PL202575B1 - Sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego oraz drobnoustroje - Google Patents

Sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego oraz drobnoustroje

Info

Publication number
PL202575B1
PL202575B1 PL353460A PL35346000A PL202575B1 PL 202575 B1 PL202575 B1 PL 202575B1 PL 353460 A PL353460 A PL 353460A PL 35346000 A PL35346000 A PL 35346000A PL 202575 B1 PL202575 B1 PL 202575B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
aspartate
reaction
pyruvate
acid
esters
Prior art date
Application number
PL353460A
Other languages
English (en)
Other versions
PL353460A1 (pl
Inventor
Klaus Bartsch
Original Assignee
Bayer Cropscience Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bayer Cropscience Ag filed Critical Bayer Cropscience Ag
Publication of PL353460A1 publication Critical patent/PL353460A1/pl
Publication of PL202575B1 publication Critical patent/PL202575B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/04Alpha- or beta- amino acids

Landscapes

  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazku
Wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego L-fosfinotrycyny, L-PPT) oraz drobnoustrojów. Związek L-PPT, jego sole i niektóre ich pochodne są chwastobójczo skutecznymi nieproteinogennymi aminokwasami, ich solami lub ich pochodnymi (DE-A-2717440). Postać L jest biologicznie czynna, podczas gdy postać D praktycznie nie wykazuje czynności (DE-A-2856260).
Wiadomo, że transaminazy dzięki swej dużej stereoselektywności i stosunkowo szerokiej specyficzności substratowej są szczególnie odpowiednie do użycia w chiralnej, enzymatycznej syntezie aminokwasów z ich odpowiednich prekursorów, ketokwasów. Wadą stosowania transaminaz w technice jest jednak to, że ich stała równowagi wynosi około 1, toteż żądany produkt może powstawać z wydajnoś cią tylko 50% (US-A-4 826 766). W EP-A-0 344 683 i w US-A-5 221 737 opisano wytwarzanie chwastobójczo czynnej substancji o nazwie L-fosfinotrycyna [kwas L-homoalanin-4-ylo(metylo)fosfinowy, kwas L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowy, L-PPT)], nieproteinogennego aminokwasu, przez transaminowanie odpowiedniego ketokwasu [kwasu (2-okso-4-((hydroksy)(metylo)fosfinoilo)masłowego, PPO)] z użyciem transaminazy 4-aminomaślan : 2-ketoglutaran (transaminaza GABA, EC 2.6.1.19) z Escherichia coli. Dla ilościowej przemiany potrzebny był wysoki molowy nadmiar donora grupy aminowej, glutaminianu, co utrudniało oczyszczanie produktu reakcji.
Możliwym rozwiązaniem tego problemu jest zastosowanie asparaginianu jako donora grupy aminowej, ponieważ odpowiedni szczawianooctan ketokwasu jest w środowisku wodnym nietrwały i samorzutnie ulega dekarboksylacji do pirogronianu. Przez usuwanie produktu reakcji ze ś rodowiska reakcji przesuwa się jej równowagę tak, że nie może zajść żadna reakcja odwrotna i można uzyskać przemianę ilościową także przy równomolowych ilościach ketokwasu i donorowego aminokwasu. Taki sposób opisano np. w EP-A-0 135 846.
Wykorzystanie tej zasady w enzymatycznej syntezie L-fosfinotrycyny było jednak do tej pory niemożliwe, ponieważ asparaginian nie akceptuje transaminazy GABA jako donora grupy aminowej, a nie był a znana ż adna inna transaminaza o równoczesnej specyficznoś ci wzglę dem L-fosfinotrycyny i asparaginianu.
Pewnym ułatwieniem było zaproponowanie sprzężonego układu dwóch enzymów składającego się z transaminazy specyficznej względem PPT i transaminazy glutaminian : szczawianooctan (GOT, EC 2.6.1.1) (EP-A-0 249 188 i EP-A-0 477 902). Przy prowadzeniu tej reakcji potrzebny w syntezie L-PPT glutaminian odzyskuje się z asparaginianu z użyciem GOT. Sama transaminaza asparaginianowa nie wykazuje żadnej specyficzności względem L-PPT/PPO. Samorzutna przemiana szczawianooctanu w pirogronian powoduje także przesunięcia równowagi całej reakcji w kierunku syntezy L-PPT. Produkt można otrzymać z wydajnością ilościową przy użyciu równomolowych ilości PPO i asparaginianu i przy wyraź nym niedomiarze glutaminianu.
