EP0652952A1 - Peptides inhibant l'activite des proteines ras, preparation et utilisation - Google Patents

Peptides inhibant l'activite des proteines ras, preparation et utilisation

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Publication number
EP0652952A1
EP0652952A1 EP93917835A EP93917835A EP0652952A1 EP 0652952 A1 EP0652952 A1 EP 0652952A1 EP 93917835 A EP93917835 A EP 93917835A EP 93917835 A EP93917835 A EP 93917835A EP 0652952 A1 EP0652952 A1 EP 0652952A1
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
peptide
sequence
peptides
gap
virus
Prior art date
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Withdrawn
Application number
EP93917835A
Other languages
German (de)
English (en)
Inventor
Marc Duchesne
Fabien Schweighoffer
Bruno Tocque
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Aventis Pharma SA
Original Assignee
Rhone Poulenc Rorer SA
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Filing date
Publication date
Application filed by Rhone Poulenc Rorer SA filed Critical Rhone Poulenc Rorer SA
Publication of EP0652952A1 publication Critical patent/EP0652952A1/fr
Withdrawn legal-status Critical Current

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K5/00—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04—Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/10—Tetrapeptides
    • C07K5/1021—Tetrapeptides with the first amino acid being acidic
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00—Antineoplastic agents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/46—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates
    • C07K14/47—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals
    • C07K14/4701—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from vertebrates from mammals not used
    • C07K14/4702—Regulators; Modulating activity
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention relates to new peptide and nucleotide sequences, and their pharmaceutical use. More particularly, the present invention relates to new peptides capable of at least partially inhibiting the transforming activity of ras proteins.
  • p21 proteins play a key role in controlling cell proliferation in all the eukaryotic organisms where they have been sought. In particular, it has been shown that certain specific modifications of these proteins cause them to lose their normal control and lead them to become oncogenic. Thus, a large number of human tumors have been associated with the presence of modified ras genes. Likewise, overexpression of these p21 proteins can lead to disruption of cell proliferation. Understanding the exact role of these p21 proteins in cells, their mode of operation and their characteristics therefore constitutes a major challenge for the understanding and therapeutic approach of carcinogenesis.
  • GEF Guanidic Nucleotide Exchange Factor
  • the present invention results from the demonstration by the applicant that the GAP protein is not simply a regulator whose sole role is to deactivate p21 by making it return to the inactive state as a result of the hydrolysis of GTP, but that 'it also constitutes the effector of the p21 proteins triggering the cellular response.
  • the present invention results more particularly from the identification and characterization of particular regions (called effector regions) of the GAP protein involved in the transduction of the activation signals of the p21 proteins.
  • effector regions regions of the GAP protein involved in the transduction of the activation signals of the p21 proteins.
  • the demonstration of the existence of such a region and its characterization make it possible to prepare new peptides which can be used pharmaceutically.
  • a first object of the invention therefore relates to peptides capable of at least partially inhibiting the transforming activity of activated p21 proteins. It is understood that the term protein p21 designates any expression product of a normal or oncogenic ras gene.
  • the subject of the invention is the peptides capable of at least partially inhibiting the transforming activity of the p21-GTP-GAP complexes.
  • the p21 proteins are necessary for the expression of the transforming power of upstream acting oncogenes, such as src, HER1, HER2, etc. Therefore, the peptides of the invention and any pharmaceutical composition containing them are also useful for treating tumors with these activated genes.
  • the peptides of the invention are derivatives of the GAP protein.
  • the term derivative designates any molecule obtained by modification of a genetic and / or chemical nature and retaining the desired inhibition capacity.
  • modification of genetic and / or chemical nature one can hear any mutation, substitution, deletion, addition and / or modification of one or more residues.
  • Such derivatives can be generated for different purposes, such as in particular that of increasing the affinity of the peptide for its interaction site, that of improving its production levels, that of increasing its resistance to proteases or of '' improve its passage through cell membranes, that of increasing its therapeutic efficacy or reducing its side effects, or that of giving it new pharmaco ⁇ netic and / or biological properties.
  • peptide derived from the GAP protein mention may in particular be made of any peptide capable of binding the p21 protein, optionally complexed with GTP, but carrying an effector region made non-functional. Such peptides can be obtained by deletion, mutation or disruption of this effector region on the GAP protein. More preferably, the peptides of the invention comprise all or part of the peptide sequence SEQ ID No. 2 or a derivative thereof.
  • the term derivative has the same meaning as before.
  • the peptides of the invention may thus have the structure of the peptide of sequence SEQ ID No. 2, of a fragment thereof, or a structure derived from these (for example a peptide incorporating the peptide SEQ ID No. 2).
  • Such peptides can be generated in different ways. In particular, they can be synthesized chemically, on the basis of the sequence SEQ ID No. 2, using the peptide synthesizers known to those skilled in the art. They can also be synthesized genetically, by expression in a cellular host of a nucleotide sequence coding for the peptide sought, optionally followed by chemical or enzymatic modifications.
  • the nucleotide sequence can be prepared chemically using an oligonucleotide synthesizer, on the basis of the peptide sequence given in the present application and the genetic code.
  • the nucleotide sequence can also be prepared from the nucleotide sequence given in the present application (SEQ ID No. 1), by enzymatic cleavages, ligation, cloning, etc., according to techniques known to those skilled in the art. These peptides can also be modified by adding sequences allowing them precise cell localization.
  • CAAX-type sequences in which C is a cysteine, A an aliphatic amino acid and X an arbitrary amino acid making it possible to determine whether or not a peptide is post-translationally modified by a cellular farnesyl transferase can be added (Cancer Cells vo! 3 (9) 1991 331).
  • the present invention therefore makes it possible to generate peptides derived from the GAP protein and, more particularly, from the sequence SEQ ID No. 2, having interesting biological properties for pharmaceutical use.
  • the biological activity of these different peptides of the invention can be evaluated according to different tests described in the examples, and in particular by an oocyte maturation test.
  • peptides according to the invention are the peptides capable of entering into competition with the peptides defined above for the interaction with their cellular target. Such peptides can be synthesized in particular on the basis of the sequence of the peptide considered, and their capacity to compete with the peptides defined above for the interaction with their cell target can be determined as described in the examples. As examples of peptides according to the invention, mention may be made of peptides having the following amino acid sequence:
  • the invention also provides non-peptide or non-exclusively peptide compounds which can be used pharmaceutically. It is indeed possible, from the active protein motifs described in the present application, to produce molecules which inhibit the signaling pathway dependent on the GAP protein which are not exclusively peptide and which are compatible with pharmaceutical use.
  • the present invention also relates to any nucleotide sequence coding for a peptide according to the invention. It may in particular be a sequence comprising all or part of the sequence SEQ ID No. 1 or a sequence derived therefrom.
  • derivative sequence is meant within the meaning of the present invention any sequence hybridizing with the sequence SEQ ID No. 1 or with a fragment thereof and coding for a peptide according to the invention, as well as the sequences resulting from the latter by degeneration of the genetic code.
  • An example of the sequence of the invention hybridizing with the sequence SEQ ID No. 1 is shown in the sequence SEQ ID No. 3.
  • the sequences of the invention can be used for the production of the peptides of the invention.
  • the part coding for said peptide is generally placed under the control of signals allowing its expression in a cellular host.
  • the choice of these signals can vary depending on the cell host used.
  • the nucleotide sequences of the invention can be part of a vector, which can be autonomously replicating or integrative. More particularly, autonomously replicating vectors can be prepared using autonomously replicating sequences in the chosen host. As regards the integrative vectors, these can be prepared for example by using sequences homologous to certain regions of the host genome, allowing, by homologous recombination, the integration of the vector.
  • the cellular hosts which can be used for the production of the peptides of the invention by the recombinant route are both eukaryotic and prokaryotic hosts.
  • suitable eukaryotic hosts there may be mentioned animal cells, yeasts, or fungi.
  • yeasts mention may be made of yeasts of the genus Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, Schwanniomyces, or Hansenula.
  • yeasts mention may be made of yeasts of the genus Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, Schwanniomyces, or Hansenula.
  • animal cells mention may be made of COS, CHO, C127 cells, etc.
  • the mushrooms there may be mentioned more particularly Aspergillus ssp. or Tridioderma ssp.
  • prokaryotic hosts it is preferred to use the following bacteria E.coli, Bacillus, or Streptomyces.
  • the nucleotide sequences of the present invention can also be used in the pharmaceutical field, either in the context of gene therapy, or for the detection, by hybridization experiments, of the expression of GAP genes in biological samples, or to prepare antisense oligonucleotides.
