PL227054B1 - Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny - Google Patents

Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny

Info

Publication number
PL227054B1
PL227054B1 PL409981A PL40998114A PL227054B1 PL 227054 B1 PL227054 B1 PL 227054B1 PL 409981 A PL409981 A PL 409981A PL 40998114 A PL40998114 A PL 40998114A PL 227054 B1 PL227054 B1 PL 227054B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
neopterin
polymer
layer
bitiophene
template
Prior art date
Application number
PL409981A
Other languages
English (en)
Other versions
PL409981A1 (pl
Inventor
Piyush S. Sharma
Agnieszka Wojnarowicz
Marta Sosnowska
Francis D'souza
Francis D’Souza
Włodzimierz Kutner
Original Assignee
Inst Chemii Fizycznej Polskiej Akademii Nauk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Inst Chemii Fizycznej Polskiej Akademii Nauk filed Critical Inst Chemii Fizycznej Polskiej Akademii Nauk
Priority to PL409981A priority Critical patent/PL227054B1/pl
Publication of PL409981A1 publication Critical patent/PL409981A1/pl
Publication of PL227054B1 publication Critical patent/PL227054B1/pl

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)
  • Polyoxymethylene Polymers And Polymers With Carbon-To-Carbon Bonds (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest nowy przewodzący polimer, zawierający monomery funkcyjne, kwas 2,2'-bitiofeno-5-borowy i p-bis(2,2'-bitieno-5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)etylowy oraz monomer sieciujący, 2,4,5,2',4',5'-heksa(tiofeno-2-ylo)-3,3'-bitiofen, molekularnie wdrukowany za pomocą neopteryny i sposób wytwarzania tego polimeru oraz jego zastosowanie jako warstwy rozpoznającej czujnika chemicznego do selektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny.
Neopteryna (ang. neopterin) (wzór 1 na Fig. 1) należy do rodziny pteryn (ang. pterins). Jest ona produktem przejściowym w syntezie biopteryny (ang. biopterin), która pełni funkcję kofaktora w syntezie neuroprzekaźników {Sucher, R., Schroecksnadel, K., Weiss, G., Margreiter, R., Fuchs, D. Brandacher, G., Cancer Lett. 287 (2010) 13}. Podwyższone stężenie neopteryny w płynach ustrojowych, takich jak surowica czy mocz u pacjenta po przeszczepie, może sygnalizować odrzucenie przeszczepionego narządu. Dlatego stężenie to jest parametrem monitorowanym u tych pacjentów {Carey, B.S., Jain, R., Adams, C L, Wong, K.Y., Shaw, S., Tse, W.Y., Kamiński, E.R., Transpl. Immunol. 28 (2013) 81}. Pomiary stężenia neopteryny są również stosowane do wykrywania ludzkiego wirusa obniżenia odporności (ang. human immunodeficiency viruse, HIV) u pacjentów zakażonych tym wirusem {Murr, C., Widner, B., Wirleitner, B., Fuchs, D., Curr. Drug Metabol. 3 (2002) 175}. Neopteryna może być także wykorzystana jako wskaźnik takich schorzeń jak choroby autoimmunologiczne, choroby układu krążenia, czy neurodegradacji, a także nowotwory złośliwe.
Do oznaczania neopteryny najczęściej stosowana jest wysokosprawna chromatografia cieczowa {Guibal, P., Leveque, N., Doummar, D., Giraud, N., Roze, E., Rodriguez, D., Couderc, R., Billette, T., Villemeur, D., Moussa, F., ACS Chem. Neurosci. 5 (2014) 533} i metoda radioimmunologiczna {Nagatsu, T., Sawada, M., Yamaguchi, T., Sugimoto, T., Matsuura, S., Akino, M., Nakazawa, N., Ogawa H., Anal. Biochem. 141 (1984) 472}. Niestety obie te metody są pracochłonne i kosztowne, a także wymagają wykwalifikowanej obsługi.
