SU1554766A3 - Способ получени человеческого инсулина формулы I @ -Т @ -ОН или его производных - Google Patents

Способ получени человеческого инсулина формулы I @ -Т @ -ОН или его производных Download PDF

Info

Publication number
SU1554766A3
SU1554766A3 SU823414346A SU3414346A SU1554766A3 SU 1554766 A3 SU1554766 A3 SU 1554766A3 SU 823414346 A SU823414346 A SU 823414346A SU 3414346 A SU3414346 A SU 3414346A SU 1554766 A3 SU1554766 A3 SU 1554766A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
insulin
ins
thr
reaction
carboxypeptidase
Prior art date
Application number
SU823414346A
Other languages
English (en)
Inventor
Бреддам Клаус
Таанинг Ехансен Джек
Видмер Фред
Original Assignee
Карлсберг Биотекнолоджи, Лтд, А/С (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Карлсберг Биотекнолоджи, Лтд, А/С (Фирма) filed Critical Карлсберг Биотекнолоджи, Лтд, А/С (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU1554766A3 publication Critical patent/SU1554766A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/62Insulins

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биохимии. Цель изобретени  - повышение выхода целевого продукта за счет избежани  предварительного отщеплени  аминокислоты В-30 в свином инсулине. Способ предусматривает введение свиного инсулина в реакцию ферментативного замещени  с водным раствором или дисперсией, содержащей амид треопина или сложный эфир треопина формулы H-TR-OR3, где R3  вл етс  C1-C6-алкилом, при PH 7,0 - 9,5 при исходных концентраци х свиного инсулина и амида треопина или от 0,05 до 3 М соответственно. В качестве фермента используют сериновую карбоксипептидазу микробного происхождени  специфическую дл  субстратов, имеющих C-концевую Z-аминокислоту. В результате образуетс  одно из производных инсулина. Дл  получени  человеческого инсулина отщепл ют одну из групп -NH2, - THR-NH2 и OR3 путем взаимодестви  той же самой или иной 4 - специфической карбоксипептидазы в водном растворе или дисперсии при PH от 9 до 10,5. Выход инсулина повышаетс  до 75%. 3 табл. 3 ил.

