CH387880A - Procédé de préparation d'un nouvel antibiotique - Google Patents

Procédé de préparation d'un nouvel antibiotique

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CH387880A
CH387880A CH7919259A CH7919259A CH387880A CH 387880 A CH387880 A CH 387880A CH 7919259 A CH7919259 A CH 7919259A CH 7919259 A CH7919259 A CH 7919259A CH 387880 A CH387880 A CH 387880A
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CH7919259A
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Mancy Denise
Ninet Leon
Preud Homme Jean
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Rhone Poulenc Sa
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    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P1/00Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes
    • C12P1/06Preparation of compounds or compositions, not provided for in groups C12P3/00 - C12P39/00, by using microorganisms or enzymes by using actinomycetales
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
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    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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Description


  <B>Procédé de</B>     préparation   <B>d'un nouvel</B>     antibiotique       La présente invention a pour objet un procédé  de préparation d'un nouvel antibiotique, appelé     ci-          après    5278     R.P.     



  Ce nouveau produit présente un intérêt tout par  ticulier à cause de son     activité    anticancéreuse très  prononcée. En outre, il possède un pouvoir anti  bactérien important aussi bien sur les germes     Gram-          positifs    que sur les germes Gram-négatifs, cette pro  priété     étant    d'autant plus intéressante qu'il conserve  une forte activité sur des germes (et     particulièrement     des souches de staphylocoques) rendus résistants aux  antibiotiques     courants.     



  Ce nouvel antibiotique est produit par culture  dans des conditions appropriées d'un micro-orga  nisme, identifié plus complètement ci-après, appar  tenant au genre streptomyces et désigné par    Streptomyces 662   ou   Streptomyces     rufochro-          mogenus     .  



  Le 5278     R.P.,    qui est de nature acide, a été  isolé sous forme     d'acide    libre et sous forme de sels  tels que les sels de sodium, potassium, calcium.  L'acide libre et le sel de sodium qui     cristallisent    en  aiguilles sont colorés en brun rouge.  



  Le 5278     R.P.    cristallisé sous forme d'acide     libre     est soluble dans la     pyridine,    le     diméthylformamide,     l'acétone (environ 0,25 g dans 100     cm2    à 250) et  l'acétate d'éthyle (environ 0,15 g dans 100     cm3    à       25-),    faiblement soluble     dans    l'alcool     méthylique,     l'alcool     n-butylique,    le chloroforme, le benzène,  l'éther, l'acide     acétique    glacial et pratiquement inso  luble dans l'eau et l'éther de pétrole,

   le sel de sodium  est très soluble dans l'eau (plus de 10 g dans 100     cm3     à     25ù),    faiblement soluble dans l'alcool     méthylique     et l'acétone, insoluble dans le chloroforme, l'éther, le  benzène. Le sel de calcium est     pratiquement    insolu  ble     dans    l'eau.    L'antibiotique sous forme d'acide libre est formé  uniquement de carbone, hydrogène, oxygène et azote.

    Sa composition élémentaire est la suivante  C % = 59,2-59,6 H % = 4,8- 5,2  O % = 25,0-25,2 N % = 10,8-11,1  L'analyse     fonctionnelle    montre la présence de  groupements     O-CH3          O-CH3    %     (Zeisel)    = 17,7  L'équivalent neutre     déterminé    par titrage     électro-          métrique    d'une solution dans le     diméthylformamide     à 66 % au moyen d'une solution de soude titrée est  égal à 505. Le     pKa    correspondant     est    de 6,9.  



  La composition élémentaire et l'équivalent neutre  sont en accord avec la formule brute     (C25H2608NI          Calc.    : C % = 58,9 H % = 5,1  O % = 25,1 N % = 10,9  Poids moléculaire = (510)n 3     O-CH3    = 18,2 %  Le 5278     R.P.    sous forme d'acide libre est carac  térisé par les propriétés physiques données ci-après  Point de fusion = 301-3030 (au bloc     Maquenne)     Spectre ultraviolet     (détermination.        effectuée    à par  tir d'une solution dans le méthanol)

    Maximum d'absorption à 382 mu -     EII        CIm    = 322  Minimum d'absorption à 332     m#t-        Ei        '/m    = 133       Maximum    d'absorption à 247     m#t    -     Ei        '/m    = 750  Le spectre d'absorption     infrarouge    du 5278     R.P.     



  sous     forme    d'acide a été déterminé et est     représenté     par la figure unique du dessin annexé dans laquelle  on a porté en abscisses d'une     part    les longueurs  d'ondes exprimées en microns (échelle inférieure) et  d'autre part les nombres d'ondes en     cm-'    (échelle  supérieure) et en     ordonnées    les     transmissions    en %.  



  Dans le tableau 1, on indique les     principales          bandes        d'absorption        infrarouge    pour ce produit.      <I>Tableau 1</I>  (Spectre mesuré sur le produit     solide    en     com-          primé    avec du bromure de potassium.)

    3480F 1205 m       3400F    1177     f     3300F 1155     ép     2950 m 1100F       2870f   <B>1082F</B>  1743F 1076     ép     1683F 1040 m  1637     ép   <B>1006F</B>  1613     tF    960     tf     1594     ép    920<I>m</I>  1568 m<B>8881</B>  1554     ép   <I>877 m</I>  1505<I>m</I> 864<I>m</I>  1467F 817 m  1452<I>m</I> 786     f     
EMI0002.0015     
  
    <I>Tableau <SEP> II</I>
<tb>  Solvant <SEP> de <SEP> développement <SEP> Papier <SEP> Rf
<tb>  Chloroforme <SEP> saturé <SEP> d'eau <SEP> <B>........................

