WO2020003978A1 - 好中球貪食能増強剤 - Google Patents

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neutrophils
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neutrophil
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正洋 西堀
秀徳 和氣
陽平 高橋
秀治 森
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Okayama University NUC
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Definitions

  • the present invention relates to a neutrophil phagocytic enhancer. More specifically, the present invention relates to a neutrophil phagocytosis-enhancing agent containing a histidine-rich glycoprotein as an active ingredient.
  • Neutrophils have functions of migration, phagocytosis, and sterilization, but phagocytosis is the first barrier of the organism against microbial invasion, and is also regarded as a fundamental function of the immune system.
  • Neutrophils play a major role in host defense, phagocytosing foreign substances centered on pathogenic microorganisms that have invaded the body, and killing them with active oxygen generated by themselves.
  • Neutrophils have a non-specific immunity that seeks to eliminate substances that enter the body. When immunoglobulins and complements adhere to foreign substances and become opsonized (Op), neutrophils recognize the foreign substances and phagocytose.
  • Op opsonized
  • neutrophils recognize the foreign substances and phagocytose.
  • there is no therapeutic agent that enhances the phagocytic activity of bacteria such as neutrophils.
  • Histidine-rich glycoprotein is a plasma protein with a molecular weight of about 80 kDa identified by Heimburger et al. (1972).
  • a high histidine-containing protein composed of 507 amino acids, of which 66 are histidines, are synthesized mainly in the liver, and are present in human plasma at concentrations considered to be very high, about 100-150 ⁇ g / mL .
  • HRG is known to be involved in the regulation of the coagulation-fibrinolysis system and the control of angiogenesis (Non-Patent Document 1).
  • compositions and products comprising: Also, in the field of angiogenesis, there is disclosure of the use of substantially pure continuous polypeptides with anti-angiogenic activity, including subfragments derived from the central region of HRG (US Pat. No. 6,049,045). Furthermore, there is also disclosed a neutrophil-vascular endothelial cell adhesion inhibitor containing HRG as an active ingredient (Patent Document 3). Patent Document 3 discloses a neutrophil activation-regulating action using HRG as an active ingredient, but does not report bacterial phagocytic activity of neutrophils and the like.
  • a target protein was prepared using a gene expression cassette having a special structure (Patent Document 4).
  • the gene expression cassette by using the gene expression cassette, cells capable of stably and highly producing the target protein can be obtained.
  • the prepared proteins include HRG and HRG-Fc fusion protein in Examples. It is shown.
  • a fusion product of the Fc domain of IgG and a specific substance a fusion product of a protein classified into a receptor, a cytokine, a peptide, an enzyme, or the like is known, and they are expected to prolong blood half-life. It has been artificially designed.
  • the effect of the HRG-Fc fusion protein has not yet been reported.
  • An object of the present invention is to provide a neutrophil phagocytosis enhancer. Further, the present invention provides a neutrophil phagocytosis-enhancing agent as a therapeutic agent or a therapeutic adjuvant for various bacterial infections, viral infections, fungal infections, parasitic infections, and mixed infections thereof.
  • neutrophil phagocytosis potentiator containing HRG as an active ingredient.
  • the present inventors have focused on HRG having a function of controlling neutrophil activity in order to solve the above problems, and as a result of intensive studies, bacteria, viruses, fungi, parasites among neutrophil activity For the first time, the inventors have found that HRG has an enhancing effect on the phagocytic activity against pathogens and foreign substances caused by such factors, and completed the present invention.
  • the present invention includes the following. 1. A neutrophil phagocytosis enhancer comprising a histidine-rich glycoprotein as an active ingredient. 2. 2. The neutrophil phagocytosis-enhancing agent according to the above item 1, wherein the histidine-rich glycoprotein as an active ingredient is present in the form of an Fc fusion protein obtained by fusing the histidine-rich glycoprotein with an Fc region of an antibody. 3. Fc region of the antibody is the Fc region derived from IgG 2, neutrophil phagocytosis enhancement agent according to [2. 4. 4. 4. The neutrophil phagocytosis-enhancing agent according to any one of the above items 1 to 3, as an infectious disease therapeutic agent or an infectious disease therapeutic adjuvant. 5. 5. 5.
  • Sphere phagocytosis enhancer is any one selected from respiratory tract infection, urinary tract infection, biliary tract infection, gastrointestinal tract infection, and central nervous system infection.
  • A. A method for enhancing neutrophil phagocytosis using HRG as an active ingredient of a neutrophil phagocytosis enhancer.
  • B. A method for treating infectious disease or a method for assisting infectious disease treatment, wherein HRG is used as an active ingredient of a neutrophil phagocytosis enhancer.
  • C. HRG as an active ingredient is in the form of an Fc fusion protein obtained by fusing HRG and an Fc region of an antibody, wherein the neutrophil phagocytosis-enhancing method described in A above, or the infectious disease treatment method or infectious disease described in B above. Treatment assistance method.
  • Fc region of the antibody is the Fc region derived from IgG 2, neutrophil phagocytosis according to item C enhancing method or infection treatment method or infective auxiliary methods.
  • FIG. The method for treating an infectious disease or the method for assisting infectious disease treatment according to the above D, wherein the infectious disease is an infectious disease caused by one or more pathogens selected from bacteria, viruses, fungi, and parasites. .
  • F. The infection according to item D or E, wherein the infection is any infection selected from respiratory infections, urinary tract infections, biliary tract infections, gastrointestinal tract infections, and central nervous system infections. A method of treatment or a method of assisting infectious disease treatment.
  • neutrophil phagocytosis-enhancing agent containing the HRG of the present invention as an active ingredient may be abbreviated as “neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention
  • neutrophil phagocytosis-enhancing agent may be used for neutrophils in a normal state. When acted on, it has the effect of effectively enhancing the phagocytic ability of neutrophils against foreign substances such as bacteria.
  • FIG. 1 is a view showing the structure of an HRG-mounted construct required for producing recombinant human HRG.
  • Example 2 BRIEF DESCRIPTION OF THE DRAWINGS
  • FIG. 1 is a view showing a nucleotide sequence (EcoR1-HRG-Xho1: SEQ ID NO: 3) of a DNA encoding a coding region of HRG, which is necessary for producing a recombinant human HRG or HRG-Fc fusion protein.
  • FIG. 4 shows the results of neutrophil phagocytosis analysis of Escherichia coli and Staphylococcus aureus using various concentrations of HRG.
  • FIG. 4 is a diagram showing the results of phagocytosis image analysis of neutrophils at various concentrations of hHRG, rHRG or HRG-Fc with respect to phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli.
  • FIG. 4 is a view showing the results of phagocytosis image analysis of neutrophils by a control such as hHRG, rHRG, HRG-Fc or HBSS or HSA with respect to phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli.
  • FIG. 4 is a view showing the results of neutrophil phagocytosis analysis by hHRG, rHRG or HRG-Fc with respect to phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli.
  • FIG. 2 is a view showing the results of neutrophil phagocytosis analysis by hHRG, rHRG or HRG-Fc with respect to phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli.
  • FIG. 4 is a diagram showing the results of phagocytic image analysis of neutrophils with each concentration of hHRG, rHRG, or HRG-Fc with respect to phagocytic activity of neutrophils against Staphylococcus aureus.
  • FIG. 4 is a diagram showing the results of phagocytosis image analysis of neutrophils by a control such as hHRG, rHRG, HRG-Fc, or HBSS or HSA with respect to phagocytic activity of neutrophils against Staphylococcus aureus.
  • FIG. 2 is a diagram showing the results of phagocytic image analysis of neutrophils with each concentration of hHRG, rHRG, or HRG-Fc with respect to phagocytic activity of neutrophils against Staphylococcus aureus.
