PL225341B1 - Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów - Google Patents

Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów

Info

Publication number
PL225341B1
PL225341B1 PL408905A PL40890514A PL225341B1 PL 225341 B1 PL225341 B1 PL 225341B1 PL 408905 A PL408905 A PL 408905A PL 40890514 A PL40890514 A PL 40890514A PL 225341 B1 PL225341 B1 PL 225341B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
buffer
tyr
new compound
abz
val
Prior art date
Application number
PL408905A
Other languages
English (en)
Other versions
PL408905A1 (pl
Inventor
Dawid Dębowski
Natalia Gruba
Adam Lesner
Magdalena Wysocka
Original Assignee
Univ Gdański
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Univ Gdański filed Critical Univ Gdański
Priority to PL408905A priority Critical patent/PL225341B1/pl
Publication of PL408905A1 publication Critical patent/PL408905A1/pl
Publication of PL225341B1 publication Critical patent/PL225341B1/pl

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyc zny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do w ykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów.
Nowy sposób analizy ludzkiego proteasomu 20S obecnego w moczu lub innych płynach biologicznych przy użyciu sondy fluorescencyjnej i jej zastosowanie do diagnostyki raka pęcherza.
Synteza peptydów na fazie stałej (nośniku) została wprowadzona po raz pierwszy w latach 80 ubiegłego wieku przez Bruca Merfielda, który za to osiągnięcie otrzymał nagrodę Nobla.
Proteasom jest multikatalitycznym kompleksem endopeptydazy (EC 3.4.25.1) odpowiedzialnym za nielizosomalne usuwanie białek uszkodzonych i nieprawidłowo ukształtowanych w wyniku wystąpienia mutacji lub pod wpływem czynników zewnętrznych powodujących stres oksydacyjny [1,2]. D otychczas opracowane związki umożliwiające oznaczanie aktywności proteasomu 20S lub 26S to krótkie peptydy zawierające 4-5 reszt aminokwasowych zawierające na C-końcu ugrupowanie fluorescencyjne. Związki te umożliwiają oznaczanie aktywności proteasomu w tym w obecności proteasomu lub innego enzymu proteolitycznego C-końcowa grupa fluorescencyjna ulega uwolnieniu wykazując wysoki stopień fluorescencji. Przykładowe sekwencje takich substratów fluorogenicznych opisano w pracy Ma [3], wykorzystując tego typu związki do oznaczania aktywności proteasomu w osoczu. Leu-Leu-Val-Tyr-AMC, AMC to aminokumaryna.
Przegląd danych literaturowych wskazuje że głównym obiektem badań monitorujących p oziom aktywności proteasomu są nowotwory układu krwionośnego [4]. Zdecydowana większość p ochodnych peptydowych będących substratami proteasomu została opracowana w laboratoriach komercyjnych takich jak Promega czy Molecular Probes [5]. Alternatywnie pomiar stężenia proteasomu przeprowadza się stosując techniki immunochemiczne (testy ELISA) [6] które wykorzystują rozpoznanie określonej podjednostki proteasomu przez określony typ przeciwciał. Jednak procedura ta jest czasochłonna i prowadzi do oznaczania całej populacji proteasomu a nie jego aktywnie e nzymatycznej frakcji.
Opracowany i otrzymany nowy związek - znakowany peptyd charakteryzuje się wysoką wartością stałej specyficzności (rzędu 7,5 x 10 M- x s-) oraz właściwym dla tego typu oznaczeń limitem oznaczalności i detekcji, wynoszącym odpowiednio 32 pM i 5 pM. Wartości te świadczą o tym że związek jest hydrolizowany przez proteasom z dużą wydajnością, a ponadto już w obecności 32 pM tego enzymu. Cała procedura oznaczania aktywności proteasomu wymaga niewiele czasu (60 minut), nieskomplikowana (wymaga zmieszania 2 roztworów oraz wymaga niewielkiej ilości łatwo dostępnego materiału biologicznego jakim jest ludzki mocz (minimalna objętość 50 μ^. Podstawową zaletą otrzymanego związku i związanej z nią metody jest możliwość diagnostyki nowotworu pęcherza moczowego poprzez opisaną poniżej procedurę. Wynik dodatni (wzrost fluorescencji w czasie) jest jednoznaczny z obecnością w moczu aktywnego proteasomu co z kolei silnie koreluje z obecnością nowotworu.
