UA57876C2 - Спосіб виділення шуканого аналіту з складу речовини і пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню - Google Patents

Спосіб виділення шуканого аналіту з складу речовини і пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню Download PDF

Info

Publication number
UA57876C2
UA57876C2 UA2001117935A UA2001117935A UA57876C2 UA 57876 C2 UA57876 C2 UA 57876C2 UA 2001117935 A UA2001117935 A UA 2001117935A UA 2001117935 A UA2001117935 A UA 2001117935A UA 57876 C2 UA57876 C2 UA 57876C2
Authority
UA
Ukraine
Prior art keywords
binding
phage
immobilized
analyte
binding partners
Prior art date
Application number
UA2001117935A
Other languages
English (en)
Russian (ru)
Inventor
Девід Кленерман
Віктор Пєтровіч Останін
Фьодор Ніколаєвіч Дульцев
Original Assignee
Акубайо Лімітед
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Акубайо Лімітед filed Critical Акубайо Лімітед
Publication of UA57876C2 publication Critical patent/UA57876C2/uk

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54373Apparatus specially adapted for solid-phase testing involving physiochemical end-point determination, e.g. wave-guides, FETS, gratings
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54373Apparatus specially adapted for solid-phase testing involving physiochemical end-point determination, e.g. wave-guides, FETS, gratings
    • G01N33/5438Electrodes
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/808Optical sensing apparatus
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/805Optical property

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Ultrasonic Waves (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Sampling And Sample Adjustment (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)

Abstract

Спосіб виділення шуканого аналіту зі складу речовини містить етапи, на яких (і) приводять в контакт партнерів по скріпленню, один з яких іммобілізований на поверхні, (іі) надають поверхні коливального руху із зростаючою амплітудою і (ііі) реєструють явище дисоціації. Пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню по відношенню один до одного містить поверхню, на якій іммобілізований один з партнерів по скріпленню, засіб збудження коливального руху поверхні із зростаючою амплітудою і засіб реєстрації явища дисоціації. Винахід передбачає новий спосіб дослідження сил, що беруть участь у молекулярному розпізнаванні, що забезпечує чутливість і можливість кількісних вимірювань.