  • the sequences of the invention can be inserted into vectors such as retroviral vectors or adenoviral vectors, allowing their administration in vivo (Medicine and Sciences 7 (1991) 705).
  • the different nucleotide sequences of the invention can be of artificial origin or not. They can be genomic sequences, cDNA, RNA, hybrid sequences or synthetic or semi-synthetic sequences. These sequences can be obtained either by screening of DNA libraries (cDNA library, genomic DNA library), or by chemical synthesis, or by mixed methods including chemical or enzymatic modification of sequences obtained by screening of libraries.
  • the products of the present invention can be used in the therapeutic field: in particular, the peptides of the invention being capable of modulating the activity of ras proteins, they make it possible to intervene in the process of development of cancers, and in particular, they can inhibit the activity of oncogenes whose transforming activity requires a functional p21-GAP interaction. Many cancers have in fact been associated with the presence of ras oncogenic proteins.
  • adenocarcinomas of the pancreas 90% of which have a mutated Ki-ras oncogene on the twelfth codon (Almoguera et al., Cell 53 (1988) 549), adenocarcinomas of the colon and thyroid cancers (50%), or carcinomas of the lung and myeloid leukemia (30%, Bos, JL Cancer Res. 49 (1989) 4682).
  • the invention therefore also relates to any pharmaceutical composition comprising as active principle at least one peptide and / or an antisense oligonucleotide and / or a nucleic sequence according to the present invention.
  • the pharmaceutical compositions of the invention can be formulated for topical, oral, parenteral, intranasal, intravenous, intramuscular, subcutaneous, intraocular, etc. administration.
  • the pharmaceutical compositions contain pharmaceutically acceptable vehicles for a formulation. injectable.
  • saline solutions monosodium phosphate, disodium phosphate, sodium chloride, potassium, calcium or magnesium, etc., or mixtures of such salts
  • sterile, isotonic, or dry compositions in particular lyophilized, which, by addition, as appropriate, of sterilized water or physiological saline, allow the constitution of injectable solutes.
  • the doses of active principle (peptide, nucleic sequence or vector) used for administration can be adapted as a function of various parameters, and in particular as a function of the mode of administration used, of the pathology concerned, of the gene to be expressed, or else the duration of the treatment sought.
  • pfu plaque forming unit
  • plaque forming unit corresponds to the infectious power of a virus solution, and is determined by infection of an appropriate cell culture, and measures, generally after 48 hours, the number of plaques of infected cells. The techniques for determining the pfu titer of a viral solution are well documented in the literature.
  • compositions are more particularly intended for use in the treatment of cancers. More particularly, the pharmaceutical compositions comprise at least one virus in which is incorporated at least one nucleotide sequence as described above.
  • the pharmaceutical compositions comprise at least one virus in which is incorporated at least one nucleotide sequence as described above.
  • Figure 1 Demonstration of the effector region of the GAP protein.
  • Figure 2 Antigenic profile of the peptide SEQ ID No. 2 screened in sequential recovery with the antibody Ac200.
  • Figure 3 Effect of peptides of the invention on the maturation of xenopus eggs induced by p21 Ras Lysl2, insulin or progesterone.
  • the plasmids of type ⁇ BR322, pUC, lgt11, pGEX 2T and the phages of the M13 series are of commercial origin.
  • the DNA fragments are separated according to their size by electrophoresis in agarose or acrylamide gels, extracted with phenol or with a phenol / chloroform mixture, precipitated with ethanol and then incubated in the presence of DNA.
  • phage T4 ligase Biolabs
  • the filling of the prominent 5 ′ ends is carried out by the Klenow fragment of DNA Polymerase I to E. coli (Biolabs) according to supplier specifications.
  • the destruction of the protruding 3 ′ ends is carried out in the presence of the DNA polymerase of phage T4 (Biolabs) used according to the manufacturer's recommendations.
  • the destruction of the protruding 5 ′ ends is carried out by gentle treatment with nuclease S1.
  • Mutagenesis directed in vitro by synthetic oligodeoxynucleotides is carried out according to the method developed by Taylor et al. [Nucleic Acids Res. 13 (1985) 8749-8764] using the kit distributed by Amersham.
  • PCR Polymerase-catalyzed Chain Reaction, Saiki R.K. et al., Science 230 (1985) 1350-1354; Mullis K.B. and Faloona F.A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350] is performed using a "DNA thermal cycler" (Perkin Elmer Cetus) according to the manufacturer's specifications
  • Verification of the nucleotide sequences is carried out by the method developed by Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 (1977) 5463-5467] using the kit distributed by Amersham.
  • the normal stringency conditions are generally as follows: hybridization: 3 ⁇ SCC in the presence of 5 ⁇ Denhart's at 65 ° C; washing: 0.5 x SSC at 65 ° C.
  • Example 1 Demonstration of effective regions The existence of effector regions within the GAP protein has been demonstrated by the demonstration that anti-GAP antibodies were capable of blocking the transforming activity of ras (E.1.1 .) whereas these same antibodies did not modify the GAP-ras interaction (E.1.2.).
  • E.1.1 Inhibition of ras function by anti-GAP antibodies.
  • the monoclonal antibodies of mice directed against the GAP protein were obtained from M. Thang (Inserm U245, Hôpital St Antoine, Paris). These antibodies were used to demonstrate the role of the GAP-p21 interaction and, more specifically, to show the influence of an inhibition of this interaction on the maturation of xenopus eggs induced by ras.
  • Xenopus kevis frogs were obtained from the CNRS
  • Frogs are anesthetized in ice water, and fragments of ovaries are surgically removed and transferred to a medium Modified Barth (Hirai et al., Dev. Biol. 100 (1984) 214).
  • the oocytes at the NI stage are recovered by agitating the oocyte aggregates for 2 hours at room temperature in the presence of 2 mg / ml of collagenase (Sigma).
  • 40 ⁇ l of the protein in modified Barth medium are introduced into the cytoplasm of the oocytes by microinjection, either alone or in the presence of anti-GAP antibodies at different concentrations.
  • the oocytes are incubated in the presence of insulin (10 ⁇ g / ml) and zinc chloride (10 ⁇ M) (bovine pancreatic insulin, Sigma) or progesterone (1 ⁇ M) .
  • the oocytes are stored at 20 ° C. in modified Barth medium, and the% of germinal vesicle rupture (GVBD) is determined after 18 hours of incubation, by dissection of the oocytes previously fixed in the presence of 5% of trichloroacetic acid. The results are expressed as the% of GVBD on groups of oocytes.
  • the interaction between GAP and the p21-GTP complex is determined according to the following protocol.
  • the normal Ha-ras p21 protein (Rey et al., Mol. Cell. Biol. 9 (1989) 3904) is balanced with an excess of ( ⁇ - 32 P) GTP (3000 Ci / mmol, Dupont, ⁇ E ⁇ Research Products, Boston, Mass) in 20 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5), 100 mM ( ⁇ H 4 ) 2 SO 4 , 10 mM dithiothreitol, 1 mM MgCl 2 and 50 mg / ml bovine serum albumin, for 30 minutes at 30 ° C.
  • Example 2 Characterization of the effector region E.2.1. Demonstration of a region of around 80 aa by GAP fragmentation, production of these GAP fragments in the form of a GST fusion, and reactivity towards the neutralizing antibody Ac200
  • the DNA sequence coding for the GAP protein was fragmented by enzymatic digestion, and the fragments obtained were separated by electroelution and formed into BamHI-EcoRI fragments. These fragments were then expressed in the strain of E. coli TG1 in the form of fusion proteins with glutathione S-transferase (GST) according to the technique described by Smith and Johnson (Gene 67 (1988) 31). For this, the different DNA fragments obtained were inserted into the BamHI-EcoRI sites of the vector pGEX 2T (Pharmacia), 3 ′ and in the phase of a cDNA coding for GST. The vectors thus obtained are then used to transform the Exoli TG1 strain.
  • GST glutathione S-transferase
  • the cells thus transformed are precultivated overnight at 37 ° C., diluted 1/10 in LB medium, added with IPTG to induce expression (2 hours, 25 ° C.), then cultured for approximately 21 hours at 25 ° C. .
  • the cells are then lysed, and the fusion proteins produced are purified by affinity on an Agarose-GSH column.
  • the bacterial lysate is incubated in the presence of the gel (prepared and equilibrated with the lysis buffer) for 15 min at 4 ° C. After 3 washes with a Tris-HCl buffer pH 7.4, the proteins are eluted in the presence of a Tris-HCl buffer pH 7.7 containing an excess of GSH. The supernatant is collected and centrifuged.
  • the fragments thus obtained are tested as a function of their recognition by the antibody Ac200.