Celem niniejszego wynalazku jest dostarczenie związku i sposobów, które mogłyby być zastosowane do wykrywania nowotworów, korzystnie nowotworu pęcherza. Nieoczekiwanie problem ten został rozwiązany w istotnym stopniu w niniejszym wynalazku.
Przedmiotem wynalazku jest nowy związek o wzorze ogólnym:
ABZ1-Val2-Val3-Ser4-Tyr5-Ala6-Met7-Gly8-(Tyr(3-NO2)9-NH2 gdzie: ABZ oznacza kwas 2-amino benzoesowy.
Przedmiotem wynalazku jest również sposób otrzymywania nowego związku zdefiniowanego powyżej, gdzie w następujących etapach:
a) osadzenie Fmoc-Tyr(3-NO2)-OH na żywicy TentaGel S RAM, poprzez przyłączenie pochodnej aminokwasowej Fmoc-Tyr(3-NO2) do wolnych grup aminowych żywicy,
b) żywicę przemyto DMF, a następnie usunięto osłony Fmoc z grupy aminowej,
c) przyłączono resztę aminokwasową Fmoc-Gly-OH,
d) w taki sam sposób wprowadzono kolejne chronione pochodne aminokwasowe: metioninę, alaninę, tyrozynę, serynę, dwukrotnie waliny i cząsteczkę kwasu 2-aminobenzoesowego (ABZ),
e) otrzymano peptyd oznakowany fluorescencyjnie: ABZ1-Val2-Val3-Ser4-Tyr5-Ala6-Met7Gly8-(Tyr(3-NO2)9-NH2,
f) następnie amid peptydu usunięto z nośnika wraz z jednoczesnym usunięciem osłon bocznych za pomocą mieszaniny: TFA : fenol : woda : TIPS (88 : 5 : 5 : 2, v/v/v/v).
PL 225 341 B1
Sposób gdzie ABZ jest donorem fluorescencji na N-końcu, a 3-nitro-L-tyrozyna jest wygaszaczem fluorescencji na C-końcu.
Roztwór farmaceutyczny do wykrywania nowotworów zawierający substancję czynną i bufor gdzie jako substancję czynną zawiera nowy związek określony w zastrzeżeniu 1 oraz bufor o pH
8,1-8,5.
Roztwór gdzie bufor ma pH korzystnie 8,3.
Roztwór gdzie bufor jest wybrany z grupy zawierającej TRIS HCl, bufor fosforanowy, HEPES, BisTRIS, korzystnie TRIS-HCI.
Roztwór, który wykrywa nowotwory, korzystnie nowotwór pęcherza moczowego.
Sposób określania obecności choroby nowotworowej, który obejmuje analizowanie in vitro pobranej od człowieka próbki moczu, do której dodaje się nowy związek określony w zastrzeżeniu 1 i miesza się z buforem o pH 8,1-8,5.
Sposób gdzie dokonuje się w czasie 0 min, 30 min, 60 min. Pomiaru intensywności fluorescencji powstałej na skutek uwolnienia fragmentu zawierającego znacznik fluorescencyjny ABZ -Val -Val Ser4-Tyr5.
Sposób gdzie bufor ma pH korzystnie 8,3.
Sposób gdzie bufor jest wybrany z grupy TRIS HCl, bufor fosforanowy, HEPES, BisTRIS, korzystnie TRIS-HCI.
Sposób, który wykrywa nowotwory, korzystnie nowotwór pęcherza moczowego.
Zestaw do wykrywania nowotworów, korzystnie nowotworu pęcherza moczowego, który zawiera nowy związek określony w zastrzeżeniu 1 oraz bufor o pH 8,1-8,5.
Zestaw gdzie bufor ma pH korzystnie 8,3.
Zestaw gdzie bufor jest wybrany z grupy TRIS HCl, bufor fosforanowy, HEPES, BisTRIS, korzystnie TRIS-HCI.
Zastosowanie hydrolizy in vitro nowego związku określonego powyżej gdzie w pozycji 5 poprzez proteasom 20S do wykrywania nowotworów, korzystnie nowotworu pęcherza.
