 mM [komórki] = 7,5 g/l
Bufor fosforanowy 100 mM, pH 7,0
Badanie kinetyki po 1 h.
180 871
| T(°C) | Aktywność (mmol/h. g CS) |
| 10 | 0,6 |
| 20 | 2,3 |
| 30 | 3,2 |
| 40 | 3,4 |
| 50 | 3,5 |
| 60 | 1,9 |
Temperatura optymalna wynosi około 40-50°C.
180 871
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 70 egz. Cena 4,00 zł.
Claims (12)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób wytwarzania racemicznego kwasu 4-metylotio-2-hydroksymasłowego, znamienny tym, że 4-metylotio-2-hydroksy-butyronitryl poddaje się hydrolizie za pomocą nitrylazy wybranej spośród komórek Alcaligenes faecalis ATCC-8750, Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857, lub Gordona terrae FERM- BP-4535.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że pH ośrodka jest zawarte między 4 i 11, korzystnie między 5 i 9.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że temperatura hydrolizy jest zawarta między 40°C i 60°C, korzystnie między 30°C i 50°C.
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stężenie 2-hydroksy-4-metylotiobutyronitrylu w roztworze wyjściowym jest zawarte między 10 i 400 mmoli, korzystnie między 50 i 200 mmoli na litr.
- 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stężenie kwasu 2-hydroksy-4-metylotiomasłowego w roztworze jest zawarte między 10 i 2000 mmoli na litr, korzystnie między 100 i 1500 mmoli na litr.
- 6. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się nitrylazę pochodzącą z komórek Alcaligenes faecalis ATCC-8750.
- 7. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się nitrylazę pochodzącą z komórek Rhodococcus sp. HT 29-7 FERM BP-3857.
- 8. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się nitrylazę pochodzącą z komórek Gordona terrae FERM BP-4535.
- 9. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że stosuje pH ośrodka zawarte między 7 i 11, korzystnie między 7 i 9.
- 10. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że stosuje pH ośrodka zawarte między 5 i 9.
- 11. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że temperatura hydrolizy jest zawarta między 40°C i 60°C.
- 12. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że temperatura hydrolizy jest zawarta między 30°C i 50°C.
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| FR9411301A FR2724931B1 (fr) | 1994-09-22 | 1994-09-22 | Hydrolyse enzymatique des 4-methylthiobutyronitrile |
| FR9502615A FR2731438B1 (fr) | 1995-03-07 | 1995-03-07 | Hydrolise enzymatique des 4-methylthiobutyronitriles |
| PCT/FR1995/001196 WO1996009403A1 (fr) | 1994-09-22 | 1995-09-19 | Hydrolyse enzymatique des 4-methylthiobutyronitrile |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL319298A1 PL319298A1 (en) | 1997-08-04 |
| PL180871B1 true PL180871B1 (pl) | 2001-04-30 |
Family
ID=26231416
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL95319298A PL180871B1 (pl) | 1994-09-22 | 1995-09-19 | Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego |
Country Status (21)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5814497A (pl) |
| EP (1) | EP0782629B1 (pl) |
| JP (1) | JPH10507631A (pl) |
| KR (1) | KR100398595B1 (pl) |
| CN (1) | CN1077599C (pl) |
| AT (1) | ATE174059T1 (pl) |
| AU (1) | AU699625B2 (pl) |
| BR (1) | BR9509176A (pl) |
| CA (1) | CA2200100A1 (pl) |
| CZ (1) | CZ84497A3 (pl) |
| DE (1) | DE69506430T2 (pl) |
| DK (1) | DK0782629T3 (pl) |
| ES (1) | ES2126313T3 (pl) |
| FI (1) | FI971198A0 (pl) |
| HU (1) | HU220860B1 (pl) |
| NZ (1) | NZ292559A (pl) |
| PL (1) | PL180871B1 (pl) |