   <SEP> .....</B> <SEP> Imprégné <SEP> solution <SEP> tampon <SEP> phosphate <SEP> pH <SEP> 4,8 <SEP> 0,70
<tb>  Chloroforme <SEP> saturé <SEP> d'eau <SEP> <B>..............................</B> <SEP> Imprégné <SEP> solution <SEP> tampon <SEP> phosphate <SEP> pH <SEP> 7 <SEP> 0,40
<tb>  n-butanol <SEP> saturé <SEP> d'eau <SEP> <B>................... <SEP> ................</B> <SEP> Imprégné <SEP> solution <SEP> tampon <SEP> phosphate <SEP> pH <SEP> 7 <SEP> 0,65
<tb>  Phase <SEP> légère <SEP> du <SEP> mélange <SEP> benzène-acétate
<tb>  d'éthyle-eau <SEP> (75:25:25 <SEP> en <SEP> volume)...... <SEP> Imprégné <SEP> solution <SEP> tampon <SEP> phosphate <SEP> pH <SEP> 7 <SEP> 0,60
<tb>  Phase <SEP> légère <SEP> du <SEP> mélange <SEP> benzène-m6thyl  isobutylcétone-eau <SEP> (90:10:

  25 <SEP> en <SEP> vo  lume) <SEP> <B>........................................ <SEP> ......................</B> <SEP> Imprégné <SEP> solution <SEP> tampon <SEP> phosphate <SEP> pH <SEP> 7 <SEP> 0,20
<tb>  Phase <SEP> légère <SEP> du <SEP> mélange <SEP> benzène-méthyl  isobutylcétone-eau <SEP> (70:30:25 <SEP> en <SEP> vo  lume) <SEP> ..__ <SEP> <B>-----</B> <SEP> .....<B>----------</B> <SEP> ._._.<B>....</B> <SEP> _<B>......</B> <SEP> .<B>............</B> <SEP> .<B>......</B> <SEP> Imprégné <SEP> solution <SEP> tampon <SEP> phosphate <SEP> pH <SEP> 7 <SEP> 0,60       Ces chromatographies montrent que le 5278     R.P.     ne renferme qu'un seul     constituant        actif.     



  La présence d'un seul corps actif     dans    le  5278     R.P.    est     confirmée    par l'analyse selon la mé  thode de distribution à contre-courant. En effet,  lorsque le produit est distribué à contre-courant à  250 au moyen d'un appareil de     Craig    à 30     cellules     entre les phases séparées du mélange     butanol-solu-          tion    tampon phosphate à pH 7,5 (1:1 en volume), la  courbe de     distribution    établie d'après l'activité biolo  gique est formée d'un seul pic ; cette courbe est  superposable à la courbe théorique calculée pour un       coefficient    de partage égal à 3,14.  



  Le 5278     R.P.    sous forme d'acide     libre    est très  stable, le produit a pu être conservé plusieurs années  
EMI0002.0030     
  
    1431 <SEP> <I>m <SEP> 771 <SEP> f</I>
<tb>  1404 <SEP> <I>m <SEP> 752 <SEP> m</I>
<tb>  1380 <SEP> <I>m <SEP> 744 <SEP> ép</I>
<tb>  1348F <SEP> 733 <SEP> f
<tb>  <B>1290F</B> <SEP> 704 <SEP> m
<tb>  1278 <SEP> <I>ép</I> <SEP> 684 <SEP> <I>tf</I>
<tb>  <B>1233F</B>
<tb>  tf <SEP> = <SEP> très <SEP> faible <SEP> F <SEP> = <SEP> forte
<tb>  f <SEP> = <SEP> faible <SEP> tF <SEP> = <SEP> très <SEP> forte
<tb>  <I>m</I> <SEP> = <SEP> movenne <SEP> <I>ép</I> <SEP> = <SEP> épaulement       Le 5278     R.P.    peut être     identifié    d'après la chro  matographie sur papier.

   L'antibiotique a été     chro-          matographié    sur papier     Arches        NI,    302, en dévelop  pant à 300, dans le sens     descendant    au moyen de  divers     solvants    ; les     chromatogrammes    ont été révé  lés par     bioautographie    sur plaques de gélose nutri  tive ensemencée par B.     subtilis    ; les     Rf    obtenus sont       indiqués    dans le tableau II.    à température ambiante sans que l'on puisse déceler  de     diminution    d'activité.

   La solution aqueuse du sel  de sodium à un pH     compris    entre 7 et 8 conserve  son activité après chauffage une heure à 560 ou pen  dant une courte durée à l'ébullition.  



  L'activité     bactériostatique    du 5278     R.P.    vis-à-vis  d'un     certain    nombre de germes a été déterminée  par une     des        méthodes    de dilution couramment em  ployées à cet effet. Pour chaque germe, on a déter  miné la plus petite concentration de substance qui  empêche tout développement visible dans un bouillon  nutritif approprié.

   Les résultats des     diverses        déter-          minations    sont rassemblés dans le tableau III     ci-          dessous,    où les concentrations bactériostatiques       minima    sont exprimées en     microgrammes    de subs  tance par     cm3    de milieu d'essai.

