PL193453B1 - Zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów oraz kompozycja farmaceutyczna - Google Patents

Zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów oraz kompozycja farmaceutyczna

Info

Publication number
PL193453B1
PL193453B1 PL99344022A PL34402299A PL193453B1 PL 193453 B1 PL193453 B1 PL 193453B1 PL 99344022 A PL99344022 A PL 99344022A PL 34402299 A PL34402299 A PL 34402299A PL 193453 B1 PL193453 B1 PL 193453B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
group
lipase
polymer
substituted
groups
Prior art date
Application number
PL99344022A
Other languages
English (en)
Other versions
PL344022A1 (en
Inventor
Harry W. Mandeville Iii
Molly Kate Boie
Venkata R. Garigapati
Original Assignee
Genzyme Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Genzyme Corp filed Critical Genzyme Corp
Publication of PL344022A1 publication Critical patent/PL344022A1/xx
Publication of PL193453B1 publication Critical patent/PL193453B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/33Heterocyclic compounds
    • A61K31/395Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins
    • A61K31/40Heterocyclic compounds having nitrogen as a ring hetero atom, e.g. guanethidine or rifamycins having five-membered rings with one nitrogen as the only ring hetero atom, e.g. sulpiride, succinimide, tolmetin, buflomedil
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/04Anorexiants; Antiobesity agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P3/00Drugs for disorders of the metabolism
    • A61P3/06Antihyperlipidemics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Obesity (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Child & Adolescent Psychology (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)

Abstract

1. Zastosowanie polimeru wybranego spo sród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów, podstawionego jedn a lub wi ecej ni z jedn a grup a hamuj ac a lipaz e, wybran a spo sród pochodnej kwasu fosforowego, bezwodnika cyklicznego, grupy endocyklicznej, sulfonianu, grupy kwasu bo- rowego i grupy kwasu fenolowego, do wytwarzania leku odpowiedniego do podawania doustnego do leczenia hipertriglicerydemii lub oty losci u ssaków. 8. Kompozycja farmaceutyczna zawieraj aca farmaceutycznie dopuszczalny no snik, zna- mienna tym, ze zawiera polimer wybrany spo sród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów, podstawiony jedn a lub wi ecej ni z jedn a grup a hamuj ac a lipaz e, wybran a spo sród pochodnej kwasu fosforowego, bezwodnika cyklicznego, grupy endocyklicznej, sulfonianu, grupy kwasu borowego i grupy kwasu fenolowego, do podawania doustnego do leczenia hipertriglicerydemii lub oty losci u ssaków. PL PL PL PL PL