Description

Опис винаходу
Винахід відноситься до способів вимірювання міжмолекулярних взаємодій | розділення, сортування і 2 калібрування часток. Зокрема, винахід відноситься до вимірювання афінності різних партнерів по скріпленню по відношенню один до одного, наприклад, при взаємодії антитіло-антиген.
ПОПЕРЕДНІЙ РІВЕНЬ ТЕХНІКИ
Специфічне розпізнавання молекул це фундаментальний процес, що лежить в основі взаємодій фермент-ліганд, взаємодій антитіло-антиген і скріплення молекул з рецепторами. Розпізнавання молекул 70 здійснюється за допомогою нековалентних взаємодій, наприклад, електростатичної взаємодії (водневі зв'язки) і гідрофобних взаємодій. Результати термодинамічних вимірювань констант зв'язку і зміни вільної енергії, ентальпії і ентропії проливають світло на молекулярну основу розпізнавання, особливо в поєднанні з інформацією, отриманою методом дифракції рентгенівських променів і, по можливості, сайт-специфічного мутагенезу. 12 Прямі вимірювання інтенсивності взаємодії виробляли методами мікроскопії міжатомних взаємодій (МАВ), а також за допомогою пристрою поверхневих сил. Оскільки метод МАВ заснований на вимірюванні сили розриву зв'язку, недолік цього методу полягає в тому, що вимірювання можна проводити однократно. Досі МАВ використовували для вивчення взаємодій авидин-біотин (Ріогіп еї аїЇ., Зсіепсе, 1995; 264:415), гібридизації
ДНК (Воїапа еї а. РМАБ5, 1995; 92:5291), взаємодій антитіло-антиген (Оаттег еї аї., Віорпуз. ., 1996; 70:2437) і адгезійних глікопротеїнів (Оаттег еї аі.. Зсіепсе, 1995; 267:1173).
Розділення біологічних молекул на основі їх відносної афінності до лігандів є загальновідомим методом.
Наприклад, в афінній хроматографії, компоненти, що підлягають розділенню, пропускають по колоні, що містить специфічний ліганд. Потрібний компонент виборче і сильно зв'язується з колоною і утримується на колоні при видаленні інших компонентів. На подальшому етапі, пов'язаний матеріал можна видалити з колони. с 29 Технології відділення є важливою частиною багатьох експериментальних досліджень. Бажано підвищити Ге) чутливість або вибірковість цих методів.
У роботі Коіотеп»екії еї аї!., У. Аррі., Рпуз., 1998; 84(4):2404-10 розкриті дослідження очищення і адгезії поверхні, проведених з використанням поверхневих акустичних Імпульсів, що генеруються лазером. У цих дослідженнях застосовували імпульси постійної енергії з низькою частотою повторення (20Гц). Оскільки ее, процедура здійснюється у вакуумі, вона непридатна для комерційного застосування. Для реєстрації видалення - часток використовували оптичний мікроскоп, який не дозволяє розрізнювати частки різних розмірів.
У патентній заявці УУО-А-98/45692 розкрите використання датчика на основі п'єзоелектричного кристала для со визначення утворення/дисоціації клатратних гідратів. У роботі Кигозаула еї аі,, Спет. РІапт. Виї., 1990; ча
З8(5): 1117-20 повідомляється про використання такого датчика для реєстрації аглютинації латексного носія антитіл. У патентній заявці УУМО-А-98/40739 також розкритий подібний датчик, що містить пластину, на якій о імобілізовані специфічні об'єкти, що зв'язуються, які використовуються для вказування наявності клітин в середовищі. Ці датчики використовують, вимірюючи зміну резонансної частоти при постійній напрузі.
У цей час, по можливості, більшість вірусів виявляють за допомогою культури зразка в клітинах, оскільки « цей спосіб забезпечує чутливість, хоч і вимагає великих витрат часу. Пряме виявлення вірусної ДНК або РНК в З клінічних зразках можна здійснювати з використанням РСК і специфічних праймерів, пристосованих для с потрібного вірусу. Оскільки РСК передбачає етап посилення, виникає серйозна проблема перехресного
Із» забруднення, що ускладнює застосування надійних способів кількісного аналізу. Існують і інші прямі способи, в тому числі електронна мікроскопія, імунна електронна мікроскопія і способи, засновані на виявленні антигенів за допомогою імобілізованого на антитілі ферменту. Ці способи нерідко виявляються недостатньо чутливими і, тому, для їх здійснення потрібна відносно велика кількість вірусних часток. і-й РОЗКРИТТЯ ВИНАХОДУ -і В основі даного винаходу лежить той факт, що зв'язки між шуканою молекулою або шуканою молекулою, приєднаною до часток, і поверхнею можна руйнувати, збільшуючи амплітуду механічних коливань поверхні, що
Со приводить до відриву шуканої молекули або частки від поверхні. Необхідне для цього прискорення, а, отже, -І 20 сила, визначається різними чинниками, в тому числі масою молекули або частки, характером зв'язку з поверхнею і геометричною формою або розміром шуканої молекули або частки. Таким чином, даний винахід щи можна використати для відділення або калібрування різних шуканих молекул або для реєстрації їх наявності.
Згідно з першим аспектом даного винаходу, спосіб виділення шуканого аналіту з складу містить етапи, на яких 29 (Ї) приводять склад в контакт з імобілізованим на поверхні партнером по скріпленню з аналітом і
ГФ) (ї) надають поверхні коливальне рушення із зростаючою амплітудою для виборчого видалення аналіту або інших компонентів складу з поверхні. о Крім того, даний винахід можна використати при здійсненні способу визначення наявності або розміру часток або афінності партнерів по скріпленню по відношенню один до одного. Згідно з другим аспектом винаходу, цей 60 спосіб містить етапи, на яких (Ї) приводять в контакт партнери по скріпленню, один з яких імобілізований на поверхні, (і) повідомляють поверхні коливальне рушення із зростаючою амплітудою і (ії) реєструють явище дисоціації.
Згідно з цим другим аспектом, винахід можна застосовувати до різних фізичних і хімічних зв'язків, 62 починаючи з відносно слабих взаємодій, наприклад, водневих зв'язків, і закінчуючи ковалентними зв'язками.
Пристрій, придатний для використання згідно з даним винаходом, містить поверхню, на якій імобілізований один партнер по скріпленню, засіб збудження коливання поверхні із зростаючою амплітудою і засіб реєстрації явища дисоціації.
Зокрема, пристрій може містити акустичний перетворювальний пристрій (АПП), наприклад, мікроваги на кристалі кварцу (МКК) або пристрій поверхневої акустичної хвилі або будь-який п'єзоелектричний матеріал, який можна приводити в коливання, наприклад, прикладаючи змінне напруження або магнітне поле. Ці пристрої дешеві в порівнянні з МАВ, і їх можна мультиплексувати. Інша перевага використання такого пристрою полягає в тому, що відбувається одночасне руйнування великої кількості зв'язків, що приводить до збудження звукових 7/0 хвиль, що реєструються і гострих шумових піків при певних значеннях прискорення (напруження, що подається на АПП). Ще одна перевага полягає в тому, що АПП можна використати як чутливий мікрофон для реєстрації акустичного випромінювання, коли відбувається явище дисоціації.
Відповідно до рівня техніки, в більшості експериментів з використанням АПП, зміни резонансної частоти або фази вимірювали при постійній напрузі на АПП. Даний винахід, навпаки, передбачає збільшення збудливої /5 Напруги, а отже, амплітуди коливань АПП.
Даний винахід має широку область застосування в процесах відділення, сортування і калібрування.
Приведені нижче Приклади свідчать про те, що в повітряному середовищі, сфери, маркіровані стрептавідином, можна відділяти від нормальних латексних сфер, подаючи на МКК з біотинильованою поверхнею збудливу напругу понад 0.18, але нижче за 6В. Нормальні латексні сфери відриваються від поверхні, тоді як сфери, 2о маркіровані стрептавідином, залишаються приєднаними до поверхні (за допомогою більш сильного зв'язку стрептавідин-біотин). Це відкриває нові можливості для використання технології відділення, заснованої на прикладенні змінної сили протягом певного інтервалу часу, яку можна застосовувати, наприклад, для калібрування і сортування часток, калібрування клітин, пенінгу фага, а також для конструювання нових біодатчиків. Такий спосіб відділення не вимагає великих витрат і легко подається мультиплексуванню і сч ов автоматизації. Він, наприклад, дає можливість осаджувати різні шукані об'єкти в різних позиціях на одні і ті ж мікроваги і скрикувати бібліотеку лігандів по відношенню відразу до декількох шуканих об'єктів. Ще однією і) областю застосування є виявлення і аналіз вірусних часток фіксованого розміру. Істотно також, що даний винахід передбачає новий спосіб дослідження сил, що беруть участь в молекулярному розпізнаванні, що забезпечує чутливість і можливість кількісних вимірювань. Ге зо ПЕРЕВАЖНИЙ ВАРІАНТ ЗДІЙСНЕННЯ ВИНАХОДУ
Даний винахід передбачає використання пристрою датчика, якому можна надавати коливальне рушення. -
Датчику можна надавати коливальне рушення різними способами, наприклад, за допомогою пристроїв со поверхневих акустичних хвиль, резонансних пристроїв на кристалі кварцу, пристроїв на основі моди акустичної пластини і гнучкої пластини у вигляді тонкої мембрани. ї-
Комерційне доступні датчики багатьох різних типів, придатних для використання у винаході. Опис датчиків, ю які можна використати в даному винаході, міститься в роботі Асоцвіїс МУаме Зепзогз, ВаїІапіїпе еї аї., (1997)
Асадетіс Ргезв. Датчик, переважно, являє собою пристрій поверхневої акустичної хвилі або, що більш переважно, мікроваги на кристалі кварцу (МКК).
МКК звичайно являє собою диск з кристалічного кварцу із золотими електродами на верхній і нижній « поверхнях. При подачі на електроди змінної напруги він відчуває коливання зсуву, внаслідок п'єзоелектричного з с ефекту. Зростання напруги приводить до збільшення амплітуди коливань МКК. . Кристал кварцу також є чутливим мікрофоном, і його можна використати для реєстрації акустичного и?» випромінювання, виникаючого внаслідок явища відриву. Технічно простіше збуджувати коливання на частоті, відповідній одній основній резонансній частоті і реєструвати акустичне випромінювання поблизу іншої моди.
Наприклад, МКК збуджують на їх резонансній частоті і реєструють акустичне випромінювання на її третій с гармоніці.
З метою ілюстрації, термін "аналіт" можна використати для опису зв'язуючого партнера або компонента, який
Ш- входить в контакт зі зв'язуючим партнером, імобілізованим на поверхні. Після встановлення контакту, аналіт
