相關申請案之交叉參考
本申請案依據35 U.S.C. § 119(e)主張2017年2月28日申請之美國臨時申請案第62/464,792號、2017年4月3日申請之美國臨時申請案第62/480,627號、2017年9月5日申請之美國臨時申請案第62/554,421號、2018年1月23日申請之美國臨時申請案第62/620701號、2018年1月22日申請之美國臨時申請案第62/620,384號、2018年1月22日申請之美國臨時申請案第62/620,423號以及2018年2月23日申請之美國臨時申請案第62/634,595號的優先權,該等臨時申請案均以全文引用的方式併入本文中。 定義 如本文所用,「一種(a或an)」可意謂一或多種。如本文所用,關於包括(例如)整數、分數及百分比之數值的「約」一般係指一般技術者認為與所述值等同(例如具有相同功能或結果)之數值範圍(例如所述值之+/-5%至10%)。 如本文所用,術語「治療(treat)」、「治療(treating)」、「經治療(treated)」或「治療(treatment)」係指治療性治療與防治性或預防性治療。 如本文所用,關於癌症之術語「改善(ameliorate)」、「改善(ameliorating)」、「改善(amelioration)」或「改善(ameliorated)」可意謂減少癌症症狀、減小腫瘤尺寸、完全或部分移除腫瘤(例如完全或部分反應)、使疾病穩定、防止癌症進展(例如無進展存活率)或醫師認為對癌症進行治療性、防治性或預防性治療的對癌症之任何其他作用。 如本文所用,術語「投與(administer)」、「投與(administering)」或「投與(administered)」意謂所有將化合物或其醫藥學上可接受之鹽或本文所述之CAR T細胞組合物引入患者之方式,包括(但不限於)經口、靜脈內、肌肉內、皮下及經皮。 如本文所用,術語「脫靶毒性」意謂治療患者之醫師不可接受之器官破壞或患者體重降低,或治療患者之醫師不可接受之對患者的任何其他作用,例如B細胞發育不全、發熱、血壓下降或肺水腫。 如本文所用,術語「轉導」及「轉染」同等地使用且該等術語意謂藉由任何人工方法,包括病毒及非病毒方法將核酸引入細胞中。 在本文所述之各種實施例中,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體用作癌症與CAR T細胞(亦即表現嵌合抗原受體之T細胞)之間的橋樑。該橋樑將CAR T細胞引導至癌症以改善癌症。在一個實施例中,「小分子配位體」可為葉酸、CAIX配位體、DUPA、NK-1R配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體或CCK2R配位體,其中各者為特異性結合於癌細胞類型之小分子配位體(亦即,與正常組織相比,此等配位體各者之受體在癌症上過度表現)。 連接於小分子配位體之「靶向部分」結合於由CAR T細胞表現之基因工程改造之CAR的識別區。因此,CAR之識別區(例如抗體之單鏈片段可變區(scFv)、Fab、Fv、Fc或(Fab')2片段及其類似物)針對「靶向部分」。因此,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體充當癌症與CAR T細胞之間的橋樑,將CAR T細胞引導至癌症以改善癌症。在各種實施例中,癌症與CAR T細胞之間的橋樑可為實例中所示之任一結合物。 橋樑為小的有機分子,因此可快速自血流中清除(例如約20分鐘或更少)。在一個態樣中,CAR T細胞反應可僅僅靶向表現『橋樑』之小分子配位體部分之受體的彼等癌細胞,藉此減小對正常組織之脫靶毒性。另外,此系統可為『通用』的,因為一類CAR T細胞構築體可使用不同『橋樑』用於靶向各種癌症。例示性地,由CAR T細胞識別之靶向部分可保持恆定,從而可使用一類CAR T細胞構築體,而結合於癌症之小分子配位體可改變以允許靶向各種癌症。 在以下條款清單及申請專利範圍及整個申請案中描述之各種實施例中,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體稱為「化合物」。 若干實施例由以下列舉之條款描述。亦涵蓋任一以下實施例以及在本專利申請案之概述部分、本專利申請案之例示性實施例之具體描述部分、實例部分或申請專利範圍中描述的任何適用實施例。 1. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體; ii)向該患者投與第一劑量之包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR;以及 iii)向該患者投與第二劑量之包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含該針對該靶向部分之CAR。 2. 條款1之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 3. 條款1或2中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 4. 條款1或2中任一項之方法,其中該配位體為NK-1R配位體。 5. 條款1或2中任一項之方法,其中該配位體為DUPA。 6. 條款1或2中任一項之方法,其中該配位體為CCK2R配位體。 7. 條款1或2中任一項之方法,其中該配位體為γ麩胺醯基轉肽酶之配位體。 8. 條款1至7中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 9. 條款1至8中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 10. 條款1至8中任一項之方法,其中該靶向部分為DNP。 11. 條款1至8中任一項之方法,其中該靶向部分為TNP。 12. 條款1至11中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 13. 條款1至12中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 14. 條款1至13中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 15. 條款14之方法,其中n為0至150之整數。 16. 條款14之方法,其中n為0至110之整數。 17. 條款14之方法,其中n為0至20之整數。 18. 條款14之方法,其中n為15至20之整數。 19. 條款14之方法,其中n為15至110之整數。 20. 條款1至9或12至19中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 21. 條款1至20中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約10000奈莫耳之劑量投與。 22. 條款1至21中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約5000奈莫耳之劑量投與。 23. 條款1至22中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約1000奈莫耳之劑量投與。 24. 條款1至23中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 25. 條款1至24中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 26. 條款1至25中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約250奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 27. 條款1至26中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病(Hodgkin's Disease)、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤(Burkitt's lymphoma)、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 28. 條款1至3或8至27中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 29. 條款28之方法,其中該癌症為子宮內膜癌。 30. 條款28之方法,其中該癌症為非小細胞肺癌。 31. 條款28之方法,其中該癌症為卵巢癌。 32. 條款28之方法,其中該癌症為三陰性乳癌。 33. 條款1至32中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 34. 條款1至9或12至33中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該CAR之該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 35. 條款1至34中任一項之方法,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域係選自由CD28、CD137 (4-1BB)、CD134 (OX40)及CD278 (ICOS)組成之群。 36. 條款1至35中任一項之方法,其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈或Fc受體γ。 37. 條款1至9或12至36中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 38. 條款1至37中任一項之方法,其中投與多個劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽及該CAR T細胞組合物。 39. 條款1至38中任一項之方法,其中在投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前或在投與該CAR T細胞組合物之前使該患者成像。 40. 條款1至39中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 41. 條款1至40中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 42. 條款1至41中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 43. 條款1至41中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 44. 條款1至41中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 45. 條款1至44中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 46. 條款1至45中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 47. 條款45之方法,其中該核酸編碼嵌合抗原受體。 48. 條款1至47中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 49. 條款1至47中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 50. 條款1至49中任一項之方法,其中該第一劑量之該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞呈選自以下之比率的混合物:約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:4該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:3該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:2該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞及約1:1該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞。 51. 條款1至50中任一項之方法,其中該第二劑量之該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞呈選自以下之比率的混合物:約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:4該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:3該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:2該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞及約1:1該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞。 52. 條款1至51中任一項之方法,其中該第一劑量之該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞呈約1:1至約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之比率的混合物。 53. 條款1至52中任一項之方法,其中該第二劑量之該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞呈約1:1至約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之比率的混合物。 54. 條款1至53中任一項之方法,其中該第一劑量之該CAR T細胞組合物包含約1000萬個該等CAR T細胞與約4000萬個未轉形T細胞之混合物。 55. 條款1至54中任一項之方法,其中該第二劑量之該CAR T細胞組合物包含約1000萬個該等CAR T細胞與約4000萬個未轉形T細胞之混合物。 56. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體;以及 ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR,且其中該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物。 57. 條款56之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 58. 條款56或57中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 59. 條款56或57中任一項之方法,其中該配位體為NK-1R配位體。 60. 條款56或57中任一項之方法,其中該配位體為DUPA。 61. 條款56或57中任一項之方法,其中該配位體為CCK2R配位體。 62. 條款56或57中任一項之方法,其中該配位體為γ麩胺醯基轉肽酶之配位體。 63. 條款56至62中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 64. 條款56至63中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 65. 條款56至63中任一項之方法,其中該靶向部分為DNP。 66. 條款56至63中任一項之方法,其中該靶向部分為TNP。 67. 條款56至66中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 68. 條款56至67中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 69. 條款56至68中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 70. 條款69之方法,其中n為0至150之整數。 71. 條款69之方法,其中n為0至110之整數。 72. 條款69之方法,其中n為0至20之整數。 73. 條款69之方法,其中n為15至20之整數。 74. 條款69之方法,其中n為15至110之整數。 75. 條款56至64或67至74中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 76. 條款56至75中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約10000奈莫耳之劑量投與。 77. 條款56至76中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約5000奈莫耳之劑量投與。 78. 條款56至77中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約1000奈莫耳之劑量投與。 79. 條款56至78中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 80. 條款56至79中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 81. 條款56至80中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約250奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 82. 條款56至81中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 83. 條款56至58或63至82中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 84. 條款83之方法,其中該癌症為子宮內膜癌。 85. 條款83之方法,其中該癌症為非小細胞肺癌。 86. 條款83之方法,其中該癌症為卵巢癌。 87. 條款83之方法,其中該癌症為三陰性乳癌。 88. 條款56至87中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 89. 條款56至64或67至88中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該CAR之該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 90. 條款56至89中任一項之方法,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域係選自由CD28、CD137 (4-1BB)、CD134 (OX40)及CD278 (ICOS)組成之群。 91. 條款56至90中任一項之方法,其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈或Fc受體γ。 92. 條款56至64或67至91中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 93. 條款56至92中任一項之方法,其中投與多個劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽。 94. 條款56至93中任一項之方法,其中在投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前或在投與該CAR T細胞組合物之前使該患者成像。 95. 條款56至94中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 96. 條款56至95中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 97. 條款56至96中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 98. 條款56至96中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 99. 條款56至96中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 100. 條款56至99中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 101. 條款56至100中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 102. 條款100之方法,其中該核酸編碼嵌合抗原受體。 103. 條款56至102中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 104. 條款56至102中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 105. 條款56至104中任一項之方法,其中該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之混合物呈選自以下之比率:約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:4該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:3該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:2該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞及約1:1該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞。 106. 條款56至105中任一項之方法,其中該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之混合物呈約1:1至約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之比率。 107. 條款56至106中任一項之方法,其中該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之混合物包含約1000萬該等CAR T細胞與約4000萬該等未轉形T細胞。 108. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體; ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR;以及 iii)向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 109. 條款108之方法,其中步驟iii包含投與葉酸。 110. 條款108或109中任一項之方法,其中步驟iii包含投與葉酸或甲醯四氫葉酸。 111. 條款108之方法,其中步驟iii包含投與該包含葉酸之結合物。 112. 條款111之方法,其中該包含葉酸之結合物包含連接於一或多種胺基酸之葉酸。 113. 條款111之方法,其中該包含葉酸之結合物具有式
。 114. 條款109至112中任一項之方法,其中該葉酸具有式
其中X
1
及Y
1
各自獨立地選自由以下組成之群:鹵基、R
2
、OR
2
、SR
3
及NR
4
R
5
; U、V及W表示各自獨立地選自由-(R
6a
)C=、-N=、-(R
6a
)C(R
7a
)-及-N(R
4a
)-組成之群的二價部分;Q係選自由C及CH組成之群;T係選自由S、O、N及-C=C-組成之群; X
2
及X
3
各自獨立地選自由以下組成之群:氧、硫、-C(Z)-、-C(Z)O-、-OC(Z)-、-N(R
4b
)-、-C(Z)N(R
4b
)-、-N(R
4b
)C(Z)-、-OC(Z)N(R
4b
)-、-N(R
4b
)C(Z)O-、-N(R
4b
)C(Z)N(R
5b
)-、-S(O)-、-S(O)
2
-、-N(R
4a
)S(O)
2
-、-C(R
6b
)(R
7b
)-、-N(C≡CH)-、-N(CH
2
C≡CH)-、C
1
-C
12
伸烷基及C
1
-C
12
伸烷氧基,其中Z為氧或硫; R
1
係選自由氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基組成之群; R
2
、R
3
、R
4
、R
4a
、R
4b
、R
5
、R
5b
、R
6b
及R
7b
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基、C
1
-C
12
烷氧基、C
1
-C
12
烷醯基、C
1
-C
12
烯基、C
1
-C
12
炔基、(C
1
-C
12
烷氧基)羰基及(C
1
-C
12
烷胺基)羰基; R
6
及R
7
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基;或R
6
及R
7
一起形成羰基; R
6a
及R
7a
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基;或R
6a
及R
7a
一起形成羰基; p、r、s及t各自獨立地為0或1;且 若任何其他化學部分為該葉酸之一部分,則*表示與該結合物之其餘部分鍵結的視情況存在之共價鍵。 115. 條款108至114中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 116. 條款108至115中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 117. 條款108至115中任一項之方法,其中該靶向部分為DNP。 118. 條款108至115中任一項之方法,其中該靶向部分為TNP。 119. 條款108至118中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 120. 條款108至119中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 121. 條款108至120中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 122. 條款121之方法,其中n為0至12之整數。 123. 條款121之方法,其中n為0至150之整數。 124. 條款121之方法,其中n為0至110之整數。 125. 條款121之方法,其中n為0至20之整數。 126. 條款121之方法,其中n為15至20之整數。 127. 條款121之方法,其中n為15至110之整數。 128. 條款108至116或119至127中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 129. 條款108至128中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約10000奈莫耳之劑量投與。 130. 條款108至129中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約5000奈莫耳之劑量投與。 131. 條款108至130中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約1000奈莫耳之劑量投與。 132. 條款108至131中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 133. 條款108至132中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 134. 條款108至133中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約250奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 135. 條款108至134中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 136. 條款108至135中任一項之方法,其中該藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體的配位體部分為葉酸且該癌症為表現葉酸受體之癌症。 137. 條款136之方法,其中該癌症為子宮內膜癌。 138. 條款136之方法,其中該癌症為非小細胞肺癌。 139. 條款136之方法,其中該癌症為卵巢癌。 140. 條款136之方法,其中該癌症為三陰性乳癌。 141. 條款108至140中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 142. 條款108至116或119至141中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該CAR之該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 143. 條款108至142中任一項之方法,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域係選自由CD28、CD137 (4-1BB)、CD134 (OX40)及CD278 (ICOS)組成之群。 144. 條款108至143中任一項之方法,其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈或Fc受體γ。 145. 條款108至116或119至144中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 146. 條款108至145中任一項之方法,其中投與多個劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽及/或該CAR T細胞組合物。 147. 條款108至146中任一項之方法,其中在投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前或在投與該CAR T細胞組合物之前使該患者成像。 148. 條款108至147中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 149. 條款108至148中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 150. 條款108至149中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 151. 條款108至149中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 152. 條款108至149中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 153. 條款108至152中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 154. 條款108至153中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 155. 條款153之方法,其中該核酸編碼嵌合抗原受體。 156. 條款108至155中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 157. 條款108至155中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 158. 條款108至157中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞呈選自以下之比率的混合物:約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:4該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:3該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:2該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞及約1:1該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞。 159. 條款108至158中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物包含該等CAR T細胞與未轉形T細胞呈約1:1至約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之比率的混合物。 160. 條款108至159中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物包含含有約1000萬該等CAR T細胞及約4000萬該等未轉形T細胞之混合物。 161. 條款108至160中任一項之方法,其中該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑係選自由以下組成之群:淋巴細胞特異性蛋白酪胺酸激酶抑制劑、PI3激酶抑制劑、IL-2誘導性T細胞激酶抑制劑、JAK抑制劑、BTK抑制劑、EC2319及阻斷CAR T細胞與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽結合但不結合該癌症之藥劑。 162. 條款161之方法,其中投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑且該藥劑為淋巴細胞特異性蛋白酪胺酸激酶抑制劑。 163. 條款162之方法,其中該淋巴細胞特異性蛋白酪胺酸激酶抑制劑為達沙替尼(Dasatinib)。 164. 條款161之方法,其中投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑且該藥劑為PI3激酶抑制劑。 165. 條款164之方法,其中該PI3激酶抑制劑為GDC0980。 166. 條款161之方法,其中投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑且該藥劑為IL-2誘導性T細胞激酶抑制劑。 167. 條款166之方法,其中該IL-2誘導性T細胞激酶抑制劑為BMS-509744。 168. 條款1至160中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物藉由注射至該患者之血流中來投與,且其中至注射該CAR T細胞組合物後約四週,該患者之血流中的該等CAR T細胞至少為該患者之血流中患者總T細胞之10%。 169. 條款1至160中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物藉由注射至該患者之血流中來投與,且其中至注射該CAR T細胞組合物後約四週,該患者之血流中的該等CAR T細胞至少為該患者之血流中患者總T細胞之12%。 170. 條款1至160中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物藉由注射至該患者之血流中來投與,且其中至注射該CAR T細胞組合物後約四週,該患者之血流中的該等CAR T細胞至少為該患者之血流中患者總T細胞之15%。 171. 條款1至160或168至170中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物中投與該患者之該等CAR T細胞包含約100萬至約1500萬之該等CAR T細胞。 172. 條款1至160或168至171中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物中投與該患者之該等CAR T細胞之劑量係選自由以下組成之群:約100萬、約200萬、約300萬、約400萬、約500萬、約600萬、約700萬、約800萬、約900萬、約1000萬、約1100萬、約1200萬、約1250萬、約1300萬、約1400萬及約1500萬之該等CAR T細胞。 173. 條款1至160或168至170中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物中投與該患者之該等CAR T細胞包含至少約200萬之該等CAR T細胞。 174. 條款1至160或168至170中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物中投與該患者之該等CAR T細胞包含至少約500萬之該等CAR T細胞。 175. 條款1至160或168至170中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物中投與該患者之該等CAR T細胞包含至少約1000萬之該等CAR T細胞。 176. 條款1至175中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 3之核酸。 177. 條款1至176中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之載體。 178. 條款1至177中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 3之載體。 179. 條款176之方法,其中該核酸編碼嵌合抗原受體。 180. 條款108至160中任一項之方法,其中投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑且為阻斷CAR T細胞與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽結合但不結合該癌症的藥劑。 181. 條款180之方法,其中該藥劑為螢光素胺、FITC或螢光素鈉。 182. 條款180之方法,其中該藥劑為FITC。 183. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量為該患者每公斤體重約10奈莫耳至該患者每公斤體重約2500奈莫耳;以及 ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR,且其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約1500萬該等CAR T細胞。 184. 條款183之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 185. 條款183或184中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 186. 條款183至185中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 187. 條款183至186中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 188. 條款183至187中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 189. 條款183至188中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 190. 條款183至189中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 191. 條款183至190中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 192. 條款183至191中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約100奈莫耳之劑量投與。 193. 條款183至191中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約50奈莫耳之劑量投與。 194. 條款183至191中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約20奈莫耳之劑量投與。 195. 條款183至191中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 196. 條款183至191中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 197. 條款183至191中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約400奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 198. 條款183至197中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約1250萬該等CAR T細胞。 199. 條款183至197中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約700萬該等CAR T細胞。 200. 條款183至197中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約500萬該等CAR T細胞。 201. 條款183至197中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約200萬該等CAR T細胞至約500萬該等CAR T細胞。 202. 條款183至201中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 203. 條款183至202中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 204. 條款183至203中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 205. 條款183至204中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 206. 