      
EMI0003.0001     
  
    <I>Tableau <SEP> III</I>
<tb>  Concentration
<tb>  Souches <SEP> bactériennes <SEP> essayées <SEP> bactériostatique
<tb>  mcg/eml
<tb>  Staphylococcus <SEP> aureus, <SEP> souche
<tb>  209 <SEP> P <SEP> - <SEP> ATCC <SEP> 6538 <SEP> P.... <SEP> 0,45
<tb>  Staphylococcus <SEP> aureus, <SEP> souche
<tb>  133 <SEP> (Institut <SEP> Pasteur)<B>.... <SEP> ....</B> <SEP> 0,7
<tb>  Micrococcus <SEP> citreus <SEP> - <SEP> ATCC
<tb>  8411 <SEP> 71
<tb>  Gaffkya <SEP> tetragena <SEP> (Fac. <SEP> Phar  macie <SEP> de <SEP> Paris)..................... <SEP> 0,6
<tb>  Sarcina <SEP> lutea <SEP> - <SEP> ATCC <SEP> 9341...

   <SEP> 1,1
<tb>  Streptococcus <SEP> faecalis <SEP> - <SEP> ATCC
<tb>  9790 <SEP> <B>.........</B> <SEP> .......<B>...................</B> <SEP> .<B>......</B> <SEP> 100
<tb>  Streptococcus <SEP> viridans <SEP> - <SEP> Insti  tut <SEP> Pasteur <SEP> <B>---- <SEP> -------------------- <SEP> ---</B> <SEP> 18,5
<tb>  Neisseria <SEP> catarrhalis
<tb>  (Fac. <SEP> Pharmacie <SEP> de <SEP> Paris) <SEP> 2,6
<tb>  Bacillus <SEP> subtilis <SEP> - <SEP> ATCC <SEP> 6633 <SEP> 0,07
<tb>  Bacillus <SEP> megatherium <SEP>   NRRL-B-93 <SEP> 8 <SEP> ........................ <SEP> 0,07
<tb>  Bacillus <SEP> cereus <SEP> - <SEP> ATCC <SEP> 6630 <SEP> 0,5
<tb>  Mycobacterium <SEP> species <SEP>   ATCC <SEP> 607 <SEP> <B>..... <SEP> ...................

   <SEP> -</B> <SEP> 0,7
<tb>  Escherichia <SEP> coli <SEP> - <SEP> ATCC <SEP> 9637 <SEP> 0,25
<tb>  Shigella <SEP> dysenteriae <SEP> - <SEP> Shiga <SEP> L
<tb>  (Institut <SEP> Pasteur) <SEP> <B>------------------</B> <SEP> 1,3
<tb>  Salmonella <SEP> typhimurium <SEP> (Ins  titut <SEP> Pasteur) <SEP> ........................ <SEP> 3,8
<tb>  Salmonella <SEP> paratyphi <SEP> A <SEP> (La  casse, <SEP> Institut <SEP> Pasteur)..._.. <SEP> 0,35
<tb>  Salmonella <SEP> schottmuelleri <SEP> (Pa  ratyphi <SEP> B <SEP> - <SEP> Fougenc, <SEP> Ins  titut <SEP> Pasteur) <SEP> <B>------------------------</B> <SEP> 1,7
<tb>  Aerobacter <SEP> aerogenes <SEP> - <SEP> ATCC
<tb>  8308 <SEP> .. <SEP> <B>------------------------</B> <SEP> .<B>-------------</B> <SEP> 4,2
<tb>  Proteus <SEP> vulgaris <SEP> (Fac. <SEP> Phar  macie <SEP> de <SEP> Paris) <SEP> ..................

   <SEP> 4
<tb>  Klebsiella <SEP> pneumoniae <SEP>   ATCC <SEP> 10.031 <SEP> <B>-------------- <SEP>  -.</B> <SEP> 0,16
<tb>  Serratia <SEP> marcescens <SEP> (A. <SEP> 476,
<tb>  Lausanne) <SEP> <B>---------------- <SEP> .............</B> <SEP> 0,8
<tb>  Pseudomonas <SEP> aeruginosa <SEP> (sou  che <SEP> Bass, <SEP> Institut <SEP> Pasteur) <SEP> 9,4
<tb>  Brucella <SEP> bronchiseptica <SEP> (CN
<tb>  387 <SEP> - <SEP> Wellcome <SEP> Institut) <SEP> 1,3       L'ensemble des résultats montre que l'activité  antibiotique du 5278     R.P.    s'exerce sur de nombreuses  bactéries, se situant aussi bien parmi celles qui pren  nent la coloration de Gram que parmi celles qui  donnent une réponse négative à cette coloration.  



  En outre, le 5278     R.P.    est     actif    sur des souches  de staphylocoques rendues respectivement résistantes  à un ou plusieurs des antibiotiques     suivants    : p6ni-         cilline,        tétracycline,    streptomycine,     streptothricine,     néomycine,     congocidine,        érythromycine,        carbomy-          cine,        spiramycine,        streptogramine,        actinomycine,          chloramphénicol,        novobiocine.     



  L'activité anticancéreuse du 5278     R.P.    a été dé  montrée au laboratoire où il s'est révélé particulière  ment actif sur les     tumeurs        greffables    de la souris  tumeur     ascitique        d'Ehrlich,    Sarcome 180 (forme  solide), adénocarcinome mammaire de la souris  (souche     RIII),    sarcome au     benzopyrène,    etc.  



  La toxicité du 5278     R.P.    a été étudiée princi  palement sur la souris. La dose léthale 50 %     (DL-o)     a     été    déterminée en administrant le produit par voie  orale, par voie sous-cutanée et par voie intravei  neuse  Voie     orale        DL3o    comprise entre 4 et 6 mg/kg  Voie  sous-cutanée     DL5o    comprise entre 1 et 3 mg/kg  Voie  intraveineuse     DLgo    comprise entre 0,

  5 et 2 mg/kg  L'organisme producteur de     l'antibiotique    5278       R.P.        appartient    au genre Streptomyces et est     désigné     par l'appellation   Streptomyces 662      .    Sa souche a  été déposée au     Northern        Regional    Research     Labo-          ratory    à     Prétoria,    Illinois (USA) sous le No     NRRL     2816.  