W przypadku układu sprzężonych enzymów można wyraźnie zmniejszyć nadmiar donorowych aminokwasów w roztworze substratów w stosunku do akceptorowego ketokwasu PPO, co ułatwia obróbkę roztworu produktu. Jednakże przy prowadzeniu sprzężonej reakcji w dalszym ciągu jest konieczne stosowanie glutaminianu, który w równowadze z ketoglutaranem pozostaje w produkcie reakcji lub musi być oddzielony drogą kosztownego oczyszczania od aminokwasu L-PPT o bardzo podobnej budowie. Ponadto optymalizacja prowadzenia reakcji z dwoma enzymami z uwzględnieniem różnych parametrów kinetycznych jest trudniejsza niż w przypadku jednego enzymu.
Znane transaminazy asparaginianowe, takie jak np. GOT, nie wykazują żadnej reakcji wobec PPO, jednak nieoczekiwanie odkryto pewne transaminazy asparaginianowe pochodzące z drobnoustrojów, które z wysoką specyficznością akceptują jako substrat również L-PPT/PPO. Te enzymy katalizują bezpośrednie przeniesienie grupy α-aminowej asparaginianu do PPO.
Przedmiotem niniejszego wynalazku jest zatem sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego (L-fosfinotrycyny, L-PPT) o wzorze (I), jego pochodnych wybranych z grupy obejmującej estry i amidy kwasu karboksylowego i estry kwasu fosfinowego, i/lub ich soli
PL 202 575 B1 z kwasu 4-(hydroksymetylofosfinylo)-2-oksomasłowego (HMPB, PPO) o wzorze (II)
h3c P—ch2—ch2—c C-OH (II)
OH jego pochodnych wybranych z grupy obejmującej estry i amidy kwasu karboksylowego i estry kwasu fosfinowego i/lub ich soli jako akceptora, drogą enzymatycznego transaminowania w obecności asparaginianu jako donora, charakteryzujący się tym, że transaminowanie prowadzi się w obecności jednej lub większej liczby termostabilnych transaminaz asparaginianowych (Asp-TA) specyficznych względem akceptora, z wytworzeniem szczawianooctanu i związku o wzorze (I), jego pochodnych i/lub soli.
Korzystnie reakcję asparaginianu jako donora i związku o wzorze II, jego pochodnych wybranych z grupy obejmującej estry i amidy ugrupowania kwasu karboksylowego i estry ugrupowania kwasu fosfinowego i/lub soli jako akceptora prowadzi się w obecności jednej lub większej liczby termostabilnych transaminaz asparaginianowych specyficznych wobec akceptora.
Również korzystnie jest, aby specyficzne wobec akceptora termostabilne transaminazy asparaginianowe wykazywały nieznaczną specyficzność substratowa wobec pirogronianu, co umożliwia uniknięcie tworzenia się alaniny jako produktu ubocznego.
W korzystnym sposobie obecny pirogronian usuwa się z mieszaniny reakcyjnej drogą fizyczną , chemiczną i/lub enzymatyczną.
Korzystniej, reakcję pirogronianu z wytworzeniem acetylomleczanu prowadzi się w obecności jednej lub większej liczby syntaz acetylomleczanowych (ALS).
Także korzystniej reakcję pirogronianu z wytworzeniem acetaldehydu prowadzi się w obecności dekarboksylazy pirogronianowej.
W innej korzystnej odmianie reakcję pirogronianu z wytworzeniem acetylofosforanu prowadzi się w obecności oksydazy pirogronianowej.
Najkorzystniej reakcję pirogronianu prowadzi się w obecności termostabilnego enzymu.
Korzystny jest także sposób, w którym jedną lub większą liczbę transaminaz stosuje się w postaci unieruchomionej.
Przedmiotem wynalazku jest także drobnoustrój o numerze dostępu DSM 13353, drobnoustrój o numerze dostę pu DMS 13354, drobnoustrój o numerze dostę pu DSM 13355 oraz drobnoustrój o numerze dostę pu DSM 13356.
Sole L-PPT są na ogół solami kwasów nieorganicznych i/lub organicznych, albo mono- i disolami zasad nieorganicznych i/lub organicznych. Sole z kwasami (sole addycyjne z kwasami) to np. sole z kwasami nieorganicznymi, takimi jak kwas solny (chlorowodorek) lub kwas siarkowy (siarczany), lub kwas węglowy (węglany, wodorowęglany), albo z kwasami organicznymi, takimi jak kwas octowy (octany), kwas mrówkowy (mrówczany), kwas propionowy (propioniany) lub kwas winowy (winiany). Sole z zasadami to np. sole metali alkalicznych i sole metali ziem alkalicznych, sole amonowe, sole z aminami organicznymi, takimi jak aminy pierwszorzędowe, drugorzędowe lub trzeciorzędowe i czwartorzę dowe sole amoniowe.
Pochodnymi są np. estry L-PPT, zestryfikowane w ugrupowaniu kwasu fosfinowego, np. zestryfikowane C1-C12-alkanolami, takimi jak metanol, etanol, n-propanol, izopropanol, n-, izo- i sec- lub tertbutanol, albo C3-C6-cykloalkanolami, takimi jak cykloheksanol. Pochodnymi są także estry L-PPT, które alternatywnie lub dodatkowo są zestryfikowane w ugrupowaniu kwasu karboksylowego, np. wyżej wymienionymi alkoholami. Pochodnymi są także karboksyamid L-PPT i jego pochodne, ewentualnie N-alkilo- lub N,N-dialkiloamidy, korzystnie o 1-4 atomach węgla w części alkilowej.