條款183至205中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 207. 條款183至206中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 208. 條款183至206中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 209. 條款183至206中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 210. 條款183至209中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 211. 條款183至209中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 212. 條款183至211中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 213. 條款183至212中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 214. 條款183至213中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含未轉形T細胞。 215. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)連續向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體; ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR;以及 iii)終止該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之連續投與,以抑制或預防該患者中之細胞介素釋放症候群。 216. 條款215之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 217. 條款215或216中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 218. 條款215至217中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 219. 條款215至218中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 220. 條款215至219中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 221. 條款215至220中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 222. 條款215至221中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 223. 條款215至222中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 224. 條款215至223中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽連續投與該患者至少一小時。 225. 條款215至223中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽連續投與該患者至少四小時。 226. 條款215至223中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽連續投與該患者至少六小時。 227. 條款215至223中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的連續投與為每隔一天投與之方案。 228. 條款215至223中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的連續投與為每週投與三次之方案。 229. 條款215至223中任一項之方法,其中投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之連續投與,直至該患者出現不可接受之體重減輕、發熱、血壓下降或肺水腫。 230. 條款215至229中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 231. 條款215至229中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約400奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 232. 條款215至231中任一項之方法,其中投與約200萬至約500萬該等CAR T細胞。 233. 條款215至232中任一項之方法,其中該投與為靜脈內投與。 234. 條款215至233中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 235. 條款215至234中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 236. 條款215至235中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 237. 條款215至236中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 238. 條款215至237中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 239. 條款215至238中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 240. 條款215至238中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 241. 條款215至238中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 242. 條款215至241中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 243. 條款215至242中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 244. 條款215至243中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 245. 條款215至243中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 246. 條款215至245中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含未轉形T細胞。 247. 條款215至246中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含呈選自以下之比率的未轉形T細胞:約1:5該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:4該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:3該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞、約1:2該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞及約1:1該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞。 248. 條款215至247中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含呈約1:1至約1:5之該等CAR T細胞與該等未轉形T細胞之比率的未轉形T細胞。 249. 條款215至248中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含未轉形T細胞,呈約1000萬該等CAR T細胞與約4000萬未轉形T細胞之混合物。 250. 條款215至249中任一項之方法,其中該癌症為非小細胞肺癌。 251. 條款215至249中任一項之方法,其中該癌症為卵巢癌。 252. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽每週投與該患者一次;以及 ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR。 253. 條款252之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 254. 條款252或253中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 255. 條款252至254中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 256. 條款252至255中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 257. 條款252至256中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 258. 條款252至257中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 259. 條款252至258中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 260. 條款252至259中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 261. 條款252至260中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約100奈莫耳之劑量投與。 262. 條款252至261中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約50奈莫耳之劑量投與。 263. 條款252至262中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約20奈莫耳之劑量投與。 264. 條款252至263中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 265. 條款252至264中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 266. 條款252至265中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約400奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 267. 條款252至266中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約1500萬該等CAR T細胞。 268. 條款252至267中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約700萬該等CAR T細胞。 269. 條款252至268中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約500萬該等CAR T細胞。 270. 條款252至269中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約200萬該等CAR T細胞至約500萬該等CAR T細胞。 271. 條款252至270中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 272. 條款252至271中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 273. 條款252至272中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 274. 條款252至273中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 275. 條款252至274中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 276. 條款252至275中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 277. 條款252至275中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 278. 條款252至275中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 279. 條款252至278中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 280. 條款252至278中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 281. 條款252至280中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 282. 條款252至280中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 283. 條款252至282中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含未轉形T細胞。 284. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,其中至少向該患者投與第一劑量及第二劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一劑量與該第二劑量不同,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約2倍至約15000倍;以及 ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR。 285. 條款284之方法,其中至少向該患者投與第一劑量、第二劑量及第三劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一劑量、該第二劑量及該第三劑量不同,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約2倍至約750倍,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第三劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約800倍至約10000倍。 286. 條款285之方法,其中至少向該患者投與第一劑量、第二劑量、第三劑量及第四劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一劑量、該第二劑量、該第三劑量及該第四劑量不同,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約2倍至約750倍,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第三劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約800倍至約7500倍,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第四劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約8000倍至約15000倍。 287. 條款286之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約100倍,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第三劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約1000倍,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第四劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約10000倍。 288. 條款284至287中任一項之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 289. 條款284至288中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 290. 條款284至289中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 291. 條款284至290中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 292. 條款284至291中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 293. 條款284至292中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 294. 條款284至293中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 295. 條款284至294中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 296. 條款284至295中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約100奈莫耳之劑量投與。 297. 條款284至296中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約50奈莫耳之劑量投與。 298. 條款284至297中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約20奈莫耳之劑量投與。 299. 條款284至298中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 300. 條款284至299中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 301. 條款284至300中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約400奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 302. 條款284至301中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約1500萬該等CAR T細胞。 303. 條款284至302中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約700萬該等CAR T細胞。 304. 條款284至303中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約500萬該等CAR T細胞。 305. 條款284至304中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之劑量為約200萬該等CAR T細胞至約500萬該等CAR T細胞。 306. 條款284至305中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 307. 條款284至306中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 308. 條款284至307中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 309. 條款284至308中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 310. 條款284至309中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 311. 條款284至310中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 312. 條款284至310中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 313. 條款284至310中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 314. 條款284至313中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 315. 條款284至313中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 316. 條款284至315中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 317. 條款284至315中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 318. 條款284至317中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物進一步包含未轉形T細胞。 319. 條款1至214或252至318中任一項之方法,其中向該患者連續投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,且該方法進一步包含終止該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之連續投與,以抑制或預防該患者之細胞介素釋放症候群。 320. 條款1至107或183至318中任一項之方法,其進一步包含向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 321. 條款1至182或215至318中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量為該患者每公斤體重約10奈莫耳至該患者每公斤體重約2500奈莫耳,且該等CAR T細胞之劑量為約100萬該等CAR T細胞至約1500萬該等CAR T細胞。 322. 條款1至251或284至318中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽每週投與該患者一次。 323. 條款1至283中任一項之方法,其中至少向該患者投與第一劑量及第二劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一劑量與該第二劑量不同,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約2倍至約15000倍。 324. 條款56至318中任一項之方法,其中該CAR T細胞組合物投與至少兩劑。 325. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體; ii)向該患者投與至少第二劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約50%;以及 iii)向該患者投與一定劑量之包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR。 326. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約60%。 327. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約70%。 328. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約80%。 329. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約90%。 330. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約95%。 331. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約96%。 332. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約97%。 333. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約98%。 334. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約99%。 335. 條款325之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約99.5%。 336. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約100奈莫耳至每公斤體重約1000奈莫耳。 337. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約100奈莫耳至每公斤體重約900奈莫耳。 338. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約100奈莫耳至每公斤體重約800奈莫耳。 339. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約100奈莫耳至每公斤體重約700奈莫耳。 340. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約100奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳。 341. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳。 342. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約400奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳。 343. 條款325至335中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量為該患者每公斤體重約500奈莫耳。 344. 條款336之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約0.5奈莫耳至每公斤體重約500奈莫耳。 345. 條款337之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約0.5奈莫耳至每公斤體重約450奈莫耳。 346. 條款338之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約0.5奈莫耳至每公斤體重約400奈莫耳。 347. 條款339之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約0.5奈莫耳至每公斤體重約350奈莫耳。 348. 條款340之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約0.5奈莫耳至每公斤體重約300奈莫耳。 349. 條款341之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約1奈莫耳至每公斤體重約300奈莫耳。 350. 條款342之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約2奈莫耳至每公斤體重約300奈莫耳。 351. 條款343之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約2奈莫耳至每公斤體重約250奈莫耳。 352. 條款336至343中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約5奈莫耳至每公斤體重約40奈莫耳。 353. 條款336至343中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量為該患者每公斤體重約40奈莫耳至每公斤體重約150奈莫耳。 354. 條款325至353中任一項之方法,其進一步包含投與第三劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第三劑量與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量相同。 355. 條款354之方法,其進一步包含投與第四劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第四劑量與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量及該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第三劑量相同。 356. 條款325至355中任一項之方法,其中在該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量後投與的該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量相對於該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量維持該癌症生長之抑制。 357. 條款325至356中任一項之方法,其中該等CAR T細胞以約100萬該等CAR T細胞至約4000萬該等CAR T細胞之劑量投與。 358. 條款325至357中任一項之方法,其中在該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量後投與的該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量每週投與一次。 359. 條款325至357中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量每週投與兩次。 360. 條款325至359中任一項之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 361. 條款325至360中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 362. 條款325至360中任一項之方法,其中該配位體為NK-1R配位體。 363. 條款325至360中任一項之方法,其中該配位體為DUPA。 364. 條款325至360中任一項之方法,其中該配位體為CCK2R配位體。 365. 條款325至360中任一項之方法,其中該配位體為γ麩胺醯基轉肽酶之配位體。 366. 條款325至365中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 367. 條款325至366中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 368. 條款325至366中任一項之方法,其中該靶向部分為DNP。 369. 條款325至366中任一項之方法,其中該靶向部分為TNP。 370. 條款325至369中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 371. 條款325至370中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 372. 條款325至371中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 373. 條款372之方法,其中n為0至150之整數。 374. 條款372之方法,其中n為0至110之整數。 375. 條款372之方法,其中n為0至20之整數。 376. 條款372之方法,其中n為15至20之整數。 377. 條款372之方法,其中n為15至110之整數。 378. 條款325至367或370至377中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 379. 條款325至378中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 380. 條款325至361或366至379中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 381. 條款380之方法,其中該癌症為子宮內膜癌。 382. 條款380之方法,其中該癌症為非小細胞肺癌。 383. 條款380之方法,其中該癌症為卵巢癌。 384. 條款380之方法,其中該癌症為三陰性乳癌。 385. 條款325至384中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 386. 條款325至367或370至385中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該CAR之該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 387. 條款325至386中任一項之方法,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域係選自由CD28、CD137 (4-1BB)、CD134 (OX40)及CD278 (ICOS)組成之群。 388. 條款325至387中任一項之方法,其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈或Fc受體γ。 389. 條款325至367或370至388中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 390. 條款325至389中任一項之方法,其中投與多個劑量之該CAR T細胞組合物。 391. 條款325至390中任一項之方法,其中在投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前或在投與該CAR T細胞組合物之前使該患者成像。 392. 條款325至391中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 393. 條款325至392中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 394. 條款325至393中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 395. 條款325至393中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 396. 條款325至393中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 397. 條款325至398中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 398. 條款325至397中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 399. 條款397之方法,其中該核酸編碼嵌合抗原受體。 400. 條款325至399中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 401. 條款325至399中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 402. 條款325至401中任一項之方法,其進一步包含向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑的步驟,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 403. 條款402之方法,其中向該患者投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑且該藥劑為阻斷CAR T細胞與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽結合但不結合該癌症之藥劑。 404 條款403之方法,其中該藥劑為螢光素胺、螢光素鈉或螢光素。 405. 條款404之方法,其中該藥劑為螢光素鈉。 406. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽在投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物之前至少約一小時投與該患者,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR; ii)接著向該患者投與一定劑量之該CAR T細胞組合物;以及 iii)接著向該患者投與第二劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽。 407. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約兩小時投與該患者。 408. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約四小時投與該患者。 409. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約八小時投與該患者。 410. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約十二小時投與該患者。 411. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約十六小時投與該患者。 412. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約二十小時投與該患者。 413. 條款406之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第一劑量在投與該CAR T細胞組合物之前至少約二十四小時投與該患者。 414. 條款406至413中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量在投與該CAR T細胞組合物之後至少約二十四小時投與該患者。 415. 條款406至413中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量在投與該CAR T細胞組合物之後至少約十六小時投與該患者。 416. 條款406至413中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量在投與該CAR T細胞組合物之後至少約十二小時投與該患者。 417. 條款406至413中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量在投與該CAR T細胞組合物之後至少約八小時投與該患者。 418. 條款406至413中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的該第二劑量在投與該CAR T細胞組合物之後至少約四小時投與該患者。 419. 條款406至418中任一項之方法,其中未出現在該患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 420. 條款406至418中任一項之方法,其中在該患者中未出現脫靶組織毒性,且其中出現針對該癌症之CAR T細胞毒性。 421. 條款406至418中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,其中該患者中腫瘤尺寸減小,且其中未出現脫靶毒性。 422. 條款406至418中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,且其中該患者中腫瘤尺寸之減小超過投與該CAR T細胞組合物之前未用該化合物或其醫藥學上可接受之鹽預先治療之患者中。 423. 條款406至422中任一項之方法,其中該配位體係選自由葉酸、DUPA、NK-1R配位體、CAIX配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體及CCK2R配位體組成之群。 424. 條款406至423中任一項之方法,其中該配位體為葉酸。 425. 條款406至423中任一項之方法,其中該配位體為NK-1R配位體。 426. 條款406至423中任一項之方法,其中該配位體為DUPA。 427. 條款406至423中任一項之方法,其中該配位體為CCK2R配位體。 428. 條款406至423中任一項之方法,其中該配位體為γ麩胺醯基轉肽酶之配位體。 429. 條款406至428中任一項之方法,其中該靶向部分係選自由以下組成之群:2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素及DARPin。 430. 