Description

Otyłość ludzi to uznany problem zdrowotny dotyczący w Stanach Zjednoczonych w przybliżeniu dziewięćdziesięciu siedmiu milionów ludzi uważanych za mających kliniczną nadwagę. Gromadzenie lub utrzymywanie tłuszczu w ciele pozostaje w prostej zależności od spożycia kalorii. Zatem jedną z najpospolitszych metod regulacji wagi, w celu walki z otyłoś cią, jest zastosowanie diet względnie niskotłuszczowych, niskokalorycznych, to znaczy, diet zawierających mniej tłuszczu i kalorii niż „dieta normalna” lub ilość ogólnie spożywana przez pacjenta.
Obecność tłuszczów w wielu źródłach żywności ogromnie ogranicza źródła żywności, które można stosować w diecie niskotłuszczowej. Dodatkowo tłuszcze przyczyniają się do smaku i zapachu, wyglądu i charakterystyki fizycznej. Akceptowalność diet niskotłuszczowych i utrzymanie takich diet jest trudne.
Do zwalczania otyłości zaproponowano rozmaite podejścia chemiczne. Środki znoszące łaknienie, takie jak D-amfetamina, połączenie leków nieamfetaminowych fenterminy i fenfluraminy („PhenFen”) i sama deksfenfluramina (Redux), wiążą się z poważnymi efektami ubocznymi. Jako namiastki tłuszczu w diecie proponowano materiały niestrawne takie jak olstra (OLEAN™), olej mineralny lub estry neopentylowe (patrz opis patentowy Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 2962419). Opisano kwas mangostanowy {garcinia acid} i jego pochodne jako leczące otyłość metodą zakłócania syntezy kwasów tłuszczowych. Opisano pęczniejące usieciowane żywice winylopirydynowe jako środki tłumiące apetyt przez mechanizm dostarczania niepożywnej masy, jak w opisie patentowym Stanów Zjednoczonych Ameryki nr 2923662. W skrajnych przypadkach wykorzystuje się techniki chirurgiczne, takie jak zabieg tymczasowego przepływu omijającego jelita krętego.
Jednak sposoby leczenia otyłości, takie jak opisane wyżej, mają poważne wady, przy czym dominującą techniką zwalczania otyłości pozostaje regulowana dieta. Istnieje, więc potrzeba opracowania nowych sposobów leczenia otyłości.
STRESZCZENIE WYNALAZKU
Przedmiotem wynalazku jest zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów, podstawionego jedną lub więcej niż jedną grupą hamującą lipazę, wybraną spośród pochodnej kwasu fosforowego, bezwodnika cyklicznego, grupy endocyklicznej, sulfonianu, grupy kwasu borowego i grupy kwasu fenolowego, do wytwarzania leku odpowiedniego do podawania doustnego do leczenia hipertriglicerydemii lub otyłości u ssaków.
Zastosowanie korzystnie charakteryzuje się tym, że grupa hamująca lipazę reaguje z lipazą i tworzy wią zanie kowalencyjne.
Zastosowanie korzystnie charakteryzuje się tym, że grupa hamująca lipazę tworzy wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu w miejscu aktywnym lipazy.
Zastosowanie korzystnie charakteryzuje się tym, że grupa hamująca lipazę tworzy wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu, która nie znajduje się w miejscu aktywnym lipazy.
Zastosowanie korzystnie charakteryzuje się tym, że grupa hamująca lipazę jest izosterem kwasu tłuszczowego.
Zastosowanie korzystnie charakteryzuje się tym, że polimer stanowi polimer wiążący tłuszcz.
Zastosowanie korzystnie charakteryzuje się tym, że grupa hamująca lipazę ma następującą strukturę:
w której, 5
R5 oznacza grupę alkilową wybraną spośród grup butylowej, pentylowej, heksylowej, heptylowej, oktylowej, nonylowej, decylowej, dodecylowej, tetradecylowej, heksadecylowej, oktadecylowej, dokozanylowej, cholesterylowej, farnezylowej, aralkilowej, fenylowej i naftylowej, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną albo podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną;
PL 193 453 B1
Z oznacza atom tlenu, grupę alkilenową, atom siarki, -SO3-, -CO2, -NR2-, -CONR2-, PO4H- lub grupę bromoalkilooctanową; i
R2 oznacza atom wodoru, niepodstawioną lub podstawioną grupę alifatyczną albo niepodstawioną lub podstawioną grupę aromatyczną, przy czym grupa aromatyczna jest wybrana spośród grup fenylowej, pirydynylowej, furanylowej, tiofenylowej fenantrylowej, antracylowej, naftylowej, 2-benzotienylowej, 3-benzotienylowej, 2-benzofuranylowej, 3-benzofuranylowej, 2-indolilowej, 3-indolilowej, 2-chinolinylowej, 3-chinolinylowej, 2-benzotiazolowej, 2-benzooksazołowej, 2-benzimidazolowej, 1-izochinolinylowej, 3-chinolinylowej, 1-izoindolilowej, 3-izoindolilowej i akrydynylowej; i gdzie grupa alifatyczna oznacza prostołańcuchową, rozgałęzioną lub cykliczną grupę C4-C30 węglowodorową.
Przedmiotem wynalazku jest także kompozycja farmaceutyczna zawierająca farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, charakteryzująca się tym, że zawiera polimer wybrany spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów, podstawiony jedną lub więcej niż jedną grupą hamującą lipazę, wybraną spośród pochodnej kwasu fosforowego, bezwodnika cyklicznego, grupy endocyklicznej, sulfonianu, grupy kwasu borowego i grupy kwasu fenolowego, do podawania doustnego do leczenia hipertriglicerydemii lub otyłości u ssaków.
W kompozycji korzystnie grupa hamująca lipazę jest grupą reagującą z lipazą i tworząc ą wiązanie kowalencyjne.
W kompozycji korzystnie grupa hamująca lipazę jest grupą tworzącą wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu w miejscu aktywnym lipazy.
W kompozycji korzystnie grupa hamująca lipazę jest grupą tworzącą wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu, która nie znajduje się w miejscu aktywnym lipazy.
W kompozycji korzystnie grupa hamująca lipazę jest izosterem kwasu tłuszczowego.
W kompozycji korzystnie polimer stanowi polimer wiążący tłuszcz.
W kompozycji korzystnie grupa hamująca lipazę ma następującą strukturę:
w której, 5
R5 oznacza grupę alkilową wybraną spośród grup butylowej, pentylowej, heksylowej, heptylowej, oktylowej, nonylowej, decylowej, dodecylowej, tetradecylowej, heksadecylowej, oktadecylowej, dokozanylowej, cholesterylowej, farnezylowej, aralkilowej, fenylowej i naftylowej, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną albo podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną;
Z oznacza atom tlenu, grupę alkilenową, atom siarki, -SO3-, -CO2, -NR2-, -CONR2-, PO4H- lub grupę bromoalkilooctanową; i
R2 oznacza atom wodoru, niepodstawioną lub podstawioną grupę alifatyczną albo niepodstawioną lub podstawioną grupę aromatyczną, przy czym grupa aromatyczna jest wybrana spośród grup fenylowej, pirydynylowej, furanylowej, tiofenylowej, fenantrylowej, antracylowej, naftyłowej, 2-benzotienylowej, 3-benzotienylowej, 2-benzofuranylowej, 3-benzofuranylowej, 2-indolilowej, 3-indolilowej, 2-chinolinylowej, 3-chinolinylowej, 2-benzotiazolowej, 2-benzooksazolowej, 2-benzimidazolowej, 1-izochinolinylowej, 3-chinolinylowej, 1-izoindolilowej, 3-izoindolilowej i akrydynylowej; i gdzie grupa alifatyczna oznacza prostołańcuchową, rozgałęzioną lub cykliczną grupę C4-C30 węglowodorową.
Przedmiotem wynalazku jest, więc zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów do leczenia otyłości u pacjenta, przy czym polega to na wytwarzaniu leku do podawania pacjentowi polimeru, który jest podstawiony przez lub zawiera jedną lub więcej grup, które mogą hamować lipazę. Lipazy to kluczowe enzymy w układzie trawiennym, które rozkładają trii diglicerydy, które są zbyt duże by zostać wchłonięte przez jelito cienkie, na kwasy tłuszczowe, które mogą zostać wchłonięte. Zatem hamowanie lipaz powoduje zmniejszenie wchłaniania tłuszczu. W jednym z wykonań grupa hamują ca lipazę może być „substratem samobójczym”, który hamuje ak4
PL 193 453 B1 tywność lipazy tworząc wiązanie kowalencyjne z enzymem albo w miejscu aktywnym lub gdzie indziej. W innym wykonaniu, grupę hamującą lipazę stanowi inhibitor izosteryczny enzymu. W wynalazku przedstawiono polimery wykorzystywane w sposobach opisanych niniejszym jak również nowe związki pośrednie i sposoby wytwarzania polimerów.
Sposób leczenia otyłości u pacjenta polega na podawaniu pacjentowi polimeru zawierającego jedną lub więcej grup, które mogą hamować lipazę. Ponieważ lipazy są odpowiedzialne za hydrolizę tłuszczu, to konsekwencją ich hamowania jest zmniejszenie hydrolizy i wchłaniania tłuszczu. W wynalazku przedstawiono polimery wykorzystywane w sposobach opisanych niniejszym jak również nowe związki pośrednie i sposoby wytwarzania polimerów.
W jednym z aspektów wynalazku grupa hamująca lipazę inaktywuje lipazę taką jak lipazy żołądkowe, trzustkowe i językowe. Inaktywacja może zajść przez tworzenie wiązania kowalencyjnego, tak, że enzym jest nieaktywny. Wiązanie kowalencyjne może być utworzone z resztą aminokwasu w miejscu aktywnym enzymu lub w pobliżu, lub z resztą odległą od miejsca aktywnego pod warunkiem, że tworzenie wiązania kowalencyjnego powoduje hamowanie aktywności enzymu. Lipazy zawierają triadę katalityczną, która jest odpowiedzialna za hydrolizę lipidów do kwasów tłuszczowych. Triada katalityczna składa się z reszt aminokwasów seryny, asparaginianu i histydyny. Ta triada jest także odpowiedzialna za hydrolizę wiązań amidowych w proteazach serynowych i oczekuje się, że związki, które są inhibitorami proteaz serynowych, będą także hamować lipazy. Zatem inhibitory proteaz serynowych, które mogą być kowalencyjnie połączone z polimerem, są korzystnymi grupami hamującymi lipazę. Na przykład, wiązanie kowalencyjne może być utworzone między grupą hamującą lipazę i grupą hydroksylową w miejscu katalitycznym enzymu lub jego pobliżu. Na przykład wiązanie kowalencyjne może być utworzone z seryną. Inaktywacja może także wynikać z grupy hamującej lipazę tworzącej wiązanie kowalencyjne z aminokwasem, na przykład cysteiną, który jest w pewnej odległości od miejsca aktywnego. Ponadto oddziaływanie niekowalencyjne między grupą hamującą lipazę i enzymem może także spowodować inaktywację enzymu. Na przykład, grupa hamująca lipazę moż e być izosterem kwasu tłuszczowego, który może oddziaływać niekowalencyjnie z miejscem katalitycznym lipazy. Ponadto, grupa hamująca lipazę może konkurować do hydrolizy przez lipazę z triglicerydami naturalnymi.
W jednym z aspektów rozwią zania, grupa hamują ca lipazę moż e być przedstawiona wzorem I:
w którym,
R oznacza atom wodoru, ugrupowanie hydrofobowe, -NR2R3, -CO2H, -OCOR2, -NHCOR2, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną albo podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną;
R1 oznacza grupę aktywującą;
Y oznacza atom tlenu, atom siarki, -NR2- lub jest nieobecny;
Z i Z1 oznaczają , niezależ nie, atom tlenu, grupę alkilenową , atom siarki, -SO3-, -CO2-, -NR2-, -CONR2-, -PO4H- lub grupę łącznikową;
R2 i R3 oznaczają, niezależnie, atom wodoru, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną, lub podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną;
m oznacza 0 lub 1; i n oznacza 0 lub 1.
W jednym z wykonań, grupa hamująca lipazę o wzorze I moż e być przedstawiona następującymi strukturami:
PL 193 453 B1
gdzie R, R1 i Y są zdefiniowane jak wyżej.
W innym wykonaniu, grupa hamują ca lipazę o wzorze strukturalnym I moż e być przedstawiona następującymi strukturami:
gdzie R, R1, R2, R3 i Y są zdefiniowane jak wyżej, zaś p oznacza liczbę całkowitą (np. liczbę całkowitą między zero i około 30, korzystnie między około 2 i około -10).
W innym wykonaniu, inhibitor lipazy o wzorze I oznacza bezwodnik mieszany. Bezwodniki mieszane obejmują, ale nie ograniczając się do tego, bezwodnik mieszany kwasów fosforowego i karboksylowego, fosforowego i sulfonowego oraz pirofosforanowego jako grupy hamujące lipazę, które mogą być przedstawione następującymi strukturami, odpowiednio:
PL 193 453 B1
gdzie R, R1, Y i Z1 są zdefiniowane jak wyżej.
W innym aspekcie, grupą hamują c ą lipazę moż e być bezwodnik. W jednym z wykonań , bezwodnik oznacza bezwodnik cykliczny przedstawiany wzorem II:
w którym R, Z i p są zdefiniowane jak wyżej, X oznacza -PO2-, -SO2- lub -CO-, zaś k oznacza liczbę całkowitą,od 1 do około 10, korzystnie od 1-4.
W innym wykonaniu, bezwodnikowe grupy hamują ce lipazę mogą oznaczać bezwodnik cykliczny, który jest częścią układu pierścieni skondensowanych. Bezwodniki tego typu mogą być przedstawione wzorem III:
w którym X i Z są zdefiniowane jak wyżej, a pierścień A oznacza ewentualnie podstawioną cykliczną grupę alifatyczną lub grupę aromatyczną, lub ich połączenia, które mogą zawierać jeden lub
PL 193 453 B1 więcej heteroatomów w pierścieniu. W specyficznym wykonaniu bezwodnik cykliczny oznacza bezwodnik benzenosulfonowy przedstawiany następującą strukturą:
w której Z jest zdefiniowany jak wyżej i pierścień benzenowy może być dodatkowo podstawiony.
W innym aspekcie, grupa hamująca lipazę oznacza grupę karbonylową α-fluorowcowaną, która może być przedstawiona wzorem IV:
w którym R i Y są zdefiniowane jak wyżej, zaś W1 i W2 niezależnie od siebie oznaczają atom wodoru lub fluorowca, na przykład, -F, -Cl, -Br, i -I, gdzie co najmniej jeden z W1 i W2 oznacza atom fluorowca.
W jeszcze innym aspekcie, grupą hamującą lipazę może być związek cykliczny mający grupę endocykliczną, która jest podatna na atak nukleofilowy. Laktony i epoksydy stanowią przykłady tego typu grupy hamującej lipazę i mogą być przedstawione odpowiednio wzorami V i VI:
w których R, Z, m i p są zdefiniowane jak wyżej.
W dalszym aspekcie grupą hamującą lipazę może być grupa sulfonianowa lub disiarczkowa przedstawiona wzorami, odpowiednio, VII i VIII:
PL 193 453 B1
w których R, Z i p są zdefiniowane jak wyż ej, a R5 jest nieobecny lub oznacza ugrupowanie hydrofobowe, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną albo podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną.
W specyficznym wykonaniu, disiarczkowa grupa hamują ca lipazę moż e być przedstawiona następującym wzorem:
w którym R, Z i p s ą zdefiniowane jak wyż ej.
W dalszym aspekcie wynalazku grupą hamującą lipazę może być kwas borowy, który może być połączony z polimerem przez grupę hydrofobową lub wprost z polimerem, gdy polimer jest hydrofobowy. Grupy kwasu borowego hamujące lipazę mogą być przedstawione następującą strukturą:
OH /
Ek
OH w której R5, Z, n i m są zdefiniowane jak wyżej.
W dodatkowym aspekcie grupą izosteryczną hamując ą lipazę może być kwas fenolowy połączony z polimerem. Grupy kwasu fenolowego hamujące lipazę mogą być przedstawione następującą strukturą:
5 w której Z, R5, n i m są zdefiniowane jak wyżej i -CO2H i -OH są w pozycjach orto lub para względem siebie.
W wynalazku opisanym niniejszym można wykorzystać rozmaite polimery. Polimery mogą być alifatyczne, alicykliczne lub aromatyczne albo syntetyczne lub występujące naturalnie. Jednak korzystne
PL 193 453 B1 są polimery alifatyczne i alicykliczne syntetyczne. Ponadto, polimer może być hydrofobowy, hydrofilowy lub może stanowić kopolimery monomerów hydrofobowych i/lub hydrofilowych. Polimer może być niejonowy (np. obojętny), anionowy lub kationowy, w całości lub w części. Ponadto, polimery mogą być wytwarzane z monomerów olefinowych lub etylenowych (takich jak alkohol winylowy) lub mogą stanowić polimery kondensacyjne.