Określenia stosowane powyżej oraz w opisie i zastrzeżeniach patentowych, mają następujące znaczenie:
Boc - grupa tert-butyloksykarbonylowa
Fmoc - grupa 9-fluorenylometoksykarbonylowa
DMF - dimetyloformamid
NMP - N-metylopirolidon
DCM - dichlorometan
TFA - Trifluoroacetic acid
TIPS - Triisopropylsilan
TRIS-HCI - Tris(hydroxymethyl)aminomethane hydrochloride
ABZ - kwas 2-amino benzoesowy
Opis figur:
Fig. 1 - przedstawia wynik analizy chromatograficznej związku (A) w obecności ludzkiego proteasomu 20S (B) oraz w trakcie inkubacji z ludzkim moczem (C) po 5 minutach i (D) po 60 minutach.
Fig. 2 - Krzywa zależności intensywności fluorescencji od czasu dla próbek 42, 4,
16, 39 oraz H2 i H4. Fluorescencję monitorowano przy długości fali 450 nm.
Fig. 3 - przedstawia wyniki analizy próbek ludzkiego moczu osób zdrowych próbki
H (39) oraz zdiagnozowanym rakiem pęcherza (69).
Fig. 4 - przedstawia Blot próbek moczu osób ze zdiagnozowanym rakiem pęcherza moczowego.
Fig. 5 - przedstawia wyniki Elisa human proteasome 20S detection kit dla 6 próbek osób zdrowych / 15 chorych.
Tabela 1 - przedstawia przykładowe wartości aktywności proteosomu zależności fluorescencji w czasie dla próbek 42, 18, 27, 37 oraz H1 i H11.
Wynalazek ilustruje następujący przykład wykonania, nie stanowiący jego ograniczenia.
PL 225 341 B1
Przykład
I) Synteza nowego związku:
a) Pierwszym etapem syntezy było otrzymanie peptydu oznakowanego fluorescencyjnie który otrzymano metodą syntezy w fazie stałej z wykorzystaniem chemii Fmoc/tBu
Związek o sekwencji ABZ1-Val2-Val3-Ser4-Tyr5-Ala6-Met7-Gly8-(Tyr(3-NO2)9-NH2, gdzie ABZ oznacza kwas 2-amino benzoesowy, otrzymano na drodze syntezy chemicznej w fazie stałej z wyk orzystaniem następujących pochodnych aminokwasowych.
Boc-ABZ, Fmoc-Val, Fmoc-Ser(tBu), Fmoc-Tyr(tBu), Fmoc-Ala, Fmoc-Met, Fmoc-Gly, Fmoc-Tyr(3-NO2).
Syntezę substratów peptydowych prowadzono na dwóch rodzajach nośnika stałego:
- żywicy TentaGel S RAM firmy RAPP Polymere (Niemcy) o osadzeniu 0,23 mmol/g
Syntezę wszystkich peptydów prowadzono w sposób manualny z zastosowaniem wytrząsarki laboratoryjnej. Przez większość etapów reaktorami była strzykawka zakończona spiekiem do syntezy w fazie stałej o pojemności 25 ml.
Wszystkie syntezowane substraty zawierały w swojej sekwencji na N-końcu kwas 2-aminobenzoesowy (ABZ) i cząsteczkę 3-nitro-L-tyrozyny położoną na C-końcu. ABZ pełnił rolę donora fluorescencji, natomiast Tyr(3-NO2) pełniła rolę wygaszacza fluorescencji. Peptydy w swojej sekwencji zawierały jedno miejsce reaktywne zlokalizowane pomiędzy resztami aminokwasowymi położonymi w pozycji P1-P1'.
Osadzenie Fmoc-Tyr(3-NO2)-OH na żywicy TentaGel S RAM:
Syntezę peptydów wykonano na żywicy TentaGel S RAM firmy Rapp Polymere o osadzeniu 0,23 mmol/g. W pierwszym etapie dokonano spulchnienia żywicy poprzez cykl przemywań. Kolejno przystąpiono do usunięcia z nośnika osłony grupy aminowej Fmoc - za pomocą 20% roztworu piperydyny w NMP. Następnie przeprowadzono cykl przemywań rozpuszczalnikami. W celu potwierdzenia obecności wolnych grup aminowych wykonano test chloranilowy.
Cykl przemywań rozpuszczalnikami:
DMF 1 x 10 minut
IsOH 1 x 10 minut
DCM 1 x 10 minut
Usunięcie osłony Fmoc:
DMF 1 x 5 minut
20% piperydyna w NMP 1 x 3 minuty
20% piperydyna w NMP 1 x 8 minut
Cykl przemywań rozpuszczalnikami:
DMF 3 x 2 minuty
IsOH 3 x 2 minuty
DCM 3 x 2 minuty
Test chloranilowy:
Test chloranilowy polegał na przeniesieniu za pomocą łopatki, kilku ziaren żywicy z reaktora strzykawki do szklanej ampułki, do której następnie dodano 100 gl nasyconego roztworu p-chloranilu w toluenie i 50 gl świeżego aldehydu octowego. Po upływie 10 minut przeprowadzono kontrolę zabarwienia ziaren.