  • the results obtained are presented in FIG. 1. They show that the effector region of the GAP protein is located between residues 275 and 350 approximately.
  • the "epitope scanning” technique is based on the principle that a given antibody can react with peptides of 5 to 15 amino acids. Therefore, the identification of sequential epitopes can be obtained by preparing a complete set of overlapping peptides, of 5-15 amino acids, corresponding to the complete sequence of the antigen considered. This technique was used to determine the functional epitopes of the GAP fragment demonstrated in example E.2.1. above. For this, the entire fragment was explored by sequential overlays, by synthesis of a decapeptide every 2 amino acids. a) Synthesis of the overlapping peptides.
  • the functional epitopes recognized by the antibody Ac200 were revealed in the ELISA test by an anti-mouse rabbit antibody coupled to peroxidase.
  • the chromogenic substrate of the enzyme used is amino-di- (3-ethylbenzothiazodine sulfonate) (ABTS).
  • the epitopes recognized by this antibody are the following:
  • Example 3 Biological characterization E.3.1.
  • the biological activity of the peptides of the invention was studied by measuring their effect on the maturation of xenopus eggs induced by p21 ras Lysl2, by insulin or by progesterone.
  • the protocol used is the same as that described in example E.1.1. above.
  • the activity is measured by microinjection into the cytoplasm of 40 ⁇ l oocytes or the ras p21 protein in modified Barth medium, either alone or in the presence of the various peptides of the invention at variable concentrations.
  • the results are expressed as the% of GVBD on groups of oocytes. The results are shown in Figure 3.
  • peptides of the invention in particular the peeptide SEQ ID No. 1 and the peptide (P5), are capable of inhibiting the transforming activity of the ras protein.
  • a fragment of identical length ([768-860] PLC ⁇ ) prepared by the same techniques from human ⁇ -type phospholipase C does not exhibit the activity of the peptide of the invention.
  • the P9 peptide was purified in the form of a GST fusion protein according to the protocol described in Example E.2.I., then separated from the GST after proteolytic cleavage with thrombin. The P9 peptide thus obtained was then tested on the maturation of xenopus eggs under the conditions of the example. E.3.1. The results obtained show that the P9 peptide completely blocks the maturation of oocytes.
  • Cancer cells have the property of forming foci of transformation, and in particular the NIH 3T3 fibroblasts expressing an oncogenic ras.
  • NIH 3T3 cells were cultured in DMEM medium (Dulbecco modified Eagle medium) containing 10% fétai calf serum, at 37 ° C., in a humid environment containing 5% C02.
  • the plasmids pSV2-GAP and pSV2-P9 were constructed by inserting the nucleotide sequences coding for GAP and for P9 (SEQ ID No. 3) into the vector SV2.
  • NIH 3T3 cells were cotransfected with a Ha-ras Val12 oncogenic ras, the plasmids indicated in the table, and a 10-fold excess of the neomycin resistance gene, by the cationic lipid transfection technique (Schweighoffer et al ., Science 256 (1992) 825). The same amount of total DNA is transfected for each dish. 24 hours after transfection, the transfected cells from each petri dish (100 mm) are divided in a ratio 1 to 10 and cultured in the same medium but in the presence of G418 (Gibco / BRL) at 0.4 mg / ml middle. The number of transformation foci obtained per ⁇ g of transfected DNA is counted after 14 days of culture. The results obtained are presented in the following table. They represent the average of four independent tests.
  • the defective recombinant viruses of the invention can be prepared by homologous recombination between a defective virus and a plasmid carrying, inter alia, the nucleic acid sequence as defined above (Levrero et al., Gene 101 (1991) 195; Graham , EMBO J. 3 (12) (1984) 2917). Homologous recombination occurs after co-transfection of said viruses and plasmid into an appropriate cell line.
  • the cell line used must preferably (i) be transformable by said elements, and (ii), contain the sequences capable of complementing the part of the genome of the defective virus, preferably in integrated form to avoid the risks of recombination.
  • a line which can be used for the preparation of defective recombinant adenoviruses mention may be made of the human embryonic kidney line 293 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59) which contains, in particular, integrated in its genome, the left part of the genome of an Ad5 adenovirus (12%).
  • a line which can be used for the preparation of defective recombinant retroviruses mention may be made of the CRIP line (Danos and Mulligan, P ⁇ AS 85 (1988) 6460).
  • the sequence SEQ ID No. 3 coding for the peptide P9 was cloned into a neo plasmid under the control of the early promoter of SN40.
  • the promoter cassette SN40-SEQ ID No. 3 was then cloned into a retroviral vector of the Moloney type (Palmer et al., P ⁇ AS 84 (1987) 1055).
  • a control vector was also constructed, in which the fragment was inserted in the antisense orientation.
  • the amphotrophic GP + envAml2 cells were transfected with the retroviral vectors described above by the calcium phosphate technique (Markowitz et al., Nirology 167 (1988) 400; Graham et al., Nirology 52 (1973) 456). 48 hours after transfection, the transfected cells are subcultured in a medium containing G418 (Gibco, BRL) at a concentration of 0.4 mg / ml. Two weeks later, colonies resistant to G418 are cultivated in large quantities.
  • G418 Gibco, BRL
  • the transfected cells having a high titer in virus are cocultivated with the ecotropic packaging cells Psi2 in order to increase the viral titer (Palmer et al., P ⁇ AS 84 (1987) 1055).
  • the recombinant viruses thus produced are isolated by basic molecular biology techniques. b) In vivo anti-tumor activity
  • mice receive intratracheal 10 5 H460a cells.
  • the mice having received the tumor are treated by the same intratracheal route with 0.1 ml of viral suspension obtained from above (approximately 5.10 6 cpu / ml) containing 5 ⁇ g / ml of protamine.
  • the mice are analyzed for the presence of tumors, the volume of which is approximated according to the technique described by Me Lemore et al predtée. Animals treated with the P9 virus do not have measurable tumors, or only very small tumors.
  • animals treated with the same viral titer of the antisense P9 virus are indistinguishable from control animals having received only the tumor.
  • sequences of the invention in particular in the form of viral vectors, can be used in vivo for the treatment of cancers.
  • viruses for the transfer of the peptides of the invention in vivo.
  • it can be adenovirus, adeno-assoded virus, herpes virus, etc.
  • Vectors derived from these viruses have been described in the prior art and the construction of viruses according to the invention can be carried out by a person skilled in the art on the basis of his general knowledge (see in particular Akli et al., Nature Genetics 3 (1993) 224; Stratford-Perricaudet et al., Human Gene Therapy 1 (1990) 241; EP 185 573, Levrero et al., Gene 101 (1991) 195; WO 91/1808; EP 243204).
  • LIST OF SEQUENCES LIST OF SEQUENCES
  • Trp Met Trp Val Thr Asn Leu Arg Thr Asp

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Abstract

La présente invention concerne des peptides capables d'inhiber au moins partiellement l'activité transformante des protéines p21 activées, leur préparation et des compositions pharmaceutiques les contenant.

Description

PEPTIDES INHIBANT L'ACTIVITE DES PROTEINES RAS,
PREPARATION ET UTILISATION
La présente invention concerne de nouvelles séquences peptidiques et nucléotidiques, et leur utilisation pharmaceutique. Plus particulièrement, la présente invention concerne de nouveaux peptides capables d'inhiber au moins partiellement l'activité transformante des protéines ras.
Différents gènes, appelés onoogènes et gènes suppresseurs, sont impliqués dans le contrôle de la division cellulaire. Parmi ceux-ci, les gènes ras, et leurs produits généralement désignés protéines p21, jouent un rôle clé dans le contrôle de la prolifération cellulaire chez tous les organismes eucaryotes où ils ont été recherchés. Notamment, il a été montré que certaines modifications spécifiques de ces protéines leur font perdre leur contrôle normal et les conduisent à devenir oncogénique. Ainsi, un grand nombre de tumeurs humaines ont été associées à la présence de gènes ras modifiés. De même, une surexpression de ces protéines p21 peut conduire à un dérèglement de la prolifération cellulaire. La compréhension du rôle exact de ces protéines p21 dans les cellules, de leur mode de fonctionnement et de leurs caractéristiques constitue donc un enjeu majeur pour la compréhension et l'approche thérapeutique de la cancérogénèse. In vivo, on ne connait pas encore la nature précise des événements responsables de l'activation des protéines p21, et de la transduction du signal qu'elles portent. On sait qu'elles exercent leur fonction en oscillant entre deux états conformationnels : une forme inactive liée au GDP et une forme active liée au GTP. L'activité de ces protéines est donc contrôlée par les facteurs qui régissent l'équilibre entre ces deux formes, c'est-à-dire la transition p21-GDP -> p21-GTP et inversement.