Го! зв'язується з датчиком за допомогою міжмолекулярної взаємодії і зазнає прискорення, а отже, впливу сили, 5р прикладеної до аналіту. По мірі зростання амплітуди коливань, при досягненні силою певного порогу,
Ш- відбувається розрив зв'язку. Раніше пов'язана частка аналіту отримує можливість перекочуватися по поверхні.
Ф Аналіт може являти собою мікроскопічний об'єкт, здатний утримуватися на датчику за допомогою міжмолекулярної взаємодії. Аналіт може являти собою протеїн, антитіло, антиген, фермент, інгібітор ферменту або полінуклеотид. Аналіт може також являти собою більш велику частку, наприклад, бактерію, клітину, вірус, пріон або фаг. Інші приклади часток, які особливо придатні для використання в даному винаході, включають в себе мікросфери з будь-якого матеріалу, наприклад, кварцу, золота або латексу або великі макромолекули, (Ф) наприклад, плазміди. Зв'язуючий партнер, імобілізований на поверхні, може відноситися до того ж типу, і його ка можна вибирати відповідно і в залежності від відповідного фізичного або хімічного зв'язку.
Дисоціацію більш дрібних аналітів переважно реєструють по акустичному випромінюванню. Більш великі бор частки можна також реєструвати оптичними засобами, наприклад, за допомогою мікроскопії.
Згідно з першим аспектом винаходу, відділення здійснюють шляхом імобілізації шуканої молекули на поверхні датчика за рахунок взаємодії з партнером по скріпленню. Потім поверхню можна привести в коливальне рушення, щоб відривати молекули від поверхні датчика. При цьому постійно збільшують амплітуду коливань, а отже, прискорення, щоб, або видалити з поверхні шукану молекулу, або видалити з поверхні інші 65 Компоненти суміші, залишивши шукану молекулу пов'язаною з поверхнею. Згідно з переважним варіантом здійснення, для надання поверхні датчика коливального рушення використовують п'єзоелектричний пристрій акустичної хвилі, наприклад, МКК. Той самий п'єзоелектричний пристрій можна використати як мікрофон для реєстрації акустичного шуму, породжений явищем відриву.
Метод відділення можна застосовувати для виділення молекул, які сильно взаємодіють конкретним партнером по скріпленню. Наприклад, цей метод можна застосовувати для виділення клітин конкретними рецепторними молекулами, експресованими на поверхні клітини, або для виділення антитіл з сильної афінністю до конкретного ліганду.
Різні ліганди можна розмістити в різних місцях поверхні за допомогою, наприклад, контактного друку або з використанням масок або фотолітографії. Це дає можливість скрикувати суміш відносно відразу декількох 7/0 бильно зв'язуючих партнерів з допомогою декількох різних лігандів. Зокрема, винахід можна використати у застосуванні до пластинок, на яких імобілізовані різні матеріали, наприклад, рецептори. У більш загальному випадку, пластинки можуть демонструвати матеріали, що дозволяють тестувати різні інфекції, патогени, пріони, харчові алергени, віруси, бактерії і т.д. при здійсненні клінічного тестування людини або тварини і при гігієнічному моніторингу їжі і води. Крім того, винахід можна використовувати для скринування бібліотеки, фагового відображення |і т.д.
Другий аспект даного винаходу передбачає спосіб визначення наявності або розміру часток або рівнів афінності молекул по відношенню одна до одної. Переважно, одну молекулу імобілізують на поверхні датчика, а іншу молекулу імобілізують на частці, наприклад, мікросфері. Потім частку приєднують до датчика за допомогою міжмолекулярної взаємодії, що вивчається. Функціоналізовані частки приводять в коливальне рушення, подаючи 2о на датчик напругу. По мірі зростання амплітуди, сила досягає критичного значення, при якому відбувається розрив зв'язків. У цей момент можна, за допомогою чутливого підсилювача, реєструвати характерний шум і спостерігати рушення часток, наприклад, за допомогою оптичного мікроскопа. Величина сигналу залежить від кількості часток, пов'язаних з поверхнею датчика. Звичайно, коли МКК використовують відповідно до описаного нижче Прикладу 1, спільно з фізично абсорбованими мікросферами, шум реєструють при напрузі 0.1-1.08, в сч ов Залежності від розміру мікросфер, при цьому можна спостерігати під мікроскопом, як мікросфери ковзають по поверхні і відриваються від неї. Можна побудувати графік залежності рівня шуму, що генерується від амплітуди і) (або прикладеної напруги), який буде являти собою спектр сили відриву. За допомогою графіка можна визначити момент розриву зв'язку, оскільки він відповідає піку шуму. Таким чином, можна визначити критичну напругу, при якій відбувається розрив зв'язку. Належні калібрувальні експерименти з використанням часток з відомими Ге
Зо щільністю і силою зв'язку, дозволяють використати цей спосіб для кількісних вимірювань. Крім того, висота піка акустичного випромінювання є мірою кількості пов'язаних часток. -
Даний винахід можна використати для вивчення міжмолекулярної взаємодії, і, особливо, для вивчення со взаємодій фермент/ліганд, взаємодій антитіло-антиген і взаємодій рецептор/ліганд або взаємодії між макромолекулою і її природним партнером по скріпленню. Даний спосіб також можна застосовувати для ї-
Зв ВИВЧення явищ гібридизації між полінуклеотидами. Таким чином, згідно з першим аспектом винаходу, як ліганд ю може виступати, наприклад, білок, антитіло або антиген, фермент, інгібітор ферменту, полінуклеотид або велика макромолекула, наприклад, велика плазміда або вірус. Згідно з другим аспектом винаходу, з поверхнею або часткою може бути пов'язаний будь-який матеріал.
Нижче приведені Приклади, що ілюструють винахід. «
Згідно з цими Прикладами, для вимірювання сил злипання між поверхнею і малою часткою використовують пл») с спектроскопію сили відриву. Для цього поверхні з тими, що знаходяться на ній мікрочастками надають
Й коливальне рушення з монотонно зростаючою амплітудою і, отже, зростаючим прискоренням. Для цього, а поверхню приводять в рушення за допомогою п'єзоелектричного пристрою акустичної хвилі, в цьому випадку, мікроваг на кристалі кварцу (МКК). По мірі зростання амплітуди, зростає прискорення, а значить, і сила, прикладена до частки. Розрив всіх зв'язків, що з'єднують частку з поверхнею, породжує акустичний шум, і той с самий п'єзоелектричний пристрій використовують як чутливий мікрофон для реєстрації цього шуму, породжений явищем розриву. На фіг.1 показана схема пристрою, що використовується в Прикладах 1-5; на фіг.8 схема ш- переважного пристрою показана в більш загальному вигляді.
Го! Зокрема, схема, показана на фіг. 1, містить п'єзоелектричний перетворювач 10, генератор 11 бор чисто-синусоїдального сигналу частоти Її, генератор 12 частоти ЗЕАЇ, фільтр 13 частоти ЗА, блок 14
Ше синхронного підсилювача і аналогово-дифрового перетворювача і комп'ютер 15, введення даних в який і
Ф виведення керуючого сигналу з якого позначені стрілками. Згідно з Прикладами 1-5, 1-14.2МГц і лгеЕ82кКГцЦ.
Частки 16 знаходяться на поверхні підкладки.
На фіг.8 показані п'єзоелектричний перетворювач 21 (наприклад, пристрій МКК, ПАВ і т.п.) і підсилювач 22 із змінним коефіцієнтом підсилення, забезпечений входом 23 і виходом 24, здатний видавати вихідний сигнал з плавно зростаючою амплітудою під управлінням сигналу 25. Схема також містить смуговий приймач 26 о (наприклад, аналогічний радіоприймачу ОБП) і аналогово-дифровий перетворювач 27 або декілька таких ко перетворювачів, звідки дані поступають в лінію 28. Крім того, схема містить пристрій 29 управління, запису і обробки сигналу даних (наприклад, комп'ютер або спеціалізований процесор ЦеСП). Контакт, вказаний бо пунктирною лінією ЗО, можна замінити більш оптимізованим засобом фільтрації і підключення, як останнє може виступати, наприклад, пасивний І СЕК-контур.
У схемі, показаній на фіг.8, підсилювач 22 спільно з перетворювачем 21, а також необов'язковим засобом 30 фільтрації/підключення забезпечують простий коливальний контур, в якому коливання відбувається, переважно, на частоті ефективної роботи перетворювача; для МКК це може бути основна частота послідовного резонансу. 65 Ця частота коливань (Е) рівна, наприклад, 14МГц. Амплітуда напруги збудження на виході 24 плавно зростає під управлінням контролера 29, здійснюваним по лінії управління 25. Вихідний сигнал акустичного випромінювання в точці ЗО можна очищати за допомогою необов'язкового фільтра/з'єднувача, після чого подавати на вхід смугового приймача 26. На основі критерію максимального відношення сигнал-шум, як робочу смугу частот приймача можна вибирати, наприклад, резонансну моду, що знаходиться поблизу третьої гармоніки (ЗЕ Аг), наприклад, 42.082МГЦц.
Одиничні або квадратурні вихідні сигнали перетворюються аналого-дифровим перетворювачем 27 або декількома перетворювачами з високим динамічним діапазоном. Потім дані піддають подальшій цифровій обробці на блоці 29, витягуючи корисний сигнал, який записують і/або представляють спостерігачеві.
Підсилювач 22 можна додатково обладнати пасивним вихідним і/або вхідним фільтром(ами), щоб підвищити 7/0 відношення сигнал-шум, а також, щоб гарантувати, що коливальний контур працює на правильній частоті і з правильним зсувом фази струму відносно напруги на перетворювачі.
На фіг.9 показаний переважний варіант датчика на основі ПАВ, що використовується у винаході. Він містить засіб 31 генерації напруги РЧ на виході 32 з амплітудою, що підвищується, яка поступає на електроди 33 перетворювача. Структура електродів 33 оптимізована для генерації на п'єзо-підкладці 34 ПАВ з високою 7/5 амплітудою. Структура електродів 37 оптимізована для найбільш ефективного перетворення акустичного випромінювання в електричний сигнал. Це може бути складний шаблон, що містить одну або декілька пар електродів. Пристрій додатково містить блок управління 35 для управління генератором 31 по лінії 36 і для прийому сигналів, що генеруються на одному або декількох входах 38, а також для обробки сигналу даних, наприклад, методом кореляційного аналізу.
Робота датчика на основі ПАВ полягає в тому, що генератор 31 генерує напругу РЧ, яка придатна для забезпечення частоти ефективного перетворення на виході 32, і вона поступає на генеруючи електроди 33 перетворювача, розташовані на п'єзо-підкладці 34 (пунктирна лінія). Амплітуда напруги РЧ росте згодом під управлінням контролера 35, здійснюваного по лінії 36 управління. Приймальні електроди 37 перетворюють акустичне випромінювання, що виходить з активної зони, в електричний сигнал, який поступає на вхід(входи) 38 с приймача/контролера 35. Дані, отримані після аналогово-дифрового перетворення, піддають сигнальній обробці, витягуючи корисні сигнали. Зрештою, результати записують і/або представляють оператору. о