條款406至429中任一項之方法,其中該靶向部分為FITC。 431. 條款406至429中任一項之方法,其中該靶向部分為DNP。 432. 條款406至429中任一項之方法,其中該靶向部分為TNP。 433. 條款406至432中任一項之方法,其中該連接子包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 434. 條款406至433中任一項之方法,其中該連接子包含PEG。 435. 條款406至434中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。 436. 條款435之方法,其中n為0至150之整數。 437. 條款435之方法,其中n為0至110之整數。 438. 條款435之方法,其中n為0至20之整數。 439. 條款435之方法,其中n為15至20之整數。 440. 條款435之方法,其中n為15至110之整數。 441. 條款406至430或433至440中任一項之方法,其中該連接子包含PEG且該靶向部分為FITC,或其醫藥學上可接受之鹽。 442. 條款406至441中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約10000奈莫耳之劑量投與。 443. 條款406至441中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約5000奈莫耳之劑量投與。 444. 條款406至441中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約1000奈莫耳之劑量投與。 445. 條款406至441中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約10奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 446. 條款406至441中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約200奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 447. 條款406至441中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽以該患者每公斤體重約250奈莫耳至每公斤體重約600奈莫耳之劑量投與。 448. 條款406至447中任一項之方法,其中該癌症係選自由以下組成之群:肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病、急性骨髓細胞性白血病、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 449. 條款406至424或429至448中任一項之方法,其中該癌症為表現葉酸受體之癌症。 450. 條款448之方法,其中該癌症為子宮內膜癌。 451. 條款448之方法,其中該癌症為非小細胞肺癌。 452. 條款448之方法,其中該癌症為卵巢癌。 453. 條款448之方法,其中該癌症為三陰性乳癌。 454. 條款406至453中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 455. 條款406至430或433至454中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該CAR之該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區。 456. 條款406至455中任一項之方法,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域係選自由CD28、CD137 (4-1BB)、CD134 (OX40)及CD278 (ICOS)組成之群。 457. 條款406至456中任一項之方法,其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈或Fc受體γ。 458. 條款406至430或433至457中任一項之方法,其中該CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,其中該CAR具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137 (4-1BB),且其中該CAR具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。 459. 條款406至458中任一項之方法,其中投與多個劑量之該CAR T細胞組合物。 460. 條款406至459中任一項之方法,其中在投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前使該患者成像。 461. 條款406至460中任一項之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。 462. 條款406至461中任一項之方法,其中該靶向部分不包含肽抗原決定基。 463. 條款406至462中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 1之核酸。 464. 條款406至463中任一項之方法,其中該等CAR T細胞包含含有SEQ ID NO: 2之多肽。 465. 條款463之方法,其中該核酸編碼嵌合抗原受體。 466. 條款406至465中任一項之方法,其中該CAR包含人類化胺基酸序列。 467. 條款406至465中任一項之方法,其中該CAR由人類化胺基酸序列組成。 468. 條款108至182中任一項之方法,其中向該患者投與超過一劑之該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 469. 條款108至182中任一項之方法,其中在化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前及/或之後向該患者投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 470. 條款108至182中任一項之方法,其中投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑引起該患者中之細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 471. 條款470之方法,其中在向該患者投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑之後約3小時,細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 472. 條款470之方法,其中在向該患者投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑之後約6小時,細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 473. 條款470之方法,其中該細胞介素水準降低係降低至約未經治療之患者中的細胞介素水準。 474. 條款108至182中任一項之方法,其中在投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑之前及之後投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 475. 條款108至182中任一項之方法,其中在投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑之後該患者之血液中的CAR T細胞數目增加,即使該患者中之細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 476. 條款108至182中任一項之方法,其中相對於未用救援劑治療之患者,在投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑之後CAR T細胞活化得到增強或維持,即使該經治療之患者中之細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 477. 條款108至182中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤,且當向該患者投與該葉酸、該包含葉酸之結合物或該抑制CAR T細胞活化之藥劑時該患者中之腫瘤尺寸未增加,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 478. 條款477之方法,其中獲得對該腫瘤之完全反應。 479. 條款108、115至160、168至182及468至478中任一項之方法,其中當CRS級別達到1、2、3或4時向該患者投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑。 480. 條款108、115至160、168至182及468至478中任一項之方法,其中當CRS級別達到3或4時向該患者投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑。 481. 條款108至182及468至480中任一項之方法,其中肺水腫減輕。 482. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.01至約300微莫耳之劑量投與。 483. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約100微莫耳之劑量投與。 484. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約90微莫耳之劑量投與。 485. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約80微莫耳之劑量投與。 486. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約70微莫耳之劑量投與。 487. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約60微莫耳之劑量投與。 488. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約50微莫耳之劑量投與。 489. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約40微莫耳之劑量投與。 490. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約30微莫耳之劑量投與。 491. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約20微莫耳之劑量投與。 492. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約10微莫耳之劑量投與。 493. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約8微莫耳之劑量投與。 494. 條款108、115至160、168至182及468至481中任一項之方法,其中該抑制CAR T細胞活化之藥劑以該患者每公斤體重約0.06至約6微莫耳之劑量投與。 495. 條款108、115至160、168至181及468至494中任一項之方法,其中向該患者投與該抑制該等CAR T細胞活化之藥劑且該藥劑為螢光素鈉。 496. 條款1至495中任一項之方法,其中減輕或預防CRS且該方法使得該患者中之腫瘤體積減小。 497. 條款1至496中任一項之方法,其中減輕或預防由CRS引起之體重減輕。 498. 條款1至3、8至28、33至58、63至83、88至136、141至249、252至361、366至380、385至424、429至449及454至497中任一項之方法,其中該癌症為急性骨髓細胞性白血病。 499. 條款498之方法,其中該癌症表現葉酸受體-β。 500. 條款498或499之方法,其中該CAR-T細胞具有中樞記憶/效應記憶表型。 501. 條款1至500中任一項之方法,其中該等CAR T細胞之CD8:CD4比率為約1:1。 502. 條款215至251中任一項之方法,其進一步包含步驟iv)向該患者再投與該化合物或其醫藥學上可接受之鹽。 503. 條款474之方法,其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽的隨後投與引起該患者中CAR T細胞活化及細胞介素水準增加。 504. 條款1至107、183至476或479至503中任一項之方法,其中該癌症包含腫瘤且其中獲得對該腫瘤之完全反應。 505. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體;以及 ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR;且其中該小分子配位體為PSMA配位體且該靶向部分為FITC。 506. 條款505之方法,其中該藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體具有式
。 507. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體;以及 ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR;且其中該小分子配位體為CAIX配位體且該靶向部分為FITC。 508. 條款507之方法,其中該藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體具有式
。 509. 一種治療癌症之方法,該方法包含 i)向患者投與第一化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一化合物或其醫藥學上可接受之鹽包含藉由連接子連接於FITC之PSMA配位體; ii)向該患者投與第二化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第二化合物或其醫藥學上可接受之鹽包含藉由連接子連接於FITC之CAIX配位體;以及 iii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR。 510. 條款509之方法,其中該第一化合物具有式
且該第二化合物具有式
。 因此,在一個實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與第一劑量之CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,及iii)向該患者投與第二劑量之CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,及ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中組合物中之CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR且其中CAR T細胞組合物包含CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,及iii)向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制CAR T細胞活化之藥物,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,且其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量為該患者每公斤體重約10奈莫耳至該患者每公斤體重約2500奈莫耳,及ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,且其中CAR T細胞之劑量為約100萬CAR T細胞至約1500萬CAR T細胞。 在再一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)連續向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,及iii)終止化合物或其醫藥學上可接受之鹽之連續投與以抑制或預防少患者中之細胞介素釋放症候群。 在另一例示性態樣中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,其中至少向患者投與第一劑量及第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中第一劑量與第二劑量不同,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約2倍至約15000倍,及ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,且其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽每週投與患者一次,及ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與至少第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約50%,及iii)向該患者投與一定劑量之包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。 在再一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,且其中該化合物或其醫藥學上可接受之鹽在投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物之前至少約一小時投與該患者,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR,ii)接著向該患者投與一定劑量之該CAR T細胞組合物;及iii)接著向該患者投與第二劑量之該化合物或其醫藥學上可接受之鹽。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,及ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,且其中該小分子配位體為PSMA配位體且該靶向部分為FITC。在此實施例中,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體可具有式
。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,及ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,且其中小分子配位體為CAIX配位體且靶向部分為FITC。在此實施例中,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體可具有式
。 在再一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與第一化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一化合物或其醫藥學上可接受之鹽包含藉由連接子連接於FITC之PSMA配位體,ii)向該患者投與第二化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第二化合物或其醫藥學上可接受之鹽包含藉由連接子連接於FITC之CAIX配位體,及iii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。在此實施例中,第一化合物可具有式
且第二化合物可具有式
。 因此,前述十二段及以上條款清單中提供各種實施例,且此「說明性實施例之詳細描述」、概述部分、實例及申請專利範圍中描述之所有適用實施例均適用於此等實施例。 如本文所述,「患者」可為人類,或在獸醫學應用之情況下,患者可為實驗室動物、農畜、家畜或野生動物。在各個態樣中,患者可為實驗室動物,諸如嚙齒動物(例如小鼠、大鼠、倉鼠等)、兔、猴、黑猩猩、家畜(諸如犬、貓或兔)、農畜(諸如牛、馬、豬、綿羊、山羊)或籠養野生動物,諸如熊、熊貓、獅子、虎、豹、大象、斑馬、長頸鹿、大猩猩、海豚或鯨。 在各種實施例中,待治療之癌症可選自癌瘤、肉瘤、骨肉瘤、淋巴瘤、黑色素瘤、間皮瘤、鼻咽癌、白血病、腺癌或骨髓瘤。在其他實施例中,該癌症可為肺癌、骨癌、胰臟癌、皮膚癌、頭癌、頸癌、皮膚黑色素瘤、眼內黑色素瘤、子宮癌、卵巢癌、子宮內膜癌、直腸癌、胃癌、結腸癌、乳癌、三陰性乳癌、輸卵管癌、子宮內膜癌、子宮頸癌、陰道癌、外陰癌、霍奇金氏病、食道癌、小腸癌、內分泌系統癌、甲狀腺癌、副甲狀腺癌、非小細胞肺癌、腎上腺癌、軟組織肉瘤、骨肉瘤、尿道癌、前列腺癌、慢性白血病、急性白血病(包括急性骨髓細胞性白血病)、淋巴細胞性淋巴瘤、骨髓白血病、骨髓單核細胞性白血病、毛細胞白血病、胸膜間皮瘤、膀胱癌、伯基特氏淋巴瘤、輸尿管癌、腎癌、腎細胞癌、腎盂癌、中樞神經系統(CNS)贅瘤、原發性CNS淋巴瘤、脊柱軸腫瘤、腦幹神經膠質瘤、垂體腺瘤及胃食道接合部腺癌。 在此等實施例之一些態樣中,癌症為表現葉酸受體之癌症。在另一實施例中,癌症為表現葉酸受體α之癌症。在另一實施例中,癌症為表現葉酸受體β之癌症。在此等實施例之一些態樣中,癌症為子宮內膜癌、非小細胞肺癌、卵巢癌或三陰性乳癌。在另一實施例中,所治療之癌症為腫瘤。在另一實施例中,癌症為惡性的。在另一實施例中,癌症為急性骨髓細胞性白血病。在另一實施例中,癌症為急性骨髓細胞性白血病且癌症表現葉酸受體-β。在再一實施例中,癌症為急性骨髓細胞性白血病且CAR-T細胞具有中樞記憶/效應記憶表型。在另一實施例中,CAR T細胞之CD8:CD4比率為約1:1比率。在另一實施例中,CD8:CD4比率為約1.2:1比率、約1:1.2比率、約1.3:1比率、約1:1.3比率、約1.4:1比率、約1:1.4比率、約1.5:1比率或約1:1.5比率。在癌症為急性骨髓細胞性白血病且使用救援劑之其他實施例中,在投與CAR T細胞之後,甚至在救援劑用於抑制或預防CRS後,CAR T細胞可保持存在於患者中達至少約40天、至少約45天、至少約50天、至少約55天、至少約60天、至少約70天、至少約80天、至少約90天或至少約100天。在癌症為急性骨髓細胞性白血病或另一癌症之另一實施例中,與腫瘤相關之CAR T細胞相對於未與腫瘤相關之CAR T細胞可具有增加之CD25表現。 在一個實施例中,「小分子配位體」可為葉酸、DUPA (由PSMA陽性人類前列腺癌細胞及其他癌細胞類型結合之配位體)、NK-1R配位體(例如在結腸及胰臟之癌症上發現NK-1R配位體之受體)、CAIX配位體(例如在腎癌、卵巢癌、外陰癌及乳癌上發現CAIX配位體之受體)、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體(該轉肽酶例如在卵巢癌、結腸癌、肝癌、星形膠質細胞、黑色素瘤及白血病中過度表現)、NKG2D配位體(例如在肺癌、結腸癌、腎癌、前列腺癌上及在T細胞及B細胞淋巴瘤上發現NKG2D配位體之受體)或CCK2R配位體(尤其在甲狀腺、肺、胰臟、卵巢、腦、胃、胃腸道基質及結腸之癌症上發現CCK2R配位體之受體),其中各者為特異性地結合於癌細胞類型之小分子配位體(亦即與正常組織相比,此等配位體各者之受體可在癌症上過度表現)。 在一個實施例中,小分子配位體可具有低於約10,000道爾頓、低於約9000道爾頓、低於約8,000道爾頓、低於約7000道爾頓、低於約6000道爾頓、低於約5000道爾頓、低於約4500道爾頓、低於約4000道爾頓、低於約3500道爾頓、低於約3000道爾頓、低於約2500道爾頓、低於約2000道爾頓、低於約1500道爾頓、低於約1000道爾頓或低於約500道爾頓之質量。在另一實施例中,小分子配位體可具有約1至約10,000道爾頓、約1至約9000道爾頓、約1至約8,000道爾頓、約1至約7000道爾頓、約1至約6000道爾頓、約1至約5000道爾頓、約1至約4500道爾頓、約1至約4000道爾頓、約1至約3500道爾頓、約1至約3000道爾頓、約1至約2500道爾頓、約1至約2000道爾頓、約1至約1500道爾頓、約1至約1000道爾頓或約1至約500道爾頓之質量。 在一個實施例中,DUPA衍生物可為連接於靶向部分之小分子配位體的配位體,且DUPA衍生物描述於以引用的方式併入本文中之WO 2015/057852中。 在一個實施例中,在「連接於連接子之小分子配位體」之情況下小分子配位體為葉酸。在各種實施例中,葉酸可為葉酸、葉酸類似物或另一葉酸受體結合分子。在各種實施例中,可使用之葉酸之類似物包括亞葉酸(例如甲醯四氫葉酸)、喋醯聚麩胺酸及葉酸受體結合喋啶,諸如四氫喋呤、二氫葉酸、四氫葉酸及其脫氮及二脫氮類似物。術語「脫氮」及「二脫氮」類似物係指有碳原子取代天然存在之葉酸結構中之一或兩個氮原子的此項技術所知之類似物。舉例而言,脫氮類似物包括1-脫氮、3-脫氮、5-脫氮、8-脫氮及10-脫氮類似物。二脫氮類似物包括例如1,5-二脫氮、5,10-二脫氮、8,10-二脫氮及5,8-二脫氮類似物。上述葉酸類似物一般稱為「葉酸」,此反映其結合於葉酸受體之能力。其他葉酸受體結合類似物包括胺基喋呤、胺甲喋呤(甲胺喋呤)、N10-甲基葉酸、2-脫胺基-羥基葉酸、脫氮類似物(諸如1-脫氮胺甲喋呤或3-脫氮胺甲喋呤)及3',5'-二氯-4-胺基-4-去氧-N10-甲基喋醯麩胺酸(二氯甲胺喋呤)。 在另一實施例中,在「連接於連接子之小分子配位體」之情況下小分子配位體可具有式
其中X
1
及Y
1
各自獨立地選自由以下組成之群:鹵基、R
2
、OR
2
、SR
3
及NR
4
R
5
; U、V及W表示各自獨立地選自由以下組成之群的二價部分:-(R
6a
)C=、-N=、-(R
6a
)C(R
7a
)-及-N(R
4a
)-;Q係選自由以下組成之群:C及CH;T係選自由以下組成之群:S、O、N及-C=C-; X
2
及X
3
各自獨立地選自由以下組成之群:氧、硫、-C(Z)-、-C(Z)O-、-OC(Z)-、-N(R
4b
)-、-C(Z)N(R
4b
)-、-N(R
4b
)C(Z)-、-OC(Z)N(R
4b
)-、-N(R
4b
)C(Z)O-、-N(R
4b
)C(Z)N(R
5b
)-、-S(O)-、-S(O)
2
-、-N(R
4a
)S(O)
2
-、-C(R
6b
)(R
7b
)-、-N(C≡CH)-、-N(CH
2
C≡CH)-、C
1
-C
12
伸烷基及C
1
-C
12
伸烷氧基,其中Z為氧或硫; R
1
係選自由氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基組成之群; R
2
、R
3
、R
4
、R
4a
、R
4b
、R
5
、R
5b
、R
6b
及R
7b
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基、C
1
-C
12
烷氧基、C
1
-C
12
烷醯基、C
1
-C
12
烯基、C
1
-C
12
炔基、(C
1
-C
12
烷氧基)羰基及(C
1
-C
12
烷胺基)羰基; R
6
及R
7
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基;或R
6
及R
7
一起形成羰基; R
6a
及R
7a
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基;或R
6a
及R
7a
一起形成羰基; p、r、s及t各自獨立地為0或1;且 若任何其他化學部分為該葉酸之一部分,則*表示與該結合物之其餘部分鍵結的視情況存在之共價鍵。 在一個態樣中,結合於由CAR T細胞表現之CAR的「靶向部分」可選自例如2,4-二硝基苯酚(DNP)、2,4,6-三硝基苯酚(TNP)、生物素、地高辛、螢光素、異硫氰酸螢光素(FITC)、NHS-螢光素、五氟苯基酯、四氟苯基酯、打結素、賽丁素、DARPin、親和抗體、阿菲林、抗運載蛋白、艾三聚體(atrimer)、高親和性多聚體、雙環肽、FN3骨架、cys-結、福諾體(fynomer)、孔尼茲結構域(Kunitz domain)或Obody。限制靶向部分之屬性,僅僅係因為其應由CAR較佳以特異性識別及結合,且其具有相對較低之分子量。在各個態樣中,示例性靶向部分為半抗原,包括小分子量有機分子。 在一個例示性實施例中,靶向部分可具有以下例示性結構:
其中X為氧、氮或硫,且其中X附接至連接子L;Y為OR
a
、NR
a 2
或NR
a 3 +
;且Y'為O、NR
a
或NR
a 2 +
;其中在各情況下各R獨立地選自H、氟、磺酸、磺酸酯及其鹽及其類似物;且R
a
為氫或烷基。 在一個例示性態樣中,連接子可包含聚乙二醇(PEG)、聚脯胺酸、親水性胺基酸、糖、非天然肽聚糖、聚乙烯吡咯啶酮、普洛尼克F-127或其組合。 在另一例示性態樣中,本文所述之化合物或其醫藥學上可接受之鹽中的連接子可包含直接連接(例如FITC之異硫氰酸酯基與小分子配位體之游離胺基之間的反應)或連接可經由中間連接子。在一個實施例中,若存在,則中間連接子可為此項技術中已知之任何生物相容性連接子,諸如二價連接子。在一個例示性實施例中,二價連接子可包含約1至約30個碳原子。在另一例示性實施例中,二價連接子可包含約2至約20個碳原子。在其他實施例中,採用低分子量二價連接子(亦即,近似分子量為約30至約300道爾頓之彼等連接子)。在另一實施例中,合適之連接子長度包括(但不限於)具有2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個、11個、12個、13個、14個、15個、16個、17個、18個、19個、20個、21個、22個、23個、24個、25個、26個、27個、28個、29個、30個、31個、32個、33個、34個、35個、36個、37個、38個、39個或40個或更多個原子之連接子。 在各種實施例中,連接於靶向部分之小分子配位體可具有式
, 其中B表示該小分子配位體,L表示該連接子,且T表示該靶向部分,且其中L包含具有下式之結構:
其中n為0至200之整數。在另一實施例中,n可為0至150、0至110、0至100、0至90、0至80、0至70、0至60、0至50、0至40、0至30、0至20、0至15、0至14、0至13、0至12、0至11、0至10、0至9、0至8、0至7、0至6、0至5、0至4、0至3、0至2、0至1、15至16、15至17、15至18、15至19、15至20、15至21、15至22、15至23、15至24、15至25、15至26、15至27、15至28、15至29、15至30、15至31、15至32、15至33、15至34、15至35、15至36、15至37、15至38、15至39、15至40、15至50、15至60、15至70、15至80、15至90、15至100、15至110、15至120、15至130、15至140、15至150之整數,或n可為1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、50、60、70、80、90、100、108、110、120、130、140或150。在另一實施例中,連接子可為可包括一或多個間隔基之二價連接子。例示性間隔基顯示於下表中。描述以下非限制性例示性間隔基,其中*指示與小分子配位體或靶向部分或其他二價連接子部分之連接點。
<img wi="67" he="39" file="IMG-2/Draw/02_image121.jpg" img-format="jpg"><img wi="66" he="54" file="IMG-2/Draw/02_image123.jpg" img-format="jpg"><img wi="88" he="113" file="IMG-2/Draw/02_image125.jpg" img-format="jpg"><img wi="67" he="36" file="IMG-2/Draw/02_image127.jpg" img-format="jpg"><img wi="66" he="57" file="IMG-2/Draw/02_image129.jpg" img-format="jpg"><img wi="48" he="88" file="IMG-2/Draw/02_image131.jpg" img-format="jpg"><img wi="150" he="91" file="IMG-2/Draw/02_image133.jpg" img-format="jpg"><img wi="35" he="62" file="IMG-2/Draw/02_image135.jpg" img-format="jpg"><img wi="67" he="87" file="IMG-2/Draw/02_image137.jpg" img-format="jpg"><img wi="58" he="88" file="IMG-2/Draw/02_image139.jpg" img-format="jpg"><img wi="146" he="66" file="IMG-2/Draw/02_image141.jpg" img-format="jpg"><img wi="72" he="62" file="IMG-2/Draw/02_image143.jpg" img-format="jpg"><img wi="47" he="69" file="IMG-2/Draw/02_image145.jpg" img-format="jpg"><img wi="56" he="33" file="IMG-2/Draw/02_image147.jpg" img-format="jpg"><img wi="76" he="34" file="IMG-2/Draw/02_image149.jpg" img-format="jpg"><img wi="67" he="62" file="IMG-2/Draw/02_image151.jpg" img-format="jpg"><img wi="92" he="70" file="IMG-2/Draw/02_image153.jpg" img-format="jpg"><img wi="71" he="69" file="IMG-2/Draw/02_image155.jpg" img-format="jpg"><img wi="168" he="67" file="IMG-2/Draw/02_image157.jpg" img-format="jpg"><img wi="43" he="63" file="IMG-2/Draw/02_image159.jpg" img-format="jpg"><img wi="85" he="39" file="IMG-2/Draw/02_image161.jpg" img-format="jpg"><img wi="67" he="42" file="IMG-2/Draw/02_image163.jpg" img-format="jpg"><img wi="83" he="52" file="IMG-2/Draw/02_image165.jpg" img-format="jpg"><img wi="80" he="52" file="IMG-2/Draw/02_image167.jpg" img-format="jpg"><img wi="102" he="109" file="IMG-2/Draw/02_image169.jpg" img-format="jpg"><img wi="84" he="109" file="IMG-2/Draw/02_image171.jpg" img-format="jpg"><img wi="102" he="43" file="IMG-2/Draw/02_image173.jpg" img-format="jpg"><img wi="57" he="62" file="IMG-2/Draw/02_image175.jpg" img-format="jpg"><img wi="57" he="69" file="IMG-2/Draw/02_image177.jpg" img-format="jpg"><img wi="67" he="68" file="IMG-2/Draw/02_image179.jpg" img-format="jpg"><img wi="93" he="43" file="IMG-2/Draw/02_image181.jpg" img-format="jpg"><img wi="52" he="62" file="IMG-2/Draw/02_image183.jpg" img-format="jpg"><img wi="53" he="60" file="IMG-2/Draw/02_image185.jpg" img-format="jpg"><img wi="58" he="62" file="IMG-2/Draw/02_image187.jpg" img-format="jpg"><img wi="86" he="88" file="IMG-2/Draw/02_image189.jpg" img-format="jpg"><img wi="70" he="38" file="IMG-2/Draw/02_image191.jpg" img-format="jpg"><img wi="88" he="88" file="IMG-2/Draw/02_image193.jpg" img-format="jpg"><img wi="71" he="88" file="IMG-2/Draw/02_image195.jpg" img-format="jpg"><img wi="89" he="88" file="IMG-2/Draw/02_image197.jpg" img-format="jpg">
在其他實施例中,連接於靶向部分(橋樑)之小分子配位體可具有任一以下結構。