Concernant l'activation des complexes p21-GDP, des travaux récents rapportent des situations physiologiques au cours desquelles la proportion de protéines ras liées au GTP augmente dans la cellule. Il s'agit de l'activation des lymphocytes T et de la stimulation des fibroblastes 3T3 par des facteurs de croissance dont l'EGF et le PDGF. Cette augmentation de la proportion de p21-GTP peut s'expliquer au moins en partie par l'action d'une protéine jouant un rôle analogue à celui d'un récepteur pour les protéines G de transduction. A cet égard, certaines protéines capables de promouvoir l'échange du GDP sur les protéines p21 ont été identifiées, à partir de cerveau de boeuf (West et coll., FEBS Lett. 259 (1990) 245) et de rat (Wolfman et Macara, Science 248 (1990) 67). La localisation cellulaire distincte de ces facteurs et les conditions expérimentales très différentes dans lesquelles ils ont été obtenus laissent supposer qu'il s'agit de protéines différentes. Elles sont aussi actives sur les protéines ras normales que sur celles qui sont oncogéniques. Ces activités ont été regroupées sous le terme de GEF : Facteur d'Echange des nucléotides Guanidiques. Concernant l'inactivation des complexes p21-GTP, une protéine cytosolique ayant le pouvoir d'accélérer très fortement l'hydrolyse du GTP lié à la protéine p21 a été mise en évidence (Trahey et Me Cormick, Science 238 (1987) 542). Cette protéine, dénommée GAP, interagit avec les protéines p21 de manière catalytique et multiplie par 100 à 200 la vitesse d'hydrolyse du GTP mesurée in vitro pour la protéine p21 normale. Différents travaux ont montré que le domaine catalytique de cette protéine de 1044 acides aminés environ était situé dans la région carboxy-terminale (résidus 702-1044), et que cette région était responsable de l'interaction de la protéine GAP avec les protéines p21 (Cf WO91/02749). Cependant, le rôle de cette protéine GAP n'a pas été jusqu'à présent clairement élucidé. En particulier, les éléments et les facteurs permettant la transduction des signaux d'activation des protéines p21 à la cellule ne sont pas connus. La présente invention résulte de la mise en évidence par la demanderesse que la protéine GAP ne constitue pas simplement un régulateur ayant pour seul rôle de désactiver la p21 en la faisant repasser à l'état inactif par suite de l'hydrolyse du GTP, mais qu'elle constitue également l'effecteur des protéines p21 déclenchant la réponse cellulaire. La présente invention résulte plus particulièrement de l'identification et de la caractérisation de régions particulières (dites régions effectrices) de la protéine GAP impliquées dans la transduction des signaux d'activation des protéines p21. La mise en évidence de l'existence d'une telle région et sa caractérisation permettent de préparer de nouveaux peptides utilisables pharmaceutiquement. Un premier objet de l'invention concerne donc des peptides capables d'inhiber au moins partiellement l'activité transformante des protéines p21 activées. Il est entendu que le terme protéine p21 désigne tout produit d'expression d'un gène ras normal ou oncogénique.
Plus particulièrement, l'invention a pour objet les peptides capables d'inhiber au moins partiellement l'activité transformante des complexes p21-GTP-GAP. On sait de plus que les protéines p21 sont nécessaires à l'expression du pouvoir transformant d'oncogènes agissant en amont, comme src, HER1, HER2, etc. De ce fait, les peptides de l'invention et toute composition pharmaceutique les contenant sont également utiles pour traiter les tumeurs présentant ces gènes activés.
Préférentiellement, les peptides de l'invention sont des dérivés de la protéine GAP.
Au sens de la présente invention, le terme dérivé désigne toute molécule obtenue par modification de nature génétique et/ou chimique et conservant la capacité d'inhibition recherchée. Par modification de nature génétique et/ou chimique, on peut entendre toute mutation, substitution, délétion, addition et/ou modification d'un ou plusieurs résidus. De tels dérivés peuvent être générés dans des buts différents, tels que notamment celui d'augmenter l'affinité du peptide pour son site d'interaction, celui d'améliorer ses niveaux de production, celui d'augmenter sa résistance à des protéases ou d'améliorer son passage à travers les membranes cellulaires, celui d'augmenter son efficacité thérapeutique ou de réduire ses effets secondaires, ou celui de lui conférer de nouvelles propriétés pharmacoάnétiques et/ou biologiques.
En tant que peptide dérivé de la protéine GAP, on peut citer notamment tout peptide capable de lier la protéine p21, éventuellement complexée au GTP, mais portant une région effectrice rendue non fonctionnelle. De tels peptides peuvent être obtenus par délétion, mutation ou disruption de cette région effectrice sur la protéine GAP. Plus préférentiellement, les peptides de l'invention comprennent tout ou partie de la séquence peptidique SEQ ID n° 2 ou d'un dérivé de celle-ci.
Le terme dérivé a la même signification que précédemment. Les peptides de l'invention peuvent ainsi avoir la structure du peptide de séquence SEQ ID n° 2, d'un fragment de celui-ci, ou une structure dérivée de ceux-ci (par exemple un peptide incorporant le peptide SEQ ID n° 2). De tels peptides peuvent être générés de différentes façons. En particulier, ils peuvent être synthétisés par voie chimique, sur la base de la séquence SEQ ID n° 2, en utilisant les synthétiseurs peptidiques connus de l'homme du métier. Ils peuvent également être synthétisés par voie génétique, par expression dans un hôte cellulaire d'une séquence nucléotidique codant pour le peptide recherché, éventuellement suivie de modifications chimiques ou enzymatiques. Dans le cas d'une synthèse par voie génétique, la séquence nucléotidique peut être préparée chimiquement en utilisant un synthétiseur d'oligonucléotides, sur la base de la séquence peptidique donnée dans la présente demande et du code génétique. La séquence nucléotidique peut également être préparée à partir de la séquence nucléotidique donnée dans la présente demande (SEQ ID n° 1), par coupures enzymatiques, ligature, clonage, etc, selon les techniques connues de l'homme du métier. Ces peptides peuvent également être modifiés par l'ajout de séquences leur permettant une localisation cellulaire précise. En particulier, des séquences de type CAAX où C est une cystéine, A un acide aminé aliphatique et X un acide aminé quelconque, permettant de déterminer si un peptide est ou non modifié post-traductionnellement par une farnésyl transférase cellulaire peuvent être ajoutées (Cancer Cells vo!3(9) 1991 331).
La présente invention permet donc de générer des peptides dérivés de la protéine GAP et, plus particulièrement, de la séquence SEQ ID n° 2, présentant des propriétés biologiques intéressantes en vue d'une utilisation pharmaceutique. L'activité biologique de ces différents peptides de l'invention peut être évaluée selon différents tests décrits dans les exemples, et notamment par un test de maturation d'oocytes.
D'autres peptides selon l'invention sont les peptides capables d'entrer en compétition avec les peptides ci-dessus définis pour l'interaction avec leur cible cellulaire. De tels peptides peuvent être synthétisés notamment sur la base de la séquence du peptide considéré, et leur capacité à entrer en compétition avec les peptides ci-dessus définis pour l'interaction avec leur cible cellulaire peut être déterminée comme décrit dans les exemples. A titre d'exemples de peptides selon l'invention, on peut citer les peptides ayant la séquence d'acides aminés suivantes :
- peptide ayant la séquence SEQ ID n° 2,
- peptide PVEDRRRVRAI (positions 5-15 sur la séquence SEQ ID n° 2) - peptide EISF (positions 26-29 sur la séquence SEQ ID n° 2)
- peptide EDGWM (positions 42-46 sur la séquence SEQ ID n° 2)
- protéine GAP portant une région effectrice rendue non fonctionnelle,
- polypeptides P4-P9 (SEQ ID n° 3-8) décrits dans l'exemple 2,
- peptides compétiteurs des peptides ci-dessus. L'invention fournit également des composés non peptidiques ou non exclusivement peptidiques utilisables pharmaceutiquement. Il est en effet possible, à partir des motifs protéiques actifs décrits dans la présente demande, de réaliser des molécules inhibitrices de la voie de signalisation dépendante de la protéine GAP non exclusivement peptidiques et compatibles avec une utilisation pharmaceutique.