Niedogodnościom związanym ze stosowaniem wyżej wymienionych technik analitycznych mogą sprostać czujniki chemiczne z dedykowaną warstwą rozpoznającą neopterynę. W ostatnich kilku latach osiągnięto znaczne postępy w rozwoju selektywnych i powtarzalnie działających czujników chemicznych naśladujących rozpoznawanie występujące w naturze, na podobieństwo takich naturalnych receptorów jak na przykład przeciwciała {Huynh, T.-P., Pieta, P., D'Souza, F., Kutner, W., Anal. Chem, 85 (2013) 8304; Merkoci, A., Alegret, S., TrAC-Trends in Anal. Chem. 21 (2002) 717}. Do selektywnego i odwracalnego przyłączania neopteryny, w niniejszym zgłoszeniu zastosowaliśmy warstwę polimeru wdrukowanego molekularnie (ang. molecularly imprinted polimer, MIP) jako element rozpoznający takiego czujnika. Znane są publikacje, w których opisane jest wykorzystanie MIPów do wykrywania neopteryny {Huang, C.-Y., Hsieh, C.-H., Chen, Y.-L, Lee, M.-H., Lin, C.-F., Tsai, H.-H., Juang, Y.-Z., Liu, B.-D., Lin, H.-Y., IET Nanobiotechnol. 5 (2011) 126; Sole, R.D., Scardino, A., Lazzoi, M.R., Mergola, L., Scorrano, S., Vasapollo, G., Microchim. Acta 180 (2013) 1401}. Jednak ani nie wykazano w nich znaczącego wdrukowania, ani nie przedstawiono selektywności wytworzonych warstw MIP. Dlatego w niniejszym zgłoszeniu przedstawiamy przygotowanie MIPu z wykorzystaniem monomerów bisbitiofenowych jako monomerów funkcyjnych do wytworzenia warstwy MIPu wdrukowanego za pomocą neopteryny.
Celem niniejszego wynalazku jest opracowanie warstwy MIPu i sposobu jej przygotowania tak, aby mogła być wykorzystana jako element rozpoznający czujnika chemicznego do selektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny. Celem jest również sposób osadzania tej warstwy na przetworniku sygnału chemicznego za pomocą elektropolimeryzacji, korzystnie w warunkach potencjodynamicznych.
Zgodnie z wynalazkiem, rozpoznający przewodzący polimer bisbitiofenowy, charakteryzuje się tym, że stanowi go polimer monomerów funkcyjnych obejmujących kwas 2,2'-bitiofeno-5-borowy i p-bis(2,2'-bitien-5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)etylowy oraz monomeru sieciującego obejmującego 2,4,5,2',4',5'-heksa(tiofen-2-ylo)-3,3'-bitiofen, zawierający luki molekularne wdrukowane molekularnie za pomocą neopteryny.
Wynalazek ponadto obejmuje sposób wytwarzania rozpoznającego przewodzącego polimeru bisbitiofenowego, określonego w zastrz. 1, metodą wdrukowania molekularnego za pomocą elektropolimeryzacji korzystnie potencjodynamicznej, charakteryzujący się tym, że prowadzi się elektropolimeryzację monomerów funkcyjnych obejmujących kwas 2,2'-bitiofeno-5-borowy i p-bis(2,2'-bitieno5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)-etylowy, w obecności monomeru sieciującego 2,4,5,2',4',5'PL 227 054 B1
-heksa(tiofen-2-ylo)-3,3'-bitiofenu oraz w obecności neopteryny jako szablonu, który to szablon jest wdrukowywany molekularnie w trakcie tej elektropolimeryzacji, z wytworzeniem rozpoznającego przewodzącego polimeru bisbitiofenowego z wdrukowanym szablonem neopteryny, z którego po osadzeniu tak otrzymanego polimeru w postaci warstwy na przetworniku sygnału chemicznego - elektrodzie pracującej - wyekstrahowuje się szablon z użyciem roztworu buforu węglanowego zawierającego fluorek potasu i otrzymuje się rozpoznający przewodzący polimer bisbitiofenowy z lukami molekularnymi po wdrukowanym szablonie;
do elektropolimeryzacji stosuje się roztwór mieszaniny rozpuszczalników, korzystnie acetonitylu i 0,1 M NaOH w stosunku objętościowym jak, odpowiednio, 9:1, zawierający neopterynę, kwas
2,2'-bitiofeno-5-borowy, p-bis(2,2'-bitien~5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)etylowy i 2,4,5,2',4',5'heksa-(tiofen-2-ylo)-3,3'-bitiofen, korzystnie w stosunku molowym jak, odpowiednio, 1 : 2 : 2 : 6 i 0,1 M elektrolit podstawowy, korzystnie chloran(VII) tetrabutyloamoniowy ((TBA)CIO4); oraz elektropolimeryzację tę prowadzi się w zakresie potencjałów liniowo zmienianym w sposób cykliczny w zakresie od -0,50 do 2,50 V vs Ag/AgCI, przy szybkości zmian potencjałów ze stałą szybkością w zakresie od 5 mV/s do 5 V/s.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku, stosowany potencjał jest liniowo zmieniany w sposób cykliczny w zakresie od 0,50 do 1,40 V względem Ag/AgCI, ze stałą szybkością 50 mV/s.