Na przykład, polimery mogą oznaczać alkohol poliwinylowy, poliwinyloaminę, poli-N-alkilowinyloaminę, polialliloaminę, poli-N-alkiloalliloaminę, polialkilenoiminę, polietylen, polipropylen, polieter, politlenek etylenu, poliamid, kwas poliakrylowy, polialkiloakrylan, poliakryloamid, kwas polimetakrylowy, polialkilometakrylan, polimetakryloamid, poli-N-alkiloakryloamid, poli-N-alkilometakryloamid, polistyren, winylonaftalen, etylowinylobenzen, aminostyren, winylobifenyl, winyloanizol, winyloimidazolil, winylopirydynyl, dimetyloaminometylostyren, trimetyloamonioetylometakrylan, trimetyloamonioetyloakrylan, węglowodan, białko oraz podstawione pochodne powyższych (np., ich monomery fluorowane) i ich kopolimery.
Korzystne polimery obejmują polietery, takie jak glikole polialkilenowe. Polietery mogą być przedstawione wzorem IX:
IX w którym R jest zdefiniowany jak wyżej a q oznacza liczbę całkowitą.
Na przykład, polimer może oznaczać glikol polipropylenowy lub glikol polietylenowy lub ich kopolimery. Polimery mogą być kopolimerami bezładnymi lub blokowymi. Ponadto polimery mogą być hydrofobowe, hydrofilowe, albo ich połączeniem (jak w polimerach bezładnych lub blokowych).
Szczególnie korzystnym polimerem jest kopolimer blokowy cechujący się hydrofobowymi i hydrofilowymi obszarami polimerycznymi. W takim wykonaniu, „rdzeń polimeru może być hydrofobowy z jednym lub oboma końcami zakończonymi polimerem hydrofilowym lub vice versa. Przykładem takiego polimeru jest kopolimer glikolu polietylenowego-glikolu polipropylenowego-glikolu polietylenowego, który jest sprzedawany pod znakiem towarowym PLURONIC® (BASF Wyandotte Corp.). BRIJ® i IGEPAL® (Aldrich, Milwaukee, WL) to przykłady polimerów mających rdzeń glikolu polietylenowego zakończony hydrofobową grupą końcową. Polimery BRIJ® to glikole polietylenowe mające jeden koniec zakończony grupą alkoksylową, zaś grupa hydroksylowa na drugim końcu łańcucha polimeru jest wolna. Polimery IGEPAL® to glikole polietylenowe mające jeden koniec zakończony grupą 4-nonylofenoksylową, zaś grupa hydroksylowa na drugim końcu łańcucha polimeru jest wolna.
Inna klasa polimerów obejmuje polimery alifatyczne takie jak alkohol poliwinylowy, polialliloamina, poliwinyloamina i polietylenoimina. Te polimery mogą cechować się dalej jednym lub więcej podstawnikami, takimi jak podstawiona lub niepodstawiona, nasycona lub nienasycona grupa alkilowa i podstawiona lub niepodstawiona grupa arylowa. Przydatne podstawniki obejmują grupy anionowe, kationowe lub obojętne, takie jak na przykład grupy alkoksylowa, arylowa, aryloksyIowa, aralkilowa, fluorowcowa, aminowa i amoniowa. Polimer może korzystnie posiadać jedną lub więcej reaktywnych grup funkcyjnych, które mogą, wprost lub pośrednio, reagować ze związkiem pośrednim posiadającym grupy hamujące lipazę.
W jednym z wykonań polimery mają następującą jednostkę powtarzającą się:
PL 193 453 B1 gdzie, q oznacza liczbę cał kowitą ; i
R4 oznacza -OH, -NH2, -CH2NH2, -SH, lub grupę przedstawioną następującym wzorem:
w którym R, R1, Y, Z, Z1-, m i n są zdefiniowane jak wyżej.
Dodatkowo polimer może oznaczać węglowodan taki jak chitosan, celuloza, hemiceluloza lub skrobia lub ich pochodne.
Polimer może być liniowy lub usieciowany. Usieciowanie można przeprowadzić poddając kopolimer reakcji z jednym lub więcej środkami sieciującymi mającymi dwie lub więcej grupy funkcyjne, takie jak grupy elektrofilowe, które reagują z alkoholem polimeru z wytworzeniem wiązania kowalencyjnego. W tym przypadku usieciowanie może nastąpić, na przykład, przez atak nukleofilowy grup hydroksylowych polimeru na grupy elektrofilowe. To powoduje tworzenie jednostki mostka, która łączy dwa lub więcej alkoholowe atomy tlenu z różnych łańcuchów polimeru. Przydatne środki sieciujące tego typu obejmują związki mające dwie lub więcej grupy wybrane spośród chlorku acylowego, epoksydu i alkilo-X, gdzie X oznacza przydatną grupę opuszczającą, taką jak atom fluorowca, grupa tosylowa lub mezylowa. Przykłady takich związków obejmują, ale nie ograniczając się do tego, epichlorohydrynę, dichlorek kwasu bursztynowego, chlorek akryloilu, eter butanodiolodiglicydylowy, eter etanodiolodiglicydylowy, dibezwodnik kwasu piromelitowego i difluorowcoalkany.
Kompozycja polimeru może także być usieciowana przez włączenie wielofunkcyjnego komonomeru jako środka sieciującego w mieszaninie reakcyjnej polimeryzacji. Komonomer wielofunkcyjny może być włączony do dwóch lub więcej rosnących łańcuchów polimeru, przez to sieciując łańcuchy. Przydatne komonomery wielofunkcyjne obejmują, ale nie ograniczając się do tego, diakrylany, triakrylany i tetraakrylany, dimetakrylany, diakryloamidy, dialliloakryloamidy i dimetakryloamidy. Konkretne przykłady obejmują diakrylan glikolu etylenowego, diakrylan glikolu propylenowego, diakrylan glikolu butylenowego, dimetakrylan glikolu etylenowego, dimetakrylan glikolu butylenowego, metylenobis (metakryloamid), etylenobis (akryloamid), etylenobis(metakryloamid), etylidenobis(akryloamid), etylidenobis(metakryloamid), tetraakrylan pentaerytrytolu, triakrylan tris(hydroksymetylo) propanu, dimetakrylan bis-fenolu A i diakrylan bisfenolu A. Inne przydatne monomery wielofunkcyjne obejmują poliwinyloareny, takie jak diwinylobenzen.
Masa cząsteczkowa polimeru nie jest krytyczna. Pożądane jest, żeby polimer był dostatecznie duży, żeby nie był absorbowany zasadniczo lub zupełnie w przewodzie pokarmowym. Na przykład, masa cząsteczkowa może wynosić więcej niż 900 daltonów.
Trawienie i wchłanianie lipidów to złożony proces, w którym lipidy nierozpuszczalne w wodzie są emulgowane z wytworzeniem emulsji olej w wodzie o średnicy kropelek oleju równej w przybliżeniu 0,5 mm. Ta zemulgowana faza olejowa ma ujemny ładunek wypadkowy wskutek obecności kwasów tłuszczowych i soli żółciowych, które są głównymi środkami emulgującymi. Lipazy, które są obecne w fazie wodnej, hydrolizują zemulgowane lipidy na powierzchni emulsji. Wię kszość lipaz zawiera miejsce aktywne, które jest zasłonięte przez pętlę powierzchniową aminokwasów, która znajduje się wprost na szczycie miejsca aktywnego, gdy lipaza jest w roztworze wodnym. Jednak, gdy lipaza wchodzi w styczność z solami żółciowymi na powierzchni międzyfazowej lipid/woda emulsji lipidu, to ulega zmianie konformacyjnej, która przesuwa pętlę powierzchniową na bok i odsłania miejsce aktywne. Ta zmiana konformacyjna umożliwia lipazie katalizowanie hydrolizy lipidów na powierzchni międzyfazowej lipid/woda emulsji. Oczekuje się, że polimery, które rozrywają powierzchnię emulsji lub zmieniają jej naturę chemiczną, będą hamować aktywność lipazy. Zatem skuteczność polimerów, które mają grupy hamujące lipazę, może zwiększyć podanie ich z jednym lub więcej polimerów, które zmieniają powierzchnię emulsji. Alternatywnie, grupy hamujące lipazę mogą być przyłączone wprost do takiego polimeru.
PL 193 453 B1
Kilka typów polimerów wiążących tłuszcz było skutecznych przy rozrywaniu powierzchni emulsji lipidów lub zmienianiu jej natury chemicznej. Na przykład polimery, które mają emulgatory naładowane dodatnio, mogą wytworzyć trwałe polikationowe emulsje lipidów. Lipidy w takiej emulsji nie są substratami dla lipaz żołądkowych, ponieważ powierzchnia emulsji ma dodatni ładunek wypadkowy zamiast zwykłego ujemnego ładunku wypadkowego. Inny typ polimeru wiążącego tłuszcz destabilizuje emulsję powodując zlewanie się kropelek oleju. To zmniejsza pole powierzchni emulsji, gdzie lipazy są aktywne, a więc zmniejsza hydrolizę lipidu. Polimery wiążące tłuszcz są dalej zdefiniowane w jednocześnie rozpatrywanym zgłoszeniu patentowym nr 09/004963, złożonym 9 stycznia 1998, i zgłoszeniu patentowym nr 09/166453 złożonym 5 października 1998, których zawartość stanowi odnośnik dla niniejszego zgłoszenia.
Polimery podstawione opisane niniejszym można wytwarzać zgodnie ze sposobami znanymi ogólnie w technice. Na przykład, hamujący lipazę związek pośredni charakteryzujący się ugrupowaniem reaktywnym można zetknąć z polimerem charakteryzującym się grupą funkcyjną, która reaguje z tym ugrupowaniem reaktywnym. Patrz March, J., Advanced Organic Chemistry, wydanie 3, John Wiley and Sons, Inc.; New York, (1985).
Stosowane niniejszym określenie „reszta hydrofobowa” oznacza resztę, która, jako oddzielna jednostka, jest bardziej rozpuszczalna w oktanolu niż w wodzie. Na przykład, grupa oktylowa (C8H17) jest hydrofobowa, ponieważ jej macierzysty alkan, oktan, ma większą rozpuszczalność w oktanolu niż w wodzie. Reszty hydrofobowe mogą być nasyconą lub nienasyconą , podstawioną lub niepodstawioną grupą węglowodorową. Takie grupy obejmują podstawione i niepodstawione, proste, rozgałęzione lub cykliczne grupy alkilowe mające co najmniej cztery atomy węgla, podstawione lub niepodstawione grupy aryloalkilowe lub heteroaryloalkilowe i podstawione lub niepodstawione grupy arylowe lub heteroarylowe. Korzystnie, reszta hydrofobowa zawiera grupę alifatyczną mającą od około sześciu do trzydziestu atomów węgla. Konkretne przykłady przydatnych reszt hydrofobowych obejmują następujące grupy alkilowe butylową, pentylową, heksylową, heptylową, oktylową, nonylową, decylową, dodecyIową, tetradecylową, heksadecylową, oktadecylową, dokozanylową, cholesterylową, farnezylową, aralkilową, fenylową, naftylową i ich połączenia. Inne przykłady przydatnych reszt hydrofobowych obejmują grupy fluorowcoalkilowe mające co najmniej cztery atomy węgla (np., grupę 10-fluorowcodecylową), grupy hydroksyalkilowe mające co najmniej sześć atomów węgla (np., grupę 11-hydroksyundecylową) i grupy aralkilowe (np., grupę benzylową). Stosowane niniejszym grupy alifatyczne obejmują proste, łańcuchowe, rozgałęzione lub cykliczne węglowodory C4-C30, które są całkowicie nasycone lub zawierają jedno lub więcej miejsc nienasycenia.
Grupy aromatyczne przydatne do stosowania w wynalazku obejmują, ale nie ograniczając się do tego, pierścienie aromatyczne, na przykład, fenylowy i podstawiony fenylowy, pierścienie heteroaromatyczne, na przykład, pirydynylowy, furanylowy i tiofenylowy oraz wielopierścieniowe układy skondensowanych pierścieni aromatycznych, w których pierścień aromatyczny karbocykliczny lub pierścień heteroarylowy jest skondensowany z jednym lub więcej innymi pierścieniami karbocyklicznymi lub heteroarylowymi. Przykłady układów wielopierścieniowych pierścieni aromatycznych obejmują podstawiony lub niepodstawiony pierścień fenantrylowy, antracylowy, naftylowy, 2-benzotienylowy, 3-benzotienylowy, 2-benzofuranylowy, 3-benzofuranylowy, 2-indolilowy, 3-indolilowy, 2-chinolinylowy, 3-chinolinylowy, 2-benzotiazolowy, 2-benzooksazolowy, 2-benzimidazolowy, 2-chinolinylowy, 3-chinolinylowy, 1-izochinolinylowy, 3-chinolinylowy, 1-izoindolilowy, 3-izoindolilowy i akrydynylowy.
„Podstawiona grupa alifatyczna lub aromatyczna” może mieć jeden lub więcej podstawników, np., grupę arylową (w tym arylową karbocykliczną lub heteroarylową), podstawioną heteroarylową, -O-(alifatyczną lub arylową), -O-(podstawioną alifatyczną lub podstawioną arylową), acylową, -CHO, -CO-(alifatyczną lub podstawioną alifatyczną), -CO-(arylową lub podstawioną arylową), -COO-(alifatyczną lub podstawioną alifatyczną), -COO-(arylową lub podstawioną arylową), -NH-(acylową), -O-(acylową), benzylową, podstawioną benzylową, fluorowcowaną niższą alkilową (np. trifluorometylową i trichlorometylową), fluorową, chlorową, bromową, jodową, cyjanową, nitro, -SH, -S-(alifatyczną lub podstawioną alifatyczną), -S-(arylową lub podstawioną arylową), -S-(acylową) i tym podobne.
„Grupa aktywująca” oznacza grupę, która nadaje reaktywność grupie funkcyjnej lub ugrupowaniu. Ogólnie, „grupami aktywującymi” są grupy wyciągające elektrony. R1 lub Y-R1, o powyższym wzorze, oznacza korzystnie dobrą grupę opuszczającą lub grupę wyciągającą elektrony. Przykłady dobrych grup opuszczających to grupa fosforanowa, p-nitrofenolową, o,p-dinitrofenolowa, N-hydroksysukcynoimidowa, imidazolowa, kwas askorbinowy, pirydoksyna, grupa trimetylooctanowa, adamantanokarbonylanowa,
PL 193 453 B1 p-chlorofenolowa, o,p-dichlorofenolowa, metanosulfonylanowa, mezytylosulfonylanowa i triizopropylobenzenosulfonylanowa. Korzystną grupą opuszczającą jest grupa N-hydroksysukcynoimidowa.
Grupą łącznikową może być grupa, która ma jeden do około trzydziestu atomów i jest związana kowalencyjnie z inhibitorem lipazy, polimerem lub ugrupowaniem hydrofobowym. Ogólnie, grupa łącznikowa może być kowalencyjnie związana z inhibitorem lipazy, polimerem lub ugrupowaniem hydrofobowym przez grupę funkcyjną. Przykłady grup funkcyjnych to atom tlenu, grupa alkilenowa, atom siarki, -SO2-, -CO2-, -NR2-, lub -CONR2-. Grupa łącznikowa może być hydrofilowa lub hydrofobowa. Przykłady grup łącznikowych obejmują aminokwasy, polipeptydy, węglowodany i ewentualnie podstawione grupy alkilenowe lub aromatyczne. Grupy łącznikowe można wytwarzać na przykład z epichlorohydryny, difluorowcoalkanu, estrów fluorowcoalkilowych, glikolu polietylenowego, glikolu polipropylenowego i innych związków sieciujących lub dwufunkcyjnych. Korzystną grupą łącznikową jest grupa bromoalkilooctanowa.
Ilość polimeru podawanego leczonemu będzie zależeć od typu i ciężkości choroby i od cech charakterystycznych leczonego, takich jak ogólny stan zdrowia, wiek, ciężar ciała i tolerancja na leki. Będzie także zależeć od stopnia otyłości i powikłań związanych z otyłością. Specjalista będzie mógł określić właściwe dawkowanie zależnie od tych i innych czynników. Typowo, u leczonych ludzi, ilość skuteczna polimeru może leżeć w zakresie od około 10 mg na dzień do około 50 mg na dzień dla dorosłego. Korzystnie, dawkowanie leży w zakresie od około 10 mg na dzień do około 20 mg na dzień.
Polimer można podawać dowolną przydatną drogą, w tym, na przykład, doustnie w kapsułkach, zawiesinach lub tabletkach. Korzystnym trybem podawania jest podawanie doustne przez mieszanie z ż ywnoś cią .
Polimer można podawać leczonemu w połączeniu z dopuszczalnym nośnikiem farmaceutycznym jako część kompozycji farmaceutycznej. Postać użytkowa podawanego polimeru będzie się zmieniać zależnie od wybranej drogi podawania (np., roztwór, emulsja, kapsułka). Przydatne nośniki farmaceutyczne mogą zawierać składniki obojętne, które nie oddziałują z grupami hamującymi lipazę polimeru. Można wykorzystywać normalne techniki wytwarzania farmaceutycznych postaci użytkowych, takie jak opisane w Remington's Pharmaceutical Sciences, Mack Publishing Company, Easton, PA. Sposoby zamykania kompozycji (takie jak w powłokach z twardej żelatyny lub cyklodekstrynie) są znane w technice (Baker i in., „Controlled Release of Biological Active Agents”, John Wiley and Sons, 1986).
CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA
Synteza polimerów
P r z y k ł a d 1
Wytwarzanie glikolu polietylenowego mającego n-pentylowe ugrupowanie hydrofobowe oraz p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę:
Mieszaninę n-pentanolu (19,5 mmola, 1,72 g) i N-metyloimidazolu (19,5 mmola, 1,6 g) w bezwodnym chlorku metylenu (40 ml) dodawano powoli w ciągu 20 minut w warunkach bezwodnych do roztworu dichlorofosfonianu p-nitrofenylu (5,0 g, 19,5 mmola) w bezwodnym chlorku metylenu (100 ml). Kolbę reakcyjną chłodzono w łaźni wodnej podczas dodawania. Po zakończeniu dodawania łaźnię wodną usunięto, a mieszaninę reakcyjną mieszano przez 2 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę glikolu polietylenowego (C.cz. = 8000; 10 mmoli, 80 g), i N-metyloimidazolu (19,5 mmola, 1,6 g) w bezwodnym chlorku metylenu (150 ml) dodano do kolby reakcyjnej w warunkach bezwodnych. Mieszaninę mieszano przez 25 godzin w temperaturze pokojowej. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem, pozostałość oczyszczono zgodnie ze sposobem A i otrzymano polimer jako biały proszek (70 g).