Pochodnymi PPO są np. jego sole z zasadami nieorganicznymi i/lub organicznymi, przy czym odpowiednimi zasadami są zasady wymienione powyżej w odniesieniu do L-PPT. Pochodnymi są także np. estry PPO zestryfikowane w ugrupowaniu kwasu karboksylowego, w ugrupowaniu kwasu fosfinowego lub w obu ugrupowaniach. Odpowiednimi alkoholami do tworzenia grup estrowych są alkohole wymienione powyżej w odniesieniu do estrów L-PPT, a korzystnie wymienione alkanole. Pochodnymi są również karboksyamid PPO i jego pochodne zestryfikowane w ugrupowaniu kwasu fosfinowego i ewentualnie odpowiednie N-alkilo- lub N,N-dialkiloamidy.
PL 202 575 B1
Asparaginian korzystnie oznacza kwas L-asparaginowy lub jego sole, korzystnie sole metali alkalicznych. Jako asparaginian można także stosować kwas L-asparaginowy w mieszaninie z kwasem D-asparaginowym, np. jako racemiczny kwas D,L-asparaginowy.
Oba substraty (donor i akceptor) stosuje się np. w stosunku molowym 0,5-2:1 (w przeliczeniu na kwas L-asparaginowy : PPO), korzystnie 0,75-1,5:1, a zwłaszcza w stosunku w przybliżeniu równomolowym. W przypadku stosowania mieszanin kwasów L- i D-asparaginowych (soli) decydujące znaczenie ma molowa ilość kwasu L-asparaginowego (soli). Pochodne PPO stosuje się w molowej ilości odpowiadającej ilości PPO. Obecność glutaminianu w roztworze substratów nie jest konieczna. Niektóre z odkrytych enzymów wykazują doskonałą termostabilność. Dzięki temu można prowadzić proces w szerokim zakresie temperatury, np. w temperaturze 10-95°C, korzystnie 40-90°C, a zwłaszcza 60--85°C. W przypadku enzymów nie wykazujących szczególnej termostabilności, korzystnym zakresem temperatury jest 20-70°C, a zwłaszcza 30-40°C.
Szybkość reakcji można znacznie przyśpieszyć dzięki użyciu stosunkowo wysokiej temperatury, co ponadto umożliwia przebieg reakcji w stężonych roztworach substratu (10%) z wysoką wydajnością przestrzenno-czasową. Reakcję prowadzi się korzystnie przy wartości pH 6,5-10, korzystniej 7-9, a zwł aszcza 7,5-8,5, w odpowiednim ukł adzie buforowym o wartoś ci pKa 7-9, w buforze fosforanowym lub buforze Tris. Nieoczekiwanie te scharakteryzowane biochemicznie enzymy nie wykazują żadnej specyficzności względem GABA, a zatem różnią się wyraźnie od znanych transaminaz specyficznych względem L-PPT/PPO.
Szczególnie wysoki stopień przemiany w reakcji uzyskuje się, gdy unika się powstawania alaniny podczas transaminowania, względnie gdy jest ono minimalne. W tym celu można ewentualnie użyć optymalnych odmian ASP-TA bez specyficzności substratowej względem pirogronianu. Alternatywnie pirogronian można usunąć drogą fizyczną, np. z użyciem selektywnie przepuszczalnych błon i/lub drogą chemiczną lub enzymatyczną, np. drogą reakcji mieszaniny reakcyjnej z dekarboksylazą pirogronianową, oksydazą pirogronianową lub syntazą acetylomleczanową (patrz np. Taylor i inni TIBTECH (1998) tom 16, 412-418; Fotheringham i inni, CHIMICA OGGI/chemistry today (1997), 9/10, 33-38; WO 98/53088). Oczyszczenie produktu, L-PPT, z roztworu reakcyjnego można ewentualnie prowadzić znanymi i zwykłymi sposobami, np. przez ekstrakcję ketonem metylowo-izobutylowym lub drogą chromatografii kationowymiennej, np. z użyciem Amberlite® IR 120 (wytwórca Sigma).
Sposób według wynalazku objaśniono bliżej w poniższych przykładach, a wynalazek zdefiniowano w zastrzeżeniach patentowych. Poniższe przykłady nie ograniczają jednak istoty wynalazku.
P r z y k ł a d y
1.) Wyodrębnianie z gleby drobnoustrojów o aktywności transaminazy asparaginianowej specyficznej względem L-PPT
Porcję 1 g różnych próbek gleby (humus, glinka, piasek z wydm Schwanheimer, Frankfurt) ekstrahowano 10 ml 10 mM buforu (fosforan sodu o pH = 7,0) przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej. Wyodrębnionymi z ekstraktów wzbogaconymi hodowlami zaszczepiono następującą pożywkę:
mM glukoza mM bursztynian mM gliceryna mM PPO mM kwas L-asparaginowy ml/l roztworu A ml/l roztworu B
Roztwór A: 50 g/l K2HPO4
Roztwór B: 2,5 g/l MgSO4
0,5 g/l NaCl ml/l roztworu podstawowego zawierającego:
g/l FeSO4 x 7 H2O
0,22 g/l MnSO4 x H2O
0,1 g/l H3BO3
0,1 g/l Na2MoO4 x 2 H2O
0,18 g/l ZnSO4 x 7 H2O
0,16 g/l CuSO4 x 5 H2O