Деякі результати, отримані в Прикладах, показані на фіг.2-7 і 10. Фіг.2А, 28, ЗА, ЗВ, 4А, 48, 4С, 40, 68, 7 і 10 являють собою графіки залежності шумового сигналу (5; довільні одиниці) від амплітуди (А; вольти).
Фіг5А, 58, 6Д і б6С являють собою графіки залежності шумового сигналу (5; довільні одиниці) від кількості Ге) 3о часток (М).
Використовуються наступні абревіатури: -
БСА: бичачий сироватковий альбумін со
БЛ: бульйон луріа
ХДИ: хлорид диметиламіноізопропілу -
ДМАП: диметиламінопіридин ю
ЕДК: 1,3-диметиламінопропіл-3З-етилкарбодіїмід
М-ГС: М-гідроксисукцинімід
СБФ: сіль, буферизована фосфатом
ПРИКЛАД 1 «
Латексні сфери діаметром 5мкм приєднали до поверхні датчика МКК за допомогою множинних зв'язків, Що /-пее) с досліджуються. Сфери, що використовуються покривали 1956 площі поверхні МКК. Погрішність діаметра сфер й становила лише 1905. «» Датчик МКК містив поліровані кварцові пластини, обрізані по фронту акустичної хвилі під кутом 35", діаметром 8.25мм. На пластини були осаджені шари хрому (товщиною 20-3ЗОнм), а потім золота (товщиною 100-12Онм). сл Провели експериментальне дослідження в повітряному середовищі трьох різних зв'язків: фізичного зв'язку (латекс-золото), зв'язок стрептовідин-біотин і ковалентний зв'язок (амідний зв'язок). Для створення фізичного
Ше зв'язку, латексні сфери вмістили безпосередньо на поверхню датчика і висушили азотом. Для створення зв'язку о стрептовідин-біотин, на поверхню наклали біотинільований БСА і висушили азотом. Для створення хімічного зв'язку, сформували моношар тіолу, використовуючи тіол з кислотним кінцем (12-меркаптододеканойну кислоту),
Ше розчинений в етанолі; потім її активували з використанням ЕДК-М-ТС і додали сфери з кінцевою аміногрупою
Ф для формування амідного зв'язку.
Експерименти проводили в камері, забезпеченій двома оптичними вікнами; одне з них забезпечувало освітлення зразка, а інше дозволяло спостерігати розсіяне лазерне світло за допомогою оптичного мікроскопа.
МКК знаходилися в камері. Для збудження МКК використали генератор сигналу моделі 05345 (Стенфордські дослідницькі системи). Рушення і відділення часток спостерігали за допомогою оптичного мікроскопа ОіЇутрив (Ф, ВН-2, обладнаного відеокамерою на приладах із зарядовим зв'язком Рапазопіс УУІ/-5І 300. Як основний ко вимірювальний пристрій виступав синхронний підсилювач ЗК844 (Стенфордські дослідницькі системи). Опорний сигнал подавали на синхронний підсилювач з використанням другого генератора, синхронізованого з першим. бо Всі пристрої були приєднані до комп'ютера для контролю експерименту і збору даних.
На фіг.2А показані спектри сили відриву для стрептавідин-біотинового (1) і хімічного (2) зв'язку; на фіг.28 показаний спектр для фізичного зв'язку.
Реєструючи спектри сили відриву, можна експериментальне визначити величину сили або напруги, необхідну для руйнування зв'язків. Отриману інформацію можна використати для розділення суміші. Відповідно до графіка, б5 зображеного фіг.2А, подаючи на МКК, на поверхні яких, обробленій біотином, є суміш сфер діаметром 5мкм, деякі з яких містять на своїй поверхні стрептавідин, тоді як інші не містять його на своїй поверхні, напругу понад 0.18, але не більше за 6В, скажімо, 18, можна розділити дві множини сфер, залишивши на поверхнях тільки сфери, маркіровані стрептавідином. Ці методи можна також використати для виявлення сфер, маркірованих стрептавідином, оскільки з поверхнею, що коливається при напрузі 18, будуть пов'язані тільки ці сфери.
Для забезпечення кількісних вимірювань, на основі експериментальних даних, обчислювали амплітуду коливань МКК при різних напругах, що дозволило оцінити силу, прикладену до мікросфери. Це оцінювання здійснювали шляхом вимірювання споживання потужності на МКК і їх добротності ОО (величина, зворотна відносній ширині резонансного піка, О-1/Авбрезонанс ). Амплітуда А задана вираженням 70 АЧОР/2 АВМ? де О - добротність, Р - електрична потужність, споживана МКК, 7 - резонансна частота кристала кварцу, а М - ефективна маса приведеної в рушення кварцової пластини МКК. Значення О при 6В визначили рівним с.15000, що дало можливість оцінити амплітуду коливань МКК рівною бонм. Таким чином, сила, прикладена до сфери, становила УмкН. Якщо порівняти це значення з величиною сили, необхідної для розриву одиничного зв'язку 75 стрептавідин-біотин, яка рівна 160пН 2, виходить, що одночасно відбувається руйнування приблизно 60000 зв'язків. Оцінка вказує, що це відповідає 50 або більш процентам від первинної кількості стрептавідин-біотинових зв'язків між сферою і поверхнею. Це означає, що більшість зв'язків, що приєднують сфери до поверхні, розриваються одночасно. Звідси - різкі піки, що спостерігаються в спектрі сили розриву і шум, що реєструється при руйнуванні зв'язків.
ПРИКЛАД 2
З цього Прикладу випливає, що способи, які відповідають винаходу, можна також здійснювати в розчині.
Завантаження рідини приводить до зниження С), а отже, до зниження амплітуди коливань при заданій напрузі в порівнянні з тими ж величинами в повітрі. Шар води, що оточує мікросферу, обумовлює наявність сили в'язкості, діючої на мікросферу, і збільшення її ефективної маси, що приводить до зростання сили, діючої на сферу. Ге
На фіг.З3 показані спектри сили відриву для латексних сфер діаметром 5мкм, приєднаних до поверхні за о допомогою стрептавідин-біотинового (фіг.ЗА) і хімічного (фіг.3В) зв'язку. Розрив відбувається відповідно при 18 їі 108.
Зниження критичної напруги для зв'язку стрептавідин-біотин з коефіцієнтом б, тобто з 6В до 18, при переході з повітря у воду, як і руйнування хімічного зв'язку у воді, свідчить про переважання останнього (Се) ефекту. Таким чином, цей Приклад виразно демонструє, що руйнування зв'язків, а отже, розділення і робота їм біодатчиків можуть мати місце у водному або іншому рідкому середовищі.
Вважаючи, що фізичний, стрептавідин-біотиновий і хімічний зв'язки характеризуються однаковою щільністю (ее) зв'язку, і враховуючи, що в цих експериментах використовували мікросфери однакового розміру, можна м отримати відносну шкалу сили відриву. Для фізичного: стрептавідин-біотинового: хімічного зв'язку вона має вигляд 1:60:600. Таке маштабування виглядає розумним і демонструє динамічний діапазон способу. Проводячи ІФ) належні калібрувальні експерименти при відомих значеннях щільності зв'язку, можна забезпечити кількісні вимірювання.
ПРИКЛАД З «
Приклад демонструє виявлення вірусів і, зокрема, генетичне модифікованого бактеріофага, що відображає білок, зв'язуючий мальтозу, приєднаний до білка оболонки фага рії!І, оскільки і фаг, і взаємодія, зв'язуюча - с мальтозу, добре вивчені і легко доступні. Фаг являє собою довгий, тонкий, ниткоподібний вірус, що складається и з гнучкого стрижня довжиною 1мкм і діаметром бнм. Генетично модифікований фаг додатково відображає на -» одному кінці вірусу до 5 білків, зв'язуючих мальтозу, приєднаних до білка оболонки фага рії; див. МеСайПегпу еї аІ.,, Майшге, 1990, 348:552. Цей фаг можна специфічно очистити на амілозній смолі.
Приєднання білка, зв'язуючого мальтозу, до кінцевої аміногрупи індол-гліцерофосфатсинтази було 1 відображено на поверхні т4-фага як приєднання до кінцевої аміногрупи білка оболонки, закодованого геном І. -1 З цією метою побудували вектор р)/В113 Та-фага; в ньому закодоване генетичне злиття між МаїЕ (Е. сої), тро (Е. сої) і геном Ш. Цей фаговий вектор ніс маркер стійкості до тетрацикліну. Як немодифікований (ее) конкуруючий фат виступав фаг-помічник МС М1ЗКО? (Стратаген), несучий маркер стійкості до канаміцину. -1 50 Інфікувавши Змл тіа Іод фази І В культури ЕзспПегіспіа соїї штаму ТО1 штамом фага в об'ємі 1Омкл, отримали концентрації бактеріофага 1х1072 к.ое/мл. Після 2 годин збовтування (250об/хв.) при 377С, 1їмл культури 0 інокулювали в 1О0Омл І В і збовтували з частотою З5Ооб/хв. при 377"С протягом 1 години, У культуру р/В113 або
МУС5, вирощену за ніч при З0"С і 250об/хв., додали, відповідно, тетрациклін (1Омг/мл) або канаміцин (5Омг/мл).
Бактерії були осаджені (15хв. 4.1тис. об/хв.), Її фаг був виділений з супернатанту додаванням Масі і РЕСбО00 22 до кінцевих концентрацій 0.5моль і 495 (об/об), відповідно. Після витримування протягом 1 години на льоду, фаг
ГФ! виділили центрифугуванням (ЗОхв., 4.1тис. об/хв.), і осаджений фаг повторно зважили в їмл НО і зберігали при 47. о Розчинний крохмаль (500 мг, О.0їммоль, ТЛекв.) розчинили в ДМФ (М,М-диметилформамід) (1Омл) і перемішували протягом 5Бхв. (частково розчинили). До 11-меркаптододеканойній кислоти (11.5мг, 0.05ммоль, 60 Бекв.) в ДМФ (0.Бмл) додали ІС (7.8мкл, 6б.Змг, О.О5ммоль, Бекв,) і ОМАР (кат.), і цей розчин додали в розчин крохмалю. Реакційну суміш залишили перемішуватися при кімнатній температурі на ніч. Потім реакційну суміш очистили з використанням осередку з мішалкою з мембранною відсічкою 10000ММУУ шляхом промивки розчину тій) води (бх5Омл) і концентрування з подальшою ліофілізацією протягом ночі.
Поверхню підготували з використанням модифікованого крохмалю, що містить тіольну групу, завдяки якій бо його можна було хімічно приєднати до поверхні. МКК (підготовлені аналогічно Прикладу 1) вмістили в розчин крохмалю в метанолі (їмкг на мл) на 12 годин. Потім зразки промили і висушили струменем азоту. Для проведення експериментів в повітрі, віруси осадили на поверхню з розчину і висушили при кімнатній температурі. Розбавляючи, отримали різні концентрації вірусу. Для здійснення експериментів, в яких мальтоза блокує білок, зв'язуючий мальтозу, в розчин фага додали 100нмоль мальтози.
Таким чином, поверхня МКК виявилася покритою шаром розчинного картопляного крохмалю (який містить розгалужені полімери мальтози), хімічно приєднаного до поверхні золота за допомогою зв'язку сірка-золото.
Експерименти проводили в повітрі і у воді.