  • FIG. 4 is a graph showing the results of neutrophil phagocytosis analysis by hHRG, rHRG, or HRG-Fc with respect to neutrophil phagocytosis ability against Staphylococcus aureus.
  • FIG. 4 is a view showing the results of neutrophil phagocytosis analysis using IL-8, fMLP, LPS, C5a, or the like, with respect to phagocytic ability of neutrophils against Escherichia coli.
  • FIG. 1 Comparative Example 1
  • FIG. 9 is a view showing the results of neutrophil phagocytosis analysis by IL-8, fMLP, LPS, C5a, or the like, with regard to the phagocytic ability of neutrophils against Staphylococcus aureus.
  • Comparative Example 1 It is a figure which shows the result of having performed the confirmation test about the neutrophil phagocytosis enhancement effect by HRG stimulation.
  • FIG. 9 is a view showing the results of confirming the phagocytic ability of neutrophils against Escherichia coli or Staphylococcus aureus with respect to the action of HRG using an anti-HRG antibody.
  • FIG. 3 FIG.
  • FIG. 15A shows the phagocytosis of neutrophils on E. coli
  • FIG. 15B shows the phagocytosis of neutrophils on S. aureus.
  • FIG. 2 is a photograph showing the phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli or S. aureus pretreated with 5-fold diluted human serum.
  • the present invention relates to a neutrophil phagocytosis enhancer containing HRG as an active ingredient.
  • Neutrophils play a major role in host defense, phagocytosing foreign substances, especially pathogenic microorganisms, that have invaded the body, and killing them with active oxygen generated by them.
  • Neutrophils have a non-specific immunity that seeks to eliminate substances that enter the body.
  • immunoglobulins and complements adhere to foreign substances and become opsonized (Op)
  • neutrophils recognize the foreign substances and phagocytose.
  • there is no therapeutic agent that enhances the bacterial phagocytic activity of neutrophils or the like and a method for improving the bacterial clearance disorder due to the decreased bacterial phagocytic activity of neutrophils is desired.
  • HRG as an active ingredient contained in the “neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention can be prepared by a method of isolation and purification from a biological component, a method of preparing using a genetic recombination technique, or a synthesis. Yes, its purity is not necessarily limited to the highest purity.
  • HRG can be purified and / or isolated from biological components such as blood such as plasma and serum, spinal fluid, and lymph. Suitable biological components are blood components such as plasma and serum.
  • a method of isolating and purifying from a biological component a method known per se or any method to be developed in the future can be applied. For example, it can be prepared by passing plasma through an affinity column prepared using Ni-NTA (nickel-nitrilotriacetic acid) agarose resin.
  • a method for producing HRG using a genetic recombination technique a method known per se or any method to be developed in the future can be applied.
  • a full-length cDNA encoding HRG or a cDNA encoding a portion having HRG activity can be cloned into an expression vector and prepared.
  • it may be a protein biosynthesized from all or a part of the nucleotide specified by GenBank ⁇ Accession ⁇ No. NM000412.
  • a full-length cDNA encoding the amino acid sequence of mature HRG (SEQ ID NO: 1) or a cDNA encoding a portion thereof can be cloned into an expression vector and prepared.
  • HRG as an active ingredient contained in the “neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention may be an HRG protein itself or a partial protein or peptide having HRG activity. Furthermore, it may be one containing a sugar chain or one having no sugar chain added. After cleavage of the signal peptide by proteolytic enzymes, mature HRG has the major components of (1) cystatin-like region 1, (2) cystatin-like region 2, (3) His / Pro region, and (4) C-terminal region. There are four regions. The His / Pro region is very rich in proline residues and histidine residues, and can be specified by the amino acid sequence shown at positions 330 to 389 of the amino acid sequence specified by SEQ ID NO: 1.
  • a method for producing HRG using a genetic recombination technique specifically, a method described in Patent Document 4 can be applied.
  • a full-length cDNA encoding HRG or a cDNA encoding a portion having the activity of HRG for example, a full-length cDNA encoding the amino acid sequence of mature HRG (SEQ ID NO: 1) or a cDNA encoding a portion is cloned into an expression vector.
  • a desired HRG expression vector is prepared.
  • an HRG protein can be prepared using the HRG-mounted construct shown in FIG.
  • the HRG protein constituting the HRG-Fc fusion protein of the present invention may be the entire mature HRG, may contain a sugar chain, or may not have a sugar chain. It may be a partial protein or peptide having HRG activity among mature HRG.
  • the Fc constituting the HRG-Fc fusion protein may be any polypeptide that specifies the Fc region of the antibody.
  • Antibodies are composed of polypeptides called heavy chains (H chains) and light chains (L chains).
  • the H chain is composed of a variable region (VH) and a constant region (CH) from the N-terminal side
  • the L chain is composed of a variable region (VL) and a constant region (CL) from the N-terminal side
  • CH is further composed of domains of CH1, hinge, CH2, and CH3 from the N-terminal side.
  • both CH2 and CH3 regions are referred to as Fc regions.
  • Antibody classes include, for example, IgG, IgA, IgE and IgM.
  • the Fc region used in the HRG-Fc fusion protein of the present invention may be derived from any of the subclasses of IgG 1 , IgG 2 , IgG 3 and IgG 4 , but is particularly preferably derived from IgG 2 .
  • complement activity is low, considered inflammatory reaction becomes side effects are alleviated.
  • the amino acid sequence of the human IgG 2 Fc region is shown in SEQ ID NO: 2 in the sequence listing.
  • the stability of the formulation can be improved by fusing the Fc region with a protein or peptide, which is generally considered to be less stable in the body and difficult to obtain medicinal effects, thereby exhibiting more effective medicinal effects be able to. Further, by using the Fc region of human IgG 2, complement activity is low, considered inflammatory response to be side effect is relaxed pharmaceutical formulation.
  • The“ neutrophil phagocytosis-enhancing agent ”of the present invention can enhance the phagocytic activity of bacteria such as neutrophils.
  • the “neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention described above contains HRG as an active ingredient, and contains HRG itself as HRG, and / or an HRG-Fc fusion protein, and a pharmacologically acceptable carrier. Can be exemplified.
  • the pharmacologically acceptable carrier includes, for example, excipients, disintegrants or disintegration aids, binders, lubricants, coating agents, pigments, diluents, bases, solubilizers or dissolution aids, Examples include isotonic agents, pH adjusters, stabilizers, propellants, and adhesives.
  • ⁇ The“ neutrophil phagocytosis-enhancing agent ”of the present invention can enhance the phagocytosis of neutrophils against pathogens and foreign substances caused by bacteria, viruses, fungi or parasites.
  • the ⁇ neutrophil phagocytosis enhancer '' of the present invention can be used as a therapeutic or therapeutic adjuvant for bacterial infections, viral infections, fungal infections, parasitic infections and mixed infections thereof.
  • infectious diseases applicable in the present invention include the various infectious diseases described above, and further include, for example, respiratory tract infection, urinary tract infection, biliary tract infection, gastrointestinal tract infection, central nervous system infection and the like. it can.
  • the present invention extends to a therapeutic or therapeutic adjuvant for these diseases.
  • the present invention also extends to a method for enhancing neutrophil phagocytosis using HRG as an active ingredient of a neutrophil phagocytosis enhancer. Furthermore, the present invention extends to a method for treating infection or a method for assisting treatment of infection using HRG as an active ingredient of a neutrophil phagocytosis enhancer.
  • the“ neutrophil phagocytosis enhancer ”of the present invention when used as a therapeutic or therapeutic agent for the above-mentioned diseases, it may be administered locally or systemically.
  • the dosage form of the therapeutic and / or prophylactic agent include oral administration preparations and parenteral administration preparations.