Na tym etapie po przeprowadzeniu testu otrzymano zielone zabarwienie ziaren, które świadczyło o obecności wolnych grup aminowych. Po potwierdzeniu usunięcia osłon fluorenylometoksykarbonylowych z żywicy można było przystąpić do kolejnego etapu, przyłączania pochodnej aminokwasowej Fmoc-Tyr(3-NO2) .
Przyłączanie Fmoc-Tyr(3-NO2)-OH do żywicy:
Wszystkie przyłączania reszt aminokwasowych poprzedzono przemywaniem żywicy za pomocą DMF przez 5 minut. W kolejnych przyłączan iach stosowano diisopropylokarbodiimid jako środek sprzęgający. Procedurę powtarzano dwukrotnie.
PL 225 341 B1
Po każdym z acylowań rozpoczynano cykl przemywań żywicy, a następnie wykonywano test chloranilowy, w celu monitorowania przyłączania pochodnej aminokwasowej Fmoc-Tyr(3-NO2) do wolnych grup aminowych żywicy.
Cykl przemywań rozpuszczalnikami:
DMF 3 x 2 minuty
IsOH 3 x 2 minuty
DCM 3 x 2 minuty
Test chloranilowy:
W wyniku przeprowadzonych testów po dwóch pierwszych sprzęganiach zabarwienie ziaren najpierw było zielone, a następnie szare, więc konieczne było przeprowadzenie kolejnego acylowania, w wyniku którego ziarna żywicy badanej testem chloranilowym były bezbarwne. Świadczyło to przyłączeniu Fmoc-Tyr(3-NO2)-OH do żywicy TentaGel S RAM, co pozwoliło przejść do następnego etapu syntezy peptydu.
Przyłączanie kolejnych chronionych reszt aminokwasowych:
Żywicę wraz z przyłączoną resztą Fmoc-Tyr(3-NO2)-OH znajdującą się w reaktorku przemyto za pomocą DMF, a następnie przystąpiono do deprotekcji osłony Fmoc z grupy aminowej w celu przyłączenia chronionej pochodnej aminokwasowej glicyny.
Usunięcie osłony Fmoc:
DMF 1 x 5 minut
20% piperydyna w NMP 1 x 3 minuty
20% piperydyna w NMP 1 x 8 minut
Cykl przemywań rozpuszczalnikami:
DMF 3 x 2 minuty
IsOH 3 x 2 minuty
DCM 3 x 2 minuty
Test chloranilowy:
W wyniku przeprowadzenia testu chloranilowego otrzymano wynik pozytywny, o czym świadczyło zielone zabarwienie ziaren żywicy. Pozwoliło to na rozpoczęcie kolejnego etapu - przyłączania reszty aminokwasowej Fmoc-Gly-OH.
Przyłączanie pochodnej aminokwasowej:
Wykonywane sprzęgania poprzedzono przemywaniem żywicy w DMF. Podczas przyłączania chronionej reszty glicyny skład mieszaniny sprzęgającej pozostawał bez zmian.
Po zakończeniu każdego z acylowań stosowano cykl przemywań rozpuszczalnikami według podanej procedury, a następnie przeprowadzono test chloranilowy na obecność wolnych grup aminowych w roztworze.
Cykl przemywań rozpuszczalnikami:
DMF 3 x 2 minuty
IsOH 3 x 2 minuty
DCM 3 x 2 minuty
Test chloranilowy:
Ziarna żywicy testu przeprowadzonego po drugim acylowaniu były bezbarwne, co pozwoliło na przejście do kolejnego etapu syntezy, jakim było wprowadzenie kolejnych chronionych pochodnych aminokwasowych - metioniny, alaniny, tyrozyny, seryny, dwukrotnie waliny i cząsteczki kwasu 2-aminobenzoesowego. Procesy sprzęgania odbyły się zgodnie z procedurą omówioną wcześniej.