Description

Изобретение относитс  к биотехнологии и касаетс  получени  человеческого инсулина или его производных. 1 Цель изобретени  - повышение выхода целевого продукта за счет избе
см
жани  предварительного отщеплени  В-30 Ala.
Изобретение заключаетс  в том, что осуществл ют процесс ферментативного замещени  В-30 аминокислоты в
свином инсулине формулы Ins - Ala - ОН с помощью сериновой карбоксипепти- дазы микробного происхождени , специфической дл  субстратов, имеющих С-концевую L-аминокислоту, водном растворе или дисперсии, содержащей амид треопина или сложный эфир треопина формулы Н - Thr - OR, где R 5 С - С6 -алкил, и представл ет со бой, например, метильный, этильный, пропильный, изопропильный, бутильный изобутильный, трет-бутильный, амиль- ный, гексильный и им подобные радикалы , в которых дл  получени  человеческого инсулина в качестве целевого продукта отщепл ют одну из групп производных инсулина -NH4, -Thr - NH и OR3, использу  ту же самую или иную L - специфическую се- риновую карбоксипептидазу.
Указанные группы могут быть замещены заместител ми, которые  вл ютс  инертными по отношению к энзиму, например атомами галогена (фтора, хло- ра, брома, иода), нитрогруппой, ал- коксильной группой (метоксильной, этоксильной и т.д.) или алкильной группой (метильной, этильной и т.д.)
Так, в случае типов сложных эфи- ров группа ORj предпочтительно принадлежит к р ду, состо щему из ал- коксильных групп, например метоксильной , этоксильной или трет-бутоксиль- ной, фенилоксильной группы к бензил- оксильной группы. Указанные группы могут быть замещены инертными растворител ми , например нитрогруппами (п-нитробензилоксигруппа).
Первоначально свиной инсулин ввод т в реакционный водный раствор или дисперсии, содержащей амид треопина или сложный эфир треопина указанной формулы, после чего добавл ют энзим сериновой карбоксипептидазы. Предпочтительным энзимом  вл етс  CPD-Y из пекарских дрожжей, но может также использоватьс  пеницилло- карбоксипептидаза или серинова  карбоксипептидаза из Aspergillus sp. прорастающего  чмен  или других источников .
Предлагаемый способ осуществл ют при значени х рН 7,0-10,5, предпочтительно 7,5-10,5„ Предпочтительное значение рН, которое часто лежит в очень узком диапазоне значений, зависит от оптимального и минимального значений рН соответственно дл  раз
0
Q
5
5
5
0
0
5
0
личных видов энзиматической активности используемого энзима. Значение рН следует выбирать таким образом , чтобы активности были уравновешены .
В том случае, когда в качестве энзима используют карбоксипептидаэу У, предпочтительные значени  рН 7,5-10,5, более предпочтительные 9,0-10,5. Наиболее предпочтительным  вл етс  нижнее значение рН из указанного предпочтительного диапазона в тех случа х, когда требуетс  проводить выделение промежуточных инсу- линамидов.
Выбранное предпочтительное значение рН следует поддерживать в ходе реакции сочетани , затем его можно изменить при осаждении продукта реакции , отщеплении защитных групп и т.д. Значение рН может быть выбрано таким образом, чтобы энзим про вл л амидаэную активность, в результате чего предотвращаетс  осаждение образующегос  инсулинамида и создаетс  возможность дл  образовани  желаемого инсулина в одну стадию. Можно также выбрать значение рН, при котором энзим про вл ет преимущественно пептидазную активность, в результате чего осуществл етс  режим, способствующий образованию стабильных промежуточных продуктов - инсу- линамидов.
Контроль над рН осуществл ют введением стабильного буферного раствора дл  соответствующего диапазона рН в реакционную среду (например дл  этой цели можно использовать би- карбонатный буфер).
Значение рН поддерживают добавлением кислоты, например сол ной, или основани , например гидрата окиси натри , в процессе реакции. Это может быть осуществлено с использованием рН-стата.
Реакцию провод т в водной среде, котора  может содержать до 50 об.% органического растворител  алкано- лы, например метанол и этанол, гли- коли, например этиленгликоль или пропиленгликоль, диметилформамид, диметилсульфоксид, тетрагидрофуран, диоксан и диметоксиэтан.
Выбор состава реакционной среды зависит, в частности, от растворимости , температуры и значени  рН дл  компонентов реакционной среды и
получающегос  инсулина, а также от стабильности энзима.
Реакционна  среда может также включать компоненты, которые делают энзим нерастворимым, но сохран ют при этом значительную долю его энзи- матической активности, например ионообменные смолы.
В альтернативном варианте энзим может быть иммобилизован, например, в результате св зывани  в матрице, например в сшитом декстране или агарозе, или в двуокиси кремни , полиамиде или целлюлозе, или же путе капсулировани  в полиакриламиде, альгинатах или волокнистых материалах . Кроме того, возможна модификаци  энзима химическими методами, предпочтительно сол ми ртути, с цель увеличени  его стабильности или улучшени  его энзиматических свойств
В том случае, когда желательно подавить какое-либо осаждение промежуточно образующихс  инсулиамидов, реакционна  среда содержит мочевину или хлоргидрат гуацидина в концентрации до 3 моль/л. Это может быть также предпочтительным при рН в среде, в который используемый в качестве субстрата инсулин имеет ограниченную растворимость.
Предпочтительна  исходна  концентраци  дл  используемого в качестве субстрата инсулина лежит в пределах 0,002-0,5 моль/л, а аминного компонента- в пределах 0,05-3 ммоль/л.
Энзиматическа  активность может мен тьс  сама по себе, но концентраци  энзима предпочтительно должна составл ть величину 10 -10 моль/л наиболее предпочтительно - моль/л Наиболее пригодное значение активности зависит от концентрации субстрата , от концентрации амина и времени проведени  реакции.
Согласно изобретению температура, при которой проводитс  реакци , предпочтительно лежит в пределах 20- 40°С. Наиболее удобна  температура в услови х данного синтеза может быть определена экспериментально. В частности , она зависит от используемого в качестве аминного компонента вещества и от концентрации энзима. Пригодные температуры лежат обычно в пределах 20-30 С, предпочтительно 25°С. При температурах ниже 20 С врем  проведени  реакции обычно слишком
1554766
велико,
а использование температур
0
5
выше 40 С часто вызывает проблемы, св занные со стабильностью энзимов и/или реагентов или продуктов реакции .
Аналогичные варианты возможны и дл  времени проведени  реакции, которое очень сильно зависит от прочих параметров реакции, в особенности от концентрации энзима. Стандартное врем  проведени  реакции согласно изобретению составл ет примерно 2-6 ч.
При использовании в качестве аминного компонента амида или замещенного амина желательно специальное разложение амидной группы в получаемом инсулинамиде. Б этом отношении карбоксипептидазы, в особенности карбоксипептидаза Y,  вл ютс  весьма пригодными, поскольку указанна  карбоксипептидаза Y про вл ет ами- дазную активность при рН выше 9, в 5 то врем  как ее карбоксипептидазна  активность становитс  незначительной
Указанна  карбоксипептидаза может быть вообще использована дл  разложени  сложноэфирных групп
0
0
0
5
OR
,, в промежуточно образующихс 
сложных эфирах инсулина с получением готового инсулина, не содержа- щего С-конечной защищенной группы.
Исходные материалы.
Свиной инсулин был представлен 5 лабораторией инсулина Нордиск, Копенгаген. Карбоксипептидазу Y из пекарских дрожжей (промышленного производства Карлсбергских пекарен) выдел ли модифицированным методом афинной хроматографии, получа  в результате лиофилнзированный порошок , содержащий 10% энзима в цитрате натри . Перед употреблением энзим подвергают обессоливанию на колонке 1,5-25 см с Сефадексом Г-25, примен   в качестве растворител  и элюен- та воду. Концентрацию энзима определ ют спектрофотометр.ически, исполь0
5
зу  14,8. Используемый энзим не содержит протеазу А.
L - Треонинамид поставл ла фирма Вега-4 окс,Аризона, США, метиловый эфир L-треонина - фирма Фулка, Швейцари , а L-треонин, дансилхлорид, карбоксипептидазу А и трипсин - фирма Сигма, США. Хроматографические материалы поставл лись фирмой 1 Фармаци , Швеци . Все прочие peaгенты и растворители марки Аналитически чистый поставл лись фирмой Мерк, ФРГ.