Procedury oczyszczania
Sposób A:
Pozostałość rozpuszczono w wodzie zdemineralizowanej (100 ml). Roztwór dializowano przez godziny stosując membranę Spectra/Por MWCO: 3500. Roztwór dializowany liofilizowano i otrzymano polimer jako biały proszek.
Sposób B:
Pozostałość wylano do 0,5 l eteru dietylowego i mieszano w temperaturze pokojowej przez 1 godzinę. Rozpuszczalnik zdekantowano i zastąpiono świeżym eterem dietylowym (0,25 l).
Mieszaninę mieszano przez 1 godzinę. Rozpuszczalnik usunięto, a polimer wysuszono w temperaturze pokojowej pod zmniejszonym ciśnieniem.
PL 193 453 B1
Sposób C:
Mieszaninę reakcyjną przemyto 10% wodnym roztworem siarczanu sodu (3 x 100 ml). Fazę organiczną osuszono nad siarczanem magnezu. Rozpuszczalnik usunięto, a polimer wysuszono w temperaturze pokojowej.
Stosując powyższe procedury zsyntetyzowano następujące związki i zestawiono w następującej tabeli.
T a b e l a 1:
Glikole polietylenowe (PEG) mające p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę z rozmaitymi ugrupowaniami hydrofobowymi.
Przykład C.cz. PEG Ugrupowanie hydrofobowe (R) Sposób oczyszczania Stan fizyczny
1 S400 n-pentyl Sposób A proszek
2 3400 n-decyl Sposób B proszek
3 3400 n-dodecyl Sposób B proszek
4 3400 n-oktadecyl Sposób B proszek
5 1000 n-decyl Sposób B substancja półstała
6 1000 n-dodecyl Sposób B substancja półstała
7 1000 n-tetradecyl Sposób B substancja półstała
8 1000 n-heksadecyl Sposób B substancja półstała
9 1000 n-oktadecyl Sposób B substancja półstała
10 1000 n-pentyl Sposób C substancja półstała
11 1000 n-heksyl Sposób C substancja półstała
12 1000 n-oktyl Sposób C substancja półstała
13 1000 n-dokozyl Sposób C proszek
14 1000 cholesteryl Sposób C proszek
15 3400 n-pentyl Sposób B substancja stała
16 1500 n-pentyl Sposób B substancja stała
17 1500 n-decyl Sposób B substancja stała
18 1500 n-dodecyl Sposób B substancja stała
19 1500 n-heksadecyl Sposób C substancja stała
20 1500 n-oktadecyl Sposób C substancja stała
21 1500 n-dokozyl Sposób B substancja stała
22 1500 rac-farnezyl Sposób B brunatna substancja stała
23 1500 n-cholesteryl Sposób C substancja stała
24 1500 5-fenylo-1-pentyl Sposób C substancja stała
25 1500 n-oktyl Sposób C substancja stała
26 1500 n-heksyl Sposób C substancja stała
27 3400 n-oktyl Sposób C substancja stała
28 8400 n-oktyl Sposób C substancja stała
PL 193 453 B1
P r z y k ł a d 29
Wytwarzanie polimeru PLURONIC® mającego n-tetradecylowe ugrupowanie hydrofobowe i p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę:
Mieszaninę n-tetradekanolu (15 g, 70 mmoli) i N-metyloimidazolu (5,6 ml, 70 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (75 ml) dodawano powoli w ciągu 20 minut w warunkach bezwodnych do roztworu dichlorofosfonianu p-nitrofenylu (17,92 g, 70 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (50 ml). Kolbę reakcyjną chłodzono w łaźni wodnej podczas dodawania. Po zakończeniu dodawania łaźnię wodną usunięto, a mieszaninę reakcyjną mieszano przez 2 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę PLURONIC® (C.cz. = 1100; 39 g, 35 mmoli) i N-metyloimidazolu (5,6 ml. 70 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (150 ml) dodano do kolby reakcyjnej w warunkach bezwodnych. Mieszaninę mieszano przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę reakcyjną ekstrahowano zimnym nasyconym roztworem NaCl (3 x 150 ml), warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu. Siarczan sodu usunięto metodą sączenia, a przesącz zebrano. Rozpuszczalnik usunięto z przesączu pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując 65 g bladożółtej lepkiej cieczy. Materiał suszono pod zmniejszonym ciśnieniem przez jeden tydzień w temperaturze pokojowej. Użyto go wprost do testów in vitro i in vivo.
Stosując powyższą procedurę wytworzono następujące przykłady.
T a b e l a 2:
Polimery PLURONIC® (PLU) mające p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę z rozmaitymi ugrupowaniami hydrofobowymi.
Przykład C.cz. PLU % wag. glikolu etylenowego Ugrupowanie hydrofobowe (R) Stan fizyczny
29 1100 10% wag. n-tetradecyl ciecz
30 1100 10% wag. n-dodecyl ciecz
31 1100 10% wag. n-decyl ciecz
32 1100 10% wag. n-oktyl ciecz
33 1900 50% wag. n-heksyl ciecz
34 1900 50% wag. n-oktyl ciecz
35 1900 50% wag. n-decyl ciecz
36 1900 50% wag. n-dodecyl ciecz
37 1900 50% wag. n-tetradecyl substancja półstała
38 1900 50% wag. n-heksadecyl substancja półstała
39 8400 80% wag. n-pentyl proszek
40 8400 80% wag. n-heksyl proszek
41 2900 40% wag. n-oktadecyl substancja półstała
42 2900 40% wag. n-heksadecyl substancja półstała
43 2900 40% wag. n-tetradecyl ciecz
44 2900 40% wag. n-dodecyl ciecz
45 4400 40% wag. n-oktadecyl Substancja półstała
46 4400 40% wag. n-heksadecyl Substancja półstała
47 4400 40% wag. n-tetradecyl ciecz
48 4400 40% wag. n-dodecyl ciecz
PL 193 453 B1
P r z y k ł a d 51
Wytwarzanie glikolu polipropylenowego mającego n-heksadecylowe ugrupowanie hydrofobowe i p-nitrofenylofosforanową grupę hamują c ą lipazę :
Mieszaninę n-heksadekanolu (28,41 g, 117 mmoli) i N-metyloimidazolu (9,34 ml, 117 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (75 ml) dodawano powoli w cią gu 20 minut w warunkach bezwodnych do roztworu dichlorofosfonianu p-nitrofenylu (30 g, 117 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (60 ml). Kolbę reakcyjną chłodzono w łaźni wodnej podczas dodawania. Po zakończeniu dodawania łaźnię wodną usunięto i mieszaninę reakcyjną mieszano przez 2 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę glikolu polipropylenowego (C.cz. = 1000; 58,5 g, 58,5 mmola) i N-metyloimidazolu (9,3 ml, 117 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (150 ml) dodano do kolby reakcyjnej w warunkach bezwodnych. Mieszaninę mieszano przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę reakcyjną ekstrahowano zimnym nasyconym roztworem Na2SO4 (3 x 150 ml).
Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem magnezu. Siarczan magnezu usunięto metodą sączenia, a przesącz zebrano. Rozpuszczalnik usunięto z przesączu pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując 77 g produktu. Materiał suszono pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej przez 4 dni.
Następujące p-nitrofenylofosforany glikolu polipropylenowego wytworzono stosując powyższą procedurę.
T a b e l a 3:
Glikol polipropylenowy (PPG) mający p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę z rozmaitymi ugrupowaniami hydrofobowymi.
Przykład C.cz. PPG Ugrupowanie hydrofobowe (R) Stan fizyczny
49 1000 n-pentyl substancja półstała
50 1000 n-oktyl substancja półstała
51 1000 n-heksadecyl substancja półstała
52 1000 n-oktadecyl substancja półstała
53 2000 n-pentyl substancja półstała
54 2000 n-oktyl substancja półstała
55 2000 n-heksadecyl substancja półstała
56 2000 n-oktadecyl substancja półstała
P r z y k ł a d 57
Wytwarzanie polimeru glikolu polietylenowego mającego p-nitrofenylofosfonianową grupę hamującą lipazę i mającego pentylowe ugrupowania hydrofobowe:
A. Wytwarzanie n-pentylofosfonianu O,O-dimetylu:
Fosfonian O,O-dimetylu (220 g, 2 mole) dodano kroplami do zawiesiny NaH (48 g, 2 mole) w bezwodnym THF (600 ml) pod osłoną azotu. Po 1 godzinie dodano powoli 1-bromopentan (248 ml, 2 mole) w THF (400 ml) i mieszaninę reakcyjną ogrzewano w temperaturze wrzenia przez 12 godzin. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem, dodano eter dietylowy (1 l) i sole usunięto metodą sączenia. Roztwór eterowy przemyto wodą (3 x 100 ml), warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu. Eter usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem, i surowy produkt oczyszczono metodą destylacji pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując 171 g n-pentylofosfonianu O,O-dimetylu.
B. Wytwarzanie dichlorku n-pentylofosfonowego:
n-Pentylofosfonian O,O-dimetylu (158 g, 0,88 mola) i N,N-dimetyloformamid (700 mg) rozpuszczono w chlorku tionylu (200 ml) i powstałą mieszaninę ogrzewano w temperaturze wrzenia przez 48 godzin. Substancje lotne usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej i surowy produkt oczyszczono metodą destylacji otrzymując bezbarwną ciecz (135 g).
C. Wytwarzanie glikolu polietylenowego mającego p-nitrofenylo-n-pentylofosfonianowe grupy hamujące lipazę:
Do roztworu dichlorku n-pentylofosfonowego (2,65 g, 14 mmoli) w 40 ml bezwodnego dichlorometanu dodano jasno-pomarańczową sól sodową p-nitrofenolu (2,3 g, 14 mmoli) w warunkach bezwodnych. Jasnopomarańczowy kolor znikł w ciągu 5-10 minut. Po 45 minutach mieszaninę glikolu
PL 193 453 B1 polietylenowego (C.cz. = 8400; 56 g, 7 mmoli) i N-metyloimidazolu (1,5 ml, 20 mmoli) dodano w temperaturze pokojowej i mieszano przez 24 godziny. Mieszaninę reakcyjną przemyto 2% roztworem K2CO3 (6 x 100 ml), a następnie nasyconym roztworem NaCl (6 x 100 ml).
Warstwę organiczną wysuszono nad Na2SO4, rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując lepką ciecz. Produkt wylano do 200 ml eteru dietylowego i mieszano przez 10 minut. Porcję eteru zdekantowano i procedurę powtórzono jeszcze trzy razy. Produkt otrzymano jako biały proszek, który suszono pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej przez tydzień.
Tą procedurą wytworzono następujące polimery glikolu polietylenowego mające p-nitrofenylofosfonianowe grupy hamujące lipazę.
T a b e l a 4:
Glikole polietylenowe mające p-nitrofenylofosfonianowe grupy hamujące lipazę z pentylowym ugrupowaniem hydrofobowym.
Przykład PEG Ugrupowanie hydrofobowe (R) Stan fizyczny
57 8400 n-pentyl proszek
58 3400 n-pentyl proszek
59 1500 n-pentyl substancja półstała
60 1000 n-pentyl substancja półstała
P r z y k ł a d 61
Wytwarzanie polimeru PLURONLC® mającego p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę przyłączoną łącznikiem n- pentylo-1,5-dioksylowym i mającego n-heksadecylowe ugrupowanie hydrofobowe:
Kolbę okrągłodenną 1 l napełniono wodorkiem sodu (4,0 g jako 60% dyspersja NaH w oleju mineralnym, 0,1 mola), a następnie przemyto bezwodnym heptanem (3 x 25 ml). Dodano bezwodny tetrahydrofuran (THF) (150 ml) i zawiesinę mieszano w temperaturze pokojowej pod osłoną azotu. Roztwór PLURONLC® (C.cz. = 1900, 50% wag. glikolu polietylenowego, 50% wag. glikolu polipropylenowego; 95 g, 0,05 mola) w bezwodnym THF (200 ml) dodano w temperaturze pokojowej. Roztwór octanu bromopentylu (20,9 g, 0,1 mola) w bezwodnym THF (50 ml) dodano do mieszaniny reakcyjnej w warunkach bezwodnych. Mieszanin ę reakcyjną ogrzewano w temperaturze wrzenia 60°C przez 16 godzin. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem, i powstały szlam zawieszono w dichlorometanie (300 ml). Substancje stał e usunięto metodą sączenia, a przesącz przemyto wodą (3 x 100 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu i rozpuszczalnik usunięto otrzymując lepką, bladobrunatną ciecz (110 g). Ten materiał rozpuszczono w metanolu (500 ml) i potraktowano wodnym roztworem 4N NaOH (40 ml). Po 4 godzinach mieszaninę reakcyjną zakwaszono stężonym HCl, i rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem. Lepki olej rozpuszczono w dichlorometanie, który przemyto wodą (4 x 100 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad siarczanem sodu i rozpuszczalnik usunięto otrzymując bis-5-hydroksypentoksy PLURONIC® jako bladobrunatną lepką ciecz (98 g).
W osobnej kolbie dodawano powoli mieszaninę n-heksadekanolu (7,02 g, 29,0 mmoli) i N-metyloimidazolu (2,3 ml, 290 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (40 ml) w ciągu 20 minut w warunkach bezwodnych do roztworu dichlorofosfonianu p-nitrofenylu (7,41 g, 29,0 mmoli) w bezwodnym chlorku metylenu (100 ml). Kolbę reakcyjną chłodzono w łaźni wodnej podczas dodawania. Po zakończeniu dodawania łaźnię wodną usunięto, a mieszaninę reakcyjną mieszano przez 2 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę bis-5-hydroksypentoksy PLURONIC® (30 g, 14,48 mmola) i N-metyloimidazolu (2,3 ml) w bezwodnym chlorku metylenu (150 ml) dodano do kolby reakcyjnej w warunkach bezwodnych. Mieszaninę mieszano przez 24 godziny w temperaturze pokojowej, następnie przemyto nasyconym roztworem NaCl (3 x 100 ml). Warstwę organiczną zebrano i osuszono nad siarczanem sodu. Rozpuszczalnik usunięto otrzymując lepką ciecz. Przemyto ją wrzącym heksanem (6 x 50 ml), a produkt wysuszono pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej przez noc otrzymując bladożółtą lepką ciecz (39 g).
Stosując powyższą procedurę wytworzono następujące przykłady.
PL 193 453 B1
T a b e l a 5:
Polimery PLURONIC® mające p-nitrofenylofosforanowe 15 grupy hamujące lipazę przyłączone rozmaitymi grupami dialkoksylowymi i mające rozmaite ugrupowania hydrofobowe.
Przykład C.cz. PLU Ugrupowanie hydrofobowe (R) Dialkoksy (Z1)
61 1900 n-pentyl n-pentylo-1,5-dioksy
62 1900 n-decyl n-pentylo-1,5-dioksy
63 1900 n-heksadecyl n-pentylo-1,5-dioksy
64 1900 n-pentyl n-undecylo-1, 10-dioksy
65 1900 n-decyl n-undecylo-1, 10-dioksy
66 1900 n-heksadecyl n-undecylo-1,10-dioksy
P r z y k ł a d 67
Wytwarzanie polimeru glikolu polietylenowego mającego p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę przyłączoną łącznikiem n-pentylo-1,5-dioksylowym i mającego n-heksadecylowe ugrupowanie hydrofobowe:
Kolbę okrągłodenną 1 l napełniono wodorkiem sodu (7,67 g jako 60% dyspersja NaH w oleju mineralnym, 0,19 mola) i przemyto bezwodnym heptanem (3 x 25 ml). Dodano bezwodny THF (200 ml) i zawiesinę mieszano w temperaturze pokojowej pod osłoną azotu. Roztwór glikolu polietylenowego (C.cz. = 1500; 150 g, 0,1 mola) w bezwodnym THF (200 ml) dodano w temperaturze pokojowej w warunkach bezwodnych. Mieszaninę mieszano przez l godzinę w temperaturze pokojowej, następnie do mieszaniny reakcyjnej dodano roztwór octanu bromopentylu (41,82 g, 0,2 mola) w bezwodnym THF (100 ml). Mieszaninę reakcyjną ogrzewano w temperaturze wrzenia 60°C przez 16 godzin. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem i powstałą zawiesinę zawieszono w dichlorometanie (300 ml).
Substancje stałe usunięto metodą sączenia, a przesącz przemyto wodą (3 x 100 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu i rozpuszczalnik usunięto otrzymując lepką, bladobrunatną ciecz (110 g). Ten materiał rozpuszczono w metanolu (500 ml) i potraktowano wodnym roztworem 4N NaOH (80 ml). Po 4 godzinach mieszaninę reakcyjną zakwaszono stężonym HCl i rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem. Lepki olej rozpuszczono w dichlorometanie i przemyto wodą (4 x 100 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad siarczanem sodu i rozpuszczalnik usunięto otrzymując bis-5-hydroksypentoksy glikol polietylenowy jako bladobrunatną lepką ciecz (98 g). Grupę p-nitrofenylofosforanową dodano w sposób analogiczny do procedury w przykładzie 61.
Stosując powyższą procedurę wytworzono następujące przykłady.
T a b e l a 6:
Glikole polietylenowe mające p-nitrofenylo-fosforanową grupę hamującą lipazę przyłączoną łącznikiem dialkoksylowym i mające rozmaite ugrupowania hydrofobowe.
Przykład C.cz. PEG Ugrupowania hydrofobowe (R) Dialkoksy (Z1)
67 1500 n-heksyl n-pentylo-1,5-dioksy
68 1500 n-dodecyl n-pentylo-1,5-dioksy
69 1500 n-heksadecyl n-pentylo-1,5-dioksy
P r z y k ł a d 75
Wytwarzanie polimeru BRIJ® mającego p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę i heksadecylowe ugrupowanie hydrofobowe:
Dichlorofosfonian p-nitrofenylu (75 g, 0,29 mola) w bezwodnym dichlorometanie (300 ml) dodano do przedmuchanej N2 trójszyjnej kolby okrągłodennej 1 l z elementem mieszającym. Roztwór heksadekanolu (71,03 g, 0,29 mola) i N-metyloimidazolu (23,35 ml, 0,29 mola) w bezwodnym dichlorometanie (250 ml) dodawano kroplami w okresie 2 godzin. Mieszaninę reakcyjną mieszano przez dodatkową 1 godzinę przed wlaniem do rozdzielacza 1 l. Na dnie oddzielił się chlorowodorek N-metyloimidazolu jako olej, który został usunięty z rozdzielacza. Dichlorometan usunięto z mieszaniny w temperaturze
PL 193 453 B1 niższej niż 30°C pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując bursztynowy olej, który rozpuszczono w heksanie (400 ml) i umieszczono na noc w zamrażarce. Następnie mieszaninę reakcyjną rozmrożono i część rozpuszczalną przesączono usuwając kryształy dichlorofosfonianu p-nitrofenylu. Rozpuszczalnik usunięto z przesączu na wyparce obrotowej w temperaturze niższej niż 35°C otrzymując chlorofosfonian n-heksylu i p-nitrofenylu.
Kolbę 500 ml z elementem mieszającym przedmuchano N2. Dodano chlorofosfonian n-heksylu i p-nitrofenylu (20 g, 0,043 mola) w bezwodnym THF (25 ml), a następnie powoli dodawano roztwór BRIJ® 58 (eter polioksyetyleno(20) cetylowy; 48,56 g, 0,043 mola) i N-metyloimidazolu (3,45 ml, 0,043 mola) w bezwodnym THF (200 ml). Mieszaninę reakcyjną mieszano w temperaturze pokojowej przez 24 godziny. Rozpuszczalnik usunięto w temperaturze niższej niż 35°C na wyparce obrotowej, a oleistą pozostałość rozpuszczono w metanolu (50 ml). Dodano roztwór metanolu/wody (85 ml : 15 ml, 200 ml). Metodą sączenia zebrano stały p-nitrofenylofosforan bis-n,n-diheksylu. Następnie odpędzono metanol na wyparce obrotowej w temperaturze niższej niż 35°C. Wodę usunięto z produktu metodą liofilizacji.
Przykłady w tabeli 7 mogą być przedstawione następującą strukturą i zostały wytworzone powyższą procedurą.
T a b e l a 7:
Polimery BRIJ® mające końcową p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę z rozmaitymi ugrupowaniami hydrofobowymi.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe
70 BRIJ® 98 (n=19, x=11) n-dodecyl
71 BRIJ® 98 (n=19, x=11) n-heksadecyl
72 BRIJ® 35 (n=22, x=11) n-dodecyl
13 BRIJ® 35 (n=22, x=11) n-heksadecyl
74 BRIJ® 58 (n=19, x=15) n-dodecyl
75 BRIJ® 58 (n=19, x=15) n-heksadecyl
P r z y k ł a d 76
Wytwarzanie polimeru IGEPAL® mającego końcową p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę z n-heksadecylowymi ugrupowaniami hydrofobowymi:
Kolbę 500 ml z elementem mieszającym przedmuchano N2 i dodano chlorofosfonian n-heksadecylu i p-nitrofenylu (20 g, 0,043 mola) w bezwodnym THF (25 ml), a następnie powoli dodano roztwór IGEPAL® 720 (32,41 g, 0,043 mola) i N-metyloimidazolu (3,45 ml, 0,043 mola) w THF (200 ml). Mieszaninę reakcyjną mieszano w temperaturze pokojowej przez 24 godziny. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej i oleisty produkt rozpuszczono w metanolu (50 ml). Do produktu dodano roztwór metanolu/wody (85 : 200 ml). Odsączono p-nitrofenylofosforan bis-n,n-diheksylu, a następnie odpędzono metanol pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze niższej niż 35°C. Wodę usunięto z produktu metodą liofilizacji.
Przykłady w tabeli 8 mogą być przedstawione następującą strukturą i zostały wytworzone powyższą procedurą.
PL 193 453 B1
T a b e l a 8:
Polimery IGEPAL® mające końcową p-nitrofenylo-fosforanową grupę hamującą lipazę z rozmaitymi ugrupowaniami hydrofobowymi.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe (R)
76 IGEPAL® 720 (n=11) n-dodecyl
77 IGEPAL® 720 (n=11) n-heksadecyl
78 IGEPAL® 890 (n=39) n-dodecyl
79 IGEPAL® 890 (n=39) n-heksadecyl
P r z y k ł a d 80
Wytwarzanie polimerów [poli(glikol propylenowy)-blok - poli(glikol etylenowy)-blok - poli(glikol propylenowy)] mających p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę z n-heksylowym ugrupowaniem hydrofobowym:
Kolbę 500 ml z elementem mieszającym przedmuchano N2 i dodano chlorofosfonian n-heksylu i p-nitrofenylu (20 g, 0,043 mola) w bezwodnym THF (25 ml), a nastę pnie powoli dodano roztwór polimeru [poli(glikol propylenowy)-blok - poli(glikol etylenowy)-blok - poli(glikol propylenowy)] (przeciętny c.cz. = 2000, 50% wag. glikolu etylenowego; 49,36 g, 0,0215 mola) i N-metyloimidazolu (3,45 ml, 0,043 mola) w THF (200 ml).
Mieszaninę reakcyjną mieszano przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej, a oleistą pozostałość rozpuszczono w metanolu (50 ml). Dodano mieszaninę roztworu metanolu:wody 85:15 (200 ml) i odsączono osad p-nitrofenylofosforanu bis-n,n-diheksylu. Metanol odpędzono na wyparce obrotowej w temperaturze niższej niż 35°C, a wodę usunięto z produktu metodą liofilizacji.
Stosując powyższą procedurę wytworzono następujące przykłady.
T a b e l a 9:
Polimery poli(glikol propylenowy)-blok - poli(glikol etylenowy)-blok - poli(glikol propylenowy) (PPG-PEG-PPG) mające p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę z rozmaitymi ugrupowaniami hydrofobowymi.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe (R)
80 PPG-PEG-PPG 2000 heksyl
81 PPG-PEG-PPG 2000 dodecyl
82 PPG-PEG-PPG 2000 heksadecyl
P r z y k ł a d 83
Wytwarzanie polimeru PLURONIC® mającego chlorofosfonianowe grupy hamujące lipazę i decylowe ugrupowanie hydrofobowe:
Po przedmuchaniu N2 do kolby 3 l dodano roztwór tlenochlorku fosforu (30 g, 0,1956 mola) w bezwodnym THF (100 ml) i mieszaninę ochłodzono do 0-5°C. Mieszaninę świeżo destylowanej trietyloaminy (27,27 ml, 0,1956 mola) i 1-dekanolu (30,97 g, 0,1956 mola) w bezwodnym THF (300 ml) dodano kroplami z maksymalną szybkością 75 ml/godzinę, utrzymując temperaturę roztworu 5°C. Po zakończeniu dodawania dodano mieszaninę PLURONIC® (przeciętny c.cz. = 2900, 142 g, 0,0489 mola)
PL 193 453 B1 i świeżo destylowanej trietyloaminy (13,7 ml, 0,0978 mola) w bezwodnym THF (300 ml) z maksymaln ą szybkością 75 ml/godzinę, utrzymując temperaturę roztworu 5°C. Po zakończeniu dodawania pozostawiono reakcję do ogrzania do temperatury pokojowej i mieszano przez 24 godziny. Chlorowodorki trietyloamoniowe usunięto metodą sączenia. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze 30°C, a powstały olej przemyto heksanem (6 x 250 ml) dla usunięcia nieprzereagowanego dichlorofosfonianu n-decylu. Produkt, chlorofosfonian bis-n-decylu PLURONIC®, wysuszono pod silnie zmniejszonym ciśnieniem (0,003 mm Hg) przez noc w temperaturze pokojowej.
P r z y k ł a d 84
Wytwarzanie polimeru PLURONIC® mającego N-hydroksy-sukcynoimidylofosforanowe grupy hamujące lipazę i decylowe ugrupowanie hydrofobowe:
Kolbę 125 ml z elementem mieszającym przedmuchano N2 i 25 dodano roztwór chlorofosfonianu bis-n-decylu PLURONIC® (wytworzony jak w przykładzie 82; 30 g, 4,0178 mola). N-hydroksysukcynoimid (2,05 g, 0,0178 mola) dodano jako substancję stałą i zostawiono do rozpuszczenia. Dodano świeżo destylowaną trietyloaminę (2,48 ml, 0,0178 mola), a 5 mieszaninę reakcyjną zostawiono mieszając przez 0,5 godziny. Odsączono chlorowodorek trietyloamoniowy i z przesączu usunięto THF na wyparce obrotowej w temperaturze 30°C. Produkt suszono pod silnie zmniejszonym ciśnieniem (0,003 mm Hg) przez noc.
P r z y k ł a d 85
Wytwarzanie polimerów PLURONIC® mających pirydoksynylofosforanowe grupy hamujące lipazę i decylowe ugrupowanie hydrofobowe:
Kolbę 125 ml z elementem mieszającym przedmuchano N2 i dodano chlorofosfonian bis-n-decylu PLURONIC® (wytworzony jak w przykładzie 82; 30 g, 0,0178 mola) w bezwodnym dichlorometanie (30 ml). Chlorowodorek pirydoksyny (2,54 g, 0,0178 mola) dodano jako substancję stałą i zostawiono do rozpuszczenia. Dodano śwież o destylowaną trietyloaminę (4,96 ml, 0,0356 mola) i mieszaninę reakcyjną mieszano przez 2 godziny. Odsączono chlorowodorek trietyloamoniowy, a rozpuszczalnik usunięto na wyparce obrotowej w temperaturze niższej niż 35°C. Olej rozpuszczono w THF (50 ml) i przesączono ponownie. Rozpuszczalnik usunięto na wyparce obrotowej, a produkt suszono pod silnie zmniejszonym ciśnieniem (0,003 mm Hg) przez noc w temperaturze pokojowej.
Tabela 10 podaje polimery wytworzone w przykładach 83, 84 i 85.
T a b e l a 10:
Polimery PLURONIC® mające rozmaite grupy opuszczające.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe (R) Grupa opuszczająca (Y-R1)
83 PLU 2900 decyl chlorek
84 PLU 2900 decyl N-hydroksysukcynyl
85 PLU 2900 decyl pirydoksynyl
P r z y k ł a d 86:
Wytwarzanie polimeru PLURONIC® mającego (3-laktonową grupę hamującą lipazę (Schemat I) związek pośredni 4
PL 193 453 B1
Związek pośredni 1:
10-Hydroksymetylodekanian l (20 g, 98 mmoli), benzyloksy 2,2,2-trichloroacetimidan (30 g, 118 mmoli), dichlorometan (50 ml) i cykloheksan (100 ml) dodano do kolby okrągłodennej 1 l. Mieszaninę mieszano przez 5 minut w temperaturze pokojowej. Kwas trifluorometanosulfonowy (1,3 ml) dodano do mieszaniny reakcyjnej w atmosferze azotu. W ciągu paru minut temperatura wzrosła od pokojowej do 37°C. Reakcję kontrolowano metodą TLC (heksan : octan etylu; 9:1). Po 16 godzinach materiał wyjściowy znikł zupełnie. Substancje stałe oddzielono od reakcji metodą sączenia, a przesącz przemyto wodnym nasyconym roztworem wodorowęglanu sodu (3 x 100 ml), a następnie wodą (3 x 100 ml). Fazę organiczną zebrano i osuszono nad bezwodnym siarczanem sodu. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej. Pozostałość oczyszczono na kolumnie z żelem krzemionkowym stosując gradient eteru/heksanu jako fazę ruchomą. Produkt eluowano z kolumny
PL 193 453 B1 w eterze-heksanie (8 : 2). Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując 10-benzyloksy metylodekanian (związek pośredni 1) jako substancję stałą (32 g).
Związek pośredni 2:
Związek pośredni 1 (30 g) zmydlano w roztworze 6N NaOH (100 ml) przez 12 godzin, a następnie zakwaszono stężonym HCl. Produkt ekstrahowano chloroformem (5 x 100 ml). Warstwy organiczne połączono i osuszono nad siarczanem sodu. Rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując kwas 10-benzyloksydekanowy (związek pośredni 2) (27 g), który zastosowano wprost w następnej reakcji.
Związek pośredni 3:
n-Butylolit w heksanie (roztwór 1,6 M, 68 ml, 108 mmoli) dodano kroplami do roztworu N,N-diizopropyloaminy (15,14 ml, 108 mmoli) w THF (50 ml), który utrzymywano w temperaturze 0°C. Po zakończeniu dodawania mieszaninę mieszano przez dodatkowe 10 minut w temperaturze 0°C. Mieszaninę ochłodzono do -50°C, a następnie dodano kroplami roztwór związku pośredniego 2 (15 g, 54 mmole) w 100 ml THF. Po zakończeniu dodawania mieszaninę zostawiono do ogrzania do temperatury pokojowej, a następnie mieszano przez 1 godzinę. Mieszaninę ochłodzono do -78°C, i dodano kroplami roztwór aldehydu decylowego (8,44 g, 54 mmole) w THF (40 ml). Po 3 godzinach mieszania w temperaturze -78°C, mieszaninę ogrzano do temperatury pokojowej, a następnie reakcję zatrzymano dodatkiem nasyconego roztworu chlorku amonu (50 ml). Mieszaninę ekstrahowano eterem dietylowym (5 x 50 ml). Warstwy organiczne połączono i osuszono nad siarczanem sodu, przesączono i odparowano otrzymując związek pośredni 3 (22 g).
Związek pośredni 4:
Chlorek benzenosulfonylu (9,8 g, 56 mmoli) dodano do roztworu związku pośredniego 3 (12 g, 28 mmoli) w pirydynie (200 ml) utrzymywanego w temperaturze 0°C. Po zakończeniu dodawania mieszaninę trzymano w lodówce w temperaturze 4°C przez 24 godziny, a następnie wylano na tłuczony lód (2 kg) i mieszano w temperaturze pokojowej przez 20 minut. Mieszaninę ekstrahowano eterem dietylowym (6 x 150 ml). Połączone warstwy organiczne przemyto wodą, osuszono nad siarczanem sodu, przesączono i zatężono pod zmniejszonym ciśnieniem.
Produkt oczyszczono na kolumnie z żelem krzemionkowym stosując heksan : octan etylu (9 : 1), otrzymując związek pośredni 4 jako olej (9,8 g). IR: 1825 cm-1.
Związek pośredni 5:
Związek pośredni 4 (9,5 g, 22 mmole) rozpuszczono w chlorku metylenu, a następnie uwodorniano pod ciśnieniem wodoru 50 psi (344 kPa) przez 4 godziny stosując 10% Pd/C (1 g) jako katalizator. Roztwór przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując związek pośredni 5 jako olej (6,9 g).
Związek pośredni 6:
PLURONIC® (C.cz. = 1900; 570 g; 300 mmoli) w THF (500 ml) dodano kroplami do mieszanej zawiesiny wodorku sodu (15 g) w THF (150 ml). Po zakończeniu dodawania mieszaninę mieszano przez dodatkowe 30 minut w temperaturze pokojowej. Dodano kroplami roztwór 4-bromomaślanu etylu (117 g, 600 mmoli) i mieszaninę mieszano w temperaturze 60°C przez 16 godzin. Po ochłodzeniu do temperatury pokojowej, sole odsączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując jasnobrunatny lepki materiał, który zawieszono w dichlorometanie (1 l) i przemyto wodą (3 x 200 ml). Warstwę organiczną zebrano i osuszono nad siarczanem sodu, przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując związek pośredni 6 jako lepką ciecz (770 g).
Związek pośredni 7:
Związek pośredni 6 rozpuszczono w roztworze metanolu (1 l) i 50% roztworze wodorotlenku sodu (100 ml), a następnie mieszano przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Mieszaninę reakcyjną zakwaszono stężonym HCl i rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem. Pozostałość ponownie zawieszono w dichlorometanie (1 l), a następnie przemyto wodą (4 x 250 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad siarczanem sodu, przesączono, i rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując związek pośredni 7 jako lepką ciecz (650 g).
Związek pośredni 8:
Chlorowodorek 1-(3-dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimidu (4,8 g, 25 mmoli) dodano pod osłoną azotu do roztworu związku pośredniego 7 (20,72 g, 10 mmoli) w dichlorometanie (100 ml) w kolbie okrągłodennej. Mieszaninę mieszano przez 10 minut w temperaturze pokojowej, a następnie dodano N-hydroksysukcynoimid (2,3 g). Mieszaninę mieszano przez 12 godzin w temperaturze pokojowej,
PL 193 453 B1 a następnie przeniesiono do rozdzielacza i przemyto wodą (3 x 30 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu, przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując 22 g związku pośredniego 8, którego użyto wprost w następnym etapie.
P r z y k ł a d 86:
Trietyloaminę (3 ml) dodano do roztworu związku pośredniego 8 (22 g, ~ 10 mmoli) i związku pośredniego 5 (6,5 g, 20 mmoli) w dichlorometanie (150 ml). Mieszaninę mieszano przez 4 godziny w temperaturze pokojowej, a następnie wylano do rozdzielacza i przemyto 5% HCl (3 x 20 ml) i wodą (3 x 50 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad siarczanem sodu, przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem. Przykład 86 otrzymano jako lepką ciecz (26 g). Ten materiał zastosowano wprost w testach in vitro i in vivo.