  Cet organisme a été isolé d'un fragment de terre  prélevé au Portugal. La méthode d'isolement est la  suivante: le prélèvement de terre est mis en sus  pension dans de l'eau distillée stérile, puis la sus  pension est diluée à différentes concentrations : un  petit volume de chaque dilution est étalé sur la sur  face de boîtes de Pétri contenant un     milieu    nutritif       gélosé.    Après une     incubation    de quelques jours à  260, les colonies de micro-organismes que l'on veut  isoler sont repiquées sur des géloses     inclinées    dans le  but d'obtenir des     cultures    plus abondantes.  



  En suivant la classification du       Bergey's        manual     of     determinative        Bacteriology     ,     6me    édition (1949)  pour le     genre    Streptomyces, on ne trouve aucune  description d'espèce dont les caractères culturaux et  les propriétés biochimiques coïncident avec ceux du  Streptomyces N  662.

   C'est pourquoi cet organisme  peut être considéré     comme    une     espèce    nouvelle à  laquelle la     demanderesse    a attribué le nom de    Streptomyces     rufochromogenus         ,    à cause de la  propriété qu'il possède de produire un pigment roux  sur certains     milieux    de culture.  



  La souche de Streptomyces     rufochromogenus    se  présente avec des spores ovales, portées sur des       filaments    sporifères assez longs,     flexueux,    se recour  bant volontiers à leur extrémité pour former une  crosse, ou même s'enroulant pour former un ou deux  tours spiralés ; les spires déterminées sont lâches,  non compactes. Le mycélium aérien arrivé à maturité  de sporulation présente une couleur blanche légère  ment crème. Sur un certain nombre de milieux de    
EMI0004.0001     
    
EMI0005.0001     
    culture, an observe la production d'un pigment roux,       allant    d'une teinte roux clair à brun roux très     foncé     suivant les cas.  



  Les caractères culturaux et les propriétés biochi  miques de Streptomyces     rufochromogenus    ont été exa  minés sur les géloses nutritives et sur les bouillons       nutritifs    habituellement     utilisés    pour examiner l'aspect  des souches de Streptomyces. Les observations effec  tuées sont notées dans le tableau IV ci-contre ; elles       concernent    des cultures de deux à trois     semaines,     arrivées à un bon stade de développement. La plu  part des milieux de culture employés ont été préparés  d'après les     formules    contenues dans       The        Actino-          mycetes     , S. A.

   Waksman, p. 193-197,     Chronica          Botanica    Company,     Waltham    Mass. USA,<B>1950;</B>  dans ce cas, ils sont indiqués par le numéro qui leur  a été attribué dans       The        Actinomycetes     .  



  <I>(Voir tableau IV ci-contre)</I>  Le procédé de préparation de l'antibiotique  5278     R.P.    consiste essentiellement à cultiver le  Streptomyces 662 ou ses mutants sur un     milieu    et  dans des     conditions    appropriées et à séparer ensuite  l'antibiotique formé au cours de la culture.  



  La culture du Streptomyces 662 peut être effec  tuée par toute méthode de culture aérobie en surface  ou en profondeur, mais cette dernière est à préférer  pour des     raisons    de commodité. On utilise à cette  fin les différents types d'appareils qui sont mainte  nant d'un usage courant dans l'industrie des fer  mentations.  



       On    peut en     particulier    adopter la marche sui  vante pour la conduite des opérations  
EMI0005.0024     
  
    Streptomyces <SEP> 662 <SEP> - <SEP> stock
<tb>  Culture <SEP> sur <SEP> gélose
<tb>  Culture <SEP> en <SEP> fiole <SEP> agitée
<tb>  Culture <SEP> inoculum <SEP> en <SEP> fermenteur
<tb>  Culture <SEP> de <SEP> production <SEP> en <SEP> fermenteur       Le milieu de fermentation doit contenir essen  tiellement une source de carbone et une source  d'azote assimilables, des éléments     minéraux    et éven  tuellement des facteurs de     croissance,    tous ces élé  ments pouvant être apportés sous forme de produits  bien définis ou     par    des mélanges complexes,

   tels  qu'on en rencontre dans des produits biologiques  d'origines diverses.  



  Comme source de carbone     assimilable,    on peut  utiliser des hydrates de carbone tels que le glucose, le  saccharose, le lactose, les dextrines, l'amidon, les  mélasses ou d'autres substances     hydrocarbonées     comme les sucres alcools: glycérol,     mannitol,    etc., ou  comme certains acides     organiques    : acides lactique,  citrique, tartrique, etc. Certaines huiles animales ou  végétales comme l'huile de lard ou l'huile de soja      peuvent remplacer avantageusement ces différentes  sources hydrocarbonées, ou leur être adjointes.  



  Les sources convenables d'azote assimilable sont  extrêmement variées. Elles peuvent être des substan  ces chimiques très     simples    comme les nitrates, les  sels minéraux et organiques d'ammonium, l'urée, les  acides     aminés.    Elles peuvent être aussi apportées par  des substances complexes contenant principalement  l'azote sous forme protidique : caséine,     lactalbumine,     gluten et leurs     hydrolysats,    farines de soja, d'ara  chide, de poisson, extraits de viande, de levure,     distil-          lers'solubles,        corn-steep.     