На фіг4А показаний спектр сили відриву, отриманий у воді для суміші в рівних кількостях фага, зв'язуючого мальтозу (-) їі немодифікованого фага (...), сканування було отримане протягом 500 секунд. На /о поверхні золотого електрода знаходилося приблизно 500 мільйонів примірників фага кожного типу. Для немодифікованого і, отже, не специфічно пов'язаного фага, був зареєстрований пік відриву при 1.28. Відповідні піки відриву для фага, зв'язуючого мальтозу, мали місце при напрузі біля 9В і були більш інтенсивними, ніж у неспецифічно пов'язаного фага, оскільки при розриві зв'язку вивільняється більша кількість енергії. У повітрі, ніяких піків, зумовлених специфічно пов'язаним фагом, зв'язуючим мальтозу, не було зареєстровано аж 7/5 до 108; на фіг.48 показані дані, отримані в повітрі виключно для неспецифічно пов'язаного фага. Пік має місце при 7.58, і його висота приблизно в б раз перевищує висоту піка, зареєстрованого у воді. Друге сканування (..) не виявило практично ніяких піків, свідчачи про те, що фаг був видалений з поверхні. Це підтверджує, що у воді, завдяки наявності додаткових сил в'язкого тертя і збільшенню ефективної маси частки, руйнування зв'язків між частками фага і поверхнею відбувається легше, ніж в повітрі.
Гострота піків в спектрі сили відриву очевидним образом пов'язана з тим фактом, що руйнування зв'язків відбувається при граничній напрузі; це приводить до виникнення акустичного шуму протягом короткого проміжку часу і, отже, робить спосіб вельми чутливим. Крім того, сигнал, зумовлений специфічно зв'язуючим фагом, можна легко відрізнити від сигналу, зумовленого неспецифічно зв'язуючим фагом і виникає при більш високій амплітуді, а це означає, що неспецифічне поглинання не впливає негативним чином на вимірювання с ов специфічного поглинання. Для подолання специфічної взаємодії між білками, зв'язуючими мальтозу, відображеними на фагу, і поверхнею, покритою крохмалем, потрібна набагато більша сила, ніж для подолання і) неспецифічних взаємодій між немодифікованим фагом і поверхнею.
На фіг.4С показаний результат контрольного експерименту, проведеного в повітрі з фагом, зв'язуючим мальтозу, коли його сайт скріплення блокований мальтозою, з подальшим осадженням фага на МКК в центрі Ге зо (верхній графік) або по всій поверхні (нижній графік); він поводиться аналогічно немодифікованому фагу, підтверджуючи, що різниця зумовлена цими специфічними взаємодіями. На фіг.АВ показаний спектр сили - відриву у воді при наявності на поверхні тільки 1000 примірників фага, звідки слідує, що явище відриву все ще со реєструється. Невеликий зсув положення піка зумовлений тим, що внаслідок зміни завантаження добротність С
КММ змінюється в меншій мірі. ї-
Результати вимірювань також кажуть про те, що для відділення неспецифічно пов'язаного фага від фага, ю зв'язуючого мальтозу, можна подавати на МКК збудливу напругу, яка вище граничної напруги руйнування зв'язків з неспецифічне пов'язаним фагом, але нижче граничної напруги руйнування зв'язків з фагом, зв'язуючим мальтозу. Це забезпечує альтернативний спосіб скрикування бібліотек фагів для скріплення, згідно з яким зв'язуючою афінністю фага, що залишається на поверхні, управляють, регулюючи величину прикладеної напруги « 70 і час, протягом якого вона подається, при умові, що фаг залишається життєздатним. в с Щоб визначити чутливість способу, фаг, зв'язуючий мальтозу, що знаходиться у водному середовищі, піддали експерименту по розбавленню. На фіг.5А показано (для найбільш інтенсивних шумових піків поблизу ;» 98), що потужність сигналу лінійно залежить від кількості примірників фага в межах, щонайменше, п'яти порядків величини, і що наявність на МКК приблизно 200 примірників фага можна виявити з імовірністю 9995. На фіг5В показана аналогічна крива для неспецифічно зв'язуючого фага в повітрі, що вказує на чутливість «сл виявлення 100 примірників фага з імовірністю 9995. Кількість примірників фага, зв'язуючого мальтозу, на поверхні при низькому розбавленні було підтверджено безпосередньою візуалізацією за допомогою МАВ.
Ш- Цей Приклад показує, що кількість примірників фага на поверхні МКК можна виявити. Навпаки, з допомогою
Го! РСК виявляють кількість піків вірусного ДНК в розчині. При умові, що всі частки вірусу в зразку розчину 5р пов'язані з поверхнею, яка виконується або при наявності сильної взаємодії вірус-поверхня, або при можливості ш- випаровування розчину, внаслідок чого вірус залишається на поверхні, можна безпосередньо порівнювати
Ф чутливість. Чутливість РОК складає біля 100 піків вірусного ДНК на мл, що порівняно з чутливістю виявлення фага відповідно до даного Прикладу (без оптимізації). Електроніку можна удосконалити, і таке удосконалення дозволяє підвищити чутливість щонайменше, на порядок величини. Наприклад, в цих експериментах ов Застосовували однорідне осадження фага на поверхню МКК. Однак, амплітуда і чутливість МКК має просторову залежність, а це значить, що сигнал приходить, в основному, з центра МКК (як показано на фіг.4С). Це означає,
Ф) що, якщо осаджувати фаг тільки в центрі МКК, то зареєстрованих піків буде менше, а значить, їх інтенсивність ка буде більшою, що обумовлює підвищення чутливості.
Цей спосіб можна безпосередньо розповсюдити на виявлення людських вірусів із застосуванням бо специфічних антитіл до вірусу, приєднаного до поверхні МКК. Ці антитіла вступають в специфічні взаємодії з вірусом, приєднаним до поверхні МКК. Ці антитіла обумовлюють специфічні взаємодії між вірусом і поверхнею, які можна подолати при певному прискоренні поверхні. Неспецифічна абсорбція аналогічних по розміру або більш великих часток, присутніх в зразку, обумовлює наявність піків при низькій напрузі, як було показано, але це не може впливати негативним чином на аналіз, хоч абсорбція макромолекул на поверхні може приводити 65 до зменшення кількості антитіл, здатних утворювати зв'язок з вірусом. Ефективна маса найбільш поширених вірусів більше, ніж у фата, що використовується в цьому Прикладі, хоч кількість і сила специфічних взаємодій з поверхнею буде іншою. Це означає, що необхідна напруга повинна бути близькою до отриманої по даному
Прикладу або менше неї.
Цей Приклад показує, що спектроскопія сили відриву не вимагає наявності етапу посилення, дає можливість виробляти кількісні вимірювання, безпосередні вимірювання і не вимагає великих витрат. З її допомогою можна здійснювати швидку діагностику вірусної інфекції в багатьох випадках, в тому числі, при обстеженні пацієнтів в клінічних умовах або рослин і тварин в сільському господарстві.
ПРИКЛАД 4
Цей Приклад ілюструє пробу, зв'язуючу вірус. Для цієї проби, пластинки мікроваг на кристалі кварцу 7/0 Виготовили з полірованих кварцових пластин, обрізаних по фронту акустичної хвилі під кутом 35" (Нус,
Сатрбгідде, ОК), і покрили в камері парового осадження Едвардса адгезійним шаром хрому товщиною ЗОнм, потім шаром золота товщиною 20Онм, яка визначається каліброваною електричною провідністю. Потім ці пластинки занурили в розчин тїммоль меркаптододеканойної кислоти в етанолі спектроскопічного класу на 18год., ретельно промили етанолом, а потім водою, після чого висушили струменем азоту. Потім ці пластинки 7/5 Занурили на 20хв. в суміш М-ТС (10бммоль) і ЕДК (400ммоль). Після цього їх ретельно промили водою, а потім занурили на год. в розчин б5Омкг/мл мишачого моноклонального антитіла ІдсС, продукованого проти глікопротеїну ОО НОМ І в Тммоль СБФ при рН?7.0. Потім їх промили водою і занурили на 1Охв. в 1 моль розчину етаноламіну при рН8В.5. Після цього їх ретельно промили водою і зберігали при 4"С в їТмл СБФ.
Кількість вірусних часток/мл в розчині штаму вірусу, очищеного фіколом, визначали з використанням електронної мікроскопії по внутрішньому стандарту латексних сфер. Розчин штаму НБМ дО" з концентрацією 5Х1019 вірусних часток/мл піддали послідовним десятиразовим розбавленням в СБФ (1О0ммоль
Ма»НРО,/МаньРО»д, 2.7 ммоль КСІ, 120 ммоль масі, рН 7.4), утримуючої БСА (0.1мг/мл) і зберігали при 47.
Пластинки МКК встановили за допомогою безпайкових контактів в приладі, і або 1Імкл, або 40мкл кожного з цих розбавлених розчинів вмістили на поверхню пластинки, покриту антитілом дО проти 90. Після 40хв. поверхню -:СМ ретельно промили водою, а потім покрили 4О0мкл СБФ і проскакували МКК від 0 до 108. о
Результати подані на фіг.б. Фіг.бА являє собою графік залежності сигналу (шумовий пік поблизу 7.58) від кількості часток симплексного вірусу герпеса 900" для мкл (о) і 40 мкл () зразків; точки даних добре лягають на лінії. Фіг.б являє собою графік залежності шуму від амплітуди для вірусу 90 " і дО". Вірус 907, який не має со 20 специфічної взаємодії з антитілом на поверхні, не демонструє піків; навпаки, вірус 907 демонструє різкий пік поблизу 7.58. -
ПРИКЛАД 5 со
Для цього аналізу бактерійного скріплення, пластинки МКК підготували, як в Прикладі 4. Е. соїї і 5.
Айгецйв (лабораторні штами) були вирощені в бульйоні екстракту мозок серце/0.595 дріжджі і інкубовані на ніч /їч- з при 37"С. їмл зразка кожної культури довели до концентрації 101Ок.о.е./мл, яку визначають по оптичній ою щільності, і центрифугували з прискоренням 120009 протягом 2хв.; осадок повторно зважили в стерильній СБФ. 10мкл бактерійної взвісі вмістили на пластинку МКК, покриту антитілом ІдсС проти Е. соїї подібно тому, як описано в Прикладі 4 для антитіла проти НБМ. Після 40хв., поверхню ретельно промили водою, а потім покрили 4Омкл СБФ і проскакували МКК від 0 до 108. « 20 Результати приведені на фіг.7. Графік шум/амплітуда демонструє різкий пік при напрузі біля 6 В для Е. -в сої і ніякого піка для 5. ацйгецйв. с ПРИКЛАД 6 :з» У цьому Прикладі використали пристрій ПАВ, показаний на фіг.9. У цьому випадку використали єдиний прилад (НР8512а, Неміе РасКага), який об'єднує підсилювач 1 і блок 5 приймача і управління в єдиному приладі. Прилад настроїли на режим гармонічної хвилі, що не затухає і розгортай по живленню. Пристрій ПАВ щи Щ й ці ; сл представляв комерційне доступний прилад КЕ1171 від КЕ Мопоїйісв, Іпс. На поверхню ПАВ нанесли біля 100000 латексних сфер діаметром їмкм. Отриманий спектр поданий на фіг.10. Він містить декілька піків, відсутніх на -і чистій поверхні. Це свідчить про те, що пристрій ПАВ можна використати для реєстрації явища руйнування. Різні со піки, можливо, відповідають скупченням сфер на поверхні, що мають різні розміри, і тому піки спостерігаються в різних положеннях. - 50 с»