Korzystnie, w sposobie według wynalazku, do osadzania stosuje się przetworn ik sygnału chemicznego/elektrodę pracującą wybraną spośród grupy stałych elektrod przewodzących, korzystnie elektrody platynowej i płytki szklanej z napylonym złotem.
Wynalazek również obejmuje zastosowanie rozpoznającego przewodzącego polimeru bisbitiofenowego określonego powyżej, w postaci warstwy, jako elementu rozpoznającego chemicznego czujnika do wykrywania i/lub selektywnego oznaczania neopteryny, zwłaszcza w próbkach biologicznych, korzystnie w moczu i we krwi, zwłaszcza do przetwarzania sygnału chemicznego rozpoznawania neopteryny na użyteczny sygnał analityczny, korzystnie za pomocą zmiany potencjału obwodu otwartego (ang. open circut potential, OCP).
Wynalazek jest bliżej przedstawiony za pomocą korzystnych przykładów wykonania, z odniesieniem do załączonego rysunku, na którym
Fig. 1 przedstawia wzory strukturalne neopteryny 1, kwasu 2,2'-bitiofeno-5-borowego 2, p-bis(2,2'-bitieno-5-ylo)metylobenzoesanu 2-(cytozy-1-ylo)etylowego 3 i 2,4,5,2',4',5'-heksa(tiofeno-2-ylo)-3,3'-bitiofenu 4
Fig. 2 przedstawia proponowany wzór strukturalny kompleksu pre-polimeryzacyjnego neopteryny 1 z monomerami funkcyjnymi, tj. p-bis(2,2'-bitieno-5-ylo)metylobenzoesanem 2-(cytozyno-1-ylo)etylowym 2 i kwasem 2,2'-bitiofeno-5-borowym 3
Fig. 3 przedstawia zmiany prądu w zależności od potencjału podczas osadzania warstwy MIPu za pomocą elektropolimeryzacji w warunkach potencjodynamicznych na platynowej elektrodzie dyskowej o średnicy 1 mm, przy czym polimeryzacja była prowadzona z zastosowaniem roztworu neopteryny 1, kwasu 2,2'-bitiofeno-5-borowego 2, p-bis(2,2'-bitien-5-ylo)metylobenzoesanu 2-(cytozyno-1-ylo)etylowego 3, 2,4,5,2',4',5'-heksa(tiofeno-2-yl)-3,3'-bitiofenu 4 i 0,1 M (TBA)CIO4 acetonitylu i 0,1 M NaOH, zmieszanych w stosunku objętościowym jak, odpowiednio, 9:1, przy potencjale zmienianym w zakresie od 0,50 do 1,40 V vs Ag/AgCI z szybkością 50 mV/s
Fig. 4 przedstawia histogram usuwania szablonu neopteryny z osadzonej warstwy MIPu przy różnych warunkach ekstrakcji
Fig. 5 przedstawia widma fluorescencji (1) warstwy osadzonej przez odparowanie DMSO z kropli roztworu neopteryny w DMSO, warstwy MlP-neopteryna (2) przed i (3) po ekstrakcji szablonu neopteryny oraz (4) warstwy NIP, wszystkie osadzone na pozłacanych płytkach szklanych, przy długości fali wzbudzającej 353 nm