Анализ аминокислот. Образцы дл  анализа аминокислот получали в результате гидролиза 6 М НС1 при в вакууме в течение 24 ч. Анализ проводилс  на анализаторе аминокислот Дюррум Д-500. Состав аминокислот определ лс  из расчета на известное количество ас- парагиновой кислоты и глицина. Единственными аминокислотами, на которы оказывают вли ние проводимые реакции ,  вл ютс  треонин, лизин и ала- нин. Соответствующие значени  дл  указанных аминокислот, содержащихс  в свином инсулине (инсулине человека ), составл ют: треонин 1,93 (2,87 лизин 0,97 (0,98) и аланин 2,00 (1,05). Количество непревращенного свиного инсулина в реакционной смеси определ лось анализом аланина в инсулине хроматографическим методом на Сефадексе Г-50. Выход реакции сочетани  определ лс  как количеств получаемого - продукта, поделенное на все количество инсулина, израсходованного в ходе реакции.
Приготовление карбоксипептидазы (пример 2 и 3).
К 100 мкл раствора инсулина или производных инсулина (0,7 мг/мл) в 0,1 М трис-HCl (рН 7,5) добавл ют 10 мкг карбоксипептидаэы А После выдерживани  при комнатной температре в течение 6 ч реакцию останавливают добавлением эквивалентного объ ема 0,5 М НС1, и количество освобожденных аминокислот определ ют в результате проведени  анализа аминокислот .
Энзиматическа  обработка производных инсулина (пример 4).
Обработка различных производных инсулина карбоксипептидазами А и Y проводилась в 0,05 М трис-буфере (рН 7,5) при комнатной температуре с использованием инсулина в количестве , составл ющем примерно 1,5 мМ, и карбоксипептидазы - 5 мкМ Врем  реакции 3 ч в случае карбоксипептидазы Аи 1,5 часа в случае карбоксипептидазы Y. При указанных услови х достигалось наибольшее количество освобожденных С-конечньгх аминокислот. После подкислени  НС1 аликвоты брались непосредственно
дл  проведени  анализа аминокислот на анализаторе.
Последовательность С-конечной части в различных производных инсулина определ лась после обработки трипсином и реакции продукта этой обработки с дансилхлоридом с последующей идентификацией дансилпептиQ дов. Обработка производных инсулина трипсином производилась в 0,1 М кислого карбоната натри  при рН 8,2 с использованием 1 мМ инсулина, 40 мкМ ДРСС-трипсина и при времени
5 инкубировани  1 ч. Предварительные эксперименты со свиным инсулином показали, что эти услови  пригодны дл  полного освобождени  С-конеч- ного аланильного остатка из
Q В-цепи. Освобождаемые аминокислоты или дипептиды подвергались данси- лированию согласно следующему способу . Образец в 100 мкл продукта обработки трипсином гас т добавлени5 ем 100 мкл 0,5 М сол ной кислоты, аликвоты разгон ют досуха и снова раствор ют в 100 мкл 0,1 М кислого карбоната натри  (рН 3,2), после чего добавл ют 10 мкл дансилхлорио |Да (5 мг/мл) в ацетоне и инкубируют реакционную смесь в течение 2 ч при 37°С. Затем реакционную смесь анализируют методом жидкостной хроматографии под высоким давлением, использу  систему дл  жидкостной хроматографии фирмы Уотерс, состо щую из инжектора (Мод.бЮ, двух насосов (Мод.бОООА), программного устройства дл  раствора (Мод.660),
детектора-УФ (Мод 450), устройства дл  обработки данных Уотерс) и устройства радиального сжати  (Уотерс, РСМ-100), оборудованного колонкой радиального наполнени  Уотерс -А (обратна  фаза С-18). Были синтезированы следующие стандартные соединении: Днс-Ала-ОН, Днс-тре-ОН, Днс-Ала-Тре-ОН, Днс-Тре- Тре-ОН, Днс-Тре-Ш2, Днс-Tpe-Tpe-NHi |И Днс-Ала-Тре-МН. Все 7 дансильных производных могут быть легко разделены методом жидкостной хроматографии под высоким давлением с использованием двух различных программ.
На фиг.1 изображено протекание реакции между свиным инсулином и L-треонинамидом с использованием в качестве катализатора карбоксипептидазы Y (результаты анализа
5
5
аминокислот приведены в зависимости от времени проведени  реакции.) ; на фиг.2 - протекание аналогичной реакции, в которой в качестве аминного компонента используетс  метиловый эфир L-треонина} на фиг.З - профиль элюиронани  дл  ионообменной хроматографии продукта реакции между свиным инсулином и треонинамидом.
Пример 1. (исследовани  проводили согласно имеющемус  уровню техники)„
Свиной инсулин инокулируют с карбоксипептидазон Y при 25 С и рН 5-7 (в диапазоне рН, в котором указанный энзим про вл ет максимальную пептидазную активность). В результате обработки из С-конца В-цепи освобоадаютс  следующие аминокислоты: аланин 1,0 лизин 1,0; пролин 1,0; треонин 1,0 тирозин 1,0 и фенилаланин 2,0. В положении В-23 (глицин) карбоксипептидаза Y прекращает свое воздействие, следовательно , можно освободить первые 7 аминокислот в В-цепи инсулина. Неожиданным  вл етс  тот факт, что С-конечный аспарагин (A-2U цепи А вообще не освобождаетс . При рН 9,5 С-конечный аланин в цепи В освобождаетс  значительно быстрее последующих аминокислот. Важным  вл етс  тот факт, что св зь лейцин - тира- зин (В-15-16) не подвергалась гидролизу вообще, когда использовалась очищенна  карбоксипептидаза Y, не содержаща  протеазы А (эндопептида- зы), в противоположность препаратам поставл емым промышленностью из других источников.
Пример 2. Превращение свиного инсулина в инсулин человека с использованием треонинамида в качесве аминного компонента без выделени  промежуточного инсулинамида.
К 2 мМ раствору свиного инсулина не содержащему цинк, в 10 мМ ЭДТА добавл ют раствор 0,1 М КС1, содержащий 0,5 М L-треонинамида, а при рН 9,5 и температуре 25 С ввод т 50 мкМ карбоксипептидазы Y. рН реакционной смеси поддерживают на посто нном уровне в результате введени  0,5 М раствора гидрата окиси натри , использу  дл  этой цели рН-стат. От реакционной смеси в разное врем  отбирают аликвоты, а
10
15
20
25
0
5
0
5
0
5
в конце реакцию останавливают в результате введени  6 М раствора сол ной кислоты, в результате чего рН доходит до 1-2. Образцы подвергают хроматографированию на колонне 1чЗО см, наполненной Сефадексом Г-50 с использованием в качестве растворител  1 М уксусной кислоты дл  отделени  инсулина от энзима и свободных аминокислот. Фракции, содержащие инсулин, лиофилизируют и определ ют состав аминокислот согласно описанному способу.
Протекание реакции показано на фиг.1. Из анализа аминокислот рассчитано , что содержание треонина увеличиваетс  до 0,7 моль на 1 моль инсупина, в то врем  как 0,8 моль аланина и 0,2 моль лизина исчезают (фиг.1). Эти результаты подтверждают тот факт, что спуст  6,5 ч проведени  реакции 20% свиного инсулина остаетс  в непрореагировавшем состо нии, в то врем  как 20% инсулина нар ду с аланином тер ет также аминокислоту лизин Потери 0,8 моль аланина сопровождаютс  введением 0,7 моль треонина.
Продукты реакции подвергают дальнейшему анализу при обработке кар- боксипептидазой А, котора  освобождает только аминокислоты, содержащие свободные L-карбоксильные группы , и не освобождает лизин. В результате обработки карбоксипепти- даэой А свиного инсулина освобождаютс  только аланин и аспарагин из С-концов цепей В и А соответственно. В результате инкубировани  образцов инсулина, полученных после проведени  реакции в течение 6,5 ч (фиг.U, следует ожидать освобождени  нар ду с аспарагином еще только ана- лина в количестве, соответствующем доле непрореагировавшегос  свиного инсулина. Однако неожиданно помимо аланина освобождаетс  также треонин в количествах, эквивалентных количеству треонинамида, вошедшего с образованием промежуточного инсулинамида человека. Это должно быть обусловлено тем, что в дополнение к пептидаэной и экстераэной активности карбоксипептидаза Y обладает также гидролаз- ной активностью по отношению к пепти- дамидам. Очевидно в процессе реакции свиного инсулина в присутствии карбоксипептидазы Y С-конечный аланин первоначально обмениваетс  с треонинамидом в реакции транспепти- дировани  с образованием инсулинамид человека, который затем гидролизует- с  карбоксипептидазой Y с получением инсулина человека с общим выходом около 60%,а 20% непрореагировавшего свиного инсулина и 20% других продуктов составл ют остальное. Другие опыты подтверждают указанную последовательность реакций. Использу  меньшие количества энзима или более короткое врем  реакции, после обработки карбоксипептидазой А продуктов реакции можно наблюдать, что количество освободившегос  треонина меньше количества вошедшего треонина, т.е. в основном образуетс  инсулинамид человека.