0,1 g/l CoCl2 x 6 H2O ml/l 1N HCl
PL 202 575 B1
Hodowle inkubowano przez 3-5 dni w inkubatorze obrotowym przy prędkości obrotowej 200 obrotów/minutę i w temperaturze 28°C. Jedną z badanych próbek podłoża (humus) nasycono drobnoustrojami, które mogły rosnąć z kwasem L-asparaginowym jako jedynym źródłem azotu. Hodowlę pasażowano kilkakrotnie w tej samej pożywce, a następnie dla wyizolowania poszczególnych monoklonów naniesiono ją na płytki z pożywką agarową o tym samym składzie. Po inkubacji przez 3-5 dni w temperaturze 28°C wyizolowano ogółem 100 monokolonii i ponownie zaszczepiono w pł ynnej pożywce (jak wyżej). Rozdzielanie na płytkach agarowych powtórzono jeszcze dwukrotnie dla uzyskania pewności, że otrzymano czyste hodowle. Po tych etapach selekcji uzyskano 20 indywidualnych szczepów, które mogły wzrastać w obecności kwasu L-asparaginowego jako jedynego źródła azotu.
Dla testów aktywności transaminazy asparaginianowej względem PPO pobrano porcje hodowli szczepów jak wyżej (2 ml). Porcje 400 μΐ hodowli poddawano permeacji z 0,5% toluenem i 0,5% etanolem przez 30 minut w temperaturze 37°C. Osad komórek przeprowadzono w postać suspensji w 50 μl mieszaniny reakcyjnej składającej się z 50 mM PPO, 50 mM kwasu L-asparaginowego, 50 mM Tris/HCl o pH = 8,0 i 10 μM fosforanu pirydoksalu i inkubowano przez noc w temperaturze 28°C.
Dla jakościowego oznaczenia PPT ciecz znad osadu reakcyjnego rozcieńczono w stosunku 1:5 wodą i zanalizowano porcje o objętości 5 μl drogą chromatografii cienkowarstwowej na płytkach celulozowych do HPTLC (Merck), z elucją n-butanolem:kwasem octowym:wodą = 60 : 15 : 25. Aminokwasy uwidoczniono przez zabarwienie ninhydryną. W przypadku czterech szczepów (DSM 13353, DSM 13354, DSM 13355, DSM 13356; wszystkie szczepy zdeponowano w „Deutschen Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH”) można było udowodnić powstanie fosfinotrycyny. Czystość enancjomeryczną produktu reakcji zbadano drogą chiralnej HPLC [z użyciem kolumny rozdzielczej Chirex® (D) z penicyloaminą jako matrycą (wytwórca Phenomenex)] (eluent: 2 mM CUSO4, 10% metanol, szybkość przepływu: 0,5 ml/min., detekcja UV: 254 nm, czas retencji: L-PPT: około 17 minut, D-PPT: około 21 minut). We wszystkich czterech przebadanych próbkach testowych wykazano jako produkt reakcji L-PPT i brak D-PPT jako produktu reakcji.
W celu wytworzenia L-PPT drogą bioprzemiany i ilościowej analizy przebiegu reakcji umieszczono jednolitrowe porcje hodowli szczepów bakterii z gleby, DSM 13354, DSM 13355 i DSM 13356, w wyżej opisanej pożywce, na 48 godzin w temperaturze 28°C. Komórki zebrano przez odwirowanie, przemyto je jednokrotnie 10 mM NaCl i 10 mM fosforanu sodu o pH = 7,5, a następnie zliofilizowano przez noc.
Dla przeprowadzenia bioprzemiany porcję 200 mg suchej masy komórek wyżej określonych szczepów bakterii glebowych przeprowadzono w stan suspensji w 10 ml następującego roztworu substratów:
100 mM PPO
200 mM kwas L-asparaginowy
100 mM Tris/HCl, pH = 8,0 mM fosforan pirydoksalu
Osady inkubowano w inkubatorze obrotowym przy prędkości obrotowej 200 obrotów/minutę i w temperaturze 37°C. Po 1,2, 4, 8, 24 i 30 godzinach pobierano 200 μl próbki i analizowano je metodą HPLC wyżej opisanym sposobem. Wyniki pomiarów dla L-PPT i kwasu L-asparaginowego podano w tabeli 1. Osiągnięty maksymalny stopień przemiany [wytworzony L-PPT/PPO w substracie x 100] wynosił około 59% (DSM 13355).
T a b e l a 1
Przebieg reakcji transaminowania PPO/asparaginian drogą bioprzemiany z użyciem wyizolowanych drobnoustrojów glebowych
Szczep Czas reakcji [godziny]* L-PPT [mM] Kwas asparaginowy [mM]
1 2 3 4
DSM 13354 1 3,9 174,0
2 5,7 150,0
4 10,3 100,0
8 23,8 30,3
24 38,3 0
30 48,4 0
PL 202 575 B1 cd. tabeli 1
1 2 3 4
DSM 13355 1 4,5 143,1
2 7,7 122,7
4 11,1 98,8
8 24,8 76,4
24 44,9 17,2
30 59,1 9,8
DSM 13356 1 5,7 138,1
2 8,4 124,4
4 12,5 95,9
8 27,5 58,8
24 51,3 14,3
30 49,6 7,2
*: temperatura reakcji: 37°C
2.) Dowód bezpośredniego transaminowania PPO/asparaginian z użyciem preparatów enzymów transaminaz
Wszystkie 7 różnych dostępnych na rynku transaminaz przetestowano pod kątem transaminowania PPO/asparaginian. Zastosowano transaminazy pochodzenia drobnoustrojowego (termostabilne transaminazy AMN-001-01, -001-02, -001-03, -001-04, -001-05, zawarte w transaminazowym zestawie testowym Diversa CAT# AMN-001 (1998)) transaminazę glutaminian : szczawianooctan (GOT) i transaminazę glutaminian : pirogronian (GPT, Sigma).