Fig. 6 przedstawia zależność potencjału elektrycznego obwodu otwartego (OCP) od czasu platynowej elektrody dyskowej o średnicy 1 mm z osadzoną warstwą MIPu i wyekstrahowanym szablonem neopteryny dla różnych stężeń neopteryny w zastrzykiwanych roztworach, w warunkach analizy przepływowo-wstrzykowej (ang. flow injection analysis, FIA), przy czym jako roztwór nośny zastosowano mieszaninę 1 M buforu węglanowego o pH = 10 i 0,1 M KF oraz szybkość przepływu 35 pL/min i, co więcej, neopteryna była rozpuszczona w roztworze o takim samym składzie jak roztwór nośny a objętość zastrzyku roztworu neopteryny wynosiła 100 pL
Fig. 7 przedstawia krzywe kalibracji zmiany potencjału elektrycznego obwodu otwartego (OCP) platynowej elektrody dyskowej o średnicy 1 mm (1) z osadzoną warstwą MIPu wdrukowaną
PL 227 054 B1 za pomocą neopteryny i (2) z osadzoną warstwą polimeru niewdrukowanego molekularnie (ang. non-imprinted polimer, NIP) dla różnych stężeń analitu neopteryny Fig. 8 przedstawia krzywe kalibracyjne zmian potencjału elektrycznego obwodu otwartego (OCP) platynowej elektrody dyskowej o średnicy 1 mm z osadzoną warstwą MIPu wdrukowaną za pomocą neopteryny dla (i) analitu neopteryny oraz substancji przeszkadzających, takich jak (2)
6-biopteryna (ang. 6-biopterin), (3) pteryna (ang. pterin), (4) glukoza (ang. glucose), (5) ksantyna (ang. xanthine), (6) kreatynina (ang. creatinine) oraz (7) z osadzoną warstwą NIPu dla analitu neopteryny.
Korzystne przykłady wykonania wynalazku
P r z y k ł a d 1
Osadzanie warstwy MIPu na różnych elektrodach
Warstwy polimerów wdrukowanych molekularnie osadzono za pomocą elektropolimeryzacji w warunkach potencjodynamicznych, w kilku cyklach zmiany potencjału, na różnych elektrodach, w tym na platynowej elektrodzie dyskowej o średnicy 1 mm oraz na płytce szklanej z napyloną warstwą złota. Elektropolimeryzację prowadzono w zakresie potencjałów od 0,50 V do 1,40 V vs Ag/AgCI, przy szybkości zmian potencjałów 50 mV/s. Na Fig. 3 przedstawiono krzywe potencjodynamiczne osadzania warstwy MIPu na platynowej dyskowej elektrodzie. Do polimeryzacji zastosowano roztwór 0,25 mM neopteryny, 0,5 mM p-bis(2,2'-bitieno-5-ylo)metylobenzoesanu 2-(cytozyno-1-ylo)etylowego, 0,5 mM kwasu 2,2'-bitiofeno-5-borowego, 1,5 mM 2,4,5,2,,4,,5,-heksa(tiofeno-2-ylo)-3,3'-bitiofenu o stosunku molowym jak, odpowiednio, 1 : 2 : 2 : 6 w acetonitrylu i 0,1 M NaOH zmieszanych w stosunku objętościowym jak, odpowiednio, 9:1. Jako elektrolit podstawowy do elektropolimeryzacji zastosowano 0,1 M chloran(VII) tetrabutyloamonowy, (TBA)CIO4. Elektropolimeryzację przeprowadzono w układzie trójelektrodowym, w którym jako elektrodę pracującą zastosowano platynową elektrodę dyskową o średnicy 1 mm lub płytkę szklaną z napyloną warstwą złota. Jako przeciwelektrodę zastosowano zwinięty w helisę drucik platynowy o średnicy 1 mm. Po elektropolimeryzacji, osadzoną warstwę MIPu przemyto acetonitrylem w celu usunięcia pozostałości elektrolitu podstawowego.