Claims (27)

Формула винаходу
1. Спосіб виділення шуканого аналіту з складу речовини, що містить етапи, на яких 59 (Ї) приводять речовину в контакт з іммобілізованим на поверхні партнером по скріпленню з аналітом і ГФ) (ї) надають поверхні коливального руху із зростаючою амплітудою для видалення аналіту або іншого т компонента складу речовини з поверхні і (ії) реєструють явище дисоціації.
2. Спосіб за п.1, в якому аналіт або інший компонент вибірково видаляють і розділяють. бо З.
Спосіб за п. 1, в якому видалення аналіту або іншого компонента реєструють.
4. Спосіб за п. 3, при якому визначають афінність партнерів по скріпленню по відношенню один до одного або властивість одного з партнерів по скріпленню, що залежить від афінності.
5. Спосіб за п. 3, при якому визначають інтенсивність скріплення між партнерами по скріпленню.
6. Спосіб за п. 3, при якому визначають наявність іншого партнера по скріпленню. бо
7. Спосіб за 3, в якому інший партнер по скріпленню є частинкою або іммобілізований на частинці.
8. Спосіб за п. 7, в якому визначають розмір або наявність частинки.
9. Спосіб за будь-яким з пп. 3-8, в якому явище дисоціації реєструють по акустичному випромінюванню.
10. Спосіб за п. 9, в якому здіснюють коливання поверхні з частотою, яка відповідає одній основній частоті, і акустичне випромінювання реєструють поблизу іншої резонансної частоти.
11. Спосіб за п.10, в якому поверхня є частиною мікроваг на кристалі кварцу (МКК), які збуджують засобом збудження коливань на їх основній резонансній частоті, причому МКК реєструє акустичне випромінювання поблизу частоти, яка визначається як З основних резонансних частоти.
12. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, в якому ліганд або будь-який з партнерів по скріпленню 7/0 являє собою білок, антитіло, антиген, фермент, інгібітор ферменту або полінуклеотид.
13. Спосіб за будь-яким з пп. 1-11, в якому ліганд або партнер по скріпленню являє собою клітину, бактерію, вірус, пріон або фаг.
14. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, в якому різні партнери по скріпленню іммобілізовані в різних місцях поверхні.
15. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, в якому поверхня є частиною п'єзоелектричного перетворювача або акустичного перетворювача.
16. Спосіб за п.13, в якому перетворювач являє собою мікроваги на кристалі кварцу або пристрій поверхневої акустичної хвилі.
17. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, який здійснюють в рідкому середовищі.
18. Спосіб за будь-яким з пп. 1-16, який здійснюють у повітряному середовищі.
19. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, в якому поверхня коливається в площині поверхні.
20. Спосіб за будь-яким з попередніх пунктів, в якому для видалення аналіту або іншого компонента складу з поверхні здійснюють коливання поверхні з амплітудою, що постійно збільшується.
21. Пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню по відношенню один до одного, що містить сч поверхню, на якій іммобілізований один з партнерів по скріпленню, засіб збудження коливального руху поверхні із зростаючою амплітудою в площині поверхні і і) засіб реєстрації явища дисоціації.
22. Пристрій за п. 21, в якому засіб реєстрації виконаний з можливістю реєстрації акустичного випромінювання. «о зо
23. Пристрій за п. 21 або 22, в якому іммобілізований партнер по скріпленню являє собою білок, антитіло, антиген, фермент, інгібітор ферменту або полінуклеотид. -
24. Пристрій за п. 21 або 22, в якому іммобілізований партнер по скріпленню являє собою клітину, со бактерію, вірус, пріон або фаг.
25. Пристрій за будь-яким з пп. 21-24, в якому різні партнери по скріпленню іммобілізовані в різних ї- з5 Місцях поверхні. | | Й ю
26. Пристрій за будь-яким з пп. 21-25, в якому засіб збудження коливань містить п'єзоелектричний або акустичний перетворювач.
27. Пристрій за п. 26, в якому перетворювач являє собою мікроваги на кристалі кварцу або пристрій поверхневої акустичної хвилі. «
- . и? 1 -і (ее) -і 4) іме) 60 б5
UA2001117935A 1999-04-22 2000-04-25 Спосіб виділення шуканого аналіту з складу речовини і пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню UA57876C2 (uk)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB9909308.0A GB9909308D0 (en) 1999-04-22 1999-04-22 Measurement and use of molecular interactions
PCT/GB2000/001587 WO2001002857A1 (en) 1999-04-22 2000-04-25 Measurement and use of molecular interactions