| RU (1) | RU2144959C1 (pl) |
| SK (1) | SK281956B6 (pl) |
| UA (1) | UA48953C2 (pl) |
| WO (1) | WO1996009403A1 (pl) |
Families Citing this family (12)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE69737696T2 (de) * | 1996-02-29 | 2008-01-10 | Nippon Soda Co. Ltd. | Prozess für die herstellung von alpha-hydroxysäuren mit hilfe eines mikroorganismus und eines neuen mikroorganismus. |
| FR2755143B1 (fr) * | 1996-10-25 | 1998-11-27 | Rhone Poulenc Nutrition Animal | Procede de preparation de l'acide 2-hydroxy-4-methylthio-butyrique par utilisation d'une nitrilase |
| JPH10179183A (ja) * | 1996-12-20 | 1998-07-07 | Daicel Chem Ind Ltd | カルボン酸の製造方法 |
| US5866379A (en) * | 1997-01-28 | 1999-02-02 | Novus International | Enzymatic conversion of α-hydroxynitriles to the corresponding .alpha. |
| US6037155A (en) * | 1997-02-27 | 2000-03-14 | Nippon Soda Co., Ltd. | Process for preparing α-hydroxy acids using microorganism and novel microorganism |
| FR2787121B1 (fr) * | 1998-12-11 | 2003-09-12 | Aventis Cropscience Sa | Nouvelle methode d'isolement et de selection de genes codant pour des enzymes, et milieu de culture approprie |
| WO2002052027A1 (en) * | 2000-12-22 | 2002-07-04 | Nippon Soda Co., Ltd. | Process for producing substance by using microbial catalyst |
| RU2177034C1 (ru) * | 2001-04-03 | 2001-12-20 | Закрытое акционерное общество "Биоамид" | Штамм бактерий alcaligenes denitrificans-продуцент нитрилазы |
| AU2004215238B2 (en) * | 2003-02-27 | 2009-08-27 | Basf Aktiengesellschaft | Modified nitrilases and their use in methods for the production of carboxylic acids |
| DE10316110A1 (de) | 2003-04-09 | 2004-10-28 | Degussa Ag | Verfahren zur Herstellung von 2-Hydroxy-4-methylthio-buttersäure Ammoniumsalz |
| CN102911975A (zh) * | 2012-09-12 | 2013-02-06 | 浙江工业大学 | 重组腈水解酶制备2-氨基-4-甲硫基丁酸的方法 |
| CN115806902B (zh) * | 2022-09-01 | 2025-06-27 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | 解纤维戈登氏菌及其应用 |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2623345B2 (ja) * | 1988-06-27 | 1997-06-25 | 旭化成工業株式会社 | 光学活性なα―置換有機酸の製造方法 |
| JP3009421B2 (ja) * | 1990-02-28 | 2000-02-14 | 秀明 山田 | 有機酸の生物学的製造法 |
| JPH0440899A (ja) * | 1990-06-08 | 1992-02-12 | Nitto Chem Ind Co Ltd | α―ヒドロキシ―4―メチルチオブチルアミドの生物学的製造法 |
| JPH0440898A (ja) * | 1990-06-08 | 1992-02-12 | Nitto Chem Ind Co Ltd | α―ヒドロキシ―4―メチルチオ酪酸の生物学的製造法 |
| CA2103932A1 (en) * | 1992-11-05 | 1994-05-06 | Ramesh N. Patel | Stereoselective reduction of ketones |
| JP3218133B2 (ja) * | 1993-02-03 | 2001-10-15 | 三菱レイヨン株式会社 | フェニル基を有する光学活性α−ヒドロキシカルボン酸の製造法 |
| JP2720140B2 (ja) * | 1993-02-03 | 1998-02-25 | 日東化学工業株式会社 | フェニル基を有する光学活性α−ヒドロキシカルボン酸の製造法 |
-
1995
- 1995-09-19 SK SK376-97A patent/SK281956B6/sk unknown
- 1995-09-19 BR BR9509176A patent/BR9509176A/pt not_active IP Right Cessation
- 1995-09-19 UA UA97041904A patent/UA48953C2/uk unknown
- 1995-09-19 US US08/809,184 patent/US5814497A/en not_active Expired - Fee Related
- 1995-09-19 RU RU97106337/13A patent/RU2144959C1/ru not_active IP Right Cessation
- 1995-09-19 KR KR1019970701858A patent/KR100398595B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 1995-09-19 PL PL95319298A patent/PL180871B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1995-09-19 NZ NZ292559A patent/NZ292559A/en unknown
- 1995-09-19 DE DE69506430T patent/DE69506430T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1995-09-19 JP JP8510644A patent/JPH10507631A/ja not_active Ceased
- 1995-09-19 DK DK95931259T patent/DK0782629T3/da active