Дл  отделени  продуктов реакции образец, полученный после проведени  реакции в течение 6,5 ч (фиг.1), подвергают жидкостной хроматографии с использованием колонки с обратной фазой Ликросорб РР-18 (5 мкм, 0, см), насоса Уотерс (мод. 6000А) и детектора (Мод. 750-УФ), функционирующего при 220 нм. В качестве элюента используют смесь, содержащую 28,75% CHNC и 5 мМ тартрат- ного буфера (рН 3), содержащего 5 мМ н-бут S03Na и 50 мМ сульфата натри . Скорость потока 1,0 мл/мин. С использованием этой системы нельз  разделить инсулин человека и свиной инсулин, однако все остальные побочные продукты удал ютс . Результат анализа аминокислот материала, полученного после хроматографировани , приведены в табл.1. Результаты анализа хорошо согласуютс  с теоретическими предпосылками. Наличие 2,6 моль треонина и 1,3 моль аланина предполагает наличие в образце примерно 70% инсулина человека и 30% свиного инсулина.
Пример 3. Превращение свиного инсулина в инсулин человека с использованием в качестве аминного компонента метилового эфира треонина без выделени  промежуточных продуктов .
К раствору не содержащего цинк свиного инсулина (8 мМ) в 10 мл ЭДТА 0,1 М КС1, содержащему 0,5 М метилового эфира L-треонина, при рН 9,5 и при 25°С, добавл ют 60 мкМ карбок- сипептидазы Y. Значени  рН в ходе реакции поддерживают в результате
0
5
0
5
0
5
0
5
0
5
введени  0,5 М раствора гидрата окиси натри  с использованием рН-стата. В различное врем  отбирают аликвоты реакционной смеси, а саму реакцию останавливают в результате введени  6 М раствора сол ной кислоты, в результате чего рН становитс  равным 1-2. Затем образец хроматографируют на колонке см, заполненной Сефадексом Г-50, с использованием в качестве растворител  1 М раствор уксусной кислоты дл  отделени  инсулина от инзима и свободных аминокислот . Фракции, содержащие инсулин, лиофилизируют и определ ют состав аминокислот согласно описанному способу .
Ход реакции показан на фиг.2„ Результаты, полученные при проведении этой реакции, аналогичны описанным при использовании треонинамида: треонин вводитс  одновременно с освобождением аланина и небольшого количества лизина. В результате обработки карбоксипептидаэой А образца, полученного после проведени  реакции в течение 17 ч, освобождаютс  как ала- нин, так и треонин, что приводит к предположению, что С-конечный аланин цепи В первоначально обмениваетс  с метиловым эфиром треонина с образованием монометилового эфира инсулина человека, который затем гидролизуетс  карбоксипептидазой У с получением инсулина человека. Хот  количественные соотношени  в реакции те же, что и в реакции с участием треонинамида, конечна  реакционна  смесь содержит только 40% инсулина человека, 40% свиного инсулина, не подвергшегос  превращению, и 20% других продуктов гидролиза.
Пример 4. Превращение свиного инсулина в инсулин человека с использованием в качестве аминного компонента треонинамина и с изол цией промежуточных инсулинамидов.
К раствору не содержащего цинк свиного инсулина (2 мМ) в 2 мМ ЭДТА, 0,1 М КС1 и 1,5 М хлоргидрата гуани- дина, содержащего 0,5 М треонинамида (Ь-тре-МНг) при рН 7,5 и температуре 25 С добавл ют карбоксипептидаэу У (15 мкМ). Значение рН в ходе реакции поддерживают в результате добавлени  0,5 М гидрата окиси натри  с использованием рН-стата. В ходе реакции отбирают аликвоты реакционной смеси в
чества ннсулиновой пробы. В процессе реакции превращаетс  примерно 75% исходного свиного инсулина. Однако хот  содержание треонина в пике I (3,65) больше 3,0 (соответствует инсулину человека), очевидно, что пер- воначальньй продукт транспептиднрова- нн  (-I1PO-J H3-TPK-NH2) не  вл етс  достаточно стабильным дл  того, чтобы не происходила олигомеризаци  с образованием -ПРО-ЛИЗ-ТРЕ-ЫН4.
На первый взгл д образование смеси промежуточных амидов говорит о го состава лиофнлизированного инсулн--| ; том, что в результате описанной старлзное врем , а саму реакцию оста- навминают в результате гашени  спуст  2 ч доведением pll до 1,0-2,0 добавлением 1 М расгвора сол ной кислоты. Фракцию, содержащую инсулин, отдел ют от энзима и низкомслекулчрных компонентов в результате хроматографнро- вани  на колонке 1 t30 см, заполненной Сефадексом Г-50 мепким с использованием в качестве растворител  1 М раствора уксусной кислоты, и лнофилн- знруют ее. Проведенный согласно описанному способу анализ аминокислотно10
на показывает, что 78/ свиного инсулина расходуетс  в ходе реакции.
Дл  дальнейшего анализа реагентов, содержащихс  в инсулнновон пробе провод т хроматографнрованис на ионообменном Сефадексе-К -ДЕЛИ Л-25 согласно способу, описанному Морихара и др. Образец лиофилизированного инсулина (75 мг) раствор ют в 0,01 М ТРИС, 2,5 М мочевине, 0,05 М NaCl при рН 7,5 и хроматографируют на колонке, заполненной Сефадексом
R-ДЕЛЕ Л-25 (2,5x25 см) с использованием в качестве растворител  того же самого буферного раствора. Инсулин злюируют растворами хлористого натри  с градиентом концентраций от 0,05 до 0,30 М в том же буфере, собирают фракции по 8 мл на колонке, заполненной Сефадексом Г-25 и лиофили- зируют их.
Профиль элюировани  изображен на фиг.З, на котором наблюдаютс  три пика. Кроме того, определ ютс  составы аминокислот и состав веществ пиков в результате обработки карбокси- пептидазами Y и Л согласно описанному способу. Поскольку в указанных реакци х участвует только С-конец В-цепи инсулина, в качестве модели свиного инсулина используетс  последовательность -ПРО-ЛИЗ-Л. 1А-ОН. Аналогичным образом сокращени  дл  других производных инсулина будут представл ть собой: -ПРО-ЛИЗ-ТРК-ОН - дл  инсулина человека, -ПРО-ЛИЗ-ТРЕ- -МНг - дл  инсулинамида человека и т.д. При рН 7,5, используемом в ходе реакции, при котором амидазна  активность карбоксипептидазы У обычно ниже ее пептидазной активности, образующейс  пептидамид в значительной мере стабилен, поскольку пик I соответствует примерно 20% всего коли20
25
30
35
40
45
50
55
дни дезамидировани  посредством карбоксипептидазы Y не образуетс  чистый инсчпин человека, поскольку в результате дезлмидиоованил очевидно следует ожидать получение смеси -НРО-ЛИЗ-ТРК-ОН и -ПРО-ЛИХ-ТРЕ-ТРЕ-ОН Однако при обработке вещества пика I с целью дезамидировани  10 мкМ карбоксипептидлзы У при рН 10,0 в 0,1 М НС1, 2 мМ ЭДТА в течение 20 мин получают неожиданно практически чистьп инсулин человека. Этот опыт протекал следующим образом.
После отделени  прореагировавшего инсулина от знзима и низкомолекул рных продуктов хроматографированием на Сефадексе Г-50 полученный продукт хроматографируют на ДЕАЕ-Сефадексе А-25 с использованием способа, аналогичного описанному на фиг.З. Продукт реакции элюируетс  в пике II (что ожидалось), тогда как непроре- агировавшнй продукт (менее 10%) элюируетс  в пике I. Пик III вообще отсутствует , т.е. производные инсулина, не содержание лиэин;не образуютс  в ходе реакции. Как следует из результатов , приведенных в табл.2, полученных при обработке карбоксипептида- зами А и У и трипсином, указанна  реакци  вли ет только на содержание треонина в сколько-нибудь значительной степени, что находитс  в соответствии с ожидаемым отсутствием пепти- даэной активности карбоксипептидазы У при данном значении рН.
Состав аминокислот дл  пика II, полученного при реакции дезамидировани , близок к составу инсулина человека: ТРЕ 2,87; АЛА 1,05; ЛИЗ 0,98. Обработка продукта деэамидировани  карбоксипептидазами Y и А трипсином показывает, что образец содержит 90-95% чистого инсулина человека.Это
10
20
5
0
5
0
5
0
5
дни дезамидировани  посредством карбоксипептидазы Y не образуетс  чистый инсчпин человека, поскольку в результате дезлмидиоованил очевидно следует ожидать получение смеси -НРО-ЛИЗ-ТРК-ОН и -ПРО-ЛИХ-ТРЕ-ТРЕ-ОН Однако при обработке вещества пика I с целью дезамидировани  10 мкМ карбоксипептидлзы У при рН 10,0 в 0,1 М НС1, 2 мМ ЭДТА в течение 20 мин получают неожиданно практически чистьп инсулин человека. Этот опыт протекал следующим образом.
После отделени  прореагировавшего инсулина от знзима и низкомолекул рных продуктов хроматографированием на Сефадексе Г-50 полученный продукт хроматографируют на ДЕАЕ-Сефадексе А-25 с использованием способа, аналогичного описанному на фиг.З. Продукт реакции элюируетс  в пике II (что ожидалось), тогда как непроре- агировавшнй продукт (менее 10%) элюируетс  в пике I. Пик III вообще отсутствует , т.е. производные инсулина, не содержание лиэин;не образуютс  в ходе реакции. Как следует из результатов , приведенных в табл.2, полученных при обработке карбоксипептида- зами А и У и трипсином, указанна  реакци  вли ет только на содержание треонина в сколько-нибудь значительной степени, что находитс  в соответствии с ожидаемым отсутствием пепти- даэной активности карбоксипептидазы У при данном значении рН.