P r z y k ł a d 87:
Wytwarzanie polimeru PLURONIC® mającego disiarczkową grupę hamującą lipazę:
P r z y k ł a d 87
Związek pośredni 9:
1-(3-Dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimid (1,1 g, 5 mmoli) dodano do roztworu kwasu 5,5'-ditiobis(2-nitrobenzoesowego) (3,96 g, 10 mmoli) w dichlorometanie (100 ml). Po 10 minutach dodano N-hydroksysukcynoimid (0,5 g, 5 mmoli) i reakcję mieszano przez 6 godzin w temperaturze pokojowej. Mieszaninę reakcyjną wylano do rozdzielacza, a następnie przemyto wodą (3 x 20 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu, przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując związek pośredni 9, którego użyto wprost w następnym etapie.
Roztwór PLURONIC® (C.cz. = 1900; 9,5 g; 5 mmoli) w dichlorometanie (50 ml), a następnie trietyloaminę (0,5 ml) dodano do roztworu związku pośredniego 9 w dichlorometanie (100 ml). Mieszaninę mieszano przez 16 godzin w temperaturze pokojowej, a następnie wylano do rozdzielacza i przemyto wodą (3 x 30 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu, przesączono i usunięto rozpuszczalnik pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując przykład 87 jako lepką ciecz (12 g).
P r z y k ł a d 88:
Wytwarzanie polimeru PLURONIC® mającego bezwodnikową grupę hamującą lipazę:
PL 193 453 B1
Związek pośredni 10:
1-(3-Dimetyloaminopropylo)-3-etylokarbodiimid (2,2 g, 10 mmoli) dodano do roztworu bezwodnika kwasu 1,2,3-benzenotrikarboksylowego (2,1 g, 10 mmoli) w dichlorometanie (100 ml). Mieszaninę mieszano przez 10 minut, a następnie dodano N-hydroksysukcynoimid (1,0 g, 10 mmoli) i reakcję mieszano przez 6 godzin w temperaturze pokojowej. Mieszaninę reakcyjną wylano do rozdzielacza, a następnie przemyto wodą (3 x 20 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu, przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując związek pośredni 10, którego użyto wprost w następnym etapie.
Roztwór PLURONIC® (C.cz. = 1900; 9,5 g; 5 mmoli) i trietyloaminę (0,5 ml,) w dichlorometanie (50 ml) dodano do roztworu związku pośredniego 10 w dichlorometanie (100 ml). Mieszaninę mieszano przez 16 godzin w temperaturze pokojowej, a następnie wylano do rozdzielacza i przemyto wodą (3 x 30 ml). Warstwę organiczną wysuszono nad bezwodnym siarczanem sodu, przesączono, a rozpuszczalnik usunięto pod zmniejszonym ciśnieniem otrzymując przykład 88 (11,2 g) jako lepką ciecz.
TEST IN VITRO
Procedura 1: Tributyryna jako substrat
Potencjalne inhibitory aktywności lipazy trzustkowej oceniano stosując sposób miareczkowania wykorzystujący przyrząd pH Stat (Radiometer America, Westlake OH). Substrat (1 ml tributyryny) dodano do 29,0 ml buforu Tris-HCl (pH 7,0) zawierającego 100 mM NaCl, 5 mM CaCl2, i 4 mM taurodeoksycholanu sodu. Ten roztwór mieszano przez 5 minut przed dodaniem 210 jednostek wieprzowej lipazy trzustkowej (Sigma, 21000 jednostek/mg) rozpuszczonych w buforze testowym. Uwalnianie kwasu masłowego przez lipazę kontrolowano w okresie 10 minut miareczkując układ testowy do stałego pH 7,0 przy użyciu 0,02 M NaOH. Aktywność enzymu wyrażano jako milirównoważniki dodanej zasady na minutę na gram enzymu. W kolejnych testach, zmieniające się ilości inhibitora rozpuszczano albo w tributyrynie albo w buforze, zależnie od charakterystyki rozpuszczalności związku i dodawano do układu testowego w chwili zero.
Procedura 2: Oliwa jako substrat
Potencjalne inhibitory aktywności lipazy trzustkowej oceniano stosując sposób miareczkowania wykorzystujący przyrząd pH Stat (Radiometer America, Westlake, OH). Substrat (15 ml emulsji oliwy zawierającej 80 mM oliwy i 2 mM kwasu oleinowego, rozpuszczonej i poddanej działaniu ultradźwięków w buforze zawierającym 10 mM Tris-HCl pH 8,0, 110 mM NaCl, 10 mM CaCl2, 2 mM lecytyny, 1,32 mM cholesterolu, 1,92 mM glikocholanu sodu, 1,28 mM taurocholanu sodu, 2,88 mM glikodeoksycholanu sodu i 1,92 mM taurodeoksycholanu sodu) dodano do 15 ml buforu testowego (Tris-HCl pH 8,0 zawierającego 110 mM NaCl i 10 mM CaCl2). Ten roztwór mieszano przez 4 minuty przed dodaniem 1050 jednostek wieprzowej lipazy trzustkowej (Sigma, 21000 jednostek/mg) rozpuszczonych w buforze testowym. Hydrolizę triglicerydu kontrolowano w okresie 30 minut miareczkując układ testowy do stałego pH 8,0 przy użyciu 0,02M NaOH. Aktywność enzymu wyrażano jako milirównoważniki dodanej zasady na minutę na gram enzymu. W kolejnych testach wytwarzano roztwory podstawowe inhibitora albo w etanolu albo w DMSO, i zmienne ilości dodawano do układu testowego w chwili zero.
Stosując albo procedurę 1 albo 2 prowadzono testy jak opisano wyżej, i uzyskiwano procent hamowania przez porównanie aktywności enzymu w obecności i pod nieobecność inhibitora. Testowano trzy stężenia inhibitora i wykreślano procent hamowania względem log stężenia inhibitora w celu określenia stężenia, przy którym zachodzi hamowanie 50% (IC50). Testowano następujące związki, mające wskazane wartości IC50 przedstawione w tabelach 11-17.
PL 193 453 B1
T a b e l a 11:
PRZYKŁAD POLIMER UGRUPOWANIE HYDROFOBOWE
Nitrofenylofosforany glikolu polietylenowego (PEG) IC50 (μΜ) dla tributyryny C50 (μΜ) dla oliwy
10 PEG 1000 fosforan pentylu 400 ***
11 PEG 1000 fosforan heksylu na ***
12 PEG 1000 fosforan oktylu 538 ***
5 PEG 1000 fosforan decylu na ***
6 PEG 1000 fosforan dodecylu 466 ***
7 PEG 1000 fosforan tetradecylu 1142 * * *
8 PEG 1000 fosforan heksadecylu 67 320
9 PEG 1000 fosforan oktadecylu 98 ***
13 PEG 1000 fosforan dokozylu 345 * * *
14 PEG 1000 fosforan cholesterylu 172 * * *
16 PEG 1500 fosforan pentylu na ***
19 PEG 1500 fosforan heksadecylu 215 ***
29 PEG 1500 fosforan oktadecylu 73 ***
24 PEG 1500 fosforan 5-fenylo-1-pentylu 24 942
22 PEG 1500 fosforan farnezylu na ***
23 PEG 1500 fosforan cholesterylu 307 ***
15 PEG 3400 fosforan pentylu 559 ***
1 PEG 8400 fosforan pentylu 455 ***
Nitrofenylofosforany glikolu polipropylenowego (PPG):
49 PPG 1000 fosforan pentylu 4000 ***
53 PPG 2000 fosforan pentylu 52000 ***
Polimery PLURONIC® mające grupę nitrofenylofosforanową:
32 PLU 1100 fosforan oktylu 61 601
31 PLU 1100 fosforan decylu 174 454
30 PLU 1100 fosforan dodecylu 55 400
29 PLU 1100 fosforan tetradecylu 133 1200
33 PLU 1100 fosforan heksylu 155 353
39 PLU 1900 fosforan pentylu 3,6 9000
34 PLU 1900 fosforan oktylu 3,8 379
35 PLU 1900 fosforan decylu 2,4 105
36 PLU 1900 fosforan dodecylu 2,3 183
37 PLU 1900 fosforan tetradecylu 3,6 187
38 PLU 1900 fosforan heksadecylu 22 196
44 PLU 2900 fosforan dodecylu 1,7 286
PL 193 453 B1
43 PLU 2900 fosforan tetradecylu 1,7 260
42 PLU 2900 fosforan heksadecylu 0,9 106
41 PLU 2900 fosforan oktadecylu 1,0 174
48 PLU 4400 fosforan dodecylu 8,4 ***
47 PLU 4400 fosforan tetradecylu 5,0 ***
46 PLU 4400 fosforan heksadecylu 1,4 ***
45 PLU 4400 fosforan oktadecylu 4,8 ***
39 PLU 4400 fosforan pentylu 325 ***
40 PLU 8400 fosforan heksylu 84 ***
Nitrofenylofosfoniany glikolu polietylenowego (PEG):
60 PEG 1000 fosfonian pentylu 836 na
59 PEG 1500 fosfonian pentylu na ***
PLU = PLURONIC®
PEG = Glikol polietylenowy PPG = Glikol polipropylenowy
PLU 1100 (10% wag. monomeru PEG, 90% wag. monomeru PPG) PLU 1900 (50% wag. monomeru PEG, 50% wag. monomeru PPG) PLU 2900 (40% wag. monomeru PEG, 60% wag. monomeru PPG) PLU 4400 (40% wag. monomeru PEG, 60% wag. monomeru PPG) PLU 8400 (80% wag. monomeru PEG, 20% wag. monomeru PPG) na = nieaktywny *** = nie testowano
T a b e l a 12:
Wartości IC50 dla polimerów PLURONIC® mających p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę i łączniki dialkoksylowe.
Przykład C. cz. PLU Ugrupowanie hydrofobowe (R) Dialkoksy (Z1) LC50 (μΜ) dla tributyryny LC50 (μΜ) dla oliwy
61 1900 n-pentyl n-pentylo-1,5-dioksy 1,8 na
62 1900 n-decyl n-pentylo-1,5-dioksy 1,1 289
63 1900 n-heksadecyl n-pentylo-1,5-dioksy 1,1 278
66 1900 n-heksadecyl n-undecylo-1, 10-dioksy 0,8 182
T a b e l a 13:
Wartości IC50 dla polimerów glikolu polietylenowego mających p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę i łączniki dialkoksylowe.
Przy- kład C.cz. PEG Ugrupowanie hydrofobowe (R) Dialkoksy (Z1) IC50 (μΜ) dla tributyryny IC50 (μΜ) dla oliwy
67 1500 n-heksyl n-pentylo-1,5-dioksy 71 na
68 1500 n-dodecyl n-pentylo-1,5-dioksy 58 371
69 1500 n-heksadecyl n-pentylo-1,5-dioksy 49 184
PL 193 453 B1
T a b e l a 14:
Wartości IC50 dla polimerów BRLJ® mających p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe (R) IC50 (μΜ) dla tributyryny IC50 (μΜ) dla oliwy
70 BRIJ® 98 (n=19, x=17) n-dodecyl *** ***
71 BRIJ® 98 (n=19, x=17) n-heksadecyl 250 266
72 BRIJ® 35 (n=22, x=11) n-dodecyl 1800 275
13 BRIJ® 35 (n=22, x=11) n-heksadecyl 1900 392
74 BRIJ® 58 (n=19, x=15) n-dodecyl 1100 168
75 BRIJ® 58 (n=19, x=15) n-heksadecyl 2200 428
T a b e l a 15:
Wartości IC50 dla polimerów LGEPAL® mających p-nitrofenylofosforanową grupę hamującą lipazę.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe (R) LC50 (HM) dla tributyryny LC50 (HM) dla oliwy
76 IGEPAL® 720 (n=11) n-dodecyl *** ***
77 IGEPAL® 720 (n=11) n-heksadecyl *** ***
78 IGEPAL® 890 (n=39) n-dodecyl 344 148
79 IGEPAL® 890 (n=39) n-heksadecyl *** ***
T a b e l a 16:
Wartości IC50 dla polimerów PPG-PEG-PPG mających p-nitrofenylofosforanowe grupy hamujące lipazę.
Przykład Polimer Ugrupowanie hydrofobowe (R) IC50 (μΜ) dla tributyryny IC50 (μΜ) dla oliwy
81 PPG-PEG-PPG 2000 n-dodecyl 2,4 283
82 PPG-PEG-PPG 2000 n-heksadecyl 1,9 384
T a b e l a 17:
Wartości IC50 dla polimerów PLURONIC® mających n-heksadecylowe ugrupowania hydrofobowe i rozmaite grupy opuszczające.
Przykład C.cz. PLU Grupa opuszczająca (Z - R1) IC50 (μΜ) dla tributyryny IC50 (μΜ) dla oliwy
83 2900 chlorek 0,9 968
84 2900 N-hydroksysukcynyl 0,9 na
85 2900 pirydoksynyl 0,09 936
Badania in vivo
Oceniano zdolność związków z przykładów 8, 35, 36, 41, 42, 48, 62, 63, 67-69, 71-75, 78, 81 i 82 do zmniejszania dziennego przyjmowania kalorii przez zwiększanie wydalania tłuszczu w kale, oraz do zmniejszania przyrostu wagi ciała, w odniesieniu do grupy porównawczej, u normalnych szczurów w okresie sześciu dni. Samce szczurów rasy Sprague-Dawley (w wieku pięciu do sześciu tygodni) hodowano osobno i żywiono ad libitum sproszkowaną „dietą wysokotłuszczową” złożoną z normalnej karmy dla gryzoni uzupełnionej o 15% wagowo tłuszczu (składającego się z 55% oleju kokosowego i 45% oleju kukurydzianego). Po pięciu dniach żywienia zwierząt tą dietą, zwierzęta zważono
PL 193 453 B1 i posortowano do grup leczonych lub porównawczych (6-8 zwierzą t w grupie, przy czym każda grupa miała równą średnią wagę ciała). Zwierzęta leczono przez sześć dni testowanymi związkami, które dodano do „diety wysokotłuszczowej” w stężeniach (wag.) równych 0,0% (grupa kontrolna), 0,3 lub 1,0 procent diety.
Dla każdego zwierzęcia zmierzono spożycie pokarmu w trakcie badań i wyrażono jako całkowitą ilość pokarmu spożytego przez zwierzę w ciągu 6 dni leczenia. Na 6 dzień każde zwierzę zważono i obliczono cał kowity przyrost wagi ciał a w okresie leczenia.
Próbki kału szczurów zebrano w końcowych trzech dniach z sześciu dni leczenia lekiem. Próbki liofilizowano i zmielono na drobny proszek. Odważano pół grama próbki i przenoszono do gilz ekstrakcyjnych. Próbki ekstrahowano w ekstraktorze z przyspieszanym rozpuszczalnikiem (ASE 200 Ac -celerated Solvent Extractor, Dyonex Corporation, Sunnyvale, CA) stosując 95% etanolu, 5% wody i 100 mM KOH. Próbkę ekstrahowano w ciągu 17 minut w temperaturze 150°C pod ciśnieniem 1500 psi (102 atm). Porcję ekstraktu przeniesiono do probówki zawierającej nadmiar molowy HCl. Następnie próbkę odparowano i odtworzono skład w roztworze detergentu zawierającym 2% Triton X-1200, 1% eteru polioksyetylenolaurylowego i 0,9% NaCl. Następnie kwasy tłuszczowe zmierzono ilościowo enzymatycznie zestawem kolorymetrycznym (NEFAC, Wako Chemical GmbH, Neuss, Niemcy). Tabela 18 zawiera wartości dla tłuszczu w kale/tłuszczu spożytego zarówno dla zwierząt porównawczych jak i testowych (oznaczone enzymatycznie jak opisano wyżej), oraz spożycie pokarmu i przyrost wagi ciała przez 6 dni w porównaniu ze zwierzętami porównawczymi.
Obliczanie proporcji tłuszczu w kale/tłuszczu spożytego:
Stężenia kwasów tłuszczowych z testu enzymatycznego są wyrażone w mmolach/ml. Następnie liczbę mmoli/ml kwasu tłuszczowego mnoży się przez liczbę mililitrów ekstraktu wytworzonego z 500 mg próbki otrzymując całkowitą liczbę mmoli kwasów tłuszczowych. Wartość całkowitej liczby mmoli kwasów tłuszczowych przekształca się w całkowitą liczbę miligramów kwasów tłuszczowych stosując przeciętną masę cząsteczkową średnio- do długołańcuchowych kwasów tłuszczowych. Wartość koryguje się o wszelkie rozcieńczenia dokonane podczas przerobu próbki. Gdy wyniki wyraża się jako mg/g kału, to całkowitą liczbę miligramów kwasów tłuszczowych mnoży się przez 2. Gdy wyniki wyraża się jako całkowitą liczbę miligramów kwasów tłuszczowych wydalonych w ciągu 24 godzin, to wartość w mg/g kału mnoży się przez wagę kału w gramach wydalonego w ciągu 24 godzin. Gdy wyniki wyraża się jako tłuszcz wydalony jako procent tłuszczu spożytego w ciągu 24 godzin, to całkowitą wagę tłuszczu wydalonego w ciągu 24 godzin dzieli się przez wagę kwasów tłuszczowych spożytych w cią gu 24 godzin i mnoż y przez 100.
T a b e l a 18:
Wyniki in vivo dla wybranych polimerów mających grupy hamujące lipazę.
Numer związku Klasa Szkielet Hydrofob Tłuszcz w kale % spożytego Całkowite spożycie pokarmu % porównawczego Całkowita zmiana wagi % porównawczej
1 2 3 4 5 6 7
8 fosforan PEG1000 heksadecyl 2 ± 0,5 87 ± 2,8** 66 ± 9,8**
67 fosforan C5 PEG 1500 heksyl 3 ± 0,7 97 ± 7,8 127 ± 64,4
68 fosforan C5 PEG 1500 dodecyl 2 ± 0,5 99 ± 12,2 82 ± 15,4*
69 fosforan C5 PEG 1500 heksadecyl 3 ± 0,8 105 ± 5,5 92 ± 8,7
35 fosforan PLU 1900 decyl 23 ± 5 58 ± 10** -9 ± 17**
36 fosforan PLU 1900 dodecyl 12 ± 3 62 ± 7** 16 ± 18**
PL 193 453 B1 ciąg dalszy tabeli 18
1 2 3 4 5 6 7
42 fosforan PLU 2900 heksadecyl 13 ± 2,5** 86 ± 8,6** 75 ± 16,1**
41 fosforan PLU 2900 oktadecyl 15 ± 3,5** 91 ± 6,2* 82 ± 6,6**
48 fosforan PLU 4400 dodecyl 4 ± 1** 96 ± 7 79 + 8**
81 fosforan PPG-PEG-PPG dodecyl 2 ± 0 92 ± 8 73 ± 11**
82 fosforan PPG-PEG-PPG heksadecyl 2 ± 0 114 ± 8 129 ± 12**
62 fosforan C5 PLU 1900 decyl 12 ± 3,2 47 ± 2,6 -24 ± 13,6**
63 fosforan C5 PLU 1900 heksadecyl 6 ± 1** 90 ± 5** 77 ± 13,3**
71 fosforan Brij 98 heksadecyl 2 ± 1 96 ± 6 85 ± 11
72 fosforan Brij 35 dodecyl 1 ± 0 95 ± 5 73 + 13**
73 fosforan Brij 35 heksadecyl 1 ± 0 106 ± 10 122 ± 17**
74 fosforan Brij 5S dodecyl 2 ± 0 90 + 5** 61 ± 14
75 fosforan Brij 58 heksadecyl 1 ± 0 104 ± 8 100 ± 12
78 fosforan Igepal 890 dodecyl 1 ± 0 93 ± 5 72 ± 13**
Porów- nawcze 2-2 100 100
Zwierzęta leczono dawką 1,0% * p < 0,05 ** p<0,01
O ile niniejszy wynalazek został szczegółowo przedstawiony i opisany w odniesieniu do jego korzystnych wykonań, to dla specjalistów będzie zrozumiałe, że można w nim poczynić rozmaite zmiany w postaci i szczegółach nie odbiegając od ducha i zakresu wynalazku zdefiniowanego przez załączone zastrzeżenia. Nie stosując nic ponad rutynowe doświadczenia specjaliści rozpoznają lub będą mogli stwierdzić wiele równoważników określonych wykonań wynalazku opisanych specyficznie niniejszym. Takie równoważniki są objęte zakresem zastrzeżeń patentowych.