  • Parenteral preparations include, for example, lotions, ointments, those which can be administered transdermally as external preparations such as tapes and cataplasms, and further, topical administration by injection or the like, intravenous injection administration, Examples that can be administered by tube administration can be given.
  • Parenteral formulations may include sterile aqueous or non-aqueous solutions, suspensions, and emulsions.
  • non-aqueous diluents examples include propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oils such as olive oil and organic ester compositions such as ethyl oleate, which are suitable for injection.
  • Aqueous carriers may include water, alcoholic aqueous solutions, emulsions, suspensions, saline and buffered media.
  • Parenteral carriers may include sodium chloride solution, Ringer's dextrose, dextrose and sodium chloride, Ringer's lactic acid and binding oils.
  • parenteral administration preparations in a form that allows local administration by injection, intravenous injection administration, or tube administration, as a carrier, for example, liquid supplements, nutrients (monosaccharides, oligosaccharides, polysaccharides, It may contain starch, including partially degraded starch) or an electrolyte (eg, based on Ringer's dextrose).
  • the "neutrophil phagocytosis enhancer" of the present invention can include a preservative and other additives such as an antimicrobial compound, an antioxidant, a chelating agent, and an inert gas.
  • the “neutrophil phagocytosis enhancer” of the present invention may be administered in combination with other pharmaceutical preparations.
  • the other pharmaceutical preparation that can be used in combination is not particularly limited, and may be any of a therapeutic agent or a prophylactic agent that is already commercially available, or a therapeutic agent or a prophylactic agent that will be developed in the future.
  • a pharmaceutical preparation having a different mechanism of action from the “neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention is suitable.
  • each component other than HRG as an active ingredient, which is blended in the “neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention may be blended in an appropriate amount within a range that does not interfere with the intended purpose of the present invention.
  • Example 1 Purification of human plasma-derived HRG Using human plasma as a starting material, human plasma was obtained using Ni-NTA affinity chromatography and high-performance liquid chromatography (anion exchange column (monodispersed hydrophilic polymer beads: Mono Q)). Plasma-derived HRG (hereinafter “hHRG”) was purified. An hHRG purified sample was obtained in a fraction with a molecular weight of about 80 kDa. The hHRG of this example was produced by the method described in Example 1 of Patent Document 3 (WO 2013/183494). The hHRG samples at each concentration were prepared by diluting with a Hanks solution (Hanks' Balanced Salt Solution: HBSS).
  • HBSS Hanks solution
  • Example 2 Production of Recombinant Human HRG
  • the recombinant human HRG of this example (hereinafter, “rHRG”) was prepared by the method described in Example 3 of Patent Document 4 (WO 2017/061354).
  • GRBCO TM Dulbecco's Modified Eagle Medium / Nutrient Mixture F-12 containing 10% FCS (Chinese Hamster Ovary cells) cultured in CHO cells (Chinese Hamster Ovary cells), HRG expression vector, transposase expression vector, drug resistance gene expression
  • the vector was co-transfected.
  • the culture supernatant containing rHRG was collected.
  • Add QIAGEN (TM) Ni-NTA agarose gel (gel containing Ni-NTA to Sepharose CL-6B support ) previously washed with 30 mL of PBS (-) to the culture supernatant, and spin at 4 ° C for 2 hours.
  • the rHRG was bound to a QIAGEN TM Ni-NTA agarose gel.
  • washing solution 1 PBS (-) containing 30 mM imidazole (pH 7.4)
  • washing solution 2 (1 M NaCl + 10 mM PBS (pH 7.4)
  • washing column 3 PBS (-) (pH 7.4)
  • RHRG was eluted at 4 ° C. in PBS ( ⁇ ) (pH 7.4) containing 500 mM imidazole.
  • RHRG samples at each concentration were prepared by dilution with HBSS.
  • HRG-Fc fusion proteins were produced HRG + human IgG 2 of the Fc fusion protein (hereinafter "HRG-Fc").
  • HRG-Fc human IgG 2 of the Fc fusion protein
  • a nucleic acid comprising a nucleotide sequence encoding the Fc region of human IgG 2 to a nucleic acid comprising the nucleotide sequence identified under DNA (GenBank Accession No. BC069574 (NCBI )) which encodes the coding region of HRG bound Patent Document 4 ( International Publication No. WO 2017/061354).
  • HRG-Fc samples of each concentration were prepared by diluting with HBSS.
  • the nucleotide sequence (EcoR1-HRG-Xho1) of the DNA coding for the HRG coding region required for preparation of the HRG-Fc fusion protein is shown in SEQ ID NO: 3 (FIG. 2) in the same manner as in Example 2, and the human IgG 2
  • the nucleotide sequence encoding the Fc region (XhoI-GPG-hIgG 2 Fc-Xba1) is shown in SEQ ID NO: 4 (FIG. 3). All candidate protein proteins improve the stability of protein preparations by fusing with the Fc region of human IgG, which is part of the antibody.Furthermore, complement activity is reduced by using the Fc region of human IgG2. It is considered that the drug will be a drug that alleviates the inflammatory reaction that is a side effect.
  • Neutrophil phagocytic confirmation test 1 by HRG stimulation 1 The phagocytic activity of neutrophils against E. coli (Gram-negative bacteria) or S. aureus (Gram-positive bacteria) was measured using a pHrodo TM indicator. Phagosomes in neutrophils can be fluorescently stained with a pHrodo TM staining reagent to measure phagocytic activity. Human neutrophils were separated from whole blood using a cell separation solution Polymorphprep TM , and the cell solution was washed with PBS and suspended.
  • the cell number was adjusted and stained with Hoechst33342 (nuclear staining: blue) and calcein-AM (cytoplasm: green) after incubation at 37 ° C. for 15 minutes under CO 2 .
  • the neutrophil fluid was resuspended in HBSS and the cell number was adjusted (2 ⁇ 10 6 cells / mL).
  • the hHRG solution was added to the neutrophil solution having the above cell concentration, dispensed into a 96-well plate, and incubated at 37 ° C. for 30 minutes under CO 2 . Thereafter, Escherichia coli (pHrodo TM E.coli) or Staphylococcus aureus (pHrodo TM S. aureus) was added to a 96-well plate, and incubated at 37 ° C under CO 2 .
  • the final concentration of the cell solution is 2 ⁇ 10 4 cells / well (2 ⁇ 10 5 cells / mL)
  • the final concentration of HRG is 0.01 to 3.0 ⁇ M
  • the final concentration of pHrodo TM E.coli or pHrodo TM S.aureus. was 25 ⁇ g / well (250 ⁇ g / mL). Incubation was performed with E. coli for 60 minutes and with S. aureus for 120 minutes.
  • HRG promoted the phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli and Staphylococcus aureus.
  • HRG is present in blood at about 1 ⁇ M, and since the ability of HRG to promote phagocytosis in this example reaches a plateau from 0.3 ⁇ M, in healthy subjects, bacterial phagocytosis of neutrophils in blood is observed in healthy subjects. The ability is maintained, suggesting that the phagocytic ability is reduced in pathologies where HRG is reduced, such as sepsis.
  • RHRG promoted the phagocytosis of neutrophils against Escherichia coli and Staphylococcus aureus to the same extent as hHRG, but HRG-Fc was found to have a weak phagocytosis promoting ability.
  • Example 3 Neutrophil phagocytic confirmation test 3 by HRG stimulation 3
  • the same method as in Experimental Example 1 was used to add 1.0 ⁇ M of hHRG to the neutrophil solution having the above cell concentration (2 ⁇ 10 6 cells / mL).
  • the phagocytic ability of neutrophils against Escherichia coli or S. aureus when mL was added was confirmed.
  • FIG. 13 shows the analysis result.