Preparaty enzymowe rozpuszczono do stężenia białka 5 mg/ml w 50 mM buforu Tris/HCl o pH = 8,0, a nastę pnie dializowano przez noc w temperaturze 4°C w takim samym buforze.
W wyniku takiej obróbki preparatów enzymowych ewentualnie obecne donory i akceptory grup aminowych, które mogą działać jako środki przenoszące podczas transaminowania, zostają usunięte.
Stężenie roztworów enzymów doprowadzono następnie do 1 mg/ml i w porcjach 50 μΐ inkubowano je w buforze reakcyjnym składającym się z 50 mM PPO, 50 mM kwasu L-asparaginowego, 50 mM Tris/HCl o pH = 8,0 i 10 μM fosforanu pirydoksalu przez 1 godzinę w temperaturze optymalnej dla enzymu.
Próbki z enzymami analizowano drogą chromatografii cienkowarstwowej i chiralnej HPLC sposobem opisanym w przykładzie 1. W przypadku dwóch termostabilnych enzymów, AMN-001-03 i AMN-001-04 (temperatura reakcji: 80°C) wykazano enancjoselektywne powstawanie L-PPT przez transaminowanie kwasu L-asparaginowego. Wszystkie inne testowane enzymy nie wykazywały żadnej reaktywności.
3.) Ilościowe badanie transaminowania PPO/asparaginian z użyciem termostabilnej transaminazy AMN-001-03
Dla dokładniejszego scharakteryzowania reakcji syntezy L-PPT wybrano transaminazę AMN-001-03, z uwagi na jej wyższą aktywność specyficzną.
Inkubowano 1 ml roztworu substratu składającego się z 40 mM PPO, 48 mM kwasu L-asparaginowego, 50 mM Tris/HCl o pH = 8,0 i 0,1 mM fosforanu z 1 mg transaminazy AMN-001-03 w temperaturze 80°C.
Dla analizy przebiegu reakcji pobierano w okresie 24 godzin podwielokrotne próbki o objętości 50 μl i zamrażano je w temperaturze -20°C. PPT i asparaginian oznaczano w analizatorze aminokwasów (Biotronic LC 5001).
Wyniki przedstawiono w tabeli 2.
W wybranych warunkach równowagę reakcji syntezy L-PPT osiągnięto po 2-4 godzinach. Zastosowany donor grupy aminowej, kwas L-asparaginowy, został po 7 godzinach całkowicie zużyty. Osiągnięto stopień przemiany [wytworzony L-PPT/PPO w substracie x 100] około 75%.
PL 202 575 B1
T a b e l a 2
Przebieg reakcji transaminowania PPO/asparaginian z użyciem transaminazy AMN-001-03
Czas reakcji [godziny]* L-PPT [mM] Asparaginian [mM]
0 0 53,4
1 9,5 47,8
2 20,8 33,8
4 25,7 12,5
7 29,7 0
24 28,1 0,4
*: temperatura reakcji: 80°C
4.) Enzymatyczna synteza chiralna L-PPT z PPO i asparaginianu z użyciem częściowo oczyszczonej termostabilnej transaminazy AMN-001-03
W próbie syntezy zastosowano częściowo oczyszczoną transaminazę AMN-001-03 o specyficznej aktywności 107 nkat/mg białka (1 nkat = 1 nmol asparaginianu/sekundę).
Roztwór reakcyjny o objętości 1 ml zawierał 552 mM PPO (10%), 700 mM kwasu L-asparaginowego, 0,1 mM fosforanu pirydoksalu, przy pH =8,0 nastawionym z użyciem KHCO3, i 11,5 mg enzymu.
Mieszaninę inkubowano w temperaturze 80°C. Pobieranie próbek i ich analizowanie prowadzono sposobem opisanym w przykładzie 3.
Wyniki zestawiono w tabeli 3. W tej próbie równowagę reakcji osiągnięto już po 1 godzinie. Donor grupy aminowej, kwas L-asparaginowy, został po 4 godzinach prawie całkowicie zużyty. Stopień przemiany wynosił około 52%, a wydajność przestrzenno-czasowa wynosiła 4,5 [g L-PPT/g biokatalizatora/godzinę].
W próbce równoległ ej z takim samym roztworem substratu i stężeniem enzymów, ale przy temperaturze reakcji 60°C, osiągnięto podobny stopień przemiany przy wyraźnie zmniejszonej szybkości reakcji.
Wydajność przestrzenno-czasowa wyniosła tylko 0,95 [g L-PPT/g biokatalizatora/godzinę]. Wyniki te potwierdzają duże znaczenie wysokiej termostabilności transaminazy dla stopnia przemiany i skutecznego prowadzenia reakcji.
Umiarkowany stopień przemiany 52% spowodowany jest głównie tworzeniem się produktu ubocznego, alaniny, przez transaminowanie pirogronianu.
Znacznie wyższe stopnie przemiany uzyskuje się przy unikaniu powstawania alaniny podczas reakcji.
T a b e l a 3
Wytwarzanie L-PPT przez transaminowanie z użyciem częściowo oczyszczonej termostabilnej transaminazy AMN-001-03
Czas reakcji [godziny]* L-PPT [mM] Asparaginian [mM] Alanina [mM]
0 0 700,0 0
0,5 155,3 405,8 0
1 286,4 193,1 98,7
2 288,5 15,2 181,5
4 284,0 1,9 284,1
8 251,9 1,3 234,5
*: temperatura reakcji: 80°C