Claims (14)

1. Zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów, podstawionego jedną lub więcej niż jedną grupą hamującą lipazę, wybraną spośród pochodnej kwasu fosforowego, bezwodnika cyklicznego, grupy endocyklicznej, sulfonianu, grupy kwasu borowego i grupy kwasu fenolowego, do wytwarzania leku odpowiedniego do podawania doustnego do leczenia hipertriglicerydemii lub otyłości u ssaków.
2. Zastosowanie według zastrz. 1, w którym grupa hamująca lipazę reaguje z lipazą i tworzy wiązanie kowalencyjne.
3. Zastosowanie według zastrz. 2, w którym grupa hamująca lipazę tworzy wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu w miejscu aktywnym lipazy.
4. Zastosowanie według zastrz. 2, w którym grupa hamująca lipazę tworzy wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu, która nie znajduje się w miejscu aktywnym lipazy.
5. Zastosowanie według zastrz. 1, w którym grupa hamująca lipazę jest izosterem kwasu tłuszczowego.
6. Zastosowanie według zastrz. 1, w którym polimer stanowi polimer wiążący tłuszcz.
7. Zastosowanie według zastrz. 1, w którym grupa hamująca lipazę ma następującą strukturę:
PL 193 453 B1 w której, 5
R5 oznacza grupę alkilową wybraną spośród grup butylowej, pentylowej, heksylowej, heptylowej, oktylowej, nonylowej, decylowej, dodecylowej, tetradecylowej, heksadecylowej, oktadecylowej, dokozanylowej, cholesterylowej, farnezylowej, aralkilowej, fenylowej i naftylowej, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną albo podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną;
Z oznacza atom tlenu, grupę alkilenową, atom siarki, -SO3-, -CO2, -NR2-, -CONR2-, PO4H- lub grupę bromoalkilooctanową; i
R2 oznacza atom wodoru, niepodstawioną lub podstawioną grupę alifatyczną albo niepodstawioną lub podstawioną grupę aromatyczną, przy czym grupa aromatyczna jest wybrana spośród grup fenylowej, pirydynylowej, furanylowej, tiofenylowej fenantrylowej, antracylowej, naftylowej, 2-benzotienylowej, 3-benzotienylowej, 2-benzofuranylowej, 3-benzofuranylowej, 2-indolilowej, 3-indolilowej, 2-chinolinylowej, 3-chinolinylowej, 2-benzotiazolowej, 2-benzooksazolowej, 2-benzimidazolowej, 1-izochinolinylowej, 3-chinolinylowej, 1-izoindolilowej, 3-izoindolilowej i akrydynylowej; i gdzie grupa alifatyczna oznacza prostołańcuchową, rozgałęzioną lub cykliczną grupę C4-C3Q węglowodorową.
8. Kompozycja farmaceutyczna zawierająca farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, znamienna tym, że zawiera polimer wybrany spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów, podstawiony jedną lub więcej niż jedną grupą hamującą lipazę, wybraną spośród pochodnej kwasu fosforowego, bezwodnika cyklicznego, grupy endocyklicznej, sulfonianu, grupy kwasu borowego i grupy kwasu fenolowego, do podawania doustnego do leczenia hipertriglicerydemii lub otyłości u ssaków.
9. Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że grupa hamująca lipazę jest grupą reagującą z lipazą i tworzącą wiązanie kowalencyjne.
10. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że grupa hamująca lipazę jest grupą tworzącą wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu w miejscu aktywnym lipazy.
11. Kompozycja według zastrz. 9, znamienna tym, że grupa hamująca lipazę jest grupą tworzącą wiązanie kowalencyjne z resztą aminokwasu, która nie znajduje się w miejscu aktywnym lipazy.
12. Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że grupa hamująca lipazę jest izosterem kwasu tłuszczowego.
13. Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że polimer stanowi polimer wiążący tłuszcz.
14. Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że grupa hamująca lipazę ma następującą strukturę:
w której, 5
R5 oznacza grupę alkilową wybraną spośród grup butylowej, pentylowej, heksylowej, heptylowej, oktylowej, nonylowej, decylowej, dodecylowej, tetradecylowej, heksadecylowej, oktadecylowej, dokozanylowej, cholesterylowej, farnezylowej, aralkilowej, fenylowej i naftylowej, podstawioną lub niepodstawioną grupę alifatyczną albo podstawioną lub niepodstawioną grupę aromatyczną;
Z oznacza atom tlenu, grupę alkilenową, atom siarki, -SO3-, -CO2, -NR2-, -CONR2-, PO4H- lub grupę bromoalkilooctanową; i
R2 oznacza atom wodoru, niepodstawioną lub podstawioną grupę alifatyczną albo niepodstawioną lub podstawioną grupę aromatyczną,
PL 193 453 B1 przy czym grupa aromatyczna jest wybrana spośród grup, fenylowej, pirydynylowej, furanylowej, tiofenylowej, fenantrylowej, antracylowej, naftylowej, 2-benzotienylowej, 3-benzotienylowej, 2-benzofuranylowej, 3-benzofuranylowej, 2-indolilowej, 3-indolilowej, 2-chinolinylowej, 3-chinolinylowej, 2-benzotiazolowej, 2-benzooksazolowej, 2-benzimidazolowej, 1-izochinolinylowej, 3-chinolinylowej, 1-izoindolilowej, 3-izoindolilowej i akrydynylowej; i gdzie grupa alifatyczna oznacza prostołańcuchową, rozgałęzioną lub cykliczną grupę C4-C30 węglowodorową.
PL99344022A 1998-01-09 1999-01-06 Zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów oraz kompozycja farmaceutyczna PL193453B1 (pl)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US537998A 1998-01-09 1998-01-09
US09/166,510 US6267952B1 (en) 1998-01-09 1998-10-05 Lipase inhibiting polymers
PCT/US1999/000195 WO1999034786A2 (en) 1998-01-09 1999-01-06 Lipase inhibiting polymers