  • the phagocytic ability of neutrophils against Escherichia coli or S. aureus was enhanced by HRG, but when each HRG antibody was added, the phagocytic ability was suppressed. On the other hand, when the control antibody was added, the phagocytic ability of neutrophils against Escherichia coli or S. aureus by HRG was maintained. From this, it was confirmed that HRG has an effect of enhancing the phagocytic ability of neutrophils.
  • Zymosan (pHrodo TM Red Zymosan, manufactured by Thermo Fisher) was mixed at 4 ° C. with serum containing HRG or serum not containing HRG, and further stirred well by sonication. After stirring, centrifugation was performed at 4 ° C. and 15000 rpm for 15 minutes. The supernatant was discarded and suspended in HBSS. After repeating this washing operation twice, Zymosan was suspended in HBSS. At this time, the Zymosan concentration was 1.0 mg / mL.
  • the hHRG solution was added to the neutrophil solution, dispensed into a 96-well plate, and incubated at 37 ° C. for 30 minutes under CO 2 . Thereafter, the above Zymosan solution was added to a 96-well plate, and incubated at 37 ° C. for 120 minutes under CO 2 . At this time, the final concentration of the cell solution was 2 ⁇ 10 4 cells / well (2 ⁇ 10 5 cells / mL), the final concentration of HRG was 1.0 ⁇ M, and the final concentration of Zymosan was 50 ⁇ g / well (500 ⁇ g / mL).
  • an InCell Analyzer GE Heslcare
  • the amount of pHrodo incorporated into neutrophils and colored red was analyzed by image analysis and quantification to confirm the phagocytic activity of neutrophils.
  • the hHRG solution was added to the neutrophil solution, dispensed into a 96-well plate, and incubated at 37 ° C. for 30 minutes under CO 2 . Thereafter, Escherichia coli or Staphylococcus aureus pretreated with the above HSA, HRG solution, or 5-fold diluted human serum was added, and the mixture was dispensed into a 96-well plate and incubated at 37 ° C. for 120 minutes under CO 2 .
  • the final concentration of the cell solution was 2 ⁇ 10 4 cells / well (2 ⁇ 10 5 cells / mL), the final concentration of HSA or HRG was 1.0 ⁇ M, and the final concentration of Zymosan was 25 ⁇ g / well (250 ⁇ g / mL).
  • the amount of pHrodo incorporated into neutrophils and colored red was analyzed by image analysis and quantification to confirm the phagocytic activity of neutrophils.
  • FIGS. 15A and 15B The phagocytic analysis results of neutrophils by HRG against Escherichia coli and Staphylococcus aureus pretreated were shown in FIGS. 15A and 15B.
  • HRG pretreatment did not show an opsonin (Op) enhancing effect on Escherichia coli and S. aureus.
  • treatment with 5-fold diluted human serum exerted a strong opsonin (Op) enhancing effect on E. coli and S. aureus.
  • HRG pretreatment did not show an increase in neutrophil phagocytosis in the cells, suggesting that HRG acted on neutrophils, not cells, and enhanced its phagocytosis. .
  • the addition of HRG significantly enhanced the phagocytosis of neutrophils in cells that were opsonized (Op) in human serum compared to cells that were not opsonized (Op). This suggests that neutrophil phagocytosis is further promoted in the presence of HRG in cells that have been opsonized (Op) in vivo.
  • the "neutrophil phagocytosis-enhancing agent” of the present invention enhances neutrophil phagocytosis, thereby allowing various bacterial infections, viral infections, fungal infections, parasitic infections and the like. Can be used as a therapeutic agent or a therapeutic adjuvant for mixed infections.
  • the “neutrophil phagocytosis enhancer” of the present invention in combination with other pharmaceutical preparations, for example, a therapeutic agent already on the market or a therapeutic agent to be developed in the future, the dosage / administration frequency of other pharmaceutical preparations Can be reduced.
  • the combined use of the "neutrophil phagocytosis enhancer" of the present invention can reduce the dose / administration frequency of other pharmaceutical preparations, which is useful. .