Claims (13)

1. Sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego (L-fosfinotrycyny, L-PPT) o wzorze (I), jego pochodnych wybranych z grupy obejmującej estry i amidy kwasu karboksylowego i estry kwasu fosfinowego i/lub ich soli z kwasu 4-(hydroksymetylofosfinylo)-2-oksomasłowego (HMPB, PPO) o wzorze (II) ίϊ ίί h3c—| — ch2— ch2-C-C-OH (II)
OH jego pochodnych wybranych z grupy obejmującej estry i amidy kwasu karboksylowego i estry kwasu fosfinowego, i/lub ich soli jako akceptora, drogą enzymatycznego transaminowania w obecności asparaginianu jako donora, znamienny tym, że transaminowanie prowadzi się w obecności jednej lub większej liczby termostabilnych transaminaz asparaginianowych (Asp-TA) specyficznych względem akceptora, z wytworzeniem szczawianooctanu i związku o wzorze (I), jego pochodnych i/lub soli.
2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że reakcję asparaginianu jako donora i związku o wzorze II, jego pochodnych wybranych z grupy obejmują cej estry i amidy ugrupowania kwasu karboksylowego i estry ugrupowania kwasu fosfinowego, i/lub soli jako akceptora prowadzi się w obecności jednej lub większej liczby termostabilnych transaminaz asparaginianowych specyficznych wobec akceptora.
3. Sposób według zastrz. 1 albo 2, znamienny tym, że specyficzne wobec akceptora termostabilne transaminazy asparaginianowe wykazują nieznaczną specyficzność substratowa wobec pirogronianu, co umożliwia uniknięcie tworzenia się alaniny jako produktu ubocznego.
4. Sposób według zastrz. 1 albo 2, albo 3, znamienny tym, że obecny pirogronian usuwa się z mieszaniny reakcyjnej drogą fizyczną, chemiczną i/lub enzymatyczną.
5. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że reakcję pirogronianu z wytworzeniem acetylomleczanu prowadzi się w obecności jednej lub większej liczby syntaz acetylomleczanowych (ALS).
6. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że reakcję pirogronianu z wytworzeniem acetaldehydu prowadzi się w obecności dekarboksylazy pirogronianowej.
7. Sposób według zastrz. 4, znamienny tym, że reakcję pirogronianu z wytworzeniem acetylofosforanu prowadzi się w obecności oksydazy pirogronianowej.
8. Sposób według zastrz. 5 albo 6, albo 7, znamienny tym, że reakcję pirogronianu prowadzi się w obecności termostabilnego enzymu.
9. Sposób według zastrz. 1 albo 2, albo 3, albo 4, albo 5, albo 6, albo 7, albo 8, znamienny tym, że jedną lub większą liczbę transaminaz stosuje się w postaci unieruchomionej.
10. Drobnoustrój o numerze dostępu DSM 13353.
11. Drobnoustrój o numerze dostępu DMS 13354.
12. Drobnoustrój o numerze dostępu DSM 13355.
13. Drobnoustrój o numerze dostępu DSM 13356.
PL353460A 1999-04-30 2000-03-30 Sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego oraz drobnoustroje PL202575B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19919848A DE19919848A1 (de) 1999-04-30 1999-04-30 Verfahren zur Herstellung von L-Phosphinothricin durch enzymatische Transaminierung mit Aspartat
PCT/EP2000/002809 WO2000066760A1 (de) 1999-04-30 2000-03-30 Verfahren zur herstellung von l-phosphinothricin durch enzymatische transaminierung mit aspartat