Testy przeprowadzone po przyłączeniu wyżej wymienionych reszt wykazały wyniki pozytywne, ziarna żywicy były bezbarwne.
b) Usuwanie peptydu z nośnika
Po zakończeniu syntezy amid peptydu usunięto z nośnika wraz z jednoczesnym usunięciem osłon bocznych za pomocą mieszaniny: TFA : fenol : woda : TIPS (88 : 5 : 5 : 2, v/v/v/v) w kolbie okrągłodennej na mieszadle magnetycznym.
PL 225 341 B1
Po upływie 3 godzin zawartość kolby sączyło się pod zmniejszonym ciśnieniem na lejkach ze spiekiem Schotta przemywając eterem dietylowym. Powstały osad odwirowano na wirówce SIGMA
2K30 (Laboratory Centrifuges) w czasie 20 minut. Osad otrzymany po wirowaniu rozpuszcza się w wodzie przy pomocy ultradźwięków, a następnie poddano liofilizacji.
c) Tożsamość/charakterystyka nowego związku - analiza HPLC, MS oraz NMR
HPLC warunki: kolumna RP Bio Wide Pore Supelco C8 250 mm 4 mm, układ faz A 0,1% TFA w wodzie, B: 80% acetonitrylu w A), przepływ 1 ml/min, detekcja UV przy 226 nm.
tR 20.60
MS MALDI TOF matryca kwas alfa cynamonowy masa cząsteczkowa 1054,23 Da obliczona 1053,1 H1 NMR 500 MHz s 8,50 (1H); m 8,00 (11 H); m 7,5-7,1 (11H); m 6,7-6,5 (5H); s 6,3 (2H); s 5,42 (2H); m 4,8 (3H); m 4,7-4,4 (4H); m 4,1 (4H); m 3,9-3,7 (2H); s 3,6 (1H); m 3,4-3,2 (4H); m 2,7 (2H); m 2,06 (2H); m 1,5 (3H); m 0,8 (12H)
II) Badania potwierdzające
a) Wyniki na modelach/walidacja
Otrzymany nowy związek jest efektywnie hydrolizowany przez podjednostkę chymotrypsynopodobną ludzkiego proteasomu 20S. Ten wewnątrzkomórkowy kompleks enzymatyczny w określonych stanach patofizjologicznych wydostaje się z komórki i krąży w osoczu i innych płynach ustrojowych w tym moczu.
W wyniku prowadzonej hydrolizy enzymatycznej powstają dwa fragmenty: ABZ-Val-Val-Ser-TyrOH - silnie fluorescencyjny, którego wzrost stężenia w czasie jest podstawą testu oraz C-końcowy fragment Ala-Met-Gly-Tyr(3-NO2)-NH2 pozbawiony właściwości fluorescencyjnych. (Fig. 1A, 1B). Wzrost fluorescencji w obecności proteasomu jest proporcjonalny do jego stężenia.
Analiza HPLC i MS potwierdza obecność omawianych wyżej fragmentów związku ABZ-Val-ValSer-Tyr-OH oraz Ala-Met-Gly-Tyr(3-NO2)-NH2 powstałych w wyniku trawienia przez podjednostkę chymotrypsynopodobną proteasomu 20S (rys. 1 B). Zahamowanie jej aktywności poprzez użycie selektywnego inhibitora tej podjednostki powoduje brak hydrolizy związku.
b) Wyniki w moczu
Procedura oznaczania aktywności proteasomu w próbce przebiegała następująco. Badaną próbkę moczu (50 μΊ) mieszano z buforem Tris HCl pH 8,3 w stosunku 1:1. Do tak przygotowanej mieszaniny dodano roztworu związku 100 μl w podanym wyżej buforze. Tak otrzymaną mieszaninę inkubowano w temp 37°C. Pomiar fluorescencji układu wykonywano przy długości fali wzbudzenia 320 nm a emisji fluorescencji 450 nm. Pomiar prowadzono w sposób ciągły lub w wybranych odstępach czasu tj.: 0, 30 minut, 60 minut. Podobne wyniki uzyskano w buforze HEPES lecz buforze tym związek wykazywał słabą rozpuszczalność, w buforach fosforanowym i BisTris o analogicznej wartości pH szybkość wzrostu fluorescencji była niższa.
Inkubacja otrzymanego nowego związku w moczu pochodzącego od osób chorych na raka pęcherza i analiza chromatograficzna takiej mieszaniny skutkuje powstaniem fragmentów związku tożsamych z opisanymi wyżej gdzie w systemie zastosowano izolowany proteasom 20S. Użycie selektywnych inhibitorów podjednostki chymotrypsynopodobnej powoduje brak rozpadu związku. Rozp adu związku nie obserwuje się w moczu pochodzących od zdrowych ochotników (Fig. 1C, 1D).