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Abstract

本発明は、好中球貪食能増強剤を提供することを課題とし、好中球貪食能増強剤は好中球の貪食能を増強することにより、各種細菌感染症、ウイルス感染症、真菌感染症、寄生生物感染症やこれらの混合感染症の治療剤又は治療補助剤として機能する好中球貪食能増強剤を提供することを課題とする。 HRGを有効成分として含む好中球貪食能増強剤により、前記課題を解決する。本発明者らは、HRGが好中球活性の制御機能を有することに着目し、鋭意検討を重ねた結果、好中球活性のうち、細菌、ウイルス、真菌、寄生生物等に起因する病原体や異物に対する貪食能をHRGが効果的に増強することを新規に見出した。

Description

好中球貪食能増強剤
　本発明は、好中球貪食能増強剤に関する。より詳しくは、ヒスチジンリッチ糖タンパク質を有効成分として含む好中球貪食能増強剤に関する。
　本出願は、参照によりここに援用されるところの日本国出願の特願２０１８－１２３６２６号優先権を請求する。
　好中球は遊走、貪食、殺菌の各機能を有するが、貪食能（phagocytosis）は微生物浸入に対する生体の最初のバリアーであり、免疫系の基本的機能としても重要視されている。好中球の主な役割は生体防御機能であり、体内に侵入してきた病原微生物を中心とする異物を貪食し、自らが発生させた活性酸素によってそれを殺菌する。好中球は体内に侵入する物質を排除しようとする非特異免疫能を有する。免疫グロブリンや補体などが異物に接着しオプソニン(Op)化されると、好中球は異物を認識し貪食する。しかしながら好中球等の細菌貪食活性を高める治療薬は未だ存在しない。好中球の細菌貪食能低下による細菌クリアランス障害を改善するための方法が望まれている。
　ヒスチジンリッチ糖タンパク質（Histidine-rich glycoprotein; HRG）は、Heimburger et al. (1972)によって同定された分子量約80kDaの血漿タンパク質である。合計507個のアミノ酸より構成され、そのうちヒスチジンが66個存在する高ヒスチジン含有タンパク質であり、主として肝臓で合成され、約100～150μg/mLという非常に高いと考えられる濃度でヒト血漿中に存在する。HRGは、凝固線溶系の調節や血管新生の制御に関与していることが知られている（非特許文献１）。さらに、HRGポリペプチドを投与することによる血管形成を阻害する方法、HRGポリペプチド、HRGポリペプチドに結合する抗体及び受容体、HRG欠乏性血漿及びポリヌクレオチド、HRGポリペプチドをコードするベクター及び宿主細胞を含む、製薬的組成物及び製品が開示されている（特許文献１）。また、血管新生の分野に関し、HRGの中央領域に由来するサブフラグメントを含む抗血管新生活性のある実質的に純粋な連続ポリペプチドの使用に関する開示がある（特許文献２）。さらに、HRGを有効成分とする好中球‐血管内皮細胞接着抑制剤についても開示がある（特許文献３）。特許文献３ではHRGを有効成分とする好中球活性化調節作用について開示があるが、好中球等の細菌貪食活性については報告されていない。
　特別な構造からなる遺伝子発現カセットを用いて目的タンパク質を作製したことが開示されている（特許文献４）。ここでは、当該遺伝子発現カセットを用いることで、目的タンパク質を安定かつ高産生可能な細胞が得られることが示されており、作製したタンパク質の例としてHRGやHRG-Fc融合タンパク質等が実施例に示されている。IgGのFcドメインと特定の物質との融合物として、受容体、サイトカイン、ペプチドや酵素等に分類されるタンパク質との融合物が公知であり、それらは、血中半減期の延長を期待して人工的に設計されてきた。しかしながらHRG-Fc融合タンパク質の作用についてはまだ報告されていない。
Blood, Vol.117, No.7, 2093-2101 (2011)
特表２００４－５２７２４２号公報 特表２００７－５２８７１０号公報 特許第５８０７９３７号公報（国際公開２０１３／１８３４９４号） 国際公開２０１７／０６１３５４号
　本発明は、好中球貪食能増強剤を提供することを課題とする。さらには、各種細菌感染症、ウイルス感染症、真菌感染症、寄生生物感染症やこれらの混合感染症の治療剤又は治療補助剤としての好中球貪食能増強剤を提供する。
　HRGを有効成分として含む好中球貪食能増強剤による。本願発明者らは、上記課題を解決するためにHRGが好中球活性の制御機能を有することに着目し、鋭意検討を重ねた結果、好中球活性のうち細菌、ウイルス、真菌、寄生生物等に起因する病原体や異物に対する貪食能についてHRGが増強効果を示すことを初めて見出し、本発明を完成した。
　すなわち本発明は、以下よりなる。
１．ヒスチジンリッチ糖タンパク質を有効成分として含む好中球貪食能増強剤。
２．有効成分としてのヒスチジンリッチ糖タンパク質が、ヒスチジンリッチ糖タンパク質と抗体のFc領域とを融合させたFc融合タンパク質の形態で存在する、前項１に記載の好中球貪食能増強剤。
３．抗体のFc領域が、IgG2由来のFc領域である、前項２に記載の好中球貪食能増強剤。
４．感染症治療剤又は感染症治療補助剤としての前項１～３のいずれかに記載の好中球貪食能増強剤。
５．感染症が、細菌、ウイルス、真菌、及び寄生生物から選択されるいずれか１種又は複数種由来の病原体に起因する感染症である、前項４に記載の好中球貪食能増強剤。
６．感染症が、呼吸器感染症、尿路感染症、胆道感染症、消化管感染症、及び中枢神経系感染症から選択されるいずれかの感染症である、前項４又は５に記載の好中球貪食能増強剤。
Ａ．HRGを好中球貪食能増強剤の有効成分として使用する好中球貪食能増強方法。
Ｂ．HRGを好中球貪食能増強剤の有効成分として使用する感染症治療方法若しくは感染症治療補助方法。
Ｃ．有効成分としてのHRGが、HRGと抗体のFc領域とを融合させたFc融合タンパク質の形態である、前項Ａに記載の好中球貪食能増強方法あるいはＢに記載の感染症治療方法若しくは感染症治療補助方法。
Ｄ．抗体のFc領域が、IgG2由来のFc領域である、前項Ｃに記載の好中球貪食能増強方法あるいは感染症治療方法若しくは感染症治療補助方法。
Ｅ．感染症が、細菌、ウイルス、真菌、及び寄生生物から選択されるいずれか１種又は複数種由来の病原体に起因する感染症である、前項Ｄに記載の感染症治療方法若しくは感染症治療補助方法。
Ｆ．感染症が、呼吸器感染症、尿路感染症、胆道感染症、消化管感染症、及び中枢神経系感染症から選択されるいずれかの感染症である、前項Ｄ又はＥに記載の感染症治療方法若しくは感染症治療補助方法。
　本発明のHRGを有効成分として含む好中球貪食能増強剤（以下、本発明の「好中球貪食能増強剤」と略記することがある。）は、正常な状態にある好中球に作用させたとき、好中球の、細菌等の異物に対する貪食能を効果的に増強する作用を有する。
遺伝子組換えヒトHRGの産生に必要なHRG搭載コンストラクトの構造を示す図である。（実施例２） 遺伝子組換えヒトHRG又はHRG-Fc融合タンパク質の作製に必要な、HRGのコーディング領域をコードするDNAの塩基配列（EcoR1-HRG-Xho1：配列番号３）を示す図である。（実施例２） HRG-Fc融合タンパク質の作製に必要な、ヒトIgG2のFc領域をコードする塩基配列（XhoI-GPG-hIgG2 Fc-Xba1：配列番号４）を示す図である。（実施例３） 大腸菌及び黄色ブドウ球菌について、各濃度のHRGによる好中球の貪食能解析結果を示す図である。（実験例１） 大腸菌に対する好中球の貪食に関し、各濃度のhHRG、rHRG又はHRG-Fcによる好中球の貪食能画像解析結果を示す図である。（実験例２） 大腸菌に対する好中球の貪食に関し、hHRG、rHRG、HRG-Fc又はHBSS若しくはHSA等の対照による好中球の貪食能画像解析結果を示す図である。（実験例２） 大腸菌に対する好中球の貪食に関し、hHRG、rHRG又はHRG-Fcによる好中球の貪食能解析結果を示す図である。（実験例２） 黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、各濃度のhHRG、rHRG又はHRG-Fcによる好中球の貪食能画像解析結果を示す図である。（実験例２） 黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、hHRG、rHRG、HRG-Fc又はHBSS若しくはHSA等の対照による好中球の貪食能画像解析結果果を示す図である。（実験例２） 黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、hHRG、rHRG又はHRG-Fcによる好中球の貪食能解析結果を示す図である。（実験例２） 大腸菌に対する好中球の貪食能について、IL-8、fMLP、LPS又はC5a等による好中球の貪食能解析結果を示す図である。