La présente invention a également pour objet toute séquence nucléotidique codant pour un peptide selon l'invention. Il peut s'agir en particulier d'une séquence comprenant tout ou partie de la séquence SEQ ID n° 1 ou d'une séquence dérivée de celle-ci. Par séquence dérivée, on entend au sens de la présente invention toute séquence hybridant avec la séquence SEQ ID n° 1 ou avec un fragment de celle-ci et codant pour un peptide selon l'invention , ainsi que les séquences résultant de ces dernières par dégénérescence du code génétique. Un exemple de séquence de l'invention hybridant avec la séquence SEQ ID n° 1 est représenté sur la séquence SEQ ID n° 3. Les séquences de l'invention peuvent être utilisées pour la production des peptides de l'invention. Dans ce cas, la partie codant pour ledit peptide est généralement placée sous le contrôle de signaux permettant son expression dans un hôte cellulaire. Le choix de ces signaux (promoteurs, terminateurs, séquence "leader" de sécrétion, etc) peut varier en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. Par ailleurs, les séquences nucléotidiques de l'invention peuvent faire partie d'un vecteur, qui peut être à réplication autonome ou intégratif. Plus particulièrement, des vecteurs à réplication autonome peuvent être préparés en utilisant des séquences à réplication autonome chez l'hôte choisi. S'agissant des vecteurs intégratifs, ceux-ci peuvent être préparés par exemple en utilisant des séquences homologues à certaines régions du génome de l'hôte, permettant, par recombinaison homologue, l'intégration du vecteur. Les hôtes cellulaires utilisables pour la production des peptides de l'invention par voie recombinante sont aussi bien des hôtes eucaryotes que procaryotes. Parmi les hôtes eucaryotes qui conviennent, on peut citer les cellules animales, les levures, ou les champignons. En particulier, s'agissant de levures, on peut citer les levures du genre Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, Schwanniomyces, ou Hansenula. S'agissant de cellules animales, on peut citer les cellules COS, CHO, C127, etc. Parmi les champignons, on peut citer plus particulièrement Aspergillus ssp. ou Tridioderma ssp. Comme hôtes procaryotes, on préfère utiliser les bactéries suivantes E.coli, Bacillus, ou Streptomyces.
Les séquences nucléotidiques de la présente invention sont également utilisables dans le domaine pharmaceutique, soit dans le cadre d'une thérapie génique, soit pour la détection, par des expériences d'hybridation, de l'expression de gènes GAP dans des échantillons biologiques, soit pour préparer des oligonucléotides antisens. Concernant la thérapie génique, les séquences de l'invention peuvent être insérées dans des vecteurs tels que des vecteurs rétroviraux ou des vecteurs adénoviraux, permettant leur administration in vivo (Médecine et Sciences 7 (1991) 705). Les différentes séquences nucléotidiques de l'invention peuvent être d'origine artificielle ou non. Il peut s'agir de séquences génomiques, d'ADNc, d'ARN, de séquences hybrides ou de séquences synthétiques ou semi-synthétiques. Ces séquences peuvent être obtenues soit par criblage de banques d'ADN (banque d'ADNc, banque d'ADN génomique), soit par synthèse chimique, soit par des méthodes mixtes incluant la modification chimique ou enzymatiqe de séquences obtenues par criblage de banques.
Les produits de la présente invention peuvent être utilisés dans le domaine thérapeutique : en particulier, les peptides de l'invention étant capables de moduler l'activité des protéines ras, ils permettent d'intervenir dans le processus de développement des cancers, et notamment, ils peuvent inhiber l'activité des oncogènes dont l'activité transformante passe par une interaction p21-GAP fonctionnelle. De nombreux cancers ont en effet été associés à la présence de protéines ras oncogéniques. Parmi les cancers renfermant le plus souvent des gènes ras mutés, on peut citer notamment les adénocarcinomes du pancréas, dont 90% ont un oncogène Ki-ras muté sur le douzième codon (Almoguera et coll., Cell 53 (1988) 549), les adénocarcinomes du colon et les cancers de la thyroïde (50%), ou les carcinomes du poumon et les leucémies myéloïdes (30%, Bos, J.L. Cancer Res.49 (1989) 4682).
L'invention a donc également pour objet toute composition pharmaceutique comprenant comme principe actif au moins un peptide et/ou un oligonucléotide antisens et/ou une séquence nucléique selon la présente invention. Les compositions pharmaceutiques de l'invention peuvent être formulées en vue d'une administration par voie topique, orale, parentérale, intranasale, intraveineuse, intramusculaire, sous-cutanée, intraoculaire, etc Préférentiellement, les compositions pharmaceutiques contiennent des véhicules pharmaceutiquement acceptables pour une formulation injectable. Il peut s'agir en particulier de solutions salines (phosphate monosodique, disodique, chlorure de sodium, potassium, calcium ou magnésium, etc, ou des mélanges de tels sels), stériles, isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui, par addition selon le cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés injectables. Les doses de principe actif (peptide, séquence nucléique ou vecteur) utilisées pour l'administration peuvent être adaptées en fonction de différents paramètres, et notamment en fonction du mode d'administration utilisé, de la pathologie concernée, du gène à exprimer, ou encore de la durée du traitement recherchée. D'une manière générale, concernant les virus recombinants selon l'invention, ceux-ci sont formulés et administrés sous forme de doses comprises entre 104 et 1014 pfu/ml, et de préférence 106 à 1010 pfu/ml. Le terme pfu ("plaque forming unit") correspond au pouvoir infectieux d'une solution de virus, et est déterminé par infection d'une culture cellulaire appropriée, et mesure, généralement après 48 heures, du nombre de plages de cellules infectées. Les techniques de détermination du titre pfu d'une solution virale sont bien documentées dans la littérature.
Les compositions pharmaceutiques sont plus particulièrement destinées à une utilisation dans le traitements des cancers. Plus particulièrement, les compositions pharmaceutiques comprennent au moins un virus dans lequel est incorporé au moins une séquence nucléotidique telle que décrite ci-avant. D'autres avantages de la présente invention apparaîtront à la lecture des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs.
Légende des figures
Figure 1 : Mise en évidence de la région effectrice de la protéine GAP.
Figure 2 : Profil antigénique du peptide SEQ ID n° 2 criblé en recouvrement séquentiel par l'anticorps Ac200.
Figure 3 : Effet des peptides de l'invention sur la maturation des oeufs de xénope induite par p21 Ras Lysl2, l'insuline ou la progestérone.
Techniques générales de clonage
Les méthodes classiquement utilisées en biologie moléculaire telles que les extractions préparatives d'ADN plasmidique, la centrifugation d'ADN plasmidique en gradient de chlorure de césium, l'électrophorèse sur gels d'agarose ou d'acrylamide, la purification de fragments d'ADN par électroélution, les extractions de protéines au phénol ou au phénol-chloroforme, la précipitation d'ADN en milieu salin par de l'éthanol ou de l'isopropanol, la transformation dans Escheridiia coli, etc, sont bien connues de l'homme de métier et sont abondament décrites dans la littérature [Maniatis T. et al., "Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982; Ausubel F.M. et al. (eds), "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons, New York, 1987].
Les enzymes de restriction ont été fournies par New England Biolabs (Biolabs), Bethesda Research Laboratories (BRL) ou Amersham et sont utilisées selon les recommandations des fournisseurs.
Les plasmides de type ρBR322, pUC, lgt11, pGEX 2T et les phages de la série M13 sont d'origine commerciale.
Pour les ligatures, les fragments d'ADN sont séparés selon leur taille par électrophorèse en gels d'agarose ou d'acrylamide, extraits au phénol ou par un mélange phénol/chloroforme, précipités à l'éthanol puis incubés en présence de l'ADN ligase du phage T4 (Biolabs) selon les recommandations du fournisseur.
Le remplissage des extrémités 5' proéminentes est effectué par le fragment de Klenow de l'ADN Polymérase I à'E. coli (Biolabs) selon les spécifications du fournisseur. La destruction des extrémités 3' proéminentes est effectuée en présence de l'ADN Polymérase du phage T4 (Biolabs) utilisée selon les recommandations du fabricant. La destruction des extrémités 5' proéminentes est effectuée par un traitement ménagé par la nucléase S1.
La mutagénèse dirigée in vitro par oligodéoxynucléotides synthétiques est effectuée selon la méthode développée par Taylor et al. [Nucleic Acids Res. 13 (1985) 8749-8764] en utilisant le kit distribué par Amersham.
L'amplification enzymatique de fragments d'ADN par la technique dite de PCR [Polymérase-catalyzed Chain Reaction, Saiki R.K. et al., Science 230 (1985) 1350-1354; Mullis K.B. et Faloona F.A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350] est effectuée en utilisant un "DNA thermal cycler" (Perkin Elmer Cetus) selon les spécifications du fabricant
La vérification des séquences nucléotidiques est effectuée par la méthode développée par Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 (1977) 5463-5467] en utilisant le kit distribué par Amersham.