Przebadano 108 próbek (69 pochodzących od osób chorych i 39 zdrowych) przy użyciu opracowanego nowego związku wykazała że większość próbek pochodzących od pacjentów chorych (61) wykazuje wzrost fluorescencji świadczący o rozpadzie peptydu pod wpływem proteasomu. Przykładowe krzywe zależności fluorescencji w czasie dla próbek 42, 18, 27, 37 oraz H1 i H11 przedstawiono na Fig. 2 oraz tabeli 1. Żadna z próbek zdrowych takiego wzrostu nie wykazała (Fig. 3).
Test potwierdzający - BLOT
Analiza immunochemiczna tj. SDS PAGE próbek moczu zdrowych osób (ochotników) i chorych na raka pęcherza a następnie półsuchy transfer na membranę i inkubacja z przeciwciałem antyproteasome 20S ujawniła obecność prążków tylko w materiale pochodzącym od osób chorych (Fig. 4).
PL 225 341 B1
Test potwierdzający - ELISA
Badane próbki analizowano zestawem ELISA wykrywającym proteasom 20S. Otrzymane wyniki silnie korelują z tymi otrzymanymi przy użyciu nowego związku będącego przedmiotem wynalazku (Fig. 5).
Literatura:
1. Borissenko L., Groll M., Diversity of proteasomal missions: fine tuning of the immune response, Biol. Chem., 388, 947-955, 2007.
2. Groll M., Bochtler M., Brandstetter H., Clausen T., Huber R., Molecular machines for protein degradation, ChemBioChem., 6, 222-256, 2005.
3. Ma W, Kantarjian H, O'Brien S, Jilani I, Zhang X, Estrov Z, et al. Enzymatic activity of circulating proteasomes correlates with clinical behavior in patients with chronic lymphocytic leukemia. Cancer 2008; 112: 1306-12.
4. Ostrowska H, Hempel D, Holub M, Sokolowski J, Kloczko J. Assessment of circulating proteasome chymotrypsin-like activity in plasma of patients with acute and chronic leukemias. Clin Biochem. 2008 Nov; 41 (16-17): 1377-83.
5. www.promega.com
6. Ma W, Kantarjian H, O'Brien S, Jilani I, Zhang X, Estrov Z, et al. Enzymatic activity of circulating proteasomes correlates with clinical behavior in patients with chronic lymphocytic leukemia. Cancer 2008; 112: 1306-12.

Claims (16)

1. Nowy związek o wzorze ogólnym:
ABZ1-Val2-Val3-Ser4-Tyr5-Ala6-Met7-Gly8-(Tyr(3-NO2)9-NH2 gdzie:
ABZ oznacza kwas 2-amino benzoesowy.
2. Sposób otrzymywania nowego związku zdefiniowanego w zastrzeżeniu 1, znamienny tym, że w następujących etapach:
g) osadzenie Fmoc-Tyr(3-NO2)-OH na żywicy TentaGel S RAM, poprzez przyłączenie pochodnej aminokwasowej Fmoc-Tyr(3-NO2) do wolnych grup aminowych żywicy,
h) żywicę przemyto DMF, a następnie usunięto osłony Fmoc z grupy aminowej,
i) przyłączono resztę aminokwasową Fmoc-Gly-OH,
j) W taki sam sposób wprowadzono kolejne chronione pochodne aminokwasowe: metioninę, alaninę, tyrozynę, serynę, dwukrotnie waliny i cząsteczkę kwasu 2-aminobenzoesowego (ABZ),
k) otrzymano peptyd oznakowany fluorescencyjnie: ABZ1-Val2-Val3-Ser4-Tyr5-Ala6-Met7Gly8-(Tyr(3-NO2)9-NH2,
l) następnie amid peptydu usunięto z nośnika wraz z jednoczesnym usunięciem osłon bocznych za pomocą mieszaniny: TFA : fenol : woda : TIPS (88 : 5 : 5 : 2, v/v/v/v) .
3. Sposób według zastrz. 2, znamienny tym, że ABZ jest donorem fluorescencji na N-końcu, a 3-nitro-L-tyrozyna jest wygaszaczem fluorescencji na C-końcu.