在其他實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽並非抗體,且不包含抗體片段。在另一實施例中,靶向部分不包含肽抗原決定基。 在一個例示性實施例中,藉由連接子(橋樑)連接於靶向部分之小分子配位體包含連接於小分子配位體之異硫氰酸螢光素(FITC)。在一個態樣中,癌症可過度表現小分子配位體之受體。在另一態樣中,例如細胞毒性T細胞或另一類型T細胞可轉形以表現包含抗FITC scFv之CAR。在此態樣中,作為小分子配位體與癌症結合之結果,CAR可靶向以FITC分子裝飾癌症之FITC。因此,可避免對正常之非標靶細胞之毒性。在此實施例中,當抗FITC表現CAR之T細胞結合FITC時CAR T細胞活化且改善癌症。 涵蓋藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體的「醫藥學上可接受之鹽」。如本文所用,術語「醫藥學上可接受之鹽」係指相對離子可用於藥物中之彼等鹽。在各種實施例中,此類鹽包括(但不限於):1)酸加成鹽,其可由母體化合物之游離鹼與無機酸之反應形成,該等無機酸為諸如鹽酸、氫溴酸、硝酸、磷酸、硫酸及過氯酸及其類似物;或由母體化合物之游離鹼與有機酸之反應形成,該等有機酸為諸如乙酸、乙二酸、(D)或(L)蘋果酸、順丁烯二酸、甲烷磺酸、乙烷磺酸、對甲苯磺酸、水楊酸、酒石酸、檸檬酸、丁二酸或丙二酸及其類似物;或2)當母體化合物中存在之酸性質子經金屬離子(例如鹼金屬離子、鹼土金屬離子或鋁離子)置換時所形成之鹽;或當母體化合物中存在之酸性質子與有機鹼配位而形成的鹽,該有機鹼為諸如乙醇胺、二乙醇胺、三乙醇胺、三羥甲基胺基甲烷、N-甲基還原葡糖胺及其類似物。醫藥學上可接受之鹽為熟習此項技術者所熟知,且結合本文所述之實施例涵蓋任何此類醫藥學上可接受之鹽。 在各種實施例中,合適酸加成鹽由形成無毒鹽之酸形成。例示性實例包括乙酸鹽、天冬胺酸鹽、苯甲酸鹽、苯磺酸鹽、碳酸氫鹽/碳酸鹽、硫酸氫鹽/硫酸鹽、硼酸鹽、樟腦磺酸鹽、檸檬酸鹽、乙二磺酸鹽、乙磺酸鹽、甲酸鹽、反丁烯二酸鹽、葡庚糖酸鹽、葡糖酸鹽、葡萄糖醛酸鹽、六氟磷酸鹽、海苯酸鹽、鹽酸鹽/氯化物、氫溴酸鹽/溴化物、氫碘酸鹽/碘化物、羥乙磺酸鹽、乳酸鹽、蘋果酸鹽、順丁烯二酸鹽、丙二酸鹽、甲磺酸鹽、甲硫酸鹽、萘二甲酸鹽、2-萘磺酸鹽、菸酸鹽、硝酸鹽、乳清酸鹽、草酸鹽、棕櫚酸鹽、雙羥萘酸鹽、磷酸鹽/磷酸氫鹽/磷酸二氫鹽、葡萄糖二酸鹽、硬脂酸鹽、丁二酸鹽、酒石酸鹽、甲苯磺酸鹽及三氟乙酸鹽。 在各種實施例中,合適鹼鹽由形成無毒鹽之鹼形成。例示性實例包括精胺酸、苄星青黴素、鈣、膽鹼、二乙胺、二乙醇胺、甘胺酸、離胺酸、鎂、葡甲胺、乙醇胺、鉀、鈉、緩血酸胺及鋅之鹽。亦可形成酸及鹼之半鹽,例如半硫酸鹽及半鈣鹽。 在一個例示性態樣中,本文所述之化合物或其醫藥鹽可含有一或多個對掌性中心,或可另外能夠呈多個立體異構體存在。因此,各種實施例可包括純立體異構體以及立體異構體之混合物,諸如對映異構體、非對映異構體及對映異構性或非對映異構性增濃混合物。在一個態樣中,本文所述之化合物或其醫藥學上可接受之鹽能夠呈幾何異構體存在。因此,各種實施例可包括純幾何異構體或幾何異構體之混合物。 在一些態樣中,本文所述之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可呈未溶劑化形式以及溶劑化形式,包括水合形式存在。一般而言,溶劑化形式等同於未溶劑化形式且涵蓋於本發明之範疇內。 本文所述之方法亦利用T淋巴細胞(例如細胞毒性T淋巴細胞),其經工程改造以表現識別且結合於橋樑之靶向部分(例如FITC、DNP或TNP)之嵌合抗原受體(CAR)。在一個實施例中,本文所述之CAR包含三個結構域,包括1)以特異性識別且結合於靶向部分之識別區(例如抗體之單鏈片段可變(scFv)區、Fab片段及其類似物);2)增強T淋巴細胞之增殖及存活的共刺激結構域;及3)活化信號傳導結構域,其產生T淋巴細胞活化信號。 在各個態樣中,作為非限制性實例,可使用結合葉酸、DUPA、CAIX配位體、NK-1R配位體、γ麩胺醯基轉肽酶之配位體、NKG2D配位體或CCK2R配位體之抗體之scFv區。在例示性非限制性實施例中,scFv區可由以下來製備:(i)此項技術中已知之結合靶向部分之抗體;(ii)使用所選靶向部分,諸如半抗原新製之抗體;及(iii)來源於此類抗體之scFv區的序列變異體,例如與其源自之scFv區之胺基酸序列具有至少約80%、至少約90%、至少約91%、至少約92%、至少約93%、至少約94%、至少約95%、至少約96%、至少約97%、至少約98%、至少約99%或至少約99.5%序列一致性的scFv區。 在一個態樣中,共刺激結構域用以在CAR結合於靶向部分時增強細胞毒性T淋巴細胞之增殖及存活。合適共刺激結構域包括(但不限於) CD28、CD137 (4-1BB)、腫瘤壞死因子(TNF)受體家族之成員、CD134 (OX40)、TNFR受體超家族之成員、CD27、CD30、CD150、DAP10、NKG2D及CD278 (ICOS)、在活化T細胞上表現之CD28超家族共刺激分子或其組合。熟練技術人員應瞭解可在不會不利地影響本發明的情況下使用此等共刺激結構域之序列變異體,其中該等變異體具有與其模擬之結構域相同或類似的活性。在各種實施例中,此類變異體可與其源自之結構域之胺基酸序列具有至少約80%、至少約90%、至少約91%、至少約92%、至少約93%、至少約94%、至少約95%、至少約96%、至少約97%、至少約98%、至少約99%或至少約99.5%序列一致性。 在例示性實施例中,活化信號傳導結構域用以在CAR結合於靶向部分時活化T淋巴細胞(例如細胞毒性T淋巴細胞)。在各種實施例中,合適活化信號傳導結構域包括T細胞CD3ζ鏈、CD3δ受體蛋白、mbl受體蛋白、B29受體蛋白及Fc受體γ。熟練技術人員應瞭解可使用此等活化信號傳導結構域之序列變異體,其中變異體具有與其模擬之結構域相同或類似的活性。在各種實施例中,變異體與其源自之結構域之胺基酸序列具有至少約80%、至少約90%、至少約91%、至少約92%、至少約93%、至少約94%、至少約95%、至少約96%、至少約97%、至少約98%、至少約99%或至少約99.5%序列一致性。 在一個態樣中,使用基因工程改造技術製備編碼CAR之構築體。此類技術詳細地描述於Sambrook等人,「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」,第3版,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(2001) (以引用的方式併入)及Green及Sambrook,「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」,第4版,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(2012) (以引用的方式併入)中。 作為實例,可製備質體或病毒表現載體(例如慢病毒載體、反轉錄病毒載體、睡美人及背馱(包括非病毒介導之CAR基因遞送系統之轉座子/轉座酶系統)),其編碼包含同框且在5'至3'方向上連接之識別區、一或多個共刺激結構域及活化信號傳導結構域之融合蛋白。在其他實施例中,其他排列為可接受的,且包括識別區、活化信號傳導結構域及一或多個共刺激結構域。在一個實施例中,融合蛋白中識別區之置放一般使得區域呈現在細胞之外部上。在一個實施例中,CAR可包括其他元件,諸如確保融合蛋白適當輸出至細胞表面之信號肽(例如CD8α信號肽);確保融合蛋白作為整合膜蛋白維持之跨膜域(例如CD8α跨膜域、CD28跨膜域或CD3ζ跨膜域)及賦予識別區可撓性且允許強烈結合於靶向部分之鉸鏈結構域(例如CD8α鉸鏈)。 圖5中顯示示例性CAR之圖,其中融合蛋白序列併入至慢病毒表現載體中且其中「SP」為信號肽,CAR為抗FITC CAR,存在CD8α鉸鏈及CD8α跨膜域,共刺激結構域為4-1BB,且活化信號傳導結構域為CD3ζ。CAR插入物之示例性核酸序列提供為SEQ ID NO: 1及3,且編碼胺基酸序列提供為SEQ ID NO: 2。在另一實施例中,SEQ ID NO: 2可包含人類化或人類胺基酸序列或由其組成。 在一個實施例中,CAR具有識別區且該識別區為抗FITC抗體之單鏈片段可變(scFv)區,具有共刺激結構域且該共刺激結構域為CD137(4-1BB),且具有活化信號傳導結構域且該活化信號傳導結構域為T細胞CD3ζ鏈。熟練技術人員熟知抗FITC scFv及抗螢光素scFv為同等術語。 在一個實施例中,T淋巴細胞(例如細胞毒性T淋巴細胞)可藉由用編碼CAR構築體之表現載體轉染T淋巴細胞群體進行基因工程改造以表現CAR構築體。適於製備表現所選CAR構築體之T淋巴細胞之轉導群體的方法為熟練技術人員所熟知,且描述於Sambrook等人,「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」,第3版,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(2001)(以引用的方式併入本文中)及Green及Sambrook,「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」,第4版,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(2012)(以引用的方式併入本文中)中。 在一個實施例中,提供包含SEQ ID NO: 1或3之核酸之CAR T細胞。在另一實施例中,提供包含SEQ ID NO: 2之多肽之CAR T細胞。在另一例示性態樣中,提供包含SEQ ID NO: 1或3且編碼嵌合抗原受體之核酸(例如分離之核酸)。在另一實施例中,提供包含SEQ ID NO: 2之嵌合抗原受體多肽。在另一實施例中,提供包含SEQ ID NO: 1或3之載體。在另一態樣中,提供包含SEQ ID NO: 1或3之慢病毒載體。在另一實施例中SEQ ID NO: 2可包含人類化或人類胺基酸序列或由其組成。 在此等實施例中之每一者中,涵蓋與SEQ ID NO: 1至3具有至少約80%、至少約90%、至少約95%、至少約97%、至少約98%、至少約99%或至少約99.5%序列一致性之變異核酸序列或胺基酸序列。在另一實施例中,核酸序列可為與SEQ ID NO: 1或2具有至少約80%、至少約90%、至少約95%、至少約97%、至少約98%、至少約99%或至少約99.5%序列一致性之變異核酸序列,只要變異序列編碼SEQ ID NO: 2之多肽即可。在另一實施例中,核酸序列或胺基酸序列可為沿著一段200個核酸或對於SEQ ID NO: 2,沿著一段200個胺基酸,與SEQ ID NO: 1或3具有至少約80%、至少約90%、至少約95%、至少約97%、至少約98%、至少約99%或至少約99.5 %序列一致性之變異核酸或胺基酸序列。在一個實施例中,例如藉由使用GAP程式(Genetics Computer Group軟體;現經由Accelrys在http://www.accelrys.com上獲得)可確定序列之間的百分比一致性或類似性,且可使用例如ClustalW演算法(VNTI軟體,InforMax公司)進行比對。可使用所關注之核酸或胺基酸序列搜索序列資料庫。資料庫搜索演算法通常基於BLAST軟體(Altschul等人,1990)。在一些實施例中,可沿著核酸或胺基酸序列之全長確定一致性百分比。 與由SEQ ID NO: 1及3表示之核酸互補的核酸及與由SEQ ID NO: 1及3表示之核酸雜交的核酸或在高度嚴格條件下與互補序列雜交之核酸亦在本發明之範疇內。根據本發明,「高度嚴格條件」意謂在65℃下在5X SSPE及50%甲醯胺中雜交,且在65℃下在0.5X SSPE中洗滌。用於高度嚴格、低嚴格及中等嚴格雜交之條件描述於Sambrook等人,「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」,第3版,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(2001)(以引用的方式併入本文中)及Green及Sambrook,「Molecular Cloning: A Laboratory Manual」,第4版,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(2012)(以引用的方式併入本文中)。在一些例示性態樣中,雜交沿核酸之全長進行。 在一個實施例中,用於本文所述之方法中的T淋巴細胞(例如用於製備CAR T細胞或未轉形T細胞之細胞毒性T淋巴細胞)可為自體細胞,不過亦可使用異源細胞,諸如當治療之患者已接受高劑量化學療法或輻射治療,使得患者免疫系統遭到破壞時。在一個實施例中,可使用同種異體細胞。 在一個態樣中,T淋巴細胞可藉由此項技術中熟知之方式自患者獲得。舉例而言,T細胞(例如細胞毒性T細胞或未轉形T細胞)可藉由自患者收集外周血液,使血液進行菲科爾密度梯度離心(Ficoll density gradient centrifugation)且接著使用陰性T細胞分離套組(諸如EasySep™ T細胞分離套組)自外周血液分離T細胞群體來獲得。在一個例示性實施例中,T淋巴細胞(例如細胞毒性T細胞或未轉形T細胞)群體無需純且可含有其他細胞,諸如其他類型之T細胞(在例如細胞毒性T細胞之情況下)、單核球、巨噬細胞、自然殺手細胞及B細胞。在一個態樣中,所收集之群體可包含至少約90%之所選細胞類型、至少約91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%或100%之所選細胞類型。 在一個實施例中,在獲得T淋巴細胞(例如用於製備CAR T細胞之細胞毒性T細胞)後,在促進細胞活化之條件下培養細胞。在此實施例中,培養條件可使得細胞可投與患者,而不涉及針對培養基之組分的反應性。舉例而言,培養條件可不包括牛血清產品,諸如牛血清白蛋白。在一個例示性態樣中,活化可藉由將已知活化劑,在細胞毒性T細胞之情況下諸如抗CD3抗體引入培養基中來實現。其他合適活化劑包括抗CD28抗體。在一個態樣中,淋巴細胞群體可在促進活化之條件下培養約1至約4天。在一個實施例中,適當活化水平可藉由利用流動式細胞測量術測定之細胞大小、增殖速率或活化標記物來確定。 在一個例示性實施例中,在促進活化條件下培養T淋巴細胞(例如用於製備CAR T細胞之細胞毒性T淋巴細胞)群體後,細胞可用編碼CAR之表現載體轉染。上文描述用於各種實施例中之合適載體及轉染方法。在一個態樣中,在轉染後,細胞可立刻投與患者或細胞可培養至少約1天、2天、3天、4天、5天、6天、7天、8天、9天、10天、11天、12天、13天、14天、15天、16天、17天、18天或更多天,或約5天至約12天、約6天至約13天、約7天至約14天或約8天至約15天,例如以允許細胞自轉染回收之時間。在一個態樣中,合適培養條件可類似於在有或無用於促進活化之試劑下培養細胞以活化的條件。 因此,如上所述,在一個例示性態樣中,本文所述之治療方法可進一步包含1)獲得自體或異源T淋巴細胞(例如用於製備CAR T細胞之細胞毒性T淋巴細胞)之群體,2)在促進細胞活化之條件下培養T淋巴細胞,及3)用編碼CAR之表現載體轉染淋巴細胞以形成CAR T細胞。 在一個例示性實施例中,當細胞已轉染及活化時,可製備包含CAR T細胞之組合物且在有或無未轉形T細胞下投與患者。在一個實施例中,缺乏任何動物產品,諸如牛血清之培養基可用於培養CAR T細胞及/或未轉形T細胞。在另一實施例中,可使用熟練技術人員通常用於避免細菌、真菌及支原體污染之組織培養條件。在一例示性實施例中,在投與患者前,將細胞(例如CAR T細胞及/或未轉形T細胞)粒化、洗滌及再懸浮於醫藥學上可接受之載劑或稀釋劑中。包含表現CAR之T淋巴細胞(例如細胞毒性T淋巴細胞)或未轉形T細胞的示例性組合物包括包含細胞於無菌290 mOsm生理鹽水中、於不溶低溫培養基(含有Plasma-Lyte A、右旋糖、氯化鈉注射、人類血清白蛋白及DMSO)中、於具有2%人類血清白蛋白之0.9%NaCl中或於任何其他無菌290 mOsm不溶物質中的組合物。可替代地,在另一實施例中,視培養基之屬性而定,CAR T細胞或未轉形T細胞可呈於培養基中之組合物投與,或在投與之前濃縮及再懸浮於培養基中。在各種實施例中,有或無未轉形T細胞之CAR T細胞組合物可經由任何合適之方式,諸如非經腸投與,例如皮內、皮下、肌肉內、腹膜內、靜脈內或鞘內投與患者。 在一個態樣中,投與患者之組合物中CAR T細胞之總數目及細胞濃度將視大量因素而變化,該等因素包括所使用之T淋巴細胞(例如細胞毒性T淋巴細胞)的類型、CAR之結合特異性、靶向部分及小分子配位體之屬性、癌症之屬性、患者中癌症之位置、用於將組合物投與患者之方式及所治療之患者之健康、年齡及體重。在各種實施例中,包含轉導CAR T細胞之合適組合物包括具有約0.1 ml至約200 ml與約0.1 ml至約125 ml之體積的組合物。 在各種實施例中,投與患者之轉導CAR T細胞可包含約1×10
5
至約1×10
15
或1×10
6
至約1×10
15
轉導CAR T細胞。在各種實施例中,約1×10
5
至約1×10
10
、約1×10
6
至約1×10
10
、約1×10
6
至約1×10
9
、約1×10
6
至約1×10
8
、約1×10
6
至約2×10
7
、約1×10
6
至約3×10
7
、約1×10
6
至約1.5×10
7
、約1×10
6
至約1×10
7
、約1×10
6
至約9×10
6
、約1×10
6
至約8×10
6
、約1×10
6
至約7×10
6
、約1×10
6
至約6×10
6
、約1×10
6
至約5×10
6
、約1×10
6
至約4×10
6
、約1×10
6
至約3×10
6
、約1×10
6
至約2×10
6
、約2×10
6
至約6×10
6
、約2×10
6
至約5×10
6
、約3×10
6
至約6×10
6
、約4×10
6
至約6×10
6
、約4×10
6
至約1×10
7
、約1×10
6
至約1×10
7
、約1×10
6
至約1.5×10
7
、約1×10
6
至約2×10
7
、約0.2×10
6
至約1×10
7
、約0.2×10
6
至約1.5×10
7
、約0.2×10
6
至約2×10
7
或約5×10
6
CAR T細胞可投與患者。在一個態樣中,在本文所述之任何實施例中,單次劑量或多個劑量之CAR T細胞可投與患者。在此段落中描述之任一實施例中,CAR T細胞劑量可為每公斤患者體重之CAR T細胞數目。在本文所述之任何實施例中,可在化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前投與CAR T細胞。如所瞭解,除非另有說明,否則針對本文所述之任何方法之步驟的名稱i)、ii)及iii)等不指示次序。 在本文所述之各種實施例中,未轉形T細胞亦可與CAR T細胞一起投與且可以本文針對CAR T細胞及未轉形T細胞所述之量投與。在一個態樣中,CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物可在單次或多次投與,或可投與數劑純CAR T細胞及CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物的組合(例如一定劑量之CAR T細胞,接著為一或多劑之CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物)。如熟練技術人員自本文中之揭示內容所清楚,如本文所述的CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物意謂CAR T細胞與尚未暴露於用於表現嵌合抗原受體之構築體的未轉形T細胞混合。 在其他實施例中,CAR T細胞組合物中投與患者之CAR T細胞之劑量係選自由以下組成之群:約100萬、約200萬、約300萬、約400萬、約500萬、約600萬、約700萬、約800萬、約900萬、約1000萬、約1100萬、約1200萬、約1250萬、約1300萬、約1400萬及約1500萬之該等CAR T細胞。在此等實施例中,CAR T細胞劑量可以每公斤患者體重之CAR T細胞數目計。 在其他例示性實施例中,藉由注射將CAR T細胞組合物投與患者血流中,且至注射CAR T細胞組合物後約四週,患者血流中之CAR T細胞為患者血流中患者總T細胞之至少5%、至少7%、至少10%、至少11%、至少12%、至少13%、至少14%或至少15%,至注射CAR T細胞組合物後約3週,為至少20%、25%、30%、35%、40%或50%,至注射CAR T細胞組合物後約2週,為至少60%、65%、70%、75%或80%,或至注射CAR T細胞組合物後約1週,為至少85%、90%或95%。 在本文所描述之實施例中,CAR T細胞組合物可包含不具有任何其他細胞類型之CAR T細胞,或未轉形T細胞可與CAR T細胞組合投與患者。對於投與多個劑量之CAR T細胞組合物之實施例,任何劑量可包含CAR T細胞或CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物。在各種實施例中,未轉形T細胞可以本文針對CAR T細胞所述之量投與。 在另一實施例中,任何劑量之CAR T細胞組合物可包含CAR T細胞與未轉形T細胞呈選自以下之比率的混合物:約1:5 CAR T細胞與未轉形T細胞、約1:4 CAR T細胞與未轉形T細胞、約1:3 CAR T細胞與未轉形T細胞、約1:2 CAR T細胞與未轉形T細胞及約1:1 CAR T細胞與未轉形T細胞。 在其他實施例中,任何劑量之CAR T細胞組合物可包含呈約1:1至約1:5之CAR T細胞與未轉形T細胞之比率的CAR T細胞與未轉形T細胞之混合物,或CAR T細胞組合物可包含約1000萬CAR T細胞與約4000萬未轉形T細胞、約1500萬CAR T細胞與約3500萬未轉形T細胞、約2000萬CAR T細胞與約3000萬未轉形T細胞或約2500萬CAR T細胞與約2500萬未轉形T細胞之混合物。 化合物或其醫藥學上可接受之鹽或本文所述之CAR T細胞組合物可使用此項技術中已知之任何合適方法投與患者。如本文所述,術語「投與(administering)」或「投與(administered)」包括將化合物或其醫藥學上可接受之鹽或CAR T細胞組合物引入患者中之所有方式,包括(但不限於)經口、靜脈內、肌肉內、皮下、經皮及其類似方式。在一個態樣中,本文所述之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可呈含有習知無毒性醫藥學上可接受之載劑、佐劑及媒劑之單位劑型及/或調配物投與。 在一個態樣中,如本文所述之化合物或其醫藥學上可接受之鹽或CAR T細胞組合物可直接投與血流、肌肉或內部器官中。在各種實施例中,適用於此類非經腸投與之途徑包括靜脈內、動脈內、腹膜內、鞘內、硬膜外、腦室內、尿道內、胸骨內、顱內、瘤內、肌肉內及皮下遞送。在一個實施例中,用於非經腸投與之裝置包括針(包括微針)注射器、無針注射器及輸注技術。 在一個例示性態樣中,非經腸調配物通常為可含有諸如鹽、碳水化合物及緩衝劑(較佳在3至9之pH值下)之載劑或賦形劑之水溶液,但其可能更適合調配為無菌非水性溶液,或調配為乾燥形式以結合諸如無菌、無熱原質水或無菌生理鹽水之合適媒劑使用。在其他實施例中,本文所述之任一液體調配物可調適成用於如本文所述之非經腸投與。可易於使用熟習此項技術者熟知之標準製藥技術在無菌條件下製備,藉由凍乾來產生用於非經腸調配物之無菌凍乾粉末。在一個實施例中,用於製備非經腸調配物之化合物或其醫藥學上可接受之鹽的溶解性可藉由使用適當調配技術,諸如併入溶解性增強劑來增加。 待投與患者之化合物或其醫藥學上可接受之鹽的量可視所治療之癌症、化合物或其醫藥學上可接受之鹽之投與途徑及組織分佈而顯著變化。待投與患者之量可基於體表面積、質量及醫師評估。在各種實施例中,待投與之量可例如在約0.05 mg至約30 mg、0.05 mg至約25.0 mg、約0.05 mg至約20.0 mg、約0.05 mg至約15.0 mg、約0.05 mg至約10.0 mg、約0.05 mg至約9.0 mg、約0.05 mg至約8.0 mg、約0.05 mg至約7.0 mg、約0.05 mg至約6.0 mg、約0.05 mg至約5.0 mg、約0.05 mg至約4.0 mg、約0.05 mg至約3.0 mg、約0.05 mg至約2.0 mg、約0.05 mg至約1.0 mg、約0.05 mg至約0.5 mg、約0.05 mg至約0.4 mg、約0.05 mg至約0.3 mg、約0.05 mg至約0.2 mg、約0.05 mg至約0.1 mg、約.01 mg至約2 mg、約0.3 mg至約10 mg、約0.1 mg至約20 mg或約0.8至約3 mg範圍內。熟習此項技術者將容易瞭解劑量可在以上提供之多種範圍內,基於上述因素變化,且可取決於醫師之判斷。 在其他實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量可在例如每公斤患者體重約50奈莫耳至約3000奈莫耳、約50奈莫耳至約2000奈莫耳、約50奈莫耳至約1000奈莫耳、約50奈莫耳至約900奈莫耳、約50奈莫耳至約800奈莫耳、約50奈莫耳至約700奈莫耳、約50奈莫耳至約600奈莫耳、約50奈莫耳至約500奈莫耳、約50奈莫耳至約400奈莫耳、約50奈莫耳至約300奈莫耳、約50奈莫耳至約200奈莫耳、約50奈莫耳至約100奈莫耳、約100奈莫耳至約300奈莫耳、約100奈莫耳至約500奈莫耳、約100奈莫耳至約1000奈莫耳、約100奈莫耳至約2000奈莫耳範圍內。在其他實施例中,劑量可為每公斤患者體重約1奈莫耳、約5奈莫耳、約10奈莫耳、約20 nmoles kg、約25奈莫耳、約30奈莫耳、約40奈莫耳、約50奈莫耳、約60奈莫耳、約70奈莫耳、約80奈莫耳、約90奈莫耳、約100奈莫耳、約150奈莫耳、約200奈莫耳、約250奈莫耳、約300奈莫耳、約350奈莫耳、約400奈莫耳、約450奈莫耳、約500奈莫耳、約600奈莫耳、約700奈莫耳、約800奈莫耳、約900奈莫耳、約1000奈莫耳、約2000奈莫耳、約2500奈莫耳或約3000奈莫耳。在其他實施例中,劑量可為每公斤患者體重約0.1奈莫耳、約0.2奈莫耳、約0.3奈莫耳、約0.4或約0.5奈莫耳、約0.1奈莫耳至約1000奈莫耳、約0.1奈莫耳至約900奈莫耳、約0.1奈莫耳至約850奈莫耳、約0.1奈莫耳至約800奈莫耳、約0.1奈莫耳至約700奈莫耳、約0.1奈莫耳至約600奈莫耳、約0.1奈莫耳至約500奈莫耳、約0.1奈莫耳至約400奈莫耳、約0.1奈莫耳至約300奈莫耳、約0.1奈莫耳至約200奈莫耳、約0.1奈莫耳至約100奈莫耳、約0.1奈莫耳至約50奈莫耳、約0.1奈莫耳至約10奈莫耳或約0.1奈莫耳至約1奈莫耳。在其他實施例中,劑量可為每公斤患者體重約0.3奈莫耳至約1000奈莫耳、約0.3奈莫耳至約900奈莫耳、約0.3奈莫耳至約850奈莫耳、約0.3奈莫耳至約800奈莫耳、約0.3奈莫耳至約700奈莫耳、約0.3奈莫耳至約600奈莫耳、約0.3奈莫耳至約500奈莫耳、約0.3奈莫耳至約400奈莫耳、約0.3奈莫耳至約300奈莫耳、約0.3奈莫耳至約200奈莫耳、約0.3奈莫耳至約100奈莫耳、約0.3奈莫耳至約50奈莫耳、約0.3奈莫耳至約10奈莫耳或約0.3奈莫耳至約1奈莫耳。在此等實施例中,「kg」為患者體重之千克數。在一個態樣中,單次劑量或多個劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可投與患者。 在各種其他實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量可在例如每公斤患者體重約10奈莫耳至約10000奈莫耳、約10奈莫耳至約5000奈莫耳、約10奈莫耳至約3000奈莫耳、約10奈莫耳至約2500奈莫耳、約10奈莫耳至約2000奈莫耳、約10奈莫耳至約1000奈莫耳、約10奈莫耳至約900奈莫耳、約10奈莫耳至約800奈莫耳、約10奈莫耳至約700奈莫耳、約10奈莫耳至約600奈莫耳、約10奈莫耳至約500奈莫耳、約10奈莫耳至約400奈莫耳、約10奈莫耳至約300奈莫耳、約10奈莫耳至約200奈莫耳、約10奈莫耳至約150奈莫耳、約10奈莫耳至約100奈莫耳、約10奈莫耳至約90奈莫耳、約10奈莫耳至約80奈莫耳、約10奈莫耳至約70奈莫耳、約10奈莫耳至約60奈莫耳、約10奈莫耳至約50奈莫耳、約10奈莫耳至約40奈莫耳、約10奈莫耳至約30奈莫耳、約10奈莫耳至約20奈莫耳、約200奈莫耳至約900奈莫耳、約200奈莫耳至約800奈莫耳、約200奈莫耳至約700奈莫耳、約200奈莫耳至約600奈莫耳、約200奈莫耳至約500奈莫耳、約250奈莫耳至約600奈莫耳、約300奈莫耳至約600奈莫耳、約300奈莫耳至約500奈莫耳或約400奈莫耳至約600奈莫耳範圍內。在各種其他實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量可在例如每公斤患者體重約1奈莫耳至約10000奈莫耳、約1奈莫耳至約5000奈莫耳、約1奈莫耳至約3000奈莫耳、約1奈莫耳至約2500奈莫耳、約1奈莫耳至約2000奈莫耳、約1奈莫耳至約1000奈莫耳、約1奈莫耳至約900奈莫耳、約1奈莫耳至約800奈莫耳、約1奈莫耳至約700奈莫耳、約1奈莫耳至約600奈莫耳、約1奈莫耳至約500奈莫耳、約1奈莫耳至約400奈莫耳、約1奈莫耳至約300奈莫耳、約1奈莫耳至約200奈莫耳、約1奈莫耳至約150奈莫耳、約1奈莫耳至約100奈莫耳、約1奈莫耳至約90奈莫耳、約1奈莫耳至約80奈莫耳、約1奈莫耳至約70奈莫耳、約1奈莫耳至約60奈莫耳、約1奈莫耳至約50奈莫耳、約1奈莫耳至約40奈莫耳、約1奈莫耳至約30奈莫耳或約1奈莫耳至約20奈莫耳範圍內。在此等實施例中,「kg」為患者體重之千克數。在一個態樣中,單次劑量或多個劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可投與患者。 在另一實施例中,患者每公斤體重約20 μg至患者每公斤體重約3 mg/kg之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可投與患者。在另一態樣中,量可為患者每公斤體重約0.2 mg至患者每公斤體重約0.4 mg,或可為患者每公斤體重約50 μg。在一個態樣中,單次劑量或多個劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可投與患者。 在一個實施例中,連接於靶向部分之小分子配位體可在CAR T細胞組合物之前投與患者。在另一實施例中,連接於靶向部分之小分子配位體可與CAR T細胞組合物同時但在不同調配物中或在相同調配物中投與患者。在另一實施例中,連接於靶向部分之小分子配位體可在CAR T細胞組合物後投與患者。 在一個例示性態樣中,投與CAR T細胞與連接於靶向部分之小分子之間的時間安排可廣泛地視包括以下之因素而變化:所用CAR T細胞之類型、CAR之結合特異性、靶向部分及小分子配位體之屬性、癌症之屬性、癌症在患者中之位置、用於向患者投與CAR T細胞及連接於靶向部分之小分子配位體的方式及患者之健康、年齡及體重。在一個態樣中,連接於靶向部分之小分子配位體可在CAR T細胞之前或之後諸如約3小時、6小時、9小時、12小時、15小時、18小時、21小時、24小時、27小時、30小時、33小時、36小時、39小時、42小時、45小時、48小時或51小時內或約0.5天、1天、1.5天、2天、2.5天、3天、4 5天、6天、7天、8天、9天、10天或更多天內投與。 在一個實施例中,此項技術中已知之任何適用給藥時程可用於投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽或用於CAR T細胞組合物。舉例而言,可使用每天一次給藥(亦稱為qd)、每天兩次給藥(亦稱為bid)、每天三次給藥(亦稱為tid)、每週兩次給藥(亦稱為BIW)、每週三次給藥(亦稱為TIW)、每週一次給藥及其類似時程。在一個態樣中,為化合物或其醫藥學上可接受之鹽及CAR T細胞組合物選擇之給藥時程可考慮化合物或其醫藥學上可接受之鹽之濃度,及投與之CAR T細胞之數目,以調控CAR T細胞組合物之細胞毒性及控制CRS。 在一個實施例中,為預防或抑制患者中之細胞介素釋放症候群(CRS),提供一種治療癌症之方法,且該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR,及iii)向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制CAR T細胞活化之藥物,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 在此方法實施例中,向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制CAR T細胞活化之藥物的步驟可用於預防或抑制患者中之CRS,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在此實施例中,葉酸、包含葉酸之結合物或抑制CAR T細胞活化之藥物在本文中可稱作「救援劑」,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在一個實施例中,可投與諸如葉酸之葉酸以預防或抑制患者中之CRS。在此實施例中,葉酸抑制橋樑(亦即藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體)與腫瘤上橋樑之受體的相互作用,從而抑制腫瘤溶解及防止或抑制患者中之CRS。 在一個實施例中,作為橋樑結合於腫瘤之抑制劑投與的葉酸可例如葉酸、葉酸類似物或另一葉酸受體結合分子。在各種實施例中,可使用之葉酸之類似物包括亞葉酸、喋醯聚麩胺酸及葉酸受體結合喋啶,諸如四氫喋呤、二氫葉酸、四氫葉酸及其脫氮及二脫氮類似物。術語「脫氮」及「二脫氮」類似物係指有碳原子取代天然存在之葉酸結構中之一或兩個氮原子的此項技術所知之類似物。舉例而言,脫氮類似物包括1-脫氮、3-脫氮、5-脫氮、8-脫氮及10-脫氮類似物。二脫氮類似物包括例如1,5-二脫氮、5,10-二脫氮、8,10-二脫氮及5,8-二脫氮類似物。上述葉酸類似物一般稱為「葉酸」,此反映其結合於葉酸受體之能力。其他葉酸受體結合類似物包括胺基喋呤、胺甲喋呤(甲胺喋呤)、N10-甲基葉酸、2-脫胺基-羥基葉酸、脫氮類似物(諸如1-脫氮胺甲喋呤或3-脫氮胺甲喋呤)及3',5'-二氯-4-胺基-4-去氧-N10-甲基喋醯麩胺酸(二氯甲胺喋呤)。 在另一實施例中,作為橋樑結合於腫瘤之抑制劑投與的葉酸具有式
其中X
1
及Y
1
各自獨立地選自由以下組成之群:鹵基、R
2
、OR
2
、SR
3
及NR
4
R
5
; U、V及W表示各自獨立地選自由以下組成之群的二價部分:-(R
6a
)C=、-N=、-(R
6a
)C(R
7a
)-及-N(R
4a
)-;Q係選自由以下組成之群:C及CH;T係選自由以下組成之群:S、O、N及-C=C-; X
2
及X
3
各自獨立地選自由以下組成之群:氧、硫、-C(Z)-、-C(Z)O-、-OC(Z)-、-N(R
4b
)-、-C(Z)N(R
4b
)-、-N(R
4b
)C(Z)-、-OC(Z)N(R
4b
)-、-N(R
4b
)C(Z)O-、-N(R
4b
)C(Z)N(R
5b
)-、-S(O)-、-S(O)
2
-、-N(R
4a
)S(O)
2
-、-C(R
6b
)(R
7b
)-、-N(C≡CH)-、-N(CH
2
C≡CH)-、C
1
-C
12
伸烷基及C
1
-C
12
伸烷氧基,其中Z為氧或硫; R
1
係選自由氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基組成之群; R
2
、R
3
、R
4
、R
4a
、R
4b
、R
5
、R
5b
、R
6b
及R
7b
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基、C
1
-C
12
烷氧基、C
1
-C
12
烷醯基、C
1
-C
12
烯基、C
1
-C
12
炔基、(C
1
-C
12
烷氧基)羰基及(C
1
-C
12
烷胺基)羰基; R
6
及R
7
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基;或R
6
及R
7
一起形成羰基; R
6a
及R
7a
各自獨立地選自由以下組成之群:氫、鹵基、C
1
-C
12
烷基及C
1
-C
12
烷氧基;或R
6a
及R
7a
一起形成羰基; p、r、s及t各自獨立地為0或1;且 若任何其他化學部分為該葉酸之一部分,則*表示與該結合物之其餘部分鍵結的視情況存在之共價鍵。 在另一實施例中,可投與包含葉酸之結合物以預防或抑制患者中之細胞介素釋放症候群(CRS)。CRS為此項技術中熟知之術語,且此症候群可對患者引起有害作用,包括(但不限於)體重減輕、高熱、肺水腫及危險之血壓下降。 在此實施例中,包含葉酸之結合物不包含靶向部分,因此,結合物抑制橋樑與腫瘤之相互作用以預防腫瘤溶解及減少患者中之CRS。在此實施例中,包含葉酸之結合物中之葉酸部分可包含連接於不包含靶向部分之化學部分的前述段落中所述之任一葉酸。在一個態樣中,包含葉酸之結合物可包含連接於一或多個不包含靶向部分之胺基酸之葉酸。例示性地,包含葉酸之結合物可具有式
。 此化合物亦可稱作「EC923」。在此等實施例中,可向患者投與葉酸或包含葉酸之結合物,相對於橋樑(亦即藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體)莫耳過量,諸如葉酸或包含葉酸之結合物相對於藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體過量10倍、過量100倍、過量200倍、過量300倍、過量400倍、過量500倍、過量600倍、過量700倍、過量800倍過量900倍、過量1000倍或過量10,000倍。抑制橋樑與腫瘤之相互作用所需要的相對於藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體之量的葉酸或包含葉酸之結合物之量可藉由熟練技術人員確定。 在另一實施例中,可向患者投與抑制CAR T細胞活化之藥劑,以抑制CAR T細胞活化及抑制或預防患者中之CRS。在一個態樣中,藥劑可選自由以下組成之群:淋巴細胞特異性蛋白酪胺酸激酶抑制劑(例如達沙替尼(Dasatinib)、PI3激酶抑制劑(例如GDC0980)、托西路單抗(Tociluzumab)、IL-2誘導性T細胞激酶之抑制劑(例如BMS-509744)、JAK抑制劑、BTK抑制劑、SIP促效劑(例如西普尼莫德(Siponimod)及奧紮尼莫(Ozanimod))及阻斷CAR T細胞結合於橋樑但不結合癌症之藥劑(例如螢光素胺、FITC或螢光素鈉)。熟練技術人員應瞭解在生理條件下或例如在緩衝液中在生理pH下FITC (亦即螢光素)可呈鹽(例如螢光素鈉)形式或呈其非鹽形式。因此,在一個實施例中,當螢光素投與患者時,其可處於其鹽形式(例如螢光素鈉)與其非鹽形式之間的平衡中。在另一實施例中,抑制CAR T細胞活化之救援劑可為下式化合物:
。 在各種實施例中,救援劑可以約0.001 nM至約100 mM、約0.01 nM至約100 mM、約1 nM至約100 mM、約10 nM至約100 mM、約50 nM至約100 mM或約100 nM至約100 mM之濃度呈包括(例如) 0.1 ml、0.2 ml、0.3 ml、0.4 ml、0.5 ml、0.6 ml、0.7 ml、0.8 ml、0.9 ml、1 ml、2 ml、3 ml、4 ml、5 ml、10 ml、100 ml或1000 ml之任何適當體積投與。在其他實施例中,救援劑可以患者每公斤體重約0.01至約300微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約100微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約90微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約80微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約70微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約60微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約50微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約40微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約30微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約20微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約10微莫耳、患者每公斤體重約0.06至約8微莫耳或患者每公斤體重約0.06至約6微莫耳之劑量投與。 在此等實施例中,可向患者投與救援劑,相對於化合物或其醫藥學上可接受之鹽(亦即藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體)莫耳過量,諸如救援劑相對於藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體約10倍過量、約20倍過量、約30倍過量、約40倍過量、約50倍過量、約60倍過量、約70倍過量、約80倍過量、約90倍過量、約100倍過量、約200倍過量、約300倍過量、約400倍過量、約500倍過量、約600倍過量、約700倍過量、約800倍過量、約900倍過量、約1000倍過量或約10,000倍過量。抑制化合物或其醫藥學上可接受之鹽與腫瘤之相互作用所需要的相對於藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體之量的救援劑之量可藉由熟練技術人員確定。 在另一實施例中,可向患者投與超過一劑葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。 在本文所述之『救援劑』實施例中,葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑可在化合物或其醫藥學上可接受之鹽之前及/或之後投與患者,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在另一態樣中,可在投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑之前及之後投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在此實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之隨後投與可引起患者中CAR T細胞活化及細胞介素水準增加。 在另一實施例中,投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑可引起患者中細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在另一實施例中,細胞介素水準降低可至向患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑後約1小時、約2小時、約3小時、約4小時、約5小時、約6小時、約7小時或約8小時發生,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在另一實施例中,細胞介素水準降低為降低至約未經治療之患者中之細胞介素水準。在另一例示性實施例中,在投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑後,患者血液中CAR T細胞數目可增加,即使患者中細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在另一例示性態樣中,相對於未用救援劑治療之患者,在投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑後CAR T細胞活化可增強或維持,即使治療患者中細胞介素水準降低,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在再一實施例中,癌症包含腫瘤且當向患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑時患者中之腫瘤尺寸未增加,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在此實施例中,可獲得腫瘤之完全反應。 在其他實施例中,當CRS級別達到1、2、3或4時或當CRS級別達到3或4時向患者投與抑制CAR T細胞活化之藥劑。在另一態樣中,當投與救援劑時減少患者中之肺水腫。 在本文所述之一個實施例中,提供一種治療癌症之方法,且該方法包含i)向患者連續投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對該靶向部分之CAR,及iii)向該患者連續投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽以抑制或預防患者中之細胞介素釋放症候群。 根據此實施例,術語「連續」可意謂向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽例如至少一小時、至少四小時、至少六小時、至少八小時、至少十小時、至少十二小時或至少二十四小時,或可意謂每天或每週投與之方案,諸如一天一次、一天兩次、一天三次、每天、每隔一天、每週一次、每週兩次、每週三次或熟習此項技術者視為連續投與之任何其他合適方案。在另一態樣中,術語「連續」可意謂此段落中描述之實施例之任何組合。 在此方法實施例中,「終止連續投與」化合物或其醫藥學上可接受之鹽以抑制或預防患者中之細胞介素釋放症候群的步驟可意謂例如在投與連續時間段,諸如數小時或天後中斷投與,或中斷治療方案,諸如上述每天或每週方案。在另一實施例中,「終止連續投與」之步驟可意謂例如投與,直至患者出現不可接受之體重減輕,或直至出現任何其他不可接受之副作用,諸如高熱、血壓下降或肺水腫。在此實施例中,「終止連續投與」化合物或其醫藥學上可接受之鹽的步驟不意謂用化合物或其醫藥學上可接受之鹽單次治療,後續不用化合物或其醫藥學上可接受之鹽治療。在此方法實施例中,「抑制或預防」細胞介素釋放症候群(CRS)意謂消除CRS或減少或改善CRS症狀。 在涉及「終止連續投與」化合物或其醫藥學上可接受之鹽之實施例的一個實施例中,該方法可進一步包含步驟iv)向患者再投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽。在一個實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽可例如每週投與一次且可省去一個劑量。在另一實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽可隔日(亦即每隔一天)投與且可省去一或多個(例如兩個、三個、四個等)劑量。在另一實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽可每週投與兩次且可省去一或多個(例如兩個、三個、四個等)劑量。