Состав аминокислот дл  пика II, полученного при реакции дезамидировани , близок к составу инсулина человека: ТРЕ 2,87; АЛА 1,05; ЛИЗ 0,98. Обработка продукта деэамидировани  карбоксипептидазами Y и А трипсином показывает, что образец содержит 90-95% чистого инсулина человека.Это
утверждение сделано в предположении, что производное инсулина -ПРО-ЛИЗ-ТРЕ -ТРЕ-ЫНг реагирует практически только при наличии гидролазной активности и пептидиламида аминокислоты, а -ПРО-ЛИЗ-ТРК-Ш2 реагирует главным образом при наличии амидазной активности . Общий выход дл  превращени  свиного инсулина в инсулин человека составл ет примерно 30% из расчета на превращенный инсулин.
Пример 5. К раствору свиного Zn-инсулина (7 мг/мл) в О,1 М растворе треонинамида при рН 6,9 добавл  ют карбоксипептидазу Р из Penicillum jauthenellum (СРД-Р) до тех пор, пока концентраци  не станет равной 0,42 мг/мл. После этого реакци  идет в течение 2,5 ч при 25 С. 50% евино- го инсулина превращаетс  в человеческий инсулин, что определ етс  при помощи тонкослойной хроматографии.
Примеры 6-14. Получение человеческого инсулина с помощью модифи- цированной СРД-V. Методы.
Аминокислотный анализ. Образцы дл  аминокислотного анализа гидролизуют в 5,7 М НС1 при 110°С в вакууме в течение 24 ч и анализируют на аминокислотном анализаторе Дуррум-Д-500.
Анализ высокоэффективной жидкостной хроматографией.
Превращение свиного инсулина в амид человеческого инсулина может быть прослежено с помощью жидкостной хроматографии при высоком давлении (HPLC) на обратимой фазе.
Используют радиально заполненную С8 колонку от Вотерс Асе., элюирова- ние достигаетс  с помощью 0,1 М раствора сульфата аммони , содержащего 30% ацетонитрила. Образцы (30 мкл) из реакционной смеси разбавл ют 1 М уксусной кислоты перед инжектированием в Дюррум Д-500.
Диск-ПЭГ электрофорез. Превращение свиного инсулина в амид человеческого инсулина также может быть прослежено с помощью Диск-ПЭГ электрофореза на 12,5%-ном полиакриламидном геле в буфере, состо щем из 0,005 М Трис - 0,04 М глицина при рН 8,3. Амид человеческого инсулина мигрирует медленнее свиного инсулина, соответству  потере одного отрицательного зар да.
Q
5
,-
0
5
0
0
5
С-Конценой анализ.
СРД-У гидролиз используют дл  опрен1 лочи  С-концевой последовательности И--Ц1Т1И инсулина. 500 мкг инсулина в 0,05 М ES буфере при рН 6,75 переваривают 30 мкг СРД-У при 37°С в течение 1 ч. Высвободившиес  аминокислоты определ ют па аминокислотном анализаторе.
Препаративна  хроматографи  на ДЕАЕ-Сефарозе.
Амид человеческого инсулина отдел ют от непрореагировавшего свиного инсулина ионообменной хроматографией на ДКАК-Сефароэе. Лиофилизированный образец инсулина раствор ют в 0,01 М Трис - 0,05 М NaCl - 2,5 М мочевине , при рН 7,5 и нанос т на колонку, уравновешенную тем же самым буфером. Инсулины элюируют с градиентом NaCl от 0,05 до 0,30 М в том же самом буфере.
Получение модифицированной карбок- сипептидазы У (СРД-УМ).
К 1 мл водного раствора СРД-У (9,9 мг/мл, 150 мкмоль) прибавл ют 100 мкл 0,5 М НЕРК S (рН 7,5) и последовательно 25 мкл водного раствора М HgCl.. Смесь оставл ют при комнатной температуре на 10 мин, после чего она готова дл  использовани . Обычно используют стехиометри- ческие количества фермента и ртути, но избыток ртути может быть легко удален гель-фильтрацией или диализом. Может быть приготовлена СРД-У, модифицированна  метил-Нр, или этил-Hg, по аналогичной методике с использованием метил-HgCl или этил-Hgd соответственно .
Тест на возможное высвобождение ртути из СРД-УМ.
Поскольку специфическа  экстераз- па  активность нативной СРД-У по отношению к субстрату В L - Lys - OMe практически равна нулю, тогда как СРД-УМ имеет очень высокую активность, это различие может быть использовано дл  определени  возможного высвобождени  ртути, которое будет приводить к снижению экстеразной активности. Однако ни добавление 10 мМ ЕДТА, ни гель-Фильтраци  не привод т даже к малейшему снижению активности, показыва , что нет высвобождени  ртути.
Результаты.
Пример Ь. Раствор ют 80 мг свободного от цинка инсулина в 6,5 мл
1,1 M Thr - NHa, 0,05 M HEPE S, 1,0 KC1 при рН 7,0 и прибавл ют 12,7 мг СРД-УМ в 2,5 мл 0,05 M HEPES при рН 7,0. Реакцию ведут при 20°С, затем провод т Н L С и гель-электрофорез . HLC показывает превращение 78% после 21 ч реакции. Гель-электрофорез показывает подобную глубину конверсии.
После 21 ч реакции устанавливают рН 2 с помощью 1 M HC1 и обессоливают образец на Сефадексе R -G50 в 1 М уксусной кислоте, а затем лио- филизируют. Хроматографи  на ДЕАЕ-Се- фарозе показывает профиль элюции с ,двум  пиками. Гель-элек -рофорез показывает , что два пика  вл ютс  очевидно чистыми. Пик I содержит 41,5 мг амида человеческого инсулина. Амино- кислотный анализ пика I (табл.3) показывает, что аланин обмениваетс  на треонин. Пик II содержит 40% непрореагировавшего свиного инсулина, который может быть рециклизован.
Пример 7. Раствор ют 70 мг кристаллизованного цитрата сырого инсулина в 2 мл 1,5 M Thr - NH2, 0,05 M HEPE S, 1,0 M HC1 при pll 7,0. Реакцию провод т при 20°С в присут- ствии 15 мкМ СРД-УМ. После 72 ч реакции HPLC показывает конверсию 77%. Гель-электрофорез показывает подобную глубину конверсии. Реакционную смесь анализируют, как описано в примере А. Хроматографи  на ДЕАЕ-Сефарозе показывает профиль элюции с двум  пиками в соотношении 2:1 дл  амида человеческого инсулина и свиного инсулина
соответственно. Аминокислотный анализ
пика I показан в табл.30 Пик II содержит 40% непрореагировавшего свиного инсулина.
Пример 8. Раствор ют 100 мг свиного Zn-инсулина в 6,7 мл 1,0 M Thr - NH4, 1M мочевины при рН 7,5 (рН устанавливают НВг). Прибавл ют 2,3 г СРД-УМ. Реакцию провод т при 32°С, затем провод т HPLC. После 2ч 10 ми 75% свиного инсулина превращаетс 
в амид человеческого инсулина.
Пример 9. Раствор ют 100 мг свиного Zn-инсулина в 6,7 t-л 1,0 М Thr-NHj, 1 М мочевины, рН 7,75 (рН устанавливают НВг). Добавл ют 2,7 мг СРД-УМ. Реакцию провод т при 32°С, затем провод т HPLC. После 2 ч 10 мин 73% свиного инсулина поеQ
5 0 5
0
5
0
0
вращаетс  в амид человеческого инсулина .
Пример 10. Раствор ют 100 мг свиного Zn-инсулина в 6,7 мл 1,0 М Thr-NH, 1 М мочевины, рН 6,0 (рН устанавливают НВг). Прибавл ют 3,6 мг СРД-УМ. Провод т реакцию при 32 С, затем провод т HPZC. После 1 ч 40 мин 75% свиного инсулина превращаетс  в амид человеческого инсулина.
Пример 11. Раствор ют 100 мг свиного Zn-инсулина в 6,7 мл 1,0 Н Thr-NHt, 1 М мочевины, рН 8,25 (рН устанавливают НВг). Прибавл ют 3,6 мг СРД-УМ. Реакцию провод т при 32°С, а затем провод т HPLC. После 1 ч 20 мин 68% свиного инсулина.превращаетс  в амид человеческого инсулина .
Пример 12. Раствор ют 100 мл свиного Zn-инсулина в 6,7 мл 1,0 М Thr-NH2, 10 МКУ, 1 М мочевины , рН 8,0 -(рН устанавливают HNOj). Прибавл ют 3,6 мг СРД-УМ. Реакцию провод т при 32 С, затем провод т HPLC. После 2 ч 5 мин 73% свиного инсулина превращаетс  в амид человеческого инсулина.
Пример 13, Повтор ют процедуру примера С, но используют 3 мг СРД-УМ, иммобилизованного на силнка- геле. После 2 ч получают 75% конверсии .
HPLC, Диск-ПЭГ и аминокислотный анализ продуктов, полученных в примерах , показывает, что они действительно  вл ютс  амидом человеческого инсулина.
Последующее деамидирование человеческого инсулина может быть проведено по примеру 4.
Пример 14„ Деамидирование амида человеческого инсулина на немодифицированной СРД-У и модифицированной СРД-У.
А. Немодифицированна  СРД-У.
К раствору 15 мг/мл человеческого инсулина в 1 мМ ЕДТА при рН 8,0 и температуре 25°С прибавл ют СРД-У до конечной концентрации 7,2 мкМ. После 22 мин реакции 74% амида превращаетс , как определено HPLC. После разделени  на ДЕАЕ-Сефарозе HPLC анализ и аминокислотный анализ показывают , что человеческий инсулин  вл етс  чистым.
19
B.СРД-У, модифицированна  ме- тил-Hg.
Аналогично примеру А, но с 4,9 мкМ метил-Не-СРД-У, рН 8,0. Пос- ле 39 мин реакции 61% амида инсулина превращаетс  в человеческий инсулин .
C.СРД-У, модифицированна  этил-Hg.
Аналогично примеру А, но с 7,2 мкМ этил-Н8-СРД-У, рН 8,0. После 36 мин реакции 74% конверсии наблюдаетс  по данным HPLC.
Д. СРД-У, модифицированна  ме- тил-Hg.
Аналогично примеру А, но с 19 мкМ метил-Нв-СРД-У, рН 7,5. После 2 ч реакции по данным HPLC наблюдаетс  90% конверсии.