Publications (1)

Publication Number Publication Date
UA57876C2 true UA57876C2 (uk) 2003-07-15

Family

ID=10852091

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
UA2001117935A UA57876C2 (uk) 1999-04-22 2000-04-25 Спосіб виділення шуканого аналіту з складу речовини і пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню

Country Status (23)

Country Link
US (2) US6589727B1 (uk)
EP (1) EP1171769B1 (uk)
JP (1) JP4493892B2 (uk)
KR (1) KR20020022648A (uk)
CN (1) CN1142435C (uk)
AT (1) ATE278191T1 (uk)
AU (1) AU755958B2 (uk)
BR (1) BR0009865A (uk)
CA (1) CA2369794A1 (uk)
CZ (1) CZ20013633A3 (uk)
DE (1) DE60014348T8 (uk)
ES (1) ES2226825T3 (uk)
GB (1) GB9909308D0 (uk)
HK (1) HK1041920B (uk)
HU (1) HUP0200787A2 (uk)
IL (2) IL145754A0 (uk)
MX (1) MXPA01010640A (uk)
NO (1) NO20015096L (uk)
PL (1) PL354354A1 (uk)
RU (1) RU2223500C2 (uk)
UA (1) UA57876C2 (uk)
WO (1) WO2001002857A1 (uk)
ZA (1) ZA200108562B (uk)

Families Citing this family (58)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HK1047396A1 (zh) 1999-11-08 2003-02-21 University Of Florida Research Foundation, Inc. 监视药物依从的标记检测方法和装置
US20050233459A1 (en) * 2003-11-26 2005-10-20 Melker Richard J Marker detection method and apparatus to monitor drug compliance
US20050054942A1 (en) * 2002-01-22 2005-03-10 Melker Richard J. System and method for therapeutic drug monitoring
US6981947B2 (en) * 2002-01-22 2006-01-03 University Of Florida Research Foundation, Inc. Method and apparatus for monitoring respiratory gases during anesthesia
US7104963B2 (en) * 2002-01-22 2006-09-12 University Of Florida Research Foundation, Inc. Method and apparatus for monitoring intravenous (IV) drug concentration using exhaled breath
US7052854B2 (en) 2001-05-23 2006-05-30 University Of Florida Research Foundation, Inc. Application of nanotechnology and sensor technologies for ex-vivo diagnostics
EP1405067A2 (en) * 2001-05-23 2004-04-07 University Of Florida Method and apparatus for detecting illicit substances
EP1393069A1 (en) 2001-05-24 2004-03-03 The University Of Florida Method and apparatus for detecting environmental smoke exposure
DE10126798A1 (de) * 2001-06-01 2002-12-19 Nanotype Gmbh Verfahren zur Bestimmung einer Probe
US6865949B2 (en) 2003-01-31 2005-03-15 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Transducer-based sensor system
US20070167853A1 (en) 2002-01-22 2007-07-19 Melker Richard J System and method for monitoring health using exhaled breath
WO2004034883A2 (en) * 2002-10-15 2004-04-29 Medtronic Inc. Synchronization and calibration of clocks for a medical device and calibrated clock
US7135806B2 (en) 2002-10-31 2006-11-14 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Transducer-based sensor system with multiple drive signal variants
WO2004067130A2 (de) * 2003-01-26 2004-08-12 Eberhard-Karls-Universität Tübingen Univer Sität Sklinikum Verfahren zum separieren und nachweisen von zumindest einem analyten in biologischen matrizes
CA2517908A1 (en) * 2003-03-04 2005-02-10 Auburn University Methods of forming monolayers of phage-derived products and uses thereof
WO2004095012A1 (en) 2003-04-17 2004-11-04 Akubio Limited Crystal oscillator
US7117743B2 (en) 2003-07-31 2006-10-10 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Multiple-transducer sensor system and method with selective activation and isolation of individual transducers
US6978656B2 (en) 2003-10-31 2005-12-27 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Transducer-based sensor system and method
NZ528338A (en) * 2004-03-19 2006-10-27 Ind Res Ltd Biosensors for detecting bond rupture
US20050226773A1 (en) * 2004-04-01 2005-10-13 Honeywell International, Inc. Multiple modes acoustic wave sensor
US7539459B2 (en) * 2004-04-02 2009-05-26 Edwards Vacuum, Inc. Active noise cancellation system, arrangement, and method
US7497133B2 (en) * 2004-05-24 2009-03-03 Drexel University All electric piezoelectric finger sensor (PEFS) for soft material stiffness measurement
US20080193418A1 (en) * 2004-06-04 2008-08-14 University Of Northern Iowa Research Foundation Bacteriophages that Infect Bacillus Bacteria (Anthrax)
GB0413134D0 (en) * 2004-06-12 2004-07-14 Akubio Ltd Analytical apparatus
US7611908B2 (en) 2005-05-02 2009-11-03 Bioscale, Inc. Method and apparatus for therapeutic drug monitoring using an acoustic device
US7300631B2 (en) 2005-05-02 2007-11-27 Bioscale, Inc. Method and apparatus for detection of analyte using a flexural plate wave device and magnetic particles
US7648844B2 (en) 2005-05-02 2010-01-19 Bioscale, Inc. Method and apparatus for detection of analyte using an acoustic device
US7749445B2 (en) 2005-05-02 2010-07-06 Bioscale, Inc. Method and apparatus for analyzing bioprocess fluids
WO2007041206A2 (en) * 2005-09-30 2007-04-12 Auburn University Drug delivery nanocarriers targeted by landscape phage
US8227261B2 (en) * 2005-11-23 2012-07-24 Bioscale, Inc. Methods and apparatus for assay measurements
US8171795B1 (en) 2006-01-23 2012-05-08 Drexel University Self-exciting, self-sensing piezoelectric cantilever sensor for detection of airborne analytes directly in air
US7942056B2 (en) * 2006-01-23 2011-05-17 Drexel University Self-exciting, self-sensing piezoelectric cantilever sensor
US8286486B2 (en) * 2006-05-10 2012-10-16 Drexel University Molecular control of surface coverage
GB0609382D0 (en) * 2006-05-11 2006-06-21 Univ Cambridge Tech Acoustic wave transducer substrate and measurements using the same
DE102006034842A1 (de) * 2006-07-27 2008-02-07 Siemens Ag Fluidsensor
US7914460B2 (en) * 2006-08-15 2011-03-29 University Of Florida Research Foundation, Inc. Condensate glucose analyzer
US8481335B2 (en) * 2006-11-27 2013-07-09 Drexel University Specificity and sensitivity enhancement in cantilever sensing
US7992431B2 (en) * 2006-11-28 2011-08-09 Drexel University Piezoelectric microcantilevers and uses in atomic force microscopy
WO2008067386A2 (en) * 2006-11-28 2008-06-05 Drexel University Piezoelectric microcantilever sensors for biosensing
EP2115448A4 (en) * 2007-02-01 2013-01-30 Univ Drexel PORTABLE PHASE SHIFT DETECTOR FOR SENSOR APPLICATIONS
US8512947B2 (en) * 2007-02-16 2013-08-20 Drexel University Detection of nucleic acids using a cantilever sensor
WO2008101199A1 (en) 2007-02-16 2008-08-21 Drexel University Enhanced sensitivity of a cantilever sensor via specific bindings
US7993854B2 (en) * 2007-05-30 2011-08-09 Drexel University Detection and quantification of biomarkers via a piezoelectric cantilever sensor
US8354280B2 (en) * 2007-09-06 2013-01-15 Bioscale, Inc. Reusable detection surfaces and methods of using same
US8241569B2 (en) 2007-11-23 2012-08-14 Drexel University Lead-free piezoelectric ceramic films and a method for making thereof
RU2350957C1 (ru) * 2007-12-28 2009-03-27 Институт аналитического приборостроения Российской академии наук Устройство для иммунологических исследований биологических жидкостей
US8236508B2 (en) * 2008-01-29 2012-08-07 Drexel University Detecting and measuring live pathogens utilizing a mass detection device
US8741663B2 (en) 2008-03-11 2014-06-03 Drexel University Enhanced detection sensitivity with piezoelectric sensors
WO2009140660A2 (en) 2008-05-16 2009-11-19 Drexel University System and method for evaluating tissue
GB2473635A (en) * 2009-09-18 2011-03-23 Cambridge Entpr Ltd Detecting concentration of target species
US8722427B2 (en) * 2009-10-08 2014-05-13 Drexel University Determination of dissociation constants using piezoelectric microcantilevers
US20110086368A1 (en) * 2009-10-08 2011-04-14 Drexel University Method for immune response detection
WO2011149526A2 (en) 2010-05-25 2011-12-01 Arryx, Inc. Methods and apparatuses for detection of positional freedom of particles in biological and chemical analyses and applications in immunodiagnostics
GB201020237D0 (en) * 2010-11-30 2011-01-12 Cambridge Entpr Ltd Method and apparatus for characterising molecules
NL2017705B1 (en) 2016-11-02 2018-05-18 Lumicks Tech B V Method and system for studying biological cells
US10191036B1 (en) * 2018-03-22 2019-01-29 NUB4U, Inc. System for detecting and removing biological analytes in fluids
RU184943U1 (ru) * 2018-04-09 2018-11-15 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт физики полупроводников им. А.В. Ржанова Сибирского отделения Российской академии наук Устройство для проведения высокоспецифичной детекции биомаркеров на кварцевом резонаторе
NL2026393B1 (en) * 2020-09-01 2022-05-04 Lumicks Ca Holding B V Sorting of cellular bodies based on force spectroscopy