在另一實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽可在星期一、星期二及下個星期一投與,且接著可終止給藥兩週且重複循環。在另一實施例中,可使用上述任一方案實施例,且可省去一或多個(例如兩個、三個、四個等)劑量。在另一實施例中,可使用此等實施例之組合。在此等實施例中,省去之劑量可預防或減少患者中之CRS。 在又一例示性態樣中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,其中至少向患者投與第一劑量及第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中第一劑量與第二劑量不同,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量高約2倍至約15000倍,及ii)向該患者投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。 在此實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量可逐漸遞增以抑制或預防患者中之細胞介素釋放症候群。舉例而言,可向患者投與至少第一劑量及第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中第一劑量與第二劑量不同,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約20倍至約15000倍、約2倍至約15000倍。在其他實施例中,第二劑量或後續劑量可在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約2倍至約5倍、約2倍至約10倍、約2倍至約20倍、約2倍至約30倍、約2倍至約40倍、約2倍至約50倍、約2倍至約60倍、約2倍至約70倍、約2倍至約80倍、約2倍至約90倍、約2倍至約100倍、約2倍至約15000倍、約2倍至約10000倍、約5倍至約9000倍、約5倍至約8000倍、約5倍至約7000倍、約5倍至約6000倍、約5倍至約5000倍、約5倍至約4000倍、約5倍至約3000倍、約5倍至約4000倍、約5倍至約3000倍、約5倍至約2000倍、約5倍至約1000倍、約5倍至約750倍、約2倍至約750倍、約5倍至約500倍、約5倍至約100倍、約800倍至約15000倍、約800倍至約10000倍、約800倍至約9000倍、約800倍至約8000倍、約800倍至約7000倍、約800倍至約6000倍、約800倍至約5000倍、約800倍至約4000倍、約800倍至約3000倍、約800倍至約2000倍、約800倍至約1000倍、約8000倍至約15000倍、約8000倍至約10000倍、約8000倍至約9000倍、約15000倍、約10000倍、約9000倍、約8000倍、約7000倍、約6000倍、約5000倍、約4000倍、約3000倍、約2000倍、約1000倍、約500倍、約400倍、約300倍、約200倍、約100倍、約90倍、約80倍、約70倍、約60倍、約50倍、約40倍、約30倍、約20倍、約10倍、約5倍或約2倍。 在劑量遞增方法之另一例示性實施例中,可向患者投與至少第一劑量、第二劑量及第三劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中第一劑量、第二劑量及第三劑量不同,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約2倍至約750倍,且其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第三劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約800倍至約10000倍。 在劑量遞增方法之另一態樣中,可向患者投與至少第一劑量、第二劑量、第三劑量及第四劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中第一劑量、第二劑量、第三劑量及第四劑量不同,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約2倍至約750倍,且其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第三劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約800倍至約7500倍,且其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第四劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約8000倍至約15000倍。 在再一實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上可比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約100倍,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第三劑量在量上可比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約1000倍,且化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第四劑量在量上可比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量大約10000倍。在一例示性實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量為0.05奈莫耳/公斤,第二劑量為5奈莫耳/公斤,第三劑量為50奈莫耳/公斤,且第四劑量為500奈莫耳/公斤。在本文所述之劑量遞增實施例中,第一、第二、第三、第四及任何後續劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽可投與多次(例如在投與後續遞增劑量之前可投與0.05奈莫耳/公斤之第一劑量若干次)。 在本文所述之另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,ii)向該患者投與至少第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約50%,及iii)向該患者投與一定劑量之包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物,其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。 在此劑量遞減實施例之各種實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量在量上可比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約60%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約70%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約80%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約90%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約95%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約96%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約97%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約98%,在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約99%,或在量上比化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量低至少約99.5%。 在本文所述之劑量遞減實施例之各種實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量可為患者每公斤體重約100奈莫耳至約1000奈莫耳、患者每公斤體重約100奈莫耳至約900奈莫耳、患者每公斤體重約100奈莫耳至約800奈莫耳、患者每公斤體重約100奈莫耳至約700奈莫耳、患者每公斤體重約100奈莫耳至約600奈莫耳、患者每公斤體重約200奈莫耳至約600奈莫耳、患者每公斤體重約400奈莫耳至約600奈莫耳或患者每公斤體重約500奈莫耳。 在本文所述之劑量遞減實施例之各種實施例中,化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量可為患者每公斤體重約0.5奈莫耳至約500奈莫耳、患者每公斤體重約0.5奈莫耳至約450奈莫耳、患者每公斤體重約0.5奈莫耳至約400奈莫耳、患者每公斤體重約0.5奈莫耳至約350奈莫耳、患者每公斤體重約0.5奈莫耳至約300奈莫耳、患者每公斤體重約1奈莫耳至約300奈莫耳、患者每公斤體重約2奈莫耳至約300奈莫耳、患者每公斤體重約2奈莫耳至約250奈莫耳、患者每公斤體重約5奈莫耳至約40奈莫耳或患者每公斤體重約40奈莫耳至約150奈莫耳。 在本文所述之劑量遞減實施例之額外實施例中,該方法可進一步包含投與第三劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第三劑量與化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量相同。在另一實施例中,該方法可進一步包含投與第四劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第四劑量與化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第二劑量及化合物或其醫藥學上可接受之鹽之第三劑量相同。在另一實施例中,相對於化合物或其醫藥學上可接受之鹽的第一劑量,在第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽後投與的化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量可維持癌症生長之抑制。 在本文所述之劑量遞減實施例之其他實施例中,CAR T細胞可以約100萬CAR T細胞至約4000萬CAR T細胞之劑量投與。在其他實施例中,在第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽後投與的化合物或其醫藥學上可接受之鹽之劑量可每週投與一次或兩次。 在本文所述之劑量遞減實施例之其他實施例中,該方法可進一步包含向該患者投與葉酸、包含葉酸之結合物或抑制該等CAR T細胞活化之藥劑的步驟,其中該包含葉酸之結合物不包含靶向部分。在另一實施例中,向患者投與抑制CAR T細胞活化之藥劑且藥劑為阻斷CAR T細胞結合於化合物或其醫藥學上可接受之鹽但不結合於癌症之藥劑,且藥劑為螢光素胺、螢光素鈉或螢光素。在另一實施例中,藥劑為螢光素鈉。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體且其中在投與包含CAR T細胞之CAR T細胞組合物前至少約一小時向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,ii)接著向該患者投與一定劑量之CAR T細胞組合物,及iii)接著向該患者投與第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽。在此預治療實施例之各種實施例中,可在投與CAR T細胞組合物前至少約兩小時、投與CAR T細胞組合物前至少約四小時、投與CAR T細胞組合物前至少約八小時、投與CAR T細胞組合物前至少約十二小時、投與CAR T細胞組合物前至少約十六小時、投與CAR T細胞組合物前至少約二十小時或投與CAR T細胞組合物前至少約二十四小時,向患者投與第一劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽。 在此預治療實施例之各種實施例中,可至投與CAR T細胞組合物後至少約二十四小時、投與CAR T細胞組合物後至少約二十小時、投與CAR T細胞組合物後至少約十八小時、投與CAR T細胞組合物後至少約十六小時、投與CAR T細胞組合物後至少約十四小時、投與CAR T細胞組合物後至少約十二小時、投與CAR T細胞組合物後至少約十小時、投與CAR T細胞後至少約八小時、投與CAR T細胞組合物後至少約六小時、投與CAR T細胞組合物後至少約四小時或投與CAR T細胞組合物後至少約兩小時,向患者投與第二劑量之化合物或其醫藥學上可接受之鹽。 在此預治療實施例之多種額外實施例中,在投與CAR T細胞組合物前,未出現在患者中引起脫靶毒性之細胞介素釋放,但出現針對癌症之CAR T細胞毒性,或患者中未出現脫靶組織毒性但出現針對癌症之CAR T細胞毒性,或癌症包含腫瘤,且患者中腫瘤尺寸減小,但未出現脫靶毒性,或患者中之腫瘤尺寸減小比未用化合物或其醫藥學上可接受之鹽預治療之患者中大。如熟練技術人員所瞭解,「標靶」可為癌症(例如腫瘤)。 在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,及ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,且其中該小分子配位體為PSMA配位體且該靶向部分為FITC。在此實施例中,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體可具有式
在另一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該化合物包含藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體,及ii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR,且其中小分子配位體為CAIX配位體且靶向部分為FITC。在此實施例中,藉由連接子連接於靶向部分之小分子配位體可具有式
。 在再一實施例中,提供一種治療癌症之方法。該方法包含i)向患者投與第一化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第一化合物或其醫藥學上可接受之鹽包含藉由連接子連接於FITC之PSMA配位體,ii)向該患者投與第二化合物或其醫藥學上可接受之鹽,其中該第二化合物或其醫藥學上可接受之鹽包含藉由連接子連接於FITC之CAIX配位體,及iii)向該患者投與CAR T細胞組合物,其中該CAR T細胞組合物包含CAR T細胞且其中該等CAR T細胞包含針對靶向部分之CAR。在此實施例中,第一化合物可具有式
且第二化合物可具有式
。 在本文所述之方法之一個實施例中,在向患者投與化合物或其醫藥學上可接受之鹽前或在向患者投與CAR T細胞組合物前使癌症成像。在一個例示性實施例中,成像藉由PET成像進行。在其他例示性實施例中,成像藉由MRI成像或SPECT/CT成像進行。成像方法可為此項技術中已知之任何適合之成像方法。在一個實施例中,成像方法可包括使用本文所述之小分子配位體,但其連接於適合於本文所述之成像類型的顯影劑。 在本文中描述之任一實施例中,即使出現針對癌症之CAR T細胞毒性,亦可能不會出現在患者中產生脫靶毒性之細胞介素釋放。在本文所述之任何實施例中,即使出現針對癌症之CAR T細胞毒性,患者中亦可能不會出現脫靶組織毒性。在本文所述之任何實施例中,癌症可包含腫瘤,且患者中腫瘤尺寸可減小,即使未出現脫靶毒性。在本文中描述之任一實施例中,可減少或預防CRS且該方法可引起患者中腫瘤體積減小。在本文所述之任何實施例中,可減小或預防由CRS引起之體重減輕。在本文所述之任何實施例中,癌症可包含腫瘤且可獲得腫瘤之完全反應。 在本文所述之方法之另一實施例中,任一本文所述之方法可單獨使用,或任一本文所述之方法可與本文所述之任何其他方法組合使用。 實例實例1
合成 FITC- 葉酸 在無水二甲基甲醯胺(DMF)中,在四甲基胍及二異丙胺存在下,使葉酸-γ-乙二胺與異硫氰酸螢光素(FITC)異構體I (Sigma-Aldrich)偶合。將粗產物負載至Xterra RP18製備型HPLC管柱(Waters)上且用以99% 5 mM磷酸鈉(移動相A,pH 7.4)及1%乙腈(移動相B)開始且在20 mL/min之流速下在10分鐘內達到90% A及10% B之梯度條件溶離。在此等條件下,FITC-葉酸主峰通常在27-50分鐘溶離。FITC-葉酸溶離份之品質藉由分析型逆相HPLC與UV偵測器監測。將純度超過98.0% (LCMS)之溶離份凍乾以獲得最終FITC-葉酸產物。如此項技術中已知,具有此結構之化合物亦稱為EC17。 實例2
合成 FITC-PEG12- 葉酸 將Universal聚乙二醇(PEG) Nova Tag
TM
樹脂(0.2 g)負載至肽合成容器中且用異丙醇(i-PrOH) (3×10 mL)及二甲基甲醯胺(DMF,3×10 mL)洗滌。使用含20%哌啶之DMF (3×10 mL),脫除保護基9-茀基甲氧基羰基(Fmoc)。進行凱撒測試(Kaiser test)以評估反應進展。接著向容器引入Fmoc-L-麩胺酸5-第三丁酯(Fmoc-Glu-(O-t-Bu)-OH) (23.5 mg)於DMF、N,N-二異丙基乙胺(i-Pr
2
NEt) (4當量)及六氟磷酸苯并三唑-1-基-氧基三吡咯啶基鏻(PyBOP)(2當量)中之溶液。使用含20%哌啶之DMF (3×10 mL),脫除保護基Fmoc。接著向容器引入N
10
-TFA-Pte-OH (22.5 mg)、DMF、i-Pr
2
NEt (4當量)及PyBOP (2當量)之溶液。氬氣鼓泡2小時,且用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌樹脂。樹脂在二氯甲烷(DCM)中溶脹之後,添加1M羥基苯并三唑(HOBT)於DCM/三氟乙烷(TFE) (1:1) (2×3 mL)中之溶液。氬氣鼓泡1小時,移除溶劑,且將樹脂用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌。樹脂在DMF中溶脹之後,添加Fmoc-NH-(PEG)
12
-COOH (46.3 mg)於DMF、i-Pr
2
NEt (4當量)及PyBOP (2當量)中之溶液。氬氣鼓泡2小時,且用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌樹脂。使用含20%哌啶之DMF (3×10 mL),脫除保護基Fmoc。進行凱撒測試以評估反應進展。接著向容器引入FITC (Life Technologies 21.4 mg)於DMF及i-Pr
2
NEt (4當量)中之溶液,接著氬氣鼓泡2小時,且將樹脂用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌。接著向容器添加含2% NH
2
NH
2
之DMF (2×2 mL)。使用TFA:H
2
O:三異丙基矽烷(TIS) (95:2.5:2.5) (裂解溶液)自樹脂裂解最終化合物且在真空下濃縮。經濃縮之產物在Et
2
O中沈澱,且在真空下乾燥。使用製備型RP-HPLC(移動相:A=10 mM乙酸銨pH =7,B=ACN;方法:13 mL/min,30分鐘內0% B至30% B)純化粗產物。將純溶離份彙集且冷凍乾燥,得到FITC-PEG12-葉酸。 實例3
合成 FITC-PEG20- 葉酸 將乙二胺、聚合物結合(200-400目)樹脂(50 mg)負載至肽合成容器且用DCM (3 mL)、接著DMF (3 mL)溶脹。接著向容器引入含Fmoc-PEG
20
-COOH溶液(131 mg,1.0當量)之DMF、i-Pr
2
NEt (6.0當量)及PyBOP (4.0當量)。氬氣鼓泡6小時,排出偶合溶液,且將樹脂用DMF (3×10 mL)及i-PrOH (3×10 mL)洗滌。進行凱撒測試以評估反應進展。在各胺基酸偶合之前,使用含20%哌啶之DMF (3×10 mL),脫除保護基Fmoc。重複以上順序,以完成具有Fmoc-Glu-OtBu (72 mg,2.0當量)及Tfa.喋酸(41 mg,1.2當量)偶合步驟之反應。將樹脂用含2%肼之DMF 3×10 mL(5分鐘)洗滌以裂解喋酸上之三氟乙醯基保護基,且先後用
i
-PrOH (3×10 mL)及DMF (3×10 mL)洗滌。樹脂在氬氣下乾燥30分鐘。使用裂解溶液使葉酸-肽自樹脂裂解。引入10 mL裂解混合物且氬氣鼓泡1.5小時。裂解混合物排出至乾淨燒瓶中。將樹脂用更多裂解混合物洗滌3次。將合併之混合物減壓濃縮成較小體積(約5 mL)且在乙醚中沈澱。 藉由離心收集沈澱物,用乙醚洗滌(3次)且在高真空下乾燥。在室溫下將經乾燥之葉酸-PEG
20
-EDA (1.0當量)用含FITC (50 mg,1.5當量)之DMSO及DIPEA處理。藉由LCMS監測反應進展。8小時後,起始物質耗盡,得到產物。藉由製備型HPLC (移動相A = 10 mM乙酸銨,pH = 7;有機相B = 乙腈;方法:13 mL/min,35分鐘內0% B至30% B)純化粗反應混合物且得到FITC-PEG20-葉酸,產率60%。 實例4
合成 FITC-PEG108- 葉酸 將乙二胺、聚合物結合(200-400目)樹脂(50 mg)負載至肽合成容器且用DCM (3 mL)、接著DMF (3 mL)溶脹。接著向容器引入含Fmoc-PEG
36
-COOH溶液(161 mg,1.0當量)之DMF、
i
-Pr
2
NEt (6.0當量)及PyBOP (4.0當量)。氬氣鼓泡6小時,排出偶合溶液,且將樹脂用DMF (3×10 mL)及
i
-PrOH (3×10 mL)洗滌。進行凱撒測試以評估反應進展。在各胺基酸偶合之前,使用含20%哌啶之DMF (3×10 mL),脫除保護基Fmoc。重複以上順序,以完成具有2X Fmoc-PEG
36
-COOH (161 mg,1.0當量)、Fmoc-Glu-OtBu (72 mg,2.0當量)及Tfa.喋酸( 41.0 mg,1.2當量)偶合步驟之反應。最後,將樹脂用含2%肼之DMF 3×10 mL(5分鐘)洗滌以裂解喋酸上之三氟乙醯基保護基,且先後用
i
-PrOH (3×10 mL)及DMF (3×10 mL)洗滌。樹脂在氬氣下乾燥30分鐘。使用裂解溶液使葉酸-肽自樹脂裂解。引入10 mL裂解混合物且氬氣鼓泡1.5小時。裂解混合物排出至乾淨燒瓶中。將樹脂用更多裂解溶液洗滌3次。將合併之混合物減壓濃縮成較小體積(約5 mL)且在乙醚中沈澱。 藉由離心收集沈澱物,用乙醚洗滌(3次)且在高真空下乾燥。在室溫下將經乾燥之葉酸-PEG
108
-EDA (1.0當量)用含FITC (50 mg,1.5當量)之DMSO及DIPEA處理。藉由HPLC監測反應進展。10小時後,起始物質耗盡,得到產物。藉由製備型HPLC (移動相A = 10 mM乙酸銨,pH = 7;有機相B = 乙腈;方法:13 mL/min,35分鐘內0% B至30% B)純化粗反應混合物且得到FITC-PEG108-葉酸,產率64%。 實例5
合成 FITC-DUPA 藉由如下固相方法合成DUPA−FITC。Universal Nova Tag
TM
樹脂(50 mg,0.53 mM)用DCM (3 mL)、接著DMF (3 mL)溶脹。將20%哌啶於DMF中之溶液(3×3 mL)添加至樹脂,且氬氣鼓泡5分鐘。用DMF (3×3 mL)及異丙醇 (
i
-PrOH,3×3 mL)洗滌樹脂。樹脂在DMF中溶脹後,添加DUPA-(OtBu)-OH (1.5當量)、HATU (2.5當量)及
i
-Pr
2
NEt (4.0當量)於DMF中之溶液。氬氣鼓泡2小時,且用DMF (3×3 mL)及
i
-PrOH (3×3 mL)洗滌樹脂。樹脂在DCM中溶脹之後,添加1 M HOBt於DCM/TFE (1:1) (2 × 3 mL)中之溶液。氬氣鼓泡1小時,移除溶劑,且將樹脂用DMF (3×3 mL)及
i
-PrOH (3×3 mL)洗滌。樹脂在DMF中溶脹之後,添加Fmoc-Phe-OH (2.5當量)、HATU (2.5當量)及DIPEA (4.0當量)於DMF中之溶液。氬氣鼓泡2小時,且用DMF (3×3 mL)及
i
-PrOH (3×3 mL)洗滌樹脂。重複以上順序進行更多2個偶合步驟,以添加8-胺基辛酸及異硫氰酸螢光素或異硫氰酸若丹明B。使用裂解溶液使最終化合物自樹脂裂解且在真空下濃縮。濃縮產物在乙醚中沈澱且在真空中乾燥。使用製備型RP-HPLC [λ = 488 nm;溶劑梯度:25分鐘內1% B至80% B,80% B洗滌30分鐘操作;A = 10 mM NH
4
OAc,pH = 7;B = 乙腈(ACN)]純化粗產物。在真空下移除ACN,且冷凍乾燥純溶離份,得到呈淡褐色-橙色固體狀之FITC-DUPA。RP-HPLC: tR = 8.0 min (A = 10 mM NH
4
OAc,pH = 7.0;B = CAN,溶劑梯度:10分鐘內1% B至50% B,80% B洗滌15分鐘操作)。
1
H NMR (DMSO-d6/D
2
O): δ 0.98-1.27 (ms,9H);1.45 (b,3H);1.68-1.85 (ms,11H);2.03 (m,8H);2.6-3.44 (ms,12H);3.82 (b,2H);4.35 (m,1H);6.53 (d,J = 8.1 Hz,2H),6.61 (dd,J = 5.3,3.5 Hz,2H);6.64 (s,2H);7.05 (d,J = 8.2 Hz,2H),7.19 (m,5H);7.76 (d,J = 8.0 Hz,1H);8.38 (s,1H)。HRMS (ESI) (m/z): (M + H)
+
C
51
H
59
N
7
O
15
S計算值,1040.3712,實驗值,1040.3702。UV/vis: λ max = 491 nm。 實例6
合成 FITC-PEG12-DUPA 將1,2-二胺基乙烷三苯甲基-樹脂(0.025 g)負載至肽合成容器且先後用
i
-PrOH (3×10 mL)及DMF (3×10 mL)洗滌。接著向容器引入Fmoc-NH-(PEG)
12
-COOH (42.8 mg)於DMF、
i
-Pr
2
NEt (2.5當量)及PyBOP (2.5當量)之溶液。將所得溶液用Ar鼓泡1小時,排出偶合溶液,且用DMF (3×10 mL)及
i
-PrOH (3×10 mL)洗滌樹脂。進行凱撒測試以評估反應進展。使用含20%哌啶之DMF (3×10 mL),脫除保護基Fmoc。重複此程序以完成所有偶合步驟(2×1.5當量Fmoc-Phe-OH及1.5當量8-胺基辛酸及1.2當量DUPA用於其對應偶合步驟每一者)。DUPA偶合之後,將樹脂用DMF (3×10 mL)及
i
-PrOH (3×10 mL)洗滌且在減壓下乾燥。在肽合成容器中,使用裂解溶液,使肽自樹脂裂解。將15 mL裂解溶液添加至肽合成容器中,且在Ar下鼓泡反應15分鐘。將樹脂用兩個額外10 mL量之裂解溶液處理,各5分鐘。將裂解混合物濃縮至約5 mL且用乙醚沈澱。藉由離心收集沈澱物,用乙醚洗滌(3次),且在高真空下乾燥,回收粗物質。在室溫下向攪拌之粗DUPA-(PEG)
12
-EDA (10 mg)及FITC (5.6 mg)於二甲基甲醯胺(DMSO,1 mL)中之溶液中添加
i
-Pr
2
NEt (5當量)且在氬氣下攪拌6小時。藉由LCMS監測反應且藉由製備型HPLC (移動相:A = 10 mM乙酸銨pH = 7,B = ACN;13 mL/min,方法:30分鐘內0% B至50% B)純化。將經純化之溶離份彙集且冷凍乾燥,得到FITC-PEG12-DUPA。 實例7
合成 FITC-PEG11-NK1 在室溫下在氬氣下向攪拌之NK-1 (0.02 g,0.0433 mmol,1.0當量)、O-(2-胺基乙基)-O'-[2-(Boc-胺基)乙基]十乙二醇(BocNH-PEG
11
-NH
2
) (Sigma,0.0336 g,0.0521 mmol,1.2當量)、六氟磷酸苯并三唑-1-基-氧基三吡咯啶基鏻(PyBOP) (0.027 g,0.0521 mmol,1.2當量)於無水CH
2
Cl
2
中之溶液中添加
N
,
N
-二異丙基乙胺(DIPEA) (0.076 mL,0.4338 mmol,10當量)。藉由LCMS監測反應進展且藉由製備型RP-HPLC (Waters,XBridge
TM
Prep C18,5 μm;19 × 100 mm管柱,移動相A = 20 mM乙酸銨緩衝液,pH 7,B = 乙腈,梯度30分鐘內10-100% B,13 mL/min,λ = 220 nm,254 nm)純化。收集純溶離份,蒸發所有有機溶劑,且樣品凍乾48小時,得到NK1-PEG
11
-NHBoc。產率:40.13 mg (97%)。向含NK1-PEG
11
-NHBoc (0.0165 g,0.015 mmol)之無水DCM添加三氟乙酸(TFA,20當量)且在室溫下攪拌反應混合物4小時。移除過量TFA,且將剩餘溶液用水稀釋且使用CH
2
Cl
2
(3×5 mL)萃取。經合併之有機層用鹽水洗滌,乾燥(Na
2
SO
4
)且濃縮。在真空下乾燥所得殘餘物且未經進一步純化即用於下一步驟。在室溫下在氬氣下將經攪拌的NK1-PEG
11
-NH
2
(0.008 g,0.0081 mmol,1.0當量)、異硫氰酸螢光素(FITC) (Sigma,0.0037 g,0.0097 mmol,1.2當量)於無水二甲基甲醯胺(DMSO,0.3 mL)中之溶液添加至二異丙基乙胺(0.0028 mL,0.0162 mmol,2.0當量)。藉由LCMS監測反應進展且產物藉由製備型RP-HPLC (Waters,XBridge
TM
Prep C18,5 μm;19 × 100 mm管柱,移動相A = 20 mM乙酸銨緩衝液,pH 7,B = 乙腈,梯度30分鐘內10-100% B,13 mL/min,λ = 280 nm)純化。收集純溶離份,蒸發所有有機溶劑,且樣品凍乾48小時,得到FITC-PEG11-NK1,產率為8.54 mg(77%)。 *注意:藉由兩步程序,自鹼配位體開始合成NK-1化合物,鹼配位體藉由使用文獻中之程序製備。(參考文獻:DESIGN AND DEVELOPMENT OF NEUROKININ-1 RECEPTOR-BINDING AGENT DELIVERY CONJUGATES,申請案號:PCT/US2015/44229;以引用的方式併入本文中。 實例8
合成 FITC-PEG2-CA9 在50 mL圓底燒瓶中,使用特氟隆磁性攪拌棒,將CA9配位體(53.6 mg)溶解於DMF (2-3 mL)中。使用真空移除周圍空氣且用氮氣替換,此循環三次。圓底燒瓶保持在恆定氮氣下。向燒瓶添加28.9 mg N-(3-二甲基胺基丙基)-N'-乙基碳化二亞胺鹽酸鹽(EDC),接著添加21.6 mg 1-羥基苯并三唑水合物(HOBt)及18.9μL Boc-PEG
2
-NH
2
(Sigma Aldrich)。添加5.4 μL三乙胺(TEA)且反應攪拌隔夜。使用HPLC純化反應混合物且用UHPLC-MS (目標m/z 831)證實。使用高真空旋轉蒸發移除乙腈且凍乾產物。將化合物與1:1 TFA:DCM混合30分鐘。使用高真空旋轉蒸發移除TFA/DCM,接著高真空30分鐘。接著使化合物溶解於DMF中且與5莫耳當量之
i
-Pr
2
NEt、16 mg異硫氰酸螢光素(Life Technologies)組合,且攪拌1小時。藉由HPLC純化反應混合物且用UHPLC-MS (目標m/z 1120)證實目標化合物。凍乾樣品且儲存於-20℃下。 實例9
抗 FITC CAR T 細胞活化可藉由中止 FITC- 配位體投與或引入過量競爭小分子來控制
將MDA-MB-231細胞皮下注射至NSG小鼠(Jackson Laboratory)肩部中以建立實體腫瘤異種移植物。當腫瘤體積達到約50-100 mm
3
時,將抗FITC CAR T細胞(15×10
6
個細胞)靜脈內引入負載腫瘤之小鼠中。將二十隻NSG小鼠分成四個研究組(每組5隻動物)。第一組用抗FITC CAR T細胞與磷酸鹽緩衝生理食鹽水(PBS)處理,作為陰性對照。第二組、第三組及第四組每隔一天用抗FITC CAR T細胞與FITC-葉酸(500奈莫耳/公斤)處理。一旦偵測到顯著毒性(例如嚴重體重減輕),那麼此等組如下處理:繼續投與FITC-葉酸(第二組);中止FITC-葉酸投與,直至小鼠恢復(第三組);或100倍過量之EC0923(亦即游離葉酸)與FITC-葉酸之混合物,直至小鼠恢復(第四組)。定期量測體重以監測毒性。另外,量測各處理組之干擾素(IFN)-γ之血液濃度,以監測抗FITC CAR T活化程度。最後,量測腫瘤體積以鑑別各處理組中之抗腫瘤功效。 圖1A展示各處理組中之體重變化。除PBS處理組外,各處理組均顯示在第二劑量之FITC-葉酸(第1天及第2天)後由抗FITC CAR T細胞介導之毒性引起的體重減少。因為在各組小鼠中偵測到毒性,所以各組之處理如上所述分成:(1)繼續給與FITC-葉酸(繼續組);(2)在第4天及第6天中斷FITC-葉酸注射(中斷組);以及(3)第4天及第6天100倍過量之游離葉酸與FITC-葉酸(競爭組)之混合物。如圖1A中所示,用中斷FITC-葉酸注射或投與競爭分子與FITC-葉酸之混合物處理的組自嚴重抗FITC CAR T細胞介導之毒性恢復(亦即體重增加)。然而,在第4天及第6天連續用FITC-葉酸處理之組保持體重減輕達到昏睡狀態(亦即體重減輕>初始20%)。如圖1B中所示,在繼續給與組中偵測到大量IFN-γ。不同於繼續給與組,中斷組與競爭組中IFN-γ濃度降低。此等結果表明抗FITC CAR T細胞活化可藉由緩解CAR T細胞介導之毒性的方法控制。圖1C概述第一週治療時各處理組中小鼠之存活(%)。因為在繼續給與組中偵測到由抗FITC CAR T細胞引起之毒性,所以繼續給與組中僅僅40%小鼠(亦即5隻小鼠中之2隻)能夠在治療後存活。然而,如圖1C中所示,中斷組與競爭組中之所有小鼠均由於CAR T細胞活化降低而經受住CAR T細胞介導之毒性。 雖然抗FITC CAR T細胞介導之毒性可藉由控制抗FITC CAR T細胞活化來管理,但確定抗FITC CAR T細胞活化之調控是否引起腫瘤反應之任何減少。因此,每隔一天量測腫瘤體積。如圖2A及圖2B中所示,正如所料,用抗FITC CAR T細胞與PBS處理之對照組未顯示腫瘤反應。有趣地,與繼續給與組相比,中斷組(100%完全反應)及競爭組(75%完全反應)顯示更強腫瘤反應(延遲腫瘤生長)。繼續給與組中缺乏完全反應可歸因於:(1)過於頻繁給與FITC-葉酸,引起兩種標靶受體(亦即CAR T細胞及癌細胞中之葉酸受體)飽和,導致抗FITC CAR T細胞活化降低;(2)經由連續注射之FITC-葉酸,抗FITC CAR T細胞由於癌細胞之可重複接合而可變得過度活化。此過度活化可顯著誘發抑制劑機制為防止活化之反饋反應。概言之,監測毒性(實例9)及腫瘤反應證實抗FITC CAR T細胞活化之控制可藉由管理CAR T細胞介導之毒性(例如細胞介素風暴)同時不損失CAR T細胞之抗腫瘤功效來實現。 實例10
抗 FITC CAR T 細胞調控對腫瘤反應之作用
設計五個實驗組來鑑別抗FITC CAR T細胞反應與FITC-配位體之劑量之間的關係:(1)抗FITC CAR T細胞與PBS;(2)抗FITC CAR T細胞與FITC-葉酸(5奈莫耳/公斤);(3)抗FITC CAR T細胞與FITC-葉酸(50奈莫耳/公斤);(4)抗FITC CAR T細胞與FITC-葉酸(500奈莫耳/公斤);(5)抗FITC CAR T細胞與FITC-葉酸(2500奈莫耳/公斤)。將MDA-MB-231細胞皮下注射至NSG小鼠(Jackson Laboratory)肩部中以建立實體腫瘤異種移植物。當腫瘤體積達到約50-100 mm
3
時,將抗FITC CAR T細胞(15×10
6
個細胞)及不同劑量之FITC-葉酸靜脈內引入小鼠中。 為監測不同劑量FITC-葉酸下之抗FITC CAR T細胞活化,藉由基於珠粒之免疫分析(來自Biolegend之Legendplex套組)量測小鼠血液中之IFN-γ濃度。亦量測腫瘤體積。藉由量測體重減輕,監測各處理組之全身毒性。 圖3A-D展示抗FITC CAR T細胞活化視FITC-葉酸之濃度而定。各處理組中INF-γ之濃度顯示鐘形劑量-反應曲線(圖3A)。抗FITC CAR T細胞活化與FITC-葉酸劑量之增加正相關。然而,若FITC-葉酸之劑量(2500奈莫耳/公斤)超過500奈莫耳/公斤,則CAR T細胞活化開始下降。此可歸因於以下事實:CAR T細胞(例如抗FITC)與癌細胞(例如葉酸受體)中之標靶受體可在更高劑量之FITC-配位體下分別飽和。此可減弱FITC-配位體作為CAR T細胞與癌細胞之間的橋樑的功能。如圖3B中所示,鐘形劑量反應亦證實腫瘤反應。遞增濃度之FITC-葉酸(5奈莫耳/公斤至500奈莫耳/公斤)誘發CAR T細胞之抗腫瘤功效。類似於促炎性細胞介素之含量,在更高濃度之FITC-葉酸(2500奈莫耳/公斤)下CAR T細胞之抗腫瘤功效亦開始減弱。如圖3C中所示,在用500奈莫耳/公斤處理之組中觀測到最大毒性(亦即小鼠存活率最低),此組亦顯示最高抗腫瘤功效。此外,經由減少或增加FITC-葉酸劑量,逐漸緩解CAR T細胞介導之毒性。因此,因為抗FITC CAR T細胞活化視FITC-配位體劑量而定,所以CAR T細胞介導之毒性之管理可經由改變FITC-配位體劑量實現。 實例11
投與可切斷抗 FITC CAR T 細胞活化信號之藥物
為測試抗FITC CAR T細胞活化是否可藉由抑制T細胞活化信號之介體之藥劑抑制,選擇以下藥劑:(1)達沙替尼(dasatinib),其經FDA批准用於治療成人CML(已知達沙替尼經由抑制LCK活化來遏制天然T細胞活化);(2) PI3K抑制劑(GDC0980),其處於2期臨床試驗下(已知PI3K在T細胞活化中起關鍵作用);(3)誘導性T細胞激酶(ITK,BMS-509744),其亦與T細胞活化信號有關且處於臨床前階段。為研究各藥劑遏制CAR T細胞活化之功效,在若干濃度之各藥劑存在下,進行活體外CAR T細胞功能研究(例如促炎性細胞介素產生分析及經由表面活化標記物評估CAR T細胞活化程度)。
CAR T 細胞功能研究 1 : 促炎性細胞介素 ( 例如 IFN-γ) 產生分析
在各藥劑存在下,使用來自Biolegend之人類IFN-γ偵測ELISA套組進行ELISA分析以定量抗FITC CAR T細胞之IFN-γ產生水準。為進行ELISA分析,自抗FITC CAR T細胞、MDA-MB-231細胞、FITC-配位體及各藥劑之共同培育獲得各樣品。將MDA-MB-231細胞以每100 µl培養基10
4
個細胞之密度預先接種在96孔盤之各孔中,且生長隔夜。第二天,將CAR T細胞引入接種MDA-MB-231細胞之各孔中。引入100 nM FITC-葉酸以活化抗FITC CAR T細胞。將0.01 nM至100 µM各藥劑添加至各孔且細胞培養24小時。共同培育後,收穫上清液且在1000 g及4℃下離心10分鐘以移除細胞碎片。自各樣品清除之上清液用於直接藉由ELISA偵測IFN-γ,或儲存於-80℃下。根據製造商之指令進行ELISA分析。
CAR T 細胞功能研究 2 : 評估 CAR T 細胞活化程度
為鑑別在各藥劑存在下之CAR T細胞活化程度,將CAR T細胞之表面用抗CD69抗體(CD69為T細胞活化表面標記物)染色。特定言之,將CAR T細胞與預先接種之MDA-MB-231細胞在FITC-葉酸(100 nM)及各藥劑(0.01 nM至100 µM)存在下共同培育24小時。共同培育後,收穫CAR T細胞,且用抗CD69抗體冰上染色15分鐘。將CAR T細胞用染色緩衝液(含2% FBS之PBS)洗滌2次。洗滌後,藉由流動式細胞量測術分析CAR T細胞。 圖4A-B展示抗FITCCAR T細胞之活化可藉由靶向T細胞活化信號之關鍵介體來調控。如圖4A及4B中所示,達沙替尼及GDC0980顯示遏制抗FITC CAR T細胞活化之功效。在各藥劑(>10 nM)存在下,顯著抑制IFN-γ產生且抗FITC CAR T細胞仍經由FITC-葉酸靶向癌細胞(圖4A)。亦藉由檢查標準T細胞活化標記物CD69證實使用各藥劑抑制CAR T細胞活化。如圖4B中所示,在濃度>10 nM之各藥劑存在下活化CAR T細胞(CD69陽性細胞)減少。雖然PI3K抑制劑及達沙替尼顯示在活體外遏制CAR T細胞活化之類似功效,但達沙替尼可為較佳。 實例12
T 細胞製備
藉由使用Ficoll密度梯度離心(GE Healthcare Lifesciences),自健康供體之全血分離人類外周血單核細胞(PBMC)。接著藉由使用EasySep™人類T細胞分離套組(STEM CELL technologies)自PBMC分離T細胞。將T細胞在具有40-100 IU/mL人類IL-2 (Miltenyi Biotech)、2%人類AB型血清及1%青黴素/鏈黴素硫酸鹽之TexMACS培養基(Miltenyi Biotech Inc)中培養。將Dynabeads人類T-活化劑CD3/CD28 (ThermoFisher Scientific)以1:1比率添加至T細胞以活化T細胞。活化後12-24小時,在8 µg/mL聚凝胺(Santa Cruiz Biotech)存在下,藉由在22-32℃下在1,200 g下離心感染90分鐘,將T細胞用FITC-CAR慢病毒粒子轉導。將含有具有CAR修飾之T細胞(CAR-T)及不具有CAR修飾之T細胞(未轉形T)的T細胞混合物在活化珠粒存在下培養6天,接著移除活化珠粒。螢光活化之細胞分選術用於基於GFP表現分選出CAR-T細胞(GFP陽性)及未轉形T細胞(GFP陰性)。在注射至小鼠之前將經分選之T細胞培養7-15天。當使用T細胞混合物時,在小鼠注射之前將CAR-T細胞與未轉形T細胞以所需比率混合。利用在此等程序下製備之T細胞獲得圖6-11中所示之資料。 實例13
編碼 CAR 基因之慢病毒載體之產生
重疊PCR方法用於產生包含針對螢光素之scFv之CAR構築體。合成針對螢光素之scFV,來源於抗螢光素(4-4-20)抗體之4M5.3 (Kd=270 fM,762 bp)。如圖5中所示,藉由重疊PCR使編碼人類CD8α信號肽(SP,63bp)、鉸鏈及跨膜區(249bp)、4-1BB(CD137,141bp)及CD3ζ鏈(336bp)之細胞質域的序列與抗螢光素scFV融合。將所得到之CAR構築體(1551bp)插入至EcoRI/NotI裂解慢病毒表現載體pCDH-EF1-MCS-(PGK-GFP) (圖5,System Biosciences)中,慢病毒載體中CAR構築體之序列藉由DNA測序來證實。除非本文中另外說明,否則用於產生實例之資料的CAR構築體具有SEQ ID NO: 1之核酸序列及SEQ ID NO: 2之胺基酸序列。 一種示例性CAR核酸編碼序列可包含:
。 在以上顯示之示例性核酸序列(SEQ ID NO: 1)中,第一ATG為起始密碼子。一種示例性CAR胺基酸序列可包含:
一種示例性插入物可包含:
在上述示例性插入物(SEQ ID NO: 3)中,第一GCCACC序列可包含限制酶裂解位點,接著為ATG起始密碼子。編碼之胺基酸序列可包含:
實例14
用於人類 T 細胞轉導之含有 CAR 基因之慢病毒的產生
為製備含有抗螢光素(亦即抗FITC)單鏈片段可變(scFv) CAR之慢病毒,將HEK-293TN包裝細胞株與編碼抗螢光素scFv CAR之慢病毒載體及第二代慢病毒包裝質體混合物(Cellecta)或ViraPower Lentivrial包裝混合物(ThermoFisher)共轉染。轉染24小時及48小時之後,收穫含有具有CAR基因之慢病毒的上清液且藉由標準聚乙二醇病毒濃縮法(Clontech)濃縮病毒粒子,以供將來用人類T細胞轉導。 實例15
自人類 PBMC 分離人類 T 細胞
藉由Ficoll密度梯度離心(GE Healthcare)自人類外周血單核細胞(PBMC)分離T細胞。在洗去剩餘Ficoll溶液後,藉由使用EasySep™人類T細胞分離套組(STEM CELL technologies)分離T細胞。將經純化之T細胞在具有1%青黴素及鏈黴素硫酸鹽之TexMACSTM培養基(Miltenyi Biotech Inc)中在人類IL-2 (100 IU/mL,Miltenyi Biotech Inc)存在下培養。T細胞以1×10
6
個細胞/毫升之密度在多孔盤中培養。將T細胞分開且每2-3天再次饋入。 實例16
人類 T 細胞之轉導
在人類IL-2 (100 IU/mL)存在下將分離之T細胞用與抗CD3/CD28抗體(Life Technologies)偶合之Dynabeads活化12-24小時,接著用編碼抗螢光素CAR基因之慢病毒轉導。72小時後收穫細胞且藉由使用流動式細胞量測術量測GFP螢光細胞來鑑別轉導T細胞上CAR之表現。 實例17
測試活體內 CAR T 細胞之抗腫瘤功效
免疫缺乏NSG小鼠(Jackson Laboratory)用於鑑別活體內CAR T細胞抗腫瘤活性之功效。將表現葉酸受體之MDA-MB-231癌細胞株皮下注射至NSG小鼠之背部中以建立實體腫瘤異種移植物。當達到約100-300 mm
3
之腫瘤體積時,在投與所需數目之CAR T細胞(如圖例中所示)之前4小時引入所需濃度之EC17 (如圖例中所示)至負載腫瘤之小鼠中。初始投與EC17及CAR T細胞之後,每週亦引入(i.v.)所需濃度之EC17 (如圖例中所示)三次。向對照小鼠投與不具有CAR修飾之T細胞。向其他對照小鼠投與CAR-T,但給與PBS代替EC17。藉由腫瘤體積監測抗腫瘤功效。藉由體重減輕、總體動物形態及行為,監測療法之全身毒性。 調整橋樑劑量可減少細胞介素釋放及毒性,同時維持抗腫瘤作用。如圖6A-D之圖例中所示,向小鼠投與T細胞或CAR T細胞以及0、20奈莫耳/公斤、100奈莫耳/公斤、500奈莫耳/公斤、1500奈莫耳/公斤或10000奈莫耳/公斤之EC17。在74天內量測腫瘤體積(圖6A)及體重變化(圖6B)。圖6C中展示各EC17劑量之最大體重減輕百分比。各組中展示嚴重細胞介素釋放症候群之小鼠數目及總小鼠數目以圓括號展示。圖6D中展示針對各EC17劑量,展示sCRS之小鼠百分比。與具有更高EC17劑量(500奈莫耳/公斤)之群組中的小鼠相比,具有20及100奈莫耳/公斤EC17劑量之群組中之小鼠具有較低百分比之sCRS及較小體重減輕,而其均實現完全治癒。在過飽和之橋樑EC17劑量(1500及10000奈莫耳/公斤)下,較少小鼠顯示sCRS,但較少小鼠實現治癒。 減少CAR-T劑量或將CAR-T劑量分成2劑可避免嚴重細胞介素釋放症候群,同時維持抗腫瘤功效。EC17劑量固定在500奈莫耳/公斤下。如圖8A-D之圖例中所示,將不同CAR T劑量引入小鼠。在56天內量測腫瘤體積(圖8A)及體重變化(圖8B)。各組中展示嚴重細胞介素釋放症候群之小鼠數目及總小鼠數目以圓括號展示。圖8C中展示各CAR T劑量之最大體重減輕百分比。圖8D中展示針對各CAR T劑量,展示sCRS之小鼠百分比。 調整CAR T細胞劑量及EC17劑量可影響腫瘤尺寸。向小鼠投與T細胞或CAR T細胞以及100奈莫耳/公斤或500奈莫耳/公斤EC17。如圖9A-B之圖例中所示,投與對照或CAR T細胞與不同濃度EC17。量測腫瘤體積(圖9A)及體重(圖9B)75天。各組中展示嚴重細胞介素釋放症候群之小鼠數目及總小鼠數目以圓括號展示。優化EC17量及CAR T數目,小鼠僅具有2%體重減輕,同時實現完全治癒。 第二劑量之T細胞中存在CAR T細胞可影響腫瘤尺寸。如圖10A-C之圖例中所示,向小鼠不投與第二劑量之T細胞、第二劑量與2000萬未轉形T細胞或第二劑量及未轉形T細胞及CAR T細胞之混合物。隨時間推移量測腫瘤體積(圖10A)及體重(圖10B)。圖10C中展示以下小鼠在注射CAR T細胞混合物之後2週50 µl患者血液中CAR T細胞/正常T細胞之量測量:一隻小鼠不用第二劑量之T細胞處理,及各為使用第二劑量與2000萬未轉形T細胞或使用第二劑量及未轉形T細胞與CAR T細胞之混合物的處理組的兩隻小鼠。圖10C亦展示正常T細胞及CAR T細胞之量測量的對應流動式細胞量測術曲線圖,及注射CAR T細胞混合物之後4週對應腫瘤體積。 調整EC17劑量時程可降低毒性且可影響腫瘤尺寸。如圖11A-B之圖例中所示,使用不同給藥時程向小鼠投與CAR T細胞及EC17。隨時間推移量測腫瘤體積(圖11A)及體重(圖11B)。各組中展示嚴重細胞介素釋放症候群之小鼠數目及總小鼠數目以圓括號展示。調整橋樑給藥頻率(自每週三次(TIW)至每週一次(SIW))可降低毒性且實現更佳抗腫瘤效力。 實例18
測試在活體內 CAR T 細胞治療期間 EC0923 之救援能力
將CAR T細胞引入負載腫瘤之小鼠中且每週亦引入EC17 (i.v.)三次。當觀測到嚴重細胞介素釋放症候群時,引入一劑10微莫耳/公斤之EC0923以救援小鼠。再監測小鼠4天,且處死一些以評估器官。圖7中展示在處理後6小時、1天及4天來自用EC0923處理或未用EC0923處理之小鼠的器官。使用一劑EC0923之小鼠在4小時後開始移動且尋找食物,其其脾臟及肝臟為紅色。未使用EC0923之對照小鼠在6小時後不移動,且其脾臟及肝臟蒼白。使用EC0923處理之小鼠在24小時內再次活躍,且預期存活,且放回至正常EC17給藥時程。未使用EC0923之對照小鼠在24小時內開始移動少許,但必須處死以防動物痛苦。使用EC0923之小鼠在4天內看起來正常。處死一隻小鼠且發現其具有正常顏色之脾臟及肝臟。經救援之小鼠之脾臟擴大,此表明儘管單劑量之EC0923用於救援,但CAR-T仍在增殖。其他使用EC0923之剩餘小鼠每週給與常規EC17三次,且其腫瘤在4週內消失。 實例19
活體內 CAR T 細胞活化之控制
抗FITC CAR T細胞活化可藉由中斷FITC-配位體投與、引入過量競爭小分子(例如葉酸(FA))或此兩種方法之組合來控制。 為展示CART T細胞活化之控制,將人類乳腺癌細胞株(例如MDA-MB-231)皮下注射至NSG小鼠(Jackson Laboratory)之肩部中,以建立實體腫瘤異種移植物。當腫瘤體積達到約50-100 mm
3
時,將約15×10
6
抗FITC CAR T細胞靜脈內引入具有腫瘤之小鼠中。五個研究組經設計以測試抗FITC CAR T細胞活化是否可經由暫時終止FITC-配位體、藉由投與競爭小分子或中斷FITC-配位體及/或投與FA競爭物之組合方法來控制。第一組藉由投與抗FITC CAR T細胞來處理,以磷酸鹽緩衝生理食鹽水(PBS)為陰性對照。在研究過程期間,每隔一天,將第二組、第三組、第四組及第五組用抗FITC CAR T細胞與FITC-葉酸(500奈莫耳/公斤)混合來處理。一旦偵測到顯著毒性事件(例如嚴重體重減輕),那麼如下對四組改變治療方案:(1)第2組繼續注射FITC-葉酸(繼續);(2)第3組接受組合處理,包括終止FITC-葉酸及接受過量游離葉酸(中斷+FA競爭物);(3)第4組接受FITC-葉酸之中斷,直至小鼠恢復(中斷);以及(4)第5組接受含有相對於FITC-葉酸100倍過量之游離葉酸(亦即EC0923)之混合物,直至小鼠恢復(FITC-葉酸+FA競爭物)。定期量測小鼠體重以測試毒性。 結果. 圖12 (第0行周圍之條柱=PBS對照;在第0行下之各組中的第一條柱=繼續;在第0行下之各組中的第二條柱=中斷+FA競爭物;在第0行下之各組中的第三條柱=中斷;在第0行下之各組中的第四條柱=FA競爭物)展示抗FITC CAR T細胞介導之毒性可藉由中斷FITC-葉酸注射、投與過量競爭分子或兩者之組合控制抗FITC CAR T細胞活化來管理。圖12之圖及表展示CAR T細胞介導之毒性(例如細胞介素風暴)可藉由中斷FITC-配位體(中斷)、投與過量游離葉酸作為FITC-葉酸之競爭者(500奈莫耳/公斤)(FITC-葉酸+FA競爭物)或此兩種方法之組合(中斷+FA競爭物)控制CAR T細胞活化來管理。圖12進一步展示用CAR T細胞+FITC-葉酸處理之組顯示由於CAR T細胞過度活化而體重減輕。當偵測到嚴重CAR T細胞介導之毒性(亦即>10%體重減輕)時,測試三種不同方法(上述)以查明CAR T細胞活化程度是否可降低且CAR T細胞介導之毒性是否可管理。基於該資料,三種方法能夠控制CAR T細胞活化程度以緩解CAR T細胞介導之毒性。此外,中斷FITC-葉酸與投與過量游離葉酸之組合顯示與單獨各方法相比,降低CAR T細胞介導之毒性的功效更佳。正如所料,當FITC-葉酸量受到限制時CAR T細胞活化程度降低。同時,投與過量游離葉酸可藉由干擾FITC-葉酸與葉酸受體之間的相互作用來與FITC-葉酸競爭。因此,包括終止FITC-葉酸及投與葉酸競爭者之組合處理可促進CAR T細胞介導之毒性快速降低。 實例20
活體內 FITC- 葉酸劑量遞增研究
為測試FITC-葉酸劑量之逐漸遞增是否可將CAR T細胞介導之毒性降至最低同時不損害CAR T細胞之抗腫瘤功效,設計一種實驗。首先與注射抗FITC CAR T細胞(使用約15×10
6
個細胞)一起,將一定劑量之FITC-葉酸(0.05奈莫耳/公斤)引入至負載MDA-MB-231(腫瘤體積約50-100 mm
3
)之NSG小鼠中。向小鼠投與另外兩劑約0.05奈莫耳/公斤FITC-葉酸。接著FITC-葉酸之劑量自5奈莫耳/公斤(單劑量)逐漸增加至50奈莫耳/公斤(兩劑)。逐漸增加FITC-葉酸劑量之後,將小鼠用500奈莫耳/公斤劑量之FITC-葉酸處理。此濃度顯示良好腫瘤功效,且若小鼠最初用500奈莫耳/公斤劑量處理,則亦引起毒性。藉由量測體重減輕,監測各處理組之全身毒性。量測腫瘤體積以監測抗FITC CAR T細胞之抗腫瘤功效。 圖13展示FITC-葉酸之逐漸劑量增加可將抗FITC CAR T細胞介導之毒性降至最低,同時不損害CAR T細胞之抗腫瘤功效。特定言之,圖13A及13C證實與用500奈莫耳/公斤之FITC-葉酸連續處理之組相比,使用逐漸處理方案,未偵測到嚴重毒性(亦即>10%體重減輕)。圖13B展示FITC-葉酸劑量之逐漸增加使CAR T細胞逐漸活化未負面影響CAR T細胞之抗腫瘤功效。因此,FITC-葉酸之逐漸劑量增加可用於使用FITC-葉酸橋樑治療腫瘤,同時避免相當大之嚴重毒性副作用。 實例21
葉酸 -FITC 對 CAR-T 細胞數目及血清細胞介素之作用
將三陰性人類乳腺癌細胞株(亦即MDA-MB-231)皮下植入免疫缺乏(例如NSG)小鼠之肩部中。當腫瘤體積達到約50-100 mm
3
時,抗FITC CAR T細胞(10
7
個細胞)與FITC-葉酸(500奈莫耳/公斤)或PBS一起靜脈內引入。為監測CAR T細胞增殖及促炎性細胞介素產生,在第6天收集小鼠血液。藉由用抗人類CD3抗體(Biolegned)染色全血樣品且偵測CD3陽性T細胞群體上之GFP表現來評估CAR T細胞增殖。促炎性細胞介素產生藉由基於珠粒之免疫分析(來自biolegend之Legendplex套組)量測。 圖14A展示當橋樑分子引入至負載腫瘤之小鼠中時,僅僅抗FITC CAR T細胞顯著增殖。然而,在不存在抗原匹配之橋樑分子下,抗FITC CAR T細胞未顯著增殖。此外,當負載腫瘤之小鼠用抗FITC CAR T細胞與抗原匹配之橋樑分子處理時,顯著產生促炎性細胞介素(例如IL-2、TNF-α及IFN-γ)。圖14A及14B結合在一起,表明抗FITC CAR T細胞可藉由經抗原匹配之橋樑分子葉酸-FITC靶向癌細胞而特異性地增殖及活化,以產生促炎性細胞介素。 實例22
活體外干擾素 -γ 分析
為研究橋樑劑量與抗FITC CAR T細胞活化之間的關係,將葉酸受體陽性癌細胞株(MDA-MB-231)以10
4
個細胞/100 μl培養基之密度接種在96孔盤之各孔中且細胞生長隔夜。接著將抗FITC CAR T細胞(5×10
4
個細胞)添加至含有癌細胞與多種濃度葉酸-FITC(0.001 nM至100 μM)之各孔中,歷時6-24小時。共同培育後,將含有抗FITC CAR T細胞及癌細胞之盤在350×g下離心10分鐘以移除細胞及細胞碎片,且藉由ELISA(來自Biolegend之人類IFN-γ ELISA套組)分析50 μl上清液,以偵測抗FITC CAR T細胞之IFN-γ產生。 為評估橋樑劑量與抗FITC CAR T細胞活化之間的關係,如上所述在活體外在CAR T細胞與癌細胞一起在多種濃度之FITC-葉酸下共同培育後量測抗FITC CAR T細胞產生之IFN-γ含量。如圖15中所示,IFN-γ產生含量隨著橋樑劑量增加而增加。然而,若橋樑劑量高於最佳劑量(亦即最高IFN-γ水平[10 nM]),則當引入極高劑量(例如10 μM及100 μM)橋樑時IFN-γ產生減少且最終未偵測到(亦即鐘形橋樑劑量反應)。活體外之此結果可能因為高劑量橋樑可在活體外使癌細胞與CAR T細胞上之所有標靶受體飽和。此等結果表明CAR T細胞介導之毒性可藉由操控橋樑劑量來控制。圖15中,X軸上之「銜接子劑量」為葉酸-FITC劑量。 實例23
在活體內 CAR T 細胞治療期間競爭者之救援能力
將過量CAR T細胞(各研究中800萬至1000萬)引入至負載MDA-MB-231腫瘤之小鼠中,且每週亦引入500 nmol/kg EC17(i.v.)三次。當觀測到嚴重細胞介素釋放症候群時,靜脈內引入一劑EC0923(葉酸)或未繫栓之螢光素(均為10微莫耳/公斤)以救援小鼠(圖16)。使用一劑EC0923或螢光素之小鼠在4小時開始移動且尋找食物,在24小時內再次活躍,且在4天內看起來正常。接著繼續投與EC17。不使用EC0923或螢光素之對照小鼠在4小時後不移動,且因為患病而必須處死。在投與競爭者之後6小時收集血液樣品,且量測細胞介素水準(參見圖16)。四週後,進行救援處理之小鼠的腫瘤消除。所有測試細胞介素產生之小鼠均注射800萬個CAR-T細胞。 實例24
CAR-T 活性視橋樑劑量水準與腫瘤之存在而定
將CAR-T細胞注射至未處理小鼠(每隻小鼠800萬)及負載MDA-MB-231腫瘤之小鼠(每隻小鼠500萬)中。每週投與多種水準之EC17三次。在注射CAR-T細胞後10天量測血液中之IFN-γ。如圖17中所示,細胞介素產生(CAR-T活性)視橋樑(EC17)劑量水準與腫瘤之存在而定。 實例25
無腫瘤之未處理小鼠中 CAR-T 細胞不增殖
將500萬CAR-T細胞注射(i.v.)至無腫瘤之未處理小鼠中。每週投與500奈莫耳/公斤EC17三次。監測小鼠5週,且每週處死一些以評估器官。無論是否投與EC17(圖18A),均未觀測到任何小鼠明顯體重減輕(毒性)。在有或無EC17投與之未處理小鼠中CAR-T細胞未增殖,如由血液中之CAR-T細胞數目(圖18B)及脾臟大小(圖18C)所指示。 實例26
不同葉酸受體陽性腫瘤異種移植模型中 FITC-CAR-T 之 EC17 依賴性抗腫瘤活性
使用免疫缺陷NSG小鼠展示在每週單劑EC17下CAR T細胞抗腫瘤活性之功效。使用兩種表現葉酸受體之癌細胞株建立皮下實體腫瘤異種移植物:MDA-MB-231具有高葉酸受體表現,而OV90具有低葉酸受體表現。當腫瘤體積達到約100-250 mm
3
時,將小鼠分成兩組。「EC17 500 nmol/kg」組(nmol/kg等於如本專利申請案中針對橋樑所用之奈莫耳/公斤)中之小鼠注射每公斤體重500奈莫耳EC17,而「無EC17」組中之小鼠未注射EC17。四小時後,向兩組中之小鼠投與500萬個抗FITC CAR-T細胞。初始投與EC17及CAR-T細胞之後,僅僅「EC17 500 nmol/kg」組中之小鼠注射(i.v.)500奈莫耳/公斤EC17,每週一次。藉由腫瘤體積監測抗腫瘤功效。 圖19A展示在具有高葉酸受體表現之MDA-MB-231腫瘤模型中抗FITC CAR-T細胞本身不具有抗腫瘤活性。僅僅在投與EC17(每週單劑)下,抗FITC CAR-T細胞才消除MDA-MB-231腫瘤。因此,每週單劑EC17足夠活化及橋連抗FITC CAR-T細胞至腫瘤細胞來消除腫瘤。圖19B展示在腫瘤細胞上具有低葉酸受體表現量之OV90異種移植模型中抗FITC CAR-T細胞亦展示EC17依賴性抗腫瘤活性。 實例27
藉由調整橋樑劑量水準維持 CAR-T 抗腫瘤活性
免疫缺陷NSG小鼠(Jackson Laboratory)用於研究在不同EC17劑量存在下CAR T細胞抗腫瘤活性及其毒性。MDA-MB-231腫瘤細胞用於建立皮下實體腫瘤異種移植物。當腫瘤體積達到約100-150 mm
3
時,在靜脈內注射1000萬個CAR-T細胞之前4小時預先注射多種濃度之EC17。接著在初始EC17及CAR-T細胞注射後每週投與多種濃度之EC17三次。陰性對照組注射500 nmol/kg EC17(提前4小時)及5000萬未經修飾之T細胞。接著在初始注射後每週投與500 nmol/kg EC17三次。量測腫瘤尺寸及體重以監測抗腫瘤活性及毒性。如圖20A中所示,用1000萬CAR-T細胞及EC17 500 nmol/kg、100 nmol/kg或20 nmol/kg處理之小鼠中的腫瘤均消除,但陰性對照組中之腫瘤未消除。當比較由投與1000萬CAR-T細胞但不同EC17劑量之小鼠中之處理引起的體重減輕時,發現投與500 nmol/kg EC17 TIW之組顯示最強毒性(體重減輕(圖20B))。20 nmol/kg EC17 TIW顯示在三個EC17劑量組之間的最小毒性(由體重減輕指示),但仍維持足夠抗腫瘤活性。藉由調整EC17劑量水準,可維持CAR-T抗腫瘤活性,同時可減小所引起之體重減輕(毒性)。在圖20A及20B中,EC17亦稱為「銜接子」或「雙特異性銜接子」。 實例28
FITC-CAR-T/EC17 療法在多種 FR+ 腫瘤模型中展示抗腫瘤活性
為測試FITC-CAR-T/EC17療法在多種FR+腫瘤模型中是否具有抗腫瘤活性,將NSG小鼠皮下植入MDA-MB-231 (三陰性乳癌細胞株)、OV90 (人類卵巢癌細胞株)、KB (人類子宮頸腺癌細胞株)、SKOV-3 (人類卵巢癌細胞株)或HEK293-FRa (經人類FRa穩定轉染之HEK293)。當腫瘤尺寸達到100-300 nm3時,藉由尾靜脈注射一劑每公斤體重500 nmol之EC17,4小時後投與500萬FITC-CAR-T細胞。在初始EC17/CAR-T投與後每週給與500 nmol/kg EC17一次(約第7天),每週監測小鼠之腫瘤尺寸及體重三次。在圖中EC17給藥之日標記為綠色虛垂直線。如圖21至25中所示,在EC17不存在下FITC-CAR-T處理未展示任何抗腫瘤活性,而FITC-CAR-T/EC17療法在多種FR+腫瘤異種移植模型中展示EC17依賴性抗腫瘤活性。療法實現MDA-MB-231異種移植小鼠中100%治癒,OV90小鼠中50%治癒及50%疾病穩定,所有KB異種移植小鼠及SKOV3異種移植物小鼠中疾病穩定,及HEK293-FRa模型中疾病進展。亦在所有負載腫瘤之小鼠中觀測到EC17劑量依賴性暫時體重減輕,此表明在此等小鼠中CAR-T之活化為EC17依賴性的。 圖21A及21B中展示MDA-MB-231模型中之FITC-CAR-T抗腫瘤活性。圖22A及22B中展示OV-90模型中之FITC-CAR-T抗腫瘤活性。圖23A及23B中展示KB模型中之FITC-CAR-T抗腫瘤活性。圖24A及24B中展示HEK-FRa模型中之FITC-CAR-T抗腫瘤活性。圖25A及25B中展示SKOV-3模型中之FITC-CAR-T抗腫瘤活性。 實例29
FITC-CAR-T 相關之毒性 ( 例如 SCRS) 可藉由用 EC17 預塗腫瘤來減小
為評估用EC17預塗腫瘤是否可減小療法相關之毒性(例如sCRS),將NSG小鼠植入MDA-MB-231。因為腫瘤負荷愈大,CRS愈嚴重,所以當腫瘤尺寸達到400-500 nm3時開始處理。將小鼠分成兩組且在投與CAR-T之前的不同時間點預先給與500 nmol/kg EC17(圖26A及26B)。組#1在投與800萬CAR-T細胞之前4小時預先給與,而組#2在投與800萬CAR-T細胞之前24小時預先給與。接著在投與CAR-T之後每週靜脈內給與500 nmol/kg EC17一次(在第1天、第8天、第15天等)(圖26D及26E)。雖然兩組中之小鼠顯示類似之EC17依賴性體重減輕,但在投與CAR-T之前4小時預塗EC17之組中的小鼠顯示比投與CAR-T之前24小時預塗EC17之組中的小鼠更糟的sCRS。如圖26C中所示,在4小時預塗組中,在第2週33%小鼠死亡(或由於sCRS而處死),在第3週33%死亡,在第4週17%死亡,且僅僅17%存活超過5週;在24小時預塗組中,在第2週僅僅17%小鼠死亡(或由於sCRS而處死),83%存活超過5週。在此兩個組中未發現抗腫瘤活性之差異,且所有存活小鼠最終均變得無腫瘤。因此,24小時用EC17預塗之小鼠中的毒性小於4小時用EC17預塗之小鼠。 實例30
用 EC17 預塗腫瘤減小毒性 (sCRS)
FITC-CAR-T相關之毒性(例如sCRS)可藉由EC17預塗與在投與CAR-T後延遲EC17給與組合來減小。為探索控制療法相關之毒性的策略,評估EC17預塗與EC17給藥時程優化之組合。將負載MDA-MB-231腫瘤(100-200 mm3)之小鼠分成三組。經由尾靜脈向組#1中之小鼠(未預塗EC17)投與800萬FITC-CAR-T細胞,且接著在投與CAR-T後500 nmol/kg EC17每週以單劑給與(在第2天、第9天、第16天等)。組#2中之小鼠(4小時預塗EC17)在投與800萬CAR-T細胞前4小時用500 nmol/kg EC17預塗,且接著在投與CAR-T後500 nmol/kg EC17每週以單劑給與。組#3中之小鼠(4小時預塗EC17+延遲第二劑EC17)亦在投與800萬CAR-T細胞前4小時用500 nmol/kg EC17預塗,但推遲第二劑之500 nmol/kg EC17,直至投與CAR-T後7天,且接著遵循每週單劑EC17給與之時程。投與CAR-T後三天,藉由目測來評估三組中之小鼠。如圖27A中所示,組#1中之小鼠(未預塗)顯示最糟sCRS,組#2中之小鼠( 4小時預塗之EC17)顯示sCRS但不如組#1中之小鼠嚴重。更重要地,組#3中之小鼠(4小時預塗EC17+延遲第二劑EC17)未展示sCRS。如圖27B中所示,用4小時預塗EC17與延遲第二劑EC17之組合處理的組#3中之小鼠顯示最低程度之體重減輕。EC17給藥時程之變化未影響CAR-T抗腫瘤活性,且所有三組中之小鼠均實現完全反應(圖27C)。 實例31
血液中之 CAR-T 數目在救援後增加
EC17/CAR-T療法策略可經由游離葉酸或游離螢光素進行橋樑置換來控制。為評估FITC-CAR-T療法策略是否可經由橋樑(例如EC17)給與/置換控制,向負載MDA-MB-231腫瘤(100-250 mm3)之NSG小鼠投與過量FITC-CAR-T細胞(800萬)且每週給與500 nmol/kg EC17三次(在投與CAR-T後第1天、第3天、第5天等)。彼等小鼠在一週後顯示sCRS,且分成三組。一組小鼠靜脈內注射10 μmol/kg未結合之葉酸(EC0923),第二組靜脈內注射10 μmol/kg用於「救援」之螢光素胺,而第三組作為對照組未進行處理。接著在注射EC0923或螢光素胺後8小時、12小時、24小時及48小時處死來自三組之小鼠,且分析其血液樣品之CAR-T細胞數目及細胞介素水準。將血液中之CAR-T細胞用經APCeF780(Biolegend)標記之抗人類CD45抗體染色且藉由FACS計數。將CountBright™絕對計數珠粒(ThermoFisher Scientific)混合至樣品中且用作細胞計數之參考。如圖28A-D中所示,用10 μmol/kg EC0923 (未結合之葉酸)及10 μmol/kg螢光素胺(未結合之螢光素)引起血液循環中CAR-T數目增加,此表明一些CAR-T細胞自其標靶腫瘤細胞解離且當橋樑(EC17)經過量未結合之葉酸或螢光素置換時返回至血液循環。早在注射EC0923/螢光素後6小時發現救援小鼠之血液循環中CAR-T細胞數增加,此表明小鼠迅速對置換「救援」作出反應。此外,螢光素似乎比葉酸(EC0923)引起更多CAR-T置換,此與先前所描述之發現相關:用螢光素胺救援減少血液中之細胞介素產生比葉酸更強烈。 實例32
比較三種救援試劑 ( 葉酸、螢光素鈉 (NAFL) 及甲醯四氫葉酸 )
藉由置換CART與腫瘤細胞之間的橋樑EC17,一劑葉酸、螢光素鈉或甲醯四氫葉酸可「救援」處於sCRS下之小鼠。為評估具有FITC-CAR-T療法相關之sCRS的小鼠是否可藉由使用可自FITC-CAR-T或FR+腫瘤細胞置換EC17之競爭者來救援,向負載MDA-MB-231腫瘤(150-250 mm3)之49隻NSG小鼠投與過量FITC-CAR-T細胞(800萬),其中36隻接著在投與CAR-T後48小時給與500 nmol/kg EC17,其中6隻未給與EC17且用作「無EC17」對照,且其中7隻給與260 μmol/kg螢光素鈉(無EC17但有螢光素)以測試其毒性。一天後,當「無EC17」對照組及「無EC17但有螢光素」中之小鼠健康時,給與EC17之小鼠開始顯示sCRS且分成四組。各組靜脈內注射10 μmol/kg甲醯四氫葉酸,或10 μmol/kg葉酸,或260 μmol/kg螢光素鈉,或作為未救援對照未注射任何東西。救援注射後10小時評估彼等小鼠,且發現其具有不同程度之sCRS嚴重度。雖然所有三個救援組均顯示與未救援對照組相比更佳之自sCRS之恢復,但此等救援組中之恢復程度不同。sCRS嚴重度順序為(最差至最小):無救援組>甲醯四氫葉酸救援組>葉酸救援組>螢光素鈉救援組>無EC17組。亦監測作為毒性之指示的小鼠體重變化。如圖29A-E中所示,用螢光素救援之小鼠與其他兩個救援組相比,體重減輕最少。為評估救援注射是否影響FITC-CAR-T細胞之抗腫瘤活性,每週向此等小鼠給與500 nmol/kg EC17兩次(第9天、第11天、第15天、第18天、第22天、第25天等) 且監測腫瘤尺寸。如圖30A及圖30B中所示,除螢光素救援組中9隻小鼠中之2隻在注射CART後第36天仍留有微小腫瘤外,幾乎所有小鼠治癒,此表明單劑救援試劑對FITC-CAR-T之抗腫瘤活性幾乎無作用。 實例33
螢光素鈉救援
展示作為EC17/CAR-T抗腫瘤療法中用於減輕細胞介素釋放症候群之救援劑的螢光素鈉。
材料 :
內部合成EC17(葉酸-FITC,m.w.873)。螢光素鈉(AK-FLUOR
®
,注射螢光素,USP)購自Purdue Pharmacy。
活體內方法 : 細胞株
MDA-MB-231為表現高水準人類FRα之人類三陰性乳癌(TNBC)細胞株。THP1-FRβ為穩定表現人類FRβ之CD33+ CD123+人類急性類骨髓球性白血病細胞株。使用標準細胞培養技術,細胞分別在含有5-10%加熱不活化胎牛血清(HIFCS)之無葉酸之RPMI1640培養基(Gibco BRL)(FFRPMI)中生長,且維持在5% CO
2
氛圍下。
小鼠
雌性NSG
TM
(NOD.Cg-Prkdc
scid
Il2rg
tm1Wjl
/SzJ,儲備#005557)小鼠購自The Jackson Laboratory (Bar Harbor,ME),且當其達到約4週齡時使用。在到達當天小鼠進食缺乏葉酸之飲食(TestDiet,St. Louis,MO)。
腫瘤植入
藉由在NSG小鼠中皮下植入2×10
6
個培養細胞產生MDA-MB-231腫瘤。
CAR-T 細胞製備
如先前所述製備FITC-CAR-T細胞。在活體外培養12-20天之後,將其冷凍於含有50%加熱不活化AB+人類血清、40% T細胞培養基及10% DMSO之冷凍試劑中且儲存於-80℃下。使冷凍CAR-T細胞在37℃下迅速解凍,用PBS洗滌兩次,且用於動物注射。
負載腫瘤之小鼠的 EC17/CAR-T 療法
一般而言,當小鼠腫瘤達到約200-250 mm
3
時,起始EC17/CAR-T療法,且在投與CAR-T之後2天開始每週一次500 nmol/kg EC17劑量。至一天結束(約3-4 PM),給出所有EC17劑量,以允許隔夜顯現細胞介素釋放症候群(CRS)。在第一劑EC17之後,當動物經歷0-5定級量表上3-4級之重度CRS時,投與多種劑量(0.06-60 μmol/kg)螢光素鈉救援(圖31)。收集螢光素鈉救援後多個時間點(3-27小時)之血漿樣品以供多重細胞介素分析。
藉由流動式細胞量測術之全血細胞分析
藉由在3000g下4˚C旋轉10分鐘,自預定體積之經EDTA處理之全血移除血漿,且將所得到之細胞集結粒與10倍體積之室溫1X RBC裂解溶液[由10X原液製備;Biolegend,目錄號420301]一起培育5分鐘,在400g下離心5分鐘,且將細胞集結粒在10倍體積之冰冷磷酸鹽緩衝生理食鹽水pH=7.4中洗滌,且經40 µm耐綸過濾器過濾,且接著再次粒化。接著使白細胞集結粒再懸浮於補充有抗小鼠FcγIII/II受體(CD16/CD32)阻斷[純系2.4G2;BD Bioscience,目錄號553142,1:100 (v/v)稀釋]及抗人類Fc阻斷[BD Biosciences,目錄號564220,1:50 (v/v)稀釋]的流動式細胞量測術之染色溶液[1%牛血清白蛋白、50 mg/mL人類IgG (Equitech Bio,目錄號SLH56-0001)、0.9%疊氮化鈉,於磷酸鹽緩衝生理食鹽水pH=7.4中]中。藉由添加以下螢光染料結合之單株抗體至各樣品,在黑暗中在冰上20分鐘,進行白細胞表面標記物染色:抗人類CD45-APCeF780 [純系HI30,eBioscience #47-0459-42,1:20 (v/v)稀釋]、抗人類CD137-BV650 [純系4B4-1,BD Bioscience #564092,1:20 (v/v)稀釋]、抗人類CD8α-PECy7 [純系RPA-T8,BD Bioscience,目錄號557746,1:20 (v/v)稀釋]、抗人類CD4-Percpe710 [純系SK3,eBioscience目錄號46-0047-42,1:20 (v/v)稀釋]。白細胞染色後,將細胞用PBS洗滌且再懸浮於含有53,000個CountBright
TM
珠粒[Invitrogen目錄號C36950]之冷PBS中且轉移至流動式細胞量測術之收集管。在Gallios流式細胞儀(Beckman Coulter,Brea,CA)上收集流動式細胞量測資料,其中試圖收集最少15,000個CountBright
TM
珠粒事件以收集足夠白細胞事件供準確計數各小鼠血液樣品中輸注之CAR T細胞。根據Invitrogen說明書計算各血液樣品中CAR T細胞之濃度。簡言之,CAR T細胞鑑別為人類CD45+ GFP+事件且容易使用Kaluza
TM
流動式細胞量測軟體區分及計數。CountBright
TM
珠粒統一用用於鑑別CAR T細胞之抗體組中未利用之螢光染料標記且容易與白細胞區分,且計數珠粒事件。因為添加53,000個CountBright
TM
珠粒至各樣品管,所以計算53,000個總珠粒與每個樣品收集之珠粒事件之比率,且設定珠粒比率等於各樣品中未知數目之CAR T細胞除以收集之已知數目之CAR T細胞事件。未知數目之解決得到自已知體積之各血液樣品分離的CAR T細胞數目。接著各輸注小鼠之循環中的CAR T細胞數目以每50 µL分析之全血的CAR T細胞總數目表示在圖上。藉由利用未配對之雙尾學生t檢驗,確定統計顯著性,其中顯著性設定在p<0.05下,以供三組小鼠中之每一組之間進行比較。
製備腫瘤及正常組織之單細胞懸浮液
收穫實體腫瘤(100-1000 mm
3
),稱重,且切碎成小碎片,且接著轉移至含有20 mL腫瘤消化混合物之50 mL管中。酶促腫瘤消化混合物由補充有抗生素之無血清及缺乏葉酸之RPMI1640培養基中0.5 mg/mL IV型膠原蛋白酶(Sigma-Aldrich,目錄號C5138)、0.5 mg/mL玻尿酸酶(Sigma-Aldrich,目錄號H3506)及0.1 mg/mL DNase I (Sigma-Aldrich,目錄號DN25)組成。在水平震盪器上腫瘤片段在37℃下在300 rpm下消化一小時。然後,腫瘤消化物在400×g下離心5分鐘,且腫瘤細胞集結粒進行紅血球溶解步驟,接著用冷磷酸鹽緩衝生理食鹽水(PBS,pH 7.4)洗滌且最後經40 µm耐綸細胞過濾器過濾。
資料與結果 :
如圖31中所示,評估60 μmol/kg單次螢光素鈉救援對活體內細胞介素產生與CAR-T抗腫瘤活性之作用。第0天,將約1040萬FITC-CAR-T細胞靜脈內投與負載MDA-MB-231腫瘤之NSG小鼠。輸注CAR-T細胞後約48小時,小鼠分成3組。第一組(#1)未給與EC17且充當CAR-T細胞對照,第二(#2)及第三(#3)組靜脈內注射單劑EC17(500 nmol/kg)。在EC17劑量後17小時,接受EC17(500 nmol/kg)之組#2及#3中之小鼠顯示sCRS,而CAR-T細胞對照組#1中之小鼠未顯示任何相關毒性。接著組#2接受單一靜脈內螢光素鈉(60 µmol/kg),而組#3未救援。螢光素鈉救援後七小時,用60 μmol/kg螢光素鈉救援之組#2中之小鼠恢復且評分為低級別3 sCRS,而組#3中未救援之小鼠仍具有級別3 sCRS。將來自各組之三隻衛星動物處死以收集血液及器官以供細胞介素分析及器官毒性評估。經由心臟穿刺獲得全血,且收集至含有EDTA之管中。螢光素鈉救援後二十七小時,組#2中用60 μmol/kg螢光素鈉救援之小鼠恢復且sCRS等級減少至級別2,而組#3中未救援之小鼠具有更糟sCRS(級別3-4)。此時,將來自各組之6隻衛星小鼠處死以供血液收集及器官評估。必要時剩餘小鼠每週給與單劑500 nmol/kg EC17,且EC17給與日期在圖36中標記為符號「EC17」後存在之虛垂直線。每週監測腫瘤體積及體重變化2-3次。 如圖36中所示,雖然僅僅CAR-T組中之腫瘤快速生長,但給與500 nmol/kg EC17 SIW之小鼠中的腫瘤保持緩慢生長約一週,且接著開始縮小且最終消失。雖然救援組中之腫瘤開始縮小多花費幾天,但在救援組與未救援組之間未發現腫瘤生長顯著差異。此發現表明一劑60 μmol/kg螢光素鈉不干擾活體內CAR-T抗腫瘤活性。如圖36B中所示,與未救援組中之小鼠相比,救援組中之小鼠似乎體重減輕較少,此表明60 μmol/kg螢光素鈉救援可減小CAR-T療法相關之毒性(顯示為體重減輕較少)。 亦在螢光素鈉救援後7小時及27小時評估來自所有三組之器官且如圖32中所示比較其重量。如圖32A中所示,救援後7小時,來自用CAR-T及EC17處理之小鼠的肺膨脹且比自僅僅CAR-T細胞組中之小鼠收集的肺重。如圖32B中所示,救援後27小時,來自救援組之肺重量減少超過未救援組之肺重量。雖然在救援組與未救援組之間發現肝臟或腎臟中之明顯重量差異,但藉由目檢,救援組中之器官看起來更健康(肝臟及腎臟較少變色,且肺水腫較少)。對於圖32,NaFL救援後27小時,肺水腫得到改善。 亦量測CRS相關之細胞介素水準,以確定救援是否使CAR-T細胞不活化且減少細胞介素產生。使用基於FACS之多分析物流動分析套組(BioLegend)及基於ELISA之細胞介素偵測套組(ThermoFisher Scientific),藉由根據製造商之說明書來量測小鼠血漿樣品中之人類細胞介素水準。圖33A-G顯示救援後7小時之細胞介素水準。對於圖33,在NaFL救援後<7小時,小鼠血液中之細胞介素產生減少。圖34A-G展示救援後27小時之細胞介素水準。對於圖34,在NaFL救援後<7小時,小鼠血液中之細胞介素產生減少。圖35A-E展示細胞介素水準之時間依賴性變化。對於圖35,血液中之細胞介素水準與小鼠總體情況(CRS評分)之間存在延遲。概言之,投與CAR-T細胞但無EC17之小鼠在其血液中具有極低水準之細胞介素,而給與EC17之小鼠在其血液中具有增加之細胞介素水準,包括IL-2、IFN-γ、TNF-α、IL-6、IL-10、GM-CSF及IL-3。更重要地,用60 μmol/kg螢光素鈉救援之小鼠中的細胞介素水準比未救援小鼠中之細胞介素水準低得多(救援後7小時與27小時)。救援後7小時,一些細胞介素(例如IL-2、TNF-α、IL-3、GM-CSF及IL-6)之水準減少至正常範圍,而救援後27小時,其他細胞介素(例如IFN-γ)減少至接近正常範圍。 為評估較低水準之螢光素鈉是否亦可救援處於sCRS下之小鼠,進行相同救援研究,但螢光素鈉劑量為0.06、0.6及6 μmol/kg。如圖50中所示,投與約830萬冷凍CAR-T細胞且用500 nmol/kg EC17劑量誘發sCRS。雖然無救援之小鼠顯示sCRS之嚴重度增加,但用螢光素鈉救援之小鼠顯示劑量依賴性sCRS嚴重度降低(圖50)。概言之,用6 μmol/kg螢光素鈉救援之小鼠恢復最快,而用0.06 μmol/kg螢光素鈉救援之小鼠顯示恢復最慢。 如圖51中所示,雖然用一劑6 μmol/kg螢光素鈉救援不影響EC17/CAR-T細胞療法之抗腫瘤活性(圖51A,腫瘤生長曲線),但救援減小EC17依賴性CAR-T毒性(初始體重減輕較少)(圖51B)。如圖52中所示,小鼠血液中之細胞介素水準亦視用於救援之螢光素鈉之濃度而定,且在關鍵細胞介素(例如IL-2、TNF-α、IFN-γ等)下中值有效劑量為約0.6 μmol/kg,早在救援後3小時開始反應。
血液中之 FITCCAR T 細胞之計數
圖53A中呈現實驗時刻表。第0天,自冷凍保存移出GFP+ FITC-CAR T細胞[純系4M5.3],解凍且接著以每隻小鼠1000萬靜脈內輸注至負載MDA-MB-231腫瘤之NSG小鼠中[腫瘤約250mm
3
]。輸注後約48小時,小鼠分成三組以測試螢光素鈉對活體內CAR T細胞之行為、特別在循環中之作用。第一組充當無EC17/無螢光素對照(圖53B-C)。第二組靜脈內注射單劑EC17 [500 nmol/kg]以產生嚴重細胞介素釋放症候群(sCRS)(圖53B-C,紅色)。第三組(圖53B-C)接受EC17 [500 nmol/kg]以產生sCRS且在約18小時後亦接受單一靜脈內螢光素鈉[60µmol/kg]以抑制CAR T細胞與葉酸受體陽性腫瘤細胞之相互作用。根據方法部分中詳述之方案,在螢光素鈉救援後二十七小時,處死小鼠且經由心臟穿刺獲得全血,且收集至含有EDTA之管中,且接著製備血白細胞以供分析。對人類表面標記物具有特異性之不與小鼠標記物交叉反應的單株抗體用於流動式細胞量測分析。針對抗人類CD45進行染色允許清晰鑑別在輸注CAR T細胞之小鼠之血液中循環的人類T細胞(圖53B,y軸,點陣圖)。另外,成功用CAR慢病毒構築體轉導之輸注之人類T細胞藉由綠色螢光目測,該綠色螢光係由亦存在於CAR慢病毒構築體中之編碼綠色螢光蛋白之cDNA的共表現實現(圖53B,x軸,點陣圖)。因此,藉由閘控人類CD45+ GFP+雙重陽性事件,能夠可靠地將表現FITC-CAR之人類T細胞與未轉導之人類T細胞或小鼠白細胞區分且計數數目(圖53B)。 在輸注至未接受CAR橋樑分子EC17之小鼠對照組中後四天,人類CAR T細胞以高水準存在於小鼠循環中(圖53B,左點陣圖)。有趣地,在接受一劑EC17之小鼠組中,在循環中偵測到極少CAR T細胞,可能因為EC17引導CAR T細胞定位至腫瘤細胞表面上之抗原位點(圖53B,中間點陣圖)。在此處理情況下通常觀測到之CAR T細胞對腫瘤之收縮引起升高水準之包括TNFα及IFNγ之人類發炎性細胞介素產生,在此等動物中引起嚴重CRS。重要地,當給與此等患病動物60 µmol/kg螢光素鈉時,不僅減少sCRS症狀,亦觀測到CAR T細胞在循環中重現(圖53B,右點陣圖)。因此,過量螢光素可介導CAR T細胞自標記葉酸受體陽性腫瘤細胞之EC17 CAR橋樑分子釋放。自腫瘤細胞釋放CAR T細胞後,驅動sCRS之發炎性細胞介素將停止產生,因此拯救負載腫瘤之小鼠避免死亡。 藉由包括4-1BB (CD137)之共刺激表面受體之表現增加目測經由T細胞受體或嵌合抗原受體對T細胞之活化。此4-1BB之表現增加將在T細胞受體或嵌合抗原受體之初始抗原活化後持續若干天。不出人意料,在表徵來自僅僅輸注CAR T細胞之小鼠之血液的循環CAR T細胞時,幾乎未觀測到表面活化標記物4-1BB表現,其在自未接受EC17之動物分離的小於2%輸注之CAR T細胞之表面上表現(圖54)。有趣地,在收穫前之兩天,當量測來自接受CAR T細胞輸注加EC17與螢光素鈉處理之動物的循環CAR T細胞之活化狀態時,循環CAR T細胞表現大量4-1BB,與其近期由腫瘤內之EC17活化相符(圖54)。來自接受CAR T輸注加EC17處理之第二組負載腫瘤之小鼠的循環CAR T細胞可能由於其在循環中之數目極低而無法可靠地分析4-1BB表現(圖53A-C)。 雖然60 µmol/kg螢光素鈉遠低於在人類患者中建立之耐受劑量,但是關於將患者自輸注FITC CAR T細胞及EC17之sCRS中拯救出來的螢光素鈉之最小有效劑量的知識將為適用的。如圖50及圖55A中所示,向輸注CAR-T之動物給與EC17以誘發sCRS且接著一天後分成四個不同組。三組接受0.06、0.6及6 μmol/kg之低劑量之螢光素鈉救援。值得注意地,在此研究中使用之最高螢光素鈉劑量比圖31中給與小鼠之劑量小10倍。來自以上劑量組之動物在螢光素鈉救援後3小時及24小時處死,從而使得血液中之循環CAR-T細胞可計數(圖55B-C)。有趣地,接受0.06-6 μmol/kg螢光素鈉處理之動物中循環CAR T細胞之數目早在救援後3小時增加(圖55B)。此表明螢光素鈉之注射可能將CAR T細胞自其在FR+腫瘤細胞上之標靶置換。重要地,在救援後24小時,CAR T細胞對血液之滲出以螢光素鈉劑量依賴性方式增加(圖55C)。圖53-55中展示之此等觀測結果表明FITC CAR-T細胞之行為及定位可藉由給與低劑量之螢光素鈉在經歷重度CRS之動物中變化至不同程度。 實例34
預先救援不影響 EC17 誘發之 FITC-CAR-T 再活化
為評估救援是否影響FITC-CAR-T功能,向12隻負載MDA-MB-231腫瘤(150-250 mm3)之NSG小鼠投與過量FITC-CAR-T細胞(800萬)。接著在投與CAR-T後48小時向九隻小鼠給與500 nmol/kg EC17,且3隻小鼠不給與EC17且用作「僅僅CAR-T」對照。雖然「僅僅CAR-T」對照組中之小鼠健康,但給與EC17之小鼠在一天後顯示sCRS且分成三組。一組小鼠(CAR-T +EC17+ FA)靜脈內注射10 μmol/kg葉酸,第二組小鼠(CAR-T + EC17 + NaFL)靜脈內注射260 μmol/kg螢光素鈉,而第三組(CAR-T + EC17)不救援。六天後所有小鼠均再追加500 nmol/kg EC17,以使FITC-CAR-T再活化,且在EC17再加打後18小時收集其血液樣品以供血液細胞介素分析。人類細胞介素產生指示CAR-T活化。如圖37A-B中所示,救援小鼠(「CAR-T + EC17 + FA」組及「CAR-T + EC17 + NaFL」組)中之人類細胞介素(例如IFNγ、IL-2)之水準類似於未救援之小鼠(「CAR-T + EC17」組)中。資料表明救援不影響EC17誘發之CAR-T再活化。 實例35