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL353460A1 PL353460A1 (pl) 2003-11-17
PL202575B1 true PL202575B1 (pl) 2009-07-31

Family

ID=7906505

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL353460A PL202575B1 (pl) 1999-04-30 2000-03-30 Sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego oraz drobnoustroje

Country Status (22)

Country Link
US (1) US6936444B1 (pl)
EP (1) EP1177310B1 (pl)
JP (1) JP2003528572A (pl)
KR (1) KR100810169B1 (pl)
CN (1) CN1284858C (pl)
AT (1) ATE287965T1 (pl)
AU (1) AU768315B2 (pl)
BR (1) BR0010199A (pl)
CA (1) CA2370109C (pl)
CZ (1) CZ20013901A3 (pl)
DE (2) DE19919848A1 (pl)
DK (1) DK1177310T3 (pl)
ES (1) ES2235865T3 (pl)
HU (1) HU228395B1 (pl)
IL (2) IL145925A0 (pl)
MX (1) MXPA01011016A (pl)
NZ (1) NZ515088A (pl)
PL (1) PL202575B1 (pl)
RU (1) RU2275428C2 (pl)
SK (1) SK286456B6 (pl)
UA (1) UA75331C2 (pl)
WO (1) WO2000066760A1 (pl)

Families Citing this family (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7772426B2 (en) 2005-03-29 2010-08-10 Meiji Seika Kaisha, Ltd. Method for producing L-2-amino-4-(hydroxymethylphosphinyl)-butanoic acid
EP1818411A1 (en) * 2006-02-13 2007-08-15 Lonza AG Process for the preparation of optically active chiral amines
WO2007100101A1 (ja) * 2006-03-02 2007-09-07 Meiji Seika Kaisha, Ltd. アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ遺伝子およびl-ホスフィノスリシンの製造方法
BRPI0716080B8 (pt) 2006-09-04 2018-02-14 Meiji Seika Kaisha processo para produção de ácidos (aminofosfinil) butanóicos oticamente ativos
WO2008035687A1 (en) 2006-09-20 2008-03-27 Meiji Seika Kaisha Ltd. METHOD FOR PRODUCING PHOSPHORUS-CONTAINING α-AMINO ACID AND PRODUCTION INTERMEDIATE THEREOF
CN101641363A (zh) 2007-03-23 2010-02-03 明治制果株式会社 含磷的α-酮酸的制造方法
HUE052297T2 (hu) 2009-01-08 2021-04-28 Codexis Inc Transzamináz polipeptidek
JP5707344B2 (ja) 2009-02-26 2015-04-30 コデクシス, インコーポレイテッド トランスアミナーゼ生体触媒
WO2011005477A1 (en) 2009-06-22 2011-01-13 Codexis, Inc. Transaminase reactions
US8981142B2 (en) 2010-04-14 2015-03-17 Strategic Enzyme Applications, Inc. Process of producing phosphinothricin employing nitrilases
HUE038434T2 (hu) 2010-06-17 2018-10-29 Codexis Inc Biokatalizátorok és módszerek (S)-3(1-aminoetil)-fenol szintéziséhez
EP2606139B1 (en) 2010-08-16 2015-07-15 Codexis, Inc. Biocatalysts and methods for the synthesis of (1r,2r)-2-(3,4-dimethoxyphenethoxy)cyclohexanamine
CN105603015B (zh) * 2016-01-22 2018-12-11 浙江大学 一种l-草铵膦的生产方法
IL261271B2 (en) 2016-03-02 2025-03-01 Agrimetis Llc Methods for preparing L-glucosinate
CN106916857B (zh) * 2017-03-09 2019-08-27 浙江大学 一种生产l-草铵膦的方法
CN107119084B (zh) * 2017-03-23 2019-12-17 浙江大学 一种利用转氨酶和乙烯合成酶生产l-草铵膦的方法
CN110343676B (zh) 2018-04-03 2020-06-23 上海弈柯莱生物医药科技有限公司 一种l-谷氨酸脱氢酶突变体及其应用
US12559777B2 (en) 2018-09-05 2026-02-24 Basf Se Methods for improving yields of L-glufosinate
CN109369711A (zh) * 2018-10-26 2019-02-22 洪湖市泰科技有限公司 一种l-草胺膦关键中间体的合成新方法
CN111019916B (zh) 2018-11-23 2020-12-08 弈柯莱生物科技(上海)股份有限公司 一种d-氨基酸氧化酶突变体及其应用
CN111979208B (zh) 2019-05-23 2023-01-10 弈柯莱生物科技(上海)股份有限公司 一种l-谷氨酸脱氢酶突变体及其应用
CN112725298B (zh) 2020-12-31 2022-12-06 浙江工业大学 一种机器学习基因挖掘方法及氨基转位用草铵膦脱氢酶突变体