Dla porównania przygotowano warstwę polimeru niewdrukowanego (ang. non-imprinted polimer, NIP). Warstwę tę osadzono według procedury opisanej powyżej, z roztworu niezawierającego neopteryny.
P r z y k ł a d 2
Usuwanie szablonu neopteryny z osadzonej warstwy MIPu
W celu sprawdzenia, czy szablon neopteryny został całkowicie wyekstrahowany z warstwy MIPu, osadzono warstwę MIPu na płytce szklanej z napylonym złotem według procedury opisanej w Przykładzie 1. Do ekstrakcji zastosowano roztwór 0,1 M buforu węglanowego o pH = 10 i 0,1 M KF. Na Fig. 4 przedstawiono histogram usuwania neopteryny z MIPu dla różnych warunków ekstrakcji. Szablon neopteryny został usunięty w największym stopniu, jeżeli do elektrody spolaryzowanej stałym potencjałem do 0,50 V vs Ag/AgCI przyłożono napięcie zmienne o amplitudzie 10 mV i częstotliwości 20 Hz. Ekstrakcję prowadzono przez 90 min.
Do potwierdzenia wymycia szablonu neopteryny z warstwy MIPu wykorzystane zostały pomiary fluorescencyjne, które przeprowadzono za pomocą spektrofluorymetru Fluorolog-3 model FL3-22 firmy Horiba Jobin Yvon. Napylone złotem płytki szklane z osadzoną warstwą MIPu mocowane były w uchwycie do próbek stałych model J1933 pod kątem 30° względem promieni padających ze źródła światła wzbudzającego. Pomiary były prowadzone przy długości fali wzbudzenia 353 nm.
Na Fig. 5 przedstawiono widma fluorescencji warstwy MIPu przed i po ekstrakcji szablonu neopteryny, a także widma warstwy NIPu jako próby kontrolnej i warstwy neopteryny osadzonej przez odparowanie DMSO z kropli roztworu neopteryny w DMSO. Przy tej długości fali wzbudzającej maksimum intensywności fluorescencji neopteryny występowało przy długości fali 424 nm. Pasmo fluorescencji warstwy MIPu widoczne przed ekstrakcją szablonu neopteryny znika po jego ekstrakcji. Widmo po ekstrakcji jest podobne do widma warstwy NIPu, co potwierdza całkowite wymycie neopteryny z warstwy MIPu.
P r z y k ł a d 3
Oznaczanie neopteryny za pomocą pomiaru zmiany potencjału obwodu otwartego (OCP) w warunkach analizy przepływowo-wstrzykowej (FIA)
W celu oznaczenia neopteryny za pomocą pomiaru zmiany OCP w warunkach analizy przepływowo-wstrzykowej zastosowano platynową elektrodę dyskową o średnicy 1 mm z warstwą MIPu osadzoną według procedury opisanej w Przykładzie 1. Następnie z warstwy tej wyekstrahowano szablon
PL 227 054 B1 neopteryny zgodnie z procedurą podaną w Przykładzie 2. Wówczas elektrodę tę umieszczono w naczynku przepływowym {Soucaze-Guillous, B. Kutner, W., Electroanalysis 9 (1997) 32} o pojemności ~35 mL wypełnionym roztworem nośnym, tj. mieszaniną roztworu 0,1 M buforu węglanowego o pH = 10 i 0,1 M KF. Elektroda została umieszczona w odległości 300 μΜ nad wylotem kapilary doprowadzającej roztwór nośny do naczynka przepływowego. Elektrodę tę precyzyjnie ustawiono za pomocą śruby mikrometrycznej tego naczynka. Elektrodą pomocniczą był drut platynowy zwinięty w helisę, natomiast elektrodą odniesienia była elektroda Ag/AgCI. Naczynko zostało podłączone do potencjostatu model SP-300 firmy BioLogic SAS (Claix, Francja) sterowanego oprogramowaniem EC-LAB® tej samej firmy. Następnie przez naczynko przepuszczono roztwór nośny, z szybkością przepływu 35 μL/min, za pomocą efuzyjnej pompy strzykawkowej model 78/100 firmy KD Scientific (Holliston MA, USA). Do zastrzykiwania próbek zastosowano obrotowy zawór dozujący model 7725i firmy Rheodyne (Cotati CA, USA). Objętość zastrzykiwanej próbki wynosiła 100 μL. Próbki neopteryny rozpuszczono w roztworze o takim samym składzie jak skład roztworu nośnego.