血液中細胞介素產生及體重減輕為 CAR-T 劑量依賴性的
為評估小鼠血液中之細胞介素產生與小鼠中之CAR-T數目相關,向15隻負載MDA-MB-231腫瘤(250-500 mm3)之NSG小鼠給與每公斤體重500 nmol EC17且接著分成三組。四小時後,分別向各組投與200萬、500萬或1250百萬FITC-CAR-T細胞。接著在投與CAR-T後24小時,向三組中之小鼠給與第二劑500 nmol/kg EC17,且48小時後收集其血液樣品(投與時程展示於圖38A中)。如圖38B中所示,投與1250萬個CAR-T細胞之小鼠顯示體重減輕最多,而投與250萬個CAR-T之小鼠顯示體重減輕最少。細胞介素(例如人類IL-2、人類IFNγ、人類TNF α及人類IL-10)之產生與投與之CAR-T細胞之數目相關(圖39A-D)。隨著小鼠中CAR-T細胞增加,細胞介素之產生增加且體重減輕亦增加。 實例36
活體內 FITC-CAR-T 細胞增殖為 EC17 劑量依賴性的
為評估橋樑劑量是否可控制活體內CAR-T增殖,將負載MDA-MB-231腫瘤(250-500 mm3)之NSG小鼠分成4組且分別給與每公斤體重0、5、50或500 nmol之EC17(如圖40A中所示)。四小時後,向四組投與在活體外培養11天之500萬FITC-CAR-T細胞,而一組預先給與500 nmol/kg EC17之小鼠不給與CAR-T細胞且用作「無CAR-T對照」。兩天後,所有五組中之小鼠均給與多種水準之EC17,如圖40B中所指示。雖然「無CAR-T劑量」組中之小鼠幾乎不顯示CRS相關之症候群,但給與500萬CAR-T細胞之小鼠在投與CAR-T後3天顯示EC17劑量依賴性CRS。接著在第二劑EC17後16小時收集血液樣品,且分析血液循環中之CAR-T數目(圖40B)。如圖40B中所示,與給與0 nmol/kg EC17之小鼠相比,給與5 nmol/kg EC17之小鼠在其血液循環中具有較少CAR-T細胞,此可能由於EC17依賴性CAR-T細胞遷移至腫瘤組織,將CAR-T細胞自血液循環移出。重要地,投與相同量之CAR-T細胞但給與50或500 nmol/kg EC17的小鼠在其血液循環中具有更多CAR-T細胞。此發現之解釋為在給與50或500 nmol/kg EC17之小鼠中CAR-T細胞比給與5 nmol/kg EC17之小鼠中增殖更多,從而使得血液循環中之CAR-T數更高。 為進一步證實FITC-CAR-T增殖為EC17劑量依賴性的,當更多時間給與CAR-T以安置且增殖時亦評估活體內CAR-T增殖。出於此目的,預先六天檢查投與CAR-T細胞之小鼠中之CAR-T細胞數目,且給與四劑EC17以增強活體內CAR-T增殖。負載MDA-MB-231腫瘤(250-500 mm3)之NSG小鼠分成4組且分別給與每公斤體重0、5、50或500 nmol EC17(如圖41A中所示)。四小時後,所有小鼠均投與在活體外培養18天之500萬FITC-CAR-T細胞。接著在投與CAR-T後第1天、第3天、第5天給與多種水準之EC17以增強CAR-T增殖。最後一劑EC17後24小時收集小鼠血液樣品,將血液中之CAR-T細胞用抗人類CD45抗體染色且藉由FACS計數。如圖41B中所示,在未給與EC17之小鼠中CAR-T數最低,在5 nmol/kg EC17劑量之小鼠中增加,在給與50 nmol/kg EC17之小鼠中最高,且當EC17劑量為500 nmol/kg時,開始減少,此可能由於EC17過飽和及隨之CAR-T細胞自腫瘤細胞解離。概言之,已在兩個不同時間點觀測到負載MDA-MB-231腫瘤之小鼠中EC17劑量依賴性FITC-CAR-T增殖,此表明控制EC17劑量水準可控制活體內FITC-CAR-T增殖。 實例37
FITC-CAR-T 在未處理小鼠中不增殖且引起毒性
測試未處理小鼠與負載FR+腫瘤異種移植物之小鼠中FITC-CAR-T增殖及相關毒性之評估。為評估活體內FITC-CAR-T增殖是否視橋樑(例如EC17)及腫瘤抗原(例如葉酸受體)之共存而定,比較未處理小鼠及負載FR+腫瘤異種移植物之小鼠中在有或無EC17下的活體內FITC-CAR-T增殖。將500-800萬CAR-T細胞(如圖42及43中所指示)投與(靜脈內)無腫瘤之未處理小鼠及負載FR+腫瘤異種移植物(80-200 mm3)之小鼠。必要時,在投與CAR-T之前4小時給與500 nmol/kg EC17及投與CAR-T之後每週給與三次。監測小鼠之體重變化及血液循環中之CAR-T細胞數;每週亦處死一些小鼠以評估器官。如圖42中所示,未負載腫瘤之未處理小鼠未顯示任何明顯體重減輕(毒性),不管是否給與EC17。另一方面,負載FR+MDA-MB-231腫瘤之小鼠顯示EC17依賴性體重減輕:每週給與EC17三次之小鼠在頭10天具有體重減輕,而未給與EC17之小鼠未具有體重減輕(圖42)。亦比較血液樣品中之CAR-T細胞數以評估CAR-T增殖。如圖43A中所示,FITC-CAR-T在給與500或800萬FITC-CAR-T細胞之未處理小鼠中未增殖,不管是否給與EC17。相反地,當每週給與500 nmol/kg EC17三次時植入FR+HEK-FRa異種移植物之小鼠中的FITC-CAR-T細胞具有快速增殖。因為脾臟尺寸之擴大為活體內CAR-T增殖之另一指示物,所以如圖43B中所示亦量測脾臟尺寸。未負載腫瘤之未處理小鼠未顯示許多脾臟擴大(指示CAR-T無增殖),不管是否給與EC17。另一方面,當每週給與500 nmol/kg EC17三次時負載FR+MDA-MB-231腫瘤之小鼠具有擴大之脾臟。總之,FITC-CAR-T細胞在未處理小鼠中甚至在EC17存在下亦不增殖或引起毒性,但當亦投與EC17時在負載FR+腫瘤之小鼠中迅速增殖。對於圖42,使用MDA-MB-231皮下模型。對於圖43A,使用HEK-FRa皮下異種移植模型。對於圖43B,使用MDA-MB-231皮下模型。 結果顯示FITC-CAR-T在未負載腫瘤之未處理小鼠中無活性。將CAR-T細胞靜脈內注射至未處理小鼠(每隻小鼠800萬)及負載MDA-MB-231腫瘤之小鼠(每隻小鼠500萬)中。需要時每週投與500 nmol/kg EC17三次(圖標籤中所示)。一週後,將小鼠血液樣品收集在塗佈EDTA之管中且在3000g下在4℃下離心15分鐘,且分離血漿且儲存於-20℃下,直至分析。 使用LEGENDplex人類細胞介素組套組(BioLegend,San Diego,CA),根據製造商之說明書來量測包括IFN之細胞介素水準。將血漿樣品用分析緩衝液稀釋,且接著與經針對所分析之細胞介素之抗體固定的捕捉珠粒混合。在室溫下在震盪下培育2小時後,添加所分析之細胞介素的生物素化偵測抗體且在室溫下在震盪下再培育一小時。接著添加藻紅素(PE)標記之抗生蛋白鏈菌素以與偵測抗體上之生物素結合,且FACS用於讀取結合複合物(捕捉抗體-細胞介素-偵測抗體)上之PE信號。PE強度與所分析之細胞介素之水準成比例。同時量測具有已知濃度之一系列細胞介素溶液,且用作標準來定量所分析樣品中之細胞介素水準。 如圖44中所示,細胞介素產生(CAR-T活性)視腫瘤之存在而定。即使當每週給與小鼠500 nmol/kg EC17三次時,未處理小鼠中CAR-T細胞亦無活性。 實例38
橋樑分子之表徵
為檢驗橋樑分子結合CAR T細胞上之抗螢光素scFv之能力,發展一種競爭性結合分析。可能由於螢光與表現GFP之CAR T細胞之螢光重疊而無法量測來自CAR T細胞結合之強樑的螢光素信號。出於此目的,使FITC-Alexa647 (10 nM)在過量(1 μM)競爭配位體(亦即FITC-葉酸、FITC-DUPA、FITC-CA9)缺乏或存在下在室溫下結合抗螢光素CAR T細胞1小時。培育後,將抗螢光素CAR T細胞用PBS洗滌3次以移除未結合之FITC-Alexa647,且藉由流動式細胞量測術分析洗滌細胞之Alexa647螢光。 所有測試之橋樑分子(亦即FITC-葉酸、FITC-DUPA、FITC-CA9)均能夠結合於表現CAR之T細胞,如藉由橋樑能夠競爭性地阻斷FITC-Alexa 647與工程改造T細胞之結合所確定(圖45)。 實例39
在活體外在添加抗原匹配之橋樑時通用 CAR T 細胞可消除表現正交抗原之多種癌細胞
將各人類癌細胞株以10
4
個細胞/100μl培養基之密度接種至96孔盤中且生長隔夜。在缺乏或存在橋樑分子下將抗螢光素CAR T細胞添加至各孔。共同培育6-24小時之後,盤在350×g下離心10分鐘以移除碎片且使用PierceTM LDH細胞毒性分析套組(Thermo Fisher Scientific,MA)分析上清液之乳酸脫氫酶釋放(細胞死亡分析)且使用人類IFNγ ELISA套組(Biolegend,CA)分析干擾素γ (IFNγ)水準。 為評估抗螢光素CAR T細胞之特異性及通用性,將抗螢光素CAR T細胞分別與表現FR、PSMA、CA9或NK1R之HEK細胞一起在橋樑分子存在或缺乏下共同培育。如圖46圖A中所示,當存在抗原匹配之橋樑分子時抗螢光素CAR T細胞可消除標靶HEK細胞。進一步用表現葉酸受體(KB、MDA-MB-231及OVCAR3)、PSMA (LNCaP及22RV1)或CA9 (HT29、SK-RC-52、A549及SKOV3)之多種人類癌細胞株評估抗螢光素CAR T細胞與多個橋樑分子之通用性(圖46B)。溶解對所測試之橋樑及表現橋樑腫瘤配位體之受體之對應腫瘤具有特異性。 實例40
橋樑分子之濃度與通用 CAR T 細胞之抗腫瘤活性之間的關係
將各人類癌細胞株以10
4
個細胞/100μl培養基之密度接種至96孔盤中且生長隔夜。在缺乏或存在橋樑分子下將抗螢光素CAR T細胞添加至各孔。共同培育6-24小時之後,盤在350×g下離心10分鐘以移除碎片且使用PierceTM LDH細胞毒性分析套組(Thermo Fisher Scientific,MA)分析上清液之乳酸脫氫酶釋放(細胞死亡分析)且使用人類IFNγ ELISA套組(Biolegend,CA)分析干擾素γ (IFNγ)水準。 如圖47中所示,所有橋樑分子行為類似。當橋樑濃度增加時,CAR T細胞抗腫瘤活性亦增加。然而,若添加更高濃度之橋樑分子,則CAR T細胞抗腫瘤活性減小(亦即鐘形劑量反應)。此結果係因為當添加更高濃度之橋樑分子時,橋樑分子無法在CAR T細胞與癌細胞之間形成橋樑,因為更高濃度之橋樑分子可分別使CAR T細胞及癌細胞上之兩種受體飽和。 實例41
在活體內在添加抗原匹配之橋樑分子時通用 CAR T 細胞可消除表現正交抗原之多種癌細胞
藉由使用慢病毒基因遞送系統產生表現正交抗原之MDA-MB-231之多個純系。將免疫缺陷NSG小鼠(Jackson Laboratory,ME)皮下植入表現葉酸受體、PSMA或CA9之MDA-MB-231細胞每一者且當腫瘤尺寸達到約100 mm3時靜脈內注射CAR T細胞及接著橋樑分子(亦即FITC-葉酸、FITC-DUPA或FITC-CA9)。每隔一天用測徑規量測腫瘤,且根據以下等式計算腫瘤體積:腫瘤體積=½(L×W2),其中L為腫瘤之最長軸線且W為垂直於L之軸線。 為評估各橋樑是否可誘發抗螢光素CAR T細胞之抗腫瘤活性,產生表現葉酸受體、PSMA或CA9之MDA-MB-231之多個純系。如圖48中所示,當注射抗原匹配之橋樑時抗螢光素CAR T細胞可消除表現正交抗原之腫瘤細胞。總之,此等資料說明單一抗螢光素CAR T細胞可藉由注射抗原匹配之橋樑至標靶抗原來消除多個腫瘤。 實例42
在活體內 ( 兩種分離之腫瘤模型 ) 通用 CAR T 細胞可經由橋樑分子之混合物消除兩種腫瘤
為評估橋樑分子之混合物是否可消除表現正交抗原之兩種腫瘤,建立兩個不同腫瘤模型。作為第一腫瘤模型,PSMA+ MDA-MB-231及CA9+ MDA-MB-231中之每一者植入NSG小鼠中兩個不同位置(亦即右側腹:CA9+ MDA-MB-231,左側腹:PSMA+ MDA-MB-231)。對於第二腫瘤模型,將PSMA+ MDA-MB-231與CA9+ MDA-MB-231以1:1比率預先混合且植入一個位置。如圖49之圖A及B中所示,當注射兩個橋樑(亦即FITC-PSMA與FITC-CA9之混合物)時可實現表現PSMA或CA9之兩種腫瘤細胞完全消除。然而,若僅僅輸注橋樑中之一者(亦即單獨FITC-DUPA或單獨FITC-CA9),則表現不匹配抗原(亦即PSMA或CA9)之腫瘤連續生長。總之,此等資料說明抗螢光素CAR T細胞可藉由利用橋樑分子之混合物克服腫瘤異質性。 在兩種腫瘤細胞預先混合(亦即50% PSMA+ MDA-MB-231及50% CA9+ MDA-MB-231)後將PSMA+ MDA-MB-231及CA9+ MDA-MB-231植入NSG小鼠(Jackson Laboratory,ME)中兩個不同位置(亦即右側腹:PSMA+ MDA-MB-231,左側腹:CA9+ MDA-MB-231)或一個位置。當腫瘤尺寸達到約100 mm3時,注射抗螢光素CAR T細胞(8×10
6
)加FITC-DUPA、FITC-CA9或兩者。每隔一天用測徑規量測腫瘤,且根據以下等式計算腫瘤體積:腫瘤體積=½(L×W2),其中L為腫瘤之最長軸線且W為垂直於L之軸線。結果展示於圖49A及49B中。
合成橋樑分子 FITC- 葉酸
在無水二甲基甲醯胺(DMF)中,在四甲基胍及二異丙胺存在下,使葉酸-γ-乙二胺與異硫氰酸螢光素(FITC)異構體I (Sigma-Aldrich)偶合。將粗產物負載至Xterra RP18製備型HPLC管柱(Waters)上且用以99% 5 mM磷酸鈉(移動相A,pH 7.4)及1%乙腈(移動相B)開始且在20 mL/min之流速下在10分鐘內達到90% A及10% B之梯度條件溶離。在此等條件下,FITC-葉酸主峰通常在27-50分鐘溶離。FITC-葉酸溶離份之品質藉由分析型逆相HPLC與UV偵測器監測。將純度超過98.0% (LCMS)之溶離份凍乾以獲得最終FITC-葉酸產物。
FITC-DUPA
藉由如下固相方法合成DUPA−FITC。通用NovaTag樹脂(50 mg,0.53 mM)用二氯甲烷(DCM) (3 mL)、接著二甲基甲醯胺(DMF,3 mL)溶脹。將20%哌啶於DMF中之溶液(3×3 mL)添加至樹脂,且氬氣鼓泡5分鐘。用DMF (3×3 mL)及異丙醇 (i-PrOH,3×3 mL)洗滌樹脂。樹脂在DMF中溶脹之後,添加DUPA-(OtBu)-OH (1.5當量)、HATU (2.5當量)及DIPEA (4.0當量)於DMF中之溶液。氬氣鼓泡2小時,且用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌樹脂。樹脂在DCM中溶脹之後,添加1 M HOBt於DCM/三氟乙烷(TFE) (1:1) (2 × 3 mL)中之溶液。氬氣鼓泡1小時,移除溶劑,且將樹脂用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌。樹脂在DMF中溶脹之後,添加Fmoc-Phe-OH (2.5當量)、HATU (2.5當量)及DIPEA (4.0當量)於DMF中之溶液。氬氣鼓泡2小時,且用DMF (3×3 mL)及i-PrOH (3×3 mL)洗滌樹脂。重複以上順序進行更多2個偶合步驟,以添加8-胺基辛酸及異硫氰酸螢光素或異硫氰酸若丹明B。使用三氟乙酸(TFA):H
2
O:三異丙基矽烷混合物(95:2.5:2.5)自樹脂裂解最終化合物且在真空下濃縮。濃縮產物在乙醚中沈澱且在真空中乾燥。使用製備型RP-HPLC [λ = 488 nm;溶劑梯度:25分鐘內1% B至80% B,80% B洗滌30分鐘操作;A = 10 mM NH
4
OAc,pH = 7;B = 乙腈(ACN)]純化粗產物。在真空下移除ACN,且冷凍乾燥純溶離份,得到呈淡褐色-橙色固體狀之DUPA−FITC。RP-HPLC:tR = 8.0 min (A = 10 mM NH4OAc,pH = 7.0;B = ACN,溶劑梯度:10分鐘內1% B至50% B,80% B洗滌15分鐘操作)。1H NMR (DMSO-d6/D2O): δ 0.98-1.27 (ms,9H);1.45 (b,3H);1.68-1.85 (ms,11H);2.03 (m,8H);2.6-3.44 (ms,12H);3.82 (b,2H);4.35 (m,1H);6.53 (d,J = 8.1 Hz,2H),6.61 (dd,J = 5.3,3.5 Hz,2H);6.64 (s,2H);7.05 (d,J = 8.2 Hz,2H),7.19 (m,5H);7.76 (d,J = 8.0 Hz,1H);8.38 (s,1H)。HRMS (ESI) (m/z): (M + H)+ C51H59N7O15S之計算值,1040.3712,實驗值,1040.3702。UV/vis: λ max = 491 nm。
FITC-CA9
在50 mL圓底燒瓶中,使用特氟隆磁性攪拌棒使CA9配位體(53.6 mg,實驗室合成)溶解於N,N-二甲基甲醯胺(DMF) (2-3 mL)中。使用真空移除周圍空氣且用氮氣替換,此循環三次。接著圓底燒瓶保持在恆定氮氣下。向燒瓶先後添加28.9 mg N-(3-二甲基胺基丙基)-N'-乙基碳化二亞胺鹽酸鹽(EDC)及21.6 mg 1-羥基苯并三唑水合物(HOBt)及18.9 μL Boc-PEG2-NH2 (購自Sigma Aldrich)。最後添加5.4 μL三乙胺(TEA)且攪拌反應隔夜。使用HPLC純化反應混合物且用UHPLC-MS (目標m/z 831)證實。使用高真空旋轉蒸發移除乙腈且置於凍乾器上48小時。用1:1 TFA:DCM脫除保護基Boc,歷時30分鐘。使用高真空旋轉蒸發移除TFA/DCM,接著高真空30分鐘。接著化合物溶解於DMF中且與5莫耳當量之N,N-二異丙基乙胺(DIPEA)組合。將16 mg異硫氰酸螢光素(購自Life Technologies)添加至溶液且攪拌1小時。藉由HPLC純化反應混合物且用UHPLC-MS證實標靶化合物(標靶m/z 1120)。將樣品置於凍乾器上48小時且將化合物儲存於-20℃下。
FITC-NK1R
在室溫下在氬氣下向攪拌之NK-1 (0.02 g,0.0433 mmol,1.0當量)、O-(2-胺基乙基)-O'-[2-(Boc-胺基)乙基]十乙二醇(BocNH-PEG11-NH2) (Sigma,0.0336 g,0.0521 mmol,1.2當量)、六氟磷酸苯并三唑-1-基-氧基三吡咯啶基鏻(PyBOP) (0.027 g,0.0521 mmol,1.2當量)於無水CH
2
Cl
2
中之溶液中添加N,N-二異丙基乙胺(DIPEA) (0.076 mL,0.4338 mmol,10當量)。藉由LCMS監測反應進展且藉由製備型RP-HPLC (Waters,XBridgeTM Prep C18,5 μm;19 × 100 mm管柱,移動相A = 20 mM乙酸銨緩衝液,pH 7,B = 乙腈,梯度30分鐘內10-100% B,13 mL/min,λ = 220 nm,254 nm)純化。收集純溶離份,蒸發所有有機溶劑,且樣品凍乾48小時,得到NK1-PEG11-NHBoc。產率:40.13 mg (97%)。向含NK1-PEG11-NHBoc (0.0165 g,0.015 mmol)之無水CH2Cl2添加三氟乙酸(TFA,20當量)且在室溫下攪拌反應混合物4小時。移除過量TFA,用水稀釋,且使用CH2Cl2(3×5 mL)萃取。經合併之有機層用鹽水洗滌,乾燥(Na2SO4)且濃縮。在真空下乾燥所得殘餘物且未經進一步純化即用於下一步驟。在室溫下在氬氣下將經攪拌的NK1-PEG11-NH2(0.008 g,0.0081 mmol,1.0當量)、異硫氰酸螢光素(FITC) (Sigma,0.0037 g,0.0097 mmol,1.2當量)於無水二甲基甲醯胺(DMSO,0.3 mL)中之溶液添加至二異丙基乙胺(0.0028 mL,0.0162 mmol,2.0當量)。藉由LCMS監測反應進展且藉由製備型RP-HPLC (Waters,XBridgeTM Prep C18,5 μm;19 × 100 mm管柱,移動相A = 20 mM乙酸銨緩衝液,pH 7,B = 乙腈,梯度30分鐘內10-100% B,13 mL/min,λ = 280 nm)純化。收集純溶離份,蒸發所有有機溶劑,且樣品凍乾48小時,得到NK1-PEG11-FITC(5)。產率:8.54 mg (77%)。 藉由兩步程序,自鹼配位體開始合成NK-1化合物,鹼配位體藉由使用文獻程序製備。(參考文獻:DESIGN AND DEVELOPMENT OF NEUROKININ-1 RECEPTOR-BINDING AGENT DELIVERY CONJUGATES,申請案號:PCT/US2015/44229;以全文引用的方式併入本文中)。 實例43
用橋樑分子控制件細胞介素風暴
展示使用低分子量橋樑分子調控CAR T細胞介導之細胞介素釋放症候群之強度。描述用於消除毒性及有時致死性細胞介素釋放症候群,同時提高CAR T細胞治療功效之四種新穎策略。
細胞株及 T 細胞
將葉酸受體陽性細胞株(例如KB及MDA-MB-231)維持於5% CO
2
中37℃下含有10%加熱不活化胎牛血清及1%青黴素-鏈黴素之無葉酸之RPMI 1640 (Gibco,Ireland)中。藉由對來自健康志願者之新鮮人類血液(IRB#: 1702018875)進行Ficoll密度梯度離心(GE Healthcare Lifesciences,USA),分離外周血單核細胞(PBMC)。使用EasySep™人類T細胞分離套組(STEM CELL technologies,Canada)自PBMC分離純CD3
+
T細胞且接著在含有1%青黴素及鏈黴素硫酸鹽之TexMACS
TM
培養基(Miltenyi Biotech Inc,CA)中在人類IL-2 (100IU/ml,Miltenyi Biotech Inc,CA)存在下培養。劃分T細胞且以上培養基每2-3天改變。
編碼抗螢光素 CAR 基因之慢病毒載體的產生
重疊PCR方法用於產生含有針對螢光素之單鏈片段可變區(scFv)之CAR構築體。自人類抗螢光素抗體4M5.3 (Kd = 270 fM,762bp)之親和力優化序列合成scFv之編碼序列(GeneScript,NJ) [21]。藉由重疊PCR,將編碼人類CD8α信號肽(SP,63bp)、CD8α之鉸鏈區及跨膜區(249bp)、4-1BB之細胞質域(CD137,141bp)及CD3ζ鏈之細胞質域(336bp) (購自GeneScript)的序列與抗螢光素scFv融合。將所得CAR構築體(1551 bp)插入至EcoRI/NotI裂解之慢病毒表現載體pCDH-EF1-MCS-(PGK-GFP) (System Biosciences,CA)中且使用PureLink Hipure質體中量提取套組(Invitrogen,CA)擴增/純化。藉由DNA測序(Purdue Genomic Core Facility,IN)證實慢病毒載體中CAR構築體之序列。
慢病毒及人類 T 細胞轉導之產生
為製備含有抗螢光素(scFv) CAR之慢病毒,將293TN包裝細胞株與編碼抗螢光素scFv CAR之慢病毒載體及第二代包裝質體混合物(Cellecta,CA)共轉染。在轉染24小時及48小時後,收穫含有編碼CAR基因之慢病毒的上清液且使用標準聚乙二醇病毒濃縮方法(Clontech,CA)濃縮病毒粒子。
用表現 CAR 之慢病毒轉導人類 T 細胞
在人類IL-2 (100 IU/ml)存在下使用與抗CD3/CD28抗體(Life Technologies,CA)偶合之Dynabeads活化分離之T細胞(參見上文)12-24小時,且接著用以上提及之編碼GFP與抗螢光素CAR之慢病毒轉導[50]轉導72小時之後,藉由流動式細胞量測術分析T細胞之GFP螢光以確定轉導效率。
橋樑與 CAR T 及癌細胞受體之結合
如先前所描述合成螢光素-葉酸(FITC-葉酸)及螢光素-PSMA (FITC-DUPA)。為檢驗此等橋樑分子結合CAR T細胞上之抗螢光素scFv之能力,必須發展一種競爭性結合分析,因為可能由於螢光與表現GFP之CAR T細胞之螢光重疊而無法量測來自CAR T細胞結合之強樑的螢光素信號。出於此目的,使FITC-Alexa647 (10 nM)在過量(1 μM)競爭配位體(亦即FITC-葉酸)缺乏或存在下在室溫下結合抗螢光素CAR T細胞1小時。培育後,將抗螢光素CAR T細胞用PBS洗滌3次以移除未結合之FITC-Alexa647,且藉由流動式細胞量測術分析洗滌細胞之Alexa647螢光。為分析FITC-葉酸與葉酸受體之結合,將FR陽性KB細胞與FITC-葉酸(100 nM)一起在過量(10 μM)游離葉酸(亦即作為競爭性配位體)缺乏或存在下培育。在用PBS洗滌樣品(3次)之後,藉由流動式細胞量測術分析樣品之螢光素-葉酸結合。
對活體外抗螢光素 CAR T 細胞之抗腫瘤活性的分析
將FR陽性癌細胞株(例如KB或MDA-MB-231細胞)以10
4
個細胞/100μl培養基之密度接種至96孔盤中且生長隔夜。在缺乏或存在橋樑分子下將抗螢光素CAR T細胞添加至各孔。共同培育6-24小時之後,盤在350×g下離心10分鐘以移除碎片且使用Pierce
TM
LDH細胞毒性分析套組(Thermo Fisher Scientific,MA)分析上清液之乳酸脫氫酶釋放(細胞死亡分析)且使用人類IFNγ ELISA套組(Biolegend,CA)分析干擾素γ (IFNγ)水準,同時藉由用抗人類CD69 APC(純系:FN50,Biolegend,CA)染色評估集結粒之CAR T細胞活化,或藉由在含有1%青黴素及鏈黴素硫酸鹽之TexMACS
TM
培養基(Miltenyi Biotech Inc,CA)中培養5天且使用內在GFP螢光及用抗人類CD3 APC抗體(純系:HIT3a,Biolegend,CA)染色,藉由流動式細胞量測術定量來檢查CAR T細胞增殖。
對活體內抗螢光素 CAR T 細胞之抗腫瘤活性的分析
將免疫缺陷NSG小鼠(Jackson Laboratory)皮下植入MDA-MB-231細胞且當腫瘤尺寸達到約100 mm
3
時靜脈內注射CAR T細胞及接著螢光素-葉酸(如所指示)。小鼠維持缺乏葉酸之飲食(TD.95247,Envigo),以降低小鼠中葉酸之水準至在人類中發現之生理水準。每隔一天用測徑規量測腫瘤,且根據以下等式計算腫瘤體積:腫瘤體積=½(L×W2),其中L為腫瘤之最長軸線且W為垂直於L之軸線。亦收集小鼠血液以使用基於LEGENDplex珠粒之免疫分析(Biolegend,CA)量測細胞介素水準(例如IL-2、IL-6、IFNɣ及TNFα)且藉由量測體重減輕來監測全身毒性。所有動物護理及使用遵循美國國家衛生研究院(NIH)指南且所有實驗方案均經普渡動物護理與使用委員會(Purdue Animal Care and Use Committee)批准。
統計分析
GraphPad Prism版本7軟體(Graphpad,CA)用於產生所有圖及統計分析。除非另外指出,否則所有報導之圖均意謂±s.e.m值。ANOVA用於多重比較。
抗螢光素 CAR 之構築及表徵及其與螢光素 - 葉酸橋樑分子之相互作用
圖63A展示螢光素-葉酸橋樑(FITC-葉酸)之結構。在結構左側上存在維生素葉酸,選擇其為一種代表性腫瘤靶向配位體,因為其受體(葉酸受體α,FRα)在約40%人類上皮腫瘤上過度表現,但在正常組織中基本上不存在或不可接近。右側上位螢光素,選擇其為CAR接合配位體,因為文獻中已描述對螢光素具有飛莫耳濃度親和力之人類抗螢光素抗體。圖63B概述用於引導細胞毒性CAR T細胞殺死癌細胞之CAR (SEQ ID NO: 1及2)的構築。使來自以上提及之抗體的抗螢光素scFv與先前經工程改造以含有CD137(4-1BB)之胞內域的T細胞受體之CD3ζ鏈融合。將此CAR構築體插入至慢病毒載體[pCDH-EF1-MCS-(PGK-GFP)]中允許以50-60%效率轉導預活化之人類T細胞,如對GFP (與CAR共同轉導之螢光標記物)呈陽性之T細胞染色部分所示(圖63C)。圖63D進一步表明表現CAR之T細胞結合螢光素-葉酸,如螢光素-葉酸能夠競爭性地阻斷FITC-Alexa 647與經工程改造之T細胞的結合所確定。在能夠產生所建立之抗螢光素CAR T細胞下,藉由評估螢光素-葉酸橋樑分子介導培養之腫瘤細胞之CAR T細胞消除的能力檢查經工程改造之T細胞的殺s死效力。如圖64A中所示,發現螢光素-葉酸結合於FR陽性KB細胞(子宮頸癌細胞株),如以下所證明:i)在添加螢光素-葉酸時KB細胞螢光變化,及ii)在與過量游離葉酸競爭時阻斷此變化。接著藉由證明KB細胞在橋樑存在下溶解但在橋樑不存在下不溶解來說明CAR T細胞介導之KB細胞殺死。因此,如圖64B中所示,當存在CAR T細胞與螢光素-葉酸兩者時觀測到癌細胞溶解,但當螢光素-葉酸不存在(PBS)時或當存在螢光素-DUPA(橋接前列腺癌細胞但未橋接KB細胞之橋樑分子)時不溶解。此外,在多個效應:標靶細胞比率下抗螢光素CAR T細胞能夠根除KB細胞,但再次僅僅在存在螢光素-葉酸時(圖64C)。對同時IFNγ之產生的分析進一步證明抗螢光素CAR T細胞之腫瘤破壞活性僅僅由添加恰當螢光素-葉酸橋樑觸發(圖64D),且相關實驗確定抗螢光素CAR T細胞增殖與CAR T細胞活化亦視恰當橋樑之添加而定(圖64圖E及F)。綜合而言,此等資料證明抗螢光素CAR T細胞功能密切地視恰當腫瘤特異性橋樑介導CAR T細胞與所需癌細胞之接合的可用性而定。
對促進細胞介素釋放症候群 (CRS) 之條件的鑑別
為研究橋樑給與之持續時間、濃度或頻率的操控是否可用於控制CRS,首先需要鑑別可再現地發生容易量測之CRS的條件。在研究大量人類腫瘤異種移植模型之後,發現植入FR陽性MDA-MB-231細胞(人類三陰性乳癌細胞株)之NSG小鼠在投與抗螢光素CAR T細胞加螢光素-葉酸後可靠地顯示強CRS。因此,如圖65A中所示,在負載腫瘤之小鼠中在注射5×10
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個CAR T細胞加500奈莫耳/公斤螢光素-葉酸4天內觀測到體重減輕約8%;亦即指示存在CRS。相比之下,在類似負載腫瘤之小鼠中在注射CAR T細胞後在缺乏螢光素-葉酸下未觀測到體重減輕;亦即,與以上提及之證明CAR T細胞活化需要橋樑的資料相符。值得注目地,用相同抗螢光素CAR T細胞處理之無腫瘤小鼠中未偵測到體重減輕,無論橋樑存在還是缺乏。此等後面資料證實即使在CAR T細胞及螢光素-葉酸橋樑存在下,CAR T細胞活化及隨之體重減輕亦可能無法發生,除非暴露螢光素之細胞(亦即經螢光素裝飾之MDA-MB-231細胞)可由CAR T細胞接合。因為健康組織中之FR表現主要限於腎臟中近端小管細胞之頂表面(其中FR無法接近免疫細胞),所以預期在無腫瘤小鼠中幾乎無CAR T細胞活化。為進一步確定CRS之強度視與癌細胞成功形成細胞毒性突觸之CAR T細胞之數目而定,確定體重減輕及IFNγ釋放視CAR T細胞數目而定。如圖65B中所示,投與單獨橋樑不促進體重減輕。類似地,在缺乏橋樑下注射10×10
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CAR T細胞不刺激體重減少;亦即證實癌細胞之接合為全身性細胞毒性所需。雖然注射2×10
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個CAR T細胞加500奈莫耳/公斤橋樑亦未誘發明顯體重減輕,但是輸注5×10
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或10×10
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個CAR T細胞加相同橋樑劑量促進逐漸增大之體重減輕。IFNγ釋放之同時分析表明可能由CRS引起之此等體重遞減,IFNγ釋放之分析亦顯示對CAR T細胞數目及橋樑之存在的靈敏依賴性。綜合而言,此等資料表明對於誘發CAR T細胞活化及相關CRS,必須存在CAR T細胞與橋樑。
快速終止預先存在之細胞介素釋放症候群的策略
在所有經CAR T細胞處理之ALL患者中的92%經歷CRS的情況下,出現控制CAR T細胞與其癌細胞標靶接合之能力是否可用於在其完全活化後終止CRS的問題。為研究此可能性,首先檢查中斷螢光素-葉酸投與是否可能促進CRS之停止。如圖66A中所示,用15×10
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個抗螢光素CAR T細胞單次處理負載MDA-MB-231腫瘤之小鼠接著隔日投與500奈莫耳/公斤螢光素-葉酸促進快速及連續之體重減輕,引起至療法第8天需要處死三隻小鼠。相比之下,省去在第4天及第6天給與螢光素-葉酸之經相同處理之小鼠(但其隨後接受連續隔日給與)僅僅顯示中等體重減輕,其快速恢復。在各小鼠血漿中量測之IFNγ水準的相關變化證明此體重減輕可能與相同小鼠中細胞介素產生之水準相關(圖66B)。更重要地,隔日給與之暫時中斷不僅未能損害抗腫瘤活性,實際上增強CAR T細胞效力。因此,如圖66C中所示,雖然未經處理或連續處理之小鼠顯示腫瘤生長快速增加,暴露於中斷橋樑給藥之小鼠展示其腫瘤完全緩解。此等資料表明預先建立之CRS可藉由暫時中斷橋樑給與來控制,不破壞CAR T細胞細胞毒性。實現橋樑給與之暫時中斷可引起CRS減少,接著想知道添加與螢光素-葉酸競爭將CAR T細胞橋連至癌細胞之配位體是否可能促進CRS更強力之減少。出於此目的,如上所述起始CRS,且雖然持續橋樑之通常隔日給與,但僅僅在第4天及第6天投與100倍過量之游離葉酸以終止CRS。如圖67A中所示,注射過量葉酸迅速防止在不間斷給與橋樑下觀測到的連續體重減輕。此外,如圖66中所見,此與給與銜接子之競爭不僅降低經處理小鼠中IFNγ之水準(圖67B),且亦增強CAR T細胞療法之治療效力(圖67C)。此等資料表明暫時投與良性競爭配位體(亦即維生素葉酸)可終止CRS,不會顯著地損害腫瘤療法。雖然每當CAR T細胞療法利用螢光素-葉酸介導CAR T與癌細胞之間的橋連時葉酸可用於控制CRS,但是亦檢驗螢光素阻斷CRS之能力似乎為明智的,因為其應證明適用於控制與任何螢光素連接之腫瘤特異性橋樑相關的CRS。因此,如上所述,在負載MDA-MB-231腫瘤之小鼠中誘發CRS,且藉由在CRS第3天投與游離螢光素嘗試中斷其。雖然注射競爭螢光素誘發CRS減少與治療功效增加,但其比在游離葉酸下所見更迅速。因此,如圖67D中所示,所有CRS相關之細胞介素在投與螢光素3小時內下降,其中在此短時間跨度內IL-2、TNF-α及IL-6減少>50%。雖然IFNγ在3小時未顯示血漿濃度下降,但其顯示至注射螢光素後6小時減少,此表明其產生亦受螢光素之添加抑制。重要地,至6小時時間點,IL-2、TNF-α及IL-6之血漿濃度均減少至幾乎背景水準。
預防 CRS 出現且不損害抗腫瘤活性之策略
雖然高度升高及長期CRS常常可導致患者死亡,但一定程度之CRS視為合意的,因為未顯示CRS跡象之患者通常觀測不到對CAR T細胞療法起反應。因此出現優化橋樑或CAR T細胞給藥條件是否可使CRS最小化同時不損失抗腫瘤活性的問題。為研究此可能性,首先在活體外檢查橋樑劑量對腫瘤細胞溶解及IFNγ釋放之作用。出於此目的,將抗螢光素CAR T細胞添加至MDA-MB-231細胞培養物,接著用濃度在0.001至100,000 nM範圍內之螢光素-葉酸處理。如圖68A及68B中所示,低於0.01 nM之橋樑劑量對腫瘤細胞溶解幾乎無作用且對IFNγ產生僅僅最小作用。相比之下,略微更高濃度之螢光素-葉酸對兩個參數產生強力影響,而更高劑量之橋樑促進細胞介素釋放與MDA-MB-231細胞殺死之減少。基於橋樑之機制,可預測過度橋樑濃度應使CAR T細胞及癌細胞上之所有位點單價飽和,且藉此阻斷二價的橋樑之細胞間橋連功能。 為評估活體內相同橋樑濃度依賴性,將MDA-MB-231細胞皮下植入NSG小鼠中且再次藉由監測腫瘤生長及細胞介素釋放來檢查螢光素-葉酸劑量之作用。不幸地,如先前在圖66中所見,無論橋樑劑量如何,連續隔日給與均產生預期毒性CRS,使得省去第4天及第6天投與橋樑。然而,即使在此改變下,亦可對橋樑濃度之作用進行分析,揭露類似於活體外觀測到之鐘形依賴性;亦即血漿IFNγ初始增加,接著隨著橋樑劑量升高,其血漿濃度減少(圖66C)。重要地,腫瘤細胞收縮亦顯示類似鐘形劑量反應,其中500奈莫耳/公斤展示完全腫瘤根除且較低與較高濃度均顯示效能降低(圖66D)。此等觀測結果證實CAR T細胞與癌細胞之間的最大橋連將僅僅發生在中等橋樑濃度下,其中存在足以使橋樑形成達到最大之橋樑,但尚未投與過量橋樑來促進橋連功能之自體競爭。 在現確定能夠利用橋樑劑量控制CAR T細胞活化下,決定研究是否可鑑別可預防毒性CRS出現同時不損害抗腫瘤效力的治療活性橋樑給藥方案。基於當CAR T細胞過於突然活化時CRS變得最嚴重的假設,選擇測試兩種較小侵襲性之橋樑給藥方案,其可更緩地誘發CAR T細胞活化。對於第一種方案,在銜接子之各連續投與期間螢光素-葉酸濃度自0.5奈莫耳/公斤不斷增加至500奈莫耳/公斤。如圖69A中所示,橋樑濃度之此緩慢遞增僅僅引起暫時體重減輕,在無任何介入下此體重減輕在4天內消除。相比之下,在經15×10
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個CAR T細胞預處理之相同小鼠中連續給與500奈莫耳/公斤引起顯著及連續體重減輕,迫使最終處死小鼠。更重要地,逐漸劑量遞增方案完全治癒負載腫瘤之小鼠,而連續毒性給藥時程幾乎未提供治療益處(圖69B)。此等資料強烈地說明抗腫瘤活性可與CRS分開且較慢CAR T細胞活化實際上可增強腫瘤破壞活性,同時減少CRS。 檢查降低橋樑給與頻率之影響,希望引入CAR T細胞活化之間的更長時間間隔可允許一定程度上放鬆CAR T細胞,且藉此減少通常由慢性抗原暴露引起之任何耗盡。如圖69C中所示,每週三劑橋樑引起顯著動物體重減輕,而每週兩劑橋樑引起較小毒性且每週單次螢光素-葉酸注射未引起體重減輕。如許多預先研究中所見,抗腫瘤活性隨著CRS減少而增加;亦即,當每週僅僅投與一劑橋樑時完全治癒。 實例44
使用 AML 模型之研究
展示葉酸受體-β陽性急性類骨髓球性白血病模型中之EC17/CAR-T療法。
材料 :
內部合成EC17(葉酸-FITC,m.w.873)。螢光素鈉(AK-FLUOR
®
,注射螢光素,USP)購自Purdue Pharmacy。 活體內方法:
細胞株
THP-1為來源於患有急性單核細胞性白血病(一類急性類骨髓球性白血病(AML))之患者的人類單核細胞株。THP-1-FRβ為經人類FRβ穩定轉染之THP-1之GFP陽性次純系。使用標準細胞培養技術,細胞在含有10%加熱不活化胎牛血清(HIFCS)及抗生素之無葉酸之RPMI1640培養基(Gibco BRL)(FFRPMI)中生長,且維持在5% CO
2
氛圍下。
小鼠
雌性NSG
TM
(NOD.Cg-Prkdc
scid
Il2rg
tm1Wjl
/SzJ,儲備#005557)小鼠購自The Jackson Laboratory (Bar Harbor,ME),且當其達到約4週齡時使用。在到達當天小鼠進食缺乏葉酸之飲食(TestDiet,St. Louis,MO)。
腫瘤植入
藉由在9隻NSG小鼠中靜脈內植入每隻動物5×10
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個培養細胞產生THP-1-FRβ腫瘤。
負載腫瘤之小鼠的 EC17/CAR-T 療法
在腫瘤植入後11天開始,將約830萬GFP+ 4M5.3 CAR-T細胞靜脈內輸注至各小鼠中。小鼠分成3組(n=3):(1)單獨CAR-T細胞,(2) CAR-T細胞與每週給與EC17 500 nmol/kg,及(3) CAR-T細胞與每週給與EC17 500 nmol/kg加螢光素鈉救援(需要時)。在CAR-T細胞投與後兩天給與第一EC17劑量。至一天結束(約3-4 PM),給出所有EC17劑量,以允許隔夜顯現細胞介素釋放症候群(CRS)。在第一EC17劑量後的次日上午,組2及3中之所有6隻小鼠顯示CRS級別為約3之CRS發作,接著僅僅組3投與6 μmol/kg螢光素鈉。在有及無螢光素鈉救援下的所有給與EC17之小鼠在隨後數天內完全恢復。在組3中針對其他EC17給與未給出其他螢光素鈉救援。對小鼠稱重且監測健康徵象及疾病發展。當動物顯示嚴重痛苦/瀕死行為時出於比較目的,處死動物。在處死後,針對腫瘤塊之存在,所有小鼠均接受肉眼檢查。切除所有可見腫瘤塊,計數且稱重。收集血液、腫瘤癌轉移(met)及正常相鄰組織以供相同天之流動式細胞量測分析。
藉由流動式細胞量測術之全血細胞分析
藉由在3000×g下4˚C旋轉10分鐘,自預定體積之經EDTA處理之全血移除血漿,且將所得到之細胞集結粒與10倍體積之室溫1X RBC裂解溶液[由10X原液製備;Biolegend,目錄號420301]一起培育5分鐘,在400×g下離心5分鐘。將細胞集結粒在10倍體積之冰冷磷酸鹽緩衝生理食鹽水(PBS,pH=7.4)中洗滌,且經40 µm耐綸過濾器過濾,接著再次粒化。接著使白細胞集結粒再懸浮於補充有抗小鼠FcγIII/II受體(CD16/CD32)阻斷[純系2.4G2;BD Bioscience,目錄號553142,1:100 (v/v)稀釋]及抗人類Fc阻斷[BD Biosciences,目錄號564220,1:50 (v/v)稀釋]的流動式細胞量測術之染色溶液[1%牛血清白蛋白、50 mg/mL人類IgG (Equitech Bio,目錄號SLH56-0001)、0.9%疊氮化鈉,於PBS pH=7.4中]中。藉由添加以下螢光染料結合之單株抗體至各樣品,在黑暗中在冰上20分鐘,進行表面標記物染色:抗人類CD45-APCeF780 (純系HI30,eBioscience #47-0459-42,1:20 (v/v)稀釋)、抗人類CD3-BV650 (純系SK7,BD Bioscience,目錄號563999,1:20 (v/v)稀釋)、抗人類CD137-BV650 (純系4B4-1,BD Bioscience #564092,1:20 (v/v)稀釋)、抗人類CD8α-PECy7 (純系RPA-T8,BD Bioscience,目錄號557746,1:20 (v/v)稀釋)、抗人類CD4-Percpe710 (純系SK3,eBioscience目錄號46-0047-42,1:20 (v/v)稀釋)、抗人類CD25-PE (純系M-A251,BD Bioscience,目錄號555432,1:10 (v/v)稀釋)、抗人類CD33-PE (純系WM53,BD Bioscience,目錄號555450,1:5 (v/v)稀釋)、抗人類CD123-AF647 (純系9F5,BD Bioscience,目錄號563599,1:20 (v/v)稀釋)。生物素化抗人類葉酸受體-((純系m909)由Purdue University之Low lab (
Arthritis Res Ther.