4. Roztwór farmaceutyczny do wykrywania nowotworów zawierający substancję czynną i bufor, znamienny tym, że jako substancję czynną zawiera nowy związek określony w zastrzeżeniu 1 oraz bufor o pH 8,1-8,5.
5. Roztwór według zastrz. 3, znamienny tym, że bufor ma pH korzystnie 8,3.
6. Roztwór według zastrz. 3, znamienny tym, że bufor jest wybrany z grupy zawierającej TRIS HCl, bufor fosforanowy, HEPES, BisTRIS, korzystnie TRIS-HCI.
7. Roztwór według zastrz. 3, znamienny tym, że wykrywa nowotwory, korzystnie nowotwór pęcherza moczowego.
8. Sposób określania obecności choroby nowotworowej, znamienny tym, że obejmuje analizowanie in vitro pobranej od człowieka próbki moczu, do której dodaje się nowy związek określony w zastrzeżeniu 1 i miesza się z buforem o pH 8,1 -8,5.
PL 225 341 B1
9. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że dokonuje się w czasie 0 min, 30 min, 60 min, pomiaru intensywności fluorescencji powstałej na skutek uwolnienia fragmentu zawierającego znacznik fluorescencyjny ABZ1-Val2-Val3-Ser4-Tyr5.
10. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że bufor ma pH korzystnie 8,3.
11. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że bufor jest wybrany z grupy TRIS HCl, bufor fosforanowy, HEPES, BisTRIS, korzystnie TRIS-HCI.
12. Sposób według zastrz. 7, znamienny tym, że wykrywa nowotwory, korzystnie nowotwór pęcherza moczowego.
13. Zestaw do wykrywania nowotworów, korzystnie nowotworu pęcherza moczowego, znamienny tym, że zawiera nowy związek określony w zastrzeżeniu 1 oraz bufor o pH 8,1-8,5.
14. Zestaw według zastrz. 13, znamienny tym, że bufor ma pH korzystnie 8,3.
15. Zestaw według zastrz. 13, znamienny tym, że bufor jest wybrany z grupy TRIS HCl, bufor fosforanowy, HEPES, BisTRIS, korzystnie TRIS-HCI.
16. Zastosowanie hydrolizy in vitro nowego związku określonego w zastrzeżeniu 1 w pozycji 5 poprzez proteasom 20S do wykrywania nowotworów, korzystnie nowotworu pęcherza.
PL408905A 2014-07-17 2014-07-17 Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów PL225341B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL408905A PL225341B1 (pl) 2014-07-17 2014-07-17 Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL408905A PL225341B1 (pl) 2014-07-17 2014-07-17 Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL408905A1 PL408905A1 (pl) 2016-01-18
PL225341B1 true PL225341B1 (pl) 2017-03-31

Family

ID=55072340

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL408905A PL225341B1 (pl) 2014-07-17 2014-07-17 Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL225341B1 (pl)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3431490A1 (en) * 2017-07-17 2019-01-23 Uniwersytet Gdanski Chemical compounds for use as diagnostic markers of inflammation and neoplams, the method for synthesis of the chemical compounds, diagnostic kit for use in diagnosis of inflammatory processes and epithelial neoplasms and in vitro diagnostic method of inflammatory processes and epithelial neoplasms
PL422233A1 (pl) * 2017-07-17 2019-01-28 Uniwersytet Gdański Nowy związek, sposób jego otrzymywania, zestaw zawierający nowy związek oraz zastosowanie nowego związku do wykrywania nowotworów nabłonkowych.
WO2020017984A1 (en) * 2018-07-14 2020-01-23 Uniwersytet Gdanski Chemical compounds for use as diagnostic markers of inflammation and neoplasms
EP3919911A1 (en) * 2020-06-04 2021-12-08 Urteste S.A. Novel diagnostic marker for prostate cancer

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3431490A1 (en) * 2017-07-17 2019-01-23 Uniwersytet Gdanski Chemical compounds for use as diagnostic markers of inflammation and neoplams, the method for synthesis of the chemical compounds, diagnostic kit for use in diagnosis of inflammatory processes and epithelial neoplasms and in vitro diagnostic method of inflammatory processes and epithelial neoplasms
PL422233A1 (pl) * 2017-07-17 2019-01-28 Uniwersytet Gdański Nowy związek, sposób jego otrzymywania, zestaw zawierający nowy związek oraz zastosowanie nowego związku do wykrywania nowotworów nabłonkowych.