Wyniki pomiarów rejestrowano jako zmianę OCP funkcji czasu. Na Fig. 6 przedstawiono zmiany OCP dla kolejnych zastrzyków roztworu neopteryny o różnych stężeniach. W celach porównawczych wykonano takie same pomiary dla platynowej elektrody dyskowej pokrytej warstwą NIPu. Współczynnik wdrukowania, tj. stosunek nachylenia krzywej kalibracyjnej skonstruowanej za pomocą elektrody pokrytej warstwą MIPu do NIPu wyniósł 6,13. Krzywe kalibracyjne dla warstwy MIPu i NIPu są przedstawione na Fig. 7.
P r z y k ł a d 4
Wyznaczanie selektywności chemoczujnika z warstwą MIPu z wdrukowaną neopteryną za pomocą pomiaru zmiany potencjału obwodu otwartego
Selektywność chemosensora wyznaczono za pomocą szeregu pomiarów zmiany OCP platynowej elektrody dyskowej o średnicy 1 mm pokrytej warstwą MIPu z wdrukowaną neopteryną z wyekstrahowanym szablonem neopteryny. Wyniki tych pomiarów przedstawiono w postaci krzywych kalibracyjnych na Fig. 8. Do tych pomiarów wykorzystano zarówno analit neopterynę jak i substancje przeszkadzające w jej oznaczaniu, o strukturze podobnej do struktury neopteryny, w tym 6-biopterynę (ang. 6-biopterin), pterynę (ang. pterin) i substancje, które są składnikami płynów ustrojowych, w tym glukozę (ang. glucose), ksantynę (ang. xanthine) i kreatyninę (ang. creatinine). Z nachylenia krzywych kalibracyjnych wyznaczono czułość chemosensora z warstwą MIPu względem tych substancji, a także wyznaczono selektywność, to znaczy stosunek czułości chemosensora względem neopteryny do jego czułości względem substancji przeszkadzającej (Tabela 1).
T a b e l a 1
Czułość i selektywność chemosensora z warstwą MIPu, wdrukowaną za pomocą neopteryny, względem substancji przeszkadzających w oznaczaniu neopteryny
Warsztwa rozpoznająca / Analit Czułość ± odchyl. stand. Mv mM-1 Selektywność
MIP-neopteryna / neopteryna -7,01 ± 0,15 -
MIP-neopteryna / 6-biopteryna -0,10 ± 1,08 69,72
MIP-neopteryna / pteryna -2,01 ± 0,15 3,49
MIP-neopteryna / glukoza 0 -
MIP-neopteryna / ksantyna 0 -
MIP-neopteryna / kreatynina -0,42 ± 0,12 16,68
Wnioski
Elektropolimeryzacja w warunkach potencjodynamicznych zapewnia osadzanie warstwy MIPu wdrukowanego neopteryną o grubości i homogeniczności odpowiedniej do oznaczania neopteryny.
Zastosowane warunki ekstrakcji w największym stopniu umożliwiają wymycie szablonu neopteryny z warstwy MIPu.
Zastosowanie chemosensora w pomiarach OCP w warunkach analizy przepływowo-wstrzykowej sprawia, że oznaczanie neopteryny jest szybkie i powtarzalne, co umożliwia oznaczanie neopteryny w analizie on line.

Claims (5)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Rozpoznający przewodzący polimer bisbitiofenowy, znamienny tym, że stanowi go polimer monomerów funkcyjnych obejmujących kwas 2,2'-bitiofeno-5-borowy i p-bis(2,2'-bitien-5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)etylowy oraz monomeru sieciującego obejmującego 2,4,5,2',4',5'-heksa(tiofen-2-ylo)-3,3'-bitiofen, zawierający luki molekularne wdrukowane molekularnie za pomocą neopteryny.