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL344022A1 PL344022A1 (en) 2001-09-24
PL193453B1 true PL193453B1 (pl) 2007-02-28

Family

ID=26674279

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL99344022A PL193453B1 (pl) 1998-01-09 1999-01-06 Zastosowanie polimeru wybranego spośród polietylenu, polipropylenu i ich kopolimerów oraz kompozycja farmaceutyczna

Country Status (20)

Country Link
US (6) US6267952B1 (pl)
EP (1) EP1043982B1 (pl)
JP (1) JP2002500182A (pl)
KR (1) KR100620634B1 (pl)
CN (2) CN1636574A (pl)
AT (1) ATE308979T1 (pl)
AU (1) AU747016B2 (pl)
BR (1) BR9907233A (pl)
CA (1) CA2318416A1 (pl)
DE (1) DE69928219T2 (pl)
DK (1) DK1043982T3 (pl)
ES (1) ES2253872T3 (pl)
HK (1) HK1079706A1 (pl)
HU (1) HUP0101128A3 (pl)
IL (1) IL137098A (pl)
NO (1) NO20003511L (pl)
NZ (1) NZ505296A (pl)
PL (1) PL193453B1 (pl)
RU (1) RU2207861C2 (pl)
WO (1) WO1999034786A2 (pl)

Families Citing this family (82)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6267952B1 (en) * 1998-01-09 2001-07-31 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Lipase inhibiting polymers
PE20010588A1 (es) * 1999-09-10 2001-06-23 Procter & Gamble Conjugados polimericos inhibidores de enzimas proteoliticas y lipoliticas
JP5020451B2 (ja) * 1999-09-10 2012-09-05 ザ プロクター アンド ギャンブル カンパニー 酵素インヒビター
AR025609A1 (es) 1999-09-13 2002-12-04 Hoffmann La Roche Formulaciones lipidas solidas
AR025587A1 (es) 1999-09-13 2002-12-04 Hoffmann La Roche Formulaciones en dispersion que contienen inhibidores de lipasa
EP1132389A1 (en) 2000-03-06 2001-09-12 Vernalis Research Limited New aza-indolyl derivatives for the treatment of obesity
PT1296656E (pt) 2000-06-27 2006-12-29 Hoffmann La Roche Processo para a preparação de uma composição
EP1307263B1 (en) 2000-07-28 2005-04-20 F. Hoffmann-La Roche Ag New use of lipase inhibitors
CZ302087B6 (cs) 2000-07-28 2010-10-06 F. Hoffmann-La Roche Ag Farmaceutický prípravek obsahující orlistat spolu se sekvestrantem žlucových kyselin pro použití pro lécení a prevenci obezity
CN1323661C (zh) 2000-08-09 2007-07-04 霍夫曼-拉罗奇有限公司 脂酶抑制剂的用途
US6900226B2 (en) 2000-09-06 2005-05-31 Hoffman-La Roche Inc. Neuropeptide Y antagonists
US6660731B2 (en) * 2000-09-15 2003-12-09 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Pyrazole compounds useful as protein kinase inhibitors
US7473691B2 (en) * 2000-09-15 2009-01-06 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Pyrazole compounds useful as protein kinase inhibitors
DK1318997T3 (da) 2000-09-15 2006-09-25 Vertex Pharma Pyrazolforbindelser der er nyttige som proteinkinase-inhibitorer
WO2002044152A1 (en) 2000-10-16 2002-06-06 F. Hoffmann-La Roche Ag Indoline derivatives and their use as 5-ht2 receptor ligands
GB0030710D0 (en) 2000-12-15 2001-01-31 Hoffmann La Roche Piperazine derivatives
HUP0400639A3 (en) 2000-12-21 2010-03-29 Vertex Pharma Pyrazole compounds useful as protein kinase inhibitors and pharmaceutical compositions containing them
CN1250549C (zh) 2000-12-27 2006-04-12 霍夫曼-拉罗奇有限公司 吲哚衍生物及其作为5-ht2b和5-ht2c受体配体的应用
GB0106177D0 (en) 2001-03-13 2001-05-02 Hoffmann La Roche Piperazine derivatives
AU2002338896B2 (en) 2001-05-21 2006-04-27 F.Hoffman-La Roche Ag Quinoline derivatives as ligands for the neuropeptide Y receptor
US20030027786A1 (en) 2001-06-06 2003-02-06 Karsten Maeder Lipase inhibiting composition
US6787558B2 (en) 2001-09-28 2004-09-07 Hoffmann-La Roche Inc. Quinoline derivatives
GB0202015D0 (en) 2002-01-29 2002-03-13 Hoffmann La Roche Piperazine Derivatives
KR100659428B1 (ko) 2002-02-04 2006-12-19 에프. 호프만-라 로슈 아게 Npy 길항제로서의 퀴놀린 유도체
KR20040084896A (ko) * 2002-02-06 2004-10-06 버텍스 파마슈티칼스 인코포레이티드 Gsk-3의 억제제로서 유용한 헤테로아릴 화합물
CN1625563A (zh) * 2002-02-19 2005-06-08 宝洁公司 新的真菌脂肪酶
KR100611854B1 (ko) 2002-02-28 2006-08-11 에프. 호프만-라 로슈 아게 신경 펩타이드 y(npy) 수용체 길항제로서의 티아졸유도체
ATE468336T1 (de) * 2002-03-15 2010-06-15 Vertex Pharma Azolylaminoazine als proteinkinasehemmer
WO2003105860A1 (en) * 2002-06-14 2003-12-24 Novo Nordisk A/S Pharmaceutical use of boronic acids and esters thereof
MY141867A (en) 2002-06-20 2010-07-16 Vertex Pharma Substituted pyrimidines useful as protein kinase inhibitors
EP1560816A1 (en) 2002-07-05 2005-08-10 F. Hoffmann-La Roche Ag Quinazoline derivatives
DE60308387T2 (de) * 2002-08-02 2007-09-20 Vertex Pharmaceuticals Inc., Cambridge Pyrazolenthaltende zusammensetzungen und ihre verwendung als gsk-3 inhibitoren
EP1539722A1 (en) 2002-08-07 2005-06-15 F. Hoffmann-La Roche Ag Thiazole derivatives
US20060134062A1 (en) * 2002-11-19 2006-06-22 Huval Chad C Polymeric boronic acid derivatives as lipase inhibitors
WO2004072029A2 (en) * 2003-02-06 2004-08-26 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Pyrazolopyridazines useful as inhibitors of protein kinases
GB0314967D0 (en) 2003-06-26 2003-07-30 Hoffmann La Roche Piperazine derivatives
WO2005014593A1 (en) 2003-08-12 2005-02-17 F. Hoffmann-La Roche Ag Thiazole derivatives as npy antagonists
WO2005014592A1 (en) 2003-08-12 2005-02-17 F. Hoffmann-La Roche Ag 2-amino-5-benzoylthiazole npy antagonists
US20050239859A2 (en) * 2003-09-03 2005-10-27 Solvay Pharmaceuticals Gmbh Novel medical uses of 4,5-dihydro-1h-pyrazole derivatives having cb1- antagonistic activity
US20050143441A1 (en) * 2003-10-27 2005-06-30 Jochen Antel Novel medical combination treatment of obesity involving 4,5-dihydro-1H-pyrazole derivatives having CB1-antagonistic activity
US20050124660A1 (en) * 2003-10-27 2005-06-09 Jochen Antel Novel medical uses of compounds showing CB1-antagonistic activity and combination treatment involving said compounds
US7517890B2 (en) 2003-11-20 2009-04-14 Children's Hospital Medical Center GTPase inhibitors and methods of use
JP2007513184A (ja) * 2003-12-04 2007-05-24 バーテックス ファーマシューティカルズ インコーポレイテッド プロテインキナーゼのインヒビターとして有用なキノキサリン
US20050244367A1 (en) * 2004-05-03 2005-11-03 Ilypsa, Inc. Phospholipase inhibitors localized in the gastrointestinal lumen
US7462394B2 (en) * 2004-05-06 2008-12-09 Ppg Industries Ohio, Inc. Method of stabilizing metal pigments against gassing
EP1773900A4 (en) * 2004-07-30 2007-08-29 Basf Ag POLYMERIC BORONIC ACID DERIVATIVES AND USE IN THE MANUFACTURE OF PAPER
RU2007119315A (ru) * 2004-10-25 2008-11-27 Зольвай Фармасьютиклз Гмбх (De) Фармацевтические композиции, содержащие антагонисты каннабиноидного рецептора св1 и открыватели калиевых каналов, предназначенные для лечения сахарного диабета типа i, ожирения и связанных с ними состояний
KR100895758B1 (ko) 2005-05-03 2009-04-30 에프. 호프만-라 로슈 아게 5-ht2 리간드로서 테트라사이클릭 아자피라지노인돌린
AU2006275528B2 (en) 2005-07-29 2012-03-08 Children's Hospital Medical Center GTPase inhibitors and methods of use and crystal structure of Rac-1 GTPase
JP2009504707A (ja) 2005-08-18 2009-02-05 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲー H3受容体調節剤として有用なチアゾリルピペリジン誘導体
AU2006279376B2 (en) * 2005-08-18 2011-04-14 Vertex Pharmaceuticals Incoporated Pyrazine kinase inhibitors
AR056499A1 (es) * 2005-09-06 2007-10-10 Serapis Farmaceuticals Ltd Compuestos
TW200734327A (en) * 2005-11-03 2007-09-16 Vertex Pharma Aminopyrimidines useful as kinase inhibitors
EP1968967B1 (en) 2005-11-30 2011-04-27 F. Hoffmann-La Roche AG 1,1-dioxo-thiomorpholinyl indolyl methanone derivatives for use as h3 modulators
ATE466007T1 (de) 2005-11-30 2010-05-15 Hoffmann La Roche 5-substituierte indol-2-carbonsäureamidderivate
BRPI0619268A2 (pt) 2005-11-30 2011-09-20 Hoffmann La Roche compostos, processo para a sua manufatura, composições farmacêuticas, método para o tratamento e/ou prevenção de enfermidades que estão associadas com a modulação de receptores de h3, uso dos compostos e método para o tratamento ou prevenção de obesidade e de diabetes do tipo ii em um ser humano ou animal
US7579351B2 (en) 2005-12-09 2009-08-25 Hoffmann-La Roche Inc. Tricyclic amide derivatives
ES2334580T3 (es) 2005-12-15 2010-03-12 F. Hoffmann-La Roche Ag Derivados de pirrolo(2,3-c)piridina.
AU2006326067A1 (en) 2005-12-16 2007-06-21 F. Hoffmann-La Roche Ag Pyrrolo [2 , 3-b] pyridine derivatives as H3 receptor modulators
US7432255B2 (en) 2006-05-16 2008-10-07 Hoffmann-La Roche Inc. 1H-indol-5-yl-piperazin-1-yl-methanone derivatives
AU2007267184A1 (en) 2006-05-30 2007-12-06 F. Hoffmann-La Roche Ag Piperidinyl pyrimidine derivatives
US7514433B2 (en) 2006-08-03 2009-04-07 Hoffmann-La Roche Inc. 1H-indole-6-yl-piperazin-1-yl-methanone derivatives
WO2008057940A1 (en) * 2006-11-02 2008-05-15 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Aminopyridines and aminopyrimidines useful as inhibitors of protein kinases
US20080146559A1 (en) 2006-12-08 2008-06-19 Li Chen 4,5,6,7-Tetrahydro-Thieno [2,3-C] Pyridine Derivatives
WO2008077086A1 (en) * 2006-12-19 2008-06-26 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Aminopyrimidines useful as inhibitors of protein kinases
WO2008112642A1 (en) * 2007-03-09 2008-09-18 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Aminopyrimidines useful as inhibitors of protein kinases
EP2134709A1 (en) * 2007-03-09 2009-12-23 Vertex Pharmaceuticals, Inc. Aminopyridines useful as inhibitors of protein kinases
EP2137183B1 (en) * 2007-03-09 2011-09-28 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Aminopyrimidines useful as inhibitors of protein kinases
JP2010523700A (ja) 2007-04-13 2010-07-15 バーテックス ファーマシューティカルズ インコーポレイテッド キナーゼインヒビターとして有用なアミノピリミジン
AU2008247595A1 (en) * 2007-05-02 2008-11-13 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Aminopyrimidines useful as kinase inhibitors
CN101801959A (zh) * 2007-05-02 2010-08-11 沃泰克斯药物股份有限公司 可用作激酶抑制剂的氨基嘧啶类化合物
CN101679378A (zh) 2007-05-02 2010-03-24 沃泰克斯药物股份有限公司 用作激酶抑制剂的噻唑和吡唑
AU2008257044A1 (en) * 2007-05-24 2008-12-04 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Thiazoles and pyrazoles useful as kinase inhibitors
US7534788B2 (en) 2007-07-25 2009-05-19 Hoffmann-La Roche Inc. Benzofuran and benzothiophene-2-carboxylic acid amide derivatives
AR067762A1 (es) * 2007-07-31 2009-10-21 Vertex Pharma Proceso para preparar 5-fluoro-1h-pirazolo (3,4-b) piridin-3-amina y derivados de la misma
US8185398B2 (en) * 2007-12-31 2012-05-22 Intel-Ge Care Innovations Llc Reading device with shortcut read function
AU2009288200A1 (en) * 2008-09-03 2010-03-11 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Co-crystals and pharmaceutical formulations comprising the same
JP2013521796A (ja) * 2010-03-13 2013-06-13 イーストポンド・ラボラトリーズ・リミテッド 脂肪結合性組成物
CN102199172A (zh) * 2010-03-24 2011-09-28 金凯美(大连)医药科技有限公司 一种1-取代亚磷酰二氯的制备方法
WO2013166043A1 (en) 2012-05-02 2013-11-07 Children's Hospital Medical Center Rejuvenation of precursor cells
US10028503B2 (en) 2014-06-18 2018-07-24 Children's Hospital Medical Center Platelet storage methods and compositions for same
WO2021034616A1 (en) 2019-08-16 2021-02-25 Children' S Hospital Medical Center Methods of treating a subject with a cdc42-specific inhibitor

Family Cites Families (42)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NL7017227A (pl) 1969-12-27 1971-06-29
US3923972A (en) 1971-10-12 1975-12-02 Monsanto Co Method of lowering blood cholesterol level
US4211765A (en) * 1971-10-12 1980-07-08 Monsanto Company Method for controlling obesity
IT1052819B (it) 1975-12-12 1981-07-20 Fargal Pharmasint Lab Biochim Preparato inibitore dell assorbimento dei lipidi a base di dietilamminoetildestrano
US4265879A (en) 1977-09-13 1981-05-05 Monsanto Company Method for controlling blood triglycerides
US4302450A (en) 1979-01-15 1981-11-24 Hoffmann-La Roche Inc. Polyether ionophores as antiobesity and hypotriglyceridemic agents
US4218443A (en) 1979-01-15 1980-08-19 Hoffmann-La Roche Inc. Polyether ionophores as antiobesity and hypotriglyceridemic agents
AU7653081A (en) 1980-10-20 1982-04-29 Dow Chemical Company, The T-butylstyrene copolymers for controlling body weight of animals
US4432968A (en) 1980-10-20 1984-02-21 The Dow Chemical Company Weight control with fat imbibing polymers
US5597810A (en) 1984-12-27 1997-01-28 Hoffman; Allan S. Method for reducing absorption of undesired lipids in the gastrointestinal tract
US5200183A (en) 1987-11-19 1993-04-06 Oklahoma Medical Research Foundation Recombinant bile salt activated lipases
US5089163A (en) 1989-01-30 1992-02-18 Lever Brothers Company, Division Of Conopco, Inc. Enzymatic liquid detergent composition
US4959179A (en) 1989-01-30 1990-09-25 Lever Brothers Company Stabilized enzymes liquid detergent composition containing lipase and protease
US5063210A (en) 1989-04-20 1991-11-05 Lange Iii Louis G Use of sulfated polysaccharides to decrease cholesterol and fatty acid absorption
US5484777A (en) 1989-04-20 1996-01-16 Lange, Iii; Louis G. Pancreatic cholesterol esterase inhibitor
US5674482A (en) 1989-08-14 1997-10-07 Rhone-Poulenc Rorer Pharmaceuticals, Inc. Polymers with alkyl- or heteroalkyl -aryl backbone and pharmaceutical compositions incorporating same
JP3100057B2 (ja) 1989-08-29 2000-10-16 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア 新規な加水分解酵素阻害剤及び基質、並びにこれらを用いた分析方法及びキット
US5308766A (en) 1989-08-29 1994-05-03 The Regents Of The University Of California Hydrolytic enzyme inhibitors/inactivators and methods for using same
US5376640A (en) * 1989-12-25 1994-12-27 Nisshin Flour Milling Co., Ltd. Lipolytic enzyme inhibitors
US5260310A (en) 1990-02-26 1993-11-09 Hoffmann-La Roche Inc. Oxetanone compounds and pharmaceutical compositions containing them
DK244090D0 (da) 1990-10-09 1990-10-09 Novo Nordisk As Kemiske forbindelser
US5137716A (en) 1990-11-15 1992-08-11 Weisenfeld Michael S Method of reducing weight in mammals
ES2140449T3 (es) 1992-01-14 2000-03-01 Hisamitsu Pharmaceutical Co Reductor del nivel de colesterol.
CA2063499C (en) 1992-03-19 1996-06-18 Leon Edward St. Pierre Ingestible polymeric phosphonium salts for the lowering of blood cholesterol
JP2667351B2 (ja) 1992-03-24 1997-10-27 麒麟麦酒株式会社 食餌脂質消化吸収阻害剤および飲食品
EP0563731B1 (de) 1992-03-28 1995-11-15 Hoechst Aktiengesellschaft Arzneimittel aus Polyhydroxymethylenderivaten, Verfahren zu deren Herstellung und Verwendung
RU2066185C1 (ru) * 1993-01-11 1996-09-10 Институт пищевых веществ РАН Гиполипидемический энтеросорбент
US5618530A (en) 1994-06-10 1997-04-08 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Hydrophobic amine polymer sequestrant and method of cholesterol depletion
US5624963A (en) 1993-06-02 1997-04-29 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Process for removing bile salts from a patient and compositions therefor
US5607669A (en) 1994-06-10 1997-03-04 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Amine polymer sequestrant and method of cholesterol depletion
US5703188A (en) 1993-06-02 1997-12-30 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Process for removing bile salts from a patient and compositions therefor
US5569452A (en) 1993-08-31 1996-10-29 Tsrl, Inc. Pharmaceutical formulation having enhanced bile acid binding affinity
US5414068A (en) 1994-01-24 1995-05-09 Rohm And Haas Company Crosslinked anion exchange particles and method for producing the particles
TW474813B (en) 1994-06-10 2002-02-01 Geltex Pharma Inc Alkylated composition for removing bile salts from a patient
US5474993A (en) 1994-06-14 1995-12-12 Sterling Winthrop, Inc. Lactam inhibitors of cholesterol esterase
JPH0859458A (ja) 1994-08-25 1996-03-05 Zeria Pharmaceut Co Ltd インダン誘導体を含有する高脂血症治療剤
JP3532999B2 (ja) 1995-03-24 2004-05-31 株式会社ロッテ 新規なタンニン類およびこれを有効成分とするリパーゼ阻害剤
US5993675A (en) * 1997-12-31 1999-11-30 Hagerthy; Albert P. Fuel-water separator for marine and diesel engines
US6267952B1 (en) * 1998-01-09 2001-07-31 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Lipase inhibiting polymers
HUP0100890A3 (en) * 1998-01-09 2001-12-28 Genzyme Corp Cambridge Fat-binding polymers
US6299868B1 (en) * 1999-07-14 2001-10-09 Geltex Pharmaceuticals, Inc. Fat-binding polymers
US5942500A (en) * 1998-04-27 1999-08-24 Perry; Stephen C. Dietary composition to reduce dietary fats

Also Published As

Publication number Publication date
CN1636574A (zh) 2005-07-13
HUP0101128A2 (hu) 2002-01-28
JP2002500182A (ja) 2002-01-08
PL344022A1 (en) 2001-09-24
DE69928219T2 (de) 2006-07-27
NZ505296A (en) 2002-12-20
HK1079706A1 (zh) 2006-04-13
IL137098A0 (en) 2001-06-14
NO20003511D0 (no) 2000-07-07
CN1287489A (zh) 2001-03-14
ATE308979T1 (de) 2005-11-15
US20050085535A1 (en) 2005-04-21
US6267952B1 (en) 2001-07-31
KR20010034012A (ko) 2001-04-25
RU2207861C2 (ru) 2003-07-10
NO20003511L (no) 2000-09-07
DK1043982T3 (da) 2006-02-13
DE69928219D1 (de) 2005-12-15
WO1999034786A3 (en) 2000-02-03
IL137098A (en) 2006-07-05
AU747016B2 (en) 2002-05-09
HUP0101128A3 (en) 2003-01-28
WO1999034786A2 (en) 1999-07-15
US6572850B1 (en) 2003-06-03
CA2318416A1 (en) 1999-07-15
ES2253872T3 (es) 2006-06-01
US20030185789A1 (en) 2003-10-02
AU2105699A (en) 1999-07-26
BR9907233A (pt) 2000-10-17
US6875428B2 (en) 2005-04-05
KR100620634B1 (ko) 2006-09-13
US6352692B1 (en) 2002-03-05
EP1043982B1 (en) 2005-11-09
EP1043982A2 (en) 2000-10-18
US6558657B1 (en) 2003-05-06

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP1043982B1 (en) Lipase inhibiting polymers
EP1028717B1 (en) Unsubstituted polydiallylamine for treating hypercholesterolemia
EP0540580B1 (en) Polymeric drug delivery system
US20030175236A1 (en) Fat-binding polymers
EP1416942B1 (en) Amine polymers for treating gout and binding uric acid
EP1404685B1 (en) Aryl boronic acids for treating obesity
KR20000069826A (ko) 폴리(디알릴아민)계 담즙산 제거제
MXPA99011826A (es) Polimeros de polialilamiina para el tratamiento de la hipercolesterolemia.
US20060127353A1 (en) Fat-binding polymers
EP1140115B1 (en) Phospholipid complexes of proanthocyanidin a2 as antiatherosclerotic agents
AU740233B2 (en) Fat-binding polymers
EP0068453A2 (en) Compositions for treating kidney stones
WO1991003226A2 (en) Pharmaceutical compositions containing aromatic polymers and therapeutic methods using the same
MXPA00006680A (en) Lipase inhibiting polymers
HK1034043A (en) Lipase inhibiting polymers
WO2000038664A2 (en) Amine condensation polymer bile acid sequestrants
HK1065046B (en) Aryl boronic acids for treating obesity

Legal Events

Date Code Title Description
RECP Rectifications of patent specification
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20080106