Claims (5)

1. Способ получени  человеческого инсулина формулы Ins - Thr - ОН или его производных, имеющих формулы Ins - Thr - NHj,Ins - Thr - NH2 или Ins - Thr - OR3 ,
где Ins - DeS - Thr (.30) человеческого инсулина R 3 - С,-С6-алкил,
путем ферментативного замещени  В-30 аминокислоты в свином инсулине формулы
Ins - Ala - ОН
с помощью карбоксипептидазы при оптимальной температуре процесса с последующим выделением целевого про- дукта, отличающийс  тем, что, с целью повышени  выхода целевого продукта за счет избежани  предварительного отщеплени  В-30 Ala, свиной инсулин ввод т в реак- цию с водным раствором или дисперсией , содержащей амид треонина или сложный эфир треонина общей формулы
1554766
20 Н - Thr - OR:
5
0
5
0
5
„ -
где RJ имеет указанные значени , при рН 7-9,5, причем исходные концентрации свиного инсулина и амида треонина или его сложного эфира устанавливают от 0,002 до 0,5 М И от 0,05 до 3 М соответственно, в качестве карбоксипептидазы используют сериновую карбоксипептидазу микробного происхождени , специфическую дл  субстратов, имеющих С-концевую L-аминокислоту с образованием при -этом одного из производных инсулина формул Ins-Thr-NH2, Ins - Thr - Thr - Ins - Thr - OR3, n которой дл  получени  человеческого инсулина в качестве целевого продукта отщепл ют одну из групп -NH2, -Thr-МЦ и -OR з путем взаимодействи  той же самой или иной L-специ- фичнон серинопой карбоксипептидазы в водном растворе или дисперсии при рН 9 - 10,5.
2.Способ по п.1, отлича ю- щ и и с   тем, что используют не- модифицировэнную или модифицированную карбоксипептидаэу Y из пекарских дрожжей или карбоксипептидазу Р ич Penicilium jouthenellum.
3.Способ по п.1, отлича ю- щ и и с   тем, что используют карбоксипептидазу Y, модифицированную сол ми ртути или иммобилизованную.
4.Способ по п.1, отлича ю- щ и и с   тем, что до 50% органического растворител  используют этанол или метанол, или этнленгликоль, или пропиленгликоль, или диметил- формамид, или диметилсульфоксид, или тетрагидрофуран, или дноксан, или диметоксиэтан.
5.Способ по п.1, отлича ю- щ и и с   тем, что используют водный раствор или дисперсию, содержащую мочевину, или гидрохлорид гуани- дина в концентрации до 3 М.
21
155476622
Таблица 1 Аминокислотный состав инсулина
Низкие значени  ввиду неполного гидролиза.
Таблица 2
Аминокислотный состав пиков I, II, III на фиг.З и пика II, полученного после дезамидировани  фракции соответствующей
пику I
Аспарагинова 
кислота2,992,993,01
Треонин3,622,522,50
Серии2,932,922,92 Глютаминова 
кислота6,887,167,17
Пролин1,000,980,71
Глицин4,004,004,00
Алании1,161,521,03
Изолейцин0,941,041,09
Валин2,422,822,81
Лейцин5,806,216,18
Тирозин3,803,863,67
Фенилаланин2,742,822,65
Гистидин 1,961,901,93
Лизин0,990,741,06
Аргинин0,961,000,98
3,01 2,79 2,93
7,01 0,87 4,00 1,09 1,19 2,50 6,10 4,02 2,64 1,89 1,01 0,89
23155476624
Таблица 3 Аминокислотный анализ инсулина
Пг
1 ч 68 ю it Фиг. г
 чо всюилт тн 0w.j
SU823414346A 1980-07-24 1982-03-23 Способ получени человеческого инсулина формулы I @ -Т @ -ОН или его производных SU1554766A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK319780A DK319780A (da) 1980-07-24 1980-07-24 Fremgangsmaade til enzymatisk udskiftning af b-30 aminosyren i insuliner