  2. 2. Sposób wytwarzania rozpoznającego przewodzącego polimeru bisbitiofenowego, określonego w zastrz. 1, metodą wdrukowania molekularnego za pomocą elektropolimeryzacji korzystnie potencjodynamicznej, znamienny tym, że prowadzi się elektropolimeryzację monomerów funkcyjnych obejmujących kwas 2,2'-bitiofeno-5-borowy i p-bis(2,2'-bitieno-5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)-etylowy, w obecności monomeru sieciującego 2,4,5,2‘,4‘,5‘-heksa(tiofen-2-ylo)-3,3‘-bitiofenu oraz w obecności neopteryny jako szablonu, który to szablon jest wdrukowywany molekularnie w trakcie tej elektropolimeryzacji, z wytworzeniem rozpoznającego przewodzącego polimeru bisbitiofenowego z wdrukowanym szablonem neopteryny, z którego po osadzeniu tak otrzymanego polimeru w postaci warstwy na przetworniku sygnału chemicznego - elektrodzie pracującej - wyekstrahowuje się szablon z użyciem roztworu buforu węglanowego zawierającego fluorek potasu i otrzymuje się rozpoznający przewodzący polimer bisbitiofenowy z lukami molekularnymi po wdrukowanym szablonie;
    do elektropolimeryzacji stosuje się roztwór mieszaniny rozpuszczalników, korzystnie acetonitylu i 0,1 M NaOH w stosunku objętościowym jak, odpowiednio, 9:1, zawierający neopterynę, kwas 2,2'-bitiofeno-5-borowy, p-bis(2,2‘-bitien-5-ylo)metylobenzoesan 2-(cytozy-1-ylo)etylowy i 2,4,5,2',4',5'-heksa(tiofen-2-ylo)-3,3'-bitiofen, korzystnie w stosunku molowym jak, odpowiednio, 1 : 2 : 2 : 6 i 0,1 M elektrolit podstawowy, korzystnie chloran(VII) tetrabutyloamoniowy ((TBA)CIO4);
    oraz elektropolimeryzację tę prowadzi się w zakresie potencjałów liniowo zmienianym w sposób cykliczny w zakresie od -0,50 do 2,50 V vs Ag/AgCI, przy szybkości zmian potencjałów ze stałą szybkością w zakresie od 5 mV/s do 5 V/s.
  3. 3. Sposób według zastrz. 2 albo 3, znamienny tym, że stosowany potencjał jest liniowo zmieniany w sposób cykliczny w zakresie od 0,50 do 1,40 V względem Ag/AgCI, ze stałą szybkością 50 mV/s.
  4. 4. Sposób według zastrz. 2 albo 3, albo 4, znamienny tym, że do osadzania stosuje się przetwornik sygnału chemicznego - elektrodę pracującą - wybraną spośród grupy elektrod stałych, korzystnie platynowej elektrody dyskowej i płytki szklanej z napylonym złotem.
  5. 5. Zastosowanie rozpoznającego przewodzącego polimeru bisbitiofenowego określonego w zastrz. 1, w postaci warstwy, jako elementu rozpoznającego chemicznego czujnika do wykrywania i/lub selektywnego oznaczania neopteryny, zwłaszcza w próbkach biologicznych, korzystnie w moczu i we krwi, zwłaszcza do przetwarzania sygnału chemicznego rozpoznawania neopteryny na użyteczny sygnał analityczny, korzystnie za pomocą zmiany potencjału obwodu otwartego (ang. open circut potential, OCP).