（比較例１） 黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、IL-8、fMLP、LPS又はC5a等による好中球の貪食能解析結果を示す図である。（比較例１） HRG刺激による好中球貪食作用増強作用について確認試験を行った結果を示す図である。大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、抗HRG抗体を用いてHRGの作用について確認した結果を示す図である。（実験例３） HRG含有又は不含血清を用いてオプソニン(Op)化されたZymosanを好中球に貪食させることにより、オプソニン(Op)化時のHRGの影響を確認した結果を示す図である。（実験例４） HSA、HRG又は5倍希釈ヒト血清で前処理（ヒト血清時はオプソニン(Op)化）した大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、HRGの有無による貪食能の違いを確認した結果を示す図である。図１５Ａは大腸菌に対する好中球の貪食作用を示し、図１５Ｂは黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食作用を示した。（実験例５） 5倍希釈ヒト血清で前処理した大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食作用を示す写真図である。（実験例５）
　本発明は、HRGを有効成分として含む好中球貪食能増強剤に関する。
　好中球の主な役割は生体防御機能であり体内に侵入してきた病原微生物を中心とする異物を貪食し、自らが発生させた活性酸素によってそれを殺菌する。好中球は体内に侵入する物質を排除しようとする非特異免疫能を有する。免疫グロブリンや補体などが異物に接着しオプソニン（Op）化されると、好中球は異物を認識し貪食する。しかしながら好中球等の細菌貪食活性を高める治療薬というものは未だ存在せず、好中球の細菌貪食能低下による細菌クリアランス障害を改善するための方法が望まれている。
　本発明の「好中球貪食能増強剤」に含まれる有効成分としてのHRGは、生体成分から単離・精製する方法、遺伝子組換え技術を用いて調製する方法、あるいは合成により調製することができ、その純度は、必ずしも、最高純度のものに限定されない。HRGは、例えば血漿、血清等の血液、脊髄液、リンパ液等の生体成分から精製され／若しくは単離することができる。好適な生体成分は、血漿、血清等の血液成分である。生体成分から単離・精製する方法は、自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法を適用することができる。例えば、Ni-NTA（nickel-nitrilotriacetic acid）アガロース樹脂を用いて調製したアフィニティカラムに血漿を通すことによって調製することもできる。
　遺伝子組換え技術を用いてHRGを作製する方法も自体公知の方法又は今後開発されるあらゆる方法を適用することができる。例えば、HRGをコードする全長cDNA、又はHRGの活性を有する部分をコードするcDNAを、発現ベクターにクローニングし、調製することもできる。例えば、GenBank Accession No.NM000412で特定されるヌクレオチドの全体又は部分から生合成されるタンパク質であっても良い。例えば、成熟HRGのアミノ酸配列（配列番号１）をコードする全長cDNA、又は部分をコードするcDNAを、発現ベクターにクローニングし、調製することもできる。本発明の「好中球貪食能増強剤」に含まれる有効成分としてのHRGは、HRGタンパク質そのものであっても良いし、HRG活性を有する部分タンパク質又はペプチドであっても良い。さらに、糖鎖を含むものであってもよいし糖鎖が付加されていないものであっても良い。成熟HRGは、タンパク質分解酵素によってシグナルペプチドが切断されたのち、(1)シスタチン様領域1、(2)シスタチン様領域2、(3)His/Pro領域、及び(4)C末端領域、の主要な４つの領域から構成されている。His/Pro領域は、プロリン残基及びヒスチジン残基に非常に富んでおり、配列番号１で特定されるアミノ酸配列の第330位～第389位に示すアミノ酸配列で特定することができる。
成熟HRGのアミノ酸配列（配列番号１）
VSPTDCSAVEPEAEKALDLINKRRRDGYLFQLLRIADAHLDRVENTTVYYLVLDVQESDCSVLSRKYWNDCEPPDSRRPSEIVIGQCKVIATRHSHESQDLRVIDFNCTTSSVSSALANTKDSPVLIDFFEDTERYRKQANKALEKYKEENDDFASFRVDRIERVARVRGGEGTGYFVDFSVRNCPRHHFPRHPNVFGFCRADLFYDVEALDLESPKNLVINCEVFDPQEHENINGVPPHLGHPFHWGGHERSSTTKPPFKPHGSRDHHHPHKPHEHGPPPPPDERDHSHGPPLPQGPPPLLPMSCSSCQHATFGTNGAQRHSHNNNSSDLHPHKHHSHEQHPHGHHPHAHHPHEHDTHRQHPHGHHPHGHHPHGHHPHGHHPHGHHPHCHDFQDYGPCDPPPHNQGHCCHGHGPPPGHLRRRGPGKGPRPFHCRQIGSVYRLPPLRKGEVLPLPEANFPSFPLPHHKHPLKPDNQPFPQSVSESCPGKFKSGFPQVSMFFTHTFPK
　HRGを遺伝子組換え技術を用いて作製する方法として、具体的には、特許文献４に示す方法を適用することができる。例えばHRGをコードする全長cDNA、又はHRGの活性を有する部分をコードするcDNA、例えば、成熟HRGのアミノ酸配列（配列番号１）をコードする全長cDNA、又は部分をコードするcDNAを、発現ベクターにクローニングし、所望のHRG発現ベクターを調製する。例えば、図１に示すHRG搭載コンストラクトを用いてHRGタンパク質を調製することができる。
　HRG-Fc融合タンパク質を作製する場合は、HRGのC'末端側をコードする部位にFcをコードするcDNAを結合させるのが好適である。本発明のHRG-Fc融合タンパク質を構成するHRGタンパク質は、成熟HRGの全体であっても良く、糖鎖を含むものであってもよいし糖鎖がなくても良い。成熟HRGのうちHRG活性を有する部分タンパク質又はペプチドであっても良い。
　HRG-Fc融合タンパク質を構成するFcは、抗体のFc領域を特定するポリペプチドであればよい。抗体は、重鎖（H鎖）及び軽鎖（L鎖）と呼ばれるポリペプチドより構成される。また、H鎖はN末端側より可変領域（VH）、定常領域（CH）、L鎖はN末端側より可変領域（VL）、定常領域（CL）により、それぞれ構成される。CHはさらに、N末端側よりCH1、ヒンジ、CH2、CH3の各ドメインより構成される。また、CH2とCH3の両領域をFc領域という。抗体のクラスとしては、例えばIgG、IgA、IgE及びIgMが挙げられる。IgGのサブクラスとしては、IgG1、IgG2、IgG3、及びIgG4が挙げられる。本発明のHRG-Fc融合タンパク質に用いられるFc領域はIgG1、IgG2、IgG3、及びIgG4の何れのサブクラス由来であってもよいが、特に好適にはIgG2由来が好ましい。IgG2のFc領域を用いることで、補体活性が低く、副作用となる炎症反応が緩和されると考えられる。ヒトIgG2 Fc領域のアミノ酸配列は配列表の配列番号２に示した。
ヒトIgG2 Fc領域のアミノ酸配列（配列番号２）
ERKCCVECPPCPAPPVAGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVQFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQFNSTFRVVSVLTVVHQDWLNGKEYKCKVSNKGLPAPIEKTISKTKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDISVEWESNGQPENNYKTTPPMLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPG
　一般的に体内での安定性が低く薬効が得にくいと考えられるタンパク質やぺプチド等とFc領域と融合させることにより、製剤の安定性を向上させることができ、より効果的に薬効を発揮することができる。さらにヒトIgG2のFc領域を用いることで、補体活性が低く、副作用となる炎症反応が緩和された医薬品製剤となると考えられる。
　本発明の「好中球貪食能増強剤」は、好中球等の細菌貪食活性を高めることができる。上記説明した本発明の「好中球貪食能増強剤」は、HRGを有効成分として含み、HRGとしてHRGそのもの、及び／又はHRG-Fc融合タンパク質と、薬理学的に許容しうる担体を含むものを例示できる。該薬理学的に許容しうる担体としては、例えば、賦形剤、崩壊剤若しくは崩壊補助剤、結合剤、滑沢剤、コーティング剤、色素、希釈剤、基剤、溶解剤若しくは溶解補助剤、等張化剤、pH調節剤、安定化剤、噴射剤、及び粘着剤等を挙げることができる。