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1554766A3 true SU1554766A3 (ru) 1990-03-30

Family

ID=8120166

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823414346A SU1554766A3 (ru) 1980-07-24 1982-03-23 Способ получени человеческого инсулина формулы I @ -Т @ -ОН или его производных
SU843825251A SU1611217A3 (ru) 1980-07-24 1984-12-18 Способ получени инсулина человека

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU843825251A SU1611217A3 (ru) 1980-07-24 1984-12-18 Способ получени инсулина человека

Country Status (14)

Country Link
US (1) US4645740A (ru)
EP (1) EP0045187B1 (ru)
JP (1) JPS642360B2 (ru)
AT (1) ATE9820T1 (ru)
AU (1) AU543687B2 (ru)
CA (1) CA1175372A (ru)
DE (1) DE3166608D1 (ru)
DK (1) DK319780A (ru)
ES (2) ES8300858A1 (ru)
HU (1) HU185668B (ru)
IE (1) IE51620B1 (ru)
SU (2) SU1554766A3 (ru)
WO (1) WO1982000301A1 (ru)
ZA (1) ZA815066B (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1998004731A1 (fr) * 1996-07-25 1998-02-05 Firma 'nika-Universal' Techniques binaires de production de peptides biologiquement actifs
RU2164520C2 (ru) * 1993-09-17 2001-03-27 Ново Нордиск А/С Производное инсулина, растворимая пролонгированная фармацевтическая композиция, способ пролонгирования гипогликемического действия при лечении диабета