PL409981A 2014-11-03 2014-11-03 Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny PL227054B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL409981A PL227054B1 (pl) 2014-11-03 2014-11-03 Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL409981A PL227054B1 (pl) 2014-11-03 2014-11-03 Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL409981A1 PL409981A1 (pl) 2016-05-09
PL227054B1 true PL227054B1 (pl) 2017-10-31

Family

ID=55910508

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL409981A PL227054B1 (pl) 2014-11-03 2014-11-03 Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL227054B1 (pl)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL233295B1 (pl) * 2017-09-15 2019-09-30 Inst Chemii Fizycznej Polskiej Akademii Nauk Polimer wdrukowany molekularnie za pomocą p-synefryny, sposób jego otrzymywania oraz zastosowanie
PL238793B1 (pl) * 2017-09-15 2021-10-04 Inst Chemii Fizycznej Polskiej Akademii Nauk Polimer wydrukowany molekularnie z wbudowanym próbnikiem redoks i solą dostarczającą przeciwjony oraz selektywny czujnik chemiczny do elektrochemicznego oznaczania wybranych analitów z warstwą polimeru wydrukowanego molekularnie, jako jednostką rozpoznającą

Also Published As

Publication number Publication date
PL409981A1 (pl) 2016-05-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wang et al. Molecularly imprinted polymer (MIP) based electrochemical sensors and their recent advances in health applications
Yeasmin et al. Nano gold-doped molecularly imprinted electrochemical sensor for rapid and ultrasensitive cortisol detection
Liu et al. Electrochemical sensor based on a poly (para-aminobenzoic acid) film modified glassy carbon electrode for the determination of melamine in milk
Florea et al. Electrochemical sensing of cocaine in real samples based on electrodeposited biomimetic affinity ligands
Pietrzyk et al. Molecularly imprinted polymer (MIP) based piezoelectric microgravimetry chemosensor for selective determination of adenine
Khan et al. Recent advances in electrochemical and optical sensors for detecting tryptophan and melatonin
Shekarchizadeh et al. Selective determination of sucrose based on electropolymerized molecularly imprinted polymer modified multiwall carbon nanotubes/glassy carbon electrode
Chasta et al. Molecularly imprinted sensor based on o-aminophenol for the selective determination of norepinephrine in pharmaceutical and biological samples
Benachio et al. Employing molecularly imprinted polymers in the development of electroanalytical methodologies for antibiotic determination
CN102621209A (zh) 一种检测黄曲霉毒素b1的印迹膜传感电极
CN110057878B (zh) 一种氯胺酮毒品的分子印迹电化学检测方法
Gillis et al. Electrochemical measurement of quantal exocytosis using microchips
PL227054B1 (pl) Nowy przewodzacy polimer bisbitiofenowy, wdrukowany molekularnie zapomoca neopteryny, isposób jego przygotowania oraz zastosowanie tego polimeru jako warstwy rozpoznajacej czujnika chemicznego doselektywnego wykrywania i/lub oznaczania neopteryny
Tadi et al. Voltammetric determination of pindolol in biological fluids using molecularly imprinted polymer based biomimetic sensor
Ebrahimi et al. Aptasensing of rivaroxaban in human plasma using KCC-1-NH-CS2 modified conductive nano-ink: A new biosensor
Lakshmi et al. Development of Uric Acid Sensor Based on Molecularly Imprinted Polymer‐Modified Hanging Mercury Drop Electrode
CN109060764A (zh) 一种功能化的sers平台制备方法及其对atp的检测应用
CN104597092B (zh) 一种双氰胺分子印迹聚合物膜电极的制备方法
Liu et al. Xanthine microsensor based on polypyrrole molecularly imprinted film modified carbon fiber microelectrodes
Weetall et al. Electrochemically deposited polymer‐coated gold electrodes selective for 2, 4‐dichlorophenoxyacetic acid
Bai et al. A novel sensitive electrochemical sensor for podophyllotoxin assay based on the molecularly imprinted poly-o-phenylenediamine film
Zhai et al. Real-time calcium uptake monitoring of a single renal cancer cell based on an all-solid-state potentiometric microsensor
Karim-Nezhad et al. Signal amplification for sumatriptan sensing based on polymeric surface decorated with Cu nanoparticles
Zehra et al. A Conjugated Polymer‐Based Portable Smartphone Platform for Sensitive and Point‐Of‐Care Detection of Monoamine Neurotransmitter
CN102735711B (zh) 测量溶液中的微量待测物浓度的方法及麻醉剂感测晶片