Pour les expériences d'hybridation, les conditions de stringence normales sont généralement les suivantes : hybridation : 3 x SCC en présence de 5 × Denhart's à 65°C; lavage : 0,5 x SSC à 65 °C.
Exemple 1 : Mise en évidence des régions ef fectriees L'existence de régions effectrices au sein de la protéine GAP a été démontrée par la mise en évidence que des anticorps anti-GAP étaient capables de bloquer l'activité transformante de ras (E.1.1.) alors que ces mêmes anticorps ne modifiaient pas l'interaction GAP-ras (E.1.2.).
E.1.1. Inhibition de la fonction ras par des anticorps anti-GAP. Les anticorps monoclonaux de souris dirigés contre la protéine GAP ont été obtenus auprès de M. Thang (Inserm U245, Hôpital St Antoine, Paris). Ces anticorps ont été utilisés pour mettre en évidence le rôle de l'interaction GAP-p21 et, plus précisément, pour montrer l'influence d'une inhibition de cette interaction sur la maturation d'oeufs de xénopes induite par ras. Des grenouilles Xenopus kevis ont été obtenues auprès du CNRS
(Montpellier, France). Les grenouilles sont anesthésiées dans l'eau glacée, et des fragments d'ovaires sont prélevés chirurgicalement et transférés dans un milieu Barth modifié (Hirai et al., Dev. Biol. 100 (1984) 214). Les oocytes au stade NI sont récupérés en agitant les agrégats d'oocytes pendant 2 heures à température ambiante en présence de 2 mg/ml de collagénase (Sigma). Pour l'analyse de la maturation induite par ras, 40 ni de la protéine dans du milieu Barth modifié sont introduits dans le cytoplasme des oocytes par microinjection, soit seuls, soit en présence des anticorps anti-GAP à différentes concentrations. Pour l'analyse de la maturation induite par les hormones, les oocytes sont incubés en présence d'insuline (10 μg/ml) et de chlorure de zinc (10 μM) (insuline pancréatique bovine, Sigma) ou de progestérone (1 μM). Les oocytes sont conservés à 20°C dans du milieu Barth modifié, et le % de rupture de vésicule germinale (GVBD) est déterminé après 18 heures d'incubation, par dissection des oocytes préalablement fixés en présence de 5% d'acide trichloroacétique. Les résultats sont exprimés par le % de GVBD sur des groupes d'oocytes.
Les résultats obtenus montrent que certains anticorps anti-GAP sont capables d'inhiber l'activité transformante de la protéine ras. L'anticorps Ac200 a été utilisé dans la suite de l'étude.
E.1.2. Absence d'effet de l'anticorps Ac200 sur l'interaction GAP-p21
L'interaction entre GAP et le complexe p21-GTP est déterminée selon le protocole suivant. La protéine Ha-ras p21 normale (Rey et al., Mol. Cell. Biol. 9 (1989) 3904) est équilibrée avec un excès de (γ-32P) GTP (3000 Ci/mmol, Dupont, ΝEΝ Research Products, Boston, Mass) dans un tampon Tris-HCl 20 mM (pH 7,5), 100 mM (ΝH4)2SO4, 10 mM dithiothréitol, 1 mM MgCl2 et 50 mg/ml de sérum-albumine bovine, pendant 30 minutes à 30 °C. L'incubation est arrêtée en appliquant la solution refroidie sur une colonne PD10 (Pharmacia) équilibrée par un tampon Tris-HCl 20 mM (pH 7,5), 10 mM dithiothréitol, 10 mM MgCl2, 1 mM fluorure de phénylméthylsulfonyl, pour éliminer les nucléotides libres. La réaction GTPase est une variante de celle décrite par Cassel et Selinger (Biochim. Biophys. Acta 452 (1976) 538). La réaction est commencée par ajout de 10 μl (15 μg) du cytosol obtenu par sonication de souches d'Ecoli exprimant le GAP (Cf exemple E.2.1. ci-dessous pour la production de GAP), à 1 pmol de Ha-ras p21-(g-32P) GTP dans du tampon Tris-HCl 20 mM (pH 7,5), NaCl 100 mM, dithiothréitol 10 mM, MgCl2 5mM, GTP 100 μM, BSA 50 μg/ml, pour obtenir un volume final de 50 μl. La réaction est réalisée pendant 3 minutes à 30°C et arrêtée sur la glace par addition de 950 μl d'acide phosphorique 20 mM (pH 2,3) contenant 5% (w/v) de charbon activé. Après centrifugation à 1800 g, la radioactivité est mesurée dans des échantillons de 200 μl du surnageant. Les résultats sont présentés ci-dessous. Produit testé Activité relative GAP
Aucun 100
Ac200 100
[275-351]GAP 100
AcY13-259 5 Ils montrent que l'anticorps Ac200 ne modifie pas l'interaction GAP-p21.
Le même essai réalisé avec le fragment 273-351 de GAP (SEQ ID n° 1) démontre également que ce polypeptide ne modifie pas l'interaction fonctionnelle GAP-p21.
Exemple 2 : Caractérisation de la région effectrice E.2.1. Mise en évidence d'une région de 80 aa environ par fragmentation de GAP, production de ces fragments de GAP sous forme de fusion GST, et réactivité vis-à-vis de l'anticorps Ac200 neutralisant
La séquence d'ADN codant pour la protéine GAP a été fragmentée par digestion enzymatique, et les fragments obtenus ont été séparés par électroélution et mis sous forme de fragments BamHI-EcoRI. Ces fragments ont ensuite été exprimées dans la souche d'E.coli TG1 sous forme de protéines de fusion avec la glutathion S-transférase (GST) selon la technique décrite par Smith et Johnson (Gène 67 (1988) 31). Pour cela, les différents fragments d'ADN obtenus ont été insérés dans les sites BamHI-EcoRI du vecteur pGEX 2T (Pharmacia), en 3' et en phase d'un ADNc codant pour la GST. Les vecteurs ainsi obtenus sont ensuite utilisés pour transformer la souche Exoli TG1. Les cellules ainsi transformées sont précultivées une nuit à 37°C, diluées au l/10e dans du milieu LB, ajoutées d'IPTG pour induire l'expression (2 heures, 25°C), puis cultivées 21 heures environ à 25°C. Les cellules sont ensuite lysées, et les protéines de fusions produites sont purifiées par affinité sur colonne Agarose-GSH. Pour cela, le lysat bactérien est incubé en présence du gel (préparé et équilibré avec le tampon de lyse) pendant 15 min à 4°C. Après 3 lavages avec un tampon Tris-HCl pH 7,4, les protéines sont éluées en présence d'un tampon Tris-HCl pH 7,7 contenant un excès de GSH. Le surnageant est récolté et centrifugé.
Les fragments ainsi obtenus sont testés en fonction de leur reconnaissance par l'anticorps Ac200. Les résultats obtenus sont présentés sur la figure 1. Ils montrent que la région effectrice de la protéine GAP est située entre les résidus 275 et 350 environ.
E.2.2. Identification plus précise par "Epitope Scanning"
La technique "d'epitope scanning" est basée sur le principe qu'un anticorps donné peut réagir avec des peptides de 5 à 15 acides aminés. De ce fait, l'identification d'épitopes séquentiels peut être obtenue en préparant un jeu complet de peptides recouvrants, de 5-15 acides aminés, correspondants à la séquence complète de l'antigène considéré. Cette technique a été utilisée pour déterminer les épitopes fonctionnels du fragment de GAP mis en évidence à l'exemple E.2.1. ci-dessus. Pour cela, la totalité du fragment a été explorée par recouvrements séquentiels, par synthèse d'un décapeptide tous les 2 acides aminés. a) Synthèse des peptides recouvrants.
35 peptides couvrant la totalité de la séquence SEQ ID n° 1 ont été synthétisés chimiquement. La synthèse a été effectuée en double, sur 2 supports indépendants, par la méthode Fmoc/t-butyl sur phase solide (kit Cambridge Research Biochemicals). b) Mise en évidence des épitopes fonctionnels.
Les épitopes fonctionnels reconnus par l'anticorps Ac200 ont été révélés en test ELISA par un anticorps de lapin anti-souris couplé à la peroxydase. Le substrat chromogénique de l'enzyme utilisé est l'amino-di-(3-ethylbenzothiazodine sulfonate) (ABTS).