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4242096A (en) * 1977-11-14 1980-12-30 Minnesota Mining And Manufacturing Company Immunoassay for antigens
US4314821A (en) * 1979-04-09 1982-02-09 Minnesota Mining And Manufacturing Company Sandwich immunoassay using piezoelectric oscillator
US4236893A (en) * 1979-04-09 1980-12-02 Minnesota Mining And Manufacturing Company Method for the assay of classes of antigen-specific antibodies
US4735906A (en) * 1984-11-28 1988-04-05 Texas A&M University Sensor having piezoelectric crystal for microgravimetric immunoassays
US4999284A (en) * 1988-04-06 1991-03-12 E. I. Du Pont De Nemours And Company Enzymatically amplified piezoelectric specific binding assay
US5501986A (en) * 1988-04-06 1996-03-26 E. I. Du Pont De Nemours And Company Piezoelectric specific binding assay with mass amplified reagents
EP0587408A1 (en) * 1992-09-07 1994-03-16 Terumo Kabushiki Kaisha Method for determination of DNA and sensor therefor
IL114692A (en) * 1995-07-21 1999-10-28 Yissum Res Dev Co Determination of an analyte in a liquid medium
US5814525A (en) * 1996-01-25 1998-09-29 Sandia Corporation Piezoelectric biosensor with a ladder polymer substrate coating
IL120445A0 (en) 1997-03-13 1997-07-13 Yissum Res Dev Co Biosensor for cells
GB9706991D0 (en) 1997-04-05 1997-05-21 Univ Heriot Watt Clathrate hydrate dissociation point detection and measurement
US6086821A (en) * 1999-03-29 2000-07-11 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Ultrasonic force differentiation assay
US6308553B1 (en) * 1999-06-04 2001-10-30 Honeywell International Inc Self-normalizing flow sensor and method for the same

Also Published As

Publication number Publication date
HUP0200787A2 (hu) 2002-07-29
ZA200108562B (en) 2002-09-11
KR20020022648A (ko) 2002-03-27
ES2226825T3 (es) 2005-04-01
EP1171769A1 (en) 2002-01-16
CN1347500A (zh) 2002-05-01
US7195909B2 (en) 2007-03-27
RU2223500C2 (ru) 2004-02-10
ATE278191T1 (de) 2004-10-15
EP1171769B1 (en) 2004-09-29
WO2001002857A1 (en) 2001-01-11
IL145754A0 (en) 2002-07-25
NO20015096D0 (no) 2001-10-19
PL354354A1 (en) 2004-01-12
AU755958B2 (en) 2003-01-02
NO20015096L (no) 2001-12-14
DE60014348T8 (de) 2006-04-27
BR0009865A (pt) 2002-03-19
JP4493892B2 (ja) 2010-06-30
JP2003503735A (ja) 2003-01-28
US6589727B1 (en) 2003-07-08
CN1142435C (zh) 2004-03-17
CZ20013633A3 (cs) 2002-06-12
AU4420300A (en) 2001-01-22
HK1041920B (en) 2005-03-18
GB9909308D0 (en) 1999-06-16
CA2369794A1 (en) 2001-01-11
IL145754A (en) 2006-09-05
DE60014348D1 (de) 2004-11-04
MXPA01010640A (es) 2003-08-20
DE60014348T2 (de) 2006-02-16
HK1041920A1 (en) 2002-07-26
US20030194697A1 (en) 2003-10-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
UA57876C2 (uk) Спосіб виділення шуканого аналіту з складу речовини і пристрій для визначення афінності партнерів по скріпленню
US7763475B2 (en) Measurement and use of molecular interactions
US7759134B2 (en) Magnetostrictive ligand sensor
Skládal Piezoelectric biosensors
Lee et al. Immunoassay of prostate-specific antigen (PSA) using resonant frequency shift of piezoelectric nanomechanical microcantilever
US6086821A (en) Ultrasonic force differentiation assay
JP5200003B2 (ja) 磁場を用いた試料中の標的分子の検出
Uttenthaler et al. Characterization of immobilization methods for African swine fever virus protein and antibodies with a piezoelectric immunosensor
US9151752B2 (en) Method for amplifying variation of frequency of signal in piezoelectrical biosensor
Cooper Biosensing using rupture event scanning (REVS)™
US20070072308A1 (en) Methods of forming monolayers of phage-derived products and uses thereof
Mahmud et al. Gravimetric biosensor based on a capacitive micromachined ultrasonic transducer functionalized with peptide ligands
JP4639168B2 (ja) 生体物質相互作用検出・回収方法およびその装置
Mohapatra et al. Mechanical biosensors
Kelling et al. Sensitive and direct detection using rupture event scanning (REVS/spl trade/)
JP3892325B2 (ja) 抗原検査薬及びそれを用いた抗原検査キット、抗原検査装置、抗原検査方法
Eaimkhong Application of Nanotechnology in Biological Research: Diagnostics and Physical Manipulation
Atashbar et al. Sensitivity enhancement of a QCM biosensor using polymer treatment
Choudhary et al. POLYSTYRENE NANOPARTICLES BASED IMMUNOASSAY FOR THE DETECTION OF β-GALACTOSIDASE USING QUARTZ CRYSTAL MICROBALANCE
Thompson et al. Acoustic wave study of interfacially-bound proteins, nucleic acids and blood platelets
WO2016157513A1 (ja) 抗原抗体間相互作用量の同定法及び装置