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2717440C2 (de) 1976-05-17 1984-04-05 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Unkrautbekämpfung mit [(3-Amino-3-carboxy)-propyl-1]-methylphosphinsäure-Derivaten
GB2011416B (en) 1977-12-28 1982-10-20 Meiji Seika Kaisha Herbicidal compositions
HU193902B (en) * 1983-09-01 1987-12-28 Genetics Inst Process for preparing l-amino acids by means of transamination
US4826766A (en) 1985-09-23 1989-05-02 Genetics Institute, Inc. Production of amino acids using coupled aminotransferases
EP0533216B1 (de) * 1986-06-04 2000-03-22 Hoechst Schering AgrEvo GmbH Verfahren zur Herstellung von L-tertiär-Leucin durch Transaminierung
AU599985B2 (en) * 1986-06-09 1990-08-02 Meiji Seika Kaisha Ltd. New process for the production of L-2-amino-4- (hydroxymethyl-phosphinyl)-butyric acid
DE3818851A1 (de) 1988-06-03 1989-12-14 Hoechst Ag Neue transaminase, ihre herstellung und ihre verwendung
EP0349965A3 (en) * 1988-07-04 1990-06-13 Meiji Seika Kaisha Ltd. Novel genes encoding transaminase
DE3932015A1 (de) 1988-12-15 1991-04-04 Hoechst Ag Gen und genstruktur, codierend fuer eine aminotransferase, mikroorganismen, die dieses gen exprimieren, und transaminierungsverfahren unter verwendung des expressionsprodukts
DE4030578A1 (de) * 1990-09-27 1992-04-16 Hoechst Ag Verfahren zur herstellung von l-phosphinothricin durch eine gekoppelte enzymatische reaktion
US5962283A (en) 1995-12-07 1999-10-05 Diversa Corporation Transminases and amnotransferases
US6197558B1 (en) * 1997-05-19 2001-03-06 Nsc Technologies Transaminase biotransformation process

Also Published As

Publication number Publication date
UA75331C2 (en) 2006-04-17
RU2275428C2 (ru) 2006-04-27
MXPA01011016A (es) 2002-05-06
HUP0200948A2 (hu) 2002-07-29
ATE287965T1 (de) 2005-02-15
CZ20013901A3 (cs) 2002-02-13
IL145925A0 (en) 2002-07-25
IL145925A (en) 2007-05-15
EP1177310A1 (de) 2002-02-06
EP1177310B1 (de) 2005-01-26
WO2000066760A1 (de) 2000-11-09
DE19919848A1 (de) 2000-11-02
PL353460A1 (pl) 2003-11-17
ES2235865T3 (es) 2005-07-16
HU228395B1 (en) 2013-03-28
DK1177310T3 (da) 2005-04-11
US6936444B1 (en) 2005-08-30
CA2370109A1 (en) 2000-11-09
CN1349561A (zh) 2002-05-15
AU4540800A (en) 2000-11-17
NZ515088A (en) 2003-06-30
BR0010199A (pt) 2002-01-08
SK15622001A3 (sk) 2002-06-04
KR100810169B1 (ko) 2008-03-06
CA2370109C (en) 2009-07-07
AU768315B2 (en) 2003-12-11
JP2003528572A (ja) 2003-09-30
KR20010112473A (ko) 2001-12-20
CN1284858C (zh) 2006-11-15
SK286456B6 (sk) 2008-10-07
DE50009364D1 (de) 2005-03-03
HUP0200948A3 (en) 2010-01-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL202575B1 (pl) Sposób wytwarzania kwasu L-2-amino-4-(hydroksymetylofosfinylo)masłowego oraz drobnoustroje
US5962281A (en) Process for preparing L-tertiary-leucine and L-phosphinothricine by transamination
EP0404146B1 (en) Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
HK1008052B (en) Enantiomeric enrichment and stereoselective synthesis of chiral amines
US5516660A (en) Microorganisms, their use and method of producing L-α-amino acids
EP0857790A1 (en) Process for producing optically active amino compounds
US5108914A (en) Process for the synthesis of l-alpha-amino acids
JP2026511215A (ja) L-グルホシネート又はその塩の調製プロセス
EP0315786A1 (en) Process for the preparation of a d-alfa-amino acid from the corresponding alfa-keto acid
SK280218B6 (sk) Spôsob enantiomérneho obohacovania a stereoselektí
JPWO1997015682A1 (ja) 光学活性なアミノ化合物の製造方法
CZ355697A3 (cs) Způsob stereoselektivní syntézy jedné chirální formy aminu
JPH0870878A (ja) トロポロニルアラニンの製造法

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20100330