　本発明の「好中球貪食能増強剤」は、細菌、ウイルス、真菌又は寄生生物に起因する病原体や異物に対して好中球の貪食能を増強させることができる。これにより、本発明の「好中球貪食能増強剤」は、細菌感染症、ウイルス感染症、真菌感染症、寄生生物感染症やこれらの混合感染症の治療剤又は治療補助剤として使用することができる。本発明において適用可能な感染症は、上記の各種感染症を例示でき、更には、例えば呼吸器感染症、尿路感染症、胆道感染症、消化管感染症、中枢神経系感染症等を例示できる。本発明は、これらの疾患の治療剤又は治療補助剤にも及ぶ。
　本発明は、HRGを好中球貪食能増強剤の有効成分として使用する好中球貪食能増強方法にも及ぶ。さらには、HRGを好中球貪食能増強剤の有効成分として使用する感染症治療方法若しくは感染症治療補助方法にも及ぶ。
　本発明の「好中球貪食能増強剤」は、上記疾患の治療剤又は治療補助剤として使用する場合、局所的に投与してもよいし、全身的に投与してもよい。治療及び／又は予防剤の剤形としては、経口投与製剤、非経口投与製剤を例示できる。非経口投与製剤としては、例えばローション剤、軟膏剤、テープ剤やパップ剤などの外用剤として経皮的に投与することができるもの、更には、注射等による局所投与、静脈内注射投与や、経管投与のできる形態にあるものを例示できる。非経口投与製剤には、滅菌した水性の、又は非水性の溶液、懸濁液及び乳濁液を含んでいてもよい。非水性希釈剤の例として、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、植物油、例えば、オリーブ油及び有機エステル組成物、例えば、エチルオレエートであり、これらは注射用に適している。水性担体には、水、アルコール性水性溶液、乳濁液、懸濁液、食塩水及び緩衝化媒体が含まれていてもよい。非経口的担体には、塩化ナトリウム溶液、リンゲルデキストロース、デキストロース及び塩化ナトリウム、リンゲル乳酸及び結合油が含まれていてもよい。注射等による局所投与、静脈内注射投与や、経管投与できる形態にある非経口投与製剤にあっては、担体として、例えば、液体用補充物、栄養剤（単糖類、オリゴ糖、多糖類、澱粉、澱粉部分分解物を含む）或いは電解質（例えば、リンゲルデキストロースに基づくもの）が含まれていてもよい。本発明の「好中球貪食能増強剤」は、保存剤及び他の添加剤、例えば抗微生物化合物、抗酸化剤、キレート剤及び不活性ガスなどを含むことができる。
　本発明の「好中球貪食能増強剤」を、上記疾患の治療剤又は治療補助剤として使用する場合、他の医薬品製剤と共に併用して投与してもよい。併用可能な他の医薬品製剤としては特に限定されず、既に市販されている治療剤や予防剤、又は今後開発される治療剤や予防剤の何れであってもよい。当該別の他の医薬品製剤は、本発明の「好中球貪食能増強剤」とは作用機序の異なる医薬品製剤が好適である。例えば抗生物質、抗菌剤、ウイルス剤等による自体公知の感染症治療剤及び／又は予防剤と同時に、あるいは前後して使用することができる。本発明の「好中球貪食能増強剤」と併用することにより、他の医薬品製剤の投与量を軽減化させることも可能である。他の医薬品製剤が副作用を有する場合は、本発明の「好中球貪食能増強剤」を併用することで、他の医薬品製剤の投与量／投与頻度などを軽減化することができ、他の医薬品製剤の副作用を軽減化できる実益を有する。本発明の「好中球貪食能増強剤」に配合される、有効成分としてのHRG以外の他の各成分は、本発明の所期の目的を妨げない範囲で適量配合すればよい。
　本発明を以下の実施例、実験例、比較例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例等によってなんら限定されるものでないことは言及するまでもない。
（実施例１） ヒト血漿由来HRGの精製
　ヒト血漿を出発原料とし、Ni-NTAアフィニティクロマトグラフィ及び高性能液体クロマトグラフィ（陰イオン交換カラム(単分散系親水性ポリマービーズ：Mono Q)）を用いてヒト血漿由来HRG（以下「hHRG」）を精製した。分子量約80kDa画分にhHRG精製試料を得た。本実施例のhHRGは、特許文献３（国際公開２０１３／１８３４９４号）の実施例１に示す方法で作製した。各濃度のhHRG試料は、Hanks液（Hanks' Balanced Salt Solution：HBSS）で希釈して作製した。 
（実施例２）遺伝子組換えヒトHRGの産生
　本実施例の遺伝子組換えヒトHRG（以下「rHRG」）は、特許文献４（国際公開２０１７／０６１３５４号）の実施例３に示す方法で作製した。10％ FCS含有GIBCO(TM) Dulbecco's Modified Eagle Medium/ Nutrient Mixture F-12（DMEM/F-12）で培養したCHO細胞（Chinese Hamster Ovary cells）に、HRG発現ベクター、トランスポゼース発現ベクター、薬剤耐性遺伝子発現ベクター（図１参照）をコトランスフェクトした。遺伝子導入後、培養48時間から、Puromycin（抗生物質）10μg/mLを添加して、3日に1回培地交換を行いながら3週間薬剤選択培養を行った。遺伝子組換えヒトHRGの作製に必要な、HRGのコーディング領域をコードするDNAの塩基配列（EcoR1-HRG-Xho1）を配列番号３（図２）に示した。
　前記選択培養後、rHRGを含む培養上清を回収した。PBS(-) 30 mLで予め洗浄したQIAGEN(TM) Ni-NTAアガロースゲル（Sepharose CL-6B支持体にNi-NTAを結合したゲル）を前記培養上清に加え、4℃で2時間回転インキュベートし、rHRGをQIAGEN(TM) Ni-NTAアガロースゲルに結合させた。QIAGEN(TM) Ni-NTAアガロースゲルを精製用カラムに移した後、洗浄液１（30 mM イミダゾールを含むPBS(-)(pH7.4)）、洗浄液２（1M NaCl +10 mM PBS (pH7.4)）、洗浄液３（PBS(-) (pH7.4)）で順次カラムを洗浄した。500 mM イミダゾールを含むPBS(-) (pH7.4)、4℃でrHRGを溶出した。各濃度のrHRG試料は、HBSSで希釈して作製した。 
（実施例３）HRG-Fc融合タンパク質の作製
　本実施例では、HRG＋ヒトIgG2のFc融合タンパク質（以下「HRG-Fc」）を作製した。HRGのコーディング領域をコードするDNA（GenBank Accession No. BC069574 (NCBI)）で特定される塩基配列を含む核酸へヒトIgG2のFc領域をコードする塩基配列を含む核酸を結合させ、特許文献４（国際公開２０１７／０６１３５４号）の実施例１２に示す方法で作製した。各濃度のHRG-Fc試料は、HBSSを用いて希釈して作製した。HRG-Fc融合タンパク質の作製に必要な、HRGのコーディング領域をコードするDNAの塩基配列（EcoR1-HRG-Xho1）を実施例２と同様に配列番号３（図２）に示し、ヒトIgG2のFc領域をコードする塩基配列（XhoI-GPG-hIgG2 Fc-Xba1）を配列番号４（図３）に示した。医薬品候補となるタンパク質は、すべて抗体の一部であるヒトIgGの Fc領域と融合させることにより、タンパク質製剤の安定性を向上させ、さらにヒトIgG2のFc領域を用いることで、補体活性が低く、副作用となる炎症反応が緩和される医薬品となると考えられる。
（実験例１）HRG刺激による好中球貪食能確認試験１
　好中球について、E.coli（グラム陰性菌）又はS.aureus（グラム陽性菌）に対する貪食能をpHrodoTMインジケーターを用いて測定した。pHrodoTM 染色試薬により好中球内のファゴゾームを蛍光染色し、貪食能を測定することができる。全血からヒト好中球を血球分離溶液 PolymorphprepTM（ポリモルホプレップ）を用いて分離し、細胞液をPBSで洗浄し、懸濁した。細胞数を調節し、Hoechst33342（核染色：青）及びcalcein-AM（細胞質：緑）でCO2下、37℃で15分間インキュベーションして染色した。好中球液をHBSSで再懸濁し、細胞数を調整した（2×106 個/mL）。
　前記細胞濃度の好中球液に、hHRG溶液を加え、96ウェルプレートに分注し、CO2下、37℃で30分間インキュベーションした。その後、大腸菌（pHrodoTM E.coli）又は黄色ブドウ球菌（pHrodoTM S.aureus）を加えて96ウェルプレートに添加し、CO2下、37℃でインキュベーションした。この場合の細胞液の最終濃度は2×104 個/ウェル（2×105 個/mL）、HRGの最終濃度は0.01～3.0μM、pHrodoTM E.coli又はpHrodoTM S.aureusの最終濃度は25μg/ウェル（250μg/mL）であった。インキュベーションはE.coliで60分、 S.aureusで120分間行った。
　InCell Analyzer（GEヘスルケア社）を用いて、好中球に取り込まれ赤色に発色したpHrodoの量を画像解析及び定量化で解析し、好中球の貪食能を確認した。大腸菌及び黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能解析結果を図４Ａ、Ｂに示した。