Les résultats obtenus sont présentés sur la figure 2. Les épitopes reconnus par cet anticorps sont les suivants :
- PVEDRRRNRAI (P1) - EISF (P2)
- EDGWM (P3)
Il est entendu que d'autres régions fonctionnelles de la séquence SEQ ID n° 1 peuvent être mises en évidence en utilisant d'autres anticorps anti-GAP. Sur la base de ces résultats et en utilisant la même technique de synthèse chimique, les peptides suivants ont été synthétisés :
- APPEPVEDRRRVRAILPYTKVPDTDEISFLKGD (P4)
- WMWVTNLRTD (P5)
- ISFLKGDMFIVHNELEDGWMWVTNLRTD (P6)
- VTNLRTDEQGLIVEDLVEEVGREEDPHEGKI (P7)
- PPEPVEDRRRVRAILPYTKVPDTDEISFLKGDMFIVHNELEDGWMW VTNLRTD (P8)
- Peptide SEQ ID n° 3 (P9)
Exemple 3 : Caractérisation biologique E.3.1. L'activité biologique des peptides de l'invention a été étudiée en mesurant leur effet sur la maturation d'oeufs de xénopes induite par p21 ras Lysl2, par l'insuline ou par la progestérone.
Le protocole utilisé est le même que celui décrit dans l'exemple E.1.1. ci-dessus. L'activité est mesurée par microinjection dans le cytoplasme des oocytes de 40 ni le la protéine p21 ras dans du milieu Barth modifié, soit seuls, soit en présence des différents peptides de l'invention à des concentrations variables. Les résultats sont exprimés par le % de GVBD sur des groupes d'oocytes. Les résultats sont présentés sur la figure 3.
Ces résultats montrent clairement que les peptides de l'invention, notamment le peeptide SEQ ID n° 1 et le peptide (P5), sont capables d'inhiber l'activité transformante de la protéine ras. Un fragment de longueur identique ([768-860] PLCγ) préparé par les mêmes techniques à partir de la phospholipase C type γ humaine ne présente pas l'activité du peptide de l'invention.
E.3.2. Le peptide P9 a été purifié sous la forme d'une protéine de fusion à la GST selon le protocole décrit dans l'exemple E.2.I., puis séparé de la GST après clivage protéolytique à la thrombine. Le peptide P9 ainsi obtenu a ensuite été testé sur la maturation d'oeufs de xénopes dans les conditions de l'exemple E.3.1. Les résultats obtenus montrent que le peptide P9 bloque complètement la maturation des ovocytes.
L'activité de P9 a ensuite été évaluée dans un test de formation de foyers de cellules transformées. Les cellules cancéreuses ont en effet la propriété de former des foyers de transformation, et notamment les fibroblastes NIH 3T3 exprimant un ras oncogénique. Les cellules NIH 3T3 ont été cultivées dans du milieu DMEM (milieu Dulbecco modifié Eagle) contenant 10 % de sérum de veau fêtai, à 37 °C, dans un environnement humide contenant 5 % C02. Les plasmides pSV2-GAP et pSV2-P9 ont été construits en insérant les séquences nucléotidiques codant pour GAP et pour P9 (SEQ ID n° 3) dans le vecteur SV2. Les cellules NIH 3T3 ont été cotransfectées avec avec un ras oncogénique Ha-ras Val12, les plasmides indiqués dans le tableau, et un excès de 10 fois du gène de résistance à la néomycine, par la technique de transfection aux lipides cationiques (Schweighoffer et al., Science 256 (1992) 825). La même quantité d'ADN total est transfectée pour chaque boite. 24 heures après la transfection, les cellules transfectées provenant de chaque boite de pétri (100 mm) sont divisées dans un rapport 1 à 10 et cultivées dans le même milieu mais en présence de G418 (Gibco/BRL) à 0,4 mg / ml de milieu. Le nombre de foyers de transformation obtenu par μg d'ADN transfecté est comptabilisé après 14 jours de culture. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau suivant. Ils représentent la moyenne de quatre essais indépendants.
Ces résultats montrent clairement que les peptides de l'invention (notamment le peptide P9) sont capables de diminuer très fortement le pouvoir transformant d'un gène ras oncogénique.
E.3.3. Activité antitumorale in vivo a) Préparation d'un virus recombinant comprenant une séquence nucléique selon l'invention.
Les virus recombinants défectifs de l'invention peuvent être préparés par recombinaison homologue entre un virus défectif et un plasmide portant entre autre la séquence d'acides nucléiques telle que définie ci-avant (Levrero et al., Gène 101 (1991) 195; Graham, EMBO J. 3(12) (1984) 2917). La recombinaison homologue se produit après co-transfection desdits virus et plasmide dans une lignée cellulaire appropriée. La lignée cellulaire utilisée doit de préférence (i) être transformable par lesdits éléments, et (ii), comporter les séquences capables de complémenter la partie du génome du virus défectif, de préférence sous forme intégrée pour éviter les risques de recombinaison. A titre d'exemple de lignée utilisable pour la préparation d'adénovirus recombinants défectifs, on peut mentionner la lignée de rein embryonnaire humain 293 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59) qui contient notamment, intégrée dans son génome, la partie gauche du génome d'un adénovirus Ad5 (12 %). A titre d'exemple de lignée utilisable pour la préparation de rétrovirus recombinants défectifs, on peut mentionner la lignée CRIP (Danos et Mulligan, PΝAS 85 (1988) 6460).
Ensuite, les virus qui se sont multipliés sont récupérés et purifiés selon les techniques classiques de biologie moléculaire. La séquence SEQ ID n° 3 codant pour le peptide P9 a été clonée dans un plasmide néo sous contrôle du promoteur précoce de SN40. La cassette Promoteur SN40-SEQ ID n° 3 a ensuite été clonée dans un vecteur rétroviral de type Moloney (Palmer et al., PΝAS 84 (1987) 1055). Un vecteur contrôle a également été construit, dans lequel le fragment a été inséré dans l'orientation antisens.
Les cellules amphotrophiques GP+envAml2 ont été transfectées avec les vecteurs rétroviraux décrits ci-dessus par la technique au phosphate de calcium (Markowitz et al., Nirology 167 (1988) 400; Graham et al., Nirology 52 (1973) 456).48 heures après la transfection, les cellules transfectées sont repiquées dans un milieu contenant du G418 (Gibco, BRL) à la concentration de 0,4 mg/ml. Deux semaines plus tard, les colonies résistantes au G418 sont cultivées en grande quantité. Les cellules transfectées présentant un titre élevé en virus sont cocultivées avec les cellules ecotropiques d'empaquetage Psi2 afin d'augmenter le titre viral (Palmer et al., PΝAS 84 (1987) 1055). Les virus recombinants ainsi produits sont isolés par les techniques dassiques de biologie moléculaire. b) Activité antitumorale in vivo
Un modèle de tumeur pulmonaire chez la souris a été mis au point selon la technique décrite par Me Lemore et al (Cancer Res.47 (1987) 5132). Pour cela, les souris reçoivent en intratrachéal 105 cellules H460a. Aux jours 4, 5 et 6, les souris ayant reçu la tumeur sont traitées par la même voie intratrachéale avec 0,1 ml de suspension virale obtenue d-dessus (environ 5.106 cpu/ml) contenant 5 μg/ml de protamine. 30 jours après l'inoculation de la tumeur, les souris sont analysées pour la présence de tumeurs, dont le volume est approximé selon la technique décrite par Me Lemore et al prédtée. Les animaux traités par le virus P9 ne présentent pas de tumeurs mesurables, ou seulement des tumeurs de très petite taille. En revanche, les animaux traités par le même titre viral du virus P9 antisens sont indistinguables des animaux contrôle n'ayant reçu que la tumeur.
Ces résultats montrent dairement que les séquences de l'invention, notamment sous forme de vecteurs viraux, peuvent être utilisées in vivo pour le traitement des cancers.
Il est entendu que l'homme du métier peut utiliser d'autres virus pour le transfert des peptides de l'invention in vivo. Notamment, il peut s'agir d'adénovirus, de virus adéno-assodés, du virus de l'herpès, etc. Des vecteurs dérivés de ces virus ont été décrits dans l'art antérieur et la construction de virus selon l'invention peut être effectuée par l'homme du métier sur la base de ses connaissances générales (voir notamment Akli et al., Nature Genetics 3 (1993) 224; Stratford-Perricaudet et al., Human Gène Therapy 1 (1990) 241; EP 185 573, Levrero et al., Gène 101 (1991) 195; WO 91/1808; EP 243204). LISTE DE SEQUENCES
(1) INFORMATION GENERALE:
(i) DEPOSANT:
(A) NOM: RHONE-POULENC RORER SA.