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3101382A1 (de) * 1981-01-17 1982-09-02 Hoechst Ag, 6000 Frankfurt "verfahren zur herstellung von humanisulin oder dessen derivaten aus schweineinsulin oder dessen derivaten"
EP0088117B1 (en) * 1981-09-15 1986-09-24 Nordisk Insulinlaboratorium Process for preparing human insulin or b-30 esters thereof
EP0079362A1 (en) * 1981-05-20 1983-05-25 Nordisk Insulinlaboratorium A process for the preparation of insulin derivatives
DK353781A (da) * 1981-08-10 1983-02-11 Novo Industri As Fremgangsmaade til fremstilling af insulinderivater
WO1983002772A1 (en) * 1982-02-08 1983-08-18 Robin Ewart Offord An improved method for preparing human insulin from non-human insulin
DE3209184A1 (de) * 1982-03-13 1983-09-15 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Verfahren zur umwandlung von praeproinsulinanaloga zu insulinen
NL8201650A (nl) * 1982-04-21 1983-11-16 Akzo Nv Semisynthetische bereiding van humane insuline.
DE3326472A1 (de) * 1983-07-22 1985-02-14 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Neue insulin-derivate, verfahren zu deren herstellung und deren verwendung sowie pharmazeutische mittel zur behandlung des diabetes mellitus
DE3327709A1 (de) * 1983-07-29 1985-02-07 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Insulin-derivat-kristallsuspensionen, verfahren zu deren herstellung und deren verwendung
DE3333640A1 (de) * 1983-09-17 1985-04-25 Hoechst Ag, 6230 Frankfurt Verfahren zur herstellung von insulin-derivaten, deren b-kette c-terminal verlaengert ist, neue basisch modifizierte insulin-derivate diese enthaltende mittel und ihre verwendung
DK113585D0 (da) * 1985-03-12 1985-03-12 Novo Industri As Nye peptider
DK119785D0 (da) * 1985-03-15 1985-03-15 Nordisk Gentofte Insulinpraeparat
PH25772A (en) * 1985-08-30 1991-10-18 Novo Industri As Insulin analogues, process for their preparation
US5580751A (en) * 1990-09-14 1996-12-03 Carlsberg A/S Process for the preparation of C-terminally amidated peptides
DK220890D0 (da) * 1990-09-14 1990-09-14 Ole Buchardt Fremgangsmaade til fremstilling af c-terminalt amiderede peptider
US6869930B1 (en) * 1993-09-17 2005-03-22 Novo Nordisk A/S Acylated insulin
US6011007A (en) * 1993-09-17 2000-01-04 Novo Nordisk A/S Acylated insulin
US6323311B1 (en) 1999-09-22 2001-11-27 University Of Utah Research Foundation Synthesis of insulin derivatives

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3276961A (en) * 1963-04-08 1966-10-04 Squibb & Sons Inc Process for preparing human insulin
US4182654A (en) * 1974-09-18 1980-01-08 Pierce Chemical Company Production of polypeptides using polynucleotides
WO1980002157A1 (en) * 1979-04-06 1980-10-16 Forenede Bryggerier As A process for enzymatic production of peptides
NO153061C (no) * 1979-04-13 1986-01-08 Shionogi & Co Fremgangsmaate for fremstilling av et b30-threonininsulin
JPS55138391A (en) * 1979-04-13 1980-10-29 Shionogi & Co Ltd New synthetic method of peptide derivative
US4343898A (en) * 1980-02-11 1982-08-10 Novo Industri A/S Process for preparing esters of human insulin

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Видмер Ф., Йохансен И.Т0 Энзи- матический пептидный синтез: катализируемое карбоксипептидазой-У образование пептидных св зей о - Carls- berg Res Commun. т.44, 1979, № 4, с. 37-46, Морихара В. Способ полусинтеэа инсулина человека в результате катализируемой трипсином замены АЛА-В-30 на ТРЕ свином инсулине. - Nature, т. 280, 1979, № 5721, с. 412-413. Морихара В0 и др„ Превращение свиного инсулина в инсулин человека, катализируемое Ахром-бактерпротеа- эой-1. - Biochem. and Bioph, Res. Comm., т„ 92, 1980, № 2, c. 396-402. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2164520C2 (ru) * 1993-09-17 2001-03-27 Ново Нордиск А/С Производное инсулина, растворимая пролонгированная фармацевтическая композиция, способ пролонгирования гипогликемического действия при лечении диабета
WO1998004731A1 (fr) * 1996-07-25 1998-02-05 Firma 'nika-Universal' Techniques binaires de production de peptides biologiquement actifs

Also Published As

Publication number Publication date
ES504462A0 (es) 1982-12-01
US4645740A (en) 1987-02-24
IE811660L (en) 1982-01-24
DE3166608D1 (en) 1984-11-15
ES8300858A1 (es) 1982-12-01
HU185668B (en) 1985-03-28
WO1982000301A1 (en) 1982-02-04
ATE9820T1 (de) 1984-10-15
ES514463A0 (es) 1983-06-01
ES8306182A1 (es) 1983-06-01
JPS57501161A (ru) 1982-07-08
JPS642360B2 (ru) 1989-01-17
IE51620B1 (en) 1987-01-21
AU7450881A (en) 1982-02-16
SU1611217A3 (ru) 1990-11-30
DK319780A (da) 1982-01-25
EP0045187A1 (en) 1982-02-03
CA1175372A (en) 1984-10-02
ZA815066B (en) 1983-03-30
EP0045187B1 (en) 1984-10-10
AU543687B2 (en) 1985-04-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4339534A (en) Process for enzymatic production of peptides
US4645740A (en) Process for enzymatic replacement of the B-30 amino acid in insulins
US4543329A (en) Process for the specific cleavage of protein sequences from proteins
EP0278787B1 (en) A process for enzymatic production of dipeptides
JPH0211240B2 (ru)
EP0017938B1 (en) Process for preparing a b30-threonine insulin
CA2092721C (en) Process for the preparation of c-terminally amidated peptides
CA1174973A (en) Process for preparing polypeptide derivatives
Breddam Chemically modified carboxypeptidase Y with increased amidase activity
US4029642A (en) Process for the manufacture of human insulin
IE841995L (en) Preparing an insulin derivative
US4579820A (en) Process for enzymatic replacement of the B-30 amino acid in insulins
FI78119C (fi) Foerfarande foer framstaellning av maenskligt insulin eller b-30-estrar daerav.
IE54605B1 (en) A process for converting preproinsulin analogs into insulins
KR20010099668A (ko) 펩타이드의 효소적 아미드화
NO156654B (no) Fremgangsmaate for enzymatisk erstatning av b-30-aminosyren i insuliner.
US4596675A (en) Novel thiopeptolide substrates for vertebrate collagenase
A Holt et al. Reactions of I, I-Diacetoxyiodobenzene with Proteins: Conversion of Amide Side-Chains to Amines
Itoh et al. Methyltrypsin-catalyzed peptide coupling: comparison of alkyl ester and guanidinophenyl ester derivatives as acyl donor component
DK148714B (da) Fremgangsmaade til enzymatisk udskiftning af b-30 aminosyren i insuliner
CS209740B1 (cs) Syntetické substráty pro proteolytické enzymy
JPS6244920B2 (ru)
NO157706B (no) Fremgangsmÿte for enzymatisk fremstilling av peptider.
JPS60190794A (ja) トリペプチドおよびその製法