- 1995-09-19 FI FI971198A patent/FI971198A0/fi not_active IP Right Cessation
- 1995-09-19 HU HU9702057A patent/HU220860B1/hu not_active IP Right Cessation
- 1995-09-19 AU AU34764/95A patent/AU699625B2/en not_active Ceased
- 1995-09-19 EP EP95931259A patent/EP0782629B1/fr not_active Expired - Lifetime
- 1995-09-19 CN CN95195224A patent/CN1077599C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1995-09-19 CZ CZ97844A patent/CZ84497A3/cs unknown
- 1995-09-19 ES ES95931259T patent/ES2126313T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1995-09-19 AT AT95931259T patent/ATE174059T1/de not_active IP Right Cessation
- 1995-09-19 CA CA002200100A patent/CA2200100A1/fr not_active Abandoned
- 1995-09-19 WO PCT/FR1995/001196 patent/WO1996009403A1/fr not_active Ceased
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE69506430T2 (de) | 1999-05-20 |
| RU2144959C1 (ru) | 2000-01-27 |
| CN1077599C (zh) | 2002-01-09 |
| FI971198A7 (fi) | 1997-03-21 |
| DK0782629T3 (da) | 1999-08-16 |
| US5814497A (en) | 1998-09-29 |
| AU699625B2 (en) | 1998-12-10 |
| EP0782629A1 (fr) | 1997-07-09 |
| FI971198L (fi) | 1997-03-21 |
| CN1158640A (zh) | 1997-09-03 |
| DE69506430D1 (de) | 1999-01-14 |
| AU3476495A (en) | 1996-04-09 |
| UA48953C2 (uk) | 2002-09-16 |
| SK37697A3 (en) | 1997-10-08 |
| BR9509176A (pt) | 1997-12-23 |
| NZ292559A (en) | 1998-03-25 |
| EP0782629B1 (fr) | 1998-12-02 |
| JPH10507631A (ja) | 1998-07-28 |
| HU220860B1 (en) | 2002-06-29 |
| ATE174059T1 (de) | 1998-12-15 |
| PL319298A1 (en) | 1997-08-04 |
| CA2200100A1 (fr) | 1996-03-28 |
| FI971198A0 (fi) | 1997-03-21 |
| WO1996009403A1 (fr) | 1996-03-28 |
| KR100398595B1 (ko) | 2004-03-20 |
| CZ84497A3 (en) | 1997-06-11 |
| KR970706401A (ko) | 1997-11-03 |
| ES2126313T3 (es) | 1999-03-16 |
| HUT77079A (hu) | 1998-03-02 |
| SK281956B6 (sk) | 2001-09-11 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0188316B1 (en) | Process for the preparation of amides using microorganisms | |
| US5283182A (en) | Preparation of immobilized hydantoinase stabilized with divalent metal ions | |
| PL180871B1 (pl) | Sposób wytwarzania kwasu 4-metylotio-2-hydroksy-masłowego | |
| US5179014A (en) | Process for the preparation of amides using microorganisms | |
| CA2432190A1 (en) | Improved process for converting nitriles to carboxylic acids using nitrilase | |
| CA1217158A (en) | Enzymatic synthesis of l-serine | |
| JP3409353B2 (ja) | アミド化合物の製造方法および使用される微生物 | |
| AU2003225548A1 (en) | Method for producing 2-hydroxyisobutyric acid and methacrylic acid from acetone cyanohydrin | |
| CA1173768A (en) | Adenylate kinase and process for the production thereof | |
| CA1298800C (en) | Immobilized enzyme preparation and its use | |
| JP4941990B2 (ja) | Nε−アシル−L−リジン特異的アミノアシラーゼ | |
| US6455730B1 (en) | Preparation of dicarboxylic acid monoesters from cyanocarboxylic acid esters | |
| US7198926B2 (en) | Preparation of (E)- and (Z)-2-methyl-2-butenoic acids | |
| JPS633599B2 (pl) | ||
| MXPA97002153A (en) | Enzymatic hydrolysis of 4-methyltiobutironitri | |
| JPH04341185A (ja) | 新規ニトリラーゼ | |
| JP4884863B2 (ja) | ニトリラーゼおよびニトリラーゼを用いるカルボン酸の製造方法 | |
| JPH0279996A (ja) | 光学活性2―アリールオキシまたは2―アリールチオ飽和鎖状カルボン酸の製法 | |
| JPH04144697A (ja) | 光学活性カルボン酸、ニトリル、アミドの製造方法 | |
| JPH0889267A (ja) | S−(+)−マンデルアミドおよびその誘導体の製造法 | |
| JP2001314197A (ja) | 光学活性なヒドロキシアルキル−α−アミノカルボン酸の製造方法 | |
| JPH1180103A (ja) | β−カルバモイルイソ酪酸類及びその製造方法 | |
| JP2000270856A (ja) | 新規なアミノアルコール脱水素酵素、その製造方法および用途 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20050919 |