2011;13(2):R59)惠贈,且使用抗生蛋白鏈菌素-eFluor660 (eBioscience,目錄號50-4317,1:1000 (v/v)稀釋)偵測。葉酸結合解釋為功能葉酸受體之量度,且藉由與內部合成之Alexa Fluor結合之葉酸一起培育來確定。白細胞染色後,將細胞用PBS洗滌且再懸浮於含有3 µM碘化丙錠之冷PBS中。在Gallios流式細胞儀(Beckman Coulter,Brea,CA)上收集流動式細胞量測資料,其中試圖收集最少15,000個CountBright
TM
珠粒事件以收集足夠白細胞事件供準確計數各小鼠血液樣品中輸注之CAR T細胞。根據Invitrogen說明書計算各血液樣品中CAR T細胞之濃度。簡言之,CAR T細胞鑑別為人類CD45+ GFP+事件且容易使用Kaluza
TM
流動式細胞量測軟體版本1.5區分及計數。CountBright
TM
珠粒統一用用於鑑別CAR T細胞之抗體組中未利用之螢光染料標記且容易與白細胞區分,且計數珠粒事件。因為添加53,000個CountBright
TM
珠粒至各樣品管,所以計算53,000個總珠粒與每個樣品收集之珠粒事件之比率,且設定珠粒比率等於各樣品中未知數目之CAR T細胞除以收集之已知數目之CAR T細胞事件。未知數目之解決得到自已知體積之各血液樣品分離的CAR T細胞數目。接著各輸注小鼠之循環中的CAR T細胞數目以每50 µL分析之全血的CAR T細胞總數目表示在圖上。購買人類外周血單核細胞且用於染色白細胞表面標記物之對照(人類PBMC,Stem Cell Technologies,目錄號70025.22)。藉由利用未配對之雙尾學生t檢驗,確定統計顯著性,其中顯著性設定在p<0.05下,以供三組小鼠中之每一組之間進行比較。
製備腫瘤及相鄰健康組織之單細胞懸浮液
收穫實體腫瘤及無腫瘤之相鄰組織,稱重,且切碎成小碎片,接著轉移至含有20 mL腫瘤消化混合物之50 mL管中。酶促腫瘤消化混合物由補充有抗生素之無血清及缺乏葉酸之RPMI1640培養基中0.5 mg/mL IV型膠原蛋白酶(Sigma-Aldrich,目錄號C5138)、0.5 mg/mL玻尿酸酶(Sigma-Aldrich,目錄號H3506)及0.1 mg/mL DNase I (Sigma-Aldrich,目錄號DN25)組成。在水平震盪器上腫瘤片段在37℃下在300 rpm下消化一小時。然後,腫瘤消化物在400×g下離心5分鐘,且腫瘤細胞集結粒與10倍體積之室溫1X RBC裂解溶液[由10X原液製備;Biolegend,目錄號420301]一起培育5分鐘,在400 g下離心5分鐘,且細胞集結粒在10倍體積之冰冷磷酸鹽緩衝生理食鹽水pH 7.4中洗滌且經40 µm耐綸過濾器過濾,接著再次粒化。如先前上文所描述,藉由流動式細胞量測術分析腫瘤細胞。
總腫瘤負荷之肉眼檢查
發現第1組中之所有3隻CAR-T細胞對照動物(#1、#2、#3)在腫瘤植入後第45天(PTI 45)(亦即投與CAR-T細胞後34天)浮腫。處死兩隻對照動物且第三隻在即將處死前死亡。處死第2組中之一隻動物(#5)且充當第1組之同一天比較物。在腫瘤植入後第58天(PTI 58)(亦即投與CAR-T後46天),處死第2組中之剩餘兩隻動物(#4及#6)(#4在前一天預先給與EC17)。亦收集第3組中之所有3隻動物(#7、#9及#10)(#7及#10在前一天預先給與EC17)。如圖56中所示,在僅僅CAR-T細胞之對照組中發現多種尺寸(卵巢中大)及位置(除了肺)之轉移性腫瘤塊。在收集同一天,僅僅在來自第2組之經EC17處理之動物(#5)中鑑別微小腫瘤結節。圖57概述所有檢查組中腫瘤塊及總腫瘤重量之估計數目。一般而言,與無論螢光素鈉救援之經EC17處理之組中的動物相比,CAR-T細胞對照組1中之小鼠具有最可見之腫瘤塊及更高總腫瘤負荷。除第3組中之一隻動物(#10)外,6隻經EC17處理之小鼠(+/-一次螢光素鈉救援)中的五隻在收集時具有最小腫瘤負荷。此等初步結果顯示EC17控制之CAR-T療法對此AML腫瘤模型高度有效。
循環腫瘤細胞之表徵
在所有患者之約90%-95%中,分析循環AML且顯示特徵性表面標記物表現CD33及CD123。為測試FITC特異性4M5.3 CAR T細胞在此侵襲性AML模型中之抗白血病活性,利用經FRβ穩定轉染之THP-1細胞且稱為THP-1-FRβ。因此,測試活體外THP-1-FRβ細胞株且顯示此等細胞亦表現CD33及CD123表面表現(圖58A,左點陣圖),此表明AML表型。未染色之THP-1-FRβ細胞及新鮮人類PBMC充當閘控及陽性對照,給與在針對此等標記物之分析中的信心(圖58A,中間及右點陣圖)。當THP-1-FRβ細胞靜脈內注射至NSG小鼠中時,容易藉由GFP螢光區別人類白血病細胞與血液中之小鼠白細胞,且觀測到保留AML標記物CD33及CD123之表面表現(圖58B)。另外,藉由用Alexa Fluor 647標記之葉酸進行陽性表面染色,證實活體內循環腫瘤細胞上穩定FRβ表現(圖59A)。如藉由使用抗人類FRβ抗體進行流動式細胞量測術染色所見,THP-1-FRβ腫瘤細胞亦在自肝臟及卵巢中分離之實體腫瘤癌轉移中繼續表現FRβ(圖59B)。
EC17 引導之 CAR T 細胞的抗白血病活性
為確定是否可引導CAR T細胞來降低負載THP-1-FRβ細胞之NSG小鼠的白血病負荷,在輸注CAR-T後第34天,比較自滿足處死標準之第1組中接受單獨CAR T細胞之動物之血液分離的GFP+腫瘤細胞與第2組中接受CAR T細胞加EC17(500 nmol/kg;SIW)4週之動物的GFP+腫瘤細胞(圖60)。顯然,無EC17處理之對照動物中存在高白血病負荷,因為總白細胞之約23%為GFP+白血病細胞(圖60A及圖60B,條形圖)。然而,在輸注CAR T細胞且給與EC17之動物中,觀測到顯著CAR T細胞活性,因為血液中GFP+白血病細胞變得幾乎不可偵測(圖60B)。此外,觀測到之CAR T細胞之抗白血病活性在動物中保持長達輸注CAR T細胞後47天,因為血液中THP1-FRβ細胞仍不可偵測(圖60B)。
輸注後血源性 CAR T 細胞之持久性
藉由流動式細胞量測分析計數在輸注CAR T細胞後第34天及第47天(研究結束)自小鼠收集之全血樣品中的GFP+ CD3+ CAR T事件,量測循環中FITC-CAR T細胞之數目(圖61A)。在未接受任何EC17之對照小鼠中經4M5.3構築體轉導之人類CAR T細胞保持長至輸注後34天,此表明負載THP-1-FRβ腫瘤之NSG小鼠能夠維持人類T細胞之存活力。在輸注CAR-T細胞之每週接受EC17的負載THP1-FRβ之小鼠中,CAR T細胞在血液中顯著持續長達輸注後47天,數目在每100 µL血液3800至300,000個CAR T細胞範圍內(圖61A),與對照動物無明顯差異。有趣地,自每週接受EC17注射之小鼠分離的CAR T細胞表型主要為中樞記憶/效應記憶表型(圖61B),而來自未接受EC17之小鼠的CAR T細胞仍具有效應T細胞表型(圖61B)。具有記憶表型之CAR T細胞為T細胞療法需要之特性,因為記憶T細胞能夠進一步細胞分裂,得到未來效應T細胞以供殺死癌細胞。
CAR T 細胞侷限於轉移性腫瘤病變中,而非相鄰健康組織
雖然通常在患者之血液及骨髓中發現AML腫瘤細胞,但有時AML細胞可在體內任何地方形成實體腫瘤。NSG小鼠中之THP-1-FRβ腫瘤模型類似於血液中具有腫瘤細胞及諸如卵巢、肝臟、小腸、腦及胃之正常組織中具有轉移性實體腫瘤病變的AML。因為EC17/CAR-T處理顯著減小總腫瘤負荷(圖56及圖57),所以想要評估在經EC17處理之動物中發現之殘餘腫瘤內CAR T細胞之存在且研究相對於同一動物中之相鄰正常組織,CAR T細胞對腫瘤之偏好(圖62)。接受CAR-T細胞輸注加5劑每週一次EC17 (500 nmol/kg)之兩隻動物在輸注T細胞後47天處死。在幾個正常器官(例如胃黏膜、心臟、肝臟及十二指腸)中發現殘餘腫瘤。對消化樣品使用流動式細胞量測術,分析可見實體腫瘤中CAR T細胞之存在且將CAR-T細胞浸潤與發現腫瘤之相同動物之相鄰健康組織比較。在一隻動物(小鼠#4)中,在胃及心臟中發現之腫瘤中CAR T細胞以更高數目存在(圖62A),但健康相鄰組織中不存在(圖62A)。在十二指腸內發現腫瘤之另一動物(小鼠#10)中亦看到類似資料,然而,肝臟腫瘤轉移與健康肝臟組織之間的CAR T細胞數目之差異不大。 嘗試量測腫瘤內CAR T細胞之任何活性,亦針對活性標記物CD25染色CAR T細胞之表面。有趣地,看到腫瘤中CAR T細胞上之CD25之水準更高,但在自相鄰健康組織分離之CAR T細胞上未看到(圖62B)。綜合而言(圖62A及62B),此等資料表明CAR T細胞可跟隨白血病細胞至健康組織中且在腫瘤形成之轉移位點侵蝕其,且在輸注後47天仍具活性。重要地,小鼠#10係在第一劑EC17後接受sCRS之螢光素鈉救援的第3組中。雖然螢光素鈉給與此動物,但血液與腫瘤中CAR T細胞仍保持,此表明CAR T細胞功能保留且此等CAR-T細胞可藉由EC17針對FR陽性腫瘤標靶再活化。 實例45
EC17 劑量遞減週期可降低毒性
研究EC17劑量遞減對CAR-T療法之抗腫瘤活性及毒性(體重變化)的作用。將850萬冷凍抗FITC CAR-T細胞解凍且靜脈內注射至負載皮下MDA-MB-231腫瘤(100-200 mm3)之小鼠中。在注射CAR-T後2天投與500 nmol/kg EC17且在小鼠中引起sCRS。彼等小鼠成功地用6 μmol/kg NaFL救援,且接著分成兩組。第一組每週給與500 nmol/kg EC17一次(SIW),而第二組給與兩個EC17遞增週期。各週期持續2週(14天)。各週期中之給藥時程包括第1天5 nmol/kg EC17、第3天50 nmol/kg EC17、第5天500 nmol/kg EC17。中斷9天後,開始第二遞增週期。遞增組與SIW組之給藥時程展示於圖70A中。每週監測腫瘤尺寸及體重2-3次。兩組顯示類似之對CAR-T療法之反應(圖70B),而遞增組之體重減輕比EC17 SIW組小得多(圖70C)。資料表明EC17劑量遞減可降低毒性,同時維持CAR-T細胞療法之抗腫瘤活性。 實例46
CAR-T 及 EC17 療法相關毒性與腫瘤尺寸相關
為研究CAR-T療法相關毒性是否視腫瘤負荷而定,NSG小鼠皮下植入MDA-MB-231。選擇十隻具有在150-900 mm
3
之間的範圍內的不同腫瘤尺寸之小鼠用於此研究。對於CAR-T細胞,靜脈內注射1050萬GFP+ FITC-CAR-T細胞,接著48小時後投與500 nmol/kg EC17(圖71A)。在注射CAR-T之前與投與EC17後18小時之間比較體重小鼠。如圖71B中所示,體重變化顯示為腫瘤尺寸依賴性的。腫瘤負荷愈高,在CAR-T及EC17處理後小鼠喪失更多體重。投與EC17後十八小時,小鼠顯示2級細胞介素釋放症候群且藉由心臟穿刺收集其血液樣品。立刻分離血漿樣品,且儲存於-20℃下,直至使用人類細胞介素偵測套組(Biolegend)分析細胞介素水準。如圖71C中所示,IL-6之產生顯示為腫瘤尺寸依賴性的。腫瘤負荷愈高,在CAR-T及EC17處理後產生IL-6愈多。已廣泛報導IL-6為具有液體腫瘤之人類患者中在用習知CAR-T療法治療時嚴重細胞介素釋放症候群之預測性生物標記物。此等資料表明在CAR-T及EC17療法中,負載實體腫瘤之小鼠中的CRS嚴重度亦與腫瘤負荷相關。 實例47
在侵襲性骨肉瘤模型中 EC17 控制之抗 FITC CAR T 細胞療法的評估 材料
內部合成EC17(葉酸-FITC,m.w.873)。螢光素鈉(AK-FLUOR
®
,注射螢光素,USP)購自Purdue Pharmacy。
活體內方法 細胞株
HOS-143b為購自ATCC(CRL-8303)之細胞株,其源自患有骨肉瘤之13歲白人女孩。HOS-FRα為經人類FRα穩定轉染之HOS-143b之次純系。使用標準細胞培養技術,細胞在含有5-10%加熱不活化胎牛血清(HIFCS)之無葉酸之RPMI1640培養基(Gibco BRL)(FFRPMI)中生長,且維持在5% CO
2
氛圍下。
小鼠
雌性NSG
TM
(NOD.Cg-Prkdc
scid
Il2rg
tm1Wjl
/SzJ,儲備#005557)小鼠購自The Jackson Laboratory (Bar Harbor,ME),且當其達到約4週齡時使用。在到達當天小鼠進食缺乏葉酸之飲食(TestDiet,St. Louis,MO)。
腫瘤植入
HOS-FRα以每隻動物5×10
5
皮下植入6隻動物中。
CAR-T 細胞製備
如先前所描述製備GFP+抗FITC 4M5.3 scFv-CAR T細胞。在活體外培養12-20天之後,將其冷凍於含有50%加熱不活化AB+人類血清、40% T細胞培養基及10% DMSO之冷凍試劑中且儲存於-80℃下。使冷凍CAR-T細胞在37℃下迅速解凍,用PBS洗滌兩次,且用於動物注射。
負載腫瘤之小鼠中的 EC17/CAR-T 療法
如圖72A中所示,在腫瘤植入後6天,所有動物均靜脈內接受1050萬CAR T細胞(第0天)。兩天後,將動物分成兩組(對於此研究,n=3)且不接受EC17處理或一週靜脈內給與500 nmol/kg EC17一次(SIW),共4-5劑。EC17處理組中之一隻動物在第40天及第42天再接受兩劑50及100 nmol/kg之EC17。至一天結束(約3-4 PM),給出所有EC17劑量,以允許隔夜顯現細胞介素釋放症候群(CRS)。根據需要進行0.6 μmol/kg螢光素鈉救援。僅僅最後給與EC17之動物在第47天接受螢光素鈉。
藉由流動式細胞量測術之全血細胞分析
藉由在3000g下4˚C旋轉10分鐘,自預定體積之經EDTA處理之全血移除血漿,且將所得到之細胞集結粒與10倍體積之室溫1X RBC裂解溶液[由10X原液製備;Biolegend,目錄號420301]一起培育5分鐘,在400g下離心5分鐘,且將細胞集結粒在10倍體積之冰冷磷酸鹽緩衝生理食鹽水pH=7.4中洗滌,且經40 µm耐綸過濾器過濾,且接著再次粒化。接著使白細胞集結粒再懸浮於補充有抗小鼠FcγIII/II受體(CD16/CD32)阻斷[純系2.4G2;BD Bioscience,目錄號553142,1:100 (v/v)稀釋]及抗人類Fc阻斷[BD Biosciences,目錄號564220,1:50 (v/v)稀釋]的流動式細胞量測術之染色溶液[1%牛血清白蛋白、50 mg/mL人類IgG (Equitech Bio,目錄號SLH56-0001)、0.9%疊氮化鈉,於磷酸鹽緩衝生理食鹽水pH=7.4中]中。藉由添加以下螢光染料結合之單株抗體至各樣品,在黑暗中在冰上20分鐘,進行白細胞表面標記物染色:抗人類CD45-APCeF780 [純系HI30,eBioscience #47-0459-42,1:20 (v/v)稀釋]、抗人類CD137-BV650 [純系4B4-1,BD Bioscience #564092,1:20 (v/v)稀釋]、抗人類CD8α-PECy7 [純系RPA-T8,BD Bioscience,目錄號557746,1:20 (v/v)稀釋]、抗人類CD4-Percpe710 [純系SK3,eBioscience目錄號46-0047-42,1:20 (v/v)稀釋]。白細胞染色後,將細胞用PBS洗滌且再懸浮於含有53,000個CountBright
TM
珠粒[Invitrogen目錄號C36950]之冷PBS中且轉移至流動式細胞測量術之收集管。在Gallios流式細胞儀(Beckman Coulter,Brea,CA)上收集流動式細胞量測資料,其中試圖收集最少15,000個CountBright
TM
珠粒事件以收集足夠白細胞事件供準確計數各小鼠血液樣品中輸注之CAR T細胞。根據Invitrogen說明書計算各血液樣品中CAR T細胞之濃度。簡言之,CAR T細胞鑑別為人類CD45+ GFP+事件且容易使用Kaluza
TM
流動式細胞量測軟體區分及計數。CountBright
TM
珠粒統一用用於鑑別CAR T細胞之抗體組中未利用之螢光染料標記且容易與白細胞區分,且計數珠粒事件。因為添加53,000個CountBright
TM
珠粒至各樣品管,所以計算53,000個總珠粒與每個樣品收集之珠粒事件之比率,且設定珠粒比率等於各樣品中未知數目之CAR T細胞除以收集之已知數目之CAR T細胞事件。未知數目之解決得到自已知體積之各血液樣品分離的CAR T細胞數目。接著各輸注小鼠之循環中的CAR T細胞數目以每50 µL分析之全血的CAR T細胞總數目表示在圖上。
製備腫瘤及健康組織之單細胞懸浮液
對於在第47天處死之動物,收穫血液、正常組織(肝臟、脾臟及骨髓)及實體腫瘤,且切碎成小碎片,接著轉移至含有20 mL腫瘤消化混合物之50 mL管中。酶促腫瘤消化混合物由補充有抗生素之無血清及缺乏葉酸之RPMI1640培養基中0.5 mg/mL IV型膠原蛋白酶(Sigma-Aldrich,目錄號C5138)、0.5 mg/mL玻尿酸酶(Sigma-Aldrich,目錄號H3506)及0.1 mg/mL DNase I (Sigma-Aldrich,目錄號DN25)組成。在水平震盪器上腫瘤片段在37℃下在300 rpm下消化一小時。然後,腫瘤消化物在400×g下離心5分鐘,且腫瘤細胞集結粒與10倍體積之室溫1X RBC裂解溶液[由10X原液製備;Biolegend,目錄號420301]一起培育5分鐘,在400 g下離心5分鐘,且細胞集結粒在10倍體積之冰冷磷酸鹽緩衝生理食鹽水pH 7.4中洗滌且經40 µm耐綸過濾器過濾,且接著再次粒化。藉由用抗人類FRα[純系LK26,Biolegend目錄號908304,1:20(v/v)稀釋]染色來量測腫瘤細胞之FRα表現。如先前上文所描述,藉由流動式細胞量測術分析腫瘤細胞。
資料與結果
研究方案展示於圖72A中。EC17處理組中之第一隻負載HOS-FRα腫瘤之動物接受4劑每週一次500 nmol/kg EC17,但在第28天由於神經問題而處死。相同組中之第二隻動物接受5劑每週一次500 nmol/kg EC17,但發現在第34天死亡。相同組中之最後一隻動物接受5劑每週一次500 nmol/kg EC17加第40天及第42天分別50及100 nmol/kg之兩劑額外EC17。在第47天給與此動物螢光素鈉,且在第53天處死。所有動物在投與CAR-T細胞後約5週均出現GVHD。 對各個別動物之腫瘤體積(圖72B)及體重變化(圖73)繪圖。實線表示僅僅接受CAR-T細胞之負載HOS-FRα腫瘤之小鼠。短劃線表示如上所述接受CAR-T細胞及EC17處理的負載HOS-FRα腫瘤之小鼠。EC17給與日期標記為加點垂直線。每週監測腫瘤體積及體重變化2-3次。雖然在無明顯原因下在第45天發現一隻僅僅CAR-T組之動物死亡,但所有3隻CAR-T細胞對照動物之腫瘤一旦建立,則迅速生長(圖72B,實線)。相比之下,給與500 nmol/kg EC17 SIW之所有3隻小鼠中的腫瘤在第28天及第33天開始縮小(圖72B。短劃線)。雖然在EC17處理組中在第28天及第34天2隻動物失去,但相同處理組中之最後一隻動物具有更長之延遲腫瘤生長且對額外低劑量EC17處理作出反應。此等動物之體重變化(圖73)表明一旦EC17處理之動物中腫瘤達到>200 mm
3
,則CRS嚴重。CRS與嚴重GVHD聯合可能為在此等動物中觀測到之毒性及死亡之原因。 在第47天收穫之最後一隻動物中進行流動式細胞量測分析。如圖74A-F中所示,HOS癌細胞鑑別為對抗人類FRα[純系LK26]染色呈陽性。在測試之正常組織中無法偵測到HOS-FRα癌細胞且僅僅在皮下實體腫瘤中可偵測到。另外,此等資料證實在活體內在EC17/CAR-T處理後FRα在HOS-FRα腫瘤細胞上繼續表面表現。 實例48
螢光素鈉 (NAFL) 救援可減少與嚴重細胞介素釋放症候群出現相關的宿主 MCP-1 、 IL-6 及 IL-10 之產生
已報導高水準之MCP-1、IL-6及IL-10預測多種液體腫瘤在CAR-T細胞療法後之細胞介素釋放症候群(CRS)。此等細胞介素之產生不僅針對人類CAR-T細胞進行,且亦針對包括單核球、巨噬細胞及樹突狀細胞之宿主免疫細胞進行。亦已報導此等細胞介素參與異常巨噬細胞活化且驅動用CAR-T細胞治療之患者中CRS之出現。已證明此等細胞介素(例如IL-6及MCP-1)之減少可有效地管理CAR-T療法中之CRS。雖然NSG小鼠具有免疫缺陷,但小鼠樹突狀細胞及巨噬細胞仍具有部分功能。為評估CAR-T/EC17療法是否可誘發NSG小鼠中此等宿主細胞介素之產生,以及研究NaFL救援是否可減少此等宿主小鼠細胞介素之產生,使用負載MDA-MB-231腫瘤之NSG小鼠。 在該研究之第一部分中(圖75),小鼠用EC17及FITC-CAR-T細胞處理。當小鼠開始顯示sCRS時,注射一劑量60 μmol/kg NaFL用於救援。接著在NaFL救援後7小時與27小時收集小鼠血液樣品。使用來自BioLegend之小鼠炎症組套組(目錄號740446),藉由根據製造商之說明書,分析血液中之小鼠細胞介素水準。圖76A-E顯示救援後7小時之細胞介素水準。圖77A-C展示救援後27小時之細胞介素水準。概言之,投與CAR-T但無EC17之小鼠在其血液中具有極低水準之小鼠細胞介素,而給與EC17之小鼠在其血液中具有增加之小鼠細胞介素水準,包括MCP-1、IL-6、IL-10、IFN-β及TNF-α。更重要地,用60 μmol/kg螢光素鈉救援之小鼠中的小鼠細胞介素水準比未救援小鼠中之細胞介素水準低得多(救援後7小時與27小時)。 在該研究之第二部分中,測試一系列濃度NaFL之救援效率(圖78)。如圖79-81中所示,血液中之小鼠細胞介素水準亦視用於救援之螢光素鈉之濃度而定,且在測試之細胞介素(例如MCP-1、IL-6及IL-10)下中值有效劑量為約0.6 μmol/kg,且小鼠早在救援後3小時開始反應。 總之,CAR-T/EC17療法可誘發小鼠細胞介素產生升高,且一劑NaFL救援可減少此等CRS相關之小鼠細胞介素的產生且改善小鼠之總體狀況。 實例49
小鼠中之小鼠 MCP-1 產生與 CAR-T 細胞數目相關
單核細胞趨化蛋白1 (MCP-1)為對單核球/巨噬細胞具有趨化性之趨化分子。已報導高水準之MCP-1為包括急性淋巴母細胞白血病之多種液體腫瘤在CAR-T細胞療法後之細胞介素釋放症候群的預測生物標記物。雖然NSG小鼠具有免疫缺陷,但樹突狀細胞及巨噬細胞之功能雖有缺陷但未全部消除。為評估CAR-T/EC17療法是否可誘發NSG小鼠中小鼠MCP-1之產生,及研究小鼠MCP-1之產生是否與小鼠中之CAR-T數目相關,將負載MDA-MB-231腫瘤(250-500 mm
3
)之NSG小鼠分成三組且投與每公斤體重500 nmol之EC17及不同量之CAR-T細胞(分別200萬、500萬或1250萬),如圖82A中所示。在第二劑EC17之後兩天,收集小鼠血液樣品,且使用來自BioLegend之小鼠炎症組套組分析血液中小鼠MCP-1之產生(目錄號740446)。如圖82B中所示,發現小鼠MCP-1與投與之CAR-T細胞數目相關。總之,隨著CAR-T細胞之增加,小鼠MCP-1之產生亦增加,主要因為活性人類CAR-T細胞釋放高水準人類細胞介素。