(B) RUE: 20, avenue Raymond ARON
(C) VILLE: ANTONY
(E) PAYS: FRANCE
(F) CODE POSTAL: 92165
(ii) TITRE DE L' INVENΗON: PEPTIDES INHIBANT L'ACπVITE DES PROTEINES RAS, PREPARATION ET UΗUSAΗON
(iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 8
(iv) FORME LISIBLE PAR ORDINATEUR:
(A) TYPE DE SUPPORT: Tape
(B) ORDINATEUR: IBM PC compatible
(C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS
(D) LOGICIEL: Patentin Release #1.0, Version #1.25 (OEB) (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 1:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 234 paires de bases
(B) TYPE: acide nucléique
(C) NOMBRE DE BRINS: double
(D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(iii) ANTI-SENS: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne
(vi) ORIGINE:
(A) ORGANISME: Homo sapiens
(ix) CARACTERISTIQUE ADDITIONELLE:
(A) NOM/CLE: CDS
(B) EMPLACEMENT: 1..234
(ix) CARACTERISTIQUE ADDITIONELLE:
(D) AUTRES INFORMATIONS : Fragment 273-351 du gène GAP (xi) DESCRIPTION DELA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1:
CCT TAC ACA AAA GTA CCA GAC ACT GAT GAA ATA AGT TTC TTA AAA GGA 96 Pro Tyr Thr Lys Val Pro Asp Thr Asp Glu Ile Ser Phe Leu Lys Gly
20 25 30
GAT ATG TTC ATT GTT CAT AAT GAA TTA GAA GAT GGA TGG ATG TGG GTT 144 Asp Met Phe Ile Val His Asn Glu Leu Glu Asp Gly Trp Met Trp Val
35 40 45
ACA AAT TTA AGA ACA GAT GAA CAA GGC CTT ATT GTT GAA GAC CTA GTA 192 Thr Asn Leu Arg Thr Asp Glu Gin Gly Leu Ile Val Glu Asp Leu Val
50 55 60
GAA GAG GTG GGC CGG GAA GAA GAT CCA CAT GAA GGA AAA ATA 234 Glu Glu Val Gly Arg Glu Glu Asp Pro His Glu Gly Lys Ile
65 70 75
(2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 2:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 78 acides aminés
(B) TYPE: acide aminé
(D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: protéine
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2:
Ala Pro Pro Glu Pro Val Glu Asp Arg Arg Arg Val Arg Ala Ile Leu
1 5 10 1 5
Pro Tyr Thr Lys Val Pro Asp Thr Asp Glu Ile Ser Phe Leu Lys Gly
20 25 30
Asp Met Phe Ile Val His Asn Glu Leu Glu Asp Gly Trp Met Trp Val
35 40 45
Thr Asn Leu Arg Thr Asp Glu Gin Gly Leu Ile Val Glu Asp Leu Val
50 55 60
Glu Glu Val Gly Arg Glu Glu Asp Pro His Glu Gly Lys Ile
65 70 75
(2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 3 :
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1548 paires de bases
(B) TYPE: acide nucléique
(C) NOMBRE DE BRINS: double
(D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(iii) ANTI-SENS: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne
(vi) ORIGINE:
(A) ORGANISME: Homo sapiens
(ix) CARACTERISTIQUE ADDIΗONELLE:
(A) NOM/CLE: CDS
(B) EMPLACEMENT: 1..1548
(ix) CARACTERISTIQUE ADDITIONELLE:
(D) AUTRES INFORMATIONS : Fragment 385-1933 du gène GAP
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3:
(2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 4:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 33 acides aminés
(B) TYPE: acide aminé
(D) CONFIGURATION: linéaire
(il) TYPE DE MOLECULE: peptide
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne
(vi) ORIGINE:
(B) NOM : Peptide P4
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4:
Ala Pro Pro Glu Pro Val Glu Asp Arg Arg Arg Val Arg Ala Ile Leu 1 5 10 15
Pro Tyr Thr Lys Val Pro Asp Thr Asp Glu Ile Ser Phe Leu Lys Gly
20 25 30
Asp
(2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 5:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 10 acides aminés
(B) TYPE: acide aminé
(D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne (vi) ORIGINE:
(B) NOM : Peptide P5
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 5:
Trp Met Trp Val Thr Asn Leu Arg Thr Asp
1 5 10 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 6:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 28 acides aminés
(B) TYPE: acide aminé
(D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne
(vi) ORIGINE:
(B) NOM : Peptide P6
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 6:
Ile Ser Phe Leu Lys Gly Asp Met Phe Ile Val His Asn Glu Leu Glu 1 5 10 15
Asp Gly Trp Met Trp Val Thr Asn Leu Arg Thr Asp
20 25
(2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 7:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 31 acides aminés
(B) TYPE: acide aminé
(D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne
(vi) ORIGINE:
(B) NOM : Peptide P7
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 7: Val Thr Asn Leu Arg Thr Asp Glu Gin Gly Leu Ile Val Glu Asp Leu 1 5 10 15
Val Glu Glu Val Gly Arg Glu Glu Asp Pro His Glu Gly Lys Ile
20 25 30
(2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO: 8:
(i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE:
(A) LONGUEUR: 53 acides aminés
(B) TYPE: acide aminé (D) CONFIGURATION: linéaire
(ii) TYPE DE MOLECULE: peptide
(iii) HYPOTHETIQUE: NON
(v) TYPE DU FRAGMENT: interne
(vi) ORIGINE:
(B) NOM : Peptide P8
(xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 8:
Pro Pro Glu Pro Val Glu Asp Arg Arg Arg Val Arg Ala Ile Leu Pro 1 5 10 15 Tyr Thr Lys Val Pro Asp Thr Asp Glu Ile Ser Phe Leu Lys Gly Asp
20 25 30
Met Phe Ile Val His Asn Glu Leu Glu Asp Gly Trp Met Trp Val Thr
35 40 45
Asn Leu Arg Thr Asp
50

Claims

REVENDICATIONS
I. Peptide dérivé de la protéine GAP, capable d'inhiber au moins partiellement l'activité transformante des protéines p21 activées. 2. Peptide selon la revendication 1 capable d'inhiber au moins partiellement l'activité transformante des complexes p21-GTP-GAP.
3. Peptide selon la revendication 2 caractérisé en ce qu'il est capable de lier la protéine p21, éventuellement complexée au GTP, et en ce qu'il porte une région effectrice rendue non fonctionnelle. 4. Peptide selon la revendication 2 caractérisé en ce qu'il comprend tout ou partie de la séquence SEQ ID n° 2 ou d'un dérivé de celle-ci.
5. Peptide selon la revendication 4 caractérisé en ce qu'il est choisi parmi les peptides PI à P9.
6. Peptide selon l'une des revendications précédentes modifié par une séquence d'adressage à la membrane de type CAAX où C est une cystéine, A un acide aminé aliphatique et X un acide aminé quelconque.
7. Peptide capable d'entrer en compétition avec un peptide selon l'une des revendications 2 à 6 pour l'interaction avec sa cible cellulaire.
8. Composé non peptidique ou non exclusivement peptidique capable de moduler l'activité transformante des protéines p21 obtenu par reproduction des motifs actifs des peptides selon les revendications 1 à 7 par des structures non peptidiques ou non exclusivement peptidiques.
9. Séquence nucléotidique codant pour un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 7. 10. Séquence selon la revendication 9 introduite dans un vecteur viral permettant son expression in vivo.
II. Oligonucléotide antisens d'une séquence selon la revendication 9.
12. Procédé de préparation d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 caractérisé en ce que l'on introduit dans une cellule hôte une séquence nucléotidique selon la revendication 9, on cultive cette cellule dans des conditions d'expression de ladite séquence, et on récupère le peptide produit.
13. Composition pharmaceutique ayant comme principe actif au moins un peptide selon l'une des revendications 1 à 7 ou une séquence nucléotidique selon la revendication 9.
14. Composition pharmaceutique selon la revendication 13 caractérisée en ce qu'elle comprend un virus recombinant dans lequel est incorporée une séquence nucléotidique selon la revendication 9.
15. Composition pharmaceutique selon la revendication 14 caractérisée en ce que le virus est choisi parmi les rétrovirus et les adénovirus.
16. Composition pharmaceutique selon l'une des revendications 13 à 15 pour le traitement des cancers.
17. Virus recombinant défectif comprenant une séquence nucléique hétérologue codant pour un polypeptide selon l'une des revendications 1 à 7.
18. Virus selon la revenndication 17 caractérisé en ce qu'il s'agit d'un adénovirus, d'un rétrovirus, d'un virus adéno-associé ou du virus de l'herpès.
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