PL238575B1 (pl) * 2017-07-17 2021-09-06 Univ Gdanski Związek oraz jego zastosowanie do wykrywania nowotworów nabłonkowych
WO2020017984A1 (en) * 2018-07-14 2020-01-23 Uniwersytet Gdanski Chemical compounds for use as diagnostic markers of inflammation and neoplasms
EP3919911A1 (en) * 2020-06-04 2021-12-08 Urteste S.A. Novel diagnostic marker for prostate cancer
WO2021246883A1 (en) * 2020-06-04 2021-12-09 Urteste S.A. Novel diagnostic marker for prostate cancer

Also Published As

Publication number Publication date
PL408905A1 (pl) 2016-01-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL225341B1 (pl) Nowy związek, sposób jego otrzymywania, roztwór farmaceutyczny zawierający nowy związek, sposób określania obecności choroby nowotworowej, zestaw do wykrywania nowotworów oraz zastosowanie hydrolizy nowego związku do wykrywania nowotworów
KR20240099390A (ko) Fret 효소 기질 및 간암에서의 그 용도
Feliu et al. Synthesis of an 8‐Benzyl‐4‐(p‐substituted‐benzyl)‐1, 4, 8‐triazaspiro [4.5] decan‐2‐one Library on SynPhase TMLanterns
US20250270617A1 (en) Compound - diagnostic marker for kidney cancer, method for detecting enzymatic activity, method for diagnosis of kidney cancer, kit comprising the compound, uses of the compound and method for the treatment of kidney cancer
US20250003970A1 (en) Fret enzymatic substrate and uses thereof in lung cancer
US20250206777A1 (en) Compound - diagnostic marker for intestinal cancer, method for detecting enzymatic activity, method for diagnosis of intestinal cancer, kit comprising the compound, uses of the compound and method for the treatment of intestinal cancer
CN112794878B (zh) 去泛素化酶活性探针及其制备和应用
PL238575B1 (pl) Związek oraz jego zastosowanie do wykrywania nowotworów nabłonkowych
EP3431490B1 (en) Chemical compounds for use as diagnostic markers of inflammation and neoplams, the method for synthesis of the chemical compounds, diagnostic kit for use in diagnosis of inflammatory processes and epithelial neoplasms and in vitro diagnostic method of inflammatory processes and epithelial neoplasms
JP2026500952A (ja) 化合物 - 胆道がんの診断マーカー、酵素活性の検出法、胆道がんの診断法、本化合物を含むキット、本化合物の使用、及び胆道がんの治療法
PL245425B1 (pl) Związek-marker diagnostyczny raka trzonu macicy, sposób wykrywania aktywności enzymatycznej, sposób diagnozowania raka trzonu macicy, zestaw zawierający taki związek oraz związek do zastosowania medycznego
TWI776812B (zh) 血管收縮素-1-受體拮抗劑
HK40113726A (zh) 化合物-肾癌诊断标志物、酶活性检测方法、肾癌诊断方法、包含该化合物的试剂盒、化合物的用途及肾癌治疗方法
PL236125B1 (pl) Związki chemiczne mające zastosowanie jako markery diagnostyczne stanu zapalnego i nowotworów, sposób ich otrzymywania, marker diagnostyczny i metoda diagnozowania procesów zapalnych i nowotworów nabłonkowych
JP2025535688A (ja) 化合物 - 卵巣がん用診断マーカー、酵素活性の検出法、卵巣がんの診断法、本化合物を含むキット、本化合物の使用、及び卵巣がんの治療法
EP3464324B1 (en) Angiotensin-1-receptor antagonists
HK40129291A (zh) 化合物-用於胆道癌的诊断标志物、用於检测酶活性的方法、用於诊断胆道癌的方法、包括该化合物的试剂盒、该化合物的用途和用於治疗胆道癌的方法
HK40111059A (zh) 化合物——肠癌诊断标志物、酶活性检测方法、肠癌诊断方法、包含该化合物的试剂盒、化合物的用途和治疗肠癌的方法
Terrett Combinatorial Chemistry Online Volume 12, Issue 3, March 2010
PL238699B1 (pl) Związek chemiczny mający zastosowanie jako marker diagnostyczny nowotworów, sposób otrzymywania, metoda diagnozowania nowotworów nabłonkowych
HK40004701A (en) Angiotensin-1-receptor antagonists
HK40004701B (en) Angiotensin-1-receptor antagonists