       Parmi    les éléments minéraux ajoutés, certains  peuvent avoir un effet tampon ou neutralisant, comme  les phosphates     alcalins    ou alcalino-terreux ou les  carbonates de calcium et de magnésium.  



  D'autres apportent l'équilibre ionique nécessaire  au développement du Streptomyces 662 et à l'éla  boration de l'antibiotique,     comme    les chlorures et       sulfates    des métaux alcalins et alcalino-terreux. Enfin,  certains     agissent    plus spécialement comme     activateurs     des réactions métaboliques du Streptomyces 662 : ce  sont les sels de zinc, de cobalt, de fer, de cuivre, de  manganèse.  



  Le pH du     milieu    de fermentation au départ de  la culture doit être compris entre 6,0 et 7,5. La tem  pérature     optimum    pour la fermentation est de 26  27o, mais une production     satisfaisante    est obtenue  pour des températures comprises entre 23 et     35 .     L'aération de la fermentation peut varier entre des  valeurs assez larges. On a cependant trouvé que des  aérations de 0,5 à 2 litres d'air par litre de bouillon  et par     minute    conviennent particulièrement bien. Le  rendement maximum en antibiotique est obtenu après  3 à 5 jours de culture, ce temps dépendant essen  tiellement du milieu utilisé.  



  D'après ce qui précède, on conçoit que les con  ditions générales de la culture du Streptomyces 662  pour la production de l'antibiotique peuvent varier  dans une assez large mesure et être adaptées à chaque  nécessité particulière.  



  Le 5278     R.P.    peut être isolé à partir des moûts  de fermentation par différentes méthodes. Le moût  de fermentation peut être filtré à un pH compris  entre 6 et 9 ; dans ce cas, la majeure partie de l'acti  vité est trouvée dans le filtrat ; il est également pos  sible au contraire de réaliser la filtration dans un  intervalle de pH compris entre 1 et 4, dans ces con  ditions l'activité reste dans le gâteau de filtration  d'où elle peut être extraite par un solvant du groupe  des alcools aliphatiques tels que le méthanol, l'étha  nol, les     propanols    ou les     butanols,    du groupe des  cétones telles que l'acétone ou la     méthylisobutyl-          cétone,

      du groupe des esters tels que l'acétate  d'éthyle. L'activité peut également être extraite du  gâteau de filtration par de l'eau en alcalinisant pour  obtenir un pH compris entre 6 et 9.  



  Le produit     brut    peut être isolé directement à  partir des     solutions    aqueuses alcalines obtenues  comme indiqué ci-dessus, en provoquant sa préci-         pitation    par     acidification    au moyen d'un acide tel  que l'acide chlorhydrique, l'acide     sulfurique    ou l'acide  phosphorique.

   On préfère généralement partir du  filtrat alcalin ou de l'extrait aqueux du gâteau de       filtration    acide et soumettre la solution à une extrac  tion par un solvant non miscible à l'eau, en acidifiant  au moment de     l'extraction    à un pH compris entre 1  et 4 ; le solvant utilisé peut appartenir au groupe des  alcools aliphatiques en     C,,    C;

   comme les alcools  butyliques ou un mélange d'alcools amyliques, des  cétones comme la     méthylisobutylcétone,    des esters  comme l'acétate d'éthyle ou l'acétate d'amyle, des  solvants chlorés comme le chloroforme ou le     dichlo-          roéthane,    des carbures aromatiques comme le ben  zène et des éthers comme l'oxyde d'éthyle ou     d'iso-          propyle.     



  Le 5278     R.P.    brut peut être obtenu à partir de  l'extrait     organique    par concentration et séchage sous  pression réduite ou concentration et précipitation au  moyen d'un mauvais solvant tel que l'éther de pétrole  ou le     cyclohexane.        11    est avantageux pour obtenir  un produit     brut    plus pur de     réextraire    la substance  active de la solution dans le solvant par de l'eau en  alcalinisant à un pH     compris    entre 6 et 9. L'anti  biotique est alors isolé par concentration et séchage  de la solution aqueuse ou     réextraction    en milieu  acide par un des solvants cités ci-dessus et préci  pitation.  



  Le 5278     R.P.    peut alors être cristallisé directe  ment sous forme d'acide libre par dissolution à       reflux    dans un solvant comme l'acétone, l'acétate  d'éthyle, le propanol, le     butanol,    le chloroforme,  l'oxyde d'éthyle ou le benzène et refroidissement. La  cristallisation est aussi     réalisable    par     dissolution    dans  l'eau à pH compris entre 8 et 9 suivie     d'acidification.     



  Dans le cas où le produit     brut    est trop impur  pour être directement     cristallisé    ou si l'on désire  obtenir un produit très pur, il est avantageux de  soumettre le 5278     R.P.    à une chromatographie.  Celle-ci peut être réalisée en utilisant une colonne  d'alumine sur laquelle on passe une solution du pro  duit dans un solvant tel que l'acétone, l'acétate  d'éthyle ou le     benzène    par exemple ; le produit est       élué    par le même solvant ou par de l'eau alcalinisée  à un pH compris entre 8 et 10, la cristallisation est  alors conduite comme on l'a déjà indiqué.  



  Les sels du 5278     R.P.    peuvent être préparés par  mise en suspension de l'acide libre dans l'eau,     sali-          fication    à pH 8,5 au moyen de la base choisie telle  que la soude ou la potasse et lyophilisation de la  solution résultante. Le sel de sodium est     cristalli-          sable    dans le méthanol. Le sel de calcium peu soluble  dans l'eau peut être obtenu par double décomposi  tion entre une solution aqueuse de sel de sodium et  un sel soluble de calcium tel que le     chlorure.     



  Il est compréhensible que les différentes méthodes  indiquées peuvent être successivement appliquées  dans un ordre varié ou répétées plusieurs fois, selon  les impératifs de la fabrication, pour obtenir le      5278     R.P.    sous une forme convenable aux applica  tions envisagées.  



  Les exemples suivants, à titre non     limitatif,    mon  trent comment l'invention peut être mise en pratique.  Dans ce qui suit, l'activité est exprimée en micro  grammes de 5278     R.P.    pur sous forme d'acide     libre    ;  elle est déterminée     biologiquement    par la méthode  de dosage dite de diffusion en     utilisant    comme germe       sensible    B.     subtilis        ATCC    No 6633.  



  <I>Exemple 1</I>  On charge dans un fermenteur de 170 litres       Corn-steep   <B>(50%</B> extrait sec) .. .. . 4,800 kg       Cérélose        ..    .. .     ...        ........    2,400 kg  Chlorure de sodium<B>----- 0,600</B> kg       Sulfate    de magnésium hydraté     .........    . 0,120 kg  Eau de ville<B>...............</B>     ...        ....    .100 litres  Le pH est ajusté à 6,6 avec 500     cm3    de soude  10N.

   On ajoute alors  Carbonate de calcium précipité 0,600 kg  Le     milieu    est     stérilisé    par barbotage de vapeur à       120,1    pendant 40 minutes. Après refroidissement à  270, le volume du     milieu    est de 120 litres et le pH  est égal à 6,8. Le     milieu    est alors ensemencé avec  250     cm3    d'une culture en     erlenmeyer    agité de la sou  che de Streptomyces 662.  



  La culture en fermenteur est aérée avec un débit  d'air stérile de 5     m3/h    et agitée par une turbine tour  nant à 350 t/min. Le développement du Streptomyces  ne commence qu'après une quarantaine d'heures de  culture et présente à 52 heures une intensité correcte  pour l'ensemencement de la culture productrice.  



  Cette dernière est effectuée en fermenteur de  800     litres    chargé avec les substances suivantes  Farine de soja . . . .     .....    ._12,000 kg       Distillers'solubles    ..     .............    .. .... 2,000 kg  Chlorure de sodium.-.....- 2,000 kg  Eau de ville .. .     ..    . .     ...        ..........    . ...360     litres     Le pH est ajusté à 7,45 avec 250     cm3    de soude  10 N. On ajoute ensuite  Huile de soja     ...        ..    . 2 litres  Le milieu est stérilisé à 120  par barbotage de  vapeur pendant 40 minutes.

   Après refroidissement,  la charge du fermenteur est complétée par 10 litres  d'une solution stérile contenant       Cérélose        ....        ....        ........    . 4,000 kg  Le volume du milieu est ainsi de 400 litres et  son pH de 6,85.  



  Le milieu est alors ensemencé par 40 litres de la  culture précédente en fermenteur de 170 litres. Le  milieu est agité par une     turbine    tournant à 205 t/min  et aéré avec 15     m3/h    d'air stérile et maintenu à 26 .  



  Après une- quarantaine d'heures au cours des  quelles le développement du Streptomyces est abon  dant et le pH monte vers des valeurs un peu alca  lines : 7,2, il y a une légère baisse du pH vers 6,8,  puis une remontée. L'activité maximum est atteinte  au moment du passage à pH 7,0 à 70 heures de    culture<B>:</B>     elle    est de 86     mcg    par     cm3.    Les     mousses     qui sont produites au cours de la culture sont facile  ment combattues avec 2 litres     d'une    solution de  Swift dans l'huile minérale.  



  <I>Exemple 2</I>  Un fermenteur de 800 litres est chargé avec les       substances        suivantes:          Corn-steep    (50 % extrait sec) 12,000 kg  Phosphate     monopotassique   <B>------------------</B> 0,400 kg       Sulfate    de magnésium<B>---------------------------</B> 0,400 kg  Eau de ville<B>....</B> .<B>.................. .... ...................</B> 360 litres  Le pH est ajusté à 6,6 par addition de 1.200     cms     d'une solution de soude 10N.

   On ajoute ensuite  Carbonate de calcium<B>-----------</B> ..<B>--------------</B> 1,000 kg  Huile de soja     -----------------........   <B>-------------------</B> 2 litres  Le     milieu    est stérilisé à 1200 par barbotage de  vapeur pendant 40     minutes.    Après refroidissement,       la        charge        du        fermenteur        est        complétée        par:

          -          Cérélose        .......        ....        ....    .     ..........        ......    4,000 kg  en solution     stérile    dans 10 litres d'eau, ce qui amène  le volume total du     milieu    à 400     litres.     



  Le     milieu    est alors ensemencé et la fermentation  conduite comme il est dit dans l'exemple 1.  



  Au bout de 90 heures de culture, l'activité est  de 24     mcg/cm3.     



  <I>Exemple 3</I>  420 litres de moût de fermentation (titre 86     mcg/          cm3    de l'exemple 1) sont placés dans un     réservoir     muni d'un dispositif d'agitation; le pH est ajusté  à 9 par addition de lessive de soude diluée. La sus  pension est agitée 30 minutes puis     additionnée    de  30 kg d'adjuvant de filtration et filtrée sur filtre  presse, le gâteau est lavé par 150 litres d'eau alca  linisée à pH 9. Le filtrat et les lavages réunis repré  sentent 445 litres de solution ayant une activité  égale à 59     microgrammes    par     centimètre    cube.

   La  solution est acidifiée à pH 2 au moyen d'une solu  tion diluée d'acide chlorhydrique et extraite en con  tinu, à     contre-courant    à deux étages, par 30 % de  son volume d'acétate d'éthyle en     utilisant    un groupe  de deux     centrifugeuses.     



  L'extrait d'acétate d'éthyle est lavé par 10 % de  son volume d'eau et clarifié ; on obtient ainsi  135     litres    de solution que l'on concentre sous pres  sion réduite à 19     litres    en utilisant un appareil continu  capable de travailler à une température ne dépassant  pas 350. La solution concentrée est extraite par  8,5     litres    d'eau en alcalinisant à pH 9     par    une solu  tion de soude     diluée    ; après séparation de la phase  aqueuse, l'extraction est renouvelée en     employant     2     litres    d'eau et en ajustant le pH à 9.

   On     obtient        ainsi     11     litres    de solution aqueuse qui est à nouveau aci  difiée à pH 2 et extraite successivement par 3     litres     et 1     litre    d'acétate d'éthyle. Les extraits sont réunis  puis concentrés     sous    pression réduite à 2 litres et  le concentrai coulé     dans    20 litres d'éther de pétrole      sous agitation. Le précipité formé est filtré, lavé par  de l'éther de pétrole et séché.  



       On    obtient ainsi 64 g de 5278     R.P.    brut ayant  une activité égale à 341     microgrammes    par milli  gramme.  



  50 g de 5278     R.P.    brut sont     mis    en contact avec  700     cm-'    d'acétone et la suspension portée à reflux.  Après 15     minutes,    la solution est filtrée puis refroidie  à 30  et     concentrée    sous pression réduite à 200     cm3.     La     cristallisation    commence pendant la concentration,  la solution concentrée est refroidie 20 heures à +     5      et les cristaux sont filtrés, lavés par de l'acétone et  séchés.  



  On obtient 18,5 g de 5278     R.P.    cristallisé sous  forme d'acide     libre    ayant une activité égale à  780     microgrammes    par     milligramme.     



  <I>Exemple 4</I>  10 g de 5278     R.P.    cristallisé directement à partir  du produit brut comme décrit à l'exemple 3 sont  dissous dans 3 litres d'acétate d'éthyle ; la solution  est     chromatographiée    sur une colonne d'alumine d'un  diamètre de 40 mm et de 760 mm de hauteur en  alimentant à un débit de 0,5     litre/heure    ; le chroma  togramme est développé et     élué    par de l'acétate  d'éthyle saturé d'eau en conservant le même débit  Les fractions     suivantes    sont recueillies  
EMI0008.0021     
  
    Volume <SEP> Titre
<tb>  Fraction <SEP> I <SEP> : <SEP> 4 <SEP> litres <SEP> inf. <SEP> à <SEP> 50 <SEP> mcg/cm3
<tb>  Fraction <SEP> II <SEP> :

   <SEP> 1,4 <SEP> litre <SEP> 980 <SEP> mcg/cm3
<tb>  Fraction <SEP> III <SEP> : <SEP> 9,3 <SEP> litres <SEP> 580 <SEP> meg/cm3
<tb>  Fraction <SEP> IV <SEP> : <SEP> 2 <SEP> litres <SEP> 170 <SEP> mcg/cm3       Les fractions II et III réunies sont     concentrées     sous pression réduite à 0,3 litre et la suspension de  cristaux obtenue refroidie deux heures à +     5,1.    Le  produit     cristallisé    est essoré, lavé à l'acétate d'éthyle  et séché sous vide.  



  On obtient 6,8 g de 5278     R.P.    cristallisé sous  forme d'acide libre ayant une activité de 945     mcg/     mg et un point de fusion de 300-304 (au bloc       Maquenne).     



  Cinq grammes de ce dernier produit sont dissous  dans 750     cms    d'acétone à ébullition, la solution fil  trée, refroidie, additionnée de 2,25 litres d'oxyde       d'isopropyle    puis abandonnée à la cristallisation  20 heures à +     5o.    Les cristaux formés sont essorés,  lavés à l'oxyde     d'isopropyle    et séchés, d'abord 10 heu  res à     30     sous 5 mm, puis 2 heures à 100  sous  1 mm.  



  On obtient 3,8 g de 5278     R.P.    cristallisé en  aiguilles brunes sous forme d'acide     libre    ayant les  caractéristiques suivantes  P. F. (au bloc     Maquenne)        301-303      C % = 59,2-59,6 H % = 4,8- 5,2  <B>0</B> % = 25,0-25,2 N % = 10,8-11,1    Le spectre ultraviolet présente deux maximums  d'absorption correspondant aux longueurs d'onde de  382 et 247 mu.  



  3,5 g de 5278     R.P.    acide libre sont mis en sus  pension dans 70     cm3    d'eau et le pH ajusté à 8,7  par addition de soude diluée. La solution de sel de  sodium est filtrée et lyophilisée.  



  On obtient 3,3 g de sel de sodium ayant une  activité de 856     mcg/mg.    3 g de sel de sodium amor  phe sont dissous dans 15     cm-3    de méthanol, la solu  tion est filtrée rapidement et abandonnée à la cris  tallisation pendant 16 heures à -     5 .    On obtient  1,6 g de sel de sodium cristallisé ayant une activité  de 930     mcg/mg.     



  <I>Exemple 5</I>  415 litres de moût de fermentation ayant une  activité de 8     microgrammes    par     centimère        cube    sont  acidifiés à pH 2 par de l'acide chlorhydrique dilué  et agités 30 minutes avec 21 kg de     supercel        Hyflo.     La suspension est filtrée sur filtre presse et le gâteau  lavé par 80 litres d'eau. Le gâteau de filtration est  mis en suspension dans 210 litres d'eau, le mélange  est agité énergiquement et le pH ajusté à 8 par de la  soude. Après 30 minutes d'agitation la suspension  est filtrée sur filtre presse et le contenu du filtre lavé  par 120 litres d'eau.

   Le filtrat et les lavages réunis  représentent<B>310</B> litres de solution aqueuse ayant une  activité de 8,6     microgrammes    par centimètre cube.  La solution aqueuse est acidifiée à pH 2 et extraite  deux fois par 57     litres    à chaque fois d'alcool     buty-          lique    normal. Les extraits butyliques réunis sont con  centrés sous pression réduite et à une température  ne dépassant pas 350 jusqu'à un volume de 2,5 litres.  La solution butylique est filtrée et extraite trois fois  par 1,25 litre d'eau à chaque fois, en alcalinisant à  pH 9 avec de la soude.

   Les solutions aqueuses réunies  sont acidifiées à pH 2 et extraites deux fois par  3,9 litres d'acétate     d'éthyle.    Les extraits acétate  d'éthyle sont     réunis    et concentrés sous pression ré  duite à 0,25 litre. La solution est alors coulée sous  agitation dans 2,5 litres d'éther de pétrole puis le  précipité est essoré, lavé à l'éther de pétrole et séché.  On obtient 16 g de 5278     R.P.    brut ayant une acti  vité de<B>138</B>     microgrammes    par milligramme.  



  Le produit brut est dissous dans 1 litre d'acétate  d'éthyle et la solution     chromatographiée    sur une  colonne     d'alumine    ayant un diamètre de 50     mm    et  une hauteur de 500 mm. Après développement par  2 litres d'acétate d'éthyle saturé d'eau, on observe  au milieu de la     colonne    un anneau rouge brun de  100 mm de hauteur surmonté d'une zone brun foncé.  On laisse sécher partiellement la colonne puis la vide  par     portions    en isolant la zone de l'anneau rouge  brun.

   La fraction d'alumine correspondant à cette       bande    est     éluée    par agitation avec 0,35     litre    d'eau       alcalinisée    à pH 9 ; le même traitement est répété  jusqu'à ce que l'alumine soit pratiquement décolorée,  ce qui exige cinq extractions fournissant 1,7 litre de  solution aqueuse.

   Cette solution est acidifiée à pH 2      et extraite une     première    fois par 0,6 litre puis une  seconde et une troisième fois par 0,3     litre    de     butanol.     Les extraits butyliques sont réunis et concentrés sous  pression réduite à 100     cmf3,    la     cristallisation    qui  s'amorce spontanément est complétée en refroidissant  4 heures à + 5 . Le produit cristallisé est essoré,  lavé à l'éther et séché d'abord 10 heures à     30,)    sous  5 mm de mercure, puis 2 heures à     100,)    sous 1 mm  de mercure.  



  On obtient 1,3 g de 5278     R.P.    cristallisé sous  forme d'acide     libre    ayant une activité égale à  731     mcg/mg.     



  <I>Exemple 6</I>  220     litres    de moût de culture filtrés comme indi  qué dans l'exemple 3,     fournissent    255 litres de solu  tion ayant une activité de 26     microgrammes    par  centimètre cube. La solution est acidifiée à pH 2,  puis agitée avec<B>2 kg</B> de     supercel        Hyflo    et la sus  pension filtrée. Le gâteau de filtration est agité avec  50 litres d'eau alcalinisée à pH 9 pendant une heure  et la suspension filtrée à nouveau. Le gâteau est  lavé par 20 litres d'eau ; le filtrat et les lavages  réunis représentent 65 litres.

   La solution aqueuse aci  difiée à pH 2 est extraite deux     fois    par 12 litres de       butanol.    Les extraits butyliques sont réunis, la solu  tion obtenue clarifiée et concentrée sous pression ré  duite à un litre. Le     concentrat    est coulé sous agitation    dans 5 litres d'éther de pétrole, le précipité formé est  essoré, lavé à l'éther de pétrole et séché.  



  On obtient<B>12,5</B> g de 5278     R.P.    brut ayant une  activité de 210     microgrammes    par milligramme.  <I>Exemple 7</I>  200 litres de filtrat de culture obtenus comme  indiqué dans l'exemple 1 et ayant une activité égale  à 59     microgrammes    par centimètre cube sont extraits  à l'acétate d'éthyle puis à l'eau,     comme    on l'a fait  au cours de l'exemple mentionné.

   Les traitements  successifs fournissent 6 litres de solution aqueuse  ayant une activité de 1510     microgrammes    par centi  mètre     cube.    La solution est acidifiée à pH 2 par de  l'acide phosphorique puis extraite 2 fois par 3 litres  à chaque fois de     dichloréthane.    L'extrait clarifié est  concentré sous pression     réduite    à 0,2 litre et le     con-          centrat    coulé sous agitation dans 1,2 litre d'éther de  pétrole. Le précipité formé est essoré, lavé à l'éther  de pétrole.  



  On obtient 23 g de 5278     R.P.    brut ayant une  activité égale à 300     mcg/mg.  

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  1. REVENDICATION Procédé de préparation d'un nouvel antibiotique, caractérisé en ce qu'on cultive en milieu aérobie le Streptomyces rufochromogenus ou un de ses mutants.
CH7919259A 1958-10-30 1959-10-08 Procédé de préparation d'un nouvel antibiotique CH387880A (fr)

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