　HRGは好中球の大腸菌や黄色ブドウ球菌に対する貪食能を促進していることが明らかとなった。通常、血中にHRGは約1μM程度存在しており、本実施例でのHRGの貪食促進能は0.3μMからプラトーに達していることから、健常者においては血中における好中球の細菌貪食能は保たれており、HRGが低下する病態、例えば敗血症などではその貪食能が低下することが示唆される。
（実験例２）HRG刺激による好中球貪食能確認試験２
　前記細胞濃度（2×106 個/mL）の好中球液に、実験例１と同手法によりhHRG、rHRG又はHRG-Fc各溶液を添加して大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能を確認した（HRG最終濃度0.01～3.0μM）。確認実験として、各種抗HRG抗体又は対照抗体を各々添加したときの大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能を確認した。好中球に取り込まれ赤色に発色したpHrodoの量を画像及び定量化し、好中球の貪食能を確認することができる。
　大腸菌に対する好中球の貪食能について、画像解析結果を図５及び図６に示し、各HRG濃度における貪食能の変化、解析結果を図７に示した。同様に、黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能について、画像解析結果を図８及び図９に示し、各HRG濃度における貪食能の変化、解析結果を図１０に示した。
　rHRGはhHRGと同程度、好中球の大腸菌や黄色ブドウ球菌に対する貪食能を促進していたが、HRG-Fcはその貪食促進能が弱いことが明らかとなった。
（比較例１）各種刺激による好中球貪食能確認試験
　前記細胞濃度（2×106 個/mL）の好中球液に、実験例１と同手法によりhHRG 1.0μMを添加した場合と、比較例としてIL-8、fMLP、C5aを1.0μM又はLPSを10μM、各々添加したときの、大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能を確認した。その画像解析結果を図１１及び図１２に示した。
（実験例３）HRG刺激による好中球貪食能確認試験３
　前記細胞濃度（2×106 個/mL）の好中球液に、実験例１と同手法によりhHRG 1.0μMを添加した場合と、確認実験として、各種抗HRG抗体又は対照抗体を各々10μg/mL添加したときの大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能を確認した。その解析結果を図１３に示した。
　HRGにより大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能は増強するが、各HRG抗体を添加した場合には、貪食能が抑制された。一方、対照抗体を添加した場合では、HRGによる大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能は維持されていた。このことより、HRGには、好中球の貪食能を増強する作用があることが確認された。
（実験例４）HRG刺激によるオプソニン効果１
　本実施例では、HRGを含む血清又はHRGを含まない血清を用いてHRGのオプソニン（Op）化に対する影響について確認した。オプソニン(Op)化に用いた血清には健常ヒト血清を用いた。本実験例において、「HRGを含む血清」とは未処理の健常ヒト血清をいう。本実験例において「HRGを含まない血清」とは、ヒト血清にNi-NTAアガロースゲルを添加して血清中のHRGを吸着させた後、遠心処理によりNi-NTAアガロースゲルを取り除いたものをいう。ウェスタンブロット法により、上記のHRGを含まない血清はHRGを検出しないことを確認している。
　Zymosan（pHrodoTM Red Zymosan, Thermo Fisher社製）を4℃で、HRGを含む血清又はHRGを含まない血清と混和し、さらに超音波破砕でよく撹拌した。撹拌後、4℃、15000rpmで15分間遠心処理を行った。上清を捨て、HBSSで懸濁した。この洗浄操作を２回繰り返したのち、ZymosanをHBSSで懸濁した。このときのZymosan濃度は1.0 mg/mLであった。
　好中球液に、hHRG溶液を加え、96ウェルプレートに分注し、CO2下、37℃で30分間インキュベーションした。その後、上記Zymosan溶液を96ウェルプレートに添加し、CO2下、37℃で120分間インキュベーションした。このときの細胞液の最終濃度は2×104 個/ウェル（2×105 個/mL）、HRGの最終濃度は1.0μM、Zymosanの最終濃度50μg/ウェル（500μg/mL）であった。InCell Analyzer（GEヘスルケア社）を用いて、好中球に取り込まれ赤色に発色したpHrodoの量を画像解析及び定量化で解析し、好中球の貪食能を確認した。
　その結果を図１４に示した。HRGを含む血清又はHRGを含まない血清でZymosanを処理した場合、HRGを含む血清で処理したZymosanの方が好中球による貪食量が多いことが確認され、HRGによるオプソニン（Op）増強効果が認められた。
（実験例５）HRG刺激によるオプソニン効果２
　大腸菌（pHrodoTM E.coli）又は黄色ブドウ球菌（pHrodoTM S.aureus）を、予めヒト血清アルブミン（HSA, 1.0μM）、hHRG（1.0μM）、5倍希釈ヒト血清（1/5 Serum）を37℃で15分間インキュベートしたのち、大腸菌又は黄色ブドウ球菌をHBSSで2回洗浄した。その後、実験例１と同じ手法により上記洗浄した大腸菌又は黄色ブドウ球菌に対して、HRGによるオプソニン（Op）増強効果を確認した。
　好中球液に、hHRG溶液を加え、96ウェルプレートに分注し、CO2下、37℃で30分間インキュベーションした。その後、上記HSA、HRG溶液、又は5倍希釈ヒト血清で前処理した大腸菌又は黄色ブドウ球菌を加えて96ウェルプレートに分注し、CO2下、37℃で120分間インキュベーションした。このときの細胞液の最終濃度は2×104 個/ウェル（2×105 個/mL）、HSA又はHRGの最終濃度は1.0μM、Zymosanの最終濃度は25μg/ウェル（250μg/mL）であった。InCell Analyzer（GEヘスルケア社）を用いて、好中球に取り込まれ赤色に発色したpHrodoの量を画像解析及び定量化で解析し、好中球の貪食能を確認した。
　各前処理した大腸菌及び黄色ブドウ球菌に対するHRGによる好中球の貪食能解析結果を図１５Ａ、Ｂに示した。5倍希釈ヒト血清で前処理した大腸菌及び黄色ブドウ球菌に対する好中球の貪食能解析結果を図１６Ａ、Ｂに示した。
　本実験例の結果より、HRG前処理では大腸菌と黄色ブドウ球菌に対してオプソニン（Op）増強効果を示さなかった。一方、5倍希釈ヒト血清による処理は、大腸菌と黄色ブドウ球菌に対して強いオプソニン（Op）増強効果を発揮した。HRG前処理を行った菌体では、好中球の貪食能の増強を認めなかったことより、HRGは菌体ではなく好中球に作用し、その貪食能を増強させたことが推測される。またヒト血清にてオプソニン（Op）化された菌体が、オプソニン(Op)化されていない菌体（UnOp）と比べ、HRGを添加することで大幅に好中球の貪食能が増強されたことより、生体内でオプソニン(Op)化された菌体にあっては、HRG存在下でさらに好中球の貪食作用が促進されることが示唆された。
　以上詳述したように、本発明の「好中球貪食能増強剤」は好中球貪食能を増強することにより、各種細菌感染症、ウイルス感染症、真菌感染症、寄生生物感染症やこれらの混合感染症の治療剤又は治療補助剤として使用することができる。本発明の「好中球貪食能増強剤」を他の医薬品製剤、例えば既に市販されている治療剤、又は今後開発される治療剤と併用することにより、他の医薬品製剤の投与量／投与頻度を軽減化させることができる。他の医薬品製剤が副作用を有する場合は、本発明の「好中球貪食能増強剤」を併用することで、他の医薬品製剤の投与量／投与頻度を軽減化することができ、有用である。

Claims (6)

  1. ヒスチジンリッチ糖タンパク質を有効成分として含む好中球貪食能増強剤。
  2. 有効成分としてのヒスチジンリッチ糖タンパク質が、ヒスチジンリッチ糖タンパク質と抗体のFc領域とを融合させたFc融合タンパク質の形態で存在する、請求項１に記載の好中球貪食能増強剤。
  3. 抗体のFc領域が、IgG2由来のFc領域である、請求項２に記載の好中球貪食能増強剤。
  4. 感染症治療剤又は感染症治療補助剤としての請求項１～３のいずれかに記載の好中球貪食能増強剤。
  5. 感染症が、細菌、ウイルス、真菌、及び寄生生物から選択されるいずれか１種又は複数種由来の病原体に起因する感染症である、請求項４に記載の好中球貪食能増強剤。
  6. 感染症が、呼吸器感染症、尿路感染症、胆道感染症、消化管感染症、及び中枢神経系感染症から選択されるいずれかの感染症である、請求項４又は５に記載の